ACARA II

KITIN KITOSAN

LAPORAN RESMI PRAKTIKUM

TEKNOLOGI HASIL LAUT

Disusun oleh:

Nama : Raphael Elhan Argasae

NIM : 12.70.0158

Kelompok : C1

PROGRAM STUDI TEKNOLOGI PANGAN

FAKULTAS TEKNOLOGI PERTANIAN

UNIVERSITAS KATOLIK SOEGIJAPRANATA

SEMARANG

2015

1

1. MATERI METODE

1.1. Alat dan Bahan

1.1.1. Alat

Alat yang digunakan dalam praktikum ini adalah oven, blender, ayakan, peralatan gelas.

1.1.2. Bahan

Bahan yang digunakan dalam praktikum ini adalah limbah udang, HCl 0,75N; 1N; dan

1,25N, NaOH 3,5%, 40%, dan 60%.

1.2. Metode

1.2.1. Demineralisasi

HCl ditambahkan dengan perbandingan 10:1. Kelompok A1 dan A2 menggunakan

HCl 0,75N, A3 dan A4 HCl 1N, dan A5 HCl 1,25N

Limbah udang dicuci dengan air mengalir dan dikeringkan, lalu dicuci dengan air

panas 2 kali, dan dikeringkan kembali.

Limbah udang kemudian dihancurkan hingga menjadi serbuk dan diayak dengan

ayakan 40-60 mesh.

2

Kemudian dipanaskan pada suhu 90oC selama 1 jam & secara kontinu dilakukan

pengadukan.

Lalu dicuci sampai pH netral.

Kemudian dikeringkan pada suhu 80oC selama 24 jam

3

1.2.2. Deproteinasi

Hasil demineralisasi dicampur dengan NaOH dengan perbandingan 6:1

Kemudian dipanaskan pada suhu 90oC selama 1 jam.

Kemudian disaring dan didinginkan

Lalu dicuci sampai pH netral.

Kemudian dikeringkan pada suhu 80oC selama 24 jam

4

1.2.3. Deasetilasi

Chitin yang didapat kemudian ditambahkan NaOH 40% untuk kelompok A1 dan A2,

NaOH 50% untuk kelompok A3 dan A4, dan NaOH 60% untuk kelompok A5

Kemudian dipanaskan pada suhu 90oC selama 1 jam

Lalu dicuci sampai pH netral.

Kemudian dikeringkan pada suhu 70oC selama 24 jam

5

2. HASIL PENGAMATAN

Hasil pengamatan kitin dan kitosan dapat dilihat pada tabel 1.

Tabel 1. Kitin dan Kitosan

Kelompok Perlakuan Rendemen

Kitin I (%)

Rendemen

Kitin II (%)

Rendemen

Kitosan (%)

C1 HCl 0,75N + NaOH 40% +

NaOH 3,5% 23,45 30,00 27,43

C2 HCl 0,75N + NaOH 40% +

NaOH 3,5% 37,82 44,00 27,38

C3 HCl 1N + NaOH 50% + NaOH

3,5% 41,67 54,55 32,16

C4 HCl 1N + NaOH 50% + NaOH

3,5% 40,00 58,30 24,30

C5 HCl 1,25N + NaOH 60% +

NaOH 3,5% 21,19 40,32 11,25

Berdasarkan hasil pengamatan diatas, dapat dilihat bahwa nilai rendemen kitin I tertinggi

terdapat pada kelompok C3 yaitu 41,67%, sedangkan untuk nilai rendemen kitn I terendah ada

pada kelompok C5 yaitu 21,19%. Akan tetapi pada nilai rendemen kitin II tertinggi ada pada

kelompok C4 yaitu 58,3%, sedangkan untuk nilai terendah ada pada kelompok C1 yaitu 30%.

