17-06-2016
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(Título)
Fecha Santiago, Chile
Curso Teórico - Práctico:
“Producción de plantas de calidad de especies forestales”
MÉTODOS DE PROPAGACIÓN VEGETATIVA
Braulio Gutiérrez C.
Infor Sede Biobío
Concepción, 15 de junio de 2016
CONTENIDO:
1. Introducción
2. Conceptos y definiciones
3. Ventajas Prop . Vegetativa
4. Desventajas Prop. Vegetativa
5. Principales usos y aplicaciones
6. Métodos de Prop. Vegetativa
Micropropagación
Macropropagación
Enraizamiento de estacas
Plantas madres
Confección estacas
Condiciones de enraizamiento
Manejo y cuidados durante enraizamiento
Resultados esperados
7. Conclusiones-Ideas Fuerza
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1. INTRODUCCIÓN
REPRODUCCIÓN
SEXUAL
-Por semillas
MULTIPLICACIÓN
VEGETATIVA
(asexual, agámica, clonal)
-Estacas
-Injertos
-Acodos
-Micropropagación
Herramientas complementarias en contexto de
producción y mejoramiento genético forestal
Ocurre en forma natural
Principal avance de agricultura primitiva (vid, olivo, higuera)
Uso desde la antigüedad (Cryptomeria japonica)
Procedimiento tradicional para especies de géneros Populus, Salix.
Utilidad como herramienta de investigación.
Principal aplicación en masificación de material genético selecto
Programas operacionales de gran escala para plantaciones industriales
Es la base de las plantaciones clonales y de la silvicultura clonal.
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2. CONCEPTOS Y DEFINICIONES
PROPAGACIÓN VEGETATIVA es la
generación de nuevos individuos a partir
de células, tejidos u órganos, sin que se
manifieste el proceso fecundación que
implica la fusión de los gametos o células
sexuales.
TOTIPOTENCIALIDAD es la propiedad de
cada célula vegetativa viviente de contener
toda la información genética necesaria
para regenerar al organismo completo del
cual forma parte.
CLON: El conjunto de descendientes o
réplicas de una planta, obtenidos mediante
propagación vegetativa de la misma.
Multiplicación
Vegetativa
ORTET
CLON
RAMETO
ENSAYOS CLONALES
PLANTACIONES CLONALES
SILVICULTURA CLONAL
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3. VENTAJAS DE PROP VEGETATIVA
La propagación vegetativa genera copias
genéticamente idénticas de la planta madre
original (ortet)
Permite capturar y transferir a los nuevos individuos todo el
potencial genético del ortet.
Permite aprovechar un genotipo específico, seleccionado
por su superioridad en aspectos de interés, y multiplicarlo
para obtener nuevas réplicas del mismo genotipo.
Permite aprovechar un genotipo específico, seleccionado
por su superioridad en aspectos de interés, y multiplicarlo
para obtener nuevas réplicas del mismo genotipo.
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4. DESVENTAJAS DE PROP VEGETATIVA
Generales
Dificultad para propagar árboles adultos
Variación dentro del clon y efectos “C”
Diversidad genética
Específicas
Calidad de raíces adventicias
Rechazo de injertos
Dificultad de aclimatación de planta
micropropagadas.
Dificultad para propagar árboles adultos
Es el principal inconveniente de la multiplicación vegetativa.
Se requieren técnicas de ”rejuvenecimiento” antes de propagar
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Variación dentro del clon y efectos “C”
¿Las réplicas vegetativas son idénticas?
Genéticamente: SI
Fenotípicamente: NO (diferencias entre rametos del mismo clon y entre
rametos y ortet)
Consecuencia: las plantas propagadas vegetativamente no siempre
crecen con el mismo patrón o forma del ortet selecto.
Causas:
Variación ambiental
Efectos “C”
Ciclófisis (edad de la planta madre)
Topófisis(posición del propágulo en la planta madre)
Perífisis (ambiente del propágulo en la planta madre)
Incidencia de crecimiento plagiotrópico en estacas enraizadas de
pino oregón aumenta con:
• Edad de plantas madres (ciclófisis) : Un año v/s 2 o+ años
•Posición de estacas en plantas madre de más de dos (topófisis):
ramas laterales respecto de líderes
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Diversidad genética
Bases genéticas muy restringidas en el largo plazo (rotación comercial)
son más vulnerables a experimentar pérdidas masivas ante cambios
adversos en el medio ambiente.
Sincronizar productividad y estabilidad (Análisis riesgo beneficio).
Evaluar extensión y composición de los bloques de plantación
Usar clones probados en ensayos clonales en sitios equivalentes a los
que se plantan.
5. PRINCIPALES USOS DE PROP VEGETATIVA
Las ventajas de multiplicación vegetativa son útiles en:
Investigación: Material homogéneo para probar distintos
tratamientos experimentales. Bancos clonales para conservación
e investigación.
