Guia Laboratorio Farmacognosia-2014
-
Upload
ana-cristina-villota-cabrera -
Category
Documents
-
view
43 -
download
8
Transcript of Guia Laboratorio Farmacognosia-2014
1
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA
ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD
GUÍA COMPONENTE PRÁCTICO
201421 – FARMACOGNOSIA
SARA EMILIA GIRALDO QUINTERO
(Director Nacional)
BOGOTA D.C
Junio, 2014
2
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
2. ASPECTOS DE PROPIEDAD INTELECTUAL Y VERSIONAMIENTO
3
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
3. INDICE DE CONTENIDO
Pág.
INTRODUCCIÓN 5
JUSTIFICACIÓN 5
INTENCIONALIDADES FORMATIVAS 6
DESCRIPCIÓN DE PRÁCTICAS 8
PRÁCTICA No 1. 8
PRÁCTICA No 2. 14
PRÁCTICA No 3. 19
FUENTES DOCUMENTALES 29
4
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
4. LISTADO DE GRÁFICOS Y FIGURAS
Figura 1. Esquema guía para la comprensión del proceso de cromatografía en capa
delgada. Pag: 27
5
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
5. CARACTERÍSTICAS GENERALES
Introducción La práctica del curso metodológico Farmacognosia, tiene como
enfoque brindarle a los estudiantes del programa de Tecnología
en Regencia de Farmacia, un acercamiento de forma preliminar a
los pasos principales requeridos para el estudio farmacoergásico
y fitoquímico de las plantas medicinales. Es decir desde la
recolección o adquisición del material vegetal de interés en los
mercados populares o zonas rurales de nuestro país; su
preparación, secado y trituración, hasta el estudio fitoquímico del
extracto vegetal obtenido. Las actividades prácticas a realizar se
enmarcan en tres prácticas de laboratorio, para alcanzar el
objetivo final: Desarrollar una marcha fitoquímica preliminar con
el extracto vegetal obtenido, a partir de una planta medicinal de
uso tradicional aprobada por el INVIMA.
Justificación De acuerdo a la Ley 485 de 1998, la cual reglamenta el ejercicio
profesional del Tecnólogo en Regencia de Farmacia en nuestro
país, el Regente tiene la posibilidad de dirigir establecimientos
farmacéuticos distribuidores mayoristas de productos alopáticos,
homeopáticos, veterinarios, y preparaciones farmacéuticas con
base en recursos naturales entre otros, éstos últimos
denominados productos fitoterapéuticos según los Decretos 2266
y 3553 de 2004. Considerando estos antecedentes legales y la
riqueza que los recursos naturales y la biodiversidad le ofrecen a
nuestro país, es necesario concientizar al futuro Regente de
Farmacia de la importancia del estudio de las plantas
medicinales, realizando actividades que le permitan: Reconocer
su amplio uso a nivel tradicional en las diferentes comunidades
según su entorno social, identificar propiedades tanto
organolépticas, como físicas y químicas para caracterizar
materiales vegetales adecuados para su uso en fitoterapéuticos,
aprender técnicas fitoquímicas para confirmar la presencia de
constituyentes químicos o principios activos responsables de sus
efectos terapéuticos. De esta forma la práctica del curso
Farmacognosia, espera ser una herramienta que fomente en el
estudiante su interés por el uso racional de las plantas
medicinales y la responsabilidad que una adecuada dispensación
6
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
y comercialización merecen los productos fitoterapéuticos.
Intencionalidades
formativas
Propósitos: Brindar al estudiante un acercamiento a los pasos
principales requeridos para realizar un estudio fitoquímico
preliminar de un extracto vegetal.
Objetivo General:
Conocer los fundamentos prácticos de un estudio fitoquímico
preliminar de plantas medicinales, empleadas en la medicina
tradicional de nuestro país.
Objetivos específicos
Realizar los procedimientos previos de adquisición y preparación
de un material vegetal para su posterior estudio fitoquímico
preliminar.
Desarrollar diferentes métodos para la identificación cualitativa de
metabolitos secundarios, presentes en el extracto obtenido a
partir del material vegetal en estudio.
Reconocer la importancia terapéutica de las plantas medicinales,
empleadas en la medicina tradicional de cada región.
Metas:
El estudiante reconocerá en las plantas medicinales la
importancia de su caracterización farmacoergásica y fitoquímica
para el desarrollo de productos fitoterapéuticos.
El estudiante aprenderá técnicas para la identificación de
constituyentes químicos presentes en las plantas medicinales,
responsables de sus efectos terapéuticos.
Competencias:
Se espera que el estudiante reconozca en las plantas
medicinales una fuente importante para el estudio y desarrollo de
fármacos ampliamente utilizados en la industria farmacéutica y la
materia prima vegetal a partir de la cual se desarrollan los
productos fitoterapéuticos.
Denominación de
practicas
Práctica 1: Adquisición, preparación y secado del material
vegetal (fase farmacoergásica).
7
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
Practica 2: Trituración y extracción del material vegetal (fase
fitoquímica 1).
Practica 3: Marcha fitoquímica preliminar del extracto vegetal
(fase fitoquímica 2).
Número de horas 16
Porcentaje 14% (70/500 puntos)
Curso Evaluado por
proyecto
SI_X__ NO__
Seguridad industrial Se recomienda cabina de extracción de gases para la preparación de los reactivos, alistamiento de solventes y realización desarrollo de las cromatografías. Se recomienda uso de bata blanca y guantes de látex o nitrilo en cada sesión de práctica.
8
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
6. DESCRIPCIÓN DE PRÁCTICAS
PRACTICA No. 1 – Adquisición, preparación y secado del material vegetal
(fase farmacoergásica)
Tipo de practica
Presencial X Autodirigida Remota
Otra ¿Cuál
Porcentaje de evaluación 29% (20/ 70 puntos)
Horas de la practica 4
Temáticas de la práctica Farmacoergasia y proceso de secado (Unidad 1, capítulo 1)
Intencionalidades formativas Propósito: Orientar al estudiante acerca de las temáticas relacionadas con la farmacoergasia, la preparación y el proceso de secado de las plantas medicinales. Objetivo: Reconocer la importancia de las condiciones del cultivo y crecimiento adecuado para las plantas medicinales. Aprender las causas por las cuales es importante realizar una correcta preparación, selección y secado para el estudio fitoquímico de las plantas medicinales Meta: El estudiante adquirirá conceptos relacionados con la farmacoergasia de la planta medicinal adquirida y las de sus compañeros. El estudiante aprenderá a seleccionar, preparar y secar adecuadamente su planta medicinal. Competencia: Se espera que el estudiante reconozca en las plantas medicinales desarrolladas bajo condiciones climáticas y de cultivo, una fuente adecuada de materia prima vegetal para la preparación de fitoterapéuticos de calidad.