Rendemen kitosan yang dihasilkan, nilai tertinggi ada pada kelompok C3 yaitu 32,16% dan nilai

terendah ada pada kelompok C5 yaitu 11,25%. Berdasarkan data yang diperoleh tersebut,

semakin tinggi konsentrasi HCl dan NaOH yang ditambahkan, maka akan semakin tinggi pula

nilai rendemen yang dihasilkan, walaupun ada beberapa kelompok yang menunjukkan

penurunan nilai.

6

3. PEMBAHASAN

Pada pengujian mengenai bab kitin dan kitosan dilakukan dengan memilih sampel kulit udang

yang diberikan berbagai perlakuan yang berbeda di setiap kelompoknya dengan tujuan untuk

membandingkan data yang akan diperoleh. Berdasarkan jurnal yang berjudul Production and

Characterization of Chitosan From Shrimp Waste yang ditulis oleh Hossain & Iqbal (2014),

mengatakan bahwa kulit dan kepala udang memiliki nilai ekonomis yang rendah. Pada industri

udang, limbah udang biasa digunakan untuk proses selanjutnya dan dapat menghasilkan produk

yang memiliki nilai ekonomis yang tinggi yaitu kitosan. Dalam jurnal ini juga juga tertulis

bahwa kitosan merupakan polimer karbohidrat yang didapat dari kitin yang mudah didapatkan

dari golongan crustaceans, fungi, serangga dan beberapa alga (Tolamite et al., 2000). Kitin

(C8H13NO5)n merupakan biopolymer yang berasal dari unit N-asetil-D-glukosamin yang saling

berikatan dengan ikatan (14). Kitin memiliki beberapa ciri-ciri jika dilihat dari segi fisik,

antara lain tidak dapat larut dalam air, tidak berbau, pelarut organic umumnya, berupa kristal

amorphous dengan warna putih, asam-asam anorganik serta basa encer (Muzzarelli, 1985). Peter

(1995) mengatakan bahwa kitin merupakan kelompok polisakarida yang tersedia melimpah di

alam setelah selulosa. Kitin ini sering dijumpai di dalam komponen struktur eksoskeleton dari

serangga dan spesies crustacean serta dapat juga ditemui di dalam dinding sel ragi dan jamur.

Di dalam crustacean kitin bergabung dengan protein, pigmen, dan garam anorganik (CaCO3).

Hal tersebut dapat terjadi dikarenakan kitin yang terdapat di alam tidak berdiri sendiri akan tetapi

bergabung dengan senyawa lainnya (Suhardi, 1992). Di sisi lain Peter (1995) mengatakan

penggunaan kitin yang paling besar dan banyak ada pada industry pangan dan kosmetik. Ada

beberapa manfaat dari kitin yaitu sebagai bahan pendukung beberapa macam enzim antara lain

enzim lactase, papain, asam fosfatase, kimotripsin, dan glukosa isomerase. Jika dilihat dari segi

komersialnya, kitin mempunyai biaya yang rendah apabila ingin dikembangkan, karena kitin

dapat diperoleh dari limbah industry pengolahan makanan laut (Wang et al., 2010). Salah satu

contoh produk turunan dari kitin dimana hanya dapat larut dalam asam yang encer seperi asam

format, asam asetat, dan asam sitrat atau disebut dengan kitosan. Keberadaan gugus karboksil

7

pada asam asetat dapat memperudah proses pelarutan kitosan. Hal tersebut dapat terjadi karena

adanya interaksi hydrogen antara gugus karboksil dan gugus amina dari kitosan.

