CRECIMIENTO Y SUPERVIVENCIA DE TILAPIA ROJA HÍBRIDA (Oreochromis spp.) CULTIVADA EN JAULAS...

UNIVERSIDAD AUTÓNOMA DE SINALOA COLEGIO DE CIENCIAS AGROPECUARIAS

FACULTAD DE CIENCIAS DEL MAR MAESTRÍA EN CIENCIAS AGROPECUARIAS

TESIS

CRECIMIENTO Y SUPERVIVENCIA DE TILAPIA ROJA HÍBRIDA (Oreochromis spp.) CULTIVADA EN JAULAS FLOTANTES EN

AMBIENTE MARINO

QUE COMO REQUISITO PARA OBTENER EL GRADO DE MAESTRO EN CIENCIAS AGROPECUARIAS

PRESENTA

PEDRO EDGARDO CÁRDENAS DÁVILA

DIRECTOR INTERNO DE TESIS DR. GUSTAVO RODRÍGUEZ MONTES DE OCA

DIRECTORA EXTERNA DE TESIS

DRA. MARTHA ZARAIN HERZBERG

CULIACÁN, SINALOA, ABRIL DE 2012

CONTENIDO

Página

ÍNDICE DE TABLAS------------------------------------------------------------------

ÍNDICE DE FIGURAS--------------------------------------------------------------------

i

ii

RESUMEN---------------------------------------------------------------------------------- iii

ABSTRACT--------------------------------------------------------------------------------- iv

I. INTRODUCCIÓN----------------------------------------------------------------------- 1

II. PROBLEMA----------------------------------------------------------------------------- 3

III. HIPÓTESIS----------------------------------------------------------------------------- 4

IV. OBJETIVO GENERAL--------------------------------------------------------------- 5

4.1 OBJETIVO ESPECÍFICOS--------------------------------------------------------- 5

V. REVISIÓN DE LITERATURA ------------------------------------------------------ 6

5.1 Historia del cultivo de tilapia en agua salada---------------------------------- 6

5.2 Características biológicas de la especie---------------------------------------- 6

5.3 Taxonomía----------------------------------------------------------------------------- 7

5.4 Dispersión geográfica del género Oreochromis------------------------------ 10

5.5 Producción mundial------------------------------------------------------------------ 11

5.6 Producción en México--------------------------------------------------------------- 11

5.7 Mecanismos homeostáticos------------------------------------------------------- 12

5.7.1 Osmorregulación---------------------------------------------------------- 13

5.7.1.1 Osmorregulación en peces marinos----------------------- 14

5.7.1.2 Osmorregulación en peces de agua dulce--------------- 14

5.7.1.3 Peces de agua dulce en agua salada--------------------- 15

5.7.2 Aclimatación----------------------------------------------------------------- 15

5.7.3 Aclimatación de tilapia a agua salada-------------------------------- 16

5.7.4 Crecimiento de tilapia en agua salada------------------------------- 17

5.8 Cultivo en jaulas flotantes---------------------------------------------------------- 18

5.9 Condiciones medioambientales óptimas--------------------------------------- 21

5.10 Densidades de cultivo------------------------------------------------------------- 21

5.11 Alimentación-------------------------------------------------------------------------- 22

5.12 Estrés y enfermedades------------------------------------------------------------ 23

VI. MATERIALES Y MÉTODOS------------------------------------------------------- 24

6.1 Experimento 1: Adaptación a agua marina------------------------------------ 24

6.1.1 Adaptación variedad Cubana año 2010------------------------------ 27

6.1.2 Adaptación variedad Pargo-UNAM año 2010---------------------- 29


6.2 Experimento 2: Etapa de Engorda----------------------------------------------- 30

6.2.1 Cultivo de engorda en jaulas flotantes año 2010----------------- 31

6.2.2 Cultivo de engorda en jaulas flotantes año 2011------------------ 31

VII. RESULTADOS Y DISCUSIÓN--------------------------------------------------- 39

7.1 Experimento 1: Adaptación a agua marina------------------------------------ 39


7.1.2 Adaptación variedad Pargo-UNAM año 2010---------------------- 40


7.2 Experimento 2: Etapa de engorda------------------------------------------------ 43



VIII. CONCLUSIÓN----------------------------------------------------------------------- 62

IX. LITERATURA CITADA-------------------------------------------------------------- 63

ÍNDICE DE TABLAS

Tabla 1. Peso promedio, GDP, FCA, S% durante la etapa de pre-

engorda de la tilapia roja variedad Cubana año 2010---------

39

Tabla 2. Peso promedio, GDP, FCA, S% durante la etapa de pre-

engorda de la tilapia roja variedad Cubana año 2011-------- 41

Tabla 3. Peso promedio, longitud promedio, GDP, FCA, TEC, K en

ciclo de engorda de tilapia roja variedad Cubana cultivadas

en jaulas flotantes en agua marina (cultivo año 2010 80M1:

80 org/m³, machos)-------------------------------------------------------

43


ciclo de engorda de tilapia roja variedad Pargo-UNAM

cultivadas en jaulas flotantes en agua marina (cultivo 2010;

30M: 30 org/m³, machos)------------------------------------------------

45


ciclo de engorda de tilapia roja variedad Cubana y tilapia roja

variedad Pargo-UNAM cultivadas en jaulas flotantes en agua

marina (cultivo 2010 80M1: 80 org/m³ machos, 30M:

30org/m³ machos)--------------------------------------------------------

46

Tabla 6. Peso promedio, longitud promedio, GDP, FCA, TEC, K

finales en ciclo de engorda de tilapia roja variedad Cubana

cultivadas en jaulas flotantes en agua marina (cultivo 2011;

80M2, 80MH, 170MH)------------------------------------------------------------- 51

Tabla 7. Peso promedio, longitud promedio, GDP, FCA, TEC, K,

durante el ciclo de engorda de tilapia roja variedad Cubana

cultivadas en jaulas flotantes en agua marina (cultivo 2011

80M2: 80 org/m³)---------------------------------------------------------- 53




80MH: 80 org/m³)----------------------------------------------------------

53




170MH: 170 org/m³)------------------------------------------------------

53

ÍNDICE DE FIGURAS

Figura 1. Ejemplar de tilapia roja variedad Cubana--------------------------- 25

Figura 2. Ejemplar de tilapia roja variedad Pargo-UNAM-------------------- 26

Figura 3. Jaula flotante 3X3 m con un bolso 3 X 3 X 1.2 m con luz de

malla 5 X 5 mm (tanque Sansuy™)----------------------------------

33

Figura 4. Curva de crecimiento del peso promedio vivo (W) de tilapia

roja variedad Cubana en la etapa de pre-engorda en el año

2010--------------------------------------------------------------------------

40

Figura 5. Curva de crecimiento del peso promedio vivo (W) de tilapia

roja variedad Cubana en la etapa de pre-engorda año 2011-- 41

Figura 6. Curva de crecimiento del peso promedio vivo (W) de la

tilapia roja variedad Cubana en la etapa de engorda durante

el cultivo en jaula flotante en agua marina (80M1= 80 org/m3

sólo machos)---------------------------------------------------------------

44

Figura 7. Curva de crecimiento de la longitud total (L) de la tilapia roja

variedad Cubana en la etapa de engorda durante el cultivo

en jaula flotante en agua marina (80M1)---------------------------- 44


tilapia roja variedad Pargo-UNAM en la etapa de engorda

durante el cultivo en jaula flotante en agua marina (30M= 30

org/m³ sólo machos)------------------------------------------------------ 45


variedad Pargo-UNAM en la etapa de engorda durante el

cultivo en jaula flotante en agua marina (30M) ------------------

46


tilapia roja variedad Cubana en la etapa de engorda durante

el cultivo en jaula flotante en agua marina (80M2: 80 org/m³,

80MH: 80 org/m³, 170MH: 170 org/m³) ----------------------------- 50


variedad Cubana en la etapa de engorda durante el cultivo

en jaula flotante en agua marina (80M2: 80 org/m³, 80MH: 80

org/m³, 170MH: 170 org/m³)-------------------------------------------- 50

Figura 12. Producción obtenida final (kg) y alimento suministrado (kg)

durante el cultivo de engorda durante 104 dias-------------------

52

Figura 13. Ecuación de la curva de crecimiento de relación longitud-

peso de la tilapia roja variedad Cubana de una muestra al

azar de 17 organismos del cultivo de engorda-------------------- 60

Figura 14. Ecuación de la curva de crecimiento de relación longitud-

peso de la tilapia roja variedad Pargo-UNAM de una muestra

al azar de 13 organismos del

cultivo de engorda---------------------------------------------------------

61

RESUMEN

Con el objetivo de describir el crecimiento y supervivencia de dos variedades

de tilapia roja híbrida, variedad Cubana (O. mossambicus X O. aureus) y

variedad Pargo-UNAM (tilapia roja variedad Florida (O. urolepis hornorum X O.

mossambicus) X O. niloticus X tilapia Rocky Mountain (O. niloticus X O.

aureus), se llevaron a cabo dos ensayos diferentes en dos años consecutivos.

