III Estudio Para Determinacion de Prevalencia de Infeccion de Newcastle en Las Granjas Avicolas...
49
1 III ESTUDIO PARA DETERMINACIÓN DE PREVALENCIA DE INFECCIÓN DE NEWCASTLE EN LAS GRANJAS AVÍCOLAS COMERCIALES EN OCHO ZONAS DEL PAÍS SEBGERENCIA DE PROTECCIÓN ANIMAL DIRECCIÓN TÉCNICA DE SANIDAD ANIMAL 2011
-
Upload
stephane-lovon -
Category
Documents
-
view
47 -
download
2
Transcript of III Estudio Para Determinacion de Prevalencia de Infeccion de Newcastle en Las Granjas Avicolas...
1
III ESTUDIO PARA DETERMINACIÓN DE PREVALENCIA DE INFECCIÓN DE NEWCASTLE EN LAS
GRANJAS AVÍCOLAS COMERCIALES EN OCHO ZONAS DEL PAÍS
SEBGERENCIA DE PROTECCIÓN ANIMAL
DIRECCIÓN TÉCNICA DE SANIDAD ANIMAL
2011
2
CONTENIDO
1. INTRODUCCION
2. INFORMACION GENERAL
3. PROCEDIMIENTO PARA LA RECOLECCION, CONSERVACION Y ENVÍO DE MUESTRAS AL
LABORATORIO DE DIAGNÓSTICO REGIONAL DEL ICA Y AL LABORATORIO DE MEDICINA
AVIAR DEL LNDV.
4. INTERPRETACION DE RESULTADOS
5. INVESTIGACION SEROEPIDEMIOLOGICA COMPLEMENTARIA
6. GERENCIA DEL ESTUDIO
ANEXOS.
Anexo 1. Oficio sociabilización estudio.
Anexo 2. Formulario de visita inicial
Anexo 3. Instructivo para el diligenciamiento del formulario de visita inicial
Anexo 4. Formulario de Recolección de muestras
Anexo 5. Instructivo para el diligenciamiento del formulario de recolección de muestras.
Anexo 6. Lista de materiales para la toma de muestras y envío al Laboratorio.
Anexo 7. Oficio comunicación de resultados del estudio de prevalencia al propietario o responsable de la
granja.
Anexo 8. Formulario de investigación epidemiológica complementaria
Anexo 9. Instructivo para el diligenciamiento del formulario de investigación epidemiológica complementaria.
Anexo 10. Distribución del muestreo por Regiones Programadas, direcciones de centros de diagnóstico
regionales y líderes aviares departamentales
Anexo 11. Relación y Direcciones de Contacto con el Nivel Central de Coordinación
3
II ESTUDIO PARA DETERMINACION DE PREVALENCIA DE INFECCION DE NEWCASTLE EN LAS
GRANJAS AVÍCOLAS COMERCIALES EN OCHO ZONAS DEL PAIS.
1. INTRODUCCIÓN
Considerando que la enfermedad de Newcastle ha sido declarada de interés social nacional de acuerdo
a la Ley 1255 de 2008 y al conocimiento del comportamiento cíclico de esta enfermedad, se hace necesario
continuar con el estudio de prevalencia de infección, no solo para conocer el comportamiento
epidemiológico de la enfermedad de Newcastle en Colombia a través del tiempo, sino para evaluar las
medidas de mitigación de riesgo en las diferentes zonas del país y evaluar su impacto por medio de este
indicador.
Los resultados del primer estudio se resumen en el siguiente cuadro, el cual fue llevado a cabo en el año
2009.
Parámetros del
muestreo
Zona Frontera
nororiental
Zona
Norte
Zona
Centro Zona Oriental
Zona Frontera
Sur
No de granjas 187 498 686 2.867 212
Prevalencia 50% 50% 50% 50% 50%
Poder 90% 90% 90% 90% 90%
Confianza 95% 95% 95% 95% 95%
Tamaño de muestra 64 81 84 93 67
Número de granjas
monitoreadas 139 193 187 188 262
Prevalencia 8x100 20x100 25x100 15x100 9x100
PARAMETROS DEL
MUESTREO
GUADUAS
MESA DE LOS
SANTOS
NORTE DEL
TOLIMA
Número de granjas
monitoreadas
118 322 20
Prevalencia 14x100 17x100 25x100
4
Resultados por departamento de RT PCR o pruebas directas.
ZONA DEPARTAMENTO ALTA ALTA+BAJA
NO TIPIFICABLE
BAJA
FRONTERA NORORIENTAL
Arauca 1 1
Norte de Santander 1 8
NORTE
Atlántico 1 1 7 12
Bolívar 1
Córdoba 1 1 1
Sucre 2
Antioquia 1 5 6
CENTRO
Caldas 1 1
Cauca 3 1
Quindío 1
Valle 4 10 8 7
ORIENTE
Boyacá 1 2
Cundinamarca 1 1 3 7
Huila 1
Santander 1 5 3
Tolima 1 2 1
SUR Nariño 7 1 9 7
Putumayo
GUADUAS
1 6 10
MESA DE LOS
SANTOS
3 19 34
NORTE DEL
TOLIMA
2 3
5
De igual manera, en la tabla 2, se presentan los resultados del II estudio de prevalencia llevado a cabo durante el año 2010
Resultados por departamento de RT PCR o pruebas directas.
ZONA DEPARTAMENTO ALTA ALTA+BAJA
NO TIPIFICABLE
BAJA
FRONTERA NORORIENTAL
Arauca 1
Norte de Santander 3 11
NORTE
Atlántico 1 5
Cesar 1
Córdoba 2
Magdalena 1
Sucre 3
Antioquia 2 1 14
CENTRO
Caldas 3
Cauca 2
Quindío 3
Risaralda 2
Valle 1 23
ORIENTE
Boyacá 1 1
Caquetá 3
Cundinamarca 10
Huila 1
Meta 1
Santander 1 5
Tolima 1
FRONTERA SUR Nariño 2 4 27
Putumayo 1 1
GUADUAS 1 8
MESA DE LOS SANTOS
2 2 24
NORTE DEL TOLIMA 8
Parámetros del muestreo
Zona Frontera
nororiental Zona Norte
Zona Centro
Zona Oriental
Zona Frontera
Sur Norte
Tolima Guaduas
Mesa de los
Santos
No de granjas 239 664 954 2.982 232 29 64 128
Prevalencia 15 x 100 30 x 100
30 x 100 30 x 100 15 x 100 30 X 100 20 X 100 20 X 100
Poder 90% 90% 90% 90% 90% 90% 90% 90%
Confianza 95% 95% 95% 95% 95% 95% 95% 95%
Tamaño de muestra 42 75 79 79 42 19 33 42
Número de granjas
monitoreadas 42 75 79 79 42 19 33 42
Prevalencia 19.23 x
100 17.5 x
100 18,6 x
100 13.5 x 100 22 x 100
15,3 x 100 16,8 x 100 26 x 100
6
Este manual tiene como objetivo estandarizar las acciones y metodologías necesarias para continuar con el
estudio de determinación de la prevalencia de infección de Newcastle (NC) en ocho zonas del país: Zona de
frontera nororiental, Zona norte, Zona centro, Zona oriente, Zona frontera sur, Municipio de Guaduas en
el departamento de Cundinamarca, La Mesa de Los Santos en el departamento de Santander, Norte del
departamento del Tolima.
El segundo estudio contempla las siguientes etapas:
Diseño del estudio y distribución de la muestra
Recolección de la información
Recolección y envío de las muestras a los laboratorios de diagnóstico,
Emisión e interpretación de resultados
Análisis de resultados
Investigación epidemiológica complementaria
Cálculo de la prevalencia de infección de Newcastle en las zonas mencionadas anteriormente.
2. INFORMACIÓN GENERAL
Objetivo del estudio. Continuar con el estudio prevalencia de infección de Newcastle en las
granjas comerciales en ocho zonas del país. Estos resultados permitirán definir y evaluar las
estrategias de control de manera diferencial para cada una de las zonas.
Hipótesis de trabajo. La zonificación del país responde a características de la producción y
comercialización de aves y sus productos, circuitos avícolas, características geográficas y manejo
sanitario especifico para la enfermedad de Newcastle.
Dos de las zonas determinadas, Guaduas y Mesa de los Santos, integran un proyecto piloto de tipo
sanitario en donde desde hace seis años se han realizado acciones para disminuir la presentación
de la enfermedad de Newcastle reforzando la bioseguridad entre otras medidas. En la zona norte
del Tolima se concentra el 70% de la genética avícola del país siendo de gran importancia.
De acuerdo a los resultados obtenidos en el primero y segundo estudio de prevalencia que se
realizó durante el 2008 - 2009 y 2010 se estableció como hipótesis de trabajo que la prevalencia
esperada en el tercer estudio en las zonas será la siguiente:
- Zona Frontera Nororiental: 20 x 100
- Zona Frontera Sur: 30 x 100
- Zona Norte: 20 x 100
- Zona Centro: 20 x 100
7
- Zona Oriente: 20 x 100
- Zona Especial Norte del Tolima: 20 x 100
- Zona Especial Guaduas: 20 x 100
- Zona Especial Mesa de los Santos: 30 x 100
Se continuará con el diseño muestral independiente con una distribución dentro de la zona de
acuerdo a los sistemas productivos existentes en los departamentos que las conforman.
