RPB v18n3

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Rev. peru. biol. ISSN 1561-0837

Universidad nacionalMayor de sanMarcos

FacUltad de ciencias Biológicas

volUMen 18 dicieMBre , 2011 núMero 3

LIMA, PERÚ

r evistaPerUana de

Biología



2

RectorDr. Pedro Atilio Cotillo ZegarraVicerrector de InvestigaciónDr. Bernardino Ramírez BautistaConsejo Superior de InvestigaciónDr. Eugenio Cabanillas Lapa

Decana de la Facultad de Ciencias BiológicasMag. Martha Valdivia CuyaDirectora Instituto de Investigación en Ciencias Biológicas Antonio RaimondiMag. Inés Miriam Gárate Camacho

La Revista Peruana de Biología es una publicación científca arbi-trada, editada por el Instituto de Ciencias Biológicas Antonio Raimondi,Facultad de Ciencias Biológicas de la Universidad Nacional Mayorde San Marcos, Lima, Perú, y auspiciada por el Consejo Superior deInvestigación. La Revista aparece con una periodicidad semestral(agosto y diciembre) y esta dedicada a la publicación de artículoscientífcos originales e inéditos en las áreas de Biodiversidad, Biotec-nología, Manejo ambiental, Ecología y Biomedicina. La Revista publicalos trabajos realizados por académicos e investigadores nacionales y

extranjeros, en idioma español o inglés. Los trabajos recepcionados

son evaluados por árbitros según criterios internacionales de calidad,

creatividad, originalidad y contribución al conocimiento. La Revista espublicada simultáneamente en la página web de la Universidad.

Revista Peruana de Biología -Rev. peru. biol. - ISSN 1561-0837Rev. peru. biol. - ISSN 1727-9933 (on line)http://www.unmsm.edu.pe/revperubiolhttp://www.scielo.org.pehttp://redalyc.uaemex.mx/

Copyright © 2011Facultad de Ciencias Biológicas, UNMSMHecho el Depósito Legal 98-3017

Inormación adicional a:Revista Peruana de BiologíaFacultad de Ciencias Biológicas UNMSMCiudad Universitaria, Av. Venezuela Cdra. 34 s/n. LimaCasilla Postal: 11-0058 Lima-11, Perú.eléono 619-7000-1502 / eleax 619-7000-1509Editor Jee, email: [email protected]

r evista PerUana de BiologíaÓrgano Ofcial de la Facultad de Ciencias Biológicas de la

Universidad Nacional Mayor de San Marcos

Resumida/Indizada (Abstracted/Indexed) en:Periódica (Índice de Revistas Latinoamericanas en Ciencias),LIPECS (Literatura Peruana en Ciencias de la Salud), ZoologicalRecord (BIOSIS), Scielo (Scientifc Electronic Library Online),Index to American Botanical Literature (Te New York BotanicalGarden), BIOSIS Previews, Biological Abstracts (BIOSIS), ProQuest(Biological Science Journals), Redalyc.

Foto en carátula: Paulia horrida, cortesia Yuri Hooker ©

Editor jefeLeonardo Romero

Comité EditorCésar AranaCarlos ParedesRina RamírezCarlos Peña

Comité consultivo en los recientes númerosMaximilian Weigend

Freie Universität Berlin- AlemaniaSebastián Barrionuevo

Fundación Miguel Lillo- ArgentinaLuis Aguirre

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Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, BrazilCarlos Frederico Duarte da Rocha

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Universidade Federal de Minas Gerais- Brasil

Suzete Rodrigues GomesInstituto Butantan- BrasilDavor Vrcibradic

Universidade do Estado do Rio de Janeiro- BrasilStean Dennenmoser

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Museo Nacional de Historia Natural- ChilePedro Alejandro Orihuela Diaz

Universidad de Santiago de Chile- ChileBerta Calonge Camargo

Pontifcia Universidad Javeriana, Bogotá, ColombiaSergio Solari

Universidad de Antioquia- Colombia José María Gutiérrez

Universidad de Costa Rica, Costa RicaFinn Borchsenius

Aarhus University- Denmark Julissa Roncal

Aarhus University- Denmark Juan Rigoberto ejedo Huaman

Universidad Pablo de Olavide- España Arnaud Bertrand

IRD. Institut de recherche pour le développement- Francia

Francis KahnIRD. Inst itut de recherche pour le développement, - Francia

Jean-Christophe PintaudInstitut de Recherche pour le Développement- Francia

Mutsunori okeshiKyushu University - Japon

Francisco Alonso Solís MarínUniversidad Nacional Autónoma de México- México

Ross RobertsonSmithsonian ropical Research Institute- PanamáMónica Romo

Asociación Peruana para la Conservación de la Naturaleza- PerúRenato Guevara-Carrasco

Instituto del Mar del Perú- PerúCésar Náquira

Instituto Nacional de Salud- PerúReynaldo Linares-Palomino

Universidad Nacional Agraria La Molina- PerúMarcel Gutiérrez-Correa

Universidad Nacional Agraria La Molina - PerúGretty K. Villena

Universidad Nacional Agraria La Molina - PerúGerardo Lamas

Universidad Nacional Mayor de San Marcos- Perú

Pablo RamírezUniversidad Nacional Mayor de San Marcos- PerúDiana Silva

Universidad Nacional Mayor de San Marcos- Perú Juan arazona

Universidad Nacional Mayor de San Marcos- Perú Armando Yarlequé

Universidad Nacional Mayor de San Marcos- PerúManuel antaleán

Universidad Peruana Cayetano Heredia- PerúNigel Pitman

Duke University- USA Sergio Solari

exas ech University- USA Lucia Luna

University o Michigan- USA Maria del Carmen Ulloa Ulloa

University o Missouri- USA Blanca León

University o exas at Austin - USA Kenneth Young

University o exas at Austin – USA Paul Velazco

American Museum o Natural History, USA



269

(Continúa...)

R evista PeRuana de Biología

Volumen 18 Diciembre, 2011 Número 3


Contenido

Trabajos originales

271 Talictrum peruvianum (R), L, P

Talictrum peruvianum (R), w L, P

Huber Trinidad, Asunción Cano y Blanca León

275 Vochysia awasensis (V), Bq M C

Vochysia awasensis (V), w M F E C

Isau Huamantupa Chuquimaco

279 D Astrocaryum . Huicungo (A) P

E Astrocaryum . Huicungo (A) P

Francis Kahn, Betty Millán, Jean-Christophe Pintaud and Miguel Machahua

283 Rq, x C

R, x k C C

Isau Huamantupa, Magaly Cuba, Rosa Urrunaga, Elías Paz, Nelson Ananya, Myrthia Callalli, Nadir Pallqui y Hozmary Coasaca

293 D “” Ismene amancaes (A)

R “” Ismene amancaes (A)

Mery L. Suni, Edisson Pascual y Enoc Jara

299 N Mediorhynchus (A, G) urdus chiguanco () J, P

Nw Mediorhynchus (A, G) urdus chiguanco () J, P

Rocío Moya, Rosa Martínez y Manuel Tantaleán

303 A Fulica armillata (A: R)

S Fulica armillata (A: R)

Mirian Bulon y Noemí Bee de Speroni

311 A Platalina genovensium T, 1928 (C: P)

A L- B Platalina genovensium T, 1928 (C: P)

Juan A. Malo de Molina, Sandra Velazco, Víctor Pacheco y Juan Carlos Robledo

319 (E: A) P

T w (E: A) P

Yuri Hooker y Francisco A. Solís-Marín

325 E Hansenula anomala q

S Hansenula anomala

Waldir Estela Escalante, Mojmír Rychtera, Karel Melzoch, Elena Quillama Polo y Beatriz Hatta Sakoda

335 I Bothrops atrox (O: V)

I Bothrops atrox (O: V)

Gustavo A. Sandoval, Julio Mendoza, William Roldán, Yrma Espinoza, Hilda Solis y Armando Yarlequé

343 P Carica papaya . PM-331

I Carica papaya . PM-331

R S L., J O S. R S. L R L.

349 D PCR Yersinia ruckeri Oncorhynchus mykiss C, L, P

R PCR Yersinia ruckeri Oncorhynchus mykiss C, L, P

Susana Sirvas-Cornejo, Claudia Cecilia Sánchez-Robinet y César Peña-Domínguez



270

355 E

E

David García Ventocilla, Gloria Mamani Gamarra, Nicolás Román Cabello, Luis Suárez Salas, Ana Contreras Marín y Julio Malca Jauregui

361 O “”

O k

Eugenio González, Diego Pignataro, Gisella Orjeda, Wilredo L. Gonzáles y Daniel Clark

367 C ( Mus musculus )

I ( Mus Musculus )

Láyonal Acosta, Víctor Núñez, Jose Pino y Betty Shiga

Notas cientícas

373 N L´ L Microlophus tigris (: S) L L Z Pk,(L, P)

N j L Microlophus tigris (: S) Pq ZL L (L, P)

Juan Carlos Jordán Arizmendi

377 N Phyllodactylus reissi (P: S) Pq N C A (, P)

N Phyllodactylus reissi (P: S) Pq N C A (, P)

Juan Carlos Jordán Arizmendi381 Ex “D F N”, Muscisaxicola rontalis (A: ) P

Ex “Bk- G ” Muscisaxicola rontalis (A: ) P

Renzo Alcocer, Grace P. Servat y Wilredo Mendoza

383 A O P

S O P

Luis A. Gomez-Puerta

387 P Crepidobothrium gerrardii (C: P) P

F Crepidobothrium gerrardii (C: P) P


Comentarios389 E . A

E w . M

María Florencia Gutierrez y Ana María Gagneten



271

T halicTrum peruvianum una especie nueva

Rev. peru. biol. 18(3): 271- 274 (D 2011)

Rev. peru. biol. 18(3): 271- 274 (D 2011)© F C B UNMSM ISSN 1561-0837

Thalictrum peruvianum (Ranunculaceae), una especie nueva deLima, Perú

Huber Trinidad

1

, Asunción Cano

1,2

y Blanca León

1

Thalictrum peruvianum (Ranunculaceae), a new species from Lima, Peru

1 Laboratorio de Florística, Depar-tamento de Dicotiledóneas, Museode Historia Natural –UniversidadNacional Mayor de San Marcos.Av. Arenales 1256, Lima 11, Perú.Email Huber Trinidad:[email protected]

2 Instituto de Investigación de Cien-cias Biológicas Antonio Raimondi(ICBAR), Facultad de CienciasBiológicas, UNMSM.

Presentado: 09/03/2011Aceptado: 12/12/2011Publicado online: 08/02/2012

ResumenSe describe e ilustra una nueva especie Thalictrum peruvianum H. Trinidad & A. Cano (Ranunculaceae) delcentro de Perú. Está caracterizada por presentar ores solitarias muy pequeñas que nacen opuestas a lashojas y un estigma alado. Estos caracteres diferencian este nuevo taxón del resto de especies sudamericanas.

Palabras Claves: Thalictrum peruvianum, Ranunculaceae, nueva especie, Lima, Perú.

AbstractA new species, Thalictrum peruvianum H. Trinidad & A. Cano (Ranunculaceae), is described from central Peru.It is characterized for having very small and solitary owers that born opposite to the leaves, and by wingedstigma. These characters distinguish this new taxon from other South American species.

Key Words: Thalictrum peruvianum, Ranunculaceae, new species, Lima, Peru.

Introducción

A q Polylepis R Pj N Y C(RPNYC), qñ q - j q, q . L L F D, M H- N U N M S M.

E Talictrum 190

( 1995), (Z K 1989). S q ; L (1953) , Talictrum decipiens B, . longis-tylum DC., . podocarpum K x DC. . venturii B, C B (1944), , . cincinnatum B, C; P.

L (Talictrum decipiens , . longistylum . podocarpum) C A, , 1500-3800 . H

, .

Tratamiento taxonómico

Thalictrum peruvianum H. Trinidad & A. Cano, sp. nov.

TIPO: P. D. L. P. Y. D M.L: Bq Y 3 k Pñ, 12º18´58,95”S 75º50´58,06”W. Bq Polylepis , 3700 3800 -, H. 221 (H: USM). F 1 2.

Haec species insignis oribus solitaris; sepalis viridis vel purpu-reis; ovariis 2 – 5, stigmatibus alatis. Inter species generis Talictrioovariis paucis, sed oris solitari, opposita (versus inorescentia

paniculatis), staminum connectivum supra thecas appendiculatum,rubeus diert.

H , , 80 . R , . 0,2 1,2 , , , ; 2 9 . Hj , 3(4) , ; 0,8 4,2 1,5 6 , , , ; 0,1 2,4 ;

1 2 x 0,5 1,2 , x 2 , q; 1,5 5 x 1 5 , 3 , , . F j, x ( ). P 0,1 1,8 . S 4 1,5 3,5 x 1,2 2 , 3 6, , . E7 17, q 1 5 , j; 1,4 2 , 0,3 , j. P 2 5 ( 16 ); 0,6 1,2 x 0,3 0,8 ; , 0,1 0,2 ; 3,2 , . Aq 1 3 3,5 4,5 x 2 2,5 , , ; 3 (4) , .

Material adicional examinado

P. D. L. P. Y. D M.L: Bq Y 3 k Pñ,12º18´58,95”S 75º50´58,06”W. Bq Polylepis , 3700 3800 , H. 1888 (USM).

Etimología E qñ -

, Talictrum peruvianum.



272

rinidad et al.

Rev. peru. biol. 18(3): 271- 274 (D 2011)

Figura 1. Thalictrum peruvianum H. Trinidad & A. Cano; a) Habito, b) Segmento de tallo en la que se observa la pubescencia, c) Vaina auri-culada sub-amplexicaule, d) Flor perfecta que nace opuesta a la hoja, e) Sépalo, f) Estambre, g) Pistilo con vista dorsal del estigma, h) Pistilocon vista frontal del estigma, e i) Fruto.



273

T halicTrum peruvianum una especie nueva

Rev. peru. biol. 18(3): 271- 274 (D 2011)

Figura 2. Thalictrum peruvianum H. Trinidad & A. Cano; a) Rama con or perfecta, b) Rama con or femenina, c) Vaina auriculada sub-amplexicaule y d) Habito.



274

rinidad et al.

Rev. peru. biol. 18(3): 271- 274 (D 2011)

Discusión taxonómica

E Talictrum P R j 2 4 .

E Z . (2008) Talictrum decipiens P. P L (1953) q Talictrum decipiens , . longistylum . podocarpum q .

L Talictrum peruvianum .

1. F . E 0,1 0,2 ; .. peruvianum

1’. F . E 10 ; .

2. E . . longistylum

2’. E .

3. F - -. . decipiens

3’. F . . podocarpum

Talictrum peruvianum - S; q .Talictrum peruvianum qñ j ; - , q (2,5 ). E q j, q

x (M1936; L 1956; 1992; Pk F 1997).N S , -q . venturii (L 1956), ( 1,5 ), q (<1 ). O q .P qñ ñ . E

(F Z 2001), . peruvianum.

Distribución, ecología y enología

Talictrum peruvianum q Polylepis RPNYC, q Y. E q A-, L Y; q 3700 .

E P j q 3800 ; .

F .

Estado de conservación

- , q Polylepis . N q, ( q ). S q - x. S q x . P , UICN(UICN 2001), q E P C (CR), .

Agradecimientos

A J q R P-j N Y C j . D j q J Rq .

Literatura citadaBoivin, B. 1944. American Thalictra and their Old World

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275

v ochysia awasensis nueva especie del Chocó ecuatoriano

Rev. peru. biol. 18(3): 275 - 278 (D 2011)

Rev. peru. biol. 18(3): 275 - 278 (D 2011)© F C B UNMSM ISSN 1561-0837

Vochysia awasensis (Vochysiaceae), nueva especie de los BosquesMontanos del Chocó ecuatoriano

Isau Huamantupa Chuquimaco

Vochysia awasensis (Vochysiaceae), new species from the Mountain Forestsfrom the Ecuatorian Chocó

Herbario (CUZ), Facultad de Cien-cias Biológicas, Universidad Nacio-nal San Antonio Abad del Cusco,Prolongación Av. de la Cultura s/n,Cusco, Perú.

Email: [email protected]


Resumen

Vochysia awasensis I. Huamantupa, es descrita e ilustrada como especie nueva de la familia Vochysiaceae,perteneciente a la sect. Ciliantha Staeu subsect. Megalanthae Staeu, proviene de los bosques montanos dela región biogeográca del Chocó en el noroeste de Ecuador. Presenta mayor anidad a V. megalantha y V. duquei , pero a su vez se distingue de estas por presentar el peciolo sésil poco conspicuo y decurrente, limbofoliar de 17-33,5 (-35) x 4,5-10 cm; pétalos orales entre 2,4-3 x 0,6-0,9 cm.

Palabras clave: Vochysia , Reserva étnica, Awá-Camumbí, Chocó, Ecuador

Abstract

Vochysia awasensis I. Huamantupa, is described and illustrated as new species of the family Vochysiaceae,belonging to the sect. Staeu Ciliantha subsect. Megalanthae Staeu, which comes from the montane forestsof the Choco biogeographical region in the northwestern of Ecuador. The new species differs from its relativesV. megalantha and V. duquei , by its inconspicuous and recurrent petiole, blade 17-33,5 (-35) x 4,5-10 cm, andpetals 2,4-3 x 0,6 to 0,9 cm.

Keywords: Vochysia , Reserva étnica, Awá-Camumbí, Chocó, Ecuador

Introducción

G E C, q x S, P . E q A (M . 2000), q (P Aw 2010). E Aw x 116640 .S S (1999), Aw-C q , ; 4000 5000 (G 2011). E

j G (2011) q 122 - 26 , L, M, M,U F ; C (Cedrela odorata), C (c. Dacryodes - c.Protium), P M (. H - . S),C (. Humiriastrum), C (c. Sloanea), C (Pou-teria .), C (Pouteria .) P (Pseudolemdiac. laevis ). M V (.V), .

E Vochysia 135 - (S 1958, L 2004, M-B 2005), 12 -

E (Jø L-Y 1999,N U 2011). L Vochysia E.

Taxonomía

Vochysia awasensis I. Huamantupa, sp. nov.

(F. 1 2)

IPO: ECUADOR. P, C. C. -C. Pq. D, Aw-C.Bq j , . 20-29 J1991; “M ”, 1700 1900 , 78°16'S, 00°53'N;C. Quelal, C. Aulestia y F. Nastacuáz 224 (H: MO; I-: QCNE).

Vochysiae duquei anis, sed stipulis majoribus, oliis in quoque verticillo quatuor, plus 15 cm longioribus, decurrentibus et inores-centiis quam 15 cm majoribus recedit; a V. megalantha stipulis ma-

joribus, oliis subtus glabris (nec errugineo-pubescentibus) diert. Árbol 8 20 . Ramas j

- , , j q-. Estípula 3 – 5 , 2,5 4 , q, , -- . Hojas 4 6 , 4; , , ; , , 17 33,5(-35) x 4,5 10 ; , ; ; , ; ; -

, , j , 3,5 j; 19 28 , 0,8 1,9



276

Huamantupa

Rev. peru. biol. 18(3): 275 - 278 (D 2011)

Figura 1. Vochysia awasensis I. Huamantupa. sp nov. A. Rama orífera, B. Flor, C. Fruto, D. Estípula, E. Pétalos y F. Estilo, Estambre yEstaminodios. Ilustración de M. Pacorina y G. Calatayud, basado en el tipo, Quelal et al. 224.



277

v ochysia awasensis nueva especie del Chocó ecuatoriano

Rev. peru. biol. 18(3): 275 - 278 (D 2011)

, 3 7 , 60 90° , , ,

, , 1 2, 1; ; , 1 3 . Inorescencia , 15 , , j -; 1 , 1,5 4 , . Y 0,8 1,5 , , , . Flores j 2,8 5,2 x 0,6 1,2 , - q ; , , 1,4 2,2 ,

40 80° , ; 2 2,8 , , 2 2 x 1,9 4 , ;

pétalos 3, ; , ,

- x , 2,4 3 x 0,6 0,9 , x , ±

2,4 , , , ñ . Estambre 2,4 2,8 , ; 3 4 , ; anteras 2 2,4 , , , x ± 2,5 , .Estaminodios 2, 3 4,1 , . Ovario 2 3,5 , .Estilo 2,3 2,65 ; . Fruto , , 3,9 7 x 1,2 2,4 .

Material adicional analizado

ECUADOR. P, C. C, . Pq, D, S S. R Aw-C.Bq . “M ”. 19 28 j1992. G. ipaz, J. Zuleta & N. Guanga 1330 (MO, QCNE);

Figura 2. Vochysia awasensis I. Huamantupa sp. nov. Rama orífera.Foto, I. Huamantupa.



278

Huamantupa

Rev. peru. biol. 18(3): 275 - 278 (D 2011)

S S. R Aw-C. Bq . O . “M ”,1928 j 1992. G. ipaz, J. Zuleta & N. Guanga 1353(MO, QCNE).

S V. duquei P. V. megalantha S, V. awasensis :V. duquei , ñ, 0,5

1,8 . Hj ; x 15 ; 0,5 1,5 ; , x 20 .I 15 , . F j 1,5 3 ; x 1,6 ; x 2 . O . F 3,8 .

V. megalantha, -; 2 . Hj ; 1,5 ; x 15 ; ; , - ; j j j. F, 2,5 3,5 , x 2,5 ; - 1 , 0,3 0,4 .

D q x Vochysia S(1948) Vochysia awasensis Vochysia . Ciliantha,. Megalanthae (S 1948) . Megalanthae , ( j) x-, j , ; ; 1,5 3,5 , q (4 ); 3; 0,1 0,3 , .

Ecología y distribución

H Vochysia awasensis q C E, É F Aw, E C, Cq . P V. awasensis , - C , 1500 2500 . S j j j .

Conservación

A Vochysia awasensis q C , Aw, C-M, C I.C q x 65% q Aw , V. awasensis . S q j , x ,

, (G 2011). D V. awasensis , L Rj UICN (2001), q “C A” (N).

Etimología

E Aw, - “G ñ ”, q C E C.

Agradecimientos

A E QCNE, q B. E . A R F F M C MO, W J P, USA. A O M M D. R L, V MO. A J S J Mñ

; A D. Hk V W, .

Literatura CitadaGuzman N. L. 2011. Los árboles aislados en el territorio del pueblo

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279

Distribution o asTrocaryum sect. h uicungo in Peru

Rev. peru. biol. 18(3): 279- 282 (D 2011)

Rev. peru. biol. 18(3): 279- 282 (D 2011)© F C B UNMSM ISSN 1561-0837

Detailed assessment of the distribution of Astrocaryum sect. Huicungo (Arecaceae) in Peru

Francis Kahn1, Betty Millán2, Jean-Christophe Pintaud1, Miguel Machahua2

Evaluación detallada de la distribución de Astrocaryum sec. Huicungo (Arecaceae) en Perú

1 IRD, UMR DIADE, DYNADIV,Casilla 18-1209, Lima 18, PerúEmail Francis Kahn:[email protected]

2 Museo de Historia Natural, Uni-versidad Nacional Mayor de SanMarcos, Av. Arenales 1256, JesúsMaría, Lima 11, Perú


AbstractDetailed distribution of Astrocaryum sect. Huicungo (Arecaceae) in Peru is presented and discussed. Twelveout of the 15 species that compose this section are found in the Peruvian territory from North to South in theeastern Andean foothills and western Amazonian lowlands. All these species have a parapatric distribution,except for Astrocaryum macrocalyx and A. urostachys , which share a very limited area. Limits of distributionareas may be related to geographical, geomorphological and ecological barriers (river, geological rising, soildrainage). In some cases, however, the contact between species is almost contiguous; no natural barrier couldbe detected in the eld.

Keywords: biogeography, palms, Astrocaryum , western Amazonia, Peru

Resumen

Se presenta y se discute la distribución detallada de las especies de Astrocaryum sect. Huicungo (Arecaceae)en Perú. Doce de las 15 especies que componen esta sección se encuentran en el territorio peruano, del Norteal Sur en el piedemonte de los Andes orientales y en la llanura amazónica. Todas las especies presentan unadistribución parapátrica, salvo Astrocaryum macrocalyx y A. urostachys que se superponen en una franja muyreducida. Las áreas de distribución son separadas por pasillos estrechos, que se pueden relacionar a barrerasgeográcas, geomorfológicas y ecológicas (ríos, levantamientos geológicos, drenaje del suelo). En algunoscasos, las especies se suceden en el espacio sin que se haya podido identicar barreras naturales separándolas.

Palabras claves: biogeografía, palmeras, Astrocaryum , Amazonía occidental, Perú

Introduction

H w A wk (K G 1992, M

P 2006, P . 2008, G B 2010,B . 2011). T Huicungo Astro-caryum , w 14 15 w A, , w w A G (K 2008). P Astrocaryum (12 15) .Huicungo P (K M 1992, K 2008,V P 2008, K M 2009), w P (M 2006). I w (5 w B S A, A, R, 5 C, 3 B,

1 E).I -

Huicungo, P 2008. I w w w . D .

Material and methods

Material studied . N Astrocaryum 40 (x Astrocaryum mexicanum A.alatum, Hexopetion P . 2008); 39 S A, 2 C A.

T : Astrocaryum w16 , Munbaca w , Monogynanthus w

20 . T Huicungo Monogynanthus 15 : () Huicungo

w 7 , 6 P; Sachacungo w

5 , 4 P; Murumuru w 3 , 2 P.

T Huicungo w . T w w , w w- - . T w q . E w w K (2008).

Study area. T P kw A w wk ww . I A w,

A A w w A (F. 1).

Data sample . P w 1 20 k w , q . T w w w 200 . F -, w w G GPS, w DNA . H w w / . A - w w .

W w , w w w . H w USM, L.



280

Kahn et al.

Rev. peru. biol. 18(3): 279- 282 (D 2011)

T () , () - FP7-P j (H. B), () USM, w Astrocaryum P .

T . T () (.. Astrocaryum carno-

sum A. aranae ), () , () .

Astrocaryum carnosum — 39

H — Kahn 1839-40, 1933-34, 2031,4476 , Millán & Kahn 629, 636-37, 1483-84, 1679, 1681A,1683, 1683A, Millán et al. 1377.

Astrocaryum chonta — 39

H — Balslev et al. 7658-59, 7852, 7870,7873, Gentry 26925, Kahn 2081, Kahn & Mejia 1782, 1823,

Mejia 106, Millán 141, Millán & Albán 149, 164, Millán & Mejía 60, 61, Millán & Canayo 63, 97, 99, 107, 109-10, 112, Millán & Kahn 1704, Millán & Vargas 1461, Millán et al.706-11, 718.

Astrocaryum ciliatum — 1

T kw P; w FK R F.

Astrocaryum aranae — 90

H — Balslev et al. 7885, 7897, 7929,7971, 7998, 8005, 8012, 8056, 8092, Kahn 4442-44, 4451-55, 4475, 4477, 4489, 4490, 4492, Millán 173, 174, Millán &

Clavo 1525, 1527, 1529, Millán & Kahn 627, 638, 642, 645,647-48, 1692, 1694, Millán & Machahua 1697-98, Millán et al. 1385, 1387, 1399.

Astrocaryum gratum — 70

H — Alexiades & Pesha 357, Kahn 4456-58, 4467, 4473-74, Kahn & Llosa 2128, 2143, 2144, 2147, Kahnet al. 4479, Millán & Couturier 118-20, Millán & Kahn 1703,

Millán & Pintaud 558, Nuñez et al. 21798, Vargas 18574, 18718.

Astrocaryum huicungo — 35

H — Kahn 4493, 4497-99, Kahn & Borch-

senius 2654-55, Kahn & Moussa 3203-04, 3206-08, 3211-12,Killip & Smith 28840, 28698, Millán & Kahn 655-56, 1709, Millán & Pintaud 447, 449, Weberbauer s.n.

Astrocaryum javarense — 51

H — Fleck SWF 371, Gentry & Revilla 20873, Gentry et al. 56347, 76490, Kahn 2340, Kahn & Mejia1776-77, 1780, 1786, 1858, 1971, 2055, 2057, 2069, Kahn& Moussa 3201-02, Kahn et al. 2408, Mejía 96, Millán 89, 90,

Millán & Canayo 114, Millan et al. 32, 746, 888, 894, 1078-81,1082-83, 1087-89, 1096, 1108.

Astrocaryum macrocalyx — 40

H — Gentry et al. 54253, 55618, 65743,Kahn 2296, Kahn & Couturier 3334, Millán 664, 674 Millán& Mejía 49, 50, Millán & Pereyra 64, Millán et al. 523, 906,

912-13, 916, 919-21, 922, 933-34, 1005-07, Moore et al. 8420,8482, Pintaud 593, 595, Pipoly et al. 13685, 13839, Ruokolainenet al. 5461, essmann 5117, Vásquez & Jaramillo 544, Vásquez et al. 2360.

Astrocaryum perangustatum — 69

H — Kahn 3230-32, 4436-39, 4445,

4450, 4501-02, Millán 830, 839, 846, Millán & Kahn 1592,1597, 1600, 1696, 1706-07, Smith 4045.