9
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
Fundamentación Teórica
Farmacognosia es una palabra derivada de dos vocablos griegos: Fármaco, que significa base
medicamentosa, planta, veneno y Gnosis, que significa conocer. Es decir, el la ciencia que se
encarga del examen y caracterización de las drogas o bases medicamentosas, de origen vegetal,
animal o mineral de que se vale el farmacéutico para la preparación de medicamentos. Otra
definición: “ciencia enfocada particularmente al estudio de los principios activos de origen vegetal,
animal y mineral, así como de los derivados que pudieran tener una aplicación terapéutica,
comercial o industrial. En un sentido más amplio la Farmacognosia abarca el estudio de la historia,
el cultivo, la recolección, preparación, preservación, comercialización, distribución, identificación y
evaluación de los componentes químicos de origen natural, la farmacología y el uso tradicional de
esos compuestos o sus derivados para mejorar la salud y el bienestar del ser humano”. La
Farmacoergasia es la rama de la Farmacognosia dedicada al arte del cultivo, la recolección y
preparación de la cosecha de plantas medicinales.
Recolección de drogas vegetales. Es el acto de tomar los materiales farmacéuticos de las
plantas medicinales, sujetándose a una serie de normas generales y especiales establecidas para
cada especie botánica.
Conservación de drogas vegetales.
Tiene como objetivo conservar los materiales farmacéuticos después de su recolección pues la luz,
el aire, el calor y la humedad alteran sus propiedades y caracteres. Para conservar los materiales
hay que separarlos por aquellos órganos que no sean activos o que puedan alterar la
conservación. Esta operación preliminar se denomina separación de órgano o disección anatómica
y es muy importante, puesto que aunque todos los órganos de una misma planta tienen el mismo
principio activo, el porcentaje de contenido es diferente en cada uno, variando por lo tanto su
actividad.
Proceso de secado de drogas vegetales. El secado del material vegetal tiene como objetivo
primordial eliminar al máximo la cantidad de agua de dicho material con el fin de prevenirlo del
enmohecimiento, la acción de enzimas y bacterias de posibles reacciones químicas. El secado fija
los constituyentes y facilita la trituración y la molienda, lo que favorece la comercialización. Un
secado no apropiado puede ocasionar cambios no previsibles y por lo tanto pérdida de los
principios activos del material recolectado. Una desecación adecuada se caracteriza por no ser ni
muy rápida ni muy lenta. Un secado rápido ocasiona endurecimiento de las capas superficiales,
impidiendo en parte la eliminación del agua del interior del material. En cambio un secado lento
puede producir alteración del material antes que termine el proceso de secado. El control del
secado depende de la naturaleza del material y del aspecto que se desee dar al producto
terminado.
Descripción de la practica
La práctica se desarrolla en dos fases. Una primera fase de trabajo colaborativo grupal sobre las
10
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
plantas de estudio y una segunda fase de preparación, selección y secado del material vegetal.
Recursos a utilizar en la práctica
Material de laboratorio y/o solventes (por grupo)
Cortadores convencionales
Tijeras de jardinería o convencionales
Toallas absorbentes
Papel periódico
Bata de laboratorio
Guantes de látex o nitrilo
Agua destilada
Equipos (de uso común)
Estufa de secado de aire circulante, que permita una temperatura de hasta 60 ºC
Balanza digital o de brazo
Material vegetal (individual): Cada estudiante debe llevar una planta medicinal fresca adquirida
en el mercado popular de plantas medicinales (plaza de mercado) de su ciudad o región, elegida
dentro de las que se encuentran en el siguiente listado del Vademécum Colombiano de Plantas
Medicinales. Si lo desea el estudiante, la planta también puede ser recolectada de una zona rural
de su ciudad o región. Adquirir de 50 a 100 gramos de planta medicinal fresca.
flores de ajenjo hojas de alcachofa hojas de apio flores de árnica flores de azucena hojas de boldo flores de caléndula corteza de cáscara sagrada hojas de diente de león hojas de cidrón flores de chisacá hojas de eucalipto
hojas de gualanday tallos y hojas de hierbabuena raíz y frutos de hinojo hojas de lechuga (planta florecida) hojas de limoncillo hojas de llantén hojas, tallos y flores de manzanilla hojas y flores de mejorana hojas de ortiga menor hojas de menta hojas y flores de malva hojas y flores de mejorana flores de milenrama
hojas de pasiflora hojas y flores de pensamiento hojas y frutos de perejil hojas y flores de romero hojas, flores y frutos de sauco hojas de sen tallos y hojas de toronjil tallos y hojas de verbena hojas y flores de violeta hojas, tallos y flores de vira-vira
Software a utilizar en la práctica u otro tipo de requerimiento para el desarrollo de la
práctica
ninguno
Seguridad Industrial
Equipo Material de fabricación
Tamaño Riesgo de accidente Calificación
(1-5)
Estufa de secado Acero inoxidable Mediana Quemadura al contacto directo
2
11
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
Como la estufa se manipulará máximo a 60 grados centígrados, el riesgo de accidente es bajo.
Sólo se abre en el momento de colocar el material vegetal
Metodología práctica Nº 1
Conocimiento previo para el desarrollo de la práctica.
Cada estudiante de farmacognosia deben tener claros conceptos relacionados con:
Farmacognosia, farmacoergasia, droga, almacenamiento, conservación y secado de drogas
vegetales. Con respecto a la planta medicinal adquirida o recolectada consultar de forma
individual: Sitio de recolección (plaza de mercado, región, municipio, vereda, etc), condiciones
climáticas (factores climáticas) y de cultivo aptas para su crecimiento y desarrollo, condiciones
aptas de recolección (parte de la planta a recolectar o droga vegetal, época del año, forma de
recolección, etc) y proceso de secado de la planta para fines medicinales.
Forma de trabajo:
Trabajar en grupos colaborativos, máximo de 4 personas los cuales se conformarán el primer día
de la práctica. Participar de todas las actividades propuestas en esta guía de laboratorio.