El primer experimento fue desarrollar el proceso de adaptación a agua marina,

donde se analizó la supervivencia (S) y peso (W) adecuado de la tilapia roja

variedad Cubana y la tilapia roja variedad Pargo-UNAM en el años 2010, y en

el año 2011, se realizó el mismo proceso adaptación solo con la variedad

Cubana. El segundo experimento, se relacionó con el crecimiento de las dos

variedades de tilapia en el cultivo de engorda en jaulas flotantes (9m³) en agua

marina y se analizó las variables de crecimiento: peso (W), longitud (L),

ganancia de peso diario (GDP), factor de conversión alimenticia (FCA), tasa

específica de crecimiento (TEC), factor de condición (K) y la supervivencia (S).

En el 2010, se ensayaron las variedades de tilapia (Cubana y Pargo-UNAM,

masculinizadas) como dos tratamientos diferentes, por triplicado: 1) 80M1:

tilapias rojas variedad Cubana peso inicial (Wi) de 10.69 g a una densidad de

80 org/m³ durante 58 días y 2) 30M: tilapias rojas variedad Pargo-UNAM con un

peso (Wi) de 35.84 g con una densidad de 30 org/m³ durante 30 días, Para el

segundo año (2011), se utilizó el mismo sistema de cultivo con una duración de

104 días. Se ensayaron tres tratamientos por triplicado, utilizando la especie

del híbrido de la variedad Cubana: 1) 80M2: tilapias rojas masculinizadas

variedad Cubana con un peso (Wi) de 8.39 g, a una densidad de 80 org/m³, 2)

80MH: tilapias rojas sin masculinizar variedad Cubana con un peso de (Wi) de

8.39 g a una densidad de 80 org/m³, 3) 170MH: tilapias rojas sin masculinizar

variedad Cubana con un peso (Wi) de 8.39 g a una densidad de 170 org/m³,

Los peces fueron alimentados con alimento balanceado comercial extruido con

52%, 45%, 32% y 25% de proteína en sus diferentes etapas de desarrollo. La

calidad de agua se mantuvo en condiciones apropiadas para el desarrollo de la

tilapia, con O2 de 5.5 mg/L, T de 29.8°C, S‰ de 35‰ y pH de 8.4 en el año

2010 y O2 de 5.16 mg/L, T de 31.75°C, S‰ de 35‰, pH de 8.3 en el año 2011.

En el experimento de adaptación, se obtuvo una supervivencia del 100% para

las dos variedades en los dos años (2010, 2011). En el segundo experimento

de crecimiento de engorda en los dos años 2010 y 2011, se obtuvieron rangos

de peso final (Wf) de 84.8 ± 10.62 g a 264.3 ± 24.13 g, longitud final (Lf) de

14.17 ± 0.51 cm a 21.9 ± 0.2 cm, GDP de 1.63 a 2.46 g/d , FCA de 1.33 a 1.83,

TEC de 3.06 a 4.07, y K de 2.44 a 2.98 y S de 78.02 a 97.82%. No se encontró

diferencia significativa entre los tratamientos 80M2, 80MH y 170MH en la

variables de crecimiento (P>0.05). Se obtuvo la relación longitud-peso con la

ecuación Y=0.02X3.03 de la variedad Cubana, la ecuación Y=0.03X2.94 de la

variedad Pargo-UNAM y se obtuvo la relación días de cultivo-peso con la

ecuación Y=1.845X + 4.163 de la variedad Cubana, la ecuación Y=1.632X +

38.48 de la variedad Pargo-UNAM (P<0.05). Se concluyó que las dos

variedades de tilapia roja toleran el proceso de adaptación a agua marina a

partir de un peso de alrededor de 5 g para variedad Cubana y un peso de 25 g

para variedad Pargo-UNAM. Se observó que el crecimiento y supervivencia

fueron similares durante los dos años de cultivo con la variedad Cubana. Los

mejores crecimientos se obtuvieron con densidad de 80 org/m³ sólo machos.

En cuanto al efecto del sexo sobre el crecimiento se obtuvo un 17% de mayor

producción, un 7% de menor consumo de alimento y un 9% de mayor

crecimiento en el tratamiento 80M2 contra tratamiento mixto 80MH. El efecto

que tuvo de la densidad fue 42% mayor producción, 5% mayor consumo y un

16% de menor crecimiento en tratamiento de 170MH contra 80MH.

Anatómicamente la variedad Pargo-UNAM es más robusto que la variedad

Cubana, ya que se obtuvo el índice de condición (K) de 2.98 contra 2.53.

Durante el cultivo de engorda del año 2011 los pesos finales obtenidos de los

diferentes tratamientos son: 80M2 con 264.33 g, 80MH con 240.67 g y 170MH

con 201.67 g. Los resultados obtenidos de este último estudio sugieren que el

cultivo en jaulas puede ser buena estrategia considerando su elevada

producción por unidad de volumen de 19.70 a 28.30 kgs/m³ y con una GDP de

2.46 g/d, TCE de 3.32 y FCA de 1.33, promedio del tratamiento con mejor

rendimiento, por lo que se considera viable el cultivo en zonas costeras en

condiciones generales de agua marina.

Palabras claves: adaptación, crecimiento, jaulas flotantes, salinidad, tilapia

roja.

ABSTRACT

In order to describe the growth and survival of two varieties of hybrid red tilapia,

Cuban red tilapia (O. mossambicus X O. aureus) and Pargo-UNAM red tilapia

(Florida red tilapia (O. urolepis hornorum X O. mossambicus) X O. niloticus X

Rocky Mountain tilapia (O. niloticus X O. aureus)) two different experiments

were carried out in two consecutive years. The first experiment was related to

the process of adaptation to seawater analyzed variables were survival (S), and

weight gain (W) of Cuban red tilapia and Pargo-UNAM red tilapia (year 2010),

and 2011 under the same adaptation process only Cuban red tilapia fry in a

group of 100% males and a second group of males and females. The second

experiment was focused on tilapia cage culture using several 9m³ units in

seawater conditions. Analyzed variables were weight (W), length (L), daily

weight gain (GDP), feed conversion (FCA), specific growth rate (TEC), condition

factor (K) and survival (S). In 2010, two group different with all-male red tilapia

were stocked as follows: 1) 80M1: Cuban red tilapia initial weight (Wi)=10.69 g

stocked with 80 fish/m³ for 58 days, 2) 30M: Pargo-UNAM red tilapia Wi=35.84

g stocked with 30 fish/m³ for 30 days, with three replicate for group. For the

second year (2011), the same culture units were stocked for 104 days with

three different groups as follows: 1) 80M2: all-male red tilapia Wi: 8.39 g,

stocked at a density of 80 fish/m³, 2) 80MH: mixed-sex Cuban red tilapia Wi:

8.39 g, stocked at 80 fish/m³, 3) 170MH: mixed-sex Cuban red tilapia Wi: 8.39

g, stocked at 170 fish/m³, with three replicate per group. The fish were fed with

an extruded commercial feed with 52%, 45%, 32% and 25% protein at different

stages of development. Water quality parameters during growth-out trials were

as DO of 5.5 mg/L, T of 29.8°C, S of 35 ‰, pH of 8.4 in 2010 and DO of 5.16

mg/L, T of 31.75°C, S of 35‰, pH of 8.3 in 2011.