Astrocaryum scopatum — 56

H — Berlin 831, Kahn 4484-88, Kahn & Borchsenius 2563, Kahn & Machahua 4480-83, Millán & Kahn526-29, 543-544, 556, 571, 577-79, 610.

Astrocaryum ulei — 32

H —Kahn 4459-63, 4465, 4466, 4469-72, Millán 386.

Astrocaryum urostachys — 29

H — Albán 14039, Kahn 4139, 4140, Millán 925, 934, 982, Millán & Vargas 762, Millán et al. 1001-03, Pintaud 587-92.

Map design — M w AM 9.3,E S R I (2008), R,C.

Results and discussion

D Astrocaryum . Huicungo P A N S E W (F. 1).

w :() Astrocaryum carnosum w H w M. () Astrocaryum perangus-tatum w P, P P , A w P w, x , w P ER (A) J C-L Cw.

F x Aw: () Astrocaryum scopatum w Mñ , C w S L. I N, w M S

. () Astrocaryum huicungo Rj-M x H A w w. () Astrocaryum aranae w H A B, S H . T U w . () As-trocaryum gratum x U (C)ww ww, M D w. () Astro-caryum urostachys Aw, M ww w Iq A w.

F A w: () Astrocaryum javarense w w U A w

J w. () Astrocaryum macrocalyx



281

Distribution o asTrocaryum sect. h uicungo in Peru

Rev. peru. biol. 18(3): 279- 282 (D 2011)

A , Iq A . () Astrocaryum ciliatum kw Mj , S, w w N A , C . T q C (G B2010). () Astrocaryum chonta w

A-U-w U w ; w Mñ M . () Astrocaryum ulei x M D B B w.

A w 1000 , x Astrocaryum aranae P 167 1650 .

T Huicungo ( F. 1 A. carnosum, A. ciliatum, A. aranae, A.huicungo, A. javarense, A. scopatum) . T Sachacungo () w , w ( Astrocaryummacrocalyx A. urostachys ) w ( Astrocaryum gratum A. perangustatum) .T w Murumuru ( A. chonta

Figure 1. Distribution of Astrocaryum sect. Huicungo (Arecaceae) in Peru.



282

Kahn et al.

Rev. peru. biol. 18(3): 279- 282 (D 2011)

A. ulei) A w.

A P Huicungo , x Astrocaryum macrocalyx

A. urostachys w (V P2008). S w w .S -

, . T () — U A Astrocaryum

javarense / A. macrocalyx M D Astrocaryum gratum/ A. ulei , () — Iq A Astrocaryum macrocalyx / A. urostachys (V P 2008), C V( ) Astrocaryum perangustatum/ A. gratum, () w — Astrocaryum javarense/A. chonta ( A. javarense w , w

A. chonta w , w w ), Astrocaryum carnosum/ A.

aranae ( A. carnosum H , A. aranae C A). I — .. w Astrocaryum scopatum A. urostachys S M , w Astrocaryum hui-cungo A. aranae , w Astrocaryum

aranae A. perangustatum P . T .

Acknowledgments

T wk w w UNMSM/S M N U, P IRD/R I-

D (UMR DIADE/DYNADIV), F, PALMS j EC, 7 Fwk P, G AN°212631. W C S .

Literature citedBalslev H., F. Kahn, B. Millan, J. Svenning, T. Kristiansen, F.

Borchsenius, D. Pedersen & W.L. Eiserhardt. 2011. Spe-cies diversity and growth forms in tropical American palmcommunities. The Botanical Review (Junio). doi:10.1007/ s12229-011-9084-x.

Galeano G. & R. Bernal. 2010. Palmas de Colombia. Univ. Nac. DeColombia, Bogotá.

Kahn F. 2008. The genus Astrocaryum. Rev. peru. biol. 15, supl.1:31-48.

Kahn F. & J.-J. de Granville. 1992. Palms in forest ecosystems of Amazonia. Springer Verlag, Berlin.

Kahn F. & B. Millán. 1992. Astrocaryum (Palmae) in Amazonia.A preliminary treatment. Bull. Inst. fr. Ét. and. 21 (2):459–531.

Kahn F. & B. Millán. 2009. Astrocaryum ulei (Arecaceae) newlydiscovered in Peru. Rev. peru. biol., 16 (2): 161-164.

Millán B. 2006. Arecaceae endémicas del Perú. en: León B. et al.(ed.), El Libro Rojo de las Plantas Endémicas del Perú.Rev. peru. biol., Número especial, 13 (2): 706-707.

Montufar R. & J.-C. Pintaud. 2006. Variation in species composition,abundance and microhabitat preferences among westernAmazonian terra rme palm communities. Bot. J. Linnean

Soc., 151: 127-140.Pintaud J.-C., G. Galeano, H. Balslev, R. Bernal, F. Borchsenius,

E. Ferreira, J.-J. de Granville, K. Mejía, B. Millán, M.Moraes, L. Noblick, F.W. Stauffer & F. Kahn. 2008a. Laspalmeras de América del Sur: diversidad, distribución ehistoria evolutiva. Rev. peru. biol., 15, supl. 1: 7–29.

Pintaud J.-C., B. Millán & F. Kahn. 2008b. The genus Hexopetion.Rev. peru. biol. 15, supl. 1: 49–54.

Vargas V. & J.-C. Pintaud. 2008. Caracterización de un contactoparapatrico entre Astrocaryum macrocalyx y A. urostachysen el limite de la planicie de Marañón-Pastaza con el Arcode Iquitos. Rev. peru. biol. 15, supl. 1: 79-83.



283

Plantas medicinales en los mercados de la ciudad del Cusco

Rev. peru. biol. 18(3): 283 - 291 (D 2011)


Riqueza, uso y origen de plantas medicinales expendidas en losmercados de la ciudad del Cusco

Isau Huamantupa¹, Magaly Cuba², Rosa Urrunaga³, Elías Paz¹, Nelson Ananya¹,

Myrthia Callalli¹, Nadir Pallqui¹ y Hozmary Coasaca¹

Richness, use and origin of expended medicinal plants in the markets ofthe Cusco City

1 Herbario Vargas “CUZ”, Universi-dad Nacional San Antonio Abad delCusco. Cusco – Perú

2 Universidad Nacional de San LuisGonzaga, Ica – Perú

3 Grupo Técnico de Biodiversidadde la Comisión Ambiental RegionalCAR-Cusco. Perú.

Email Isau Huamantupa:[email protected]


Introducción

L P x , -

, j ,, .

E ñ 80% - , q q (UICN . 1993). E P q - 4400 , j (Bk 1999).

E C

( 2007), j q ,

, . U q q - q , , C Cj (G 1971).

E P - ñ R P, Ax V H, A Rq q q C. E “I” G V “L C R I” , - j qñ F L.H, (H

1923), , j qñ C V q

Resumen

Se estudiaron las plantas medicinales expendidas en cinco mercados principales de la ciudad del Cusco: SanPedro, San Jerónimo, TTio, Wanchaq y Rosaspata y cuatro zonales de San Sebastián, Molino II, Huancaroy Santa Rosa. Se realizaron encuestas y colectas para identicar las especies de plantas medicinales, modode utilización, afecciones tratadas, lugar de procedencia y origen. Registramos 152 especies, con 45 familias,las más ricas en especies fueron: Asteraceae con 36 y Lamiaceae (12); las especies con la mayor frecuenciade venta y compra fueron: Muehlenbeckia volcanica (Benth.) Endl. “mullaca”, Perezia virens (D. Don) Hook.& Arn. “valeriana”, Matricaria recutita L. “manzanilla” e Hypochaeris taraxacoides (Walp.) B. & H. “pilli pilli”; elhábito herbáceo represento el 75% del total; de las partes utilizadas 81% corresponden a toda la planta; lasinfusiones o “mates calientes” abarcaron el 69% del modo de preparación y las afecciones tratadas con mayor frecuencia fueron las inamaciones renales y hepáticas, dolencias gastrointestinales y afecciones broncopul-monares. Las especies nativas representaron el 83% del total, de estas 78%, son procedentes de la región

andina principalmente de localidades aledañas al departamento Cusco. Consideramos que esta alta r iquezade plantas medicinales expendidas en los mercados de la ciudad del Cusco es similar a otros registros enmercados andinos importantes de Sudamérica como en Bolivia y Ecuador, las que a su vez están arraigadasa conocimientos ancestrales, principalmente de la cultura Quechua.

Palabras clave. Riqueza, Andes, Plantas medicinales, Uso y Cultura Quechua.

Abstract

We studied medicinal plants expended in ve major markets, San Pedro, San Jerónimo, Ttio, Wanchaq and four small zonal, Rosaspata, San Sebastian, Molino II, Huancaro and Santa Rosa, in the city of Cusco. It was aimedto know the richness, how to use treated conditions, place of origin, distributions and source. We recorded 152species into 45 families, the families more riches were Asteraceae with 36 species and Lamiaceae (12), speciesmost frequently bought and sold in all markets were Muehlenbeckia volcanica (Benth.) Endl. "Mullaca" Perezia virens (D. Don) Hook. & Arn. "Valeriana", Matricaria recutita L. "Manzanilla" and Hypochaeris taraxacoides (Walp.) B. & H. "Pilli pilli", the herbaceous habit represent 75%,the total of the parts used, 81% correspond tothe entire plant, the infusions or "mates calientes" with 69% of the mode of preparation and conditions treatedmost frequently were the bronchopulmonary, kidney and inammations, liver and gastrointestinal ailments. Na-tive species accounted for 83% of the total, these 78% are from the Andean region surrounding towns mainlyCusco department. We believe that this great wealth of medicinal plants expended in the markets of the city ofCusco is similar to other important records in Andean South American markets such as Bolivia and Ecuador,which in turn are rooted in ancient knowledge, mainly Quechua culture.

Keywords. Richness, Andes, Medicinal Plants, Use and Quechua Culture.



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Huamantupa et al.

Rev. peru. biol. 18(3): 283 - 291 (D 2011)

. R q C, - P, 40 (L . 2006).

L x / ,

; C x j . E x : Stachys herrerae “ q”, Hypochaeris taraxacoides “ ” Matrica-ria recutita L. “” (M O 2004). P , q x E A, q ; j: “”, “”, “”, “” “ ”.

E C, - , .

L j : ) x C, ) ) , .

Material y métodos

S , - , : S P,S J, , Wq R;

qñ : S R, S S, MII H.

L (-) (-) 2006. S 32 x 74 , , , , , , -, . P (x), C A G P Bk Z (1993).

.

P , ; x H CUZ U N S A A C . L x APG-III (2009).

Resultados

Riqueza de plantas medicinales

E S P, S J-, , Wq R

S S, M II, H S R, x , (F. 1).

S 152 , 45 , q : A 36 , L(12), P (6), P (5), A, M,F P 4 (F. 2), 71 (49,3% ).

L q x (F. 6 7), : Muehlenbeckia volcanica“”, Perezia virens “”, M. recutita “”,

H. taraxacoides “ ”, araxacum ocinale “ ” Persicaria hydropiperoides “”.

L (F. 3), 75% 8% .

E q (F. 1), S P 68 , S J(62), , ñq S P (68 .), , q x , x

0

10

20

30

40

50

60

70

80

S a n P e d r o

S a n J e r o n i m o

W a n c h a q

R o s a s p a t a

T t i o

M e r c a d o z o n a l e s

N ° e s p e c i e s

Figura 1. Distribución de especies en los mercados de la ciudadde Cusco.

0

5

10

15

20

25

30

35

40

A s t e r a c e a e

L a m i a c e a e

P l a

n t a g i n a c e a e

P o a c e a e

A p i a c e a e

F a b a c e a e

M a l v a c e a e

P o l y p o d i a c e a e

N ° e s p e c i e s

Figura 2. Distribución de las ocho familias botánicas más importantespara los nueve mercados de la ciudad de Cusco.



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Rev. peru. biol. 18(3): 283 - 291 (D 2011)

q j ; S Jq (62), q j x

, ; Wq 45 C.

L - x , q , : Bowlesia tropaeoliolia “”, Caly-cera sp “ kk” Barnadesia horrida “”.

Modos de uso

S x -, j ,

j, x .

D , 75% , , ,j , 10% j, 4% 11% x , .

L (F. 4), “ ” 69%, ñ 15%, 5% 4%, q: “ ” . ocinale ; “”, ” H. taraxacoides ; H. echegaraii, Paranaphelius ; , 7%, “” Baccharis .

L q , , 40% , - (30%) (20%).

D , - x , q

: S. herrerae “ ”, P. virens “”, H. taraxa-coides, H. echegaraii “” M. volcánica “k” O q q , x , q S P, : Croton lechleri “ ”, Ficus insípida “j”, Ficus trigona . “”.

O - , , Phoradendronspp “ q ”, Grindelia boliviana “ ” Piper elongatum “”, q .

V j Otholobium pubescens “” q , , , “” “ ”. “” , q , Xanthium spinosum “ kk”.

Origen, distribución y procedencia

E 83% (126 .), x- C , A L, q ñ j , ñ C.D , , , j , q qñ q.

-, , (F. 5), q 78% (119 .) , 9% (8%), : Uncaria tomentosa “ñ ”, Phyllanthus niruri “ ”, C. lechlerii “ ”, F. insipida

Árbol

%

77

11

8

2

2

0 20 40 60 80

Hierba

Arbusto

Liana

Hemiparásita

Figura 3. Proporción de las formas de crecimiento, según las especiesmuestreadas en los mercados de la ciudad de Cusco.

0 10 20 30 40 50 60 70

Consumo directo

Emplastos

Sahumerios y otros

Baños calientes

Mates calientes

%

Figura 4. Distribución de las formas de uso de las especies deplantas medicinales

0 20 40 60 80

Costero

Andino, Amazónico, Costero

Amazónico

Andino, Costero

Andino

%

Figura 5. Distribución de las especies medicinales expendidas enlos mercados de Cusco, según la región de su proveniencia, An =Andino, Am = Amazónico y Co = Costero.



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Figura 6. (A) Puesto de venta, (B) Vendedora de “mates”, (C) Forma de empaques y combinaciones entre especies. (D) Rodaja de tallo deCyathea caracasana “sano sano”, (E) Campiloneurum bogotense “cala huala”, (F) Perezia sp. “cáncer ccora”.

(A )

(B )

(C )

(D )

(E) (F)



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Rev. peru. biol. 18(3): 283 - 291 (D 2011)

Figura 6. , (G) Calceolaria scapifora “zapatito”, H). Eryngium weberbauerii “yanahuma”, (I) Hypochaeris echegarai “pilli-pilli”, (J) Muehlem- beckia volcanica “mullaka”, (K) Hypochaeris sp. “pilli”, (L) Leucheria sp. “escorzonera”,

(H )

(I )

(J )

(K )

(L )

(G )



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Huamantupa et al.

Rev. peru. biol. 18(3): 283 - 291 (D 2011)

“” Stachytarpheta cayennensis “”. E , .

E 17% (26 .), x , M. recutita “”, Mentha viridis “ ”, Aloe vera “” Rosmarinus ocinalis “”.

Discusiones

De la Riqueza

L 152 x C , , , q x “”, “ ” ( ), , , q

x .P P x 1400

(Bk 1999), 11% . C x , P, -, H C Mqq C, 400 (B . 2007), , x . C q -

C, q J P (S D 2006), P B.

N , x , j P , 102 , L A , q .

P C, M (2004) ñ V A (P), 20 “” - , 97 , q x C SP S J.

O M (2001) U (2002, 2003),q

250 , q 50% x, q90% .

L q E (Q, R I), q 69 175 (C 2006), q Mx q 135 , - . P B, V

(2006), M . (2005) Vk , (2003); 129 - 171 , 54-56 ., L P, 129 55 ,

A, F S (M . 2004), q .

E , q

, j , , q q. E - P B q , q B,E P ( 1), , .

L A, L P

q, - L P C B (V2006) Q, C E (C 2006).

L 40 70 ( 1), A , .

E L - B, E q-

.De los modos de uso

E 75% ,, j, , q (72%), q . E B j (V 2006, M . 2004), , , .

A

B E “” q C x “ ” (F. 6). P C



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Especie Nombre vernacular Afecciones tratadas

Adoxaceae

Sambucus peruviana Kunth Sauco, Tilo Nervios, resfríos

Amaranthaceae

Chenopodium ambrosiodes L. Paico Vermífuga

Amarillydaceae

Aloe vera L.* Sabila Males del cuero cabelludo

Anacardiaceae

Schinus molle L. Molle Baños contra inamaciones internas

Apiaceae

Apium graveolens L.* Apio Inamaciones estomacales y resfríos

Foeniculum vulgare Mill.* Hinojo, Eneldo Inamaciones gastrointestinales

Asteraceae

Ambrosia arborescens Mill. Altamisa, Marku, Marco Limpiados de inamaciones internas, insecticida

Baccharis genistelloides (Lam.) Pers. Kinsakucho, Tres los Inamaciones gastrointestinales e hígadoChuquiraga spinosa Less. Chuquiraga Inamaciones del hígado

Cynara scolymus L.* Alkachofa Estimulaciones al funcionamiento normal de la vesícula

Gnaphalium americanum Mill. Queto-queto, lechuguilla Digestiva, desinfecciones oculares

Grindelia boliviana Rusby Chiri-chiri Para fracturas y lucsaciones

Hypochaeris taraxacoides (Walp.) Benth. & Hook. f. Pilli-pilli, achicoria Problemas hepáticos y biliares

Matricaria recutita L.* Manzanilla Antiespasmódicos y limpiezas gastrointestinales

Mutisia acuminata Ruiz & Pav. Chinchirkuma Baños contra problemas nerviosos

Sonchus oleraceus L. Ccahua, Cashacerraja Inamaciones vesiculares

Taraxacum ofcinale L* Diente de león, Taraxaco Inamaciones vesiculares y diuréticos

Brassicaceae

Matthiola incana (L.) R. Br. Aleli, Alelí morado Problemas cardiacos

Ephedraceae

Ephedra rupestris Benth. Pinco-pinco Limpieza renal y de próstata

Equisetaceae

Equisetum bogotense KunthCola de caballo,Caballochupa

Inamaciones internas estomacales y renales

Erythroxylaceae

Erythroxylum coca Lam. CocaChacchado, limpieza estomacal, reumatismo yproblemas de altura

Euphorbiaceae

Croton lechleri Müll. Arg. Sangre de gradoCicatrizante de heridas y quemaduras, hemorroidesinternos

Fabaceae

Otholobium pubescens (Poir.) J.W. Huallhua, trinitaria Correcciones de atrasos menstruales

Spartium junceum L.* Retama, retamo Purgantes, limpieza de cálculos renales

Lamiaceae

Lepechinia meyenii (Walpers) Epling Salvereal, Puna salvia Dolores estomacales

Melissa ofcinalis L.* Torongil Digestivo y problemas del tejido cardiaco

Mentha X piperita L. (pro sp.) * Menta Digestiva

Minthosthachys spicata (Benth.) Epling Muña Digestiva e insecticida

Rosmarinus ofcinalis L * Romero Baños antiinamatorios

Salvia ofcinalis L. * Salvia Baños antiinamatorios

Moraceae

Ficus carica L.* Higo DigestivaMyrtaceae

Eucalyptus globulus Labill.* Eucalypto Problemas bronco pulmonares

Tabla 1. Especies de pantas medicinales frecuentemente expendidas y compartidas entre mercados andinos importantes de Sudamérica,Bolivia, Ecuador y Perú. Especie introducida (*).



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Huamantupa et al.

Rev. peru. biol. 18(3): 283 - 291 (D 2011)

, ñ ; , B E.

E - ; E (C 2006).C B S (2006), - 510 , 207 -, 95 , 85 , q . EC, -, .

P x-, q : Minthosthachys spicata“ñ”,

Menta viridis “ ” Matricaria recutita “”,

H q

, Perezia virens P. coerulescens, “”

“ ”, q . O q Valeriana . “q”, .

Del origen, distribución y precedencia

E 83% (126 .), , 78% ,

A, L, P, F P, j , -,

ñ C P, U-, C, L, S J, P, Q S-H. P, A A.

L - x .

C q x q x ,

j .

L A -

Passioraceae

Passiora ligularis Cav. Granadilla Digestivo

Piperaceae

Piper aduncum L. Matico Antiinamatorio y cicatrizante

PlantaginaceaePlantago major L. Llanten Inamaciones intestinales, hemorragias internas

Poaceae

Cymbopogon citratus (DC) Stapf * Hierba luisa Digestivo y saborizante

Zea mays L. Maíz Inamaciones intestinales

Polemoniaceae

Cantua buxifolia Juss. ex Lam. Cantu, cantuta Febrífugo

Polygonaceae

Muehlenbeckia volcanica (Benth.) Endl. Mullaca, Angoyuyo Inamaciones hepáticas

Rosaceae

Rosa canina L.* Rosa Irritaciones del ojo, inamaciones internas

Rutaceae

Citrus medica L.* Sidra Inamaciones estomacales y hepáticas

Ruta graveolens L.* Ruda Vermífuga y anti nerviosa

Smilacaceae

Smilax poeppigii Kunth Zarza parrila Alteraciones sanguíneas, hemorragias internas

Rubiaceae

Uncaria guianensis (Aubl.) J.F. Gmel. Uña de gato Desinamante artrítico, febrífugo anti cancerígeno

Violaceae

Viola odorata L. * Violeta Problemas broncopulmonares

Tabla 1. Continuación.



291


Rev. peru. biol. 18(3): 283 - 291 (D 2011)

Iq, M D P (Dk Vq1994), C, C, Q,

Y Kñ.

Conclusiones

E , x C, q , . L -q x, , x C P P, L-q L; C L P B Q,R I E, q Q A , q q .

x - .

Agradecimientos

L -, x C, q q q . I V “CUZ”, UNSAAC, .

Literatura citadaAngiosperm Phylogeny Group (APG III). 2003. An update of the

Angiosperm Phylogeny Group, Classication for the or -ders and families of Flowering plants. Botanical Journalof the Linnean Society, 141, 399–436.

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Huamantupa et al.

Rev. peru. biol. 18(3): 283 - 291 (D 2011)



293

Desarrollo reproductivo del “amancay” i smene amancaes

Rev. peru. biol. 18(3): 293 - 297 (D 2011)


Desarrollo reproductivo del “amancay” Ismene amancaes (Amaryllidaceae) en su ambiente natural

Mery L. Suni, Edisson Pascual, Enoc Jara

Reproductive development of “amancay” Ismene amancaes (Amaryllidaceae)in its natural environment

Laboratorio de Fisiología Vegetal,Facultad de Ciencias Biológicas,Universidad Nacional Mayor deSan Marcos. Apartado 11058. Lima11, Perú.

Email Mery Suni:[email protected] Enoc Jara:[email protected] Edisson Pacual:[email protected]


Resumen

Ismene amancaes “amancay” es una especie bulbosa característica de las formaciones vegetales denominadas“Lomas” de la costa central del Perú. Emerge al iniciar el periodo de neblina que ocurre en junio, durante elinvierno. Presenta ores grandes amarillas y con agradable aroma, muy apreciadas y de valor ornamental. An de conocer el desarrollo reproductivo de Ismene amancaes en su ambiente natural se hicieron muestreosmensuales de sus bulbos durante todo un año. Se realizaron observaciones del interior del bulbo para deter -minar el inicio de la formación y desarrollo de las yemas orales y se relacionó con la formación de sus hojasy la humedad edáca. Se puede indicar que las primeras yemas orales se hacen evidentes el año anterior asu emergencia, en el mes de diciembre, alcanzando el máximo número de yemas orales en febrero (periodode verano). La diferenciación de las yemas orales se inicia luego de haberse formado las hojas que saldrán elsiguiente año y en el periodo de máximo descenso de la humedad edáca y de incremento de la temperatura

(noviembre). La inorescencia es la única ramicación que se forma mientras que la yema apical continuaformando hojitas. En junio, la pequeña inorescencia alcanza el cuello del bulbo y avanza seguido por las hojasformadas antes de la inorescencia siendo envolventes a la inorescencia misma y a la yema foliar apical. Layema foliar continuará su desarrollo y en julio dos de sus hojas salen del bulbo, las siguientes aun pequeñasquedan dentro y brotarán en el periodo de Lomas del siguiente año. Se puede señalar que el éxito reproductivode Ismene amancaes en su etapa inicial es dependiente de los fotoasimilados acumulados como biomasa delbulbo en el periodo de Lomas anterior.

Palabras clave: Santuario de Amancay, Lima, Desierto costero peruano, bulbo, Lomas

Abstract

Ismene amancaes “amancay” is a bulbose species typical of the central coast vegetation of Peru called “lomas”.This species sprouts in June during the beginning of the winter-fog period. It has large yellow, aromatic owersvalued for their ornamental value. Our goal was to examine the reproductive development of Ismene amancaes in its natural environment, and we recorded monthly observations during a yearlong study. Observations ofthe interior of the bulbs allowed recording of the beginning of oral bud formation and development, relating

them to leaf formation and edaphic humidity. We found that the rst oral buds develop the year before their emergence in December, reaching a maximum number of oral buds in February, during the Summer. Floralbud differentiation starts after leaves that will emerge the following year have developed. This occurs during aperiod of maximum decrease in edaphic humidity and an increase in air temperature (November). The ino -rescence is the only branching that develops while the apical bud continues developing leaves. In June, thesmall inorescence reaches the neck of the bulb and surpasses it followed by those leaves developed beforethe inorescence that surround both the inorescence and the apical foliar bud. The foliar bud will continueits development, and in July two of the leaves expand, while the smaller ones remain inside the bulb until thefollowing year’s Lomas season. It can be noted that the reproductive success of Ismene amancaes in its initialdevelopment depends on the photoreserves accumulated in the bulb the previous growth period.

Keywords: Amancay Sanctuary, Lima, Peruvian Coastal Desert, bulb, Lomas.

Introducción

Ismene amancaes (R P) H. “” q P - L. S q . E L ,, , q .

L I. amancaes , , ñ, . S , 13 7

( ñ ) (Aü S 1999). C E Nñ , . S

q 30% j

(Aü S 1999). x ñ L q , x , ñ - , (L . 2006).

P . E q j x I. amancaes “” L S A, P(L)

. E j I. amancaes .



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Suni et al.

Rev. peru. biol. 18(3): 293 - 297 (D 2011)

Área de estudio

A 2003, Ismene amancaes , 4x5 2 S A, P, L.S 20 q

5 9 j ( j , S, M.,. .). E (9) (F. 1).

Material y métodos

D 2004 2005 13 .

E 2 , q . S

Figura 1. Área de estudio. Vista de una de las parcelas de estudio(30 de enero del 2004). Nótese la ausencia aparente de amancaesy en detalle las características del bulbo extraído y del suelo dondefue ubicado.

M a r

M a y

J u l

S e p

N o v

J a n

J a n

0

1

2

3

4

5

6

y e m a

0

1

2

3

4

5

6

7

8yema

Humedad

p o r c e n t a j e d

e h u m e d a d

Figura 2. Variación del número de yemas orales en el curso del añoy su correlación negativa signicativa con el contenido de humedaddel suelo.

Figura 3. Vistas del de-sarrollo de la pequeñainorescencia con algu-nas yemas orales, en el

interior de bulbos colec-tados en diciembre del2004 (izquierda) y enerodel 2005 (derecha).

- j .

P , 20 , q j 110 ºC

. E j (j q) - , 100.

Resultados

Caracterización del desarrollo de las estructuras repro-ductivas

E 2004 1 2 qñ(3). E qñ ,

(4 ) L q . Lqñ - (F. 2, 3)



295


Rev. peru. biol. 18(3): 293 - 297 (D 2011)

Figura 4. Variación de la longitud de la pequeña inorescencia en el interior del bulbo de Ismene amancaes en relación a la altura del bulbo.Nótese que para mayo, cuando la tasa de crecimiento se incrementa, alcanza la altura del cuello del bulbo, para continuar en los mesesde julio y agosto con un crecimiento exponencial. Vista corresponde a la inorescencia presente en el interior del bulbo en mayo del 2004.

Figura 5. Características del desarrollo de los órganos foliares y orales en el interior del bulbo de Ismene amancaes en junio del 2004, en laparte central sobre el disco basal se observa la inorescencia y la yema foliar. Nótese la apariencia del bulbo antes de su disección (foto dela izquierda). Asimismo se muestra las pequeñas hojas desplegadas a ambos lados según su posición en el bulbo.

Figura 6. Comparación del tamaño del escapo en corte transversal a nivel medio del bulbo en julio (izquierda) y septiembre (derecha) del2004. Nótese la reducción de sus dimensiones (véase las líneas).

600

500

400

300

200

100

0

ene feb mar abr may jun jul ago sep nov dic ene

Long inf (mm)

Altura de bulbo (mm)



296

Suni et al.

Rev. peru. biol. 18(3): 293 - 297 (D 2011)

M a r

M a y

J u l

S e p

N o v

J a n

J a n

0

50

100

150

t o t a l p e s o f r e s c o

0

1

2

3

4

5

6

7

8totalPfHumedad

M a r

M a y

J u l

S e p

N o v

J a n

J a n

0

100

200

300

400

500

600

á r e a f l o l i a r ( c m 2 )

0

1

2

3

4

5

6

7

8areaFolHumedad

p o r c e n t a j e d e h u m e d a d

Figura 8. Relación directa entre el contenido de humedad del suelo y el peso fresco de la planta (izquierda) y con el área foliar (derecha) deIsmene amancaes .