Procedimiento:
1. Quiz sobre conocimientos previos
2. Explicación del tutor sobre los objetivos de la práctica y las actividades a realizar el primer
día de práctica y las próximas sesiones
3. Formar grupos colaborativos máximo de 4 estudiantes
4. En grupos de trabajo colaborativo y bajo la asesoría del tutor, socializar las consultas
realizadas sobre las diferentes plantas medicinales adquiridas de forma individual
identificando diferencias y similitudes mediante un cuadro comparativo.
5. Dentro de las plantas adquiridas de forma individual, cada grupo debe seleccionar una
planta de estudio para el trabajo de laboratorio. Realizar las siguientes actividades:
6. Observar el material vegetal fresco (mvf), seleccionando para la práctica aquél que se
encuentre sano y en buen estado (libre de materia orgánica como tierra, residuos de polvo,
excrementos, insectos etc). Si se requiere emplear tijeras o bisturí. Solo si es necesario,
lavar el material sumergiéndolo en una vasija o platón con agua destilada y secarlo con
toallas absorbentes.
7. Adecuar el material vegetal de forma tal que se seleccione y separe la droga vegetal
correcta para la práctica, es decir la parte de la planta utilizada con fines terapéuticos según
el Vademecum (hojas, tallos, flores, corteza, etc).
12
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
8. Pesar aproximadamente 20 a 30 gramos de material vegetal fresco (mvf) seleccionado,
colocarlo adecuadamente esparciéndolo sobre papel periódico y ponerlo a secar en estufa
de secado de aire circulante, entre 45-55°C, durante 4 a 7 días. Anotar el peso del material
vegetal.
Nota: El tiempo de secado dependerá de la cantidad de material vegetal a secar (dependiendo del
número de grupos de laboratorio), tamaño de la estufa, humedad del material vegetal entre otros
factores. Se recomienda vigilar el material vegetal y retirarlo de la estufa cuando su apariencia
demuestre que ha perdido la mayor cantidad de humedad posible, es decir que se vea
deshidratado y crujiente al tacto. Al retirarlo, envolverlo en el papel periódico y almacenarlo
protegiéndolo de la luz en lugar fresco libre de humedad.
Sistema de Evaluación
Quiz (10 puntos)
Trabajo colaborativo: Cuadro comparativo (identificación de diferencias y similitudes entre
características farmacoergásicas de las plantas adquiridas) (10 puntos)
Informe o productos a entregar
Quiz (presentado de forma escrita)
Cuadro comparativo entregado en medio físico al final de la práctica Nº 1 (forma escrita)
Rúbrica de evaluación
Item Evaluado
Valoración Baja
Valoración Media
Valoración Alta
Máximo
puntaje
Presentación de Quiz
individual
El estudiante no asiste al laboratorio (Puntos = 0)
El estudiante presenta el quiz y obtiene una calificación menor de 10 puntos (Puntos = 1-9)
El estudiante presenta el quiz y obtiene una calificación de 10 puntos (Puntos = 10)
10
Participación del estudiante en la primera
sesión de laboratorio
El estudiante no asiste al laboratorio (Puntos = 0)
El estudiante asiste al laboratorio pero no trae el material vegetal ni la consulta para el desarrollo del trabajo grupal (Puntos = 1)
El estudiante asiste, trae el material requerido y la consulta para el trabajo grupal. (Puntos = 3)
3
Características del producto del trabajo
grupal
El cuadro comparativo no se relaciona con las temáticas de la consulta. No se entrega trabajo escrito. (Puntos = 0)
El cuadro comparativo está incompleto. Le falta organización y claridad. Puntos = 1-6)
El cuadro comparativo es organizado y claro. Se presentan adecuadamente los temas de consulta propuestos y está completo. (Puntos =7)
7
13
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
TOTAL DE PUNTOS POSIBLES 20
Realimentación
El tutor de práctica informará a los estudiantes la calificación obtenida durante la segunda práctica
de laboratorio (práctica Nº 2).
14
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
PRACTICA No. 2 – Trituración y extracción del material vegetal
(fase fitoquímica 1)
Tipo de practica
Presencial X Autodirigida Remota
Porcentaje de evaluación 21% (15/70 puntos)
Horas de la practica 6
Temáticas de la práctica Métodos de extracción del material vegetal Unidad 1 (capítulo 2), Unidad 2 (capítulos 4 al 9)
Intencionalidades formativas Propósito: Orientar al estudiante acerca de las temáticas relacionadas con la farmacoergasia y el proceso de extracción de las plantas medicinales. Adquirir conceptos relacionados con el uso tradicional de las plantas medicinales y la importancia farmacológica y toxicológica de estudios biológicos realizados con las plantas. Identificar en el mercado productos fitoterapéuticos elaborados a partir de las plantas medicinales consultadas. Objetivo: Reconocer la importancia de las condiciones del cultivo y crecimiento adecuado para las plantas medicinales. Aprender las causas por las cuales es importante realizar una correcta selección, secado y extracción para el estudio fitoquímico de las plantas medicinales. Reconocer la importancia del saber popular o tradicional que existe en las comunidades sobre el uso de las plantas medicinales Reconocer la importancia de los estudios biológicos (farmacológicos y toxicológicos) realizados con plantas medicinales para la obtención de princios activos y el desarrollo de fitoterapéuticos.
15
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
Meta: El estudiante adquirirá conceptos relacionados con la farmacoergasia de la planta medicinal adquirida y las de sus compañeros. El estudiante aprenderá a seleccionar, preparar y secar adecuadamente su planta medicinal. El estudiante reconocerá la importancia del saber popular sobre el uso tradicional de prlantas medicinales, así como de los estudios biológicos para el desarrollo de productos naturales Competencia: Se espera que el estudiante reconozca en las plantas
medicinales desarrolladas bajo condiciones climáticas y
de cultivo, una fuente adecuada de materia prima vegetal
para la preparación de fitoterapéuticos de calidad.
