MÉTODOS DE PROPAGACIÓN VEGETATIVA Fecha Santiago,...

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17-06-2016 1 (Título) Fecha Santiago, Chile Curso Teórico - Práctico: “Producción de plantas de calidad de especies forestales” MÉTODOS DE PROPAGACIÓN VEGETATIVA Braulio Gutiérrez C. Infor Sede Biobío [email protected] Concepción, 15 de junio de 2016 CONTENIDO: 1. Introducción 2. Conceptos y definiciones 3. Ventajas Prop . Vegetativa 4. Desventajas Prop. Vegetativa 5. Principales usos y aplicaciones 6. Métodos de Prop. Vegetativa Micropropagación Macropropagación Enraizamiento de estacas Plantas madres Confección estacas Condiciones de enraizamiento Manejo y cuidados durante enraizamiento Resultados esperados 7. Conclusiones-Ideas Fuerza

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17-06-2016

1

(Título)

Fecha Santiago, Chile

Curso Teórico - Práctico:

“Producción de plantas de calidad de especies forestales”

MÉTODOS DE PROPAGACIÓN VEGETATIVA

Braulio Gutiérrez C.

Infor Sede Biobío

[email protected]

Concepción, 15 de junio de 2016

CONTENIDO:

1. Introducción

2. Conceptos y definiciones

3. Ventajas Prop . Vegetativa

4. Desventajas Prop. Vegetativa

5. Principales usos y aplicaciones

6. Métodos de Prop. Vegetativa

Micropropagación

Macropropagación

Enraizamiento de estacas

Plantas madres

Confección estacas

Condiciones de enraizamiento

Manejo y cuidados durante enraizamiento

Resultados esperados

7. Conclusiones-Ideas Fuerza

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1. INTRODUCCIÓN

REPRODUCCIÓN

SEXUAL

-Por semillas

MULTIPLICACIÓN

VEGETATIVA

(asexual, agámica, clonal)

-Estacas

-Injertos

-Acodos

-Micropropagación

Herramientas complementarias en contexto de

producción y mejoramiento genético forestal

Ocurre en forma natural

Principal avance de agricultura primitiva (vid, olivo, higuera)

Uso desde la antigüedad (Cryptomeria japonica)

Procedimiento tradicional para especies de géneros Populus, Salix.

Utilidad como herramienta de investigación.

Principal aplicación en masificación de material genético selecto

Programas operacionales de gran escala para plantaciones industriales

Es la base de las plantaciones clonales y de la silvicultura clonal.

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2. CONCEPTOS Y DEFINICIONES

PROPAGACIÓN VEGETATIVA es la

generación de nuevos individuos a partir

de células, tejidos u órganos, sin que se

manifieste el proceso fecundación que

implica la fusión de los gametos o células

sexuales.

TOTIPOTENCIALIDAD es la propiedad de

cada célula vegetativa viviente de contener

toda la información genética necesaria

para regenerar al organismo completo del

cual forma parte.

CLON: El conjunto de descendientes o

réplicas de una planta, obtenidos mediante

propagación vegetativa de la misma.

Multiplicación

Vegetativa

ORTET

CLON

RAMETO

ENSAYOS CLONALES

PLANTACIONES CLONALES

SILVICULTURA CLONAL

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3. VENTAJAS DE PROP VEGETATIVA

La propagación vegetativa genera copias

genéticamente idénticas de la planta madre

original (ortet)

Permite capturar y transferir a los nuevos individuos todo el

potencial genético del ortet.

Permite aprovechar un genotipo específico, seleccionado

por su superioridad en aspectos de interés, y multiplicarlo

para obtener nuevas réplicas del mismo genotipo.

Permite aprovechar un genotipo específico, seleccionado

por su superioridad en aspectos de interés, y multiplicarlo

para obtener nuevas réplicas del mismo genotipo.