For the first experiment, we observed survival 100%, for both varieties in both

years (2010, 2011). In the second experiment for 2010 and 2011, obtained

growth parameters ranged for final weight (Wf)=84.8 ± 10.62 g to 264.3 ± 24.13

g, final length (Lf)= 14.17 ± 0.51 cm to 21.9 ± 0.2 cm, GDP=1.63 to 2.46 g/d,

FCA=1.33 to 1.83, TEC=3.06 to 4.07 and K=2.44 to 2.98 and S=78.02 to

97.82%. There was no significant difference between treatments 80M2, 80MH

and 170MH in growth variables (P> 0.05). We obtained a length-weight

equation Y=0.02X3.03 for Cuban red tilapia, Y=0.03X2.94 for Pargo-UNAM red

tilapia; also growth increment relationship was calculated for the time-weight

regression both varieties and as follows: Y=1.845X + 4.163 for Cuban red

tilapia, and Y=1.632X + 38.48 for Pargo-UNAM red tilapia with no significant

difference (P <0.05). We conclude that the two varieties of red tilapia tolerate

adaptation to seawater from an initial weight of around 5 g for Cuban red tilapia

and of 25 g for Pargo-UNAM red tilapia. There was a similar growth and survival

during the two years of cultivation with the Cuban red tilapia. The best growths

rates were obtained stocking 80 fish/m³ all-male. For groups with different sex

(mixed or all-male), we observed a 17% higher production, 7% lower feed

intake and faster daily rapid growth of 9% in 100%-male treatment (80M2)

versus the 80MH mixed-sex treatment. In contrast, in treatments with different

stocking density, we obtained a 42% higher output, 5% higher consumption and

slower growth of rate 16% for 170MH versus 80MH mixed-sex. As condition (K)

for red tilapia, it was found that only the Pargo-UNAM red tilapia is more robust

than the Cuban red tilapia, with a 2.98 and 2.53 respectively. In the second

experiment (2011), we obtained final weight: 80M2 with 264.33 g, 80MH with

240.67 g y 170MH with 201.67 g. The results of this study suggest that the cage

culture can be a good strategy considering their high output per unit area of

19.70 to 28.30 kg/m³ and GDP of 2.46 g/d and FCA of 1.33, of the better group,

for that reason, we consider farming tilapia in coastal areas in marine conditions

a viable activity.

Keywords: adaptation, growth, floating cages, salinity, red tilapia.

I. INTRODUCCIÓN

La captura pesquera no ha obtenido un crecimiento considerable en los últimos

años, lo que a ha permitido que la producción acuícola se consolide como uno

de los sectores de mayor desarrollo dentro de la producción de organismos

acuáticos. La tilapia por su alto nivel proteico, pocas espinas, olor suave, su

adaptabilidad a condiciones adversas, fácil manejo en cultivo, elevada tasa de

crecimiento y supervivencia, hacen que ocupe el segundo lugar en la lista de

las especies de peces mundialmente más cultivados (FAO, 2006; Valbuena,

2006). La especie de tilapia ensayada en este trabajo corresponde a la familia

Cichlidae del género Oreochromis originaria de África. Habita en las regiones

tropicales del mundo, es una especie altamente euritérmica y eurihalina,

aunque detienen su crecimiento en condiciones extremas, pueden sobrevivir y

crecer en un amplio intervalo de temperatura y en diferentes concentraciones

de salinidad desde el agua dulce hasta el agua marina (Morales, 2003). El

hibrido de la tilapia roja variedad Cubana (O. mossambicus X O. aureus) y el

hibrido de la tilapia roja variedad Pargo-UNAM (tilapia roja variedad Florida (O.

urolepis hornorum X O. mossambicus) X O. niloticus X tilapia Rocky Mountain

(O. niloticus X O. aureus)) son híbridos creados con el propósito de potenciar

cualidades deseadas como el carácter de color rojo y la resistencia a la

salinidad del agua marina manteniendo una elevada tasa de crecimiento. Esto

es relevante, ya que muchos países no cuentan con fuentes suficientes de

agua dulce y su uso es prioritario para cubrir demandas agrícolas, industriales y

de consumo humano directo (Ponce, 2004; López, 2007).

Actualmente, se presenta un creciente interés por la identificación de las

variedades de tilapia que se adaptan mejor a la salinidad del agua marina, por

lo que hasta el momento, hay muy pocos estudios acerca de tilapia roja

variedad Cubana y tilapia roja variedad Pargo-UNAM en cultivos controlados.

Sin embargo, los resultados halagadores obtenidos en otras variedades de

tilapia roja híbrida en ambiente marino, con respecto a su crecimiento,

supervivencia y producción. Así también, la búsqueda de una alternativa de

producción comercial, que pueda provocar un repunte económico en la

geografía costera, motivan el desarrollo de la presente investigación, en donde

se describe el crecimiento y supervivencia de tilapia roja híbrida (Oreochromis

spp.) en el proceso de adaptación a agua marina y en cultivo de engorda en

jaulas flotantes con diferentes densidades de siembra y en cultivos 100%

machos y mixtos (machos y hembras).

II. PROBLEMA

La acuacultura al nivel mundial mantiene un crecimiento anual promedio de

6.9%, desafortunadamente en México el crecimiento de la producción de tilapia

no ha sido tan exitosa como la demanda. En el 2008 sólo se produjeron

alrededor de 74,874 ton (CONAPESCA, 2010), siendo México es el segundo

mayor importador al nivel mundial, en el 2009 importó 36,200 ton, 56% más de

lo importado en el 2005 con 16,300 ton (Josupeit, 2010), esto nos indica que el

país necesita producir 48% más toneladas, para cubrir el mercado nacional.

Actualmente, el reto no es exclusivamente producir tilapia en México, sino que

se debe ser altamente competitivo para enfrentar a los líderes mundiales en la

producción de tilapia, a quienes encabeza China. Una posible alternativa es la

diversificación de las actividades acuícolas aplicadas en la producción de

nuevas variedades de híbridos de tilapia, que puede traer como consecuencia

mayor estabilidad de las unidades de producción, así como mayores ingresos y

como mayor rentabilidad, mismo que debe evaluarse en términos técnicos y

económicos.

Por estas razones, es adecuado evaluar el cultivo de la tilapia roja Oreochromis

sp. en condiciones intensivas en jaulas flotantes en ambiente marino y a su vez

presentar una área de oportunidad para intensificar el desarrollo económico

costero en México.

III. HIPÓTESIS

El crecimiento y supervivencia de dos variedades de híbridos de tilapia roja

cultivadas en jaulas flotantes en ambiente marino: la tilapia roja variedad

Cubana (O. mossambicus X O. aureus) y tilapia roja variedad Pargo-UNAM

(tilapia roja variedad Florida (O. urolepis hornorum X O. mossambicus) X O.

niloticus X tilapia Rocky Mountain (O. niloticus X O. aureus)), no presentan

diferencia en la adaptación al agua de mar, ni en cultivos con diferentes

densidades (80 y 170 org/m³).

IV. OBJETIVO PRINCIPAL

Determinar el crecimiento y supervivencia de dos variedades de tilapia roja

híbrida: tilapia roja variedad Cubana (O. mossambicus X O. aureus) y tilapia

roja variedad Pargo UNAM (tilapia roja variedad Florida (O. urolepis hornorum

X O. mossambicus) X O. niloticus X tilapia Rocky Mountain (O. niloticus X O.

aureus)) cultivadas en jaulas flotantes en ambiente marino.

4.1 Objetivos específicos

Determinar la supervivencia de la tilapia roja variedad Cubana y de la

tilapia roja variedad Pargo-UNAM en el proceso de adaptación a

condiciones marinas.

Determinar el crecimiento y supervivencia de la tilapia roja variedad

Cubana y la tilapia roja variedad Pargo-UNAM en etapa de engorda,

cultivadas en jaulas flotantes en ambiente marino, en cultivos con

diferentes densidades y cultivos 100% machos y mixtos (machos y

hembras).

V. REVISIÓN DE LITERATURA

5.1 Historia del cultivo de tilapia en agua salada

Los primeros registros del género tilapia, datan de más de 4000 años en

Egipto, el cultivo de esta especie inicio en 1924 en África, distribuyéndose

ampliamente por todo el mundo desde 1939. Se ha introducido en muchos

ambientes tropicales y subtropicales del mundo, como Malasia, Indonesia,

India, Sudáfrica y en América (Pullin, 1982; FAO, 2006).