Fundamentación Teórica
Preparaciones galénicas. Son extractos obtenidos de las plantas y que se usan directamente en terapéutica. Estas preparaciones son económicas y se utilizan para preparar aditivos, saborizantes y con propósitos culinarios. Estas preparaciones son la primera etapa en el aislamiento de los principios activos y se obtienen por varias técnicas como: infusión, decocción, maceración, percolación, extracción continua. _ Infusión: consiste en dejar la droga en contacto con agua fría o caliente por poco tiempo. (el café es una infusión en caliente, las aromáticas, etc) _ Decocción: cuando la droga se hierve con agua. _ Maceración: es una infusión prolongada, generalmente en alcohol acuoso. _ Percolación: es una maceración seguida por la adición de disolvente fresco para reemplazar el disolvente que se ha dejado pasar a través de la droga en polvo. _ Extracción continua: es una infusión repetida con disolvente caliente. Este es un método que se utiliza tanto en la industria como en el laboratorio. El aparato empleado para ello se llama Soxhlet. La desventaja de este método es que el material es sometido a un calentamiento continuo, por lo que no es recomendable utilizarlo para extraer compuestos termolábiles. Una forma de remediar en parte el problema es utilizar solvente con muy bajos puntos de ebullición. Extractos procesados. Un extracto crudo es una mezcla compleja de compuestos, factibles de
ser separados y procesos mediante diversos procedimientos. Dentro de los más generales
tenemos:
_ Precipitación disolvente-disolvente. Consiste en disolver el extracto en un disolvente adecuado y
16
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
se mezcla con un disolvente miscible menos polar, ocasionando la precipitación selectiva de los
constituyentes menos solubles de la planta. Esta técnica no produce un material puro, pero sí una
purificación rápida y simple.
_ Extracción líquido-líquido. Para ello se utilizan dos disolventes no miscibles. Consiste en la
separación de las moléculas de soluto entre las dos fases producidas. La cantidad de disolvente en
cada fase dependerá ante todo de la solubilidad relativa de los compuestos en cada disolvente, la
que a su vez está relacionada con la polaridad; y además también interviene el coeficiente de
partición de las sustancias. El éxito de este método depende en gran parte de la selectividad de los
disolventes empleados. Si el material se necesita separar es ácido o básico, se puede obtener
variando el pH de la fase acuosa en el sistema de partición líquido-líquido. Por regla general, las
sales iónicas son solubles en agua, o sea en disolventes polares, e insolubles en disolventes no
polares. Tenemos por ejemplo el caso de los alcaloides que cuando se encuentran en sistema
cloroformo-agua básica, su forma de base libre se encuentra disuelta en el cloroformo; pero si en
lugar de agua básica se emplea ácido acuoso diluido, en la capa acuosa, los alcaloides se
convertirán en sales y se encontrarán en la capa acuosa ácida. Este procedimiento por ejemplo,
sirve para separar los alcaloides de otro tipo de material básico presente en la mezcla.
Descripción de la practica
La práctica se desarrolla en dos fases. Una primera fase de trabajo colaborativo grupal
(exposición) y una segunda fase que consiste en la realización de la trituración y el proceso de
maceración (extracción) del material vegetal.
Recursos a utilizar en la práctica (Equipos / Material de laboratorio)
Material de laboratorio y/o solventes (por grupo): Mano y mortero mediano Espátula Frasco ámbar de vidrio de boca ancha con capacidad para 100 mL con tapa (pueden ser frascos de compota o mayonesa medianos). Si no es posible contar con frascos ámbar se recomienda cubrir el frasco con papel periódico para evitar el contacto directo de luz durante la maceración. Vaso de precipitado de 50 mL Papel periódico si es necesario (por grupo de laboratorio) Cinta de enmascarar delgada (de uso común para todos los grupos de laboratorio) Bata blanca de laboratorio y guantes de látex o nitrilo Etanol industrial (96%) (máximo 1 Lt, de uso común para todos los grupos de laboratorio) Equipos (de uso común): Balanza digital o de brazo
Software a utilizar en la practica
Ninguno
Metodología práctica Nº 2
Conocimiento previo para el desarrollo de la práctica.
Cada estudiante debe tener claros conceptos relacionados con: Farmacognosia, y métodos de
17
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
extracción del material vegetal.
Exposición: Con respecto a la planta medicinal seleccionada en la sesión anterior, el grupo de
laboratorio debe consultar: Origen, clasificación taxonómica, nombre científico de la planta,
nombres vulgares o populares, usos medicinales tradicionales y forma de empleo tradicional
(infusión, decocción, emplasto, lavados, enjuagues, etc), principales metabolitos secundarios o
constituyentes químicos, estudios farmacológicos, toxicidad, precauciones o contraindicaciones
durante su uso, productos fitoterapeúticos (ejemplos, indicando forma farmacéutica, composición,
indicación farmacológica). Preparar una exposición con una duración de máximo 30 minutos para
ser presentada durante la primera fase de práctica.
Forma de trabajo:
Trabajar en grupos colaborativos máximo de 4 personas conformados la primera práctica de
laboratorio. Participar de todas las actividades propuestas en esta guía de laboratorio.
Material indispensable para el segundo día de práctica: Material vegetal seco (mvs) obtenido a
partir del proceso de secado de la primera práctica de laboratorio.
Procedimiento:
1. Realizar la exposición de cada grupo de trabajo (máximo 30 minutos) ante los compañeros.
2. Con ayuda de mano y mortero triturar el material vegetal seco (mvs) con el fin de reducir su
tamaño de partícula. Cuando el material esté homogéneo anotar sus características
organolépticas (aspecto, olor, color, sabor)
3. Pesar todo el material vegetal seco y molido obtenido, resultante de la trituración. Calcular
el porcentaje de humedad, teniendo en cuenta el peso en gramos del material fresco (mvf)
y el peso en gramos del mvs.
4. En el mortero colocar el material vegetal y humedecerlo lentamente con una pequeña
cantidad de etanol al 96% (etanol industrial), con ayuda del vaso de precipitados y la
espátula. Dejar hidratar durante 10 a 15 minutos.
5. Con ayuda de la espátula, transferir el material humedecido a un frasco de vidrio ámbar de
boca ancha (capacidad de 100 mL) de forma que ocupe alrededor de ¼ de su capacidad.
Adicionar etanol al 96%, suficiente para cubrir el material sin llenar el frasco o recipiente (de
forma que llene alrededor de 2/3 de la capacidad del frasco). No debe quedar material sin
humedecer en el fondo del frasco. Se recomienda frasco ámbar, si no es posible, cubrir el
frasco con papel periódico. Cerrar muy bien el frasco con la tapa respectiva y marcarlo con
cinta de enmascarar.
Nota: Para una buena extracción por maceración, se debe mover (sin destapar) suavemente el
frasco sobre una base sólida en una sola dirección al menos 3 veces al día, asegurando que el
18
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
etanol entre en contacto con todo el material vegetal al mover el frasco. La extracción se
mantendrá de 5 a 7 días a temperatura ambiente. Se recomienda que un estudiante de cada grupo
se responsabilice del frasco. Lo puede llevar consigo sin olvidarlo para la práctica Nº 3.