Dalam jurnal yang berjudul Structural Characteristics of Chitin and Chitosan Isolated from the

Biomass of Cultivated Rotifer, Brachionus rotundiformis oleh Rumengan et al. (2013) tertulis

bahwa struktur molekul dari rotifer yaitu C18H26N2O10 dimana gugus hidroksil pada rantai kedua

digantikan oleh asetil amida. Kitosan yang dihasilkan tidak memiliki ikatan amida, tetapi gugus

hidroksil dan amino dapat dilihat pada spectra hingga 3500 cm-1. Kitosan yang dihasilkan dari

isolasi kitin yang menggunakan biomassa rotifer dan keduanya menunjukkan gugus fungsional

yang berbeda. Kitin tersusun atas 2-asetamida-2-deoksi-D-glukosa, sedangkan kitosan 2-amino-

2-deoksi-D-glukosa. Berdasarkan jurnal tersebut berarti kitosan lebih sering digunakan untuk

keperluan farmasi.

Dunn et al., (1997) mengatakan bahwa kitosan mempunyai sifat polikationik, sehingga dapat

dijadikan sebagai agen penggumpal dalam proses penanganan limbah yang terutama banyak

mengandung protein. Kitosan mampu berikatan secara crosslink jika diberi tambahan crosslinked

agent contohnya glutaraldehid, glioksial, atau kation Cu2+. Sampai saat ini sudah terdapat lebih

dari 200 aplikasi dari kitin dan kitosan beserta turunannya di dalam industri pangan, pemrosesan

makanan, bioteknologi, pertanian, farmasi, kesehatan, dan lingkungan. Kitin kitosan ini sudah

tidak jarang lagi digunakan sebagai penanganan penyakit setelah panen pada buah jeruk, tomat,

pir, strawberry, anggur meja, dan longan. Kitosan adalah prospek yang baik bila digunakan

sebagai pilihan untuk perlakuan terhadap buah dan sayur setelah panen, hal tersebut dapat terjadi

karena sifat alamiahnya, aktivitas antimikrobial, dan mampu menimbulkan efek pertahanan pada

jaringan tumbuhan.

Berikut merupakan struktur dari selulosa, kitin, serta kitosan yang bisa dilihat pada gambar

dibawah ini :

8

Gambar 1. Struktur dari selulosa, kitin, kitosan.

(Zhang et al., 2010).

Dalam jurnal yang berjudul Chitin and Chitosan Preparation from Marine Sources, Structure,

Properties and applications, Younnes & Rinaudo (2015) mengatakan bahwa ekstraksi kitin dari

kelompok crustaceans dapat dilakukan dengan tahap pertama yaitu penghilangan protein atau

yang dinamakan deproteinasi, kemudian dilanjutkan dengan penghilangan kalsium karbonat

dengan proses demineralisasi. Proses isolasi kitin diawali dengan pemilihan cangkang dari

limbah yang digunakan. Pemilihan ini dilihat dari kualitas bahan yang digunakan. Idealnya

cangkang yang digunakan harus yang mempunyai ukuran dan dari spesies yang sama.

Pada praktikum kali ini yang dilakukan pertama kali adalah tahap demineralisasi. Tahap ini

diawali dengan mencuci limbah udang menggunakan air yang mengalir kemudian dikeringkan,

lalu dicuci lagi menggunakan air panas sebanyak 2 kali dan dikeringkan kembali. Bastaman

(1989) mengatakan bahwa sebelum dilakukan proses demineralisasi, bahan dilewatkan pada

proses pencucian terlebih dahulu untuk menghilangkan kotoran yang masih menempel.

Pencucian dengan menggunakan air panas dilakukan dengan tujuan sebagai tahap sterilisasi agar

mikroba yang merugikan dapat hilang. Selanjutnya dilakukan proses pengeringan pada suhu

800C. Proses pengeringan ini dilakukan dengan tujuan menghilangkan air bekas perlakuan

pencucian yang menempel pada kulit udang sehingga kadar air berkurang dan didapatkan hasil

kulit udang yang kering. Setelah dipastikan bersih, cangkang udang tadi dihancurkan sampai

menjadi serbuk dan diayak menggunakan ayakan ukuran 40 60 mesh. Langkah berikutnya

adalah serbuk yang sudah didapat, dicampur dengan larutan HCl dengan perbanding 10 : 1.