Aunque el cultivo de tilapia se limitó inicialmente al agua dulce, los primeros

estudios sobre la posibilidad de cultivar la tilapia en agua salada se realizaron

en Hawaii en 1950, en un intento de garantizar la disponibilidad y la estabilidad

de precios de la carnada viva que era necesaria para la pesca de túnidos. Con

esta finalidad, se mantuvieron cultivos intensivos de O. mossambicus en

tanques con agua salobre, con una salinidad de entre 10-15‰. Los resultados

de supervivencia y de crecimiento fueron superiores a los logrados en agua

dulce. En las mismas fechas se realizaron estudios en Israel con O. aureus, T.

zillii y híbrido O. aureus X O. niloticus estas especies mostraron capacidad de

adaptación a diferentes salinidades. A partir de la década de los años 80, el

estudio de especies de híbridos en ambiente marino se intensificó, donde los

mejores resultados se obtuvieron con la tilapia roja variedad Taiwán (O.

mossambicus X O. niloticus) y la tilapia roja variedad Florida (O. urolepis

hornorum X O. mossambicus) (Watanabe, 1987).

5.2 Características biológicas de la especie

A diferencia de los peces marinos, la tilapia se reproduce libremente en

cautiverio y la larva acepta alimento artificial desde etapas muy tempranas

hasta etapa adulta y se alimentan en base de la cadena alimentaria de

herbívoros y detritívoros (Watanabe, 1987).

Un inconveniente para el cultivo de esta especie, es la alta precocidad para la

reproducción, ya que al madurar sexualmente en tallas muy tempranas, afecta

su crecimiento y ocasiona también una superpoblación. Para controlar esta

situación se realiza una inducción fenotípica de sexo, mezclando la hormona

androgénica 17 alfa-metiltestosterona en el alimento, desde que se inicia su

alimentación exógenamente o bien con una inmersión en solución de la misma

hormona (Beardmore, 2001; López, 2007). Esto se puede lograr dado que la

tilapia es una especie gonocórica indiferenciada, debido a que su tejido

gonadal en la larva en el momento de eclosionar no está diferenciado.

5.3 Taxonomía

El género Oreochromis, pertenece a la familia de los Cichlidae y está

representada por cerca de 70 especie. Derivados de estudios taxonómicos

realizados por Trewavas, 1982 fundamentados en los hábitos reproductivos,

desarrollo biológico, alimentación y características estructurales, decidió

separar las tilapias en tres géneros, Tilapia spp., Oreochromis spp. y

Sarotherodon spp. El género Oreochromis se clasifica en cinco especies de

mayor producción, O. rendalli (Curvier, Boulenger), O. aurea (Steindachner), O.

niloticus (Linnaeus), O. mossambicus (Peters), O. urolepis hornorum (Sipe).

Taxonómicamente la tilapia se clasifica en el Phylum: Chordata, Subphylum:

Vetebrata, Superclase: Gnastotomata, Serie: Pisces, Clase: Actinopterigii,

Orden: Perciformes, Suborden: Percoidei, Familia: Cichlidae, Género:

Oreochromis spp. (Morales, 2003; Pullin, 1982; Webster, 2006).

La tilapia desempeña una mejor adaptabilidad a diferentes ambientes de

producción, por su capacidad para sobrevivir a aguas con bajos contenido de

oxígeno, tolerancia al manejo y a enfermedades (Webster, 2006). Las especies

O. niloticus y O. aurea son las más adecuadas para el cultivo en agua dulce ya

que han mostrado un buen crecimiento con una mayor respuesta productiva en

niveles de salinidad menores de 15 ‰ y un excelente aprovechamiento del

alimento natural y balanceado. Estas últimas especies mantienen una mejor

tasa de crecimiento que O. mossambicus con una mayor capacidad para

sobrevivir a altos niveles de salinidad, pero su precoz madurez provoca una

tendencia a baja tasa de crecimiento (Castro, 2004; Romana-Eguia 1999;

Mostafa, 2005; Webster, 2006, Villegas, 1990).

Así también, la coloración roja presente en algunas especies e híbridos de

tilapia tiene importancia comercial debido a su preferencia por los

consumidores, con respecto de las de color gris, sin embargo esta última tiene

mejor crecimiento en agua dulce que la primera (Muñoz, 2004). Estudios por

Aquacop et al (1989), García-Ulloa et al (2001) y Suresh et al (1992) indicaron

que la tilapia roja es adecuada para cultivos en agua marina, ya que tiene una

fácil adaptación a diferentes niveles de salinidad y la mayoría son

descendientes de cruzas con O. mossambicus, por ser altamente tolerante a

condiciones de alta salinidad. Estudios por Moreau et al (1999) y Muñoz et al

(2004) con O. niloticus, O. mossambicus, O. hornorum, O. aurea y sus híbridos,

encontraron que los híbridos obtuvieron mejores crecimientos que sus

progenitores bajo el mismo sistema de cultivo con agua de mar. Al igual,

estudios por Mostafa y Mair (2005) y Mateo et al (2004), encontraron que los O.

niloticus, O. mossambicus y sus híbridos presentaron heterosis positiva o vigor

híbrido, por lo que los hibrido (Oreochromis spp.) presentan mejores tasas de

crecimiento, mayor conversión alimenticia, mejor resistencia a parámetros

ambientales extremos, mayor crecimiento en salinidades elevadas que los

progenitores.

El híbrido de tilapia roja (Oreochromis spp.) proviene generalmente de cruzas

de O. mossambicus ó O. urolepis hornorum X O. niloticus ó O. aureus

(Webster, 2006). Uno de los híbridos más estudiado es la cruza de O. urolepis

hornorum X O. mossambicus conocido como tilapia roja variedad Florida que

es altamente adaptable al agua de mar (García-Ulloa, 2001; Mena, 2003;

Morales, 2003; Watanabe, 1985; Watanabe, 1990).

El Centro de Investigaciones Pesqueras (CIP) de La Habana, Cuba, desarrollo

un híbrido de tilapia roja proveniente de la cruza de dos especies: (O.

mossambicus X O. aureus) denominado variedad Cubana (Dra. IIiana Fraga

Castro, 2010, comunicación personal).

En México, el Centro de Enseñanza Investigación y Extensión en Ganadería

Tropical de la Universidad Nacional Autónoma de México CEIEGT-FMVZ-

UNAM en Veracruz, desarrollo un híbrido de tilapia roja proviene de la cruza de

cuatro especies: tilapia roja híbrida variedad Florida (O. urolepis hornorum X O.

mossambicus) X O. niloticus (mutante rojo) X tilapia híbrida Rocky Mountain (O.

niloticus X O. aureus) denominado variedad Pargo-UNAM. Con respecto a esté

último híbrido, estudios realizados por Muñoz et al 2009, encontraron que no

hay diferencia significativa en el crecimiento de la tilapia roja híbrida variedad

Pargo-UNAM, con O. niloticus (mutante rojo), pero si se presentó diferencia

significativa con mejores resultados que O. mossambicus (mutante rojo). Al

igual, estudios realizados por Escobar et al 2009, encontraron que la tilapia roja

hibrida variedad Pargo-UNAM presentó mejor ganancia de peso diaria que la

variedad Florida cultivada en sistema de recirculación con agua marina.

5.4 Dispersión geográfica del género Oreochromis

La distribución mundial del género Oreochromis, se localiza en la zona tropical

entre los trópicos de Cáncer (latitud 23.5°N) y Capricornio (latitud 23.5°S), en

América desde México hasta Argentina, Cuba y la mayor parte de África,

Madagascar, Ceylán e India (Morales, 2003; Pullin, 1982), esta zona

representa el 40% de la superficie de la tierra (Val, 2006). Sin embargo, las

especies más cultivadas a nivel mundial son O. niloticus, O. aureus y los

híbridos de combinaciones de éstos con O. mossambicus, esté último, por su

madurez precoz reproductiva fue la especie que primero se distribuyó

mundialmente, sin embargo, el cultivo de esta especie fue superada por O.

niloticus, ya que tiene mayor crecimiento en agua dulce y mayor control

reproductivo (Webster, 2006). En Latinoamérica, la tilapia es introducida 1940

en Panamá y Costa Rica desde Asia. De 1950 a 1970, se distribuyó

prácticamente en todos los países de América Latina (O. mossambicus, O. zilli,

O. rendalli, O. niloticus y tilapia roja híbrida). En los años 1990, Ecuador se ve

afectado por el virus Síndrome de Taura (TSV) y varias de sus granjas

camaroneras cambian al cultivo a tilapia roja híbrida (O. niloticus X O.

mossambicus) y O. niloticus con buenos resultados, lo que impactó

significativamente al mercado mundial a partir de 1993 con filetes frescos

(Zimmermann, 2004).