M a r

M a y

J u l

S e p

N o v

J a n

J a n

0

10

20

30

40

50

P o r c e n t a j e p s / p f t o t a l

0

1

2

3

4

5

6

7

8bultotRelpspfHumedad

M a r

M a y

J u l

S e p

N o v

J a n

J a n

0

10

20

30

40

50

0

1

2

3

4

5

6

7

8totRelpspfHumedad

P o r c e n t a j e p s b u l b o / p f t

o t a l

p o r c e n t a j e d e h u m e d

a d

Figura 9. Relación inversa entre el contenido de humedad del suelo con el porcentaje de materia seca (ps) del bulbo y de la planta en relacióna la biomasa total (pf) de Ismene amancaes .

Figura 7. Características del interior del bulbo (foto izquierda), observado en noviembre 2004, nótese la presencia de una hojita (vaina y lá-mina). Se señala con el puntero el meristemo apical de la yema foliar (visto al microscopio estereoscópico 80X), no fue evidente la presenciade estructuras reproductivas.



297


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(F. 4) j (F. 5). E x j q L q q -j. S- j ( ) q

, . Y j ( ) , . L q j q ñ x (). L qñ q q q j. L q , q L . E j j (F. 6) q .

L ( ), qñj , (F. 7). E qñ qñ . S .

Evaluación de las características del bulbo

E () () (F. 8), q ñ q - . M q j (F. 9) j q x j ( ). S q (q j) 0,5 1,9 . S x q .

Contenido de humedad del suelo

A 20 , x , j 2004. E q , q .P j 5 . A , j , q 20

.

Discusión

Ismene amancaes ñ. A L, - (Aü 2002) (), . E qñ , -

, (N-P .2009). S . E q (Bk 1989). E ñ ( E Nñ) q , - , x (Aü S 1999). E L . Aü S

(1999) j j.E - ( j); q , j , (, ). S x .

Agradecimientos

L x - PRODENA-AREQUIPA, CEMENOS LIMA , I M.S. F M

R.Literatura citada

Agüero S. & M. Suni. 1999. Inuencia del evento “El Niño 1997-

1998” en el desarrollo de Ismene amancaes (Amaryllida-ceae, Liliopsidae). En: El Niño 1997-98 y su Impacto sobrelos Ecosistemas Marino y Terrestre. J. Tarazona y E. Cas-tillo. (Eds.) Rev. peru. biol. Vol Extraordinario: 118-124.

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298

Suni et al.

Rev. peru. biol. 18(3): 293 - 297 (D 2011)



299

Nueva especie de m ediorhynchus (Acanthocephala, Gigantorhynchidae)

Rev. peru. biol. 18(3): 299 - 302 (D 2011)


Nueva especie de Mediorhynchus (Acanthocephala, Gigantorhynchidae)en Turdus chiguanco (Turdidae) de Junín, Perú

Rocío Moya1, Rosa Martínez1, Manuel Tantaleán2

New species of Mediorhynchus (Acanthocephala, Gigantorhynchidae) inTurdus chiguanco (Turdidae) from Junín, Peru

1 Laboratorio de Parasitologíade Fauna Silvestre y Zoonosis,Facultad de Ciencias Biológicas,Universidad Nacional Mayor deSan Marcos. Apartado 110058,Lima 11, Perú.

2 Laboratorio de Parasitología, Fa-cultad de Veterinaria y Zootecnia,Universidad Peruana CayetanoHeredia. Lima, Perú.E-mail Rocío Moya:[email protected] Rosa Martínez:[email protected] Manuel Tantaleán:[email protected]


Resumen

Se describe una nueva especie de Mediorhynchus (Acanthocephala, Gigantorhynchidae) basada en 36 es-pecímenes colectados de 4 individuos de Turdus chiguanco (Lafresnaye & D’Orbigny, 1837). Las aves fueroncapturadas en el distrito de Muqui, provincia de Jauja, Junín, Perú. La nueva especie, Mediorhynchus peruensis se caracteriza por la armadura de la probóscide y la longitud de los lemniscos que se extienden hasta la partemedia o posterior del testículo anterior en el macho y hasta la parte media anterior del cuerpo en la hembra.Palabras clave: Mediorhynchus, Acanthocephala, Turdus, Turdidae, Perú.

Abstract

A new species of Mediorhynchus (Acanthocephala, Gigantorhynchidae) is described based on 36specimens collected from 4 individuals of Turdus chiguanco (Lafresnaye & D’Orbigny, 1837). Thebirds were captured in the district of Muqui, Jauja Province, Junín, Peru. The new species, Mediorhyn-

chus peruensis is characterized by the armature of the proboscis and lemnisci length extending tothe middle or back of the anterior testis in the male and to the middle front of the body in the female.Keywords: Mediorhynchus , Acanthocephala, Turdus , Turdidae, Peru.

Introducción

urdus chiguanco (L D´O, 1837) P q S , 2000 4300 , ; A

E P, C, B A- (B 1959, Fj K 1990).

P . chiguanco P.S . (1999) , - . chiguanco L; C (2004) j . chiguanco C Aprocta .

E j Mediorhynchus peruensis . . urdus chiguanco Mq, Jj (J).

Material y métodosE 2007, . chiguanco j Mq (3322 , M), Jj, J. E 36 . L , 2 j j 70º. P , .

P ,

5 5 -, . L x (

). L j C Z. L C H L F S Z F C B UNMSM.

Resultados

Mediorhynchus peruensis nov. sp.

(F 1 4)

Descripción: 7 7 .

D , , 2, ; x , ñq , -; .

Macho.- M 11,15 (8,72 14,0) 1,49

(1,251,78) . E ñ 0,57 (0,53 0,64), 0,34 (0,30 0,43) 0,40 (0,36 0,45) 0,23 (0,20 0,27) 0,54 (0,41 0,73) . L 77(62 84) 13 14 4-6 , 116 (104 120). L 4,61 (3,1 6,31) 0,79 (0,7 1,0) , x / . L , ,

, , 1,43 (1,07 1,80) 0,47 (0,4 0,75) . C 8 , 2 . P .



300

Moya et al.

Rev. peru. biol. 18(3): 299 - 302 (D 2011)

Hembra .- G ñ q , 17,04 (14,0 21,0) 1,77 (1,52 2,10) -. L 0,69 (0,57 0,78); 0,40 (0,35 0,45) 0,50 (0,43 0,55)

0,24 (0,22 0,35) 0,71 (0,57 0,80) . L 94(74 96) , 15-16 5 6 ; 128

(110 134) . L 6,80 (5,52 8,21) 0,84 (0,65 1,0). E , (F. 3).E 0,056 (0,052 0,060)

0,031 (0,027 0,035) (F. 4).Localización: I .

Holotipo macho: C. PAS-FCB N° 257

1

2

3

4

Figuras. (1) Mediorhynchus peruensis nov. sp. Ejemplar adulto. (2) Proboscide armada de ganchos y espinas. (3) Parte posterior de unmacho. (4) Huevos.



301

Nueva especie de m ediorhynchus (Acanthocephala, Gigantorhynchidae)

Rev. peru. biol. 18(3): 299 - 302 (D 2011)

Alotipo hembra: C. PAS-FCB N° 258

Paratipos: C. PAS-FCB N° 259 -

Discusión

E Mediorhynchus V C, 1916 (G-) q ; S K (1977) P-k (1958) , , , , .

E 41 Mediorhynchus (G 1994, S 2002). (1924) , M. oswaldo-

cruzi , 1923 urdus ., M. pintoi ,1923 Nothura . M. emberizae (R1819) ; P R (G 1994). L

Mediorhynchus P M. pauciucinatus D (1959) Saltator albicollis peruvianus Cj.

L q q q j q M. pintoi , M.emberizae M. oswaldocruzi ( 1).

L Mediorhynchus peruensis . .

x ñ (5,52 — 8,21) q M. pintoi (4,4) M. emberizae (4,0 — 5,0); ñ .

E ñ (F. 2), Mediorhyn-chus peruensis . . (0,57 — 0,78) q

M. pintoi (0,34) M. oswaldocruzi (0,43); , 74 — 96 de M. emberizae M. oswaldocruzi q 132 120 . L M. pauciuncinatus (74 — 96) ñ (109 — 135) 56q 25; 19,5 11. q ñ (0,052 — 0,06) q M. pintoi (0,076) q

M. oswaldocruzi (0,048).

P .

Agradecimientos

A D. J L V G U S A A C, , I. CPñ (U. F V) .

Literatura citadaBlancas F. 1959. Comunidades y Campos de vida de Acolla y sus

alrededores, (Prov. Jauja, Dpto. Junín) con estudio espe-cial de vertebrados. Mem. Mus. Hist. Nat. Javier PradoN° 7, 160 pp.

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Brasil yPuerto Rico

Brasil Perú

M . e m b e r i z a e

M . o

s w a l d o c r u z i

M . o

s w a l d o c r u z i

M

. p i n t o i

M

. p i n t o i

* * M . p

a u c i u n c i n a t u s

M . p e r u e n s i s n . s p

Hospedero Icteridae Turdidae Tinamidae Cardinalidae Turdidae

Estructuras (mm)

Cuerpolargo 20 — 55 35 35 70 20 11,5 14,0 — 21,0

ancho 1 — 1,5 0,87 0,77 1,5 1,5 0,5 1,52 — 2,1

Lemnisco 4 — 5 6,5 6,5 4,4 4,4 ——— 5,52 — 8,21

Probóscidetotal

largo ——— 0,43 0,43 0,34 0,34 ——— 0,57 — 0,78

ancho* ————— 0,26 0,26 0,34 0,34 ——— 0,57 — 0,80

Receptáculo Probóscide 0,4 ——— ——— ——— ——— ——— 0,61 — 0,85

Huevo(diametro)

mayor 0,06 – 0,068 0,048 0,076 0,076 ——— 0,052 — 0,06

menor 0, 04 — 0,05 0,021 0,044 0,044 ——— 0,027 — 0,035

Número de ganchos 132 120 120 72 72 56 74 — 96

Números de espinas ————— ——— ——— ——— ——— ——— 110 — 134

Tamaño de los ganchos (µm) 53 78 37 122 78 25; 19,5 y 11 109 — 135

Tabla 1. Comparación morfométrica de las hembras de diferentes especies de Mediorhynchus

** Único individuo hembra inmaduro

* Probóscide posterior



302

Moya et al.

Rev. peru. biol. 18(3): 299 - 302 (D 2011)

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303

Aspectos estructurales y cuantitativos del ovario de F ulica armillaTa

Rev. peru. biol. 18(3): 303 - 309 (D 2011)


Aspectos estructurales y cuantitativos del ovario de Fulica armillata (Aves: Rallidae)

Mirian Bulfon y Noemí Bee de Speroni

Structural and cuantitative aspects of the ovary of the Fulica armillata (Aves: Rallidae)

Cátedra de Anatomía Comparada.Facultad de Ciencias Exactas,Físicas y Naturales. UniversidadNacional de Córdoba. Avda. VélezSárseld 299.Córdoba, CP. 5000.República Argentina.

Email Mirian Bulfon:[email protected].


Resumen

Se estudiaron los aspectos morfohistológicos y cuantitativos del ovario de Fulica armillata durante la fase derecrudescencia gonadal. Se utilizaron 5 hembras adultas. El análisis morfohistológico reveló la presencia denumerosos folículos en diferentes estadios de desarrollo y regresión. El epitelio simple de células granulosascaracterizó a los ovocitos primordiales y el pseudoestraticado a los folículos previtelogénicos, ambos tiposfoliculares exhibieron un notorio cuerpo de Balbiani. En los folículos vitelogénicos blancos y amarillos (> de 1mm) se evidenció una compleja pared folicular formada por la zona radiada, el epitelio folicular estraticado ylas envolturas tecales bien delimitadas, mientras que, en los vitelogénicos amarillos (> de 3 mm) fue observadoun epitelio simple con células cúbicas muy basólas. Se identicaron dos tipos de atresia folicular: 1) paredfolicular intacta o no bursting , la involución se realiza en el interior del folículo, comprende a la atresia lipoidal(Ovocitos primordiales) y lipoglandular (folículos previtelogénicos y vitelogénicos pequeños) y 2) atresia por

ruptura de la pared o bursting con extrusión del contenido ovoplásmico (folículos vitelogénicos > 1 mm). Elanálisis cuantitativo reveló una diferencia signicativa (p <0,05), entre los folículos en desarrollo (< de 2 mm)y los folículos mayores e idéntica diferencia entre lo folículos atrésicos pequeños (lipoidales y lipoglandulares)y los folículos bursting. Los procesos de crecimiento y diferenciación (foliculogénesis y vitelogénesis) y el deatresia folicular se desarrollan normalmente durante la fase de recrudescencia gonadal, contribuyendo a lahomeostasis del ovario de esta ave.

Palabras clave: Ovario; estructura; morfometría; foliculogénesis; vitelogénesis; atresia folicular.

Abstract

Morfohistologic and quantitative aspects were studied of the ovary of the Fulica armillata during gonadal recrudes-cence phase. Were used 5 adult females. Morfohistologic analysis revealed the presence of numerous folliclesat different stages of development and regression. The simple epithelium of granulosa cells characterized theprimary oocytes and the pseudostratied granulosa cells the previtellogenic follicle, both types showed a markedBalbiani body. In the white and yellow vitellogenic follicles > 1 mm evidenced a complex follicular wall formed bythe radiated area, stratied follicular epithelium and well-dened thecal enveloped, while the vitellogenic yellow

> 3 mm, was observed a simple epithelium with basophilic cuboidal cells. We identied two types of follicular atresia:1)intact follicle wall or non-bursting, the involution takes place inside the follicle,comprising the lipoidalatresia (primary oocytes) and lipoglandular (previtellogenic and vitellogenic follicles small), 2) atresia by wallrupture or bursting (vitellogenic follicles> 1 mm), extrusion of the yolk. Quantitative analysis revealed a statisti-cally signicant difference (p <0,05) among the developing follicles <2 mm and larger follicles and the samedifference between the small atretic follicles (lipoidal and lipoglandulares) and bursting follicles. The processesof growth and differentiation (folliculogenesis and vitellogenesis) and follicular atresia develop normally duringthe gonadal recrudescence, contributing to the homeostasis of the ovary of this bird.

Keywords: Ovary; structure; morphometry; folliculogenesis; Vitellogenesis; follicular atresia.

Introducción

L , , , x, ; , , , . L q (D 1976).

E j, - . E , ,

. E , q x - . L

(C G1979, G 1989, Mkw K 2006).

B B S (2003, 2009) B (2008) Spheniscus magellanicus, Myiopsitta monachus, Himantopus melanurus.

As q Columba maculosa maculosa (M 2007), Zenaida auriculata (B 2008) y Columbina picui (A . 2009).

E ,

j . E q q . S (G



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Bulon & Bee de Speroni

Rev. peru. biol. 18(3): 303 - 309 (D 2011)

. 1981, 1983, H 1985, G M 1986, F .1988, G 1989, B B S 2001, 2003,B 2008, Mkw 2006, C . 2008, B B S 2009).

E q, , jFulica armillata . E j . V j j , . N 4 7 (N I 1980).

E j , , q - .

Materiales y metodosEjemplares.- C Fulica armillata

(V) A C (33º07’52”S,63º35’05”W), C, R A, ñ 2009 2010. E , N (H 7, 4%) .L Bursa de Fabricius , (W 1959).

Histología.- L j H 7,0 . L 6 µ

x M (R 1928). L B B S (2003).

Histomorometría.- D xj 10 - (FD) (FA), w IJ 1.4 (://w../j/x.). E 80 L C Nk D S DS -F1

Nk E 50. Análisis estadístico.- S j

. L (ANAVA). P k. U <0,05, (P I 2011).

Resultados

Aspectos morológicos

E F. armillata

q q - .D q , (F. 1).

Características histológicas del ovario

E , O -, , q , , (F. 2).

L (60 100 µ ), . L .

Figura 1. Norma ventral del ovario en fase de recrudescencia. Sedestacan los folículos ováricos en diferentes estadios de desarrolloy diferenciación. Barra: 1 cm.

Figura 2. Vista general del ovario. En la corteza se observan cordo-nes de O.P, F.P.V y F.V.B y en el estroma medular numerosos vasossanguíneos (V.S).Tinción: Hematoxilina Eosina. Barra: 250 µm.



305


Rev. peru. biol. 18(3): 303 - 309 (D 2011)

E ( lampbrush.(F. 3).

Folículos en desarrollo.- E , (100 1000 µ ) q - , . E B .

L (1000 2000 µ -), x . S - ñ (F. 4).

A q (> 2 ), , q - . E . S 4 5 (> 5 )

( 13 17 ).S . E

ñ - . A posteriori , , q q . E q . L - . (F. 5).

Estroma medular.- E j q x - . (F. 2)

Folículos atrésicos.- D , , F. armillata . E

- , . L - x :

1) Atresia no bursting : in situ , :

1a) Atresia lipoidal: . L

, q . P “j” q .(F. 6).

Figura 3. Ovocito Primordial. Las células foliculares (C.F) se dispo-nen en una capa simple y en el ovoplasma (O) se localiza el cuerpovitelino de Balbiani (c.B); N: núcleo. Tinción Hematoxilina-Eosina.

Barra: 25 µm.

Figura 4. Pared folicular de un FVB < 2 mm. Epitelio folicular estrati-cado; (C.F) células foliculares; teca interna (T.I); teca externa (T.E);(O) ovoplasma. Tinción Hematoxilina-Eosina. Barra: 16 µm.

Figura 5. Folículo postovulatorio (FPO) con aspecto de un sacoaplanado. Se observan las envolturas tecales (E.T), muy engrosadas,escasas células luteales (C.L) y abundante irrigación en el interior del folículo. (V.S) vasos sanguíneos. Tinción Hematoxilina - Eosina.Barra: 0,25 mm.



306


Rev. peru. biol. 18(3): 303 - 309 (D 2011)

1b) Atresia lipoglandular: E 1500 2000 µ. E - . E . L -, q (F. 7 8).

E , - M,

q x . A q ñ qñ .

2) Atresia por ruptura o bursting : E , qñ (2 ) . L x x .

A bursting

Figura 6. Ovocito Primordial Atrésico (OPA). Gran cantidad devacuolas (v) distribuídas en el ovoplasma (O) rodean al núcleo (N).Las echas indican el desprendimiento de las células foliculares dela membrana basal. Vaso sanguíneo (V.S). Tinción Hematoxilina -

Eosina. Barra: 25 µm.

Figura 7. Folículo previtelogénico atrésico. Se observa el desprendi-miento de las celulas foliculares (C.F) de la membrana basal (echas)y la vacuolización del ovoplasma. N (núcleo); cB (cuerpo vitelino deBalbiani; E.T (eenvolturas tecales). Tinción Hematoxilina - Eosina.

Barra: 60 µm.

Figura 8. Atresia lipoglandular. En el folículo vitelogénico se visualizauna marcada hiperplasia de las células foliculares (C.F). Envolturastecales (E.T) engrosadas y abundante irrigación, (V.S) vasos sanguí-neos. Ovocito primordial (O.P). Hematoxilina - Eosina. Barra: 0,4 mm.

Figura 9. Atresia bursting. En el folículo vitelogénico amarillo, sedestaca la zona de ruptura (echas) por donde se libera el vitelo. V(vitelo); C.F (Células foliculares); E.T (envolturas tecales); Hematoxi-lina - Eosina. Barra: 0,4 mm.



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Rev. peru. biol. 18(3): 303 - 309 (D 2011)

q . P x - qñ, x . L ,

-. L x, qñ . L , M, q, , . F , q (F. 9 10).

Análisis cuantitativo y estadístico

L (48% ± 4,30), - (23% ± 3,80) (16% ± 3,30) , 2 4 (8,5% ± 2,60) 4 (5,5% ± 1,90) q . L - (F. 11).

L j (37,60% ± 15,90), (49% ± 3,20) bursting (13,40% ± 1,80). L , q, bursting ,

(F. 12).Discusión

E F. armillata - q,

, x - ñ q .

E , j . L . E , - , j

Figura 10. Folículo atrésico bursting . Espacios lacunares (E.L) enlas proximidades del folículo (F.A), conteniendo abundante vitelo (V).Hematoxilina - Eosina. Barra: 0,45 mm.

a

ab

ab

b

b

OP FPV FVB FVA FVA //

0,00

11,00

22,00

33,00

44,00

55,00

P o r c e n t a j e

s

Figura 11. Variaciones porcentuales de los folículos ováricos endesarrollo de F.armillata durante la recrudescencia gonadal. N = 20.Las barras representan (x ± DS).Letras distintas indican diferenciassignicativas (p<=0,05).

a

a

b

Lipoidal lipoglandular bursting

Tipos de atresia

0,00

11,00

22,00

33,00

44,00

55,00

P o r c e n t a j e s

Figura 12. Variaciones porcentuales de los folículos atrésicos deF.armillata durante la recrudescencia gonadal. N = 20. Las barrasrepresentan (x ± DS). Letras distintas indican diferencias signica-tivas (p<=0,05).



308


Rev. peru. biol. 18(3): 303 - 309 (D 2011)

. A, x - , q . E Gallus domesticus

(W 1985, G 1989, E 1990). L , ñ . E F. armillata 4 5 x

jq ñ posteriori .

L , G. domesticus (G . 1981, 1983, E 1990), Anser anser ( F . 1988, Kk . 1992)

Passer domesticus (G C 1976), Columbalivia (G 1989), Spheniscus magellanicus (B B S 2003 ), Struthio camelus (Mkw K2006), Columbina picui (A . 2009).

E F. armillata , - , .

A j j q -;

.C -

, F. armillata, - .

L - Passer domesticus (G C1976), Zonotrichia leucophrys gambelii (K 1972), Columbalivia (G 1989), Struthio camelus (Mkw K

2006), Nothura maculosa (C . 2008), Vanellus chilensis e Himantopus melanurus (B B S 2009).

E 2 F. armillata bursting . A, . L q , x .

N K (1996) q,

G. domesticus bursting de q .

L F. armillata - (H 1985, G M 1986, G . 1988, G 1989, B B S 2003, 2009, Mkw K 2006, C . 2008).

E q ñ bursting (

) F. armillata, q qñ j , q bursting - .

D q, - F. armillata, q - .

Agradecimientos

L D. M H S , P. JD j SECY- UNC. R-214/10 j.

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311

Vocalizaciones de p laTalina g enovensium

Rev. peru. biol. 18(3): 311 - 318 (D 2011)


Análisis de las vocalizaciones del murciélago longirrostro peruanoPlatalina genovensium Thomas, 1928 (Chiroptera: Phyllostomidae)

Juan A. Malo de Molina1, Sandra Velazco2, Víctor Pacheco2,3 y Juan Carlos Robledo4

Analysis of vocalizations of Long-snouted Bat Platalina genovensium Thomas,1928 (Chiroptera: Phyllostomidae)

1 ECONIMA, Consultoría Ambien-tal. Batalla de Bailén, 24, 28400Madrid, España.

[email protected]

2 Departamento de Mastozoo-logía, Museo de Historia Natural

– UNMSM. Aptdo. 14-0434, Lima14, Perú.

3 Instituto de Ciencias Biológicas“Antonio Raimondi”, Facultad deCiencias Biológicas de la Uni-versidad Nacional Mayor de SanMarcos. Lima 1, Perú.

4 DBBASICO. Avda. Toledo 31, 3ºP, L22. 45600 Talavera de la Reina(Toledo, España).


Resumen

Se presentan los primeros datos sobre las emisiones acústicas del murciélago longirrostro peruano Platalina genovensium , siendo este el primer estudio que se publica sobre análisis de los ultrasonidos emitidos por murciélagos en el Perú. Las emisiones acústicas analizadas fueron grabadas de individuos volando en condi-ciones de connamiento dentro de sus propios refugios, en dos localidades relativamente próximas a la ciudadde Lima. La señal acústica de P . genovensium está compuesta por pulsos de 1,30 ms de duración media, enfrecuencia modulada, de niveles sonoros extremadamente bajos (aprox. -10 a -35 dB a 1 m de distancia), ensecuencias de 12,90 pulsos/segundo, con ancho de banda promedio de 28,58 kHz, discontinuo, con interpulsopromedio de 67,56 ms y con máxima energía en 89,21 kHz. Presentan además un armónico en frecuenciassuperiores a190 kHz. El uso de la Transformada de Fourier para Señales Discretas y el posterior Análisis dela Distribución de Energía en bandas de frecuencia han permitido establecer una ecuación predictiva sobre eltiempo de duración del pulso en función de las bandas 70-80 kHz, 90-100 kHz y 110-120 kHz. Aumentos de

un 4% de la Energía en la banda de 110-120 kHz implican una disminución de hasta 0,2 ms en la duracióndel pulso, mientras que el mismo aumento en las bandas de 70-80 y 90-100 kHz incrementan 0,1 ms dichaduración. Esta ecuación de predicción podría ser de utilidad para la identicación de la especie, su monitoreo,y servir de base para conocer cómo P. genovensium adapta la emisión energética en sus bandas de frecuenciaevitando que pulso y eco se solapen y enmascaren la señal emitida.

Palabras clave: Platalina genovensium , Phyllostomidae, Lonchophyllinae, Emisiones acústicas, Vertienteoccidental del Perú, Transformada de Fourier.

Abstract

This paper presents the rst data on vocalizations of the Long-snouted Bat Platalina genovensium. It is also therst published study on ultrasound analysis of any bat from Peru. The recordings of vocalizations were obtainedfrom ying bats while in their roosts. These roosts were found in two locations near the city of Lima. Eachecholocation call was composed of FM fast pulses of 1.30 ms of extremely low intensity (-10 to -35 dB one maway from the recording device), in sequences of 12.90 pulses per second, with 28.58 kHz bandwidth in aver -

age, discontinuous, average interpulse of 67.56 ms, and an energy peak in 89.21 kHz. The pulses present aharmonic above 190 kHz. Both, Discrete Fourier Transform and Analysis of the Energy Distribution in frequencybands were used to obtain a predictive equation. This equation is able to predict duration call for 70-80 kHz,90-100 kHz, and 110-120 kHz energy frequency bands. So, if 110-120 kHz frequency band increases 4%, thenduration call decreases 0.2 ms, whereas if 70-80 y 90-100 kHz frequency band increases, then duration call alsodoes it in 0.1 ms. This equation can be used to identify and monitor this species. It also allows us to determinehow P. genovensium adapts its energy frequency bands in order to avoid overlap between pulse and echoes.

Keywords: Platalina genovensium , Phyllostomidae, Lonchophyllinae, Acoustic signals, Western slope of Peru,Fourier transform.

Introducción

E Platalina genovensium

L(Gf 1982) (M A 2004) UICN ñ 2008 (P . 2008) q ,q q 30% 10 ñ.UICN q x x . E ñ j (Z-P .2001). E ñ , ; SW P 0,0684 /k2

(S 1995, S B 1996). L q -

(G 1987,E R 1999, S 1995).

S .S q j (M. A, . .).Ex j. P j , ñ (S. V,. .) 10 ,q q 50 j (S B 1996).

E P (P) (A A 2007) (C)

(G . 1999). S Neoraimondia arequipensis , Corryocactus bre-vistylus (A A 2007), Weberbauerocereus weberbaueri (S 1995 1996) Stenocereus thurberi (S 2001),



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Malo de Molina et al.

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q . P , P. genovensium - , x q, q ( H H1999, H . 2003, S . 2006).

L L, q Platalina, G Gf (1982) q q ; , G , q ñ (H . 2003).

L P, q

Platalina, , q q ; q M, Y, R, N H Y ( .2002, V . 2010). P. genovensium, q q, -, , q (M . 1999).

E j j P. genovensium. E q

P. S - . E , P,

q (A BØ 1999, R

J 2002). E .

Área de estudio

E j 2010 C C, L, P (F. 1). A (-S) 800 2100 . E 2000 , q (C . 2001, N .2005). L C 18 °C 125 , q C (36 /ñ) (N . 2005). A q P, , , q (C

. 2001). A P. genovensium.

Reugio de Acos

S C, A, S M A, H, L, P. E 1571 , 11˚16’25.62”S; 76˚49’16.13”W. E - Neoraimondia arequipensis q

P. genovensium (F. 2). D 20 2010 ( ) 3 j: j, , (F. 3). E , , x.

Reugio de Santa Rosa de Quives

E 1320 , - 11˚40’07.99”S 76˚46’45.39”W, SR Q, S R Q,

Figura 1. Ubicación de las localidades del estudio de vocalizaciónde Platalina genovensium en el departamento de Lima: 1 = Refugiode Acos, 2 = Refugio de Santa Rosa de Quives.

Figura 2. Hábitat de Platalina genovensium en una comunidad decactáceas de Neoraimondia arequipensis en la localidad de Acos,departamento de Lima.



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C, L, P. E qñ 5 2,5 4 , - . L j qñ q q C.E 9 2010 j, .

Material y métodos

E j , , ñ -. S q . L

ñ (Signal Overlap Zone (SOZ) Distance O Focus (DOF)) .

Grabación de las señales de ultrarecuencia

U , q P. genovensium. S 20, . E A 30 -

j , q 12 . E S R Q 200 .