9

Untuk kelompok C1 dan C2 ditambahan HCl dengan konsentrasi 0,75 N, kelompok C3 dan C4

ditambahkan HCl dengan konsentrasi 1 N, dan kelompok C5 ditambahkan HCl 1,25 N. (Sahidi

& Syonowiecki, 1991) mengatakan bahwa penambahan senyawa HCl ini bertujuan untuk

melarutkan senyawa-senyawa mineral yang ada pada serbuk kulit udang tersebut khususnya

kalsium karbonat. Kemudian campuran serbuk tadi diaduk selama 1 jam dan dipanaskan dengan

suhu 90C selama 1 jam. Selanjutnya dicuci lagi hingga pH netral dan dikeringkan pada suhu

80C selama 24 jam. Khorrami et al. (2012) mengatakan dalam jurnalnya yang berjudul

Production of Chitin and Chitosan from Shrimp Shell in Batch Culture of Lactobacillus

plantarum bahwa produksi kitin dan kitosan yang diperoleh dari bahan dasar udang tidak hanya

diperoleh dengan cara batch culture, menggunakan bakteri Lactobacillus plantarum, yang

diinkubasi pada suhu 30C. Penggunaan bakteri ini dapat juga digunakan dalam proses

demineralisasi dan deproteinasi dari kulit udang. Larutan alkali yang dipakai pada penelitian ini

juga sama dengan yang digunakan di dalam praktikum kali ini yaitu larutan NaOH yang

menandakan bahwa kitin dan kitosan memang bisa di konversi menggunakan larutan tersebut.

Dari metode pertama tadi didapatkan hasil pengamatan nilai rendemen kitin I dari kelompok C1

hingga C5 secara berurutan adalah 23,45% ; 37,82% ; 41,67% ; 40% ; dan 21,19%. Hal tersebut

kurang sesuai dengan pendapat Truong et al. (2007) yang mengatakan bahwa konsentrasi

perubahan penambahan asam yang sesuai akan mampu melarutkan mineral secara sempurna

sehingga apabila semakin tinggi konsentrasi HCl yang ditambahkan maka akan menghasilkan

rendemen kitin I yang semakin besar pula. Tetapi yang terjadi pada percobaan kali ini adalah

nilai rendemen kitin C5 yang menggunakan HCl 1,25 N lebih kecil dibandingkan dengan

kelompok C1 yang menggunakan HCl 0,75 N. Hal tersebut dikarenakan pada saat pemanasan

menggunakan hot plate suhu tidak stabil dan mengakibatkan overheat pada sampel dan timbul

letupan hingga menyembur tumpah dari gelas beker, sehingga sampel yang didapat jumlahnya

tidak sama tiap kelompoknya. Kesalahan tersebut berdampak pada langkah selanjutnya yaitu

proses deproteinasi dan deasetilasi.

Tahap yang kedua adalah deproteinasi bertujuan untuk mengurangi kadar protein dengan

menggunakan larutan alkali encer dan pemanasan yang cukup (Wu et al, 2005). Larutan alkali

yang digunakan adalah NaOH. Tahap ini diawali dengan mencampurkan tepung dari hasil proses

10

demineralisasi dengan NaOH menggunakan perbandingan 6 : 1 dan diaduk selama 1 jam setelah

itu disaring dan didinginkan. Pengadukan dilakukan untuk meratakan pemanasan supaya derajat

deproteinasi meningkat namun tidak terjadi kegosongan. Tujuan pendinginan dalam proses ini

adalah agar bubuk kitin yang dihasilkan dapat mengendap di bawah sehingga tidak akan

terbuang ketika dilakukan pencucian berulang kali (Younes et al., 2012). Selanjutnya residu

yang didapatkan dicuci hingga pH netral dan dikeringkan pada suhu 80C selama 24 jam. Dari

proses ini didapatkan produk kering terakhir yang disebut kitin.