En México, los principales cultivos se llevan a cabo en agua dulce con las

especies O. aureus predominado en el sur del país y O. niloticus en el norte del

país, la tilapia es conocida comúnmente con el nombre de “Mojarra”

(Fitzsimmons, 2000).

5.5 Producción mundial

La captura pesquera no ha obtenido un crecimiento considerable en los últimos

años, como se menciono anteriormente, lo que a ha permitido que el sector de

la acuacultura se consolide con un crecimiento anual promedio de 6.9% en el

2006. La producción de tilapia a nivel mundial ha aumentado de manera

importante, produciendo 800,000 ton en 1990 y hasta 2, 600,000 ton en el

2007. Aunque la tilapia se cultiva en muchos países, la mayor producción se

concentra básicamente en China con el 75%, seguido de Egipto, Tailandia,

Filipinas, Taiwán, Singapur, Indonesia, Brasil, Panamá, Ecuador, Costa Rica y

Honduras, de los cuales, los principales países exportadores encontramos a

China, Taiwán, Tailandia y Honduras. Estados Unidos con el 90% de la

importación mundial, seguido de México, Arabia Saudita, Canadá, Kuwait,

Rusia (Josupeit, 2007; Josupeit, 2009; Josupeit, 2010).

5.6 Producción en México

En 1964, el Instituto Nacional de Pesca, introdujo al país, la tilapia O. aureus y

O. mossambicus. En 1978, se introduce O. niloticus, O. urolepis hornorum y

Zillii, procedente de Auburn, Alabama, EUA. En 1981, se introdujo dos

variedades híbridas de tilapia roja proveniente de Taiwán (tilapia roja variedad

Taiwán (O. mossambicus X O. niloticus)) y de Estados Unidos (tilapia roja

variedad Florida (O. urolepis hornorum X O. mossambicus)). Los alevines de

las dos variedades fueron criados hasta obtener 60 g en agua dulce y después

se aclimataron a 35 ‰ de salinidad en Arizona, EUA y posteriormente se

cultivaron en Puerto Peñasco, Sonora en sistema de raceway a una

concentración de 40 ‰ de salinidad. La tilapia roja variedad Taiwán creció poco

y en breve tiempo murió, la tilapia roja variedad Florida logró 600 g en 10

meses (Fitzsimmons, 2000; Morales, 2003).

A pesar de estos primeros intentos de cultivos en agua salada, el cultivo de

tilapia en México predomina O. aureus y O. niloticus en agua dulce y es la

especie más cultivado en México, teniendo un crecimiento promedio del 5% del

2003-2008 (INEGI, 2009), En el 2008, la producción de tilapia alcanzó 74,874

toneladas, siendo 71,018 toneladas de cultivo dulceacuícola y el resto de la

captura pesquera. El cultivo de tilapia se distribuye por todo el país, con

excepción de los estados de Baja California Norte y Sur. Los estados que

cuentan con la mayor participación del cultivo encontramos a Michoacán y

Veracruz con el 36% de la producción nacional, seguido de Sinaloa, Nayarit,

Tamaulipas y Tabasco (CONAPESCA, 2010).

5.7 Mecanismos homeostáticos

La factibilidad del cultivo de la tilapia roja a diferentes salinidades se debe en

gran medida a una serie de características a nivel fisiológico. En relación a este

concepto, el termino homeostasis, introducido por Cannon (1929), como un

mecanismo de adaptación o compensación de los organismos mediante

cambios fisiológicos para estabilizar su medio interno. La tilapia de acuerdo a

su fisiología interna, desde las células hasta los órganos, funcionan dentro de

un ambiente líquido, con concentraciones relativas de agua y de soluto, que

deben de mantenerse dentro de límites estrechos. El desecho metabólico

primario producido por la degradación de proteínas y ácidos nucleídos es el

amoniaco y es tóxico a los seres vivos. La tilapia regula estos desechos por

medio de procesos homeostáticos, básicamente por medio de la

osmorregulación (equilibrio del agua y concentraciones de solutos) y la

excreción (desecho de productos nitrogenados) (Cambell, 2005).

5.7.1 Osmorregulación

La capacidad de los peces de regular la composición química de sus líquidos

corporales mediante el equilibrio entre captación y pérdida de agua y solutos

con el medio ambiente se le denomina osmorregulación. En gran medida, este

movimiento es controlado y por medio del proceso ósmosis (movimiento a

través de una membrana con permeabilidad selectiva). Cuando la osmoralidad

de las soluciones es diferente, la de mayor concentración es hiperosmótica y al

diluida hipoosmótica. En la ósmosis, las soluciones fluyen de menor a mayor

concentración. Los peces osmoconformistas, son lo que no ejercen un ajuste

activo de su osmolaridad, dando que la concentración del líquido interno y del

externo es el mismo (isoosmótico). Por lo contario, los peces osmorreguladores

debe controlar su osmolaridad interna porque sus líquidos corporales no son

isosmóticos con el ambiente externo. La mayoría de los peces,

osmoconformista o osmorreguladores, no son capaces de tolerar cambios

importantes en la osmolaridad externa y se dice que son estenohalino, por lo

contrario los peces eurihalino pueden sobrevivir a grandes fluctuaciones de la

osmolaridad externa como la tilapia desde 0 a 70‰ (Cambell, 2005). Aunque el

grado de tolerancia depende del tiempo de exposición, edad, temperatura

ambiental (Wilson 1989).

5.7.1.1 Osmorregulación en peces marinos

El agua del océano es un ambiente intensamente deshidratante, porque tiene

mayor presión osmótica en promedio 1000 mOsm que los líquidos corporales

internos del pez de 300 a 500 mOsm, por lo que se consideran reguladores

hipoosmóticos y los solutos que predominan en el plasma sanguíneo son iones

inorgánicos cloro (CL-) y sodio (Na+). Los peces tienden a perder agua de sus

organismos por osmosis, por lo que equilibran la pérdida de agua bebiendo

grandes cantidades de agua del mar por la boca y excretan sales a través de

las células branquiales que son la principal vía de excreción, por ósmosis se

elimina el exceso de iones de cloro (CL-) y sodio (Na+) hacia el exterior y por

ósmosis en el intestino y los riñones se deshace el exceso de calcio, magnesio

y sulfato en forma iónica a través de las glándulas rectales y la orina (Cambell,

2005, Hill, 1980; 2006, Wilson, 1989). Aunque también algunos desechos

nitrogenados son excretados en orina, la mayor parte son eliminados como

amoniaco a través de las branquias, reduciendo así la cantidad de agua que se

perdería por la orina (Wilson, 1989).

5.7.1.2 Osmorregulación en peces de agua dulce

El agua dulce es un ambiente hidratante, porque tiene menor presión osmótica

en promedio 100 mOsm que los líquidos corporales internos del pez de 250 a

350 mOsm, por lo que se consideran reguladores hiperosmóticos y los solutos

que predominan en el plasma sanguíneo son igual que los peces marinos iones

inorgánicos cloro (CL-) y sodio (Na+), los peces constantemente acumulan

agua por ósmosis y pierden sales por difusión. Los peces mantienen su

equilibrio hídrico excretando grandes cantidades de orina muy diluida. Las

sales que se pierde por difusión en la orina vuelven a obtenerse por los

alimento y por captación a través de las branquias, las células de branquiales

transporta activamente cloro (CL-) y sodio (Na+) al interior (Cambell, 2005; Hill,

1980; Hill, 2006).