Sistema de Evaluación
Presentación oral (exposición): 15 puntos
Informe o productos a entregar
Presentación oral
Rúbrica de evaluación
Item Evaluado
Valoración Baja
Valoración Media
Valoración Alta
Máximo
puntaje
Participación del estudiante en la segunda
sesión de laboratorio
El estudiante no asiste al laboratorio. (Puntos = 0)
El estudiante asiste al laboratorio pero no realiza la consulta requerida para la presentación oral. (Puntos = 1)
El estudiante asiste, y realiza previamente la consulta requerida para la presentación oral. (Puntos = 4)
4
Participación del
estudiante de la actividad
grupal
El estudiante no demuestra interés ni participa de la presentación oral. (Puntos = 0)
El estudiante participa de la presentación oral pero sus aportes no se relacionan o no son pertinentes con la consulta propuesta. (Puntos = 2)
El estudiante participa de la presentación oral con aportes relacionados y pertinentes con la consulta propuesta. (Puntos = 5)
5
Características del producto del trabajo
grupal
La presentación oral no se relaciona con las temáticas planteadas en la consulta propuesta. No es clara ni organizada. (Puntos = 0)
La presentación oral está incompleta quedando temas pendientes de la consulta propuesta. Le falta organización y claridad. (Puntos = 3)
La presentación oral es organizada y clara. La presentación está completa y se presentan adecuadamente todos los temas de consulta propuestos. (Puntos =6)
6
TOTAL DE PUNTOS POSIBLES 15
Realimentación
Evaluación inmediata durante la presentación oral. El tutor informará a los estudiantes la
calificación obtenida durante la tercera práctica de laboratorio (práctica Nº 3).
19
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
PRACTICA No. 3 – Marcha fitoquímica preliminar del extracto vegetal
(fase fitoquímica 2)
Tipo de practica
Presencial X Autodirigida Remota
Otra ¿Cuál
Porcentaje de evaluación 50% (35/70 puntos)
Horas de la practica 6
Temáticas de la práctica Control de calidad de las drogas vegetales, fitoterapia y fitoquímica
Unidad 1 (capítulo 3)
Intencionalidades formativas Propósitos: Brindar al estudiante un acercamiento a los
pasos principales requeridos para realizar un estudio
fitoquímico preliminar de un extracto vegetal.
Objetivo General:
Conocer los fundamentos prácticos de un estudio
fitoquímico preliminar de plantas medicinales, empleadas
en la medicina tradicional de nuestro país.
Objetivos específicos
Realizar los procedimientos previos de adquisición y
preparación de un material vegetal para su posterior
estudio fitoquímico preliminar.
Desarrollar diferentes métodos para la identificación
cualitativa de metabolitos secundarios, presentes en el
extracto obtenido a partir del material vegetal en estudio.
Reconocer la importancia terapéutica de las plantas
medicinales, empleadas en la medicina tradicional de
cada región.
Metas:
El estudiante reconocerá en las plantas medicinales la
importancia de su caracterización farmacoergásica y
fitoquímica para el desarrollo de productos
20
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
fitoterapéuticos.
El estudiante aprenderá técnicas para la identificación de
constituyentes químicos presentes en las plantas
medicinales, responsables de sus efectos terapéuticos.
Competencias:
Se espera que el estudiante reconozca en las plantas medicinales una fuente importante para el estudio y desarrollo de fármacos ampliamente utilizados en la industria farmacéutica y la materia prima vegetal a partir de la cual se desarrollan los productos fitoterapéuticos.
Fundamentación Teórica
Valoración química de drogas vegetales
Las pruebas químicas se usan para identificaciones, determinación de concentración y pureza
de las drogas. Por ejemplo, la identificación de alcaloides se basa en diferentes reacciones de
coloración frente a reactivos químicos, como en el caso de los alcaloides de cinchona (quinina,
quinidina, cupreina, etc.), que al tratarse con solución TS de bromo (USP) y solución TS de
amoniaco (USP) producen una coloración verde esmeralda. Para realizar un análisis químico de
drogas, se deben emplear métodos extractivos farmacéuticos y purificar el constituyente principal.
En muchas drogas, el análisis químico es la única forma oficial de determinar su potencia. Para los
principios activos particulares se emplea el análisis químico pues se obtienen resultados muy
precisos. Las pruebas para alcaloides, la medida del efecto reductor de los azúcares frente a los
reactivos de Molish y Barfoed y la determinación de los índices de yodo, saponificación y acidez de
los aceites fijos, son ejemplos de ello. Las drogas de origen vegetal y animal que no son de
naturaleza celular, o que representan principios activos de plantas, se presentan más para su
estudio químico. El aislamiento, purificación de identificación y las pruebas y ensayos, aunque
aparentemente son técnicas farmacéuticas, en realidad son métodos químicos de valoración.
Estudio cromatográfico de las drogas vegetales. Las técnicas cromatográficas son más
eficaces que cualquier otra técnica para la separación e identificación de soluciones que contienen
los principios activos de las drogas. Su principal aplicación es la determinación de la identidad y
pureza de las drogas y derivados de origen natural. La cromatografía puede definirse como un
método de análisis en el cual el flujo de un disolvente (líquido o gas) favorece la separación de
sustancias por migración diferencial a partir de una estrecha zona inicial en un medio poroso
adsorbente. Para fines prácticos se puede considerar la cromatografía como un procedimiento de
separación de principios activos y materiales inertes presentes en las drogas, por mecanismos de
extracción fraccionada, intercambio iónico, adsorción u otro, entre un sólido poroso y un disolvente
que circula a través de él. Una vez separadas, las sustancias pueden identificarse por otros medios
analíticos. Se suelen emplear cromatografías en columna, en papel, en capa delgada o gaseosa.
21
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
La elección depende de la cantidad de muestra que se tenga y la exactitud requerida en el
resultado.
Descripción de la practica
La práctica se desarrollará en una sola fase que consiste en la obtención del extracto vegetal y la
realización de las pruebas fitoquímicas, para la identificación cualitativa de metabolitos secundarios
(principios activos).