Hasil yang didapat pada tahap kedua ini dapat dilihat pada tabel hasil pengamatan (tabel 1). Nilai

rendemen kitin II yang didapatkan lebih tinggi dibandingkan dengan nilai rendemen I. Hal ini

tidak sesuai dengan teori yang seharusnya dari proses deproteinasi dan pencucian ini didapatkan

hasil yang lebih rendah dari proses demineralisasi (Angka & Suhartono, 2000). Hal ini

kemungkinan dikarenakan terjadi kesalahan proses pembuatan kitin seperti menurut Rao &

Stevens (2000) mengatakan bahwa proses demineralisasi seharusnya dilakukan setelah proses

deproteinasi karena dalam proses demineralisasi akan memicu terjadinya kontaminasi protein

terhadap cairan esktrak mineral.

Tahap terakhir ialah deasetilasi bertujuan memperoleh kitosan dari kitin dengan melepas gugus

asetil pada kitin. Kitin yang hasil dari proses sebelumnya ditambahkan dengan NaOH 40% untuk

kelompok C1 dan C2, 50% untuk kelompok C3 dan C4, dan untuk kelompok C5 ditambahkan

NaOH 60%. Penambahan tersebut dilakukan sambil diaduk selama 1 jam untuk kemudian

didiamkan selama 30 menit. Kemudian dipanaskan pada suhu 90C selama 60 menit untuk

selanjutnya disaring dan residu yang dihasilkan dicuci sampai pH netral. Residu tersebut di oven

pada suhu 70C selama 24 jam dan dihasilkanlah kitosan sebagai produk akhir. Berdasarkan

teori yang dikemukakan oleh Rogers (1986), proses pendinginan dilakukan dengan tujuan agar

bubuk kitosan pada larutan dapat mengendap secara maksimal dibagian bawah dan tidak ikut

terbuang selama pencucian.

Hasil yang diperoleh setelah tahap terakhir, dapat dilihat pada tabel hasil pengamatan (tabel 1).

Nilai rendemen kitosan III yang didapat lebih kecil bila dibandingkan dengan rendemen kitin II.

Hal tersebut kurang sesuai dengan pendapat yang dikatakan oleh Hong et al. (1989), bahwa jika

11

semakin tinggi konsentrasi pada larutan NaOH, maka nilai rendemen kitosan yang diperoleh

akan semakin rendah, hal tersebut dapat terjadi karena adanya proses depolimerisasi rantai

molekul kitosan sehingga akan mengakibatkan berat molekul dari kitosan akan menurun. Tetapi,

hasil yang didapat ketika konsentrasi NaOH yang besar, justru mendapatkan hasil rendemen

yang paling kecil, seperti halnya pada kelompok C5 yang menggunakan larutan NaOH 60% dan

mendapatkan nilai rendemen 11,25%, sedangkan pada kelompok C2 yang ditambahkan dengan

NaOH 40% mendapatkan nilai rendemen 37,38%. Kesalahan yang terjadi kemungkinan terjadi

akibat tidak rata dan tidak stabilnya suhu dan pengadukan yang dilakukan oleh praktikan.

Padahal menurut teori dari Kurita et al. (1993), dikatakan bahwa kualitas dan penggunaan

produk kitosan ditentukan dari seberapa besar derajat deasetilasinya. Derajat deasetilasi ini

bervariasi pada pembuatan kitosan tergantung pada bahan dasar dan kondisi proses seperti

konsentrasi suhu, larutan alkali, dan waktu.

Dalam jurnal yang berjudul Extraction and Characterization of Chitin and Chitosan from F.