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4. DESVENTAJAS DE PROP VEGETATIVA

Generales

Dificultad para propagar árboles adultos

Variación dentro del clon y efectos “C”

Diversidad genética

Específicas

Calidad de raíces adventicias

Rechazo de injertos

Dificultad de aclimatación de planta

micropropagadas.

Dificultad para propagar árboles adultos

Es el principal inconveniente de la multiplicación vegetativa.

Se requieren técnicas de ”rejuvenecimiento” antes de propagar

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Variación dentro del clon y efectos “C”

¿Las réplicas vegetativas son idénticas?

Genéticamente: SI

Fenotípicamente: NO (diferencias entre rametos del mismo clon y entre

rametos y ortet)

Consecuencia: las plantas propagadas vegetativamente no siempre

crecen con el mismo patrón o forma del ortet selecto.

Causas:

Variación ambiental

Efectos “C”

Ciclófisis (edad de la planta madre)

Topófisis(posición del propágulo en la planta madre)

Perífisis (ambiente del propágulo en la planta madre)

Incidencia de crecimiento plagiotrópico en estacas enraizadas de

pino oregón aumenta con:

• Edad de plantas madres (ciclófisis) : Un año v/s 2 o+ años

•Posición de estacas en plantas madre de más de dos (topófisis):

ramas laterales respecto de líderes

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Diversidad genética

Bases genéticas muy restringidas en el largo plazo (rotación comercial)

son más vulnerables a experimentar pérdidas masivas ante cambios

adversos en el medio ambiente.

Sincronizar productividad y estabilidad (Análisis riesgo beneficio).

Evaluar extensión y composición de los bloques de plantación

Usar clones probados en ensayos clonales en sitios equivalentes a los

que se plantan.

5. PRINCIPALES USOS DE PROP VEGETATIVA

Las ventajas de multiplicación vegetativa son útiles en:

Investigación: Material homogéneo para probar distintos

tratamientos experimentales. Bancos clonales para conservación

e investigación.

Producción operacional:

Huertos semilleros clonales,

Bancos clonales

Plantaciones clonales.

Principal aplicación:

En programas de mejoramiento genético para masificar el

mejor material generado por el programa y llevar a terreno el

material con mayores niveles de ganancia.

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P = G + E

2p = 2g + 2e

2p = 2ga + 2gna +

2e

Propagación

Sexual

Multiplicación

Vegetativa

h2 = 2ga /

2p

G = h2 * S

H2 = 2ga +

2gna / 2p

G = H2 * S

Heredabilidad

Sentido estricto Sentido amplio

Ganancia genética

esperada

(x semillas)

Ganancia genética

esperada

(clonal)

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6. MÉTODOS DE PROP VEGETATIVA

Macropropagación

Acodos

Injertos

Enraizamiento estacas

Micropropagación

Organogénesis somática directa

Organogénesis somática indirecta

Embriogénesis somática

Micropropagación

Organogénesis somática directa

Organogénesis somática indirecta

Arbol

plus

Recolección

y desinfección

Establecimiento

in vitro Multiplicación

y elongación

Enraizamiento

Aclimatación Viverización

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Micropropagación

Embriogénesis somática pino radiata

Diferenciación

Semilla sintética

Germinación

Almacenamiento

Criopreservación

Maduración

embrioides

Inducción callo

proembriogénico

Macropropagación

Acodos

Acodos aéreos

y terrestres

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Macropropagación

Injertos

Macropropagación

Enraizamiento estacas

Método más difundido para propagación vegetativa de plantas

forestales:

Relativa simplicidad

Gran cantidad de descendientes a partir de un árbol selecto

Evita problemas de incompatibilidad y laboriosidad de injertos

Requiere menos infraestructura y especialización que cultivo in vitro

Exitosos programas operacionales de clonación

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Esquema operacional de multiplicación

clonal por enraizamiento de estacas

Evaluación

Propagación masiva

Pre-propagación

1/5. Manejo de plantas madres

2/5. Confección de estacas

3/5. Establecimiento y condiciones de enraizamiento

4/5. Manejo y cuidados culturales durante el enraizamiento

5/5. Resultados esperados

Metodología general para

enraizamiento de estacas

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Origen; semilla mejorada; estacas enraizadas,

plantas micropropagadas

Disposición. Suelo, macetas, mesones o sistemas

hidropónicos.