Producción operacional:
Huertos semilleros clonales,
Bancos clonales
Plantaciones clonales.
Principal aplicación:
En programas de mejoramiento genético para masificar el
mejor material generado por el programa y llevar a terreno el
material con mayores niveles de ganancia.
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P = G + E
2p = 2g + 2e
2p = 2ga + 2gna +
2e
Propagación
Sexual
Multiplicación
Vegetativa
h2 = 2ga /
2p
G = h2 * S
H2 = 2ga +
2gna / 2p
G = H2 * S
Heredabilidad
Sentido estricto Sentido amplio
Ganancia genética
esperada
(x semillas)
Ganancia genética
esperada
(clonal)
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6. MÉTODOS DE PROP VEGETATIVA
Macropropagación
Acodos
Injertos
Enraizamiento estacas
Micropropagación
Organogénesis somática directa
Organogénesis somática indirecta
Embriogénesis somática
Micropropagación
Organogénesis somática directa
Organogénesis somática indirecta
Arbol
plus
Recolección
y desinfección
Establecimiento
in vitro Multiplicación
y elongación
Enraizamiento
Aclimatación Viverización
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Micropropagación
Embriogénesis somática pino radiata
Diferenciación
Semilla sintética
Germinación
Almacenamiento
Criopreservación
Maduración
embrioides
Inducción callo
proembriogénico
Macropropagación
Acodos
Acodos aéreos
y terrestres
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Macropropagación
Injertos
Macropropagación
Enraizamiento estacas
Método más difundido para propagación vegetativa de plantas
forestales:
Relativa simplicidad
Gran cantidad de descendientes a partir de un árbol selecto
Evita problemas de incompatibilidad y laboriosidad de injertos
Requiere menos infraestructura y especialización que cultivo in vitro
Exitosos programas operacionales de clonación
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Esquema operacional de multiplicación
clonal por enraizamiento de estacas
Evaluación
Propagación masiva
Pre-propagación
1/5. Manejo de plantas madres
2/5. Confección de estacas
3/5. Establecimiento y condiciones de enraizamiento
4/5. Manejo y cuidados culturales durante el enraizamiento
5/5. Resultados esperados
Metodología general para
enraizamiento de estacas
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Origen; semilla mejorada; estacas enraizadas,
plantas micropropagadas
Disposición. Suelo, macetas, mesones o sistemas
hidropónicos.
Deben podarse para suprimir el crecimiento apical y
promover la proliferación de 3 a 5 brotes laterales
bien distribuidos en torno a la base del tallo.
Eliminar brotes superpuestos y con desarrollo
vertical.
Manejo de plantas madres
Fuente: Castro y Silveira, 2010.
Confección de estacas
Segmentos de tallo de 6 a 8 cm de longitud
con un par de hojas sanas y un diámetro no
inferior a 3 mm.
El corte basal es oblicuo y el superior recto.
Laminas foliares recortada a la mitad.
Remojo en solución fungicida (Benlate 0,5 g/l)
Tratamiento hormonal (Auxinas: AIB; ANA;
AIA)
Plantación (contenedores , sustratos,
invernadero)
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Establecimiento y condiciones de enraizamiento
Condiciones enraizamiento: Humedad
Relativa alta (mayor a 70%). Temperatura
ambiental de 22 a 24°C. temperatura
sustrato Idealmente 2 a 3°C mayor que la
ambiental.
Invernadero:
•Riego por aspersión
automático
•Control de temperatura
•Cama caliente
•Neblina
Manejo y cuidados culturales durante el enraizamiento
Fungicidas preventivo 1 a 2 veces
por semana: (Benlate (0,6 g/l),
Roural (1 g/l), Captan (1 g/l) y
Euparén (2 g/l).
Fertilizante foliar: Una vez por
semana para mejorar supervivencia
y rizogénesis (Bayfolán 5 cc/l).
Remoción permanente de material
muerto:.
Evaluación enraizamiento: 8-10
semanas
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Resultados esperados
0,0
5,0
10,0
15,0
20,0
25,0
30,0
35,0
40,0
45,0
50,0
0% menos
de 10%
10 a
30%
30 a
50%
más de
50%
clases de enraizamiento en %
Nú
me
ro d
e c
lon
es
en
%
1ra temporada
2da temporada
3ra temporada
total
Distribución de clones según clase de enraizamiento (a
partir de retoños de tocón). Enraizamiento promedio: 7%
E. globulus (1.278 ortets tolerante frío)
Propágulo: Estacas
tradicionales c/1 par de hojas
Fuente de estacas: retoños de
tocón y plantas madres
Hormonas: Auxinas (AIB
4.000 ppm)
Sustrato: Turba-Perlita 1:1
0,0
20,0
40,0
60,0
80,0
100,0
1 11 21 31 41 51 61 71 81 91 101 111 121 131 141 151
clones
En
raiz
amie
nto
(%
)
Desde retoños Desde plantas madres
SASSE, J. 1995. Problems with propagation of Eucalyptus globulus by stem
cuttings. En: Conference CRCTHF-IUFRO, Eucalypt plantations: Improving
Fibre Yield and Quality. Hobart, Australia, 19-24 de febrero 1995. Pp: 319-320.