Solani CBNR BKRR, Synthesis of Their Bionanocomposites and Study of Their Productive

Application oleh Krishnaveni & Ragunathan (2015) terutlis bahwa banyak manfaat yang

didapatkan dari pembuatan kitin dan kitosan. Kedua produk tersebut banyak digunakan sebagai

antibakteri dan desinfektan. Namun, yang paling penting kitin dan kitosan dapat diaplikasikan

untuk bidang pangan, seperti pembuatan pembungkus makanan. Hal ini dikarenakan kitosan

yang merupakan hasil dari proses deasetilasi memiliki umur simpan yang panjang, fleksibel,

cukup keras, sangat sulit untuk disobek serta memiliki aktivitas antimikroba, dan memiliki sifat

biodegradable.

12

4. KESIMPULAN

Kitin dan kitosan merupakan hasil ekstraksi dari limbah crustacea seperti udang yang

dapat dimanfaatkan menjadi produk yang memiliki nilai ekonomis lebih tinggi.

Kitin memiliki ciri-ciri fisik tidak dapat larut dalam air, tidak berbau, berupa kristal

amorphous dengan warna putih, asam-asam anorganik serta basa encer.

Pemanfaatan kitin dan kitosan selain diaplikasikan ke industri pangan namun juga dapat

digunakan pada industri pembuatan kosmetik dan pestisida.

Demineralisasi yang dilakukan dengan penambahan HCl bertujuan untuk menghilangkan

senyawa mineral dari kulit udang terutama kalsium karbonat.

Deproteinasi yang dilakukan dengan penambahan NaOH bertujuan untuk memisahkan

protein dengan kitin.

Deasetilasi bertujuan untuk memperoleh kitin dan kitosan dengan melepas gugus asetil

yang ada pada kitin.

Semarang, 18 Oktober 2015

Praktikan, Asisten Dosen

Raphael Elhan Argasae Tjan, Ivana Chandra

12.70.0158

13

5. DAFTAR PUSTAKA

Angka, S. L. dan M. T. Suhartono. 2000. Bioteknologi Hasil Laut. Pusat Kajian Sumberdaya

Pesisir dan Lautan. Bogor.

Bastaman, S. (1989). Studies on Degradationb and Extraction of Chitin and Chitosan from Prawn

Shells. Thesis. The Depatment of Mechanical. Manufacturing Aeronautical and Chemical

Engineering. The Queen's University. Belfast.

Dunn, E.T., E.W. Grandmaison & M.F.A. Goosen. (1997). Applications and Properties of

Chitosan. Technomic Pub, Basel, p 3-30.

Hong H, No K, Meyers SP, Lee KS. (1989). Isolation and Characterization of Chitin from

crawfish shell waste. J Agric Food. Chem 33:375-579.

Hossain, M. S. and A. Iqbal. (2014). Production and Characterization of Chitosan From Shrimp

Waste. Journal Bangladesh Agricultural University. 12 (1) : 153-160.

Khorrami, M., G. D. Najafpour, H. Younesi, and M. N. Hosseinpour. (2012). Production of

Chitin and Chitosan from Shrimp Shell in Batch Culture of Lactobacillus plantarum.

Chem. Biochem. 26 (3) 217-223.

Krishnaveni, B., and R. Ragunathan. (2015). Extraction and Characterization of Chitin and

Chitosan from F. Solani CBNR BKRR, Synthesis of Their Bionanocomposites and Study of

Their Productive Application. Journal of Pharmacy Science. Vol. 7 (4) : 197-205.

Kurita, K.; Tomita, K.; Ishi, S.; Nishimura, S-I.; Shimoda, K. -chitin as a convenient starting material for acetolysis for efficient preparation of N-acetylchitooligosaccharides. J. Polym.

Sci. A Polym. Chem. 1993, 31, 23932395.

Muzzarelli, R.A.A. (1985). Chitin in the Polysaccharides Vol. 3. Academic Press Inc. Orlando.

San Diego.

Peter, Martin G. (1995). Application and Environmental Aspects of Chitin and Chitosan.Journal

of Pure and Appl. Chem. Marcel Dekker, Inc., Germany. Hlm. 629-639.