L .E q P.

genovensium q . N , q j q j .

P P- D240x, x . P q x q , P. genovensium; q x . C x ASCAM DR-08 PCM w 44,1 kH/16 /, . E q (.. R J 2002). P , 41 1,7 3,4 , x 17 34 x j - .

Análisis

L BS A. S j : D ,

, x, ( )( 1 2).

Figura 3. Dos ejemplares de murciélago longirrostro peruano,Platalina genovensium en el refugio de Acos. A la izquierda machosubadulto, con coloración gris plomo, y a la derecha ejemplar adulto,probablemente macho, de color pardo.

PromedioIntervalo de

Conanza (95 % )Mediana Mínimo Máximo Rango InterCuartil

Frecuencia de máxima energía (kHz) 89,21 88,66 - 89,75 89,42 86,90 91,20 1,91

Duración (ms) 1,30 1,25 - 1,34 1,30 1,10 1,50 0,10

Ancho de banda (kHz) 28,58 27,86- 29,29 28,41 26,12 32,18 2,11

Interpulso (ms) 67,56 52,93-99,08 55,97 32,46 138,61 31,73

Pulsos por segundo (N/s) 12,90 5,65-20,15 13,54 6,41 28,49 8,29

Tabla 1. Análisis descriptivo de las frecuencias que componen la señal acústica de Platalina genovensium : Promedio, Intervalos de Conanzacon un nivel de signicancia de 0,05, Mediana, Mínimo y Máximo y Rango entre Cuartil 25 y Cuartil 75.



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M ( ); q j . E q q x q (A 2003). D , q j P. genovensium .

S ñ P. genovensium M- 7.7., F

: dtetxF X

Ft

∫ ∞

∞−

− ∫ =π 2

)()(

L E F ñ - E P (O S1999) < 50K, 50-60kH, 50-60 kH, 60-70 kH, 70-80 kH, 80-90 kH, 90-100 kH, 100-110 kH, 110-120 kH, 120-130 kH > 130 kH. E P ñ

:

dF F X dt t x E

x

22

)()( ∫∫∞

∞−

∞

∞−

L . Mx ñ x j 15 B P.

genovensium (Skk M 2000).

L j - q :

UBV + 1,5*(UBV-LBV)

S UBV 75%, LBV 25% 1,5 outlier (k 1977).

E j; , - ñ P. genovensium , , , . E j . L x j Signal Overlap Zone (SOZ) (J H2007) q - . L ñ , , (R Dw 2003). C j j (Z1999). P S-Wk (S . 1968). F, q .

Resultados

L ñ P. genovensium , (F. 4). E 190 kH . C 50 120 kH, (F. 5).

E P. genovensium q

. E x 25-225 kH q j.

Intervalos deFrecuencia (kHz)

Test Shapiro-WilkNº

señalesMedia

(%)Mediana

(%)Intervalo de

Conanza (95%)Mín. (%) Máx. (%)

DesviaciónEstándar

CuartilSuperior

<50 W=0,90678, p<0,0554 20 1,86 1,63 (1,39- 2,33) 0,65 4,41 1,01 2,28

50 a 60 W=0,95431, p<0,4373 20 3,23 3,11 (2,73- 3,74) 1,47 6,13 1,08 4,00

60 a 70 W=0,93297, p<0,1761 20 3,67 3,35 (3,15- 4,19) 2,06 6,32 1,11 4,36

70 a 80 W=0,82480, p<0,061 20 5,56 4,66 (4,38- 6,74) 3,04 12,26 2,52 6,22

80 a 90 W=0,93252, p<0,1726 20 42,42 44,46 (39,53- 45,32) 28,26 52,11 6,19 46,30

90 a 100 W=0,96615, p<0,6724 20 27,11 27,61 (22,79- 31,43) 10,41 44,51 9,23 32,14

100 a 110 W=0,95888, p<0,5218 20 9,89 9,07 (8,67- 11,10) 5,89 15,43 2,60 11,86

110 a 120 W=0,95687, p<0,4833 20 4,24 4,09 (3,90- 4,57) 3,09 5,61 0,72 4,87

120 a 130 W=0,96387, p<0,6238 20 0,25 0,26 (0,21- 0,29) 0,12 0,41 0,08 0,32

>130 W=0,95519, p<0,4527 20 1,77 1,74 (1,68 1,87) 1,48 2,16 0,20 1,92

Tabla 2. Análisis descriptivo de la Distribución de Energía por Bandas de Frecuencia en porcentajes (%) para la señal acústica de Platalina genovensium . Test de Shapiro-Wilk para la comprobación de la asunción de Normalidad, Media, Mediana, Intervalos de Conanza con unnivel de signicancia de 0,05, Mediana, Mínimo y Máximo, Desviación estándar y Rango entre Cuartil 25 y Cuartil 75.



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L ñ Platalina genovensium 1,3 (F. 6) . L - F x 60, 90 110 kH F 7, q ñ Platalina genovensium

q .L F 6 7

P. genovensium. P ñ q (M 1, =0,999) ñ . P , 1 2, F 8 .

S ñ 1,3, 67,56 x 89,21 H ( 1). L N (S-Wk)

ñ ñ j ( 2).

Figura 4. Sonograma que muestra la Secuencia de pulsos característica de Platalina genovensium . Se aprecian interpulsos de duración variable.

Figura 5. Sonograma que muestra las bandas de frecuencia en un pulso característico de Platalina genovensium .

Figura 6. Oscilograma correspondiente a un pulso característicode la señal de Platalina genovensium . La duración de la señal es1,30±0,05 ms.



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Relación energía en bandas de recuencia con el tiempode duración de la señal

A A R Fw q - D-W (= 2,44) .

L M R q x 80 90, 90 100 110 120 kH(F= 5,451; <0,00893; R= 0,71; R²= 0,51) , F 9.

L 110 120 kH. U P. genovensium.

A q 110 120 kH, P. genovensium Signal Overlap Zone (SOZ) ñ Distance O Focus (DOF) (H . 2006).

Figura 7. Espectrograma de la señal discreta de Platalina genovensium mediante la Transformada de Fourier en tiempo discreto (DTFT) de –F/2 a F/2. Se puede observar cómo aparecen armónicos en frecuencias próximas a los 220 kHz con un aumento en la amplitud de la señal.

kHz

<50 50 -60 60 -70 70- 80 80 -90 90 -100 100 -110 110 -120 120 -130 >1300

10

20

30

40

50

Figura 8. Representación de la Media ± Desviación Estándar y Media ± Error Estándar. Como puede observarse en la gura la Concentraciónde la Energía se centra entre 80 kHz y 100 kHz, representando prácticamente el 70% de la Energía de la señal de Platalina genovensium .

t = 1,143 + 0,0196 * (E 70-80 kHz) + 0,0106 * (E 90-100 kHz) – 0,0559 * (E 110-120 kHz)

(0,16) (0,011) (0,0031) (0,021)

Figura 9. Ecuación predictiva del tiempo de duración del pulso a través de los porcentajes de energía en las bandas de frecuencia signicativasdel modelo (70-80, 90-100 y 110-120), error standard de intercepto y de los coecientes predictivos de la regresión.



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Discusión

A q P L, Glossophaga soricina Artibeus raterculus (J. A. M M, . .), P. genovensium x- , P (F . 1992),

q (0,5-3 ) , , ( H . 2003). E, P. genovensium q j 3 , q , adarida brasiliensis , j, - 40 (J. A. M M, . .). N , ñ Platalina genovensium q -

de visu. P q .

E q L q , Bw . (1997) G, . A q P -, x (K Kk 2005, H H

2003). E, , j q P. genovensium . E Gf (1958), q (M . 2006). Hw (1974) , q -, whispering bats , ñ 50 q .

E M, P-

, j ñ (Kk 2004). N , , j Desmodus rotundus (S . 1991), Carollia perspicillata (K . 2003, S 2002), Lophostoma, Micronycteris ,Chiroderma, Artibeus (Kk 2004, J . 2004) Glos-sophaga, Anoura Leptonycteris (Hw 1974, H . 2003). A ñ Platalina .

Agradecimientos

N C S j . U K

B , j.

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Nuevos registros de asteroideos (Echinodermata: Asteroidea) de Perú

Rev. peru. biol. 18(3): 319 - 324 (D 2011)


Tres nuevos registros de asteroideos (Echinodermata: Asteroidea)de Perú

Yuri Hooker1,2 y Francisco A. Solís-Marín3

Three new records of asteroids (Echinodermata: Asteroidea) from Peru

(1) Laboratorio de Biología Marina,Facultad de Ciencias y Fisiología,Universidad Peruana CayetanoHeredia. Av. Honorio Delgado 430,Urb. Ingeniería, S.M.P. Lima - Perú.Email: [email protected]

(2) Unidad Marino Costera, ServicioNacional de Áreas Naturales Pro-tegidas por el Estado (SERNANP),Ministerio del Ambiente, Perú.

(3) Colección Nacional de Equi-nodermos, Instituto de Cienciasdel Mar y Limnología, UniversidadNacional Autónoma de México.


Resumen

En el presente trabajo se registran 3 nuevos asteroideos (Echinodermata: Asteroidea) de aguas someras(4 - >50 m) para el Perú: Astropecten regalis Gray, 1840, Paulia horrida Gray 1840 y Meyenaster gelatinosus (Meyen, 1834). Astropecten regalis se conocía desde el Golfo de California hasta Panamá, en el presentetrabajo, se amplía su distribución hasta Máncora, Perú. La distribución geográca de Paulia horrida era cono-cida desde Baja California, hasta Isla Cocos, Costa Rica, en este estudio se amplía su distribución geográ-ca hasta Punta Sal, Perú. A Meyenaster gelatinosus se le conocía solo de Chile, en el presente trabajo seregistra y conrma su presencia en el Perú, ampliando su distribución norte hasta San Juan de Marcona. Seproporciona información morfológica de las especies, características del hábitat y fotografías in situ y de losespecímenes recién recolectados.

Palabras clave: nuevos registros, estrellas de mar, Perú.

Abstract

The aim of this work is to present three new shallow water (4 - >50 m) records of asteroids (Echinodermata:Asteroidea) for the Peruvian fauna: Astropecten regalis Gray, 1840, Paulia horrida Gray 1840 and Meyenaster gelatinosus (Meyen, 1834). Astropecten regalis geographical distribution is known that ranges from Gulf ofCalifornia to Panama, this discovery extends its distribution to Mancora, Peru. Paulia horrida is known fromBaja California to Isla Cocos, Costa Rica, and this record extends its southern distribution limit to Punta Sal,Peru. Meyenaster gelatinosus was considered endemic to Chilean waters, however, this record conrm itspresence in Peru extending its northern distribution limit to San Juan de Marcona, Peru. Morphological andhabitat information on this four species is provided, together with live pictures.

Keywords: new records, sea star, Peru.

Introducción

L q, ,

P. L j Ck (1910), M (1956), Hk . (2005), P G(2006) P (2010) q P x . O - (A 1881, D 1941,1958, B Gk 1999).

E . Hw .

(2003) 3 : , -/ñ . L (G Zx 2008, H . 2005).

L P q q , j P O- P S O .

Material y métodos

S SCUBA . L in situ, - . L ,

. U Astropecten regalis

() . , x Paulia horrida, j 24 , j - . P . horrida j 96% 70%. L C Z A (CZA) UP C H IMARPE. L R “” .

, x- j Meyenaster gelatinosus q

B. M R.Resultados

S P Meyenaster gelatinosus (M, 1834), Paulia horrida G 1840, Astropecten regalis G, 1840 Luidia superba Ck, 1917.

Clase asteroidea

orden Paxillosida Perrier, 1884Familia astroPeCtinidae Gray, 1840

Astropecten regalis Gray, 1840

F 1

Material examinado: 2 : 1 (CZM-58), R= 51 , I A, (3°29’20,67”S 80°23’14,85”W) 1 (CZM-



320

Hooer & Solís-Marín

Rev. peru. biol. 18(3): 319 - 324 (D 2011)

Figura 1. Astropecten regalis : A. Espécimen vivo en regeneración (CZM-58); B. Espécimen desecado (CZM-59); C. Placas súperomargina-les; D. Supercie abactinal del brazo; E. Placas ínferomarginales y surco ambulacral; F. Madreporito rodeado de espinas paxilares; G. Boca,

espinas orales y ambulacros.



321


Rev. peru. biol. 18(3): 319 - 324 (D 2011)

59), R= 53 , M (4°6’36,95”S 81°3’55,60”W).

Caracteres diagnósticos: C , , , x. D x , 1 8

12 . P , , . P , , x, . B . M, q .

Color: Aj , .

Hábitat: E , . S ñ

P ( 50 ).Distribución: C G C P-

(C 1979). S M,P.

orden ValVatida Perrier, 1884Familia asterodisCididae rowe, 1977

Paulia horrida Gray 1840

F 2

Material examinado: 1 (CZM-62) R= 84 ,

P S (03º56’32’’S 80º56’46,3’’O) 33 .

Caracteres diagnósticos: D , ; 5 , -. F (), . S , qñ. P (F 3B). S , qñ, , , x

, .Color: j .

Hábitat: 33 , - .

Distribución: S P S E, E I G (Ck 1910), S(Bj C), I C I C (A. M. Ck 1993), P S, P.

orden ForCiPulatida Perrier, 1884Familia asteriidae Gray, 1840

Meyenaster gelatinosus (Meyen, 1834)

F 3

Material examinado: 2 : 1 (UPCHCZM-56) R= 141 , 5 2008 E A, S J M (15°23’26,02”S -75°10’45,02”W) 19 ; 1 , R= 185, P P, , 2006 (R:M R).

Caracteres diagnósticos: 5 6 ( 6).

Eq () , . B , . E j , .P , ; .

Color: , . U j -.

Hábitat: x. S 4 19 .

Distribución: A C,

H. L. Ck (1910) P. E j P, S J M.

Observaciones

Mk M (2009) q Meyenaster gelatinosus P M(1956). A , P , , M. gelatinosus P q

. E .E H. L. Ck (1910) “T E

P”, , q P . E Paulia horrrida Rw (1977) P - , H. L. Ck (1910), q .

A, P.horrida P , q q j P. E

, , .

L j q - P q S N ÁN P, P S, Paulia horrida, q .

Literatura citadaAgassiz A. 1881. Report of the Echinoidea dredged by the H.M.S.

Challenger during the year 1873-1876. Zool. 3(9): 1-321.Bluhm H. & A. Gebruk. 1999. Holothuroidea (Echinodermata) of the

Peru Basin - Ecological and Taxonomic Remarks Based onUnderwater Images. Mar.Ecol., 20(2): 167-195.



322


Rev. peru. biol. 18(3): 319 - 324 (D 2011)

Figura 2. Paulia horrida : A. Espécimen in situ ; B. Espinas superomarginales esféricas; C. Madreporito, espinas abactinales y pápulas; D.Espécimen desecado; E. Boca, ambulacros y espinas interambulacrales ; F. Supercie actinal.



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Rev. peru. biol. 18(3): 319 - 324 (D 2011)

Figura 3. Meyenaster gelatinosus : A. Adulto in situ ; B. Juvenil in situ ; C. Espécimen desecado; D. Boca, espinas orales y surcos ambula-crales; E. Espinas carinales y marginales rodeadas de cogines de pedicelarios, se observa poros y pápulas; F. Madreporito.



324


Rev. peru. biol. 18(3): 319 - 324 (D 2011)

Caso M.E. 1979. Los Equinodermos de la Bahía de Mazatlán,Sinaloa. An. Cent. Cienc. Mar y Limnol. UNAM. México.6: 197-368.

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325

Actividad ermentativa de h ansenula anomala y compuestos uímicos de importancia sensorial

Rev. peru. biol. 18(3): 325 - 334 (D 2011)


Estudio de la actividad fermentativa de Hansenula anomala yproducción de compuestos químicos de importancia sensorial

Waldir Estela Escalante1,4, Mojmír Rychtera1, Karel Melzoch1, Elena Quillama Polo2yBeatriz Hatta Sakoda3

Study of the fermentative activity of Hansenula anomala and production ofchemical compounds of sensory importance

1Department of FermentationChemistry and Bioengineering,Faculty of Food and BiochemicalEngineering. Institute of ChemicalTechnology Prague. Technická 5,166 28. Praha 6, Dejvice. CzechRepublic.

Email:[email protected]

2Laboratorio de MicrobiologíaIndustrial, Facultad de CienciasBiologicas, Universidad NacionalMayor de San Marcos. Apartadopostal 110058, Lima 11, Perú.


3Facultad de Ingeniería de Indus-trias Alimentarias, UniversidadNacional Agraria La Molina. Av. LaMolina s/n, La Molina, Lima, Perú.


4Laboratorio de BiotecnologíaAgroindustrial, Escuela de Inge-niería Agroindustrial, UniversidadNacional Micaela Bastidas deApurímac. Av. Arenas 121, Aban-cay–Apurimac, Perú.


Resumen

Se ha estudiado la actividad fermentativa de Hansenula anomala RIVE 7-1-5 con el objetivo de evaluar laproducción de compuestos químicos de importancia sensorial. Los resultados mostraron que fermenta bienmonosacáridos y también sucrosa y maltosa. Su actividad fermentativa es inhibida a concentraciones de100,0mg/L de metabisulto de sodio en el medio. Además, es capaz de producir 5,81±0,1 % v/v de etanol. Laagitación del medio de cultivo incrementa la producción de alcoholes superiores (679,2 mg/L) y etil acetato(206,0±8,0 mg/L), por el contrario disminuye la producción de ácido acético (196,0±7,0 mg/L). La producción deglicerol fue similiar tanto en cultivo estático (sin agitación) como agitado. Durante el cultivo batch en biorreactora condiciones aireadas la tasa de crecimiento (µ) alcanzó el valor de 0,13 h -1 y se observó la producción deácido acético hasta 4,2±0,3 g/L. La concentración de oxígeno en el medio afecta su metabolismo, así cantidadesinsucientes de oxígeno provocaría un metabolismo respirofermentativo con la producción de etanol, alcoholessuperiores, ésteres y ácido acético. El control de la aireación al medio de fermentación es una herramientaútil para controlar el balance entre la actividad respiratoria y fermentativa y así la síntesis de compuestos deimportancia sensorial en la producción de bebidas fermentadas no tradicionales.

Palabras clave: Hansenula anomala , fermentación alcohólica, alcoholes superiores, etil acetato, cultivo por lote.

Abstract

The fermentative behaviour of Hansenula anomala RIVE 7-1-5 was studied in order to evaluate the productionof chemical compounds of sensory importance. The results demonstrated that the strain ferments very wellmonosaccharides and also sucrose and maltose. Its fermentative activity was inhibited at concentrations of 100mg/L of sodium metabisulphite in the medium. Furthermore, it was able to produce 5,81±0,1% (v/v) of ethanol.Agitation of the culture medium increases the production of higher alcohols (679,2 mg/L) and ethyl acetate(206,0±8,0 mg/L), but on the contrary affects the production of acetic acid (196,0±7,0mg/L). Glycerol productionwas similar in static (without agitation) and shaken cultivation. During batch cultivation carried out in biorreactorunder aerated conditions the growth rate (µ) reached value of 0,13 h-1 and, it was also observed production ofacetic acid at levels of 4,2±0,3 g/L. The oxygen concentration in the medium affects its metabolism, thus insuf-

cient amounts of oxygen would provoke a respirofermentative metabolism with production of ethanol, higher alcohols, esters and acetic acid. The control of aeration during fermentation is a useful tool to control the balancebetween the respiratory and fermentative activity and thus; synthesis of compounds of sensory importance inthe production of non-traditional fermented beverages.

Keywords: Hansenula anomala , alcoholic fermentation, higher alcohols, ethyl acetate, batch cultivation.

Introducción

Hansenula anomala Pichia -Saccharomyces q - q q q (T 1993). S ,

q q (F 1992).P j, Hansenula anomala “ ” V (D . 2006). A “kj”, C , (S C 1970).

Hansenula anomala , j j- (kk . 1992) j x (N 1984). H. anomala

q , q x 56% ( 3 4 )

(F H 1993; j .2001). S, Saccharomyces cerevisiae - (R-G 1985).

Metabolismo de azúcares en Hansenula anomala.- L . Hansenula anomala q , , k . E (Kk 1996, F . 2000).L , x , H ( Djk . 1993, B 1993, G . 2002). Hansenula anomala j H, j , (F

. 2002). A, q x . E C , x-, q (D Dk 1966,).



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Escalante et al.

Rev. peru. biol. 18(3): 325 - 334 (D 2011)

D qñ , (D Dk 1966, F . 2004). A (F . 2004).

A -6- (50%) (30%) -

. A , x K, (F . 2004). L x , , . A , x -6- 10% K (F . 2004). E j Han-senula anomala

Saccharomycescerevisiae (G . 2001,Fx . 2003). C x x (F . 2004 ). L x - x q x (G S 1989).

Á , x (F . 2004 ).

E C

, - -CA K x ( Djk . 1993,G S 1989); q j x , -CA (P . 1989).L x (B 1964, Djk . 1993).L , j , -CA

x ( Djk . 1993), q .

L q (A . 1988). S , q (kk . 1992).

A , x NADH NAD+, q x

(NADH:NAD+

) NAD+ NADH (B A 1992; R . 1999).F,

x NADH (P H 1997).

E F 1 Hansenula anomala .

L -Saccharomyces j

x, S.cerevisiae (H . 2001). A x ( Djk 1993), x, (B 1993), x NADP- (J Bk 1974). E NADH (B 1993, B . 1996). E C x, - x CA -CA ( Uk . 1990, R . 2000). S , j x -CA q x ( Uk . 1990).

Figura 1. Metabolismo típico de levaduras Crabtree negativas comoHansenula anomala : Respiratorio (––) y respirofermentativo (----).1: Transporte de piruvato a la mitocondria, 2: Complejo piruvatodeshidrogenasa, 3: Piruvato descarboxilasa, 4: Alcohol deshidroge-

nasa, 5: Acetaldehído deshidrogenasa, 6: Acetil CoA sintetasa (ci-toplasmático), 7: Acetil CoA sintetasa (mitocondrial), 8: Transportede acetil CoA mediado por la vía carnitina. Formación de ésteres,9: Acetiltransferasa, 10: éster sintasa, (adaptado de Fredlund et al.2004a,b y van Dijken et al. 1993).



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Rev. peru. biol. 18(3): 325 - 334 (D 2011)

Eecto del etanol y sulfto en Hansenula anomala.- Hanse-nula anomala (K . 1995, F . 2002). E , , (S-C V U 1983, P . 2004, R . 2004).S q

. A , q xq, (Nw . 1977, D’A .1990, R . 2004).

E , x x, q (Nw Sk1976). E x

. E , -Saccharomyces (B 1979). L SO

2 H . E H

q , SO2, HSO-

3, SO=

3. E SO

2

x j H q - q (J L 2000).

L -, , j AP j H. L -

3- (M .1985). A , , (M . 1985).

Producción de compuestos sensoriales por Hansenula anomala.- Hansenula anomala . E (R . 1992, G 1999, P .2003). L (S1981),

. L q (M . 1991, Yk H

1984, M D 2000). E S.cerevisiae : (AA), (L .2000). L : CA + → CA + . A . L AA -CA (Fj .1994). P j,

CA (Yk H 1981).L AA S. cerevisiae j - (M . 1991, Fj . 1997). P

, q () S. cerevisiae . E (H P 1990, P .1998, Rj . 2002).

L Hansenula anomala S. cerevisiae . A, -

(Yk H 1981, Rj .2002). E . E x (k

J 1953, F . 2004). S , Rj .(2001) x . M q q qñ x-, q x(D . 1951, k J 1953). L

- (Hk Jk 1993). Hansenula anomala 2- (W 1999). D , . S , , j x , q x q - , 100% x 54 68% 8 17% (Nk Nk 1977). F, (Sw P 2005). D q q .S , .

L -Sacccharomyces . A j , j -

j (R S 1993). E

j - S. cerevisiae , (R . 1992, Z . 1993).

L α-, (, , , , .) E - (O . 1980, M . 1997). C 400 /L - (R M 1987). A x 2-

(R-G . 2006), 10 /L (R . 1983), (R M 1987, R-G . 2006).



328

Escalante et al.

Rev. peru. biol. 18(3): 325 - 334 (D 2011)

E Hansenula anomala RIVE 7-1-5 - q .

A , x

q .Material y métodos

Microorganismo.- S Hansenula anomala RIVE7-1-5 q I I V E, B-RE, x 7 C 3 .

Fermentación de azúcares y tolerancia al metabisulfto desodio.- E S 2% . L

, D. L 28 C 96 . E : 50,0 /L; KH

2PO

45,0 /L; MSO

4.7H

2O

0,4 /L; (NH4)2SO

42,0 /L x 1,0 /L. L -

(N2S

2O

5)

N

2S

2O

5 . E N

2S

2O

5 H

: 100 /L H 3,3; 150 /L H 3,65 200 /L H 4,24. E D CO

2 72 .

28 C .

Producción de etanol.- P q j , Sk .., ,R C. L . E j . E j 12,8% w/ H 3,8 -. L E 1 L 0,5 L . L 16 C 28 C. L - 200 -1 . L CO

2 q

, q - .

E . L E 200-1, 48 , 28 C. A, 14,0 % / . F, - . .

Síntesis de compuestos de importancia sensorial

Preparación de inóculo y condiciones de ermentación.- J (x) .L E 0,5 L 250 L .E

200 -1 8 , q 15 . L x 28 C.

L 100 L j 28 C 24 , 200 -1 . L (3000 -1 10 ) . L - 1,0±0,1 .

Cultivo batch en biorreactor .- C

j R 13% H 3,8. L q F-CZ,P, R C. L x, j 10 L 65 70 C 12 ( ) (E-N . 1988, S

W 1998). A j KH2PO

4

1,2 /L (NH4)

2SO

41,2 /L

.

L (BIOSAB.

B I, A) 2 L 1,5 L . E -DCU-300 q , H, x . L - : 18 C, 300 -1 j 25 L/ (0,2 O

2/). E

j x .

E 80 L : 8,0 /L; 10,0 /L; KH-

2PO41,2 /L; (NH4)2SO4 1,2 /L x 10,0 /L, H j 3,6. L 150 -1 48 28 C. L (3000 -1 10), , .

Métodos analíticos y presentación de resultados

L ( ) (Hw-Pk 5890II), q HP5 (30 x 0,32) FID.

L 0,45 µ , xj x (O



329


Rev. peru. biol. 18(3): 325 - 334 (D 2011)

. 2001). F, 1 µL x .

E , , , , , - HPLC (P LCP 4000),q Wx 250 x 8 (O LGKS0800 H+) RID. E 0,005M H

2SO

4 j 1 L/.

L (1:3) q.

L . L 3000 -1 10, 3 110 °C 2 . A,

Y X/S

(µ) ( Hk . 1998). L , .

Resultados y discusión

Fermentabilidad de azúcares y tolerancia al etanol y me-tabisulfto de sodio.- L , . C 1, Hansenula anomala RIVE 7-1-5 , . E j . L q q , j .

L SO2 H (J L 2000). C 1, Hansenula anomala RIVE 7-1-5 ( SO

2) 100 /L. L

x (SO2)

x q .L OIV (O I Vñ V) - 150400 /L , (R-G . 2006).

Producción de etanol.- L x - j x

. L , x . S, x ,

. E 2 Hansenula anomala RIVE 7-1-5. S (5.81±0,1% /) 28 C. L 28 C 16 C. A , - , 2,35±0,1

4,69±0,1% /. E 5,8±0,1%/ q ( j ).N q Hansenulaanomala 5% / K .(1995) F . (2002). L ( 28 C) x .E x q Hansenula anomala RIVE 7-1-5 x x q . P

.L j

. E j j q q (j . 2003). P Hansenula anomala RIVE 7-1-5 j- .

Síntesis de compuestos de importancia sensorial.- L - q q -

. E 3 Hansenula anomala RIVE 7-1-5 , j . U

Concentración de azúcar, etanol y metabisulfto de sodio

Tipo de azúcar (2%)

glucosa galactosa fructosa maltosa sucrosa ranosa almidón xilosa manosa

+++ + +++ ++ ++ – – – +++Fermentación en Na

2S

2O

5(mg/L)

Control (sin Na2S

2O

5) 100 mg/L (pH: 3,3 ) 150 mg/L (pH: 3,65 ) 200 mg/L (pH: 4,24)

+++ – – –

Tabla 1. Fermentación de azúcares, y tolerancia al metabisulto de sodio por Hansenula anomala RIVE 7-1-5 cultivado en medio sintético a28 oC. Producción de CO2: intenso: +++, moderado: ++, débil: +

Tipo de cultivoTemperatura de

fermentacion (oC)Etanol producido

(%v/v)

Agitado 16 4,69 ± 0,1

Agitado 28 2,35 ± 0,1

Estático 16 3,05 ± 0,1

Estático 28 5,81 ± 0,1

Tabla 2. Producción de etanol por Hansenula anomala RIVE 7-1-5en cultivo estático y agitado en jugo de manzana a 16 oC y 28 oC.



330

Escalante et al.