Recursos a utilizar en la práctica (Equipos / instrumentos)
Material de laboratorio (por grupo)
Embudo buchner con su correspondiente erlenmeyer con desprendimiento lateral para filtración a
vacío (100 a 200 mL) ó en lo posible embudo común para filtración por gravedad.
vaso de precipitado de 50 mL
cápsula de porcelana mediana
espátula
agitador de vidrio
pipeta de 3mL ó 5mL
pera para succión y expulsión o pipeteador
6 tubos de ensayo para capacidad de 10 mL
Gradilla
Pinza o depilador pequeño
Pinza para tubo de ensayo
Pinza para cápsula de porcelana
Papel filtro
Capilar delgado
Bata blanca de laboratorio y guantes de látex o nitrilo
Toallas absorbentes
Material de laboratorio (de uso común)
2 cámaras de cromatografía medianas (también pueden ser frascos de compota o vasos de
precipitados pequeños cubiertos con placas de vidrio).
2 Placas de cromatografía en capa fina de 10x10 cm (pueden ser en base de aluminio o plástico:
cromatofolios, o en base de vidrio). En una sola placa se pueden aplicar hasta 8 muestras de
extracto (1 muestra por grupo). Si se emplean frascos de compota a cada grupo asignarle 2 placas
de cromatofolios en base de aluminio de 2 cm x 6 cm.
Referencias recomendadas:
Cromatofolios: Marca Macherey Nagel ref: 805023, caja por 25 láminas cubiertas con sílicagel e
indicador de fluorescencia 254 nm, 0.20 mm de espesor. También podrían ser de marca Merck.
Los cromatofolios se cortan con tijeras convencionales según las dimensiones requeridas, teniendo
cuidado de poner los dedos directamente sobre la sílica.
Placas de cromatografía en base de vidrio: Marca Macherey Nagel ref: 821030, placas finas con
22
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
sílicagel 60 e indicador de fluorescencia 254 nm, 0.25 mm de espesor. También podrían ser de
marca Merck.
Nota: si no es posible adquirir las placas cromatográficas se podría emplear papel filtro.
Aspersores de vidrio o atomizadores de plástico (el número a emplear dependerá del número de
reveladores a usar)
Goteros o pipetas pasteur para los reactivos que lo requieran Cinta de enmascarar delgada
Equipos, reactivos y solventes (de uso común)
Estufa de secado que alcance una temperatura de 70-100ºC. También puede ser plancha de calentamiento. Baño maría (ó baño termostatado) para calentar de 50ºC a 60ºC Lámpara UV (si es necesaria para detercción a 254 nm y 365 nm) Campana de extracción de aire Reactivos, reveladores químicos para la identificación de metabolitos y solventes :
1. Reactivo de Mayer: disolver por separado 1.5 g de cloruro mercúrico y 5.0 g de yoduro de potasio en la mínima cantidad de agua, mezclar las dos soluciones y completar con agua destilada a un volumen de 100 mL (este reactivo alcanza para las tres prácticas)
2. Reactivo de Valser: Disolver 1.0 g de yoduro de potasio en agua destilada y completar a 100 mL, agregar agitando a la anterior solución yoduro de mercurio sólido hasta que no se disuelva (aprox 14.0 gramos). Filtrar si es necesario. (este reactivo alcanza para las tres prácticas).
3. Para la reacción de Shinoda tener limadura de magnesio y HCl concentrado (100 mL). 4. Solución de cloruro férrico al 10% (para detección de compuestos fenólicos). Preparar
100 mL. 5. Revelador químico universal: Oleum (sugerido): Para 50 mL: mezclar
cuidadosamente 2 mL de agua destilada con 8 mL de ácido sulfúrico concentrado, finalmente adicionar lentamente a 40 mL de ácido acético (preparar en campana de extracción).
6. Revelador químico universal: Godín (alternativo): Solución A: solución al 5% de H2SO4 en etanol (al 96%) (50 mL) Solución B: solución al 1% de vainillina en etanol (al 96%) (50 mL)
7. Dragendorff (si el tutor lo quiere utilizar): solución A: disolver 0.85 g de nitrato de bismuto en 10 mL de ácido acético glacial y 40 mL de agua. solución B: disolver 16 g de yoduro de potasio en 40 mL de agua solución de reserva: mezclar volumenes iguales de las soluciones A y B. Mantener en frasco oscuro en nevera (80 mL aprox). solución reveladora: mezclar 5 mL de solución de reserva con 10 mL de ácido acético glacial y 50 mL de agua destilada.
8. Bornträger (si el tutor lo quiere utilizar): solución al 7% de KOH en etanol (96%) (50 mL)
9. Agua destilada (máximo 1Lt) 10. Etanol al 96% (máximo 1Lt) 11. HCl diluido (al 10% en agua destilada) (200 mL)
23
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
Solventes sugeridos a emplear para las mezclas de fases móviles en las cámaras cromatográficas: cloroformo, metanol, hexano, acetato de etilo, acetona. Fases móviles recomendadas para la práctica:
Fase móvil 1: mezcla Cloroformo:Metanol (97.5:2.5) (50 mL para una cámara cromatográfica mediana)
Fase móvil 2: mezcla Hexano: Acetato de etilo (60:40) (50 mL para una cámara cromatográfica mediana)
Software a utilizar en la práctica u otro tipo de requerimiento para el desarrollo de la
práctica
Ninguno
Seguridad Industrial
Auxiliar o profesional de laboratorio: Se recomienda preparar los reactivos, reveladores
químicos y fases móviles bajo campana de extracción de aire y el uso de guantes de laboratorio y
mascarilla.
Estudiantes: El contacto con los reactivos y solventes orgánicos es mínimo por el empleo de
goteros o pipetas pasteur durante su manipulación. Se sugiere su empleo bajo campana de
extracción de aire. Se recomienda vigilar el uso racional del etanol industrial (96%). Se recomienda
el empleo de guantes de laboratorio de látex o nitrilo. Las prácticas relacionadas con la prueba de
shinoda (que emplea ácido clorhídrico concentrado) y la aspersión de las placas cromatográficas
las debe realizar el tutor bajo campana de extracción de aire y el uso de guantes de laboratorio.
Disposición de residuos: Disponer de un frasco de vidrio para la eliminación de residuos (mezcla
de residuos orgánicos e inorgánicos)
24
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
Metodología práctica Nº 3
Conocimiento previo para el desarrollo de la práctica.
Cada estudiante debe tener claros conceptos relacionados con: farmacognosia, extractos
vegetales, ensayos fitoquímicos y cromatografía.