Región de estudio: El presente estudio de prevalencia se realizara en las ocho zonas en que se
dividió el país, así:
Figura 1. Zonificación de Colombia para el estudio de prevalencia de infección a Newcastle
virulento.
8
En total, 5.759 granjas se encuentran en el censo avícola 2010, distribuidas en los diferentes
departamentos de producción avícola en Colombia.
Tabla 2. Ubicación de granjas en zonas del país
ZONA DEPARTAMENTO MUNICIPIOS MUNICIPIOS AVICOLAS
No. DE GRANJAS
Frontera Norte
Arauca 7 4 29
Nte Santander 40 20 148
Total 47 24 177
Frontera Sur
Nariño 64 32 220
Putumayo 13 9 45
Total 77 41 265
Zona centro
Caldas 27 17 62
Risaralda 14 7 71
Quindío 12 10 145
Valle del cauca 42 41 588
Cauca 42 17 170
Total 137 92 1036
Zona Norte
Antioquia 125 53 235
Atlántico 23 19 111
Bolívar 45 13 44
Cesar 25 16 67
Córdoba 28 13 79
Guajira 15 6 8
Magdalena 30 4 34
Sucre 26 13 60
Total 317 137 638
Zona Oriente
Boyacá 123 47 270
Caquetá 16 2 13
Cundinamarca 116 75 1,461
Huila 37 29 235
Meta 29 8 164
Santander 87 48 1086
Tolima 47 31 205
Total 455 240 3.434
Guaduas Cundinamarca 1 1 70
Mesa de los Santos Santander
2 2 115
Norte Tolima Tolima 8 6 24
TOTAL 1044 543 5.759
Población objeto del muestreo: Granjas avícolas comerciales del país de los sistemas productivos
de Engorde, postura y material genético.
9
Parámetros del muestreo: Con base en el número total de granjas del país y el número total de
granjas de cada una de las zonas. se calculó el tamaño de muestra.
2
2/12 )1(
d
ppzn
Donde: p es el valor de la prevalencia esperada, z corresponde al valor del percentil 95 para la
distribución normal, α es el valor del error tipo I y d, la diferencia mínima esperada entre la
estimación y el verdadero valor de la prevalencia.
Tabla 1. Parámetros del muestreo. Estudio de prevalencia de infección de Newcastle en cinco
zonas del país.
Parámetros del muestreo
Zona Frontera
nororiental Zona Norte
Zona Centro
Zona Oriental
Zona Frontera Sur
No de granjas 177 638 1.036 3.434 265
Prevalencia 20 x 100 20 x 100 20 x 100 20 x 100 30 x 100
Poder 90% 90% 90% 90% 90%
Confianza 95% 95% 95% 95% 95%
Tamaño de muestra
46 58 59 61 63
Diseño del estudio: Muestreo aleatorio simple con reposición. El tamaño de muestra lo
constituye el número de granjas las cuales serán distribuidas en forma proporcional por
sistema productivo.
Tabla 2. Distribución proporcional de la muestra por tipo de explotación y por Zona.
Granjas a
monitorear engorde postura genética
Frontera Nororiental
46 16 30 0
Frontera Sur 63 58 4 1
Centro 59 41 16 2
Norte 58 37 20 1
Oriente 61 33 26 2
Guaduas 33 28 0 5
Mesa Santos 49 38 8 3
Norte Tolima 18 7 3 8
total 387 258 107 22
Parámetros del muestreo
Guaduas Mesa de los Santos
Norte del Tolima
No. de granjas 70 115 24
Prevalencia 20 x 100 30 x 100 20 x 100
Poder 90% 90% 90%
Confianza 95% 95% 95%
Tamaño de muestra 33 49 18
10
Tabla 3. Distribución proporcional de la muestra por departamento y tipo de explotación
DEPARTAMENTO ENGORDE POSTURA GENETICA TOTAL
FRONTERA NORTE
ARAUCA 5 3 0 8
NTE SANTANDER
11 27 0 38
TOTAL 16 30 0 46
FRONTERA SUR
NARIÑO 47 4 1 52
PUTUMAYO 11 0 0 11
TOTAL 58 4 1 63
CENTRO
CALDAS 2 2 0 4
RISARALDA 3 1 0 4
QUINDIO 6 2 0 8
VALLE 21 10 2 33
CAUCA 9 1 0 10
TOTAL 41 16 2 59
ZONA NORTE
ANTIOQUIA 10 10 1 21
ATLANTICO 7 3 0 10
BOLIVAR 3 1 0 4
CESAR 5 1 0 6
CORDOBA 4 3 0 7
GUAJIRA 1 0 0 1
MAGDALENA 2 1 0 3
SUCRE 5 1 0 6
TOTAL 37 20 1 58
ZONA ORIENTE
BOYACA 1 4 0 5
CAQUETA 0 0 0 0
C/MARCA 12 13 1 26
HUILA 3 1 0 4
META 3 0 0 3
SANTANDER 12 7 1 20
TOLIMA 2 1 0 3
TOTAL 33 26 2 61
GUADUAS
GUADUAS 28 0 5 33
MESA DE LOS SANTOS
MESA SANTOS 38 8 3 49
NORTE DEL TOLIMA
NTE TOLIMA 7 3 8 18
TOTAL 258 107 22 387
11
Frecuencia del Muestreo:
Pollo de engorde: Tres muestreos en la zona norte, en la zona oriente y en la zona centro, Mesa
de los Santos, Guaduas y Norte del Tolima.
Cuatro muestreos en la zona frontera nororiental y en la zona de frontera sur.
En cada uno de los muestreos se hará una distribución aleatoria de las granjas a muestrear,
exceptuando las zonas de Guaduas, Mesa de los santos y norte del Tolima.
Ponedoras y material genético: Un muestreo en todas las zonas.
Pruebas diagnósticas a utilizarse:
Indirecta: Inhibición de la Hemaglutinación (HI) en ocho UHA (Unidades hemaglutinantes) en
sueros recolectados en las granjas de pollos de engorde.
Directa: RT-PCR de hisopos cloacales recolectados en las granjas de ponedoras y en las
granjas de material genético. Como pruebas confirmatorias se realizaran el aislamiento viral y
RT-PCR de líquido alantoideo.
Los resultados positivos a estas pruebas serán indicadores de actividad viral en la granja o unidad primaria
de muestreo.
En las granjas de pollos de engorde que resulten positivas o sospechosas por la prueba de Inhibición de la
Hemaglutinación (HI) se realizará una investigación epidemiológica de acuerdo a lo consignado en el
documento sobre la Investigación Epidemiológica complementaria en granjas positivas o sospechosas a
infección.
Duración del Estudio: Un año.
Criterios de Inclusión: Los criterios de inclusión determinan cuales son las aves que van a ser objeto
de muestreo. Son diferentes para las aves que están en las granjas de pollos de engorde y para las
aves que están en las granjas de ponedoras y material genético.
Criterios de inclusión para pollos de granjas de engorde: Serán objeto de
muestreo las aves mayores de 30 días de edad y menores de 35, y que hayan
transcurrido mínimo 15 días después de la última vacunación con vacuna viva
contra Newcastle. La inclusión de aves de menor edad puede resultar en
interferencia diagnostica por cercanía a la vacunación contra NC.
Criterios de Inclusión para gallinas de granjas de ponedoras y de material
genético: Serán objeto de muestreo las aves mayores de 12 semanas de edad
donde hayan transcurrido mínimo tres semanas después de la ultima
vacunación con vacuna viva contra NC.
12
Número de aves a muestrear en cada una de las granjas de pollo de engorde seleccionadas
15 aves por granja. Este es un número adecuado que tiene en cuenta la variabilidad entre las aves con
respecto a la presencia de anticuerpos contra la enfermedad de Newcastle. La reducción de esta
variabilidad contribuirá a una mayor precisión en la estimación posterior.
Número de aves a muestrear en cada una de las granjas de postura y material genético
seleccionadas
30 aves por granja.
Distribución proporcional del tamaño de muestra en la granja seleccionada.
En granjas de pollos de engorde se deben seleccionar los galpones donde se alojan las aves que
cumplen con los criterios de inclusión, entre estos elegir al azar un galpón para realizar el muestreo.
Ejemplo: Si la granja cuenta con 10 galpones que alojan aves mayores de 30 días de edad y que
hayan transcurrido mínimo 15 días después de la ultima vacunación con vacuna viva contra
Newcastle se elige uno de estos 10 galpones y se realiza el muestreo en este galpón.
En granjas de ponedoras y material genético donde se maneja más de una edad, se identifican los
galpones que tienen aves que cumplen con los criterios de inclusión para participar en el estudio:
mayores de 12 semanas de edad donde hayan transcurrido mínimo tres semanas después de la
última vacunación con vacuna viva contra NC. Entre estos elegir al azar un galpón para realizar el
muestreo.
Ejemplo: Si la granja cuenta con 20 galpones que alojan aves de dos edades: 8 semanas y 14
semanas distribuidas así: 12 galpones con aves de 14 semanas y 8 galpones con aves de 8
semanas y en estos hayan transcurrido por lo menos tres semanas después de la última vacunación
con vacuna viva contra Newcastle. Se deben descartar los galpones de las aves que tienen 8
semanas porque no cumplen con los criterios de inclusión, En los 14 galpones restantes, se elegirá
un galpón al azar y se realizará el muestreo en el galpón seleccionado.
Para todos los casos es indispensable que se cumplan los dos criterios de inclusión dados: Edad y tiempo
post vacunación.
Selección del numero de aves objeto de muestreo en cada galpón
Las aves se seleccionan al azar en diferentes áreas del galpón. Es preciso no limitarse a seleccionar
las aves ubicadas en un solo punto.
Niveles Operacionales para el flujo de las muestras colectadas y el envió de los
resultados:
Se adoptan dos niveles de ejecución:
o Nivel Central: conformado por el Líder Nacional del Proyecto, el coordinador del Laboratorio de
aviares del LNDV y el epidemiólogo de la coordinación de epidemiología.
13
o El Nivel Departamental: conformado por los Líderes departamentales del proyecto aviar, los
médicos veterinarios de oficinas locales, los epidemiólogos regionales y los responsables de
los Centros de Diagnostico Regional.
Flujo de la información
El líder nacional de la especie aviar enviará el listado de las granjas objeto de estudio al líder aviar
departamental, coordinador seccional, epidemiología nacional, a los centros de diagnóstico regional y
laboratorio de medicina aviar (LNDV).
Una vez recibida la información de las granjas a muestrear, el líder aviar departamental complementara el
oficio de comunicación al propietario de la granja seleccionada. Anexo 1. Oficio Comunicación Muestreo
Newcastle.
El oficio deberá ser firmado por el coordinador seccional. Es responsabilidad del líder aviar departamental
asegurar que el productor reciba el oficio y coordinar el cronograma para la visita y toma de muestras.
En la primera visita a la granja se diligenciará completamente el Formulario de Información Inicial anexo
2, el cual será enviado a la mayor brevedad al líder aviar departamental, el cual enviará el formato original (
y guardará una copia para su archivo) al líder nacional de la especie aviar quien validará y consolidará toda
la información en una base de datos.
3. Procedimiento para la recolección, conservación y envío de muestras a los Centros de Diagnostico Regionales del ICA y al Laboratorio de Medicina Aviar del LNDV
Preparación de materiales:
El material requerido para los muestreos se debe preparar con la debida anticipación teniendo en cuenta las
granjas que se van a visitar y el número de animales a muestrear. Anexo 6: Lista de materiales para la
toma de muestras.
Es responsabilidad del Laboratorio de medicina aviar enviar el material de toma de muestras a los líderes
departamentales relacionados en el Anexo 10: Distribución del muestreo por Regiones Programadas y
direcciones de Centros de Diagnóstico Regionales y líderes aviares departamentales de acuerdo al
número de granjas que les corresponde a cada departamento.
Es responsabilidad del líder aviar departamental entregar el material de toma de muestras a los miembros
de su equipo de trabajo verificando que todo esté limpio y completo, se debe disponer de overoles
desechables, polainas, gorros y tapabocas en cantidad suficiente. Anexo 6: Lista de materiales para toma
de muestras y envío al laboratorio.
Recolección de las muestras:
Se debe diligenciar completamente el Formulario de recolección de muestras. Anexo 4., de acuerdo al
instructivo. Anexo 5., Instructivo para el diligenciamiento del formulario de recolección de muestras.
14
Sangría.
Las muestras de sangre de las aves se deben tomar en fase de ayuno con el fin de disminuir los sueros
lipémicos.
Se deberá obtener una cantidad de sangre mínima de 2 centímetros y máximo 3.
La sangre se toma con jeringa o aguja calibre 20, de la vena del ala.
Cuando se tome con jeringa la sangre retire la aguja y deposite la sangre en el tubo sin anticoagulante,
permitiendo que esta se deslice por las paredes del mismo (no utilice frascos de vacunas que contienen
sustancias extrañas que interfieren con la prueba).
Cuando la sangre sea tomada únicamente con aguja, acerque el tubo a la base de la aguja e inclínelo de
manera que la sangre se deslice por las paredes de este.
Después de la sangría, coloque los tubos tapados en posición horizontal y déjelos en reposo
aproximadamente por 10 minutos para permitir la retracción del coagulo. Después colocar los tubos en
gradillas, refrigerar y transportar en termos apropiados para remitir al laboratorio en las siguientes 6 horas.
Si la oficina local cuenta con una centrífuga, obtenga el suero centrifugando a 3000 revoluciones por minuto
durante 5 minutos y debe transvasar a viales, sellar con papel parafilm, refrigerar y enviar al Centro de
Diagnostico Regional o la LNDV según corresponda.
Tiempo máximo de llegada al Centro de Diagnostico Regional o al LNDV una vez tomadas las muestras: 6
Horas.
Los sueros deberán ser analizados en los Centros de Diagnostico Regional cumpliendo la ruta crítica
establecida para la prueba de IH: 48 HORAS máximo.
Las muestras deben ser enviadas con un rótulo que contenga la siguiente información: Número de registro
de la granja (Numeración de 11 dígitos correspondiente al código del líder aviar departamental, 2 dígitos del
Departamento, 3 del Municipio y 4 del consecutivo de la granja dado por el ICA, nombre de la granja,
departamento, municipio, sistema productivo.
Número de registro de la Granja:
Nombre de la Granja:
Departamento:
Municipio:
Sistema Productivo:
15
Descarte de material:
Se deben descartar las agujas utilizadas en un frasco plástico o un guardián. Las jeringas y todo el material
empleado en la toma de muestras debe ser empacado en una bolsa plástica roja y llevarlo a la oficina local
del ICA o al Centro de Diagnóstico Regional correspondiente. El destino final debe ser el descarte o
incineración en lugares adecuados.
Toma de hisopos:
Para la toma de hisopos: tome un hisopo de dacron estéril y realice un hisopado cloacal si el ave no
presenta signos respiratorios. Si el galpón seleccionado para la toma de muestras tiene signos clínicos tome
hisopos cloacales y traqueales y remítase al manual de control de la enfermedad de Newcastle.
Introduzca el hisopo en la cloaca y realice una frotación de la mucosa. Sacúdalo para descartar residuos de
material fecal e introduzca el hisopo en el medio de transporte. Enjuague el hisopo y escúrralo por las
paredes. Con el mismo hisopo repita el hisopado en otra ave. Utilice 1 hisopo por cada dos aves. Vierta el
hisopo en la vénula que contiene 3ml del medio de transporte: Infusión Cerebro-corazón (BHI) o Caldo
Triptosa y retírelo exprimiéndolo cuidadosamente sobre las paredes de la vénula. Guarde el hisopo usado
en una bolsa estéril de cierre hermético (bolsa Nasco®) hasta completar 5 hisopos lo cual conforma un pool.
Repita lo anterior hasta completar 5 hisopos por vénula y 5 hisopos por bolsa estéril de cierre hermético
(bolsa Nasco®). Se deben completar 3 pools por granja. Estas vénulas deben cerrarse y ser selladas con
papel parafilm, para evitar la pérdida del líquido durante el envío al Laboratorio de Medicina Aviar del LNDV.
Marque con marcador indeleble la bolsa estéril de cierre hermético (bolsa Nasco®) que contiene los hisopos
y marque la bolsa plástica que contiene los frascos con el medio de transporte, con un rotulo elaborado con
cinta de enmascarar y que contenga la siguiente información: Número de registro de la granja(Numeración
de 11 dígitos correspondiente al código del líder aviar departamental, 2 dígitos del Departamento, 3 del
Municipio y 4 del consecutivo de la granja dado por el ICA, nombre de la granja, departamento, municipio,
sistema productivo.
Tiempo máximo para el envío al laboratorio.
Los hisopos refrigerados deben ser enviados al laboratorio en las siguientes 24 horas a la toma para evitar
contaminación y desnaturalización del virus.
Número de registro de la Granja:
Nombre de la Granja:
Departamento:
Municipio:
Sistema Productivo:
16
Descarte del material:
Todo el material empleado en la toma de muestras debe ser empacado en una bolsa plástica roja y llevarlo
a la oficina local del ICA o al centro de diagnóstico regional correspondiente. El destino final debe ser el
descarte o incineración en lugares adecuados.
Distribución de muestras para serología y de hisopos a los diferentes Centros de
Diagnostico Regionales del ICA.
Para efectos administrativos y de organización del muestreo se distribuyó el envío de muestras a los
diferentes Centros de Diagnostico Regionales quienes serán los encargados de procesar los sueros por la
técnica de Inhibición de la Hemoaglutinación (HI). Anexo 10. Distribución del muestreo por Regiones
Programadas y direcciones de Centros de Diagnóstico Regionales y líderes aviares.
Gráfico 9. Representación del flujo de toma y envío de muestras. Granjas de pollos de engorde
TOMA DE MUESTRAS POLLO DE ENGORDE (IH)
Base de Datos Lider Aviar
FORMULARIO DE MUESTREO
Líder Aviar departamental/ M.V
Oficina Local
L.N.D.V (Medicina
Aviar)
Verificación Permanente
Centros de diagnóstico Regionales
Resultados
Líder Aviar Nacional
Sueros
originales
Base de Datos Laboratorio de
Medicina Aviar
Copia
Reporte Líder Aviar
departamental
EL líder Aviar o los veterinarios de las oficinas locales del ICA que visiten las granjas serán los
responsables del envío de la información y de las muestras siguiendo el conducto regular definido.
17
Gráfico 10. Representación del flujo de toma y envío de muestras. Granjas de reproductoras y
ponedoras
TOMA DE MUESTRA REPRODUCTORA O PONEDORA (rt-PCR)
Base de Datos
MUESTRA (HISOPO CLOACAL)
Líder Aviar departamental*
L.N.D.V (Medicina
Aviar)Verificación Permanente
Resultados
Líder Aviar Nacional
Base de Datos
Resultado a Líder Aviar
departamental
* El líder Aviar o los veterinarios de las oficinas locales del ICA que visiten las granjas serán los
responsables del envío de la información y de las muestras siguiendo el conducto regular definido.
18
Requisitos para el envío de las muestras recolectadas a los laboratorios de diagnóstico
del ICA asignados.
Adjunte el original del formato Anexo 4. Formulario de Recolección de muestras. debidamente
diligenciado y conserve una fotocopia en un archivo debidamente organizado exclusivamente para
el muestreo de prevalencia.
Los sueros deben ser enviados al Centro de Diagnóstico Regional asignado.
Los hisopos deben ser enviados al Laboratorio de Medicina Aviar del LNDV en Bogotá.
Las muestras enviadas sin el orig inal del formato de recolección de muestras
debidamente diligenciado no serán procesadas por el laboratorio.
En casos esporádicos en donde se presente algún inconveniente para el procesamiento
de las muestras en el Centro de Diagnóstico Regional asignado , se solicitará autorización
escrita al líder nacional del proyecto para cambiar de laboratorio y se enviará copia de
esta solicitud a la Coordinación Nacional de Diagnóstico Veterinario en el LNDV.
(Bogotá).
Flujo de información para la toma de muestras tanto en las granjas de pollo de
engorde como en las granjas de postura y material genético.
Se debe tener en cuenta y seguir el flujo de información que se presenta en los siguientes
diagramas:
19
Grafico 11. Flujo de Información para la toma de sueros en granjas de pollo de engorde
FLUJO DE INFORMACION POLLOS DE ENGORDE (IH)
FORMULARIO DE INFORMACION INICIAL
Líder Aviar departamental/
M.V Oficina Local
Líder Nacional
Base de Datos
Base de Datos Laboratorio de
Medicina Aviar
FORMULARIO DE MUESTREO (F.M.)
Líder Aviar departamental/
M.V Oficina Local
L.N.D.V (Medicina
Aviar)
CDx.Regional
F.M Original y Resultado
Inf. Sem.Resultados a Lideres Dptales,
Epidemiología Regional
Resultados y formulario de muestras
FENAVI-FONAVEpidemiología
L.N.D.VCentros de dx Reg.
Subgerencia Pecuraria Lideres
aviares dptales
Verificación permanente
*El Líder Aviar o los veterinarios de las oficinas locales del ICA que visiten las granjas y serán los
responsables del envío de la información y de las muestras siguiendo el conducto regular definido.
20
Una vez procesadas las muestras por serología para pollos de engorde, cumpliendo las rutas críticas
establecidas, el Centro de Diagnóstico Regional enviará los resultados en original al laboratorio de medicina
aviar (LNDV) y una copia a líder aviar departamental, el cual informara de forma inmediata al epidemiólogo
regional los casos positivos o sospechosos.
Los resultados serán validados, consolidados en una base de datos y comunicados al líder nacional de la
especie aviar, quien consolida los resultados. Semanalmente en reunión conjunta el Líder Nacional de la
especie aviar, el grupo de Epidemiología Veterinaria y el de Medicina Aviar, se revisará la información de
los Formularios de Visita inicial y Toma de Muestras junto con el resultado serológico. Posterior a esta
reunión el líder nacional de la especie aviar comunicará la interpretación final de los resultados a los lideres
aviares departamentales.
El líder aviar del departamento comunicará los resultados al productor mediante un oficio, Anexo 7: Oficio
Comunicación de Resultados del Estudio de Prevalencia de Newcastle., con los respectivos soportes
emitidos por el Centro de Diagnostico Regional.
Semanalmente se realizará la validación de las bases de datos del laboratorio y del líder nacional de la
especie aviar. Adicionalmente, el líder nacional realizará un informe de avance semanal y uno final de cada
uno de los cuatro muestreos programados y el Informe Final del Estudio de Prevalencia, los cuales serán
enviados a las siguientes personas: Líder aviar departamental, epidemiólogo nacional encargado de la
especie aviar, responsable del Laboratorio de Medicina Aviar, responsables Centros de Diagnóstico
Regionales, Subgerente de Protección y Regulación Pecuaria y Departamento Técnico Fenavi – Fonav.
En cada oficina seccional se deberá crear un archivo físico para el monitoreo de prevalencia donde
reposaran las copias del Formulario de visita inicial, Anexo 2., Formulario de recolección de muestras,
Anexo 4., Resultados y Formulario de investigación Epidemiológica Complementaria, Anexo 8, Estos
deben ser organizados por granja.
21
Grafico 12. Flujo de Información para la toma de hisopos cloacales en granjas de ponedoras y
granjas de reproductoras
FLUJO DE INFORMACION PONEDORA Y REPRODUCTORA (rt-PCR)
FORMULARIO DE INFORMACION INICIAL
Líder Aviar departamental /M.V
Oficina local
Líder Nacional
Base de Datos Base de Datos
FORMULARIO DE MUESTREO
L.N.D.V (Medicina
Aviar)
Foco Alta
Virulencia
Inf. Sem.Epidemiol
ogia regional
Resultados a Lideres dptal.
Resultados
Lideraviar Nacio
nal
Epidemiologia
Nacional
FENAVIEpidemiología
L.N.D.VCentros de dx
Reg.Subgerencia
Verificación Permanente
Comunicación inmediata Resultados
22
Los lideres aviares departamentales y los veterinarios de las oficinas locales del ICA, enviaran las muestras
de hisopados cloacales tomadas en las granjas de ponedoras y de material genético directamente al
Laboratorio Nacional de Diagnostico Veterinario (Laboratorio de Medicina Aviar), en Bogotá, acompañadas
del Formulario de Recolección de Muestras Anexo 4. Debidamente diligenciado.
Los resultados serán validados, consolidados en una base de datos en el laboratorio y comunicados al
líder nacional de la especie aviar quien consolida los resultados en una base de datos. Semanalmente en
reunión conjunta el Líder Nacional de la especie aviar, el grupo de Epidemiología Veterinaria y el de
Medicina Aviar revisará la información de los Formularios de Visita inicial y Toma de Muestras junto con el
resultado de hisopados cloacales. Posterior a esta reunión el líder nacional de la especie aviar comunicara
la interpretación final de los resultados a los lideres aviares departamentales.
El líder aviar del departamento comunicara los resultados al productor mediante un oficio Anexo 7. Oficio
Comunicación de Resultados del Estudio de Prevalencia de Newcastle con los respectivos soportes
emitidos por el LNDV, Laboratorio de medicina aviar.
Semanalmente se realizará la validación de las bases de datos del laboratorio y del líder nacional de la
especie aviar. Adicionalmente, el líder nacional realizará un informe de avance semanal y uno final de cada
uno de los muestreos programados y el Informe Final del Estudio de Prevalencia, los cuales serán
enviados a las siguientes personas: Líder aviar departamental, Epidemiólogo nacional encargado de la
especie aviar, responsable del Laboratorio de Medicina Aviar, responsables centros de diagnóstico
regionales, Subgerente de Protección y Regulación Pecuaria y Departamento Técnico Fenavi – Fonav.
En cada oficina seccional se deberá crear un archivo físico para el monitoreo de prevalencia donde
reposarán las copias de los formatos de: Formulario de información inicial, toma de muestras y resultados e
investigación epidemiológica complementaria. Estos deben ser organizados por granja
4. Interpretación de resultados para granjas de pollos de engorde
Granja de engorde positiva a infección: Cuando 2 de los 15 sueros procesados superan el punto
de corte.
Punto de Corte:
Aves vacunadas con vacuna viva: 128
Aves vacunadas con vacuna inactivada: 256
Granja de engorde negativa a infección. Cuando el 100% de los 15 sueros procesados, tienen
resultados con títulos por debajo del punto de corte.
Granja de engorde sospechosa a infección: Cuando de los 15 sueros procesados, uno tiene
títulos por encima del punto de corte.
También se considera granja sospechosa a infección, aquella que tenga tres sueros o más con
títulos iguales a 128 si vacunan con vacuna viva y tres títulos o más iguales a 256 si vacunan con
vacuna oleosa.
Todas las granjas de pollo de engorde POSITIVAS ó SOSPECHOSAS a infección entraran a investigación
complementaria por la prueba de RT- PCR de hisopos cloacales.
23
INTERPRETACION DE RESULTADOS PARA POLLO DE ENGORDE
Aislamiento Viral
Hisopos cloacales rt – PCR
POSITIVO2 Sueros
> 128 (Viva)> 256 (Inactiva.)
POSITIVO :Alta VirulenciaBaja Virulencia
Mezcla Atípica
NEGATIVO
INHIBICION DE LA HEMAGLUTINACION
SUEROS
SOSPECHOSO1 Sueros
> 128 (Viva)>256 (Inactiva.)3 Sueros o más
títulos iguales a 128 (Viva)
Títulos Iguales a 256 (oleosa)
NEGATIVOTodos Los sueros
< 128 (Viva)< 256 (Inactiva.)
NEGATIVO al tercer pase
Alta VirulenciaBaja Virulencia
Mezcla Atípica
POSITIVO al virus de Newcastle
rt – PCR A partir de Liquido Alantoideo
Gráfico 12. Interpretación de resultados en granjas de pollo de engorde.
Interpretación de resultados en granjas de postura y de material genético
Técnica de RT- PCR directamente de hisopos cloacales para determinar la presencia o ausencia del virus
de Newcastle y su virulencia.
Los resultados negativos a RT-PCR pasan a aislamiento viral. Si el líquido alantoideo presenta
actividad hemoaglutinante pasa a RT-PCR para determinar la virulencia.
Granja de postura o de material genético positivas a infección: Cuando el resultado de RT-PCR
es positivo.
Granjas de postura o material genético negativas a infección: Aquellas con resultado de prueba
directa RT- PCR negativo y aislamiento negativo.
24
Gráfico 13. Interpretación de resultados para granjas de ponedoras y material genético.
INTERPRETACION DE RESULTADOS PARA PONEDORA Y REPRODUCTORA
AISLAMIENTO VIRAL
POSITIVO :Alta VirulenciaBaja Virulencia
Mezcla Atípica
NEGATIVO
rt – PCR
HISOPOS CLOACALES
Positivo al virus de Newcastle
Negativo al tercer pase
rt – PCR A partir de Liquido Alantoideo
Alta VirulenciaBaja Virulencia
Mezcla Atípica
5. Investigación complementaria en granjas de pollo de engorde.
Esta investigación se realizara únicamente en las granjas de pollos de engorde con resultados positivos o
sospechosos por la prueba de HI, instrumento indirecto de diagnóstico, que da una evidencia de infección
pero no permite concluir la tipificación del virus de Newcastle. La investigación complementaria mediante
la prueba de RT – PCR y el formulario de investigación epidemiológica complementaria en granjas
positivas o sospechosas a infección de Newcastle para pollo de engorde Anexo 8., están diseñados
para establecer la presencia del virus de Newcastle y realizar su tipificación, permitiendo definir las
estrategias diferenciales de control.
Los procedimientos establecidos dependen de la situación encontrada en el momento de la segunda visita a
la granja de la siguiente manera:
25
Considerando la ruta crítica de diagnóstico de HI (3 días) y que el tiempo de toma de
muestras iníciales en granja es hasta los 35 días de edad, siempre y cuando se cumpla con
los criterios de inclusión (edad, fecha de aplicación vacuna) se deberá tomar las muestras
del estudio complementario en el mismo lote, antes que las aves sean trasladadas a la
planta de beneficio.
Si los animales anteriormente muestreados ya salieron para sacrificio, se tomarán muestras
de hisopos cloacales de las aves que aún se encuentran en la granja y que cuentan con los
criterios de inclusión.
En caso de encontrar presencia de signos clínicos; se tomarán 15 hisopos traqueales de
30 aves (un hisopo por cada dos aves agrupados en tres pools) de los lotes que estén en
la fase más aguda de la enfermedad, es decir aquellos que estén iniciando o que
presenten signos clínicos respiratorios, neurológicos o diarrea. Debe remitirse al manual de
Control de la enfermedad de Newcastle.
En caso de no encontrar signos clínicos; se tomarán 15 hisopos cloacales de 30 aves (un
hisopo por cada dos aves agrupados en tres pools) del lote inicialmente muestreado
serológicamente.
En caso de que las aves de la granja positiva o sospechosa ya hayan salido para sacrificio,
y la granja se encuentre desocupada, se tomaran muestras de cama sin tratar, es decir
antes de que la cama haya sido sometida al proceso de sanitización: aumento de
temperatura, biológico o productos químicos.
En todos los casos anteriormente mencionados, se deberá diligenciar en su totalidad y con base en la
verificación de registros, el formulario de “Investigación Epidemiológica Complementaria en
Granjas Positivas o Sospechosas a Infección de Newcastle. Anexo 8.
Los focos positivos por RT-PCR serán atendidos de acuerdo a lo establecido en el Programa de Control
de la enfermedad de Newcastle.
6. Gerencia del Muestreo.
El objetivo de establecer tanto los niveles operativos como el flujo de la información, es proporcionar un
orden y dar agilidad al proceso para garantizar que la información sea homogénea y que las muestras
colectadas lleguen a su destino lo más pronto posible y conservadas adecuadamente. Cada uno de estos
niveles tiene sus propias responsabilidades que se presentan a continuación:
Nivel Central: Se encuentra representado por:
Líder nacional, epidemiólogo nacional, coordinador del Laboratorio de Enfermedades Aviares del LNDV.
Nivel departamental: Se encuentra representado por.
Coordinadores seccionales, Líderes departamentales aviares, Responsables de los Centros de
Diagnostico Regional, Epidemiólogo Regional, médicos veterinarios oficinas locales del ICA
26
Responsabilidades Por Nivel:
El Líder Nacional de la especie aviar es el responsable del diseño de muestreo y análisis estadístico de los
resultados. Coordina las reuniones para establecimiento de metodología y supervisa las actividades
relacionadas con el muestreo a nivel nacional. Diseña la base de datos para consolidación de la
información y resultados del muestreo. Recibe el formulario de Información Inicial y los resultados de
diagnostico del LNDV para alimentar la base de datos, envía los resultados a los lideres departamentales
aviares, emite y envía los informes semanales de avance del muestreo a FENAVI-FONAV, Subgerencia de
Protección y Regulación Pecuaria, Epidemiología Nacional, LNDV, Centros de diagnostico regionales y
lideres aviares. Organiza el archivo físico de soportes.
El Laboratorio de Medicina Aviar del LNDV es el responsable de la capacitación y seguimiento del
personal de Laboratorio en las diferentes pruebas diagnósticas necesarias para este trabajo, envía los
materiales de laboratorio y reactivos a los diferentes centros de diagnóstico regionales que participan en el
muestreo, realiza las pruebas moleculares, envía los resultados en original al Líder Nacional, recibe, valida
y consolida en una base de datos los resultados de las pruebas serológicas realizadas a nivel regional y
envía los resultados originales al líder Nacional del Proyecto. Realiza la verificación final de la base de
datos con el Líder Nacional del proyecto aviar. Participa en el análisis e interpretación de los resultados. Es
el responsable del cumplimiento de las rutas críticas de diagnóstico.
El epidemiólogo del nivel central recolecta, valida y analiza la información de los episodios de Newcastle
detectados. Tiene la responsabilidad de direccionar y efectuar el seguimiento de la investigación
epidemiológica de los casos de Newcastle de alta virulencia detectados a través del muestreo, participa en
el Análisis e interpretación de los resultados del muestreo.
Los anteriores Grupos dependen de la Subgerencia de Protección y Regulación Pecuaria y estarán a cargo
de la capacitación de todos los funcionarios del ICA involucrados en el estudio.
Nivel Departamental:
Coordinador Seccional: Facilita el desarrollo del muestreo a nivel regional Es el encargado de dirigir el
oficio a los propietarios o gerentes de las granjas seleccionadas, informándoles su participación en el
estudio así como de comunicar los resultados del muestreo. También emite las resoluciones o actos
administrativos que se deriven de los resultados del muestreo.
Los lideres aviares departamentales: serán los encargados de informar y asesorar al Coordinador Seccional
las actividades relacionadas con el muestreo, realizar un cronograma de visita a granjas, diligenciar y
validar los formatos “Información Inicial y Formulario de Recolección de muestras” y envío de las muestras
al laboratorio de diagnostico regional asignado o envío directo de las muestras al LNDV en Bogotá. Es el
responsable de solicitar al Centro de Diagnostico Regional o al LNDV los resultados validados.
Los responsables de los Centros de Diagnostico Regional: serán los encargados de coordinar la realización
de las pruebas de diagnostico serológico, de la emisión y envió de los resultados al LNDV. También serán
los encargados de coordinar todo lo relacionado con la recepción de muestras, empaque y envío al LNDV
en la ciudad de Bogotá. Será el responsable del cumplimiento de las rutas criticas en las pruebas de
diagnostico.
27
Los veterinarios de las Oficinas Locales: deberán apoyar al líder departamental en la visita a granjas y toma
de muestras según indicaciones de este.
A los epidemiólogos regionales les corresponde el direccionamiento y el seguimiento de la investigación
epidemiológica de los focos positivos a Newcastle virulento junto con el líder departamental de la especie
aviar.
28
ANEXOS
Anexo 1. Oficio sociabilización estudio
29
Anexo 2. Formulario de información inicial
30
31
Anexo 3. Instructivo para el diligenciamiento del formulario de visita inicial
INSTRUCTIVO PARA EL DILIGENCIAMIENTO DEL FORMULARIO DE INFORMACION INICIAL
Este formulario será diligenciado en el momento de visita a la granja seleccionada para el muestreo de
prevalencia. La información recolectada será la base de la interpretación de resultados cuyo análisis
permitirá decidir si es pertinente llevar a cabo una investigación complementaria
Es imprescindible que sea diligenciado en su totalidad, en letra imprenta y con esfero de tinta negra
indeleble.
Campo 01: Código de la granja: El líder aviar nacional asignará este código de identificación a las
granjas que participan en el muestreo. Consta de 11 dígitos de los cuales los dos primeros
corresponden al código asignado a cada uno de los líderes aviares departamentales. Los cinco
dígitos siguientes son dados por el DANE para la identificación de Departamento y municipios en
Colombia y los 4 restantes corresponden al número de registro de la granja ante el ICA
Campo 02: Fecha de visita.
Representa el día/mes/año en que se realiza la visita a la granja y el se recopila la información
respectiva.
campo 03: Información General.
Campo de identificación básica que contiene la siguiente información:
1. INFORMACION PROPIETARIO Y GRANJA
1.1. Propietario del predio: nombre completo del propietario de la granja; Número de cédula y lugar de expedición.
1.2. Nombre de la Granja, vereda, municipio, departamento, latitud, longitud (coordenadas obtenidas en el GPS configurado en formato WGS 84 ‹2 enteros y 5 decimales›, los cuales permiten una distribución espacial de las unidades muestrales. Al dato correspondiente a la longitud se le debe anteponer el signo negativo.
1.3. Tipo de granja: Escriba una (X) en donde corresponda
1.4. Escriba el nombre de la persona o empresa arrendataria y el tipo de arrendamiento
1.5. Asistencia Técnica: Marque con una (X) quien realiza la asistencia técnica y escriba el nombre completo y el número de tarjeta profesional.
1.6. Tipo de explotación: marque con una (X) la explotación a la cual están destinadas la aves de la granja.
1.7. Escriba la raza de las aves y la capacidad ocupada de la granja
1.8. Escriba una (X) en el lugar que corresponda según la procedencia de las aves de la granja. Si son de incubadora, escriba el departamento y municipio en donde se encuentra la incubadora.
32
2. PARAMETROS SANITARIOS DE LA GRANJA. Estos deben ser confirmados mediante los registros existentes en la granja:
2.1. % Mortalidad acumulada: escriba el porcentaje de mortalidad acumulada de los lotes existentes en la granja en el momento de la visita.
2.2. Presencia de signos respiratorios en los últimos 15 días: escriba SI o No, se han
presentado signos respiratorios.
2.3. Presencia de signos neurológicos en los últimos 15 días: escriba SI o No, se han
presentado signos neurológicos.
2.4. Presencia de diarrea en los últimos 15 días: escriba SI o No, se ha presentado diarrea.
3. PARAMETROS PRODUCTIVOS DE LA GRANJA. Verificables únicamente con los registros existentes en la granja
3.1. Eficiencia (europea o americana) del lote anterior. Escriba la eficiencia en el campo que corresponda. Esto para granjas de pollo de engorde.
3.2. Semana de edad: Marque con una (X) la semana en la cual se encuentra el lote. Esto para granjas de pollo de engorde.
3.3. Peso por semana. Escriba en cada casilla el peso alcanzado por el lote de acuerdo a la semana de edad de la primera a la cuarta. Esto para granjas de pollo de engorde.
3.4. Consumo por semana. Escriba el consumo de alimento en gramos del lote para cada semana. Esto para granjas de pollo de engorde.
3.5. Porcentaje de producción de huevo semanal. Escriba el porcentaje de producción del lote de las últimas cuatro semanas. Únicamente para el caso de granjas de postura y reproducción.
4. VACUNACIÓN CONTRA LA ENFERMEDAD DE NEWCASTLE
Este campo debe ser diligenciado cuidadosamente ya que es imprescindible para la
interpretación de resultados de laboratorio. Esta información deberá ser confirmada con los
registros de la granja.
4.1. Aplicación de vacuna viva: marque con una (X) si aplican o no vacuna viva contra el virus de NC y el laboratorio productor. Diligencie el cuadro indicando la cantidad de dosis recibidas, la edad de aplicación (en días para pollo de engorde y en semanas para postura y reproducción); escriba la cepa utilizada y la vía de aplicación para cada dosis.
4.2. Aplicación de vacuna Inactivada: marque con una (X) si aplican o no vacuna inactivada (oleosa) contra el virus de NC y el laboratorio productor. Diligencie el cuadro indicando la cantidad de dosis recibidas, la edad de aplicación (en días para pollo de engorde y en semanas para postura y reproducción); escriba la cepa utilizada y la vía de aplicación para cada dosis.
5. RESPONSABLE DEL LEVANTAMIENTO DE LA INFORMACIÓN:
Debe diligenciarse obligatoriamente. No se aceptan formularios sin la identificación del
responsable.
NOTA: Este formulario no debe tener manchas, enmendaduras ni tachones.
33
DEFINICIONES:
GRANJA INTEGRADA: Cuando el productor esta vinculado con una empresa avícola comercial
GRANJA EN ARRIENDO: Cuando el productor es diferente al propietario del predio.
GRANJA INDEPENDIENTE: Cuando el productor es también el propietario del predio.
PESO POR SEMANA: Peso promedio de las aves - peso promedio inicial.
CONSUMO POR SEMANA: Kilogramos consumidos en la semana/ No. De aves
PORCENTAJE DE MORTALIDAD: No. de aves muertas/ No. de aves iniciales
EFICIENCIA EUROPEA: Viabilidad x peso vivo (Kg.)________ x 100
Edad (días) x conversión alimenticia
EFICIENCIA AMERICANA: Viabilidad x peso vivo (Kg.) ________ x 100
Edad (días) x consumo total ave
VIABILIDAD: 100 - % mortalidad
34
Anexo 4. Formulario de Recolección de muestras
35
Anexo 5. Instructivo para el diligenciamiento del formulario de recolección de muestras.
INSTRUCTIVO PARA EL DILIGENCIAMIENTO DEL FORMULARIO DE RECOLECCION DE MUESTRAS.
Este formulario debe ser diligenciado en su totalidad al momento de la toma de las muestras conservando
su integridad física, evitando contacto con material de los galpones o de la granja que pueda vehiculizar
agentes patógenos o que altere la legibilidad de la información. El diligenciamiento debe realizarse con un
esfero de tinta negra indeleble y con letra imprenta clara que permita su transcripción al llegar al laboratorio.
Este formulario debe siempre acompañar a las muestras manteniéndolo protegido del contacto directo con
las muestras para que no se altere la calidad del formulario.
Este documento hace parte del historial de registro documental el cual debe anexarse a los resultados de
laboratorio para ser enviados al líder nacional y deben guardarse copias para el archivo del laboratorio.
Código de la granja: El líder aviar nacional asignará este código de identificación a las granjas que
participan en el muestreo. Consta de 11 dígitos de los cuales los dos primeros corresponden al
código asignado a cada uno de los líderes aviares departamentales. Los cinco dígitos siguientes
son dados por el DANE para la identificación de Departamento y municipios en Colombia y los 4
restantes corresponden al número de registro de la granja ante el ICA
Fecha de visita.
Representa el día/mes/año en que se realiza la visita a la granja y el se recopila la información
respectiva.
1. INFORMACIÓN DEL PROPIETARIO Y DE LA GRANJA
Campo de identificación básica que contiene la siguiente información:
1.1. Propietario del predio: nombre completo del propietario de la granja; Número de cédula y lugar de expedición.
1.2. Nombre de la Granja, vereda, municipio, departamento, latitud, longitud (coordenadas obtenidas en el GPS configurado en formato WGS 84 ‹2 enteros y 5 decimales›, los cuales permiten una distribución espacial de las unidades muestrales. Al dato correspondiente a la longitud se le debe anteponer el signo negativo.
1.3. Tipo de granja: Escriba una (X) en donde corresponda
1.4. Escriba el nombre de la persona o empresa arrendataria y el tipo de arrendamiento
1.5. Asistencia Técnica: Marque con una (X) quien realiza la asistencia técnica y escriba el nombre completo y el número de tarjeta profesional.
1.6. Tipo de explotación: marque con una (X) la explotación a la cual están destinadas las aves de la granja.
1.7. Escriba la raza de las aves y la capacidad ocupada de la granja
1.8. Escriba una (X) en el lugar que corresponda según la procedencia de las aves de la granja. Si son de incubadora, escriba el departamento y municipio en donde se encuentra la incubadora.
36
2. FECHA DE RECOLECCIÓN, ENVÍO Y RECIBO DE MUESTRAS, EMISIÓN Y RECEPCIÓN DE
RESULTADOS.
a. Recolección de muestras: escriba el día, mes, año de la toma de muestras en la granja.
b. Envío de muestras al laboratorio: se debe registrar la fecha en la cual la muestra fue remitida al
laboratorio. Se debe contar con los soportes en los casos en que la muestra es enviada vía
servicio de mensajería o aeropuerto - aeropuerto, según sea el caso. El envío de las muestras
debe ser inmediato con el fin de preservar la calidad de la muestra y la emisión oportuna de
resultados por parte del laboratorio. Itinerario de vuelos. Anexo 13.
c. Recibo de muestras en el laboratorio: Espacio para ser diligenciado en el laboratorio que procesa la
muestra. Se debe registrar el día-mes- año y la hora en la cual fue recibida. Esta información debe
corresponder a la registrada en los libros de ingreso de muestras en el laboratorio.
d. Emisión de resultados del laboratorio: Espacio para ser diligenciado en el laboratorio que procesa la
muestra. Se debe registrar el día-mes- año y la hora en la cual se emitió el resultado internamente
y entregado para su trascripción en el formato establecido. Deben existir los soportes escritos
sobre la entrega del resultado para su trascripción y envío.
e. Comunicación de resultados a nivel nacional: Espacio para ser diligenciado por el laboratorio que
procesa la muestra, se debe registrar el día-mes- año y la hora en la cual el laboratorio regional
envió los resultados de HI por correo físico al laboratorio de medicina aviar del LNDV. También
se diligencia cuando el laboratorio de medicina aviar del LNDV envió los resultados de RT – PCR
a líder nacional de la especie aviar.
Los resultados deberán ser enviados siguiendo la ruta establecida. El Laboratorio debe guardar los
soportes de la fecha y hora en la cual el resultado fue enviado.
3. TIPO DE MUESTRA
-Toma de sueros: Marque con una (X) si toma muestras de sangre en caso de tratarse de granjas
de pollo de engorde.
- Número de sueros: Escriba el número de muestras de sangre tomadas en la visita a la granja
- Toma hisopos: Marque con una (X) si toma muestras de hisopos en caso de tratarse de granjas
postura, de reproducción o en caso de ser prueba complementaria.
- Pool: por cada pool que tome de hisopos, identifique número del módulo, galpón, corral, lote, la
fecha de entada del lote y la edad de los animales muestreados.
4. RESULTADOS
Estos espacios deben ser diligenciados por el laboratorio que procesa las muestras.
- HI (Anexo): Marque con una (X) si el resultado es por la técnica de Inhibición de la
Hemaglutinación a las granjas de pollo de engorde. El original de este resultado debe ser anexado a
este formato.
37
- RT-PCR: Este espacio es diligenciado por el laboratorio de medicina aviar del LNDV. Los
resultados se registrarán en términos de virulencia (Alta, Baja, Mezcla, No tipificable, Negativo) para
cada uno de los pools examinados mediante esta metodología.
- AISLAMIENTO VIRAL: Debe registrarse el resultado de aislamiento en términos de Positivo o
Negativo en los casos en que la investigación complementaria así lo haya indicado.
- RT- PCR Líquido Alantoideo: Los resultados se registrarán en términos de virulencia (Alta, Baja,
Mezcla, No tipificable, Negativo) según corresponda.
5. RESPONSABLE DEL LEVANTAMIENTO DE LA INFORMACIÓN:
Debe diligenciarse obligatoriamente. No se aceptan formularios sin la identificación del responsable.
NOTA: Este formulario no debe tener manchas, enmendaduras ni tachones.
38
Anexo 6. Lista de materiales para la toma de muestras y envío al Laboratorio
N. Material Información y Objetivos
1 Jeringas desechables de 3 o 5
cm aguja calibre 20
Se utilizan para sangrar los pollos de
engorde
2 Viales plásticos eppendorf de 2
cm Para empacar los sueros
Rollo de parafilm Para sellar los viales que contienen los
sueros
3 Hisopos de dacron Para la toma de muestras en ponedoras y en
reproductoras
4 Cinta de enmascarar Para sellar las bolsas y marcarlas
5 Bolsas estériles de cierre
hermético (Bolsas Nasco®) Para empacar los hisopos y viales
6 Bolsas plásticas Para empacar cada paquete de sueros o de
hisopos por granja
7 Vénulas de 15 ml con 3 ml de
medio de transporte viral BHI
Para el lavado de los hisopos luego de tomar
la muestra
8 Nevera de icopor Para el transporte de las muestras al
laboratorio.
9 Refrigerante Para la conservación de las muestras
39
Anexo 7. Oficio comunicación de resultados del estudio de prevalencia al propietario o responsable
de la granja.
40
Anexo 8. Formulario de investigación epidemiológica complementaria
41
42
43
Anexo 9. Instructivo para el diligenciamiento del formulario de investigación epidemiológica
complementaria.
INSTRUCTIVO DE DILIGENCIAMIENTO
CODIGO ASIGNADO A LA GRANJA: El líder aviar nacional asignará este código de
identificación a las granjas que participan en el muestreo. Consta de 11 dígitos de los cuales
los dos primeros corresponden al código asignado a cada uno de los líderes aviares
departamentales. Los cinco dígitos siguientes son dados por el DANE para la identificación de
Departamento y municipios en Colombia y los 4 restantes corresponden al número de registro
de la granja ante el ICA
1. INFORMACION PROPIETARIO Y GRANJA
1.1Propietario del predio: Escriba el nombre del propietario de la granja, el numero de la cedula de
ciudadanía, el sitio donde fue emitida-
1.2 Nombre de la Granja: Escriba el nombre de la granja, la vereda donde está ubicada , el nombre del
municipio y el departamento coordenadas obtenidas en el GPS configurado en formato WGS 84 (2
enteros y 5 decimales), los cuales permiten una distribución espacial de las unidades muestrales. El dato
correspondiente a la longitud se le debe anteponer el signo negativo...
1.3 Tipo de granja: Señale con una x si la granja se encuentra en arriendo a una empresa, hace parte
de un integrado u otra opción.
1.4 Nombre de la persona que arrienda la granja, Escriba el nombre de la persona que tiene en
arriendo la granja. Empresa que arrienda la granja: Escriba el nombre de la empresa que tiene en
arriendo la granja. Y el tiempo en meses de que lleva la granja arrendada a la empresa.
1.5 Asistencia Técnica: Marque con una x si el profesional que presta asistencia técnica es Médico
Veterinario o es Médico Veterinario Zootecnista. Nombre: Escriba el nombre del Profesional. Tarjeta
profesional: Escriba el número de la tarjeta profesional.
1.6 Raza: Escriba la raza de las aves. Capacidad ocupada: escriba el número de aves que están
actualmente en la graja
1.7 Procedencia de las aves: Marque con una x si las aves provienen de incubadora, si las aves
provienen de otra granja o de almacén agropecuario. Ubicación de la incubadora: Escriba el departamento
y el municipio donde se encuentra ubicada la incubadora
2. PARAMETROS SANITARIOS DE LA GRANJA
2.1 % de mortalidad actual: Escriba en números el porcentaje de mortalidad en el día de la visita
2.2 Presencia de signos respiratorios en los últimos 15 días: Escriba Si o No según corresponda
2.3 Presencia de signos nerviosos en los últimos 15 días: Escriba SI o NO según corresponda
44
2.4 Presencia de diarrea en los últimos 15 días: Escriba SI o No según corresponda
3. PARAMETROS PRODUCTIVOS DE LA GRANJA
3.1Eficencia europea o Americana del lote anterior. Escriba en números la eficiencia según corresponda
3.2 Semana de edad. Corresponde a la primera, segunda, tercera y cuarta semana de edad
3.3 Peso: Escriba en gramos el peso alcanzado en la primera, segunda, tercera y cuarta semana de
edad.
3.4Consumo: Escriba en gramos el consumo promedio de la primera, segunda, tercera y cuarta semana
de edad
4 FACTORES DE RIESGO DE LA ENFERMEDAD DE NEWCASTLE PRESENTES EN LA GRANJA
4.1 Reutilización de la cama: Seleccione con una X la opción que corresponda
4.2 Procedimiento de sanitización de la gallinaza o de la pollinaza: Seleccione con una x si la gallinaza
es sometida a tratamiento térmico, si la gallinaza es sometida a otro tipo de tratamiento y escriba cual es
ese tratamiento o si la gallinaza no es tratada.
4.3 Tipo de vehículo que transporta la pollinaza: Seleccione con una x según corresponda si el vehículo
que transporta la pollinaza es carpado, utiliza polisombra o si es otro tipo de vehículo anote cual.
4.4 Destino de la pollinaza: Escriba el departamento y el municipio al cual es transportada la gallinaza o
pollinaza cuando es retirada de la granja, Uso final de la pollinaza o gallinaza: Escriba para que es
utilizada la gallinaza o pollinaza una vez es retirada de la granja
4-5 Compostaje de la mortalidad: Seleccione con una x la opción que corresponda dependiendo de si la
mortalidad de la granja es sometida a compostaje o no.
4.6 Densidad de las aves por metro cuadrado: Escriba la densidad actual de las aves por metro
cuadrado
4.7 Fecha de diagnósticos confirmados de enfermedades en la granja:
4.7.1 Enfermedad de Gumboro: Escriba la fecha en que fue confirmada la enfermedad. Si no ha habido
un diagnostico de enfermedad de Gumboro en la granja escriba N/A
4.7.2 Enfermedad de Bronquitis infecciosa: Escriba la fecha en que fue confirmada la enfermedad. Si no
ha habido un diagnostico de enfermedad de Bronquitis infecciosa en la granja escriba N/A
4.7.3 Enfermedad de Micoplasma: Escriba la fecha en que fue confirmada la enfermedad. Si no ha
habido un diagnostico de enfermedad de Micoplasma en la granja escriba N/A
4.7.4 Enfermedad de Laringotraqueitis aviar: Escriba la fecha en que fue confirmada la enfermedad. Si
no ha habido un diagnostico de enfermedad Laringotraqueitis aviar en la granja escriba N/A
4.7.5Otra cual? Escriba el nombre de otra enfermedad diferente a las ya mencionadas y que haya sido
diagnosticada en la granja
45
4.8 Presencia de otros animales en la granja: Seleccione con una x si observa la presencia de animales
diferentes a las aves en la granja. Cuales: Escriba el nombre del animal o los animales diferentes a las
aves y que observa están presentes en la granja,
4.9 Presencia de roedores: Seleccione con una x si observa la presencia o no de roedores en la granja
4.10 Programa de control de roedores: Verificación visual de la presencia o no de roedores
4.11 Presencia de Alphitobius Diaperinus. Verificación visual de la presencia o no del Alphitobius
4.12 Programa de control de moscas. Verificación visual del programa escrito del control de moscas.
4.13 Uso exclusivo de dotación de ropa y calzado para los trabajadores de la granja. Señale con una X
si en los vestieres encuentra ropa y calzado de uso exclusivo para los trabajadores de la granja.
Verificación visual.
4.14 Cuenta con comederos exclusivos para la granja. Señale con una x si la granja utiliza o no
comederos exclusivos para la granja.
4.15 Cuenta con bebederos exclusivos para la granja. Señale con una X si la granja utiliza o no
bebederos exclusivos para la granja.
4.16 Lleva un registro de ingreso de personas y vehículos a la granja. Señale con una X si se lleva un
registro de ingreso de personas y vehículos a la granja. Verificación visual
4.17 Cuenta con un sistema de desinfección de vehículos a la entrada de la granja. Señale con una X el
sistema de desinfección de vehículos que se encuentra instalado en la entrada de la granja.
4.18 Cuenta con pediluvios a la entrada de galpones : Señale con una x si a la entrada de los galpones
se encuentran en funcionamiento dos pediluvios uno con desinfectante y otro con agua.
4.19 La fuente de agua de bebida de los animales proviene de: señale con una x la fuente de agua de
bebida de los animales en la granja. Otro (cual): Escriba otra fuente de agua de bebida diferente a las
mencionadas
4.20 El tratamiento de agua está documentado y con registros: Verificación visual del registro de
tratamiento del agua y señale con una X según corresponda.
4.21 Se observa presencia de aves silvestres dentro del galpón: Verificación visual de la presencia de
aves silvestres en los galpones. Señale con una X según corresponda.
4.22 La Batería de baños es independiente y para uso exclusivo de trabajadores y visitantes:
Verificación visual de las instalaciones de los baños. Señale con una x según corresponda.
5. FACTORES DE RIESGO EXTERNOS PARA LA PRESENTACIÓN DE ENFERMEDAD DE
NEWCASTLE EN LA GRANJA
5.1 Escriba la distancia en metros entre los galpones de la granja y la carretera(principal o secundaria):
5.2 La carretera de acceso a la granja es una vía común a otras granjas: Señale con una x la opción
según corresponda.
46
5.3 La carretera de acceso es vía común a plantas de sacrificio: Señale con una x la opción según
corresponda.
5.4 Cuantos años de construcción tiene la granja. Escriba los años de construcción que lleva la
granja.
5.5 A 5 kilómetros alrededor de la granja hay presencia de: Galleras, Basureros, Rellenos sanitarios,
Plantas de beneficio, Mercado de aves vivas. Señale con una x las diferentes opciones que
correspondan.
5.6 Es de propiedad de la empresa el camión que distribuye el alimento: Señale con una x la opción que
corresponda.
5.7 El camión del alimento visita varias granjas el mismo día: Señale con una x la opción que
corresponda.
6. Responsable del levantamiento de la información. Escriba el nombre y firma de la persona que
realiza la encuesta.
DEFINICIONES:
GRANJA INTEGRADA: Cuando el productor esta vinculado con una empresa avícola comercial
GRANJA EN ARRIENDO: Cuando el productor es diferente al propietario del predio.
GRANJA INDEPENDIENTE: Cuando el productor es también el propietario del predio.
PESO POR SEMANA: Peso promedio de las aves - peso promedio inicial.
CONSUMO POR SEMANA: Kilogramos consumidos en la semana/ No. De aves
PORCENTAJE DE MORTALIDAD: No. de aves muertas/ No. de aves iniciales
EFICIENCIA EUROPEA: Viabilidad x peso vivo (kg)________ x 100
Edad (días) x conversión alimenticia
EFICIENCIA AMERICANA: Viabilidad x peso vivo (kg)________ x 100
Edad (días) x consumo total ave
VIABILIDAD: 100 - % mortalidad
47
Anexo 10. Distribución del muestreo por Regiones Programadas y direcciones de centros de
diagnóstico regionales y líderes aviares departamentales
Departamento Líder avícola Centro
Diagnostico Asignado
Código líder aviar
Total Granjas a
monitorear
Dirección Centro de Diagnostico
1.Zona frontera
con Venezuela
Norte de Santander
Alfredo Yáñez Cúcuta-Bogotá
01 61 Avenida del
Aeropuerto, Corral de Piedra [email protected]
Arauca
Ruth Sarmiento Arauca-
02 8 Calle 15 #14-42 [email protected]
Bogota
2.Zona frontera
con Ecuador
Nariño Adalberto Mallama Pasto-
Bogota 03 62
Calle 19 A# 42 A-45 Barrio Pandiaco [email protected]
Putumayo Norma Fajardo
Bogotá 04 11 Calle 10 # 32-84 Barrio Alvernia [email protected]
3.Zona Norte
Guajira
German Sánchez
Valledupar-Bogota
05 2 Calle 22 # 14-30
Barrio 12 de Octubre
Cesar
Joaquín Guillermo Mendoza
Valledupar-Bogota
06 11 Calle 22 #14-30
Barrio 12 de Octubre
Bolívar
Teresa Cataño Alarcón
Barranquilla-Bogota
07 6 Calle 18#50-32
Soledad [email protected]
Magdalena
Adal Alfaro
Barranquilla-Bogota
08 7
Calle 18#50-32
Soledad [email protected]
Atlántico
Juan Diego Rodríguez
Barranquilla-Bogota
09 32 Calle 18# 50-32
Soledad [email protected]
Córdoba
José Víctor Castañeda
Montería- Bogota
10 9 Km. 13 Vía Cerete-
Córdoba [email protected]
Sucre
Fredy Ordogostia
Montería-Bogotá
11 7 Km. 13 vía Cerete-
Córdoba [email protected]
48
6.7.8.Zonas especiales
Guaduas Adriana Paola Garzón
(APOYO A LIDER AVIAR) [email protected]
Bogota 24 56
Avenida el Dorado # 42-42 Predios
UNAL Bogota
Mesa de los Santos
Joaquín Horacio Florez [email protected]
Bucaramanga-Bogota
25 125 Avenida
Quebrada Seca
Norte del Tolima Diana Alexandra García [email protected]
Ibagué-Bogotá 26 20
Barrio Santa Helena predios
Universidad del Tolima
Laboratorio Nacional de Diagnostico Veterinario ICA-LNDV. Avenida el Dorado No. 42-42
Bogotá D.C. Conmutador 2697547- 2607587-3686827 Ext.2119-2123 Laboratorio de Medicina [email protected]: 2444627
Zona Departamento Líder avícola Centro
Diagnostico Asignado
Código líder aviar
Total Granjas a
monitorear
Dirección Centro de Diagnostico
4.Zona Centro
Antioquia Silvia Rico
[email protected] Medellín-Bogotá
12 21 Carrera 45#31-03
Bello
Caldas Gustavo Cárdenas
Manizales-Bogotá
13 5 Carrera 30#65-15
Manizales
Quindío Luisa Marina Grisales
Armenia-Bogota
14 10 Avenida Bolívar 28 Norte Sector Regivit
Risaralda Francisco Londoño
[email protected] Armenia-Bogota
15 6 Avenida Bolívar 28 Norte Sector Regivit
Valle Carlos Llanos
[email protected] Tulúa-Bogotá 16 42 Carrera 30 Morales
Cauca Andrés Osejo
[email protected] Tulúa-Bogotá 17 4
Carrera 30 Morales, Tulúa
5.Zona Oriente
Santander Joaquín Horacio Florez
[email protected] Bucaramanga-
Bogota 18 23
Avenida Quebrada Seca # 31-39
Boyacá Julio Báez
[email protected] Bogota 19 7
Carrera 28# 9-160 Sogamoso
Cundinamarca Andrés Serrato
[email protected] Bogota 20 45
Avenida el Dorado 42-42
Predios UNAL Bogota
Meta Héctor Palacios
[email protected] Villavicencio-
Bogota 21 4
Transversal 23 # 19-02 Frente Antigua
Licorera Villavicencio
Tolima Diana Alexandra García [email protected]
Ibagué-Bogotá 22 7 Barrio Santa Helena Predios Universidad
del Tolima
Huila Omar Silva Silva
[email protected] Neiva-Bogota 23 7 Calle 21 # 3-87 Neiva
Caquetá Timoleón Sánchez
Bogotá 27
Avenida el Dorado
42-42 Predios UNAL Bogota
Casanare Ricardo Tabares
[email protected] Bogotá 28
Avenida el Dorado 42-42
Predios UNAL Bogota
49
Anexo 11. Relación y Direcciones de Contacto con el Nivel Central de Coordinación
Nivel Nombre Cargo Teléfono e.-mail
Central
Deyanira Barrero L.
Subgerente de Protección
Animal
3323700 Ext. 1201
subgerencia.pecuaria@ica,gov.co
Miryam Luz Gallego A.
Directora Técnica de
Sanidad Animal
3323700 Ext. 1251
control.zoosanitario@ica,gov.co
Olga Lucia Díaz
Martínez
Directora Técnica de
Epidemiología Veterinaria
3323700 Ext. 1273
Carolina Linares
Profesional Dirección
técnica Epidemiología
3323700 Ext. 1278
Paula Castañeda
G.
Líder Nacional
sanidad aviar
3323700 Ext. 1256
[email protected] [email protected]
Néstor Mossos
Coordinador Laboratorio de aviares
LNDV
3686827