Rev. peru. biol. 18(3): 325 - 334 (D 2011)

(1,5±0,4 /L), (1,4±0,15 /L). L q . S , . U q (Nw . 2002).

C q j (679,2 /L) (247,7 /L); x . E x - j , () (R-G . 1975; V . 2002). O q , , (O . 1966; B . 1992; M . 1994).

L -, . E . C 3, Hansenula anomala RIVE 7-1-5 (206,0±8,0 /L). L - , , (Yk H1981, Rj . 2002). P , (196,0±10,0/L) (366,0±10,0/L), q -

q . E - (P . 2000).

N Rj . (2001) q q . S F . (2004) Hansenula anomala. L Hansenula anomala RIVE 7-1-5 . P , . L j

. E 80 /L (R-G1978). A 200 /L (Dq . 2003).

A , - (0,74±0,10 /L) (0,7±0,12 /L). E . E x K K x (Akw . 1999).

L E - x (G R 2003, . 2002), x Hansenula anomala RIVE 7-1-5 .L q x E/ , (Nkk H 2006).

Cultivo batch en biorreactor.- L F 2 x,

H 11 Hansenula ano-mala RIVE 7-1-5. E x q . A

Compuestos(mg/L)Tipo de cultivo de Hansenula

anomala RIVE 7-1-5a

Compuestos analizados en cidrasfermentadas con Saccharomyces

cerevisiae

Compuestos analizados en jugosde manzana

Agitado Estático

Glicerol * 1,4 ± 0,15 1,5 ± 0,4 4,05 ± 0,131; 2,59 ± 1,72 0,05

1-Propanol 19,0 ± 3,0 41,0 ± 4,0 20,01 ± 0,351; 27,3 ± 13,02 7,06

1-Butanol 23,2 ± 1,2 9,7 ± 1,2 6,99 ± 0,041; 6,1 ± 0,72 4,50 ± 0,234

2-Butanol 3,0 ± 1,0 1,0 ± 0,3 – –2-Metil-propanol 218,0 ± 8,0 83,0 ± 6,0 22,17 ± 0,081; 34,8 ± 8,92 0,75 ± 0,044

3-Metil-butanol 228,0 ± 9,0 54,0 ± 6,0 232,00 ± 13,803 2,11 ± 0,114

2-Metil-butanol 162,0 ± 5,0 28,0 ± 3,0 94,8 ± 0,2+; 173,0 ± 41,1+ 9,06

2-feniletanol 26,0 ± 4,0 31,0 ± 3,0 7,8 ± 0,391; 131,5 ± 55,32 0,46 ± 0,024

Etil acetato 206,0 ± 8,0 102,0 ± 6,0 231,06 ± 33,091; 114,6 ± 35,52 0,57 ± 0,034

Butil acetato n.d tr 0,27 ± 0,024 0,58 ± 0,034

Isoamilacetato 1,7 ± 0,4 n.d 16,66 ± 1,04 2,48 ± 0,124

Etil decanoato 2,3 ± 0,5 4,6 ± 0,8 1,50 ± 0,094 0,01 ± 0,0024

Acido acetico 196,0 ± 7,0 366,0 ± 10,0 900,0 ± 140,01; 282,93 ± 16,94 0,05

Acido succinico* 0,74 ± 0,10 0,7 ± 0,12 200,0 ± 30,01; 0,5 ± 0,062 0,05

Tabla 3. Compuestos de importancia sensorial producidos por Hansenula anomala RIVE 7-1-5 cultivado en jugo de manzana a 28oC en cultivoestático y agitado, además compuestos típicos encontrados en cidras y jugos de manzana.

*g/L., tr.: trazas., n.d: no detectado., aResultados obtenidos en este estudio. 1Valores de cidras fermentadas con S.cerevisiae (Suarez et al. 2005). 2Valores de cidras analizados en el año1998 (Picinelli et al. 2000). 3Valores de cidras fermentadas con S.cerevisiae (Jarvis et al. 1995). 4Valores promedios (Wang et al. 2004). 5Valores promedios (Cabranes et al. 1998). 6Valorespromedios (Souci et al. 2000). +Contenido de alcoholes amílicos: 3-Metil-butanol+2-Metil-butanol (Suarez et al. 2005; Picinelli et al. 2000). Compuestos no reportados (–).



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- x, (J 1976). E x

, x M M(J 1976). L x - j, 0,12/L 20C.

C F 2 10 x 250 . E q x , x. E x (9,1 /L,20 C) q . L x

, , j , , q , , . E x x , q (R B 2003).

E x q q x x, j x x

x . E .

A, - 11,5 /L (4). Eq , q , “” (Bk . 1990), . S , j (0,91±0,05 /L) (4,2±0,3 /L). L F .(2004 ,), .

A , H ( 3,64 3,09) . L H -

. , q q - x. S ,C-R . (1990) C-R L (1990) Hansenula anomala. D x q .

L j j q - ( 4). E , -

. A , j x q x.

R Hansenulaanomala j -Saccharomyces - j (3% /)

0

2

4

6

8

10

12

14

16

0

20

40

60

80

100

120

0 50 100 150 200 250

p H ,

b i o m a s a s e c a ( g / L )

% p O 2

tiempo (h)

%pO2 pH biomass g/L

Figura 2. Cultivo batch de Hansenula anomala RIVE 7-1-5 en bior -reactor a 18 °C y con ujo de aire 25 L/h.

Concentración inicial de componentes (g/L)

fructosa glucosa sucrosa ác. málico

70,95 22,6 35,5 5,02

Compuestos fnales (g/L)

fructosa glucosa etanol glicerol ác. acético ác. sucínico ác. málico

0,24±0,04 1,9±0,2 0,0 0,91±0,05 4,2±0,3 0,26±0,05 4,6±0,5

Alcoholes superiores y etil acetato producidos (mg/L)

1-propanol propil acetato 2-metil propanol 3-metil butanol 2-metil butanol Etil acetato

1,0±0,2 0,0 0,0 0,0 0,0 9,7±0,5

Azúcar utilizado (S), biomasa fnal (X), rendimiento (YX/S

, YE/S

), tasa de crecimiento (µ)

S X YX/S

YE/S

µ

127,0 11,5 0,11 0,0 0,13

Tabla 4. Compuestos utilizados y producidos por Hansenula anomala RIVE 7-1-5 durante el cultivo batch en biorreactor a 18 oC.

YX/S

: g. de biomasa/gr. azúcar; YE/S: g. de etanol/gr. azúcar; µ: tasa de crecimiento (h-1); X: biomasa seca nal (g/l); S: azúcar total consumido (g/L).



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Escalante et al.

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. S , (E C 2001).

Conclusiones

Hansenula anomala RIVE 7-1-5 , q - . S SO

2 q

100 /L q . A , 5,81±0,1 % / j .S , . 16 C 200 -1 .

P , , q

. A , . C - .

L -Saccharomyces x . E x (0,2 /) x, x j x.

L x q .

F, .

Agradecimientos

L I I V E, B, RE .

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Inmunogenicidad del veneno de B oThrops aTrox

Rev. peru. biol. 18(3): 335 - 341 (D 2011)


Inmunogenicidad del veneno de Bothrops atrox (Ophidia: Viperidae) ysu evaluación por métodos inmunoenzimáticos

Gustavo A. Sandoval1, Julio Mendoza1, William Roldán2, Yrma Espinoza2, HildaSolis2, Armando Yarlequé*1

Immunogenicity of Bothrops atrox (Ophidia: Viperidae) venom and its eva-luation by immunoenzymatic methods

1Laboratorio de Biología Molecular.Facultad de Ciencias Biológicas.Universidad Nacional Mayor de SanMarcos. Lima – Perú.

2Instituto de Medicina Tropical“Daniel Alcides Carrión”. Facultadde Medicina Humana. UniversidadNacional Mayor de San Marcos.Lima - Perú.

*Correspondencia: Dr. ArmandoYarlequé, Laboratorio de BiologíaMolecular, Facultad de CienciasBiológicas, Universidad NacionalMayor de San Marcos, apartadopostal 110058, Lima 11, Perú.

E-mail: [email protected]


Resumen

Se estudió la inmunogenicidad del veneno de la serpiente Bothrops atrox, “jergón”, utilizando los métodosinmunoenzimáticos de ELISA y Western Blot, así como los patrones de reactividad cruzada empleando losvenenos de las serpientes Bothrops brazili, Lachesis muta y Crotalus durissus. Para este n se inmunizaronconejos albinos Nueva Zelanda (2 kg aprox) con cuatro dosis de 500 μg del veneno de B. atrox en un periodode 90 días. La producción de anticuerpos fue monitoreada mediante la técnica de ELISA, determinándoseel título del suero hiperinmune obtenido al nal del protocolo de inmunización. Adicionalmente se analizaronlos patrones electroforéticos de los venenos en estudio mediante PAGE-SDS y su reactividad frente al sueroobtenido mediante ELISA y Western Blot. El esquema de inmunización utilizado permitió una producción sos-tenida de anticuerpos a partir del día 20 del protocolo. Finalizado este proceso, el título del suero fue calculadoen 256000, lo cual mostró la ecacia y practicidad del procedimiento desarrollado. Por otro lado, los venenosestudiados mostraron una heterogeneidad en su composición proteica a partir del análisis de sus patrones

electroforéticos, mientras que a partir de los estudios inmunoenzimáticos, se pudo obtener valores de reactivi-dad cruzada entre el veneno de B . atrox y los venenos de B. brazili , L. muta y C. durissus , de 23,7%, 4,0% y1,8%, respectivamente. Los resultados obtenidos constituyen el paso inicial para posteriores ensayos dirigidosa la optimización en la producción de inmunosueros para el tratamiento del envenenamiento, así como para eldesarrollo de kits de diagnóstico e identicación de especies de serpiente.

Palabras claves: inmunogenicidad, veneno, Bothrops atrox , ELISA, Western Blot, reactividad cruzada.

Abstract

The immunogenicity of Bothrops atrox, “jergón”, venom was studied using ELISA and Western Blot methods,as well as cross-reactivity patterns against venoms of Bothrops brazili , Lachesis muta and Crotalus durissus .For this purpose, New Zealand white rabbits (2 kg aprox) were immunized with four 500 µg doses of B. atrox venom in a period of 90 days. Antibody production was followed using ELISA technique, and title of hiper-immuneserum was determined at the end of immunization protocol. Additionally, electrophoretic patterns of venoms wereanalyzed by SDS-PAGE and venom reactivity against obtained serum by ELISA and Western Blot. Immuniza-tion schedule allowed a pronounced antibody production since day 20 of protocol. At the end of process, serumtitle was 256000, which demonstrated both efcacy and usefulness of the developed procedure. On the other hand, studied venoms showed a heterogenic protein composition according to their electrophoretic patterns,whereas cross-reactivity values of 23,7%, 4,0% and 1,8% were obtained between B. atrox venom and B. brazili ,L. muta and C. durissus venoms, respectively, using immunoenzymatic methods. According to our results, thisprocedure constitutes an initial step for further assays directed to optimization in immunoserum production forenvenoming treatment and development of kits for diagnosis and species identication of snakes.

Keywords: immunogenicity, venom, Bothrops atrox , ELISA, Western Blot, cross-reactivity.

Introducción

L j -, ,

, j. D x, - x, ,x, x x ; , , Cx G (1998) : ) x, q 30 kD, E; ) , 30 kD

V.L ñ V

, , , -

5 (Cx G, 1991) 60 80 (W, 1996). P ,

q ñ , P(Yq 2000).

E , j V (L F2004). D , Bothrops atrox “j” , B. brazili “j ” ,Lachesis muta “”, q Crotalus durissus “”

S, P. D , B. atrox 88 92% (Lj, 2000).



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Sandoval et al.

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F , , ( j, , j, , .), x (Tk . 2003). A ,

. E P, I N S B. atrox , B. brazili , B. pictus , B. barnetti B. hyo-

prora, ñ , (Rjet al . 2005). A, q j , WB ELISA (EnzymeLinked Immunosorbent Assay ), .

P , j Bo-throps atrox (L, 1758), V, . E j P.

Materiales y métodos

Material biológico.- S Bothrops atrox j P U S “OwM” M H N UNMSM. E x , 4 °C . P - : B. brazili , L. muta C. durissus , j .

P - j N Z (2,5 k x.), I M D A C U N M S M.

Cuantifcación de proteínas.- L UV 280 (W C 1944) Lw .(1951) (L . 1985) .

Protocolo de inmunización.- E B. atrox (1/L) PBS, q A C F (CFA) - , j 0,25 L .

L 10 A I F (IFA) 30. D , xj j -

, , .

Detección de anticuerpos contra el veneno de B. atrox y cálculo del título de anticuerpos.- S ELISA (E P 1971), (A . 2002). P

96 (N IM,D) 100 µL/ B. atrox (0,25 µ/L) ( 0,015 M; 0,035 M; H 7,6), 4 °C. D (NC 0,15 M, w-20 0,05%), q ( 3%, w-200,05% PBS H 7,4) 1 37 °C. L , 100 µL/ j 0, 10, 40, 70, ( 90), 2 1/1000 q, 1 37 °C. L

- -IG j j (1/4000 q) (100 µL/ p- ). D 30 20 22°C, 50 µL/ NOH 3 M 405 k Mk PLUS MKII. E qj 50% x .

Evaluación de la reactividad cruzada entre el suero anti-B.atrox y otros venenos de serpientes peruanas.- L

-B. atrox B. brazili ,L. muta C. durissus ELISA 96 100 µL/ (0,25 µ/L). L , j 1/1000.L x j - -B. atrox 100% B. atrox q .

Análisis electroorético de los venenos en estudio.- L

(20 25 µ) j ( HC 0,05 M,H 6,8; SDS 2%, 0,1%, 10%) - 5 100 °C PAGE SDS 12% 1 100 (L 1970).S : - (97 kD), (66 kD), (45 kD), (29 kD), (20,1 kD) (14,3 kD). D , ñ C R-250 0,1% 2 , (4:3:4) .

Análisis por Western Blot.- L (10 15 µ) PAGE SDS, (PVDF) ( 0,02 M, H 8,3; 0,192



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M, SDS 0,1%, 20%) 50 100 (w . 1979). L q ( 5% -HC 0,02M, NC 0,15 M, H 7,5, w-20 1%) 4 °C. D (NC0,15 M, w-20 0,05%) - j (1/1000) q. L 1 x 20 22 °C, x -IG j (1/4000) 1 20 22 °C, (NB [- ]

BCIP [- ] -HC 0,1 M;NC 0,1 M; MC2

0,005 M; H 9,5). P, , x .

Resultados

Detección y título de anticuerpos contra el veneno deB. atrox .- S j ELISA 0 90 (F. 1). L

IG B. atrox , x ( 70), .

A, -B. atrox 256000 (F. 2).

Reactividad cruzada determinada por ELISA.- A -B. atrox ELISA; 405 , x B. atrox (F. 3). A,

q , , B. brazili , L. muta C. durissus , 23,7, 4,0 1,8%, .

Comparación de los perfles de veneno de serpiente me-diante PAGE-SDS.- L F 4 B. atrox , B. brazili , L. muta C.durissus PAGE SDS .E , 10 , q -. A 14,3 66 kD. S 25 60 kD B. atrox . E B. brazili 30 45 kD j

14,3 kD. P L. muta (14,3 97 kD) 30 kD. E , C. durissus 14,3 30 kD.

Reactividad cruzada determinada por Western Blot.- LF 4 q B. atrox

Figura 1. Detección de IgG anti-B. atrox en el suero de conejosinmunizados mediante la técnica de ELISA.

Figura 2. Determinación del título de anticuerpos contra el venenode B. atrox .

Figura 3. Evaluación de la reacción inmunológica cruzada del sueroanti-B. atrox con otros venenos de serpientes peruanas mediante latécnica de ELISA.



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B. atrox , B. brazili ,L. muta C. durissus . P B. atrox 14,3 97 kD, q . P B. brazili - , . L L. muta C. durissus - -B. atrox , 66 kD 14,4 20,1 kD.

Discusión

L ñ, j

q , in vitro - x, j (Yq 2000). C , - , ,, x, x x, (L F 2004).

L , j,

j, ,

(Tk . 2003). E P, I N S, C N P B, ( B. atrox “j ”, B. brazili “j”, B. pictus “j ”, B. barnetti “” B. hyoprora “j”), q ( L. muta “”) ( C. durissus “ -”). A - , x q , q ,

(V D . 2003).P q

, (C 1979); , . A - x, q (H H 1998). E j N Z x, B. atrox q j

x (DL50) (L . 2004, Rj . 2005) q q . A

Figura 4. Análisis electroforético de los venenos en estudio y su reactividad cruzada con el suero anti-B. atrox determinada mediante WesternBlot. (A) Venenos de las serpientes B. atrox (1), B. brazili (2), L. muta (3) y C. durissus (4) (20‒25 μg) fraccionados mediante PAGE‒SDSy teñidos con azul brillante de Coomassie. (B) Venenos de las serpientes B. atrox (1), B. brazili (2), L. muta (3) y C. durissus (4) (10‒15 μg)transferidos a membranas de PVDF e incubadas con suero anti‒B. atrox (1/1000). Se visualizan los inmunocomplejos formados utilizandoanti‒IgG de conejo conjugado con fosfatasa alcalina (1/4000).



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, F (CFA) F (IFA) , - . L -

q , ,, , (RIA), . (Tk 1983). S , q ELISA (S Gkk 1999). L - j ELISA (F. 1) 405 , j IG j. A q , , B. atrox .

P x , (A . 2002). E 2 j. E q x- q 50% x, -B. atrox 256000 (F. 2), q . E , q 32000 (V D . 2003). S q 2048000 B. atrox L. muta B (C . 2001). S , q j , q . E j j p-

405 . A

: B. atrox , B. brazili , L. muta C. durissus , PAGE SDS (F. 4). E B. atrox 25 60 kD, x (27 kD; H . 2004) L- x (60 kD; L . 2007). A x, C2+, - (19,9 kD, P .

1996). E B. brazili , 30 45 kDq x (30 kD, P .2001), L- x (59,9 kD, S

. 1999). A , j (22 kD, Añ . 2000) A2 (21,2 kD, Z . 1999) . A , . C

L. muta, 14,4 kD 97 kD

A2 (19,2 kD, Mj . 2006), I (25,1 kD,R Yq 1991), (40,0kD, Yq . 1989) L- x (60,6 kD,C . 2006). E C. durissus , , 14,4 30 kD, - , , ,

A2 L- x (R . 2000). A , ; ( 15 kD) j ( 15 kD). E , B. alternatus , B.atrox , B. cotiara, B. erythromelas , B. jararaca, B. jararacussus , B.moojeni , B. neuwiedi B. pradoi B ( S . 1990);, L. muta stenophrys C. durissus durissus C R (A .1993); C. atrox , C. viridis viridis , C. adamanteus C. horridus horridus (Ow C 1990) Naja najasiamensis , Ophiophagus hannah, Bungarus asciatus , Vipera russelli ,

Calloselasma rhodostoma rimeresurus albolabris (C . 1988).

P -B. atrox , ELISA. M q , B. atrox (F. 3). E x- , ,

B. brazili , j L. muta C. durissus . E q B. atrox , . E , W B (L Ow 1994), q , (S . 2000). P

W B, PAGE SDS,



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Sandoval et al.

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. D , j q ELISA . L F. 4 PAGE SDS (F. 4). E -

j -. D q B. atrox q .E C . (1988), q j , q , . E B. brazili ( 2), L. muta ( 3) C. durissus ( 4). L - . -C. atrox C. adamenteus ,C. h. horridus C. v. viridis (M 1979).E , ELISA, - q . E B. brazili (F. 6, 2),

, q B. atrox ELISA. P L. muta (F. 6, 3), (20 60 kD), x . F, C. durissus (F. 6, 4), , (>66 kD) q L- x.

E

-, q - ü (M H 1984, MC 1984,H . 1986). L B. atrox , q k . U x j S . (2006), B. atrox

IG .Q j.

Agradecimientos

E j C U NM S M (P) U L Ox (I).

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Propagación in vitro de c arica papaya variedad PM-

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Propagación in vitro de Carica papaya var. PTM-331 a partir demeristemos apicales

Reynaldo Solis L.1*, Julio Olivera S.2 y Rafael S. La Rosa L.1

In vitro propagation of Carica papaya var. PTM-331 from apical meristem

1 Universidad Nacional FedericoVillarreal - Facultad de CienciasNaturales y Matemática. Jr. RioChepen N° 110, 114 y 290 – ElAgustino.

*Email Reynaldo Solis Leyva: [email protected]

2 Estación Experimental AgrariaDONOSO -Instituto Nacional deInnovación Agraria. Altura Km. 5,4de la Carretera Chancay – Huaral.


Resumen

El trabajo consistió en desarrollar un protocolo de propagación in vitro de la variedad de papaya PTM-331a partir de meristemos apicales, con la nalidad de obtener plántulas vigorosas y libres de enfermedades,empleando la técnica del cultivo de tejidos. Las yemas apicales empleadas fueron obtenidas de plantas culti-vadas en invernadero, los cuales fueron usados como explantes para la extracción de meristemos. La mejordiferenciación de meristemos se logró en el medio basal MS suplementado con 0,5 mg.L-1 de BAP, 0,5 mg.L-1 de AIA y 10 mg.L-1 de adenina. La mejor multiplicación se logró con el medio MS suplementado con 0,5 mg.L-1

de BAP, 0,5 mg.L-1 de AIA y 0,3 mg.L-1 de AG3, con un coeciente de multiplicación de 3,42; mientras que elmejor medio para el enraizamiento fue la combinación del medio MS, 3 mg.L-1 de AIB y 5 mg.L-1 de adenina,donde se obtuvo 83,33% de plantas enraizadas.

Palabras claves: Carica papaya , Propagación in vitro , meristemos apicales, invernadero, explantes.

Abstract

An in vitro protocol was develop to propagate variety of papaya PTM-331 from apical meristems, with theobjective of obtaining vigorous and disease-free seedlings, using tissue culture techniques. Apical buds wereobtained from seedlings cultivated in greenhouse and used as explants for meristem dissection. Meristemswere cultured on MS basal medium supplemented with 0,5 mg.L-1 of BAP, 0,5 mg.L-1 of AIA and 10 mg.L-1 ofadenine for their differentiation. The best multiplication of explants was achieved with the combination of MSmedium supplemented with 0,5 mg.L-1 of BAP, 0,5 mg.L-1 of AIA and 0,3 mg.L-1 of AG3, where largest seedlings,with more shoots were obtained. The best medium for rooting was the combination of MS, 3 mg.L-1 of AIB and5 mg.L-1 of adenine, where 83,33% of rooted plants were obtained.

Keywords: Carica papaya, in vitro propagation, apical meristem, greenhouse, explants.

Introducción

E P, (Carica papaya L.) - . S j , - , .S Cj R (2007), ñ

A P L

35% .

E I I A P (IIAP) j j , j j , (Cj R 2007); PM-331.

Ex , , , x (F 1992) q

x q x - (I 1979). L j ,

(P 2005).

U in vitro q q (, ) j - (J 1998). C q j (A 1992, B2002, G . 2002) (J1999, A . 2008) j PM-331.

E - in vitro x ; , j k . E j j q - Carica papaya . PM-331 , .



344

Solis et al.

Rev. peru. biol. 18(3): 343 - 347 (D 2011)


E j L B- E Ex DONOSO IN I A P. L - x 45 . P , x j

j 70% 30 j , 1% 10 j .

Fase de establecimiento de meristemos.- L - , - . L x P (148 x 120 .), j j . D- j

q .

C q A (1992) B (2002), M Sk (MS-1962) BAP, ANA, AIA, AG

3 ( 1).

E H j 5,6. S

7 49 .

Fase de multiplicación.- P - , MS BAP, KIN, ANA, AIA,

AG3

( 2). S 7 35 .

Fase de enraizamiento.- P MS - IBA, BAP, ANA ( 3).L 21 .

Tratamiento Medio + Hormonas

TR0 MS

TR1 MS + BAP 0,5 mg.L-1 + ANA 0,3 mg.L-1

TR2 MS + BAP 0,5 mg.L-1 + ANA 0,3 mg.L-1 + AG3

0,3 mg.L-1

TR3 MS + BAP 0,5 mg.L-1 + ANA 0,3 mg.L-1 + Adenina 10 mg.L-1

TR4 MS + BAP 0,5 mg.L-1 + AIA 0,5 mg.L-1

TR5 MS + BAP 0,5 mg.L-1 + AIA 0,5 mg.L-1 + AG3

0,3 mg.L-1

TR6 MS + BAP 0,5 mg.L-1 + AIA 0,5 mg.L-1 + Adenina 10 mg.L-1

Tabla 1. Medios de cultivo para la fase de establecimiento de meristemos.


TA 0 MS

TA 1 MS + BAP 0,5 mg.L-1 + AIA 0,3 mg.L-1 + AG3

0,3 mg.L-1 + Adenina 5 mg.L-1

TA 2 MS + BAP 0,5 mg.L-1 + AIA 0,5 mg.L-1 + AG3

0,3 mg.L-1

TA 3 MS + BAP 0,5 mg.L-1 + ANA 0,3 mg.L-1 + AG3

0,3 mg.L-1+ Adenina 5 mg.L-1

TA 4 MS + BAP 0,5 mg.L-1 + ANA 0,5 mg.L-1 + AG3

0,3 mg.L-1

TA 5 MS + KIN 1 mg.L-1 + AIA 0,3 mg.L-1 + AG3


TA 6 MS + KIN 1 mg.L-1 + AIA 0,5 mg.L-1 + AG3

0,3 mg.L-1

TA 7 MS + KIN 1 mg.L-1 + ANA 0,3 mg.L-1 + AG3


TA 8 MS + KIN 1 mg.L-1 + ANA 0,5 mg.L-1 + AG3

0,3 mg.L-1

Tabla 2. Medios de cultivo para la fase de multiplicación.


TM0 MS

TM1 MS + IBA 3 mg.L-1 + ANA 0,5 mg.L-1

TM2 MS + ANA 1 mg.L-1

TM3 MS + IBA 3 mg.L-1

TM4 MS + IBA 3 mg.L-1 + Adenina 5 mg.L-1

TM5 MS + IBA 2 mg.L-1 + BAP 0,5 mg.L-1 + AIA 0,5 mg.L-1

TM6 MS + IBA 2 mg.L-1 + BAP 0,5 mg.L-1 + ANA 0,5 mg.L-1

Tabla 3. Medios de cultivo para la fase de enraizamiento.



345


Rev. peru. biol. 18(3): 343 - 347 (D 2011)


Fase de establecimiento.- E 2002, B q x in vitro .

N in vitro . E (70%) 30 NOC (1%) 10 x, q .

E 4 j - 49 , .

E 49

q R6 ( 4), q R6 in vitro . PM-331.

U x q - , . U q j q , q x q

(J 1998). E R6, in vitro PM-331, 0,5 .L-1 BAP, B (2002) q

BAP q.

J (1998) q q in vitro, x q - q x q , q x x x. S q - in vitro PM-331, j x AIA B (2002) ANA x . E 4 q q ANA x (R1, R2 R3), j x q x R6. A (1992) q AIA x q ANA in vitro x .

Tratamientos49 días

Meristemos diferenciados (%) Altura de plántulas (mm) Número de brotes

TR 0 87,5 2,3929 d 1,0000 d

TR 1 87,5 7,6667 b 1,1667 bcd

TR 2 93,75 5,3000 c 1,0667 cd

TR 3 93,75 5,8000 c 1,1333 bcd

TR 4 100 8,5313 ab 1,4375 b

TR 5 100 7,8750 ab 1,3750 bc

TR 6 100 9,1875 a 2,1875 a

Tabla 4. Inuencia de los diferentes medios de cultivo en la diferenciación de meristemos apicales.

Tratamientos 35 días

Altura de la plántula (mm) Número de brotes

TA0 5,5833 g 1,0000 e

TA1 13,6667 b 2,1667 b

TA2 15,4167 a 3,4167 a

TA3 11,8333 cd 2,0833 b

TA4 11,3333 d 2,0000 bc

TA5 13,7500 b 2,0833 b

TA6 12,1667 c 1,8333 bc

TA7 8,8333 e 1,5833 cd

TA8 7,1667 f 1,1667 de

Tabla 5. Altura de las plántulas (mm) y número de brotes en la fase de multiplicación.

* Medias con diferentes letras en la misma columna dieren para p<0,05 (Notación Duncan)




346

Solis et al.

Rev. peru. biol. 18(3): 343 - 347 (D 2011)

Fase de multiplicación.- E - q A2 ñ , -

( 5). L F 1 A2. A1 A5 , , .

A A1, A2 A5 q - AIA x q ANA x.

E A1 A2 q BAP A5 q KIN, q BAP KIN . AG

3

q . B(2002) MS q 0,5 .L-1 AG

3 10

.L-1 .

E q . O (1998) q x q q

x j. E BAP q . A (1992) - q 0,05 .L-1 AIA, 1,5 .L-1 KIN 100 .L-1 -

j, q B (2002) , MS 0,5 .L-1 BAP, 0,1 .L-1 AG

3, 0,01

.L-1 AIA 10 .L-1 ; AIA

j x.G . (2002) q

MS 0,14 .L-1 ANA 0,45 .L-1 BAP .