Forma de trabajo:
Trabajar en grupos colaborativos, máximo de 4 personas los cuales se conformarán el primer día
de la práctica. Participar de todas las actividades propuestas en esta guía de laboratorio.
Material indispensable para el primer día de práctica adquirido por cada estudiante: Producto
de la maceración realizada durante la segunda práctica.
Procedimiento:
1. Filtrar poco a poco el producto de la maceración (si es posible a vacío en embudo buchner)
para obtener el filtrado o extracto fluido (anotar su color y apariencia).
2. Etiquetar o marcar 3 tubos de ensayo, para cada una de las siguientes pruebas de
identificación de metabolitos:
Tubo 1: Identificación de Taninos. A 1 mL aproximadamente de extracto líquido, adicionar
3 mL de solución de etanol:agua (8:2) y agitar suave. Separar 1 mL de la solución anterior
en otro tubo de ensayo y adicionar 3 mL de solución de etanol:agua (8:2). Separar de 2 a 3
mL de la solución anterior en otro tubo de ensayo, añadir 1 mL (por gotas) de solución de
cloruro férrico al 10%. Se debe tener una muestra “blanco” preparada en las mismas
condiciones a la cual no se le adiciona reactivo. Observar y anotar los cambios de color,
comparando con el “blanco”. Prueba positiva: Cambios de color a azul oscuro, violeta
oscuro ó café oscuro. Los estudiantes deben consultar para el informe en qué consiste esta
prueba y el cambio de color a qué tipo de taninos se atribuye. Analizar los resultados
obtenidos.
Nota: Es posible que con la primera dilución se pueda hacer la prueba. Lo que se busca es
aclarar el extracto y garantizar que los taninos presentes se encuentren en solución en un
solvente de naturaleza polar.
Tubo 2: Identificación de flavonoides (Reacción de Shinoda). A 1 mL aproximadamente de
extracto líquido, adicionar 3 mL de solución de etanol:agua (8:2) y agitar suave. Separar 1
mL de la solución anterior en otro tubo de ensayo y adicionar 3 mL de solución de
etanol:agua (8:2). En otro tubo de ensayo adicionar limadura de magnesio de forma tal que
cubra el fondo del tubo, adicionarle 1 mL de la solución diluida de extracto y luego
lentamente 3 a 5 gotas de HCl concentrado (máximo 0.5 mL). Esperar a que termine el
desprendimiento de hidrógeno y observar el cambio de color. Esta prueba debe realizarse
cuidadosamente en campana de extracción, por parte del tutor responsable de la
25
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
práctica. Se debe tener una muestra “blanco” preparada en las mismas condiciones a la
cual no se le adiciona reactivo. Observar y anotar los cambios de color, comparando con el
“blanco”. Prueba positiva: Cambios de color a amarillo, amarillo oscuro, naranja, rojo o
violeta. Los estudiantes deben consultar para el informe en qué consiste esta prueba y el
cambio de color a qué tipo de flavonoides se atribuye. Analizar los resultados obtenidos.
Nota: Es posible que con la primera dilución se pueda hacer la prueba. Lo que se busca es
aclarar el extracto y garantizar que los flavonoides presentes se encuentren en solución en
un solvente de naturaleza polar.
Tubo 3: Identificación de terpenoides por cromatografía (ver más adelante): Destinar de 0.5
a 1 mL de extracto líquido para las pruebas de cromatografía en capa delgada (CCD). No
diluir.
3. Identificación de alcaloides (reacciones de precipitación): Colocar el volumen restante del
extracto líquido obtenido en el punto 1 en una cápsula de porcelana mediana, calentar a
baño maría hasta evaporar completamente el etanol. Este proceso debe permitir la
obtención de un extracto blando (cubre el fondo de la cápsula de porcelana). Anotar el
aspecto, color y olor del extracto obtenido. Se recomienda realizar el secado a baño maría
en baño termostatado de 50 a 60°C, si no, en baño maría convencional controlando la
temperatura del baño.
Adicionar al extracto blando obtenido en la cápsula de porcelana 5 mL de HCl diluido (al
10%), con ayuda de espátula desprender el extracto de las paredes y del fondo de la
cápsula en contacto con el HCl diluido. Realizar el procedimiento anterior 2 veces más,
adicionando cada vez 5 mL de HCl diluido (10%). Filtrar y separar en dos tubos de ensayo
aproximadamente 5 mL de filtrado (debe estar claro). Adicionar a un tubo de ensayo
alrededor de 1 mL de Reactivo de Mayer y al otro tubo alrededor de 1 mL de Reactivo de
Valser. Anotar los resultados observados. Observar y anotar los cambios de color. Prueba
positiva: Precipitados de color blanco, crema ó beige. Los estudiantes deben consultar
para el informe en qué consisten estas pruebas para el reconocimiento de alcaloides. ¿Qué
otros reactivos de precipitación se emplean para la identificación de alcaloides? Analizar los
resultados obtenidos.
4. Cromatografía en capa fina:
Con ayuda de un capilar tomar una muestra del extracto líquido del tubo 3, aplicar 3 veces
sobre la placa cromatográfica (fase estacionaria). Introducir la placa en la cámara para
cromatografía, previamente saturada con la mezcla de elución respectiva (se recomienda
emplear dos placas cromatográficas, cada una para una fase móvil diferente). Dejar
eluir el solvente a través de la placa, hasta alcanzar alrededor de 0.5 mm del borde superior
de la placa. Con ayuda de un depilador o pinza retirar la placa de la cámara, dejarla secar a
temperatura ambiente y con ayuda de aspersor o atomizador asperjar con el revelador
universal en campana de extracción según las indicaciones dadas más adelante. Como se
26
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
indicó antes, si se cuentan con placas de vidrio o cromatofolios de 10 cm X 10 cm, se
pueden aplicar hasta 8 muestras por placa, de forma que en una sola placa o cromatofolio
se puedan aplicar y evaluar las muestras de varios grupos.
Nota: Para la revelación de la cromatografía se recomienda emplear reveladores químicos
universales, los cuales permiten la identificación de diferentes tipos de metabolitos. Si el tutor lo
desea podría utilizar también reveladores específicos. Cada revelador se emplea en una sola placa
cromatográfica. A continuación se describe la forma de utilización de algunos reveladores
universales y específicos y las pruebas positivas correspondientes.