Deben podarse para suprimir el crecimiento apical y

promover la proliferación de 3 a 5 brotes laterales

bien distribuidos en torno a la base del tallo.

Eliminar brotes superpuestos y con desarrollo

vertical.

Manejo de plantas madres

Fuente: Castro y Silveira, 2010.

Confección de estacas

Segmentos de tallo de 6 a 8 cm de longitud

con un par de hojas sanas y un diámetro no

inferior a 3 mm.

El corte basal es oblicuo y el superior recto.

Laminas foliares recortada a la mitad.

Remojo en solución fungicida (Benlate 0,5 g/l)

Tratamiento hormonal (Auxinas: AIB; ANA;

AIA)

Plantación (contenedores , sustratos,

invernadero)

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Establecimiento y condiciones de enraizamiento

Condiciones enraizamiento: Humedad

Relativa alta (mayor a 70%). Temperatura

ambiental de 22 a 24°C. temperatura

sustrato Idealmente 2 a 3°C mayor que la

ambiental.

Invernadero:

•Riego por aspersión

automático

•Control de temperatura

•Cama caliente

•Neblina

Manejo y cuidados culturales durante el enraizamiento

Fungicidas preventivo 1 a 2 veces

por semana: (Benlate (0,6 g/l),

Roural (1 g/l), Captan (1 g/l) y

Euparén (2 g/l).

Fertilizante foliar: Una vez por

semana para mejorar supervivencia

y rizogénesis (Bayfolán 5 cc/l).

Remoción permanente de material

muerto:.

Evaluación enraizamiento: 8-10

semanas

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Resultados esperados

0,0

5,0

10,0

15,0

20,0

25,0

30,0

35,0

40,0

45,0

50,0

0% menos

de 10%

10 a

30%

30 a

50%

más de

50%

clases de enraizamiento en %

me

ro d

e c

lon

es

en

%

1ra temporada

2da temporada

3ra temporada

total

Distribución de clones según clase de enraizamiento (a

partir de retoños de tocón). Enraizamiento promedio: 7%

E. globulus (1.278 ortets tolerante frío)

Propágulo: Estacas

tradicionales c/1 par de hojas

Fuente de estacas: retoños de

tocón y plantas madres

Hormonas: Auxinas (AIB

4.000 ppm)

Sustrato: Turba-Perlita 1:1

0,0

20,0

40,0

60,0

80,0

100,0

1 11 21 31 41 51 61 71 81 91 101 111 121 131 141 151

clones

En

raiz

amie

nto

(%

)

Desde retoños Desde plantas madres

SASSE, J. 1995. Problems with propagation of Eucalyptus globulus by stem

cuttings. En: Conference CRCTHF-IUFRO, Eucalypt plantations: Improving

Fibre Yield and Quality. Hobart, Australia, 19-24 de febrero 1995. Pp: 319-320.

Porcentaje de enraizamiento

promedio según origen de estacas

(considerando solo los que enraízan)

Origen de

las estacas

1ra

temporada

2da

temporada

3ra

temporada

Promedio

Retoños de

tocón

14,2% 11,3% 12,5% 12,7%

Plantas

madres

17,5% 11,4% 17,0% 15,3%

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E. globulus

(18 ortets tolerantes a sequía) Propágulo: Estacas

tradicionales c/1 par de hojas

Fuente de estacas: plantas

madres micropropagadas

desde arboles adultos

Hormonas: Auxinas (AIB

2.000 -8.000ppm)

Sustrato: Turba-Perlita 1:1

Enraizamiento promedio por clon ( %)