L x in vitro , j PM-331; A (1992) P,B (2002) C G . (2002) IBP-4299.

Fase de enraizamiento.- E

, , qj q - , in vitro q, j, q - q (O 1998).

P j . S q M0, M2 M6 q

. S - j M4 83,33% ( 6).

Figura 1. Plántulas provenientes de TA2, después de 35 días de siembra.



347


Rev. peru. biol. 18(3): 343 - 347 (D 2011)

A , M3 M4 , - D <0,05 ( 6). E , q q j . S q in vitro, ñ ex vitro , q x .

A , q M4 j , ; MS q 3 .L-1 IBA 5.L-1 . E j B (2002) q q 2 .L-1 IBA 10 .L-1 .

E M3 q 3 -1

IBA j , M4. R . (1990) in vitro MS q 1 .L -1 IBA, q

A (1992) ñ q q 5 .L-1 IBA.

J (1999), ñ q Dw (1993) , - 0,2 .L-1 IBA 11,3 .L-1 R.P (2005) q

, x 50% MS 3 5 .L-1 IBA 10 , MS 20 80 % .

A ñ q:

E , 49 R6(MS + 0,5 .L-1 BAP + 0,5 .L-1 AIA + 10 .L-1

A)

.

E A2 q MS + 0,5 .L-1 BAP + 0,5.L-1 AIA + 0,3 .L-1 AG

3, 35

.

E AIA x j q ANA invitro x.

E M4 q MS + 3 .L-1 IBA + 5.L-1 j

(83,33%).

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Tratamientos21 días

Porcentaje de enraizamiento Número de raíces Longitud de raíces (mm)

TM1 50 % 6,3333 b 5,1667 b

TM3 66,67 % 8,5000 a 6,9375 a

TM4 83,33 % 8,6000 a 7,4000 a

TM5 33,33 % 4,2500 c 4,1250 c

Tabla 6. Número y longitud de raíces (21 días después de siembra).




348

Solis et al.

Rev. peru. biol. 18(3): 343 - 347 (D 2011)



349

Diagnóstico e identiicación de y ersinia ruckeri por PCR

Rev. peru. biol. 18(3): 349 - 353 (D 2011)


Diagnóstico e identicación rápidos por PCR de Yersinia ruckeri aisla-da de Oncorhynchus mykiss procedentes de Canta, Lima, Perú

Susana Sirvas-Cornejo*, Claudia Cecilia Sánchez-Robinet y César Peña-Domínguez

Rapid diagnosis and identication by PCR of Yersinia ruckeri isolated ofOncorhynchus mykiss from Canta, Lima, Peru

Laboratorio de Biología Molecular;Departamento Académico de

Acuicultura, Facultad de Oceano-grafía, Pesquería y Ciencias

Alimentarias; Universidad NacionalFederico Villarreal. Calle Roma350, Miraores, Lima 18, Perú.

Email Susana Sirvas Cornejo:[email protected]

Email Claudia Sánchez Robinet:[email protected]

*Autor para correspondencia


Resumen

Se muestrearon 20 ejemplares (alevines y juveniles) de trucha arco iris cultivados en la piscifactoría Acochinchán(Canta, Lima, Perú), y se les aplico la técnica de la Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR) con la nalidadde obtener una identicación rápida del agente patógeno Yersinia ruckeri que produce la enfermedad entéricade la boca roja (ERM) y genera elevadas tasas de mortalidad. Nueve ejemplares fueron asintomáticos mientrasque 11 presentaron signos de ERM. Se aislaron 22 cepas bacterianas del hígado, bazo y riñón. Se empleó latécnica de la PCR para la amplicación y cebadores especícos (ARNr 16S), que permitieron amplicar unfragmento de ADN de 575 pb de Yersinia ruckeri . Diecinueve cepas fueron identicadas como Yersinia ruckeri mediante la PCR, tanto en peces sintomáticos como asintomáticos. Se estableció un tiempo de diagnóstico de26 horas, en comparación con los 2 ó 3 días que duraría el diagnóstico empleando las pruebas bioquímicas.

Palabras Clave: Yersinia ruckeri , Oncorhynchus mykiss , PCR, diagnóstico, Enfermedad Entérica de la BocaRoja.

Abstract

Twenty individuals of rainbow trout were sampled (fry and juveniles) from Acochinchan Fishfarm (Canta, Lima- Peru), and analyzed with the Polimerase Chain Reaction test (PCR ) in order to achieve a rapid identicationof Yersinia ruckeri , which is the pathogen agent that causes the enteric red mouth disease (ERM) and produceshigh rates of mortality. Nine sh samples were asymptomatic, while 11 of them showed signs of ERM. In addi-tion, 22 bacterial strains were isolated from the liver, spleen and kidney. PCR and specic primers (16S rRNA),were used to amplied a specic 575 bp DNA fragment of Yersinia ruckeri . Nineteen strains were identied asYersinia ruckeri by PCR in symptomatic and asymptomatic shes. It was established a diagnosis time of 26hours, compared with the 2 or 3 days that would take the diagnosis using biochemical tests.

Keywords: Yersinia ruckeri , Oncorhynchus mykiss , PCR, diagnosis, Enteric Red Mouth Disease.

Introducción

L E E B Rj, ERM (ER D), q , On-corhynchus mykiss (R 1991), - (A1993). E Yersinia ruckeri , V H (USA) 1950 (Rk 1966, R . 1966). A A (Bk . 1977), I (S . 1999),q ( 1991), P (S . 1996),

S (B H 1986, B 1991), C (R . 2004), F (L . 1983), R U (A . 2003) . E P, Y. ruckeri 34 J ñ 2004 q (B Kj 2004). E j, - G, x, , O/F; Y. ruckeri C I.

E P, M P- (2010). D 17,320 M , 14,250 M (PRODUCE 2010).

Yersinia ruckeri , (R 1991). L ERM - , , , (Bk C1990). L ERM Y q j (F . 1985, I . 1993).

A, ERM q

(C W 2009). x

(Rk 1966, H B 1999, A Bğ 2005). A, , , . C , j j , . E , . E ñ, (A Bğ 2005).

E , , ,



350

Sirvas-Corneo et al.

Rev. peru. biol. 18(3): 349 - 353 (D 2011)

x(R 1998).

L (G . 2001).

L Y. ruckeri ( - j, ,, , q- ) 2 3 . A API 20E q Haniaalvei (F . 1993). P , PCR q Y. ruckeri (G . 2001).

E j Y. ruckeri On-corhynchus mykiss j C, L, PCR.


Muestreo.- S 20 j (8 12 j) q Pj A, L (D H,C, 3333 ), 11 j - (Y ERM) q9 j .

A, H .

Aislamiento de cepas.- C . S , ñ.

E A S (SA). L 20 22 ºC 18 .

Yersinia ruckeri .- E Á I Ex P A, U N FV (UNFV) F O,Pq C A (FOPCA), Yersinia ruckeri , P, L, D - P Y, 4284 . L q .

Extracción de ADN.- L x ADN - L B M F O, Pq C A, UNFV, Kit AxyPrep ™ Bacterial Genomic DNA. E ADN C S (SB). A, x K. P , Yersiniaruckeri PCR (6, 8, 10, 12, 14, 16 18 ). L x ADN PCR j .

Amplifcación de ADN (PCR).- S YER8 (5’-GCGAGGAGGAAGGGAAGG- 3’) YER10(5’-GAAGGCACCAAGGCACCG- 3’)

ADN q 16S ARN (ARN 16S) (G . 1999). L - 25 µL : 1 µL ADN ( 1/100) x , 10 µ primer (E MWG O), 2M x (F), 5 µL

Figura 1. Signos externos. Oscurecimiento de la piel (a); boca roja (b); distención abdominal (c); secreciones (d); exoftalmia (e).

(a) (b) (c)

(d) (e)



351


Rev. peru. biol. 18(3): 349 - 353 (D 2011)

Figura 2. Hígado pálido y hemorrágico (a); bazo normal (b); bazoesplénico (c).

q (Fermentas) 5 U/µL aq (F). L A B (M M-201) 35 94 ºC 1 , 61,8 ºC 1 , 72 ºC 1 . P 92 ºC 5 72 ºC 8 . E - PCR

Aeromonas salmonicida ( Á I P A FOPCA, UNFV), Flavobacterium .( L B M FOPCA,UNFV) Escherichia coli ( L M- FOPCA, UNFV).

Resultados

Signos patológicos.- L ( j) x (F. 1 ), (F. 1) - (F. 1) . S , ERM, “ j” (F. 1).

O , , - . L F 2 q : , .

Características del cultivo bacteriano.- A SA 22 , . D ñ 0,5 2 , , , x, .

Amplifcación de ADN.- L q ADN 575 , ñ , .

S Y. ruckeri 19

20 j , 11 j .L PCR

Aeromonas salmonicida, Flavobacterium . Escherichia coli , ADN YER8 YER10 (F. 3) Y. ruckeri .

L 4 ADN Y. ruckeri , q .

L PCR q - 18 6 ,

(F. 5).

BeASM Y23 AS F BeF EC Y23 BLBeEC

575 pb

1500 pb

1000 pb

700 pb

500 pb

300 pb

Figura 3. M: Ladder, Y23: Yersinia ruckeri (control positivo), AS:

Aeromonas salmonicida , BeAS: Blanco de extracción (Kit) para A.salmonicida , F: Flavobacterium sp ., BeF: Blanco de extracción (Kit)para Flavobacterium sp ., EC: Escherichia coli, BeEC: Blanco deextracción (kit) para E. coli, BL: Blanco de PCR.

(a)

(b)

(c)



352


Rev. peru. biol. 18(3): 349 - 353 (D 2011)

Discusión A q PCR

20 UFC (G . 1992, Wk . 2000) ADN . E x j , , ñ (W 1997). N , - q PCR

, . E ADN , q G . (1999) Kk . (2006), ADN j .

L PCR ADN (H S 1998), - ADN - . E

q q j .

L ERM (Lq . 1989). D (B L 1975,H . 1980) x . E G . (1999), Ak . (2001), Kk . (2006), PCR Y.

ruckeri , PCR, Y. ruckeri E E B Rj, .

Agradecimientos

L IRD (I R D) UNFV-IRD. A Pj A, D. F Cj V. , E G q j .

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BeASM Y23 AS Be Y13 Y14 Y15 Y16 Y17 BL

1500 pb

1000 pb

700 pb

500 pb

300 pb

Figura 4. M: Ladder, Y23: Yersinia ruckeri (control positivo), AS:Aeromonas salmonicida , BeAS: Blanco de extracción (kit) para A.salmonicida , Be: Blanco de extracción para muestras (kit), Y13 alY15: Muestras (+): Yersinia ruckeri , Y16: Muestra (-): No identicada, Y17: Muestra (+): Yersinia ruckeri , BL: Blanco de PCR.

M 18h(Y23) 16h 14h 12h 10h 8h 6h BL

1500 pb

1000 pb

700 pb

500 pb

300 pb

Figura 5. M: Ladder, 18h(Y23): control positivo (18h de incubación),16h: Y. ruckeri (16 h de incubación), 14h: Y. ruckeri (14 h de incuba-ción), 12h: Y. ruckeri (12 h de incubación), 10h: Y. ruckeri (10 h deincubación) 8h: Y. ruckeri (8h de incubación), 6h: Y. ruckeri (6h deincubación), BL: Blanco de PCR.



353


Rev. peru. biol. 18(3): 349 - 353 (D 2011)

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354


Rev. peru. biol. 18(3): 349 - 353 (D 2011)



355

Materia orgánica y dinámica bacteriana de suelos de cultivos de papa y maíz

Rev. peru. biol. 18(3): 355 - 360 (D 2011)


Efecto de la adición de materia orgánica sobre la dinámica poblacionalbacteriana del suelo en cultivos de papa y maíz

David García Ventocilla1, Gloria Mamani Gamarra1, Nicolás Román Cabello1,Luis Suárez Salas2, Ana Contreras Marín2, Julio Malca Jauregui2

Effect of addition of organic matter on bacterial population dynamics ofsoil in potato and corn crops

1 Instituto de Biotecnología eIngeniería Genética - UniversidadNacional del Centro del Perú.Ciudad Universitaria, Av. MariscalCastilla Nº 3909 - 4089, El Tambo,Huancayo, Perú. Email David Gar-cia Ventocilla: [email protected]

2 Instituto de Investigaciones parael Desarrollo Tecnológico (ININ-DETEC)


Resumen

Se determinó el efecto de la fertilización orgánica sobre las poblaciones bacterianas del suelo en cultivos depapa y maíz durante la campaña agrícola 2008-2009 en terrenos de cuatro localidades del Valle del Mantaro:INIA Santa Ana (Huancayo), en la EEA El Mantaro (Jauja), Vista Alegre y Huayao (ambos en Chupaca). Enestos lugares se instalaron parcelas experimentales de papa (Solanum tuberosum L. Var. Canchan) y maíz(Zea maíz L. Var. Cusco mejorado) bajo abonamiento orgánico (vacuno, ovino, cuy), fertilización química y sinfertilización alguna (testigo). Para dicho efecto se empleó las técnicas de la Electroforesis en Gel de GradienteDesnaturalizante (DGGE) con amplicación de la región 968 – 1401 del rDNA 16S. Los resultados obtenidosmuestran que la variabilidad de las poblaciones bacterianas en los suelos está afectado directamente por el

tipo de cultivo mas no por el tipo de fertilización ya que el efecto de este último resulta variable para cadazona experimental y cultivo encontrándose solo en la zona experimental de Chupaca - Maíz una segregaciónde los tratamientos con fertilización orgánica de los tratamientos químicos. También se ha encontrado quela variación de las comunidades microbianas no sufre variaciones signicativas en los suelos con cultivos demaíz obteniéndose coecientes de similaridad para todos los tratamientos por encima del 80% mientras quepara los tratamientos en los cultivos de papa dicho coeciente fue de tan solo del 60%.

Palabras clave: Materia orgánica, papa, maíz, DGGE.

Abstract

The effect of organic fertilization on soil bacterial populations in potato and corn crops during the crop season2008-2009 at four sites in the Mantaro Valley locations: INIA Santa Ana (Huancayo), the EEA El Mantaro(Jauja), Vista Alegre and Huayao (both in Chupaca). In these places were set up experimental plots of potato(Solanum tuberosum L. var. Canchan ) and corn (Zea maize L. Var. Cusco enhanced ) under organic manure(cattle, sheep, guinea pig), chemical fertilizer and no fertilizer at all (control) . To do this we used the techniquesof electrophoresis Denaturing Gradient Gel (DGGE) with amplication of the region from 968 to 1401 of 16S

rDNA. The results show that the variability of bacterial populations in soil is directly affected by crop type butnot by the type of fertilization and the effect of the latter is variable for each experimental area and culture foundonly in the experimental area of Chupaca - Corn segregation of treatments with organic fertilization of chemicaltreatments. We have also found that the variation of the microbial communities did not suffer signicant varia-tions in soils with maize similarity coefcients obtained for all treatments above 80% while for the treatmentsin potato crops that rate was only 60%.

Keywords: Organic matter, potato, corn, DGGE.

Introducción

S q 80 90% q - , - (N . 2003). L (K1994), , , q j , , x (A1998), , q q (E . 1996). E q - . A

. U x q , , . E

(H . 1995, G . 2004). E - q ,

, j , , (F-M 2002).

D j . P E G G D (DGGE), - -

/ x (G . 2004).



356

García Ventocilla et al.

Rev. peru. biol. 18(3): 355 - 360 (D 2011)

Material y métodos

Áreas de estudio y recolección de muestras

L ñ 2008-2009 V M:INIA S A (H), EEA E M (Jj),V A H ( C). L -q L A S,

A P (LASAP) I B- I G (IBIG), U N C P.

S x (Solanumtuberosum L. V. C) ( Zea maíz L. V. Cj) j ( (1), (2), (3)), q (4) (,5). L 15 . -1

10 .-1

. L q 0,180 0,120 0,080 .-1 N-P-K, (V 1).

Optimización de las condiciones de desarrollo de la elec-trooresis en geles de gradiente desnaturalizante.

Extracción y purifcación de DNA microbiano de suelo

S x DNA . E S . (2004), Q

. (2006) Gf . (2000), q . P DNA k “W DNA C U S” P USA “AxP M DNA M” Ax USA. DNA .

Amplifcación de la región 968 – 1401 del rDNA 16S

P 968 1401 DNA 16S 968F 1401R k Gq DNA P (#: M3005). S 12

q , x 12 PCR MC2, NP, q, .

Electrooresis en geles de gradiente desnaturalizante (DGGE)

S 6% (w/) 40-70% ( ). P D G GE S 2001 C.B.S. SC, I. E q j

- . L 60 ºC AE 0.5X .P E (2004).

Eecto de la adición de la materia orgánica en la diversidad poblacional bacteriana del suelo

L q - (DGGE) . E w NSYS 2.1 DICE UPGMA.


Optimización de las condiciones de desarrollo de la elec-trooresis en geles de gradiente desnaturalizante

D x DNA , - Q . (2006), q DNA RNA x- 12000 1%, q S (2004) B (2006).

D PCR - 968 1401 DNA 16S : 3 94 ºC; 35

tm ha-1; n=3

Zona Maíz

T1 T2 T3 T4 T5

Huayao 10 10 10 0,18-0,12-0,08 0

Mantaro 10 10 10 0,18-0,12-0,08 0

Santa Ana 10 10 10 0,18-0,12-0,08 0

Chupaca 10 10 10 0,18-0,12-0,08 0

Papa

T1 T2 T3 T4 T5

Huayao 15 15 15 0,18-0,12-0,08 0

Mantaro 15 15 15 0,18-0,12-0,08 0

Santa Ana 15 15 15 0,18-0,12-0,08 0

Chupaca 15 15 15 0,18-0,12-0,08 0

Tabla 1. Dosis de abono orgánico y fertilizante químico aplicadas acada cultivo. Tratamientos: T1: ovino, T2: cuy, T3: vacuno, T4: ferti-lización química N-P-K: (T4), Testigo: T5.

L x . L x ñ q . S 100 , qñ , x 5 10 .

L q x ,

2 ñ , . L -40 ºC.



357


Rev. peru. biol. 18(3): 355 - 360 (D 2011)

( 94 °C x 1 ; : 58 °C x 1; : 72 °C x 1 ); x 10 72 ºC. L PCR :NP: 0,2 M; MC

2: 0 M; G Gq B: 1X;

968 (w): 0,5 µM; 1401 (): 0,5 µM; Gq DNA : 0,025 U/µL.

P DGGE q

20 , 70 V 60 ºC .

E x DNA - , x S (2004). D x DNA x S A, x DNA 1, 3 4 5 . E ( 2 3).

E 968 1401 DNA x x- 450 DGGE. E B (2006).

Eecto de la adición de la materia orgánica en la diversidad poblacional bacteriana del suelo

Poblaciones bacterianas antes de la instalación de los cultivos

L x H C-

(CS) x 65%. A DGGE (M S 1998), 64 50 H C .E E M S A (21 M 20 S

LocalidadSuelo

Trat. pH P CE CaCO3

(ppm) dS/m %

Chupaca T1 8,03 21,62 0,324 2,34T2 8,07 0,424 2,34

T3 8,02 0,394 2,56

T4 8,00 0,325 2,45

T5 8,04 0,356 2,46

Santa Ana T1 6,02 23,97 0,157 -

T2 5,94 0,132 -

T3 6,00 0,103 -

T4 6,03 0,106 -

T5 6,18 0,106 -

Mantaro T1 7,37 46,35 0,176 0,37

T2 7,42 0,186 0,35

T3 7,29 0,275 0,23

T4 7,55 0,163 0,45T5 7,87 0,195 0,46

Huayao T1 7,52 43,41 0,420 0,74

T2 8,06 0,459 1,34

T3 7,55 0,465 1,34

T4 7,84 0,435 2,30

T5 7,87 0,643 2,46

Tabla 2. Propiedades, químicas del suelo en las cuatro localidadesexperimentales antes de aplicar los tratamientos. (Noviembre de2008). Fosforo (P), Conductividad Eléctrica (CE), Carbonato decalcio (CaCO3).

Localidad/suelo Trat. Cultivo de papa Cultivo de maíz

pH P CE pH P CE

(ppm) dS/m (ppm) dS/m

Chupaca T1 -0,03 84,28 0,560 0,37 106,50 -0,106

T2 0,03 71,08 0,530 0,43 59,22 -0,222

T3 0,08 69,48 0,393 0,48 65,05 -0,195

T4 -0,10 75,08 0,471 0,50 90,91 0,046T5 0,16 72,88 0,440 0,46 65,05 -0,159

Santa Ana T1 0,08 24,93 0,213 -0,42 22,86 0,214

T2 0,36 17,53 0,149 -0,34 34,27 0,393

T3 0,00 26,63 0,252 -0,30 50,82 0,304

T4 -0,63 16,53 0,237 -0,43 27,28 0,224

T5 -0,48 16,33 0,122 -0,68 14,24 0,317

Mantaro T1 -0,07 31,25 0,144 0,73 -13,61 0,090

T2 -0,12 29,35 0,117 0,78 17,63 0,066

T3 0,01 27,95 0,067 0,81 19,75 -0,009

T4 -0,25 -0,35 0,265 0,25 25,03 0,056

T5 -0,57 19,55 0,097 0,23 -19,32 0,062

Huayao T1 0,38 45,09 -0,010 0,68 8,08 -0,156

T2 -0,06 24,59 -0,087 0,24 16,40 -0,204T3 0,35 13,99 -0,065 0,75 36,13 -0,218

T4 0,06 25,39 0,081 0,46 24,65 -0,176

T5 0,03 5,29 -0,242 0,33 -7,34 -0,382

Tabla 3. Variación real de los valores correspondientes a las propiedades físico-químicas del suelo en las cuatro localidades experimentalesal nal de los cultivos de papa y maíz tratados con cinco tipos de abonamiento. Fosforo (P), Conductividad Eléctrica (CE).



358


Rev. peru. biol. 18(3): 355 - 360 (D 2011)

A) x S A x. E F 1B - S A 36%. D x

E M S A.Poblaciones bacterianas después de la siembra

Chupaca.- E x 89% 2 4. E q . q 53 1-2-3 79% - j . E q

DGGE q 1, 3 5 (55, 53 50 ), q 2 4 q j (43 42 ). 1, 3 5 (5, 5 3 ).

E CS x 93% 1 3 CS 83% 1-3-2 4-5. E ,

, q-. E q q 5

(47 ) qj 44, 44, 42 43 1, 2, 3 4 . E 5 j 4 , q 1, 2 4j 2, 2 1 . E 3 q .

Mantaro.- E

CS x 96% - 4 5. L 3 1-2-4-5 78%. E q , 1, 2, 4 5 (30, 31, 33 34 ), q 3 (22 ). S 4j .

E CS x 98% 3 4 CS 88% 5 1-2-3-4 .E q q 3 4 (32 31 ) 1, 2 5 q j 27, 27 23 .E 3 q j .

Huayao.- E CS x 74% 1 3. L 2 1-3 78%. E q , 1, 2, 3 19, 23 19 2, 7 3 .

E CS x 94% 1 4 CS 80% 2 1-4-5 - . E q , 1,2, 4 5 25, 19, 25 23 0, 1, 1, 0 .

Santa Ana.- E CS x 70% 1 4. L 3 1-4

60%. E q , 1, 3, 4 33, 32, 36 6, 4, 3 .

A q - . E (G . 2004) q q q .L -

j q . E CS 80%. E RD . (2005) q j -

Coefficient

0,36 0,43 0,50 0,58 0,65

SA

M

H

CH

SA

Figura 1. A: Fotografia de Gel 16S rDNA-DGGE de muestrasrecolectadas antes de la instalación de los cultivos. Mantaro (M),Huayao (H), Chupaca (CH), Santa Ana (SA). B: Dendograma respec-tivo de la gura 1.a generado por el algoritmo UPGMA y coecientede similaridad DICE.



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Rev. peru. biol. 18(3): 355 - 360 (D 2011)

Chupaca

Papa

Maíz

Huayao Santa Ana

Papa Papa

Maíz Maíz

Figura 2. Geles 16S rDNA-DGGE. Muestras recolectadas al término del cultivo (semana antes de cosecha). Zonas experimentales: Huayao (H), Chupaca (CH), Santa Ana (SA), Cultivos: papa (P) y maíz (M), Tratamientos: T1: ovino, T2: cuy, T3: vacuno, T4: químico, T5: testigo.

Chupaca

Papa

Maíz

Huayao Mantaro

Papa Papa

Maíz Maíz

Coefficient0.79 0.82 0.84 0.87 0.89

CHPT1

CHPT2

CHPT4

CHPT3

CHPT5

Coefficient0.84 0.86 0.88 0.91 0.93

CHMT1

CHMT3

CHMT2

CHMT4

CHMT5

Coefficient0.45 0.51 0.58 0.65 0.71

HMT4

HMT4

HMT2

HMT3

Coefficient0.64 0.67 0.69 0.71 0.74

HPT1

HPT3

HPT2

Coefficient0.78 0.82 0.87 0.91 0.96

MPT5

MPT4

MPT2

MPT1

MPT3

Coefficient0.88 0.91 0.93 0.96 0.98

MMT5

MMT4

MMT3

MMT2

MMT1

Figura 3. Análisis de poblaciones bacterianas a través de 16S rDNA-DGGE empleando iniciadores 16S (968 – 1401). Dendograma generadopor el algoritmo UPGMA y coeciente de similaridad DICE. Muestras recolectadas al término del cultivo (semana antes de cosecha). Zonasexperimentales: Mantaro (M), Huayao (H), Chupaca (CH), Cultivos: papa (P) y maíz (M), Tratamientos: T1: ovino, T2: cuy, T3: vacuno, T4:químico, T5: testigo.



360


Rev. peru. biol. 18(3): 355 - 360 (D 2011)

. E CS 60%. O (C) q -

q. C x . A .(2006) q q , . q j H . Sk . (2005)ñ q q j . E q j q q q ( ) q .

Conclusiones.- E - x . N . E q .

Agradecimientos

A P C -FINC - . A M Z A.

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361

Medios de propagación y enraizamiento in vitro de vid para elaborar pisco

Rev. peru. biol. 18(3): 361 - 366 (D 2011)


Optimización de los medios de propagación y enraizamiento invitro de las variedades “criollas” de vid para elaborar pisco

Eugenio González1, Diego Pignataro1, Gisella Orjeda1, Wilfredo L. Gonzáles2 yDaniel Clark*1

Optimization of media for in vitro propagation and rooting of creolegrapevine varieties utilized for pisco making

1 Unidad de Genómica, Facultadde Ciencias y Filosofía, UniversidadPeruana Cayetano Heredia

Avenida Honorio Delgado 430, SanMartín de Porres, (Apartado Postal4314, Lima 100), Perú

2 Laboratorio de Ecología Evoluti-va, Facultad de Ciencias y Filosofía,Universidad Peruana CayetanoHeredia

Email Eugenio González:[email protected]

Email Diego Pignataro: [email protected] Gisella Orjeda:

[email protected] Wilfredo Gonzáles:

[email protected]*Autor para correspondenciaEmail Daniel Clark:

[email protected]


Resumen

Los protocolos y medios disponibles para la propagación y enraizamiento in vitro de la vid no han sido ajus-tados todavía a las variedades “criollas” con las que se elabora el pisco. En este trabajo se exploró el uso demedios para la propagación de las variedades Quebranta, Negra Criolla, Albilla, Italia y Torontel, así como parael enraizamiento de las variedades Quebranta, Albilla y Torontel, a partir de los medios estándares reportadosen la literatura cientíca. Para ello, se pusieron a prueba 11 variantes del medio estándar de propagación devid (medio Murashige y Skoog 1X, 3% de sucrosa, 1 mg/L de benzilaminopurina y 0,8% de agar) en las quese combinaron reducciones en la fuerza del medio con reducciones en la concentración de hormona. Para elenraizamiento posterior, se probaron el ácido naftalen acético y el ácido indol acético a 5 concentraciones dis-tintas por cada hormona. Los resultados mostraron que el mejor medio para la propagación de las variedadesQuebranta, Albilla e Italia es el estándar; las variedades Negra Criolla y Torontel tuvieron mejor desempeñocon una reducción de la concentración de benzilaminopurina a 0,25 y 0,5 mg/L, respectivamente. El mejorenraizamiento en la variedad Quebranta ocurrió con 80 µg/L de ácido naftalen acético y 2 mg/L de ácido indolacético; las variedades Albilla y Torontel tuvieron una mejor respuesta al ácido indol acético a concentracionesde 2 y 1 mg/L, respectivamente.

Palabras clave: Cultivo in vitro , propagación, enraizamiento, vides criollas, pisco.