5.7.1.3 Peces de agua dulce cultivados en agua salada

El cultivo de la tilapia a estado limitada principalmente en agua dulce y en agua

en baja salinidad, sin embargo algunas especies exhiben un alto un grado de

tolerancia a la alta salinidad, lo que ha sugerido que podrían ser cultivadas en

aguas salobres, marinas o altas salinidades (Webster, 2006). Los peces

eurihalinos, como la tilapia que se desarrolla en aguas con diferentes

concentraciones de salinidad presentan cambios notables y rápidos en el

mecanismo osmorregulador. Cuando se encuentran en el océano

osmorregulan igual que los peces marinos, absorbiendo agua de mar y

excretando el exceso de sal por sus branquias (Cambell, 2005; Hill, 1980;

Wilson, 1989). Estos peces, emplean más energía en la regulación osmótica-

iónica a medida que aumentan los gradientes entre los líquidos corporales y el

medio ambiente (Hill, 1980; 2006).

5.7.2 Aclimatación

Los cambios adaptativos que ocurren en condiciones controladas de laboratorio

se le conoce como aclimatación, en las que sólo cambian uno o dos factores

ambientales (Wilson 1989). En cuanto más rápidamente entre el agua por

ósmosis y más rápidamente se pierdan las sales por difusión en el pez, más

energía metabólica habrá de invertir el pez para contrarrestar estas tendencias

y así mantener la homeostasis (Cambell, 2005; Hill, 1980; Hill, 2006). Se estima

que el pez utiliza hasta un 20% de la energía del metabolismo corporal

después de 4 días de adaptación en agua marina (Morgan, 1997). Por otro

lado, se ha encontrado también que con una lenta aclimatación la tilapia es

capaz de sobrevivir por periodos cortos en ambientes con concentraciones

letales, por ejemplo de un pH 4 y una concentración de 3.4 ppm de amonio

(NH4) (El-Sayed, 2006).

5.7.3 Aclimatación de tilapia a agua salada

El incremento gradual de la salinidad es el método más utilizado para aclimatar

a un gran número de especies al agua salada, aunque dependiendo de la

especie y de la línea genética, es necesario considerar tanto la talla o el peso

de los alevines, así como el protocolo que se utiliza durante el proceso de

aclimatación, ya que influye directamente en la supervivencia de los

organismos en la aclimatación. Estudios de Villegas (1990), encontró que la

tolerancia a la salinidad aumenta con el tamaño del pez. Al mismo tiempo, se

han utilizado diferentes métodos de aclimatación en diferentes especies de

tilapia; por ejemplo: Estudios de Al-Amoudi (1987), encontró que O. aureus, O.

mossambicus, O. spilurus, O. niloticus y el híbrido O. aureus X O. niloticus,

tolera la transferencia directa a 18‰ de salinidad, en cambio, con aclimatación

gradual a agua salada, produjo mejores tasas de supervivencia, logrando

tolerancia hasta 36-120‰ de salinidad en algunas especies, concluyó que la

especie O. aureus, O. mossambicus y O. spilurus requiere un tiempo de

aclimatación más corto de 4 días, a diferencia de O. niloticus y el híbrido O.

aureus X O. niloticus que requieren 8 días. Estos resultados coinciden con

estudios de Perschbacher, (1992), que encontró que para una aclimatación a

agua marina O. aureus necesita 4 días y O. niloticus necesita 8 días. Por otro

lado, Balarin y Haller (1982), encontraron que O. aureus soporta una

transferencia directa máxima de 27 ‰ y una transferencia gradual hasta 54 ‰.

En estudios de Yang et al, (2001), utilizaron una aclimatación de 5 ‰ cada 48

horas (14 días) en el cultivo de tilapia roja variedad Tailandia (Oreochromis

spp). Sin embargo, en estudios con O. spilurus, tilapia roja variedad Florida (O.

urolepis hornorum X O. mossambicus) y tilapia roja (O. niloticus x O. aureus)

realizados por Arboleda, (2006), Balcázar, (2004), Cabrera-B, et al (2001),

Hopking, et al (1989), Mena, et al (2002), Romana-Eguia M., (1999) y

Watanabe, et al (1988), concluyeron que lo más adecuado es un incremento

gradual de 5 ‰ cada 24 horas (7 días). Con todos estos trabajos se demuestra

que al incrementar gradualmente la salinidad, el pez desarrolla mecanismos

fisiológicos de adaptación que le permiten sobrevivir y crecer. Aunque la

transferencia directa al agua marina es posible, es necesario considerar el

posible impacto económico de este procedimiento, ya que el porcentaje de

supervivencia de los organismos puede disminuir notablemente.

5.7.4 Crecimiento de tilapia en agua salada

Las tilapias tal y como ya se mencionó, son peces eurihalinos, es decir, que

pueden vivir y desarrollarse en una amplia gama de niveles de salinidad, pero

los límites de tolerancia de una especie a otra varían considerablemente

(Mena, 2002; Mostafa, 2005), ya que cada línea genética puede presentar

diferente respuesta este cambio, debido a diferentes grados de interacción

entre genotipo y medio ambiente. Estudios realizado por Watanabe et al (1985)

encontraron que la especie O. aurea y O. niloticus tolera hasta 15 ‰ con una

supervivencia del 80-100% y con una mortalidad total por encima de 22 ‰, por

el contrario se ha encontrando que el híbrido de tilapia roja, tolera con buen

crecimiento salinidades de 32-40 ‰. También, estudios por Watanabe et al

(1990), con tilapia roja cultivada en jaulas en agua marina, obtuvieron una

ganancia diaria de peso 1.94 g/d y la supervivencia 97.9%, obteniendo mejores

resultados con densidades de 100 org/m³ contra densidades de 200 y 300

org/m³. Por otro lado, estudios de Mena et al (2002) en estanques de concreto

durante 189 días, encontraron que la tilapia roja con peso inicial de 73.3 g no

presentó diferencia significativa en el crecimiento entre una concentración de

0‰ y 15 ‰, con una ganancia diaria de peso de 2.69 a 2.24 g/d, pero al

ensayar con las concentraciones entre 25 ‰ y 35 ‰ obtuvieron menores

resultados con una ganancia diaria de peso de 1.60 a 1.49 g/día,

5.8 Cultivo en jaulas flotantes

El cultivo de peces en jaulas se considera como un sistema de cultivo de

producción intensivo, que permite criar gran cantidad de peces en un espacio

limitado desde 100 a 500 org/m³ (Hussain, 2004, Rojas, 2007). El cultivo en

jaulas esta influenciado principalmente, en orden de importancia, por la calidad

de agua, nivel nutricional del alimento, tipo de alimentación y genética de la

especie (Webster, 2006). En la fase de engorda se utilizan una serie de

técnicas de control, en las cuales, se debe monitorear la calidad de agua, valor

nutricional del alimento, cantidad de alimento suministrado, asimilación

nutricional del pez, ya que estos últimos impactan en la rentabilidad al

momento de la cosecha, por lo que se utilizan como indicadores de

productividad ciertas variables de crecimiento, como la estimación del peso

promedio de la población (W), la ganancia diario de peso (GDP), el factor de

conversión alimenticia (FCA), la tasa específica de crecimiento (TEC), el grado

de robustez (K) y la supervivencia (S). Los elevados rendimientos encontrados

en el cultivo en jaulas flotantes en el crecimiento también están condicionados

al intercambio de agua entre la jaula y el entorno que lo rodea. La rápida

expansión del cultivo de peces en jaula fue el resultado de la introducción y

diseminación de conocimientos de las técnicas básicas de cultivo y la

experiencia de otros países, sin embargo, el modelo decisivo que dio lugar al

éxito de cultivo fue el desarrollo de dietas completas nutricionales. El cultivo en