Indicaciones reveladores químicos universales:
GODÍN (revelador universal): humedecer o aspejar las placas cromatográficas,
primero con la solución A y posteriormente con la solución B. Dejar secar y calentar
la placa a 100ºC hasta aparición de manchas coloreadas a la luz visible. Para
calentar la placa emplear estufa de aire circulante o sobre plancha de calentamiento
cuidando que no se queme. Resultados: terpenoides: manchas de color violeta,
rosada ó azul; flavonoides, xantonas, naftoquinonas: manchas amarillas; irioides:
manchas cafés.
OLEUM (revelador universal): La forma de aspersión y los resultados observados
son muy similares a los obtenidos con GODÍN.
Indicaciones reveladores químicos específicos (si el tutor los quiere emlplear):
DRAGENDORFF para cromatografía (detección de alcaloides): humedecer o
asperjar las placas cromatográficas, dejar secar. Observar la aparición de manchas
naranja a la luz visible.
BORNTRÄGER (detección de antraquinonas y cumarinas): Humedecer o asperjar
las placas cromatográficas, dejar secar. Observar la aparición de manchas al visible
y a 365 nm. Calentar a 100ºC y observar de nuevo. Antraquinonas: manchas rojas;
cumarinas: manchas azules a luz UV-365 nm.
A continuación se presenta un esquema guía para la comprensión del proceso de cromatografía en
capa delgada.
27
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
Figura 1.
Sistema de Evaluación
Informe de laboratorio. 35 puntos
Informe o productos a entregar
El informe debe contener la siguiente información en su orden:
1. Portada con el nombre completo y la identificación de los estudiantes de cada grupo.
2. Introducción: Importancia y justificación de este trabajo
3. Marco teórico: Debe reunir la información consultada para la exposición realizada en la
segunda práctica de laboratorio sobre la planta medicinal en estudio.
4. Objetivos: General y específicos.
5. Metodología empleada (puede ser en forma de diagrama de flujo)
6. Presentación de resultados y análisis
7. Conclusiones
8. Bibliografía (aplicar normas APA)
Condiciones del informe a entregar: Letra arial 11, espacio 1.5, no más de 15 páginas.
Rúbrica de evaluación
Item Evaluado
Valoración Baja
Valoración Media
Valoración Alta
Máximo
puntaje
Presentación, redacción y bibliografía
No se entrega informe de laboratorio.
Al informe de laboratorio le falta claridad y
El informe de laboratorio entregado es claro y bien organizado. Presenta
10
28
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
(Puntos = 0)
organización. Presenta una regular redacción que no permite una lectura coherente. Cita bibliografía pero no está relacionada con la práctica realizada o no aplica adecuadamente normas APA (Puntos = 5)
una redacción adecuada que permite una lectura coherente. Cita bibliografía relacionada con la práctica y aplica adecuadamente normas APA (Puntos = 10)
Características de la
estructura del informe
No se entrega informe de laboratorio. (Puntos = 0)
Se entrega informe de laboratorio, pero no presenta la estructura requerida o está incompleto (Puntos = 5)
El informe cuenta con la estructura requerida. Se tratan todos los temas propuestos. (Puntos = 10)
10
Características del contenido del informe.
Cumplimiento de objetivos
No se entrega informe de laboratorio. (Puntos = 0)
La presentación de resultados no es pertinente con el desarrollo y objetivos de la práctica. Se discuten y analizan resultados pobremente o no hay análisis de resultados (Puntos = 8)
La presentación de resultados es pertinente con el desarrollo y objetivos de la práctica. Se discuten y analizan los resultados adecuadamente (Puntos =15)
15
TOTAL DE PUNTOS POSIBLES 35
Retroalimentación
A más tardar 15 días después del desarrollo de la tercera sesión de práctica, el informe debe ser
entregado al tutor. El tutor dará a conocer a los estudiantes la calificación obtenida vía correo
electrónico, correo interno y/o foro de noticias del curso (aula virtual). Las calificaciones deben ser
enviadas por el tutor de práctica en el formato respetivo, al correo electrónico del director del curso
quien las cargará oportunamente en el aula.
29
UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA – UNAD ESCUELA DE CIENCIAS DE LA SALUD GUIA COMPONENTE PRÁCTICO DEL CURSO: 201421 – FARMACOGNOSIA
7. FUENTES DOCUMENTALES
Bruneton J., Elementos de Fitoquímica y Farmacognosia, Editorial Acribia S.A, España,
2001.
Bruneton Jean, Fitoterapia, Editorial Acribia S. A., España, 2004.
Evans W., Trease and Evans Pharmacognosy, 15 Ed., W. B Saunders, 2002.
Bravo L., Farmacognosia, Elsevier España S.A, Madrid, España, 2006.
Castro, D. (2013) Cultivo y Producción de Plantas Aromáticas y Medicinales. Fondo
Editorial Universidad Católica de Oriente. Disponible en:
http://www.uco.edu.co/investigacion/fondoeditorial/libros/Documents/Libro%20Plantas%20A
romaticas%202013.pdf
http://datateca.unad.edu.co/contenidos/201421/201421_AVA/Castro_Dagoberto_Cultivo_Pr
oduccion_PMA_UCO_2013.pdf
Fonnegra R. y Jimenez SL., Plantas medicinales aprobadas en Colombia, 2Ed, Editorial
Universidad de Antioquia, 2006.
Ministerio de Salud y Protección Social (2008). Vademecum Colombiano de Plantas
Medicinales. Disponible
en:http://www.profitocoop.com.ar/articulos/Vademecum%20colombiano%20de%20plantas
%20medicinales.pdf
http://datateca.unad.edu.co/contenidos/201421/201421_AVA/MPS_Invima_VCPM_2008.pd
f
Osorio, E. J., (2009). Aspectos básicos de Farmacognosia. Universidad de Antioquia.
Disponible en: http://farmacia.udea.edu.co/~ff/Farmacognosia.pdf
http://datateca.unad.edu.co/contenidos/201421/201421_AVA/Osorio_Edison_Conceptos_F
armacognosia_2009.pdf
Plantasnet: Diccionario On Line de Plantas Medicinales. Disponible en:
http://www.plantasnet.com/index.html
Quintana de Rueda (2005) Vademecum de Fitoterapia, León (España) Disponible en:
http://datateca.unad.edu.co/contenidos/201421/201421_AVA/Perez_Quintana_Vademecum
_de_fitoterapia_2005.pdf
Vanaclocha B. y Cañigueral S., Fitoterapia, vademecum de prescripción, Elsevier-Masson,
Barcelona, España, 2006.