Abstract

The protocols and culture media available for in vitro propagation and rooting of grapevine have not yet beenadjusted to the creole varieties used for pisco making. In this paper we explored the use of culture media forthe propagation of varieties Quebranta, Negra Criolla, Albilla, Italia and Torontel and for rooting varieties ofQuebranta, Albilla and Torontel based on known standard culture media.To address this issue, 11 media derivedfrom the standard propagation medium for grapevine (1X Murashige & Skoog medium, 3% sucrose, 1 mg/L

benzilaminopurine, and 0,8% agar) with diminished medium strength and/or hormone concentration were tested.In addition, 5 concentrations of naphtalen acetic acid or indol acetic acid were tested for rooting. We found thatQuebranta, Albilla, and Italia varieties show a better growth in the standard propagation medium; by contrast,Negra Criolla and Torontel grew better in media with diminished benzilaminopurine concentrations (0,25 and0,5 mg/L, respectively). Quebranta rooted better with 80 µg/L naphtalen acetic acid or 2 mg/L indol aceticacid, while Albilla and Torontel showed better rooting results with 2 and 1 mg/L indol acetic acid, respectively.

Keywords: Tissue culture, propagation, rooting, creole grapevines, pisco

Introducción

L (Vitis viniera) ñ

. E P ñ XVI (L 2004) . A XVII q , q . E P 6,67 ñ 2009 (CONAPISCO2010). E “” q (A, I,M ) (M, N C,Q U). D , q

q Q (P Oj, ).

U j ñ j

. E , j ,

x , (Mñ-O . 2001). U in vitro (C .1984). E x - q , , , . L . E , (C . 1984).



362

González et al.

Rev. peru. biol. 18(3): 361 - 366 (D 2011)

L 30 ñ in vitro (C . 1984; S2006). S ,

. E (S 2006).

L in vitro “” P , q j. E q j ñ .E j Q, N C,

A, I ,

Q, A , .

Material y métodos

Material vegetal

S j Q, N C, A, I , C I V (CIE-). L 9 (T . 2004; P Oj, ) ,

.Preparación de las yemas y obtención de brotes por propagación

in vitro

C 1,5 – 2 q x . E , q j (1 ) 1,5 /L FARMAE () j 10. L j 10 (j ) 2% j . L 3

10 j (2 x 9 ) (, M Sk [MS], 3% , 1 /L [BA] 0,8% ). L j 4000x ( 36 w E Lx O), 16 8 24 °C. L - 2 . L x .

Optimización de los medios de propagación

P x , 12 q

:

Medio MSX BA (mg/L)

1* 1 1

2 1 0,5

3 1 0,25

4 1 0

5 0,5 1

6 0,5 0,5

7 0,5 0,25

8 0,5 0

9 0,25 1

10 0,25 0,5

11 0,25 0,25

12 0,25 0

*Medio estándar

3% 0,8% . C 0,5 1,6 in vitro ( )

. L j 4000 x, 16 8 24 °C. A , 3 - x : (1) x( ); (2) j; (3) . S x x. L - .

Optimización de los medios de enraizamientoP 10 q

MS 3% 0,8% q ñ (NAA) (IAA) q :

NAA IAA

Medio 1: 40 μg/L Medio 6: 0,5 mg/L


Medio 3: 80 μg/L Medio 8: 1 mg/L


Medio 5: 120 μg/L Medio10: 2 mg/L

L NAA 80 µ/L IAA 1 /L q in vitro . E 5 ( ), q - 10 L . E q ; , j . C -, x x .

Análisis estadístico

S . E ,



363


Rev. peru. biol. 18(3): 361 - 366 (D 2011)

2 MS BA ( x, j ). P , (NAA IAA) -

( ).D ( ).


Optimización de medios de propagación

L x in vitro : 30 Q, 17

A, 19 I, 16 N C 23 . L F 1

1. E MS - BA 2 : (1) Q, A I, j ñ q MS BA (F. 1 A, C D); (2) N C ,

q MS, BA (F. 1B E). E N C MS x 4 BA, j 1, 0,5 0,25 /L

BA (F. 1B); MS x j 1, 0,5 0,25 /L BA, 1 0,5 /L BA (F. 1E). P , BA q, 1X MS, 0,25 /L BA j j 3 N C (F. 1B), q j 0,5 /L (F. 1E).

S q MS

x (F 1987). S NC MS ( ), , , - .E q BA,

Crecimiento del explante N° de hojas N° de brotes x longitud. G L MS F P MS F P MS F P

Quebranta

MS 1 0,36 6,81 0,0125 9,03 7,36 0,0096 0,51 3,27 0,0779

BA 2 0,04 0,72 0,4929 32,33 26,38 <0,0001 1,92 12,37 0,0001

MS X BA 5 0,05 1,00 0.4287 21,81 17,80 <0,0001 2,42 15,58 <0,0001

Error 42 0,05 1,23 0,16

Negra criolla

MS 2 2,22 130,14 <0,0001 39,22 30,96 <0,0001 8,95 42,96 <0,0001

BA 3 0,07 4,29 0,0092 13,39 10,57 <0,0001 3,00 14,39 <0,0001

MS X BA 6 0,03 1,67 0,1493 1,86 1,47 0,2088 0,95 4,58 0,0009

Error 48 0,02 1,27 0,21

AlbillaMS 2 1,83 48,92 <0,0001 24,12 13,04 <0,0001 1,85 18,33 <0,0001

BA 3 0,33 8,93 0,0001 19,79 10,70 <0,0001 4,14 41,06 <0,0001

MS X BA 6 0,39 10,56 <0,0001 41,96 22,68 <0,0001 5,21 51,64 <0,0001

Error 48 0,04 1,85 0,10

Italia

MS 2 0,28 14,23 <0,0001 12,95 9,59 0,0003 1,19 10,98 0,0001

BA 3 0,08 4,28 0,0093 5,53 4,10 0,0114 0,03 0,29 0,8356

MS X BA 6 0,05 2,78 0,0210 17,55 13,00 <0,0001 0,39 3,63 0,0047

Error 48 0,02 1,35 0,11

Torontel

MS 2 2,25 12,14 <0,0001 3,29 115,91 <0,0001 54,05 25,42 <0,0001

BA 3 1,28 6,91 0,0006 0,39 13,84 <0,0001 19,33 9,09 0,0001MS X BA 6 0,40 2,14 0,0657 0,13 4,55 0,0010 5,45 2,56 0,0314

Error 47 0,19 0,03 2,13

Tabla 1. Análisis de varianza de dos factores del efecto de la fuerza del medio MS y la concentración de benzilaminopurina (BA) sobre elcrecimiento del explante, el número de hojas y el producto del número de brotes por su longitud en las variedades “criollas” de vid estudiadas.



364

González et al.

Rev. peru. biol. 18(3): 361 - 366 (D 2011)

x j in vitro ( S . 2008). E, “” q j BA (1 /L), x ñ- N C . N , ñ q MS 1X, BA , q BA . E j, j

.N q

Q, A I, ( 1), 3 N C 2 . S 7 Q, - q (20 x) ( ). S q MS BA

2 : (1) q j () q BA

(S 2006); (2) x - Q q 2X MS, 2 /L BA , ( ).

Optimización de los medios de enraizamiento

E x - x, 10 18 3 . L x 18 Q, 14 A 22 .

L F 2 2. U x q 3 . E ANOVA j Q. N , j 80 µ/L NAA 2 /L IAA (F. 2A). E - A NAA IAA, 2 /L IAA j(F. 2B). E -

NAA q IAA, j . N , 1 /L IAA q j

Figura 1. Efecto de la fuerza del medio MS (macronutrientes, micronutrientes y vitaminas de Murashige y Skoog) y la concentración debenzilaminopurina (BA, mg/L) sobre el crecimiento del explante, el número de hojas y el producto del número de brotes por la longitud de 5variedades “criollas” de vid: (A) Quebranta, (B) Negra criolla, (C) Albilla, (D) Italia y (E) Torontel. Las fuerzas de MS fueron 1X (cuadrado),0,5X (círculo) y 0,25X (triangulo). Se muestra el promedio ± 1EE.

0

2

4

6

8

10

0

1

2

3

4

Concentración de BA (mg/L )

N ° d e b r o t e s x

l o n g i t u

d ( c m )

N ° d e h o j a s

C r e c i m i e n t o ( c m )

A. Quebranta B. Negra criolla C. Albilla D. Italia E. Torontel

1,5

1,0

0,5

0,0

0 0,25 0,5 1 0 0,25 0,5 1 0 0,25 0,5 1 0 0,25 0,5 1 0 0,25 0,5 1



365


Rev. peru. biol. 18(3): 361 - 366 (D 2011)

(F. 2C). E j j 100%, x q 75%.

E , j IAA 2 3 (A ); Q, ñ 2 (F. 2 2). C ñ q j IAA Q q q (1 /L). A NAA, q x , IAA

x xj . E - , q q -

q x q q q (Mk . 2008).N q “” .

L - j 3%. D q (1 – 1,5%) (C . 1984; S2006), j - “” 2 x.

Consideraciones fnales

E j q - q

Figura 2. Comparación del efecto de diferentes concentraciones de ácido naftalen acético (NAA) o ácido indol acético (IAA) sobre el crecimientoradicular de 3 variedades “criollas” de vid: (A) Quebranta, (B) Albilla y (C) Torontel. Se muestra el promedio ± 1EE.

0

5

10

15

20

25

N ° d e r e a í c e s x l o n g i t u d ( c m )

0

5

10

15

20

Acido naftalen acético (NAA,µg/L)

20 40 60 80 100 120

0

2

4

6

8

10

Ácido indol acético (IAA, mg/L)

0,5 0,75 1,0 1,5 2,0

A. Quebranta

B. Albilla

C. Torontel



366

González et al.

Rev. peru. biol. 18(3): 361 - 366 (D 2011)

“” . N , q j in vitro q .

Agradecimientos

A C I V- (CIE) j, M M M G, H C. L j P C (C Nº 004-FINC-

PIBAP-2007) Cj N C, I (C 266-2007-CONCYEC-OAJ).

Literatura citadaChee R., R.M. Pool & D. Bucher. 1984. A method for large scale

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regulators II: Cytokinins, their analogues and antagonists.In E.F. George, M.A. Hall, and G-J. De Klerk, eds. Plantpropagation by tissue culture. Springer, Dordrecht. Pp.205-226.

GL MS F P

Quebranta

Hormona 1 10,6 0,19 0,6653

Medio(Hormona) 8 95,6 1,72 0,1257

Error 37 55,5

Albilla

Hormona 1 0,2 0,03 0,8704

Medio(Hormona) 8 77,8 9,39 <0,0001

Error 38 8,3

Torontel

Hormona 1 63,5 8,44 0,0063

Medio(Hormona) 8 10,6 1,41 0,2260

Error 35 7,5

Tabla 2. Análisis de varianza anidado del efecto de las auxinas ácido

naftalen acético (NAA) y ácido indol acético (IAA) sobre el crecimiento

radicular de 3 variedades “criollas” de vid.



367

Colonización intraluminar testicular y dierenciación de la masa celular interna

Rev. peru. biol. 18(3): 367 - 372 (D 2011)


Colonización intraluminar testicular y diferenciación de la masacelular interna en ratones (Mus musculus )

Láyonal Acosta*, Víctor Núñez, Jose Pino, Betty Shiga

Intraluminar testicular colonization and differentiation of the inner cellmass in mice (Mus Musculus )

Laboratorio de Reproducción yBiología del Desarrollo, Facultadde Ciencias Biológicas, UniversidadNacional Mayor de San Marcos.Lima, Perú. Casilla 11-0058, Lima11, Perú. Tel.: +51 6 197000 – 1529;fax: +51 6 197000 – 1509.

*Autor para las correspondencias,email Láyonal Acosta:[email protected]


Resumen

Cuando las células germinales primordiales (CGPs) son trasplantadas al testículo de otro individuo de lamisma especie; colonizan el lumen de los túbulos seminíferos, buscando su nicho para diferenciarse en es-permatozoides. Nuestro objetivo fue evaluar la colonización intraluminal de una suspensión de células de lamasa celular interna (MCI) obtenidas de blastocistos de ratones. Una suspensión de MCI obtenidos medianteuna inmunocirugía en la red testicular de animales tratados previamente con ciclofosfamida para disminuir supropia espermatogénesis fueron trasladados a animales receptores. Se comprobó la presencia de minitúbulosintraluminales en 2 de 100 túbulos seminíferos, lo que demuestra que el trasplante de una suspensión de célulasde la masa celular interna pueden colonizar los túbulos seminíferos y además mantener una espermatogénesisxenogénica de manera sincrónica con el receptor.

Palabras Clave: Células madre pluripotentes, células madre germinales, testículo, minitúbulos, espermato-génesis.

Abstract

Primordial germ cells (PGC`s) are transplanted to testicle of other individual of the same species, they colonizethe lumen of the seminiferous tubules, seeking a niche to differentiate into sperm. Our objective was to evalu-ate the intraluminal colonization of a suspension of cells in the inner cell mass (IMC`s) of blastocysts obtainedfrom mice, using a novel technique. It was transplanted a suspension of ICM by mean of inmunosurgery intothe rete testis of recipient animals which were previously treated with cyclophosphamide to reduce their ownspermatogenesis. We conrmed the presence of intraluminal minitubules in 2 of 100 seminiferous tubules,demonstrating that transplantation of a suspension of cells from the inner cell mass can colonize the seminifer-ous tubules and also maintain a synchronously xenogenic spermatogenesis with the receiver.

Keywords: Pluripotent stem cells, germ stem cells, testes, minitubules, spermatogenesis.

Introducción

D , . P, . E , , x 100 (PGC),

(Cq 1954). L PGC` , 11,5 (L P 1997, ML 1998). E - , q CGP (D . 1997, D1998, . 2001).

L , q . U stem cell , , . L

q 200 j j (J W 2006).

L q (MCI) , , 4 ‒ 7 x (E K 1981, M1981, T . 1998).

L (Gj . 2004, L-K . 2006, N . 2006); A, q (CME) invitro (CME) (N . 2007). S q CMG, (N . 2007).

E x , - , 1994 (B Ak 1994, B Z 1994). E , j q . D ,



368

Acosta et al.

Rev. peru. biol. 18(3): 367 - 372 (D 2011)

- . S q PGC . G (2002) PGC` B C

, 1 100

E j (MCI) .

Material y métodos

Animales.- S SwRk; (N= 8) 10 12 (N= 8) 6 8 - . L (N= 8) C57BL (8 10 ). A

( 22 24ºC, 14 : 10 ), (P, P) ad libitum. L Cj N I (NRC 1996). P j N Z , .

Químicos.- C (NEOPHOS), HF HEPES (LG), ’, (PBS) (H 7,4), -EDA, A , K, ,

j B.Obtención de embriones preimplantacionales en el estadio

de blastocisto.- R Sw , - ñ q 1 ñ. L (96 ) , x - PBS (H 7,4).

Obtención de anticuerpos de conejo anti-bazo de ratón y complemento de cobayo.- P

-, j N Z 4x108 /L , j. S 15L , 3L V 15L 2500 . E E 15µL -20 °C .

A , ñ 56 °C 30 . 1:10. P , . L V 2500 .

E E 15µL -20 °C.

Inmunocirugía .- L -

S Kw (1975). L ’ 5 . 3 ., PBS. A x , 37 ºC HF HEPES(LG) 30 . L x j -

1:10 30 . PBS, 5. . A , - ( 1:10) HF HEPES 20 37 ºC.S MCI -EDA 5 MCI. L MCI PBS HF HEPES A , j .L 3 x 103 L .

Tratamiento con Cicloosamida (CP) y transplan-te de células madre pluripotentes.- L C(NEOPHOS), 0,9% 220 /k [ q (750 /k)]. S 8 C57BL , CP 4 . P - , 0,15 L K 0,15L (0,9%), . C MCI A q , HF HEPES A . P , 50 80 µ 30º 2 . E . L . E 50µL. A ,

. Análisis histológico.- D 35 ,

, x j B x 16 , .S 5 µ M, x Y.

Resultados

Inmunocirugía.- C ´ x (F. 1),

- (F. 2A) - MCI (F. 2B).



369


Rev. peru. biol. 18(3): 367 - 372 (D 2011)

Inyección a la rete testis .- S x - MCI (F. 3A), (F. 3B).

Análisis del transplante de la MCI.- N -

. S q 62,5% , ; q 2% (F. 4

Figura 1. Blastocisto. A) Con zona pelúcida (Flecha) (250X). B) Sinzona pelúcida (100X).

Figura 2. Masa celular interna sin zona pelúcida A) antes de expo-nerse a los anticuerpos anti-ratón; B. Después de exponerse a losanticuerpos anti-ratón. (250X).

Figura 3. Testículos de ratón seleccionados para el transplante. A)Antes de la inoculación, mostrando el conducto eferente (Flecha)(15X); B) inoculación exitosa de la suspensión celular de la MCImezclada con el colorante (20X).

Figura 4. Colonización intraluminal y diferenciación de las células de la MCI y sincronización de los minitúbulos con respecto al epitelioseminífero con el receptor. Las echas indican la formación de los minitúbulos en el lumen de los túbulos seminíferos del animal receptor A(100X); B (400X); C (630X); D (630X).



370

Acosta et al.

Rev. peru. biol. 18(3): 367 - 372 (D 2011)

A - D). L (F. 4B,C D; F. 5), L q HF HEPES A , (F. 6).

Discusión

E j q MCI , .

S Ow . (1997),

- , , .U MCI, q J S (1995) G (2005) , CGP. L -

q , q HF HEPES , CP - , J S (1995) G (2005), q

B CP. L - () B

Ak (1994) q .

L MCI, q “ ” -, q -, Pwk . (2001),

CMP S, q (F. 6).

O x q , x B M(1987) B. P , CMP CGP CMP CGP , x Gj . (2004), H- . (2003) k . (2003), CMP

N . (2006) . L S (AR), C . (1996) , S8 q - CMP (O-A . 2006), j CGP CMG .

Figura 5. Colonización intraluminal y diferenciación de las células dela MCI (MB: estructura similar a membrana basal, S: célula de Sertoli,E: Espermatocito primario, ES: espermátide (630X).

Figura 6. Testículo control. A) (250X) y B) (400X).



371


Rev. peru. biol. 18(3): 367 - 372 (D 2011)

O q x - S CMG, R . (1993) K-S .(2005) . E j, - q x MCI,

, S CMG , . S G (2005), x q PGC , q - .

L q - MCI,

, J S (1995) G (2005) q CGP, q q . P L (), q

J S (1995).

Bj , 2% , q

, q j , J S (1995) G (2005) q 5 1% , j 106 .

P ñ q MCI - q , q (ML 1998).

Agradecimiento

A Cj S I U N- M S M (EF P j P, 081001077).

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373

m icrolophus Tigris in Las Leyendas Zoological Par

Rev. peru. biol. 18(3): 373 - 376 (D 2011)


Notes on the ecology of a relict population of the Lomas´s LizardMicrolophus tigris (Tropiduridae: Sauria) in Las Leyendas Zoological

Park, (Lima, Peru)

Juan Carlos Jordán Arizmendi 1,2

Notas sobre la ecología de una población relicto de la lagartija de lasLomas Microlophus tigris (Tropiduridae: Sauria)en el Parque Zoológico

Las Leyendas (Lima, Perú)

1Departamento de Herpetología,Museo de Historia Natural, Uni-versidad Nacional Mayor de SanMarcos, Museo de Historia Natural,Universidad Nacional Mayor deSan Marcos. Av. Arenales 1256,Jesús María Apdo. 14-0434, Lima14, Perú.

2 Laboratorio de Estudios en Biodi-

versidad (LEB). Departamento deCiencias Biológicas y Fisiológicas.Facultad de Ciencias y Filosofía.Universidad Peruana CayetanoHeredia (UPCH).


NOTA CIENTÍFICA


Abstract

I studied activity patterns, microhabitat use and thermal ecology of a small-wild population of the Loma’s lizard,Microlophus tigris in Parque Las Leyendas Zoo, from April to October of 2006. Microlophus tigris individuals wereactive in a variety of microhabitats, from bushes and vegetation debris to prehispanic bricks (adobes) and litter,during the hottest hour of the day. Mean body temperature (29,4 ºC) was similar to body temperature observedin a natural population from Lomas de Lachay, although in Parque de Las Leyendas, substrate temperature

was higher than air temperature, probably related to thermal properties of materials used as microhabitats andto seasonal differences. We encouraged the Zoo to takes conservation measures to protect this endangeredwild population of lizard in Lima city.

Keywords: Loma’s lizard, Microlophus tigris , Parque de Las Leyendas, ecology, conservation

Resumen

Evalué algunos aspectos de la ecología de una pequeña población silvestre de Microlophus tigris en el ZoológicoParque de Las Leyendas, desde abril a octubre del 2006. Microlophus tigris fue observado en una variedad demicrohábitats, desde arbustos y restos vegetales hasta ladrillos prehispánicos (adobes) y desperdicios, durantelas horas más calientes del día. La temperatura corporal promedio (29,4 ºC) fue similar a la reportada para unapoblación natural de esta especie en Lomas de Lachay, aunque en el Parque de Las Leyendas, la temperaturadel sustrato fue más alta que la temperatura del aire, probablemente relacionado a las propiedades termalesde los materiales usados como microhábitats y diferencias estacionales. Recomendamos al zoológico tomarmedidas de conservación para proteger a esta población de lagartijas amenazada dentro de la ciudad de Lima.

Palabras clave: Lagartija de las Lomas, Microlophus tigris , Parque de Las Leyendas, ecología, conservación.

Z k w x( f, .), ( ,w , x, ; R1994). T Pq L L Z, SM L, P w x (

w ), w

x . T (. 64 ) - L (0 600 A.C.) C M (1100 1532 A.C.). S 1964, P (://

www.../.).

A P L’ L, Microlophus tigris 1845, w k (F. 1). T j Aq, P A (C I 1995, Dx W1975, P 2005). Dx W (1975) x - L C ; . A, w

w , Phyllodactylus sentosus , (P 2010).

Microlophus tigris Endangered w (D.S. Nº 034-2004-AG/INRENA). A (J ..), , L ( x, M . 2007), M. tigris k

. , Microlophus tigris L L N R (P 2005). I , I , Microlophus tigris Pq L Z.

(12º04’04.74, 77º05’14.40”, 53 ) - , ( 40 ) ( k )(F. 2). N , w (Bougainvillea .), (Prosopis .), (Pinus .)

. F wk w A O 2006. A , w w . M w



374

Jordán Arizmendi

Rev. peru. biol. 18(3): 373 - 376 (D 2011)

w: 1) / , 2) - ( “”: -

- k), 3) , 4) 5) ( , ). V (C S 1994) w w , 09:00 17:00 25 (200 /).I w w - w M W® w 30 . I

w .S w x w . A w

.

S w S (Pk 1973, V Z 1996):

B = 1/Σ ρi 2

w ρi i () .

ANOVA w . D w - w K-S B (Z 1999),. A w w Sw w α- 0, 05.

I Microlophus tigris (=83) w (39% 43% ), (,

Figure 1. Microlophus tigris (female) basking on a plastic cylinder on Las Leyendas Zoological Park.

0

5

10

15

20

25

30

35

40

45

vegetal

debris

pre -hispanic

ruins

construction

debris

stones other P e r c e n t a g e

o f i n d i v i d u a l s ( % )

Microhabitats

Figure 2. Microhabitat use by Microlophus tigris in Parque de LasLeyendas.

0

10

20

30

40

10 11 12 13 14 15 16

P e r c e n t a g e o f i n d i v i d u a l s ( % )

Hours

Figure 3. Activity patterns of Microlophus tigris in Parque de LasLeyendas.



375

m icrolophus Tigris in Las Leyendas Zoological Par

Rev. peru. biol. 18(3): 373 - 376 (D 2011)

; 23,9%) (F. 2).

S w 3,92. A (=99) w w 10:00 16:00 , w k (F. 3). A w 4.94.M (

b) w 29,4 ± 4,6ºC,

( a) w 25,4 ± 3,03 ºC -

( s ) w 30,6 ± 6,7 ºC. R 1.

a s w b ( 1, F. 2). b

w

s

a,

s w

a(F

1,32= 8,43; =0,006).

Microlophus tigris w P (2005) L L . I L L, M. tigris k (73%) w k (P 2005). D , M.tigris w , k . T -,

. O, Pq L w w (.. ) .

S w L L (P 2005), (~10:00.) (~16:00 ).T w x .T , w

w (H 1974, C . 1999). B Microlophus

tigris w L L ( ) Pq L L ( ). Hw, w : w

s

aw

, Pq L L, s w

a. T

M. tigris , k , , k (- w ) - : ( D 2003 M 2004) P (2005) w (2005) .Hw, M. tigris (P 2005). A .

T : , . A, k

( kk Phyllodactylus sentosus ) Pq L L Z, . A, w x Z: w w M. tigris ( A, 28, 2006) w w j A,6, 2010. Lw / q .

C Pq L. A w Pq L LZ .

Acknoledgements

JCJ k Pq L L Z . D. I O (Ox- U), D. A C (F I

U) w w .

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Variables Tb Ta Ts Ta vs. Ts

X ± SD 29,4 ± 4,6 25,4 ± 3,03 30,6 ± 6,7 -

Range 19,6-36,4 19,6-36,4 18,4-43 -

R2 0,47 0,30 0, 47

F 13,57 6,61 6,35P <0,002 <0,02 <0,01

Table 1. Multiple regression values among temperature variables from Microlophus tigris (n=17).



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Jordán Arizmendi

Rev. peru. biol. 18(3): 373 - 376 (D 2011)

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377

p hyllodacTylus reissi in Parue Nacional Cerros de Amotape

Rev. peru. biol. 18(3): 377 - 380 (D 2011)


Notes on the ecology of Phyllodactylus reissi (Phyllodactylidae:Sauria) in Parque Nacional Cerros de Amotape (Tumbes, Peru)

Juan Carlos Jordán Arizmendi 1,2

Notas sobre la ecología de Phyllodactylus reissi (Phyllodactylidae: Sauria)en el Parque Nacional Cerros de Amotape (Tumbes, Perú)

1Departamento de Herpetología,Museo de Historia Natural, Uni-versidad Nacional Mayor de SanMarcos, Museo de Historia Natural,Universidad Nacional Mayor deSan Marcos. Av. Arenales 1256,Jesús María Apdo. 14-0434, Lima14, Perú.

2 Laboratorio de Estudios en Bio-

diversidad (LEB). Departamento deCiencias Biológicas y Fisiológicas.Facultad de Ciencias y Filosofía.Universidad Peruana CayetanoHeredia (UPCH).


NOTA CIENTÍFICA

AbstractSome basics aspects on the ecology of the nocturnal gecko Phyllodactylus reissi from Parque Nacional Cer -ros de Amotape (Tumbes, Peru) are described. This species used rock boulders (57,4%) and trees (31,9%)as microhabitats primarily, exhibiting a nocturnal activity pattern, with a peak between 2100-2200 hours,remaining active until midnight. Body temperature (mean 24,4 ºC) was correlated with both air and substratetemperature, with the last variable affecting in higher degree (47%) the body temperature of this species. Theslightly high body temperature of Phyllodactylus reissi, compared to other Phyllodactylus geckos, could be

related to nocturnal microhabitat use and diurnal retreat site selection. More studies on lizard ecology from thisendangered ecosystem are needed.

Keywords: Phyllodactylus reissi , northewestern dry forest, lizard ecology, Parque Nacional Cerros de Amotape.

ResumenSe describen algunos aspectos básicos de la ecología de Phyllodactylus reisii en el Parque Nacional Cerrosde Amotape (Tumbes, Peru). Esta especie emplea paredes rocosas (57,4%) y árboles (31,9%) como micro-hábitats principalmente, exhibiendo un patrón de actividad nocturno, con un pico entre las 2100-2200 horas,permaneciendo activos hasta la medianoche. La temperatura corporal (promedio 24,4ºC) se correlacionócon la temperatura del aire y la del substrato, donde esta última variable afecta en un mayor grado (47%)la temperatura corporal de esta especie. La ligeramente alta temperatura corporal de Phyllodactylus reissi,comparado con otros Phyllodactylus, podría estar relacionada con la selección de microhábitats nocturnos yrefugios diurnos. Estudios sobre la ecología de los saurios en este ecosistema amenazado son necesarios.

Palabras clave: Phyllodactylus reissi , bosques secos del noroeste, ecología de lagartijas, Parque NacionalCerros de Amotape.


Phyllodactylus G 1828, w P, w 13 (Dx H 1970, V . 2008). T k -, , , -A (Dx H 1970, P 2005, J 2006, V . 2008).

Phyllodactylus reissi P 1862 k ,

w P (Dx H 1970, H 1979, J 2006, C D 2007,V . 2008) -

A (V . 2008). L “jñ” “j”, w Phyllodactylus (Dx H 1970). F x, P (w P) P. reissi w P. koordi , P. clinatus , P. microphyllus (Dx H 1970, H 1979, C D 2007) A w P. thompsoni P. delsolari (V . 2008).

, w P. reissi (J 2006,

W . 1996). I , I , , Phyl-lodactylus reissi C AN Pk.

I QF B S (03º48´ 23.3”S, 080º16´00.4”W, - 651 ), C A N Pk.

A w P. reissi 05 (O - D2006), 18 /.T , w -

w w P (W 1998, P . 2007). I - , Phyllodactylus reissi . A w w 19:00 24:00 w w w.

B, (1 ) w w M W® qk- . H - w . T w

w -w ANOVA w . D w w L‘ . A w w w S. 5.0 Ww w α- 0,05.