jaula tiene numerosas ventajas tecnológicas y económicas, dentro de las

ventajas de este tipo de cultivo encontramos, que se aprovechan medios

acuáticos existentes como ríos, lagos, lagunas, presas y bahías, así también se

puede obtener una mayor producción por unidad de volumen (kg/m3), requiere

un menor tiempo en construcción de instalaciones y con costos de producción

menores, ya que no es necesario un mecanismo de aireación y fertilización, ya

que se aprovecha la productividad primaria del medio. El tamaño y materiales

que se emplean en la construcción de las jaulas es de acuerdo a los requisitos

de la especie, lo recursos financieros, la durabilidad de los materiales y en la

simplicidad en el manejo de la estructuras (Ono, 2007; Rojas, 2007). Las

unidades de producción deben ser de bajo costo, peso liviano y durabilidad

adecuada para resistir la fatiga mecánica por la acción de la corriente marina,

la corrosión, las cosechas y los depredadores. Las jaulas pueden tener una

variedad de formas geométricas (cilíndricas, cúbicas, rectangulares,

hexagonales u octagonales), encontrándose que el diseño cúbico y rectangular

promueven mejor el intercambio de agua. El tamaño de las jaulas se clasifican

en volumen alto (>18m³) y bajo (<6m³). Entre mayor sea su volumen menor

será la tasa de intercambio de agua y por lo tanto menor producción de kg/m3,

en cambio en jaulas de bajo volumen tienen un mejor rendimiento y se pueden

manejar altas densidades de peces (hasta 250 kg/m³), por lo tanto, el tamaño

más adecuado sin un equipo especial es de 22.5 m³ (3 X 3 X 2.5 m) (Pullin,

1982; Ono, 2007). Se debe considerar la profundidad del agua en los sitios de

cultivo en jaulas y se ha demostrado que influye en el crecimiento de los peces,

por ejemplo: las jaulas en profundidades 0.5 a 1.5 m los peces tienen menor

crecimiento que jaulas con una profundidad de cerca de 6 m, por lo que se

recomienda que al menos se tenga 0.75 m de profundidad en los sitios donde

se van a instalar las jaulas (Pullin, 1982). La zona de colocación de la jaula es

decisiva para el éxito del cultivo y es fundamental realizar una exhaustiva

evaluación de calidad de agua y profundidad antes de la instalación de las

jaulas. También se debe considerar la luz de malla en la red de la jaula y está

en relación al tamaño del pez a cultivar, ya que no se debe permitir escapar a

los peces y al igual no se debe utilizar luces de malla muy pequeños, ya que

después de un tiempo sumergidas las redes en el agua, se adhieren

organismos que crecen en la malla, reduciendo el intercambio de agua y por lo

consiguiente disminuye la calidad óptima del agua (Ono, 2007). Estudios

realizados por Dan et al (2000), obtuvieron mejores resultados en cultivo en

jaulas que en estanque con O. niloticus y esto se puede atribuir a que el cultivo

en jaulas esta beneficiado por el alimento natural y una mayor circulación de

agua, esto coincide también con estudios de Yang et al (2001) con O. niloticus

en agua dulce, que obtuvo mejores resultados en cultivo en jaulas con una

aireación (5 h por la noche) que en jaulas sin aireación (GDP de 3.57 g/d, FCA

de 1.3 contra GDP de 2.75 g/d, FCA de 1.64 respectivamente).

5.9 Condiciones medioambientales óptimas

Como ya se dijo anteriormente, el crecimiento de los peces depende en gran

parte de la calidad de agua. En las jaulas los factores negativos de calidad de

agua que más afectan a los peces, son el oxígeno en bajo niveles y alto niveles

de desechos metabólicos (Webster, 2006). Cuando el pez es afectado por la

calidad del agua, desarrolla mecanismos fisiológicos para adaptarse como son:

reduce su capacidad respiratoria y metabólica, lo cual, provoca un lento

crecimiento (Castro, 2004). De acuerdo al sistema de cultivo en jaula adoptado,

se debe considerar que no es posible controlar las condiciones físico-químicas

del agua, por lo que es necesaria la colocación del cultivo en la zona que

ofrezca de manera permanente la calidad del agua dentro de los límites de

tolerancia de la especie y una limpieza constante en la malla de la jaula.

5.10 Densidad de cultivo

La densidad afecta directamente el desarrollo de los organismos en los

sistemas cultivo controlado, ya que entre mayor sean los organismos o la

biomasa por metro cúbico, es menor el tiempo que perdura las condiciones

físico-químicas del agua dentro de los límites de tolerancia de la especie.

Estudios realizados por Cruz et al (1991) en jaulas de agua marina con O.

spilurus, utilizando densidades de 200, 250 y 300 org/m³ encontraron mejores

resultados de crecimiento con 200 org/m3. Estudios realizados con tilapia roja

hibrida y tilapia roja Sterling (O. niloticus) en Colombia (1995), obtuvieron que

la densidad óptima en jaulas flotantes en agua dulce es de 150 org/m³ o 50

kg/m3 y en estanque de 20 org/m³ o 6-8 Kg/m3 (Rakocy, 2006). Estudios más

recientes por Wedler et al (2006), en cultivo en jaulas en agua marina con

tilapia roja (Oreochromis spp.), obtuvieron mejores resultados con 80 org/m³ y

una densidad máxima de 200 org/m³ o 75 kg/m3. Por otro lado, Balcázar et al

(2004) no encontraron diferencia significativa en cultivo en jaulas en agua con

tilapia roja (O. mossambicus x O. niloticus) marina con densidades de 100, 200

y 300 org/m³.

5.11 Alimentación

La tilapia acepta fácilmente alimento balanceado, residuos orgánicos y

agrícolas (Watanabe, 1987). El porcentaje de proteína en el alimento, es un

factor importante para cada etapa de vida de la tilapia, se han demostrado que

los niveles óptimos de 40%, 30% y 24% de valor proteico respectivamente,

para las fases de iniciación, pre-engorde y engorde son los más adecuados

(Salazar, 2005; Webster, 2006). Otro factor importante para una alimentación,

es el número de raciones a proporcionar durante el día, cuando se tienen

cantidades ilimitadas de alimento, los peces lo consumen con mayor rapidez

que cuando tienen una cantidad limitada, esto puede significar una digestión

menos completa, ya que el alimento pasa muy rápido por el intestino y para

una buena digestión es conveniente proporcionar de 2 a 5 veces al día

(Morales, 2003). Estudios de Mena et al (2002), manejaron la alimentación con

35% de proteína a razón de 6% de la biomasa para organismos 1-76 g y para

organismos más grandes a razón de 2% con 30% de proteína. Por otro lado,

Castro et al (2004), Hussain, 2004, Ponce et al (2004) y Valbuena et al (2006),

manejaron a razón de 3% de la biomasa durante todo el cultivo, distribuido en

dos raciones al día. Cada dos semanas se recomienda un muestreo de peces

para monitorear el crecimiento y comprobar que el crecimiento se ajustar la

tasa de alimentación (Hussain, 2004). En cultivo en jaula, es recomendable un

monitoreo estricto en la alimentación, porque se presenta pérdida de alimento

por corrientes pasivas que inducen que el alimento salga de la jaula y al igual,

un control estricto en la distribución de raciones durante el día, buscando evitar

que el alimento permanezca más de 1.5 minutos sin ser consumido (Nicovita,

2003).

5.12 Estrés y enfermedades

El estrés en los peces, sea definido como la alteración del equilibrio interno

(homeostasis) y es el primero paso para la aparición de enfermedades. Por lo

cual, el nivel de estrés y la flexibilidad de la homeostasis, es importante para la

supervivencia y el crecimiento. El estrés puede ser causado por la calidad

nutricional, sanidad en los peces, cambios físicos-químicos del agua y en

cultivos en altas densidades lo que genera el “estrés social” por la interacciones

social y jerarquías, generalmente son bacterias como Streptococcus iniae,

Aeromonas hydrophila, Straphylococcus epidermidis, Mycobacterium marinum

y parásitos protozoarios como Ichthyobodo Cryptobia banchialis, Amyloodinium

ocellatum (El-Sayed, 2006). Frecuentemente, la aparición de enfermedades

puede evitarse manteniendo una alta calidad del ambiente y reduciendo el

estrés por manejo. La intensidad de estos factores puede disminuir en un

sistema de cultivo en jaula, ya que se realiza un constante intercambio de

agua.

VI. MATERIALES Y MÉTODOS

Esté trabajo de investigación se desarrolló durante dos años consecutivos:

ensayo 2010 y ensayo 2011, para ambos ensayos se realizó lo descrito en el

experimento 1 y 2.

Experimento 1: Adaptación a agua marina.

Experimento 2: Etapa de engorda en jaulas flotantes en agua marina.