Rao, M.S.; Muoz, J.; Stevens, W.F. Critical factors in chitin production by fermentation of

shrimp biowaste. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2000, 54, 808813.

Rogers, E.P. (1986). Fundamental of Chemistry. Books/Cole Publishing Company. California.

Rumengan, I. F. M., E. Suryanto, R. Modaso, S. Wullur, T. E. Tallei and D. Limbong. (2013).

Structural Characteristics of Chitin and Chitosan Isolated from the Biomass of Cultivated

Rotifer, Brachionus rotundiformis. International journal of fisheries and aquatic sciences. 3

(1) : 12-18.

14

Sahidi, F.; Synowiecki, J. Isolation and characterization of nutrients and value-added products

from snow crab (Chifroeceles opilio) and shrimp (Panda- 111sb orealis) processing

discards. J. Agric. Food Chem. 1991, 39, 15271532.

Suhardi, U. Santoso dan Sudarmanto. (1992). Limbah Pengolahan Udang untuk Produksi Kitin,

Laporan penelitian, BAPPINDO-FTP UGM. Yogyakarta.

Tolaimate, A., Desbrires, J., Rhazi, M., Alagui, M., Vincendon, M. and Vottero, P. 2000. The

influence of deacetylation process on the physicochemical characteristics of chitosan from

squid chitin. Polymer. 41: 2463-9.

Truong, T.; Hausler, R.; Monette, F.; Niquette, P. Fishery industrial waste valorization for the

transformation of chitosan by hydrothermo-chemical method. Rev. Sci. Eau 2007, 20, 253262.

Wang, Zhengke; Qiaoling Hu; Lei Cai. (2010). Chitin Fiber and Chitosan 3D Composite Rods.

International Journal of Polymer Science Volume 2010, Article ID 369759, 7 pages.

Wu, Tao; Svetlana Zivanovic, F. Ann Draughon, William S. Conway,Dan Carl E. Sams. (2005).

Physicochemical Properties and Bioactivity of Fungal Chitin and Chitosan. J. Agric. Food

Chem. 2005, 53, 3888-3894.

Younes, I.; Ghorbel-Bellaaj, O.; Nasri, R.; Chaabouni, M.; Rinaudo, M.; Nasri, M. Chitin and

chitosan preparation from shrimp shells using optimized enzymatic deproteinization.

Process Biochem. 2012, 47, 20322039.

Younes, I., and Marguerite Rinaudo. (2015). Chitin and Chitosan Preparation from Marine

Sources. Structure, Properties and Applications. Journal marine drugs. 13, 1133-1174.

Zhang, Hongyin; Renping Li dan Weimin Liu. (2011). Effects of Chitin and Its Derivative

Chitosan on Postharvest Decay of Fruits: A Review. Int. J. Mol. Sci. 2011, 12, 917-934;

doi:10.3390/ijms12020917

15

6. PERHITUNGAN

6.1. Perhitungan

Rumus :

Rendemen Chitin I =

Rendemen Chitin II =

Rendemen Chitosan =

Kelompok C1

Rendemen Chitin I =

= 23,45 %

Rendemen Chitin II =

= 30,00 %

Rendemen Chitosan =

= 27,43 %

Kelompok C2

Rendemen Chitin I =

= 37,82 %

Rendemen Chitin II =

= 44 %

Rendemen Chitosan =

= 27,38 %

Kelompok C3

Rendemen Chitin I =

= 41,67 %

Rendemen Chitin II =

= 54,55 %

Rendemen Chitosan =

= 32,16 %

16

Kelompok C4

Rendemen Chitin I =

=40,00 %

Rendemen Chitin II =

= 58,3 %

Rendemen Chitosan =

= 24,30 %

Kelompok C5

Rendemen Chitin I =

= 21,19 %

Rendemen Chitin II =

= 40,32 %

Rendemen Chitosan =

= 11,25 %

6.2. Laporan Sementara

6.3. Diagram Alir

6.4. Abstrak Jurnal