Porcentaje de enraizamiento
promedio según origen de estacas
(considerando solo los que enraízan)
Origen de
las estacas
1ra
temporada
2da
temporada
3ra
temporada
Promedio
Retoños de
tocón
14,2% 11,3% 12,5% 12,7%
Plantas
madres
17,5% 11,4% 17,0% 15,3%
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E. globulus
(18 ortets tolerantes a sequía) Propágulo: Estacas
tradicionales c/1 par de hojas
Fuente de estacas: plantas
madres micropropagadas
desde arboles adultos
Hormonas: Auxinas (AIB
2.000 -8.000ppm)
Sustrato: Turba-Perlita 1:1
Enraizamiento promedio por clon ( %)
0,0
2,0
4,0
6,0
8,0
10,0
12,0
14,0
16,0
27
30
39
48
57
59
60
62
68
77
79
82
83
84
85
87
98
10
3
Clones
(%)
enraizamiento por dosis de AIB
0,0
5,0
10,0
15,0
20,0
25,0
30,0
48 60 62 68 79 82 87
Clones
(%)
2.000 ppm 5.000 ppm 8.000 ppm
Variación entre
clones y dentro de
clones según dosis
de hormona
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Comparación distintas
experiencia de
enraizamiento de E.
globulus
Propágulo: Brotes apicales y
laterales (6 a 10 cm long) de
plantas madres de 1 o 2 años de
edad.
Hormonas: Auxinas (AIB 2.000
a 10.000 ppm)
Sustrato: Turba (70%) con
perlita(30%)
PINO OREGON
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18
0
20
40
60
80
100
0 ppm 2000 ppm 4000 ppm 8000 ppm
dosis AIB
Enraizamiento (%)
Estacas tomadas desde plantas madres de una
temporada
0
20
40
60
80
100
0 ppm 2000 ppm 5000 ppm 10000 ppm
Dosis AIB
Enraizamiento (%)
Estacas tomadas desde plantas madres de
dos temporadas
Efecto de posición de estaca en enraizamiento
0
20
40
60
80
100
lider lateral
Posición estaca
Enraizamiento (%)
E. camaldulensis
(estacas desde plantas madres juveniles)
Hormona: 0, 2.000 y 8.000 ppm
de AIB.
Sustratos: corteza, corteza
tamizada y mezcla 1:1 de corteza
con perlita)
Resultados:
•Enraizamiento promedio 69 a
81%.
•Sin diferencias significativas
entre tratamientos
•Diferencias significativas entre
familias (material genético)
Dosis de AIB
(ppm)
Enraizamiento
(%)
0 72,2
2.000 85,1
8.000 85,4
Promedio 80,9
Sustrato Enraizamiento
(%)
Corteza (0-25 mm) 61.6
Corteza tamizada (2-3 mm) 78,3
Corteza tamizada con perlita (1:1) 66,6
Promedio 68,8
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E. camaldulensis
(estacas desde replicas
micropropagadas de árboles adultos)
Hormona: 0 y 5.000 ppm de AIB.
Sustratos: corteza; corteza-perlita;
arena-turba
Lugar de enraizamiento: Vivero:
Invernadero
Trat Descripcion Enraizam. (%)
Grupos
T7 Vivero; Aux; Cor:Per.
4,8 a
T6 Vivero; Cor:Per
7,1 a
T2 Inver; Cor:Per
16,7 ab
T4 Inver:; Are:Tur
21,4 b
T8 Vivero; Aux; Are:Tur
22,6 b
T0 Inver; Cor 25,0 b
T1 Inver; Aux; Cor
29,8 b
T3 Inver; Aux; Cor:Per
34,5 bc
T5 Inver; Aux; Are:Tur
51,2 c
0
10
20
30
40
50
corteza corteza perlita arena turba
Sustratos
Po
rce
nta
je
sobreviv
enraizam
0
10
20
30
40
50
Invernadero Vivero
Lugar de enraizamiento
Po
rce
nta
je
sobreviv
enraizam
0
10
20
30
40
50
sin AIB con AIB
Efecto de auxinas
Po
rce
nta
je
sobreviv
enraizam
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7. CONCLUSIONES IDEAS FUERZA
Independiente de su valor como herramienta de multiplicación, las
ventajas de la propagación vegetativa se relacionan estrechamente
con la calidad de los individuos que se están multiplicando.
Los esquemas clonales no representan en ningún caso una opción
excluyente para el uso de semillas o propagación sexual. Por el
contrario, ambas deben ser combinadas para aprovechar en la
forma más eficiente la variabilidad genética de los recursos
forestales.
GRACIAS.
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