En el año 2010, se utilizaron dos especies diferentes con dos tratamientos y en

el año 2011, se utilizó una especie con tres tratamientos, que se describen a

continuación.

6.1 Experimento 1: Adaptación a agua marina

Los experimentos del proceso de aclimatación se realizaron en las siguientes

instalaciones: Para el año 2010, se utilizaron los servicios del Centro

Interdisciplinario de Investigación para el Desarrollo Integral Regional CIIDIR-

IPN Unidad Sinaloa, localizado en Guasave, Sinaloa, a 25°32'50.53" latitud

Norte y 108°28'54.98" longitud Oeste, donde el clima se clasifica como seco

muy cálido y cálido (BS(h´)), con temperaturas promedio anual de 22° a 26°C,

la precipitación pluvial anual de 400 a 600 mm. y las instalaciones de la

empresa SCPP y Ostrícola Faro de Pabellón S.C de R.L., localizada en el

campo pesquero las Aguamitas, Navolato, Sinaloa, a 24°33'49.9" latitud Norte y

107°47'31.68" longitud Oeste, donde el clima se clasifica como seco muy cálido

y cálido (BS(h´)), con temperaturas promedio anual de 22° a 26°C, la

precipitación pluvial anual de 400 a 600 mm. En el año 2011, se trabajó en las

instalaciones del centro de cuarentena del Centro de Ciencias de Sinaloa

localizado en Culiacán, Sinaloa, a 24°49'45.16" latitud Norte y 107°23'06.32"

longitud Oeste, donde el clima se clasifica como semi-seco muy cálido y cálido

(BS1(h´)), con temperaturas promedio anual de 24° a 26°C, la precipitación

pluvial anual de 600 a 800 mm (INEGI, 2009).

Organismos experimentales

En julio del año 2010, se adquirieron 3,000 alevines masculinizados con 17α-

metiltestosterona de tilapia roja variedad Cubana (Figura 1), con peso promedio

de 0.2 g del Centro de Investigaciones Pesqueras (CIP) de La Habana, Cuba y

900 alevines masculinizados de tilapia roja de variedad Pargo-UNAM (Figura

2), con peso promedio de 35.8 g aclimatados a 20‰, facilitados por la empresa

Biomisis S.A. de C.V de Mazatlán, Sinaloa. En junio del año 2011, se

adquirieron del Centro de Investigaciones Pesqueras (CIP) de La Habana,

Cuba, 9,000 alevines de tilapia roja variedad Cubana (Figura 1), siendo 2,200

alevines masculinizados y 6,800 sin masculinizar, ambos con peso promedio

de 1.02 g.

Figura 1: Ejemplar de tilapia roja variedad Cubana.

Figura 2: Ejemplar de tilapia roja variedad Pargo-UNAM.

Protocolo del proceso de adaptación

El proceso de adaptación a agua marina, se realizó con una aclimatación

paulatina durante 10 horas de la siguiente manera: el primer día se incrementó

de 0 ‰ a 10 ‰, el segundo día de 10 ‰ a 20 ‰, el tercer día de 20 ‰ a 25 ‰,

el cuarto día de 25 ‰ a 30‰ y el quinto día de 30 ‰ a 35 ‰, al término de

cada día, se realizó un recambio del 90% de agua con el último grado salinidad

y se mantuvieron en la misma concentración durante 14 horas por la noche.

Este mismo proceso de adaptación se reprodujo durante los años 2010 y 2011

para cada una de las especies ensayadas.

El volumen de agua marina a utilizar para el incremento de la concentración de

salinidad con respecto al volumen, se determinó utilizando la ecuación de

disolución (Whitten, 2008):

V1 = V2 X M2 M1

Donde:

V1: Volumen de agua marina a añadir (L)

V2: Volumen de agua del contenedor a preparar (L)

M1: Diferencia entre la salinidad del agua marina y la salinidad del agua del

contenedor (‰)

M2: Diferencia entre la salinidad a lograr del agua del contenedor y la salinidad

del agua del contenedor (‰).

Medición de variables físico-químicas

Durante cada uno de los procesos de aclimatación. Se realizaron tres lecturas

diarias de temperatura (°C), oxígeno disuelto (mg/L), salinidad y pH en las tinas

de aclimatación y en pre-engorda (9:00, 12:00 y 18:00). Se utilizó un analizador

de agua multivariable YSI® modelo Dissolved Oxigen 55 para la temperatura y

oxígeno disuelto, un refractómetro marca BioMarine Aguafauna® modelo

ABMTC para la salinidad (‰) y un potenciómetro marca Hanna Instruments®

para el pH. También se midieron los niveles de NH4 utilizando tiras reactivas

marca LaMotte® QAC QR TEST STRIPS CODE 2951.

6.1.1 Adaptación variedad Cubana año 2010

Etapa de pre-engorda

Debido a que los 3,000 alevines de tilapia roja variedad Cubana (Figura 1),

presentaron un peso promedio (0.2 g) menor al previsto para llevar a cabo el

proceso de adaptación que es de 5.0 g, estos se mantuvieron en etapa de pre-

engorda en dos tanques circulares de geomembrana de 3 m de diámetro por

1.2 m de alto de 7000 L durante 30 días de manera aleatoria, bajo una

estructura de invernadero, a razón de 1,500 alevines por tanque, a una

densidad de 0.04 g/L en instalaciones del CIIDIR-IPN. Los tanques fueron

llenados con agua de pozo de 22 m de profundidad. Se mantuvo una aireación

continua y se hizo recambios diarios de agua del 20%, se eliminó las heces y

alimento sobrante mediante un sifoneo diario.

La estimación del peso promedio vivo (W) de la población, se realizó a través

de biometrías de los peces cada 7 días, efectuando muestreos aleatorios con

remplazo del 5% por cada tanque. El peso se estimó por medio de 3 pesadas

por muestreo utilizando una balanza de mesa marca Ohaus® modelo Scout

Pro. Los organismos fueron alimentados con alimento balanceado marca Silver

Cup®, la ración fue ajustada cada 7 días con respecto al peso promedio vivo

(W) a razón de 15 %. Para los organismos de 0-10 g se distribuyó la ración en

13 veces durante el día y se utilizó alimento tipo migaja fina con 52% de

proteína.

Experimento piloto del proceso de adaptación

Paralelamente a la etapa de pre-engorda, se realizó un experimento piloto de

aclimatación con una muestra de los alevines recibidos de la variedad Cubana,

de acuerdo al protocolo del proceso de adaptación mencionado durante 5 días

en el Laboratorio Húmedo del CIIDIR-IPN. Se tomo una muestra de manera

aleatoria de acuerdo a un diseño completamente al azar de 20 alevines (10

alevines por cada tanque) de variedad Cubana con un peso de 1.33 ± 0.03 g.

Los peces se colocaron en dos peceras (52 cm largo X 34.5 cm ancho X 30 cm

alto) con 30 L de agua de pozo de cada tanque, a una densidad de 0.87 g/L. Se

mantuvo aireación continua, se eliminaron las heces y alimento sobrante

mediante sifoneo diario. El agua marina se obtuvo en un contenedor contiguo a

las peceras. Se alimentó a razón de 15 % del peso vivo, distribuyéndose en 10

raciones durante el día.

Proceso de adaptación

Una vez que los alevines masculinizados de tilapia roja variedad Cubana

adquirieron el peso promedio de 4.99 ± 0.16 g, se colocaron a una densidad de

(2.14 g/L) en un tanque circular de geomembrana de 3 m de diámetro por 1.2 m

de alto de 7000 L y se siguió el proceso de adaptación de acuerdo al protocolo

mencionado. El agua marina se obtuvo de la playa Las Glorias, Guasave, Sin.,

mediante un camión tipo pipa.

6.1.2 Adaptación variedad Pargo-UNAM año 2010

Se utilizaron 900 alevines masculinizados de tilapia roja variedad Pargo-UNAM

(Figura 2), con un peso promedio de 35.84 ± 0.61 g a una densidad de 4.61

g/L. Se colocaron en un tanque circular de fibra de vidrio de 3 m de diámetro

por 1.2 m de alto con un volumen de 7000, al pie de playa perteneciente a la

SCPP y Ostrícola Faro de Pabellón S.C de R.L, y se siguió el