0,0

2,0

4,0

6,0

8,0

10,0

12,0

14,0

16,0

27

30

39

48

57

59

60

62

68

77

79

82

83

84

85

87

98

10

3

Clones

(%)

enraizamiento por dosis de AIB

0,0

5,0

10,0

15,0

20,0

25,0

30,0

48 60 62 68 79 82 87

Clones

(%)

2.000 ppm 5.000 ppm 8.000 ppm

Variación entre

clones y dentro de

clones según dosis

de hormona

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Comparación distintas

experiencia de

enraizamiento de E.

globulus

Propágulo: Brotes apicales y

laterales (6 a 10 cm long) de

plantas madres de 1 o 2 años de

edad.

Hormonas: Auxinas (AIB 2.000

a 10.000 ppm)

Sustrato: Turba (70%) con

perlita(30%)

PINO OREGON

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0

20

40

60

80

100

0 ppm 2000 ppm 4000 ppm 8000 ppm

dosis AIB

Enraizamiento (%)

Estacas tomadas desde plantas madres de una

temporada

0

20

40

60

80

100

0 ppm 2000 ppm 5000 ppm 10000 ppm

Dosis AIB

Enraizamiento (%)

Estacas tomadas desde plantas madres de

dos temporadas

Efecto de posición de estaca en enraizamiento

0

20

40

60

80

100

lider lateral

Posición estaca

Enraizamiento (%)

E. camaldulensis

(estacas desde plantas madres juveniles)

Hormona: 0, 2.000 y 8.000 ppm

de AIB.

Sustratos: corteza, corteza

tamizada y mezcla 1:1 de corteza

con perlita)

Resultados:

•Enraizamiento promedio 69 a

81%.

•Sin diferencias significativas

entre tratamientos

•Diferencias significativas entre

familias (material genético)

Dosis de AIB

(ppm)

Enraizamiento

(%)

0 72,2

2.000 85,1

8.000 85,4

Promedio 80,9

Sustrato Enraizamiento

(%)

Corteza (0-25 mm) 61.6

Corteza tamizada (2-3 mm) 78,3

Corteza tamizada con perlita (1:1) 66,6

Promedio 68,8

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E. camaldulensis

(estacas desde replicas

micropropagadas de árboles adultos)

Hormona: 0 y 5.000 ppm de AIB.

Sustratos: corteza; corteza-perlita;

arena-turba

Lugar de enraizamiento: Vivero:

Invernadero

Trat Descripcion Enraizam. (%)

Grupos

T7 Vivero; Aux; Cor:Per.

4,8 a

T6 Vivero; Cor:Per

7,1 a

T2 Inver; Cor:Per

16,7 ab

T4 Inver:; Are:Tur

21,4 b

T8 Vivero; Aux; Are:Tur

22,6 b

T0 Inver; Cor 25,0 b

T1 Inver; Aux; Cor

29,8 b

T3 Inver; Aux; Cor:Per

34,5 bc

T5 Inver; Aux; Are:Tur

51,2 c

0

10

20

30

40

50

corteza corteza perlita arena turba

Sustratos

Po

rce

nta

je

sobreviv

enraizam

0

10

20

30

40

50

Invernadero Vivero

Lugar de enraizamiento

Po

rce

nta

je

sobreviv

enraizam

0

10

20

30

40

50

sin AIB con AIB

Efecto de auxinas

Po

rce

nta

je

sobreviv

enraizam

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7. CONCLUSIONES IDEAS FUERZA

Independiente de su valor como herramienta de multiplicación, las

ventajas de la propagación vegetativa se relacionan estrechamente

con la calidad de los individuos que se están multiplicando.

Los esquemas clonales no representan en ningún caso una opción

excluyente para el uso de semillas o propagación sexual. Por el

contrario, ambas deben ser combinadas para aprovechar en la

forma más eficiente la variabilidad genética de los recursos

forestales.

GRACIAS.