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Jordán Arizmendi

Rev. peru. biol. 18(3): 377 - 380 (D 2011)

F- Phyllodactylus reissi w wk. T w k w(57,4%) (31,9%; F. 1). S w (6,4%) wk (4,3%), - w . M (k) w84.36 (10-260) w ()

w 101.7 (12-186) 96.71 (7 259), .

M Phyllodactylus reissi w 24 Cº± 1,04 (= 38). M w 23,2 Cº 23,7 Cº, ( 1). B P. reissi (F

1,74

=10,58, =0,001) (F1,74

=1,89, =0,17).

A w -

(F1,74 =2,70, =0,10). B w w ( 1). B, w P. reissi (F. 2 3) w 47% .

I w 19:30 00:00 .Pk w w 21:00 22:00 (F. 4).

U k Phyllodactylus k P (Dx H 1970). F x, w Phyllodactylus (V . 2008). P. lepydopigus “” (Caesalpinia .) , ,“” (- w ) L L N R (P 2005). Phyl-lodactylus reissi k, k , x, .Hw, H (1979) P. reissi , q (Prosopis .) C I (P). I, C D (2007) w k q C I,

w k (J, . .).

O P. reissi - C A N Pk (J 2006).Phyllodactylus reissi - , , -x (M 1994, Vk . 1999, Z D 2001), w (J. J, ). N k w , x

Figure 1. Microhabitat use by Phyllodactylus reissi in Cerros deAmotape National Park.

21

22

23

24

25

26

27

20 21 22 23 24 25 26 27

B o d y t e m p e r a t u r e ( ° C )

Air temperature (°C)

Figure 2. Relationship between air temperature and body tempera-ture at the study site for Phyllodactylus reissi (y = 0,640x + 9,382,n=38, p = 0,036).

21

22

23

24

25

26

27

21 22 23 24 25 26 27 28

B o d y t e m p e r a t u r e ( ° C

)

Substrate temperature ( °C)

Figure 3. Relationship among body temperature and substratetemperature for Phyllodactylus reissi in Parque Nacional Cerros deAmotape (y = 0,514x + 11,89, n=38, p < 0,001).

Figure 4.Activity pattern of Phyllodactylus reissi in Cerros de AmotapeNational Park.

0

2

4

6

8

10

12

19:30 20:00 20:30 21:00 21:30 22:00 22:30 23:00 23:30

N u m b e r o f l i z a r d s

Time of activity



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p hyllodacTylus reissi in Parue Nacional Cerros de Amotape

Rev. peru. biol. 18(3): 377 - 380 (D 2011)

Gonatodes caudiscutatus (S), w -, (J. J, . .).

Phyllodactylus reissi (Dx H 1970, H 1979,P 2005, C D 2007, V . 2008).T P. reissi x 00:00 , k w x , (C . 1985, K 1989,

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Lw (H . 1989, A .1997, K P 2000). Phyllodactylus k w 21.9 ºC 22.3 ºC, (W . 1996,P 2005). I Pq N C A, P. reissi P W . (1996). T P (2005) Phyllodactylus lepidopygus,

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M C A N Pk w

(J 2010).Acknowledgements

JCJ k Pq N C A , Aj M - D C . A, D.R M (F I U, D. I- O (Ox U) . J H. C, D H (MUSM), k D .

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Variables Tb Ta Ts Ta vs. Ts

X ± SD 24 Cº ± 1,04 23,2 Cº ± 1,2 23,7 Cº ± 1,26 -

Range 21,8-26,6 21,1-28 21,6-27 -

R2 0,12 0,47 0, 47

F 4,93 32,50 15,91

p <0,03 <0,001 <0,01

Table 1. Multiple regression values among temperature variables from Phyllodactylus reissi (n=38).



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Jordán Arizmendi

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381

Distribución del rango migratorio de m uscisaxicola FronTalis en el Perú

Rev. peru. biol. 18(3): 381 - 382 (D 2011)


Extensión de la distribución del rango migratorio de la “Dormilona deFrente Negra”, Muscisaxicola frontalis (Aves: Tyrannidae) en el Perú

Renzo Alcocer1, Grace P. Servat2 y Wilfredo Mendoza3

Extension of the distribution of the migratory range of the “Black-fronted

Ground Tyrant” Muscisaxicola frontalis (Aves: Tyrannidae) in Peru

1 Área de Ornitología, ColecciónCientíca, Museo de Historia Na-tural, Universidad Nacional SanAgustín de Arequipa. Arequipa,Perú. Email: [email protected]

2 Smithsonian Conservation Bio-logy Institute, CCES-NZP; 1100Jefferson Drive, Suite 3139, Was-hington, DC 20013-7012. E-mail:[email protected]

3 Laboratorio de Florística, Mu-seo de Historia Natural-UNMSM.Av. Arenales 1256, Jesús María,

Lima. Perú. Email: [email protected]

NOTA CIENTÍFICA


Resumen

Extendemos el rango migratorio, altitudinal y de distribución norte de Muscisaxicola frontalis (“Dormilona deFrente Negra”), migrante Austral previamente reportado para el sur del país. La especie fue observada enladeras pedregosas cerca a remanentes de bosque de Queñoa (Polylepis favipilla, Rosaceae) a 4450 m dealtitud, en el Departamento de Huancavelica.

Palabras clave: Muscisaxicola frontalis , distribución, Huancavelica, ladera rocosa, bosque de Queñoa, mi-gratoria Austral.

Abstract

We extent the migratory range of distribution and elevation of Muscisaxicola frontalis (Black-fronted Ground-tyrant), Austral migrant reported previously only in the Southern region of the country. The species was observedin rocky slopes near Polylepis favipilla (Rosaceae) woodlands at 4450 m of altitude, in the HuancavelicaDepartment.

Keywords: Muscisaxicola frontalis , distribution, Huancavelica, rocky slopes, Polylepis woodlands, Australmigrant.

L D F N ( Muscisaxicola rontalis (B-, 1860), ), (> 2900 ) S C

A (C) M R N ( A). E Jj ( A-

) A B (> 3600 ) (Fjå . 1990) (F. 1). E P, M. rontalis (P 2010), , D Aq, Mq P (F. 1,1), 3750 4300 , , , (Fjå K 1990, J . 2003, S . 2007).

U M. rontalis 17 2010, q Qñ (Po-lylepis avipila (B) M. K S-L., R), H, k 153 L L-W (D H-

, P H, 13°30'08.01"S; 75°09'22.60"W,4450 ) (F. 1). E , - Jarava ichu (P), Senecio ., Chuquiraga spinosa (A) qñ P.

avipila. E q q (F. 2).

E 18 , , j . E j,

; A, ( ) - (J . 2003), q ( 1x1 ), q

Figura 1. Distribución de Muscisaxicola frontalis en Sudamérica (a)(Ridgely, et al. 2007) y en el Perú (b y c). En c) Los círculos negroscorresponden a registros conrmados, los círculos blancos son regis-tros por conrmar (Schulenberg et al. 2006). El círculo gris representael nuevo reporte para la localidad de Huaytará (Huancavelica).

N

220 km

HuancavelicaCusco

Puno

Arequipa

Moquegua



382

Alcocer et al.

Rev. peru. biol. 18(3): 381 - 382 (D 2011)

j 25%. U

M H N U N S A Aq (MUSA) U N M S M (MUSM) q M. rontalis . E (j j -) MUSM (GSV 2010-85). C x H 4450 P.

Agradecimientos

A E. L j, D M

H N U S A Aq(MUSA) L. S, C C O M U N M S M(MUSM) .

A D G G F F S (RD N.0130-2010-AG-DGFFS-DGEFFS 26/3/2010).

Literatura citadaFjeldså J. & N. Krabbe. 1990. Birds of the High Andes. Copenha-

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(acceso 27/07/2010)Schulenberg T., D. F. Stotz, D. F. Lane, J. P. O’Neill & T. A. Parker

III. 2007. Birds of Peru. Princeton Field Guides.

Figura 2. Muscisaxicola frontalis , nótese la coloración negra en la región frontal que se prolonga hasta la región pileal central (corona) y laregión loral de color blanco (Foto: R. Alcocer).



383

Acantocéalos Oligacanthorhynchidae del Perú

Rev. peru. biol. 18(3): 383 - 385 (D 2011)


Algunos acantocéfalos de la familia Oligacanthorhynchidae del Perú


Some acanthocephalans of the family Oligacanthorhynchidae from Peru

Laboratorio de Medicina Vete-rinaria Preventiva. Facultad deMedicina Veterinaria. UniversidadNacional Mayor de San Marcos.Av. Circunvalación 2800, San Borja.Lima, Perú.


NOTA CIENTÍFICA


Resumen

Cuatro especies de acantocéfalos pertenecientes a la familia Oligacanthorhynchidae son estudiados. Dos deellas corresponden a nuevos hallazgos geográcos. Adicionalmente se registra por primera vez en el Perú aOligacanthorhynchus carinii y Oligacanthorhynchus major .

Palabras clave: Acantocefalos, Oligacanthorhynchidae, Perú.

Abstract

Four species of acanthocephalan (Oligacanthorhynchidae) were studied. Two species are new geographicalrecords. Additionally, Oligacanthorhynchus carinii and Oligacanthorhynchus major are registered for the rsttime in Peru.

Keywords: Acanthocephala, Oligacanthorhynchidae, Perú.

Introducción

L q . P , -, (Pk 1956).

L P .L ( . 2005). E j P, .

Material y métodos

L - j q . L, j 70%. P , - (1:2 V/V) S. A

. L C Z Axk-40.

P (1917), Pk (1956) R B (2006). L x A (1985). P x C H IR M H N UNMSM

(MUSM) L, P.

ResultadosFamilia oliGaCanthorhynChidae outhwell & maCFie, 1925

1. Oligacanthorhynchus carinii ( Travassos, 1917)Schmidt, 1972

(F. 1)

H: Dasypus novemcinctus (D).

L: I .

L: Iq (3°45’00”S, 73°15’00”W), LD Nº: MUSM 3016

Comentario: Oligacanthorhynchus carinii 140 220 2 2,5 . F B (1917) Haman-niella carinii ; , M (1932 1933? ) ravassosia.S (1972) O- Hamaniella ravassosia Oligacanthorhynchus .

E

(D): Dasypus novemcinctus B (, 1917;L F, 1938); olypeutus tricinctus conurus B(M, 1933); Chaetophractus vellerosus olypeutus mataco A (M, 1984) olypeutes mata-Figura 1. Oligacanthorhynchus carinii . Probóscide de un espécimen

adulto. Escala 0,2 mm



384

Gomez-Puerta

Rev. peru. biol. 18(3): 383 - 385 (D 2011)

cus P. C , .

2. Oligacanthorhynchus major (Machado-Filho,1963) Schmidt, 1972

(F. 2)

H: ayassu pecari ()

L: I .

L: (12°35’36”S, 69°10’35”W), M D.

D Nº: MUSM 3017

Comentario: A , -

498 697 . M-F (1963) Macracanthorhyn-chus major (ayassu tajacu) B. P, S(1972) Oligacanthorhynchus . L O. major - (ayassu pecari . tajacu) B B. E O. major P.

3. Macracanthorhynchus hirudinaceus (Pallas, 1781)

H: Sus scroa . domestica (S)L: I .

L: C H (04°05’00”S, 80°53’00”W),.

D Nº: MUSM 3018

Comentario: M. hirudinaceus q -. A P, : Cj, Cj, C, H,S M, S P (Cj); H, L P

(H); C, Fñ (Lq); P (U-); P.

L -. L M . hirudinaceus

, , . E q S P, M . hirudinaceus (R . 1989, B M 1987,H . 1983, L . 1983).

4. Prosthenorchis elegans (Diesing, 1851)

H: Saimiri sciureus (C)

L: I .

L: L.

D Nº: MUSM 3019

Comentario: P. elegans . F P Saimiri sciureus (D, 1963). P

, Saguinus labiatus , S. mystax , Saimiri boliviensis S. sciureus L (M ., 2003); S .sciureus M D (P . 2004). E j S. sciureus L.

E , j (Sk 1965). L - P. elegans : . E

, x qx. E .

L P - , j. E P O. carinii O. major .

C O. carinii O. major , O P M.hirudinaceus, P. elegans , Oncicola spirula Oncicola canis .

Literatura citadaAmin O.M. 1985. Classication. In: D. W. T. Crompton and B. B.

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hirudinaceus infection: report of 3 cases. J. Med. Assoc.Thai. 66: 303-310.

Figura 2. Oligacanthorhynchus major . (A) Macho adulto. (B) Machoinmaduro. Escala 1,0 cm.



385

Acantocéalos Oligacanthorhynchidae del Perú

Rev. peru. biol. 18(3): 383 - 385 (D 2011)

Leng Y.J., W.D. Huang & P.N. Liang. 1983. Human infection withMacracanthorhynchus hirudinaceus Travassos, 1916 inGuangdong Province, with notes on its prevalence inChina. Ann. Trop. Med. Parasitol. 77: 107-109.

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386

Gomez-Puerta

Rev. peru. biol. 18(3): 383 - 385 (D 2011)



387

Primer registro del cestodo c repidoBoThrium gerrardii en el Perú

Rev. peru. biol. 18(3): 387 - 388 (D 2011)


Primer registro de Crepidobothrium gerrardii (Cestoda: Proteocephalidae)en el Perú


First record of Crepidobothrium gerrardii (Cestoda: Proteocephalidae) in

Peru

Laboratorio de Medicina Vete-rinaria Preventiva. Facultad deMedicina Veterinaria. UniversidadNacional Mayor de San Marcos.Av. Circunvalación 2800, San Borja.Lima, Perú.


NOTA CIENTÍFICA


Resumen

Se registra por primera vez la presencia en el Perú del cestodo Crepidobothrium gerrardii parasitando el intestinode una boa constrictora (Boa constrictor ) procedente del departamento de Loreto. Cuatro especímenes fueronestudiados e identicados como C. gerrardii .

Palabras clave: Crepidobothrium gerrardii , cestodo, Boa constrictor , Perú.

Abstract

It is the rst record of cestode Crepidobothrium gerrardii in Peru, parasitizing the intestine of a boa constrictor(Boa constrictor ) from Loreto. Four tapeworms were studied and identied as C. gerrardii .

Keywords: Crepidobothrium gerrardii , cestode, Boa constrictor , Peru.

Introducción

E P L R, 1911, j (F 1965, R 1994,E E 2006). D , Crepi-dobothrium M, 1900; (R 1994).

A, , Ophiotaenia . Bothrops atrox L, 1758, Boa constrictor L, 1758, Epicrates cenchria L, 1758 Corallus caninus L, 1758( G 1985,S . 2004). E j Crepi-dobothrium gerrardii B, 1860 P.

Material y métodos

E M 2004, x (B. constrictor )

N (4°29’09.00”S 73°35’40.96”W), Iq,L, P. S 4 , j 70%. P x, ñ - , B C (G . 1986). L C Z Axk 40, q . L x .

P R (1994) C (1989). L - x R (2003).

P x C H I R M H N UNMSM (MUSM 2978)L, P.

ResultadosClase: Cestoda

orden: ProteoCePhalidea mola, 1928Familia: ProteoCePhalidae la rue, 1911Género: C repidobothrium montiCelli, 1900

Crepidobothrium gerrardii Baird, 1860

C 320 – 540 x 4 . E x q 0,60 – 0,72 . L (F 1) 2500 4800 2450 3000 . L 4020 4750 1420 – 1680 . E . L (312 360), . L . E q 0,99 1,30

Figura 1. Proglotis maduro de Crepidobothrium gerrardii . Escala0,5mm.



388

Gomez-Puerta

Rev. peru. biol. 18(3): 387 - 388 (D 2011)

. L .

C C (1989) q C. gerrardii .

Discusión

D ñ

Crepidobothrium q . M (1927) q Crepidobothrium 7 -. F (1965) .S (1986) q 5 . F, C 1989 ( ), - Crepidobothrium q 5 : C. gerrardii ; C . dollusi C . lachesidis (Eunectes murinus L, 1758); C . viperis C . garzonii Bothrops alternatus D, B D, 1854 (C 1988, C 1989, C 1989).

Crepidobothrium gerrardii B (1860) S. P P . MC- (1921) etrabothrius boiae B.constrictor B etrabothrius brevis B. constrictor Mx. D C (1988 ) q. boiae . brevis C. gerrardii.

L C. gerrardii (R 1967). L x ( C 1989).

E C. gerrardii P .

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389

Eecto de los metales sobre microcrustáceos de agua dulce

Rev. peru. biol. 18(3): 389 - 396 (D 2011)


Efecto de los metales sobre microcrustáceos de agua dulce.Avances metodológicos y potencialidad de cladóceros y copépo-

dos como organismos test

María Florencia Gutierrez1 y Ana María Gagneten2

Effects of metals on freshwater microcrustaceans. Metodological advan-

ces and potentiality of cladocerans and copepods as test organisms

1 Instituto Nacional de Limnología(CONICET- UNL). Ciudad Univer-sitaria. Santa Fe, Argentina. Email:[email protected]

2 Facultad de Humanidades yCiencias, Universidad Nacional delLitoral, Ciudad Universitaria. SantaFe, Argentina. Email: [email protected]

COMENTARIO


Resumen

El incremento de los metales en los cuerpos de agua dulce a causa de las actividades antropogénicas generaimportantes alteraciones sobre la biota. Esta revisión analiza los efectos adversos de varios metales de re-levancia ecotoxicológica sobre los microcrustáceos zooplanctónicos (cladóceros y copépodos), los avancesexperimentales en esta línea y las ventajas de cada grupo como organismos test. En general, la necesidadde obtener indicadores más sensibles y representativos que los tradicionales, promovió lineamientos haciaestudios subcrónicos, interspecícos y multigeneracionales. Por otra parte, la tendencia actual hacia el estudiode mezclas de sustancias y los efectos indirectos permite adquirir una visión más integral del problema. Elimpacto sobre las poblaciones es muy variable, dependiendo de la naturaleza del metal, las características

del medio, el tiempo de exposición, las condiciones de cultivo y aspectos genéticos. Sin embargo, la mayoríade los trabajos se centran en pocas especies, dejando vacancias en el conocimiento de las representantes decada región particular. Si bien algunos atributos de los cladóceros y copépodos como el tamaño, la morfologíay el rol ecológico los tornan buenos indicadores, las diferencias en el desarrollo, reproducción y estrategias deperpetuación coneren ventajas a un grupo sobre otro.

Palabras clave: ecotoxicología; metales; microcrustáceos zooplanctónicos; diseños experimentales.

Abstract

The increase of metals in fresh water systems due to anthropogenic activities cause important alterationson the biota. The present review analyze the adverse effects of various metals of ecotoxicological relevanceon microcrustaceans zooplankton species (cladocerans and copepods), the experimental advances and theadvantages of each group as test organisms. In general, the need to obtain more sensitive and representativeindicators than the tradicional ones leads to subchronic, interespecic and multigenerational studies. Addition-ally, the analysis of mixtures as well as their indirect effects allows to acquire more integral knowledges of theimpact of contaminants. The toxic effects are different, depending on the nature of metals, the physicochemical

characteristics of the water, exposutre time and genetic traits. However, most works are focused on few spe-cies, leading vacant areas on the knowledge of the representatives of every particular region. Despite somecladocerans and copepods atributes make them good bioindicators (size, morphology and ecological role), dif-ferences of development, reproduction and perpetuation strategies bring advantages to one group on another.

Keyword: ecotoxicology metals zooplanktonic microcrustaceans; experimental designs.

Introducción

L . N , q -

, (C F 2000). E - q . U q (B S 1974).

E , - . S - , q . S ,

j . I , ,

(O . 2006).L

, x . A, qñ ñ, - x (G P1996). E , , , (B

2010). E q q , , .



390

Gutierrez & Gagneten

Rev. peru. biol. 18(3): 389 - 396 (D 2011)

E j j - x . E x, x , . A, q

(F 2009, B 2010), j j x .

E , .L, , j j .

Diseños experimentales y avances metodológicos en es-tudios de laboratorio.

L - XX (Nw . 2003). É x x , 50% (LC

50;

EC50

) (CEM; CENO). A (OECD 1981, EPA 1984,

APHA 1989). S , (H2001, C 1986). E , , q - .E , . E , q j, - (S Cw 1989, C Fw 2005). F, x , x .

L -

, , - . E , -, j x x (D C J 1997, Rw S2005, S-O . 2010).

N j - . D , B . (2004) ñ q

. E G . (2010) q Notodiaptomus conier

j q q j ñ .P , - . E , (S ., 1983; W ., 1998), (S S, 1997), x

(S S, 1994) (S . , 1983) , . A, x.F, r ( ) (C B1989, K K 1995, F Cw, 1999). P (A 1976,

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F, x- , (B 2010),

(Z 2000). E q - , , .

A , q q .E , q -

. P , j q .



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E j x - B . (2002). E

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. L x .

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50

-48 Mesocyclops pehpeiensis 75 µ L-1 (W Pk 2004), q Cyclops abyssorum Eudiaptomus padanus 2500 µL-1 500µL-1 (B S 1974).

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Conclusión

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17. l As citAs En El tExto ñ (j: (C 1988) « ... S (1976)…» (C C 1998, R 1999, P 2001)). S j ñ, ñ (j: C 1952). C .(Ej: (S . 1981) « S . (1981)»).

PAUTAS PARA LA PRESENTACIÓN DE LOS ARTÍCULOS EN LA REVISTA PERUANA DE BIOLOGÍA

Enero 2009

(C....)



400

18. La l itErAturA citAdA x .L , , . E . E q . S . E , , . Ej:. M G.G., R.C. B & M. Yk. 1981. A -k A (M: S). B 13: 81 -85.

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A 31/07/200519. L , ñ ; .20. D ( ) .21. L F (, q, , j, , , .) ; . L j x

x. C .22. C j , C , ñ

A4, . L j . L . L 15x10 ñ , , , A4. C .23. S , IFF, ñ , 600 . L (.x, .w, ., .). L SHP.F JPGE 3Mx. O IFF, BMP, A, PSD.C .24. L , , x MS-W. O MS-Ex MS-W. O , no como imágenes insertadas

en otros archivos ( j j MS-W Ex).25. S .26. E , q .27. U j , costo por impresión .28. E j . U .

Comité Editor E: [email protected] : L R (E)R P BUNMSM-FCB

A 11-0058

L 11P



(continúación...)

Notas científcas

373 Notes on the ecology o a relict population o the Lomas´s Lizard Microlophus tigris (ropiduridae: Sauria) in Las Leyendas Zoological Park,(Lima, Peru)Notas sobre la ecología de una población relicto de la lagartija de las Lomas Microlophus tigris (ropiduridae: Sauria)en el Parque ZoológicoLas Leyendas (Lima, Perú)

Juan Carlos Jordán Arizmendi377 Notes on the ecology o Phyllodactylus reissi (Phyllodactylidae: Sauria) in Parque Nacional Cerros de Amotape (umbes, Peru)

Notas sobre la ecología de Phyllodactylus reissi (Phyllodactylidae: Sauria) en el Parque Nacional Cerros de Amotape (umbes, Perú)

Juan Carlos Jordán Arizmendi381 Extensión de la distribución del rango migratorio de la “Dormilona de Frente Negra”, Muscisaxicola frontalis (Aves: yrannidae) en el PerúExtension o the distribution o the migratory range o the “Black-ronted Ground yrant” Muscisaxicola frontalis (Aves: yrannidae) in Peru

Renzo Alcocer, Grace P. Servat y Wilfredo Mendoza 383 Algunos acantocéalos de la amilia Oligacanthorhynchidae del Perú

Some acanthocephalans o the amily Oligacanthorhynchidae rom Peru Luis A. Gomez-Puerta 387 Primer registro de Crepidobothrium gerrardii (Cestoda: Proteocephalidae) en el Perú

First record o Crepidobothrium gerrardii (Cestoda: Proteocephalidae) in Peru Luis A. Gomez-Puerta

Comentarios

389 Eecto de los metales sobre microcrustáceos de agua dulce. Avances metodológicos y potencialidad de cladóceros y copépodos como organismos testEects o metals on reshwater microcrustaceans. Metodological advances and potentiality o cladocerans and copepods as test organisms

María Florencia Gutierrez y Ana María Gagneten



(Continúa...)

R evista PeRuana de Biología

Volumen 18 Diciembre, 2011 Número 3


Contenido

Trabajos originales

271 Talictrum peruvianum (Ranunculaceae), una especie nueva de Lima, PerúTalictrum peruvianum (Ranunculaceae), a new species rom Lima, Peru

Huber Trinidad, Asunción Cano y Blanca León275 Vochysia awasensis (Vochysiaceae), nueva especie de los Bosques Montanos del Chocó ecuatoriano

Vochysia awasensis (Vochysiaceae), new species rom the Mountain Forests rom the Ecuatorian Chocó Isau Huamantupa Chuquimaco279 Detailed assessment o the distribution o Astrocaryum sect. Huicungo (Arecaceae) in Peru

Evaluación detallada de la distribución de Astrocaryum sec. Huicungo (Arecaceae) en Perú Francis Kahn, Betty Millán, Jean-Christophe Pintaud and Miguel Machahua 283 Riqueza, uso y origen de plantas medicinales expendidas en los mercados de la ciudad del Cusco

Richness, use and origin o expended medicinal plants in the markets o the Cusco City Isau Huamantupa, Magaly Cuba, Rosa Urrunaga, Elías Paz, Nelson Ananya, Myrthia Callalli, Nadir Pallqui y Hozmary Coasaca 293 Desarrollo reproductivo del “amancay” Ismene amancaes (Amaryllidaceae) en su ambiente natural

Reproductive development o “amancay” Ismene amancaes (Amaryllidaceae) in its natural environment Mery L. Suni, Edisson Pascual y Enoc Jara 299 Nueva especie de Mediorhynchus (Acanthocephala, Gigantorhynchidae) en urdus chiguanco (urdidae) de Junín, Perú

New species o Mediorhynchus (Acanthocephala, Gigantorhynchidae) in urdus chiguanco (urdidae) rom Junín, Peru Rocío Moya, Rosa Martínez y Manuel Tantaleán303 Aspectos estructurales y cuantitativos del ovario de Fulica armillata (Aves: Rallidae)

Structural and cuantitative aspects o the ovary o the Fulica armillata (Aves: Rallidae) Mirian Bulfon y Noemí Bee de Speroni311 Análisis de las vocalizaciones del murciélago longirrostro peruano Platalina genovensium Tomas, 1928 (Chiroptera: Phyllostomidae)

Analysis o vocalizations o Long-snouted Bat Platalina genovensium Tomas, 1928 (Chiroptera: Phyllostomidae) Juan A. Malo de Molina, Sandra Velazco, Víctor Pacheco y Juan Carlos Robledo319 res nuevos registros de asteroideos (Echinodermata: Asteroidea) de Perú

Tree new records o asteroids (Echinodermata: Asteroidea) rom Peru Yuri Hooker y Francisco A. Solís-Marín325 Estudio de la actividad ermentativa de Hansenula anomala y producción de compuestos químicos de importancia sensorial

Study o the ermentative activity o Hansenula anomala and production o chemical compounds o sensory importance Waldir Estela Escalante, Mojmír Rychtera, Karel Melzoch, Elena Quillama Polo y Beatriz Hatta Sakoda 335 Inmunogenicidad del veneno de Bothrops atrox (Ophidia: Viperidae) y su evaluación por métodos inmunoenzimáticos

Immunogenicity o Bothrops atrox (Ophidia: Viperidae) venom and its evaluation by immunoenzymatic methods Gustavo A. Sandoval, Julio Mendoza, William Roldán, Yrma Espinoza, Hilda Solis y Armando Yarlequé343 Propagación in vitro de Carica papaya var. PM-331 a partir de meristemos apicales

In vitro propagation o Carica papaya var. PM-331 rom apical meristemReynaldo Solis L., Julio Olivera S. y Raael S. La Rosa L.

349 Diagnóstico e identifcación rápidos por PCR de Yersinia ruckeri aislada de Oncorhynchus mykiss procedentes de Canta, Lima, PerúRapid diagnosis and identifcation by PCR o Yersinia ruckeri isolated o Oncorhynchus mykiss rom Canta, Lima, Peru

Susana Sirvas-Cornejo, Claudia Cecilia Sánchez-Robinet y César Peña-Domínguez 355 Eecto de la adición de materia orgánica sobre la dinámica poblacional bacteriana del suelo en cultivos de papa y maíz

Eect o addition o organic matter on bacterial population dynamics o soil in potato and corn crops David García Ventocilla, Gloria Mamani Gamarra, Nicolás Román Cabello, Luis Suárez Salas, Ana Contreras Marín y Julio Malca Jauregui361 Optimización de los medios de propagación y enraizamiento in vitro de las variedades “criollas” de vid para elaborar pisco

Optimization o media or in vitro propagation and rooting o creole grapevine varieties utilized or pisco making Eugenio González, Diego Pignataro, Gisella Orjeda, Wilfredo L. Gonzáles y Daniel Clark 367 Colonización intraluminar testicular y dierenciación de la masa celular interna en ratones ( Mus musculus )

Intraluminar testicular colonization and dierentiation o the inner cell mass in mice ( Mus Musculus ) Láyonal Acosta, Víctor Núñez, Jose Pino y Betty Shiga

RPB v18n3

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