Hematologia en equinos , practicas de PH 1 FCV UBA
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Hematocrito Macro Micro
Dr Med Vet Gerardo J Larotonda
Facultad de Ciencias Veterinarias. UBA ARGENTINA
Email : [email protected]
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Hematocrito de Wintrobe
• Verificar que este seco el tubo de W• Aguja larga +jeringa seca• Homogenizar la sangre con edta• Cargar jeringa 1,5 cc• Llenar el tubo de W hasta la• Marca 10 • Colocar en centrífuga• Balancear con otro W• Tres lecturas iguales.A la mayor velocidad.• Leer resultado .en el tubo. En %
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Microhematocrito
• Homogenizar la muestra. • Llenar por capilaridad el tubo de vidrio en forma
horizontal.
• Mantener horizontal. • ( Gota en porta para frotis) opcional.• En forma horizontal sellar con plastilina. • Colocar vertical en plastilina hasta llevar a centrífuga• Colocar en centrífuga con sellado hacia afuera.• Centrifugar hasta tres lecturas iguales leer con el ábaco.
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Ya cargado mantener horizontal hasta obturar el fondo
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Obturar con plastilina
CENTRIFUGAR
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Luego de centrifugado se realiza la lectura
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Leer
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Lectura con el ábaco del microhematocrito
100 %
0
43%
Límite entre sangre y plastilina
Límite superior del plasma.
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Frotis de sangre
• Colocar gota de sangre homogenizada en portaobjeto, limpio y desengrasado .
• Con extensor de bordes romos extender la sangre con un ángulo de 45 Grados
• Sosteniendo ambos portas realizar el frotis con movimiento lento ( 10 segundos)
• Secar al aire agitando el frotis.
• Colorerar según técnica.
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Frotis
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Transporte de las muestras
• No refrigerar frotis !!! ( Los tubos si .!!!)
• No humedecer .
• Identificar
• Evitar que contacten los frotis ( y se peguen)
Envolver con papel o caja
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MG-Giemsa.
• 12 a 15 gotas de MG ( 1 minuto Fija ) • 12 a 15 gotas de agua destilada 3 minutos
(colorea)• Preparar Giemsa en proporción de 1 gota 1 cc
H2O. • Quitar excedente de MG y cubrir con Giemsa• Dejar actuar 20 a 30 minutos según intensidad
de coloración deseada.• Lavar, secar, leer. Con 40 X ( cubrir fina capa de
aceite de inmersion para evitar refringencia)
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May-Grunwald - Giemsa
• 12 a 15 gotas de MG
• Dejar actuar 2 minutos ( fijación)
Luego de 2 minutos agregar igual cantidad de gotas de agua destilada.
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Coloración 15 “
• Fijar con frasco “F” 5 segundos sumergir y retirar 5 veces
• Retirar el exceso de colorante con secante• Color frasco “1” 5 segundos .(rojo)• Retirar el exceso con secante.• Color frasco “2” 5 segundos, o más si se
desea más coloración basófila. (azul) • Lavar con agua corriente. • Secar .• Con aceite de inmersión en superficie leer con
40X o 100X
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Proteínas totales con refractómetroclínico.
• Verificar limpieza del instrumento.
• Con gotero colocar unos 50 ul. Entre la tapa y el prisma.
• Apretar y leer ajustando el ocular a la visión frente a fuente de luz homogénea
• Ulilizar para leer la escala SP ( proteinas totales séricas)
• Limpiar el instrumental con papel suave.
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Lectura refractómetro
SP DU
DU= UG
Linea divisoria
Campo celeste
Campo blanco
Densidad urinariaProteinas totales séricas
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Recomendación • Luego de hacer la práctica de las técnicas
anteriores, dejar limpio y ordenado el lugar asi como lo encontró al llegar.
• El material descartable debe terminar en la basura.
• El material biológico se debe descartar en el recipiente de residuos patogénicos.
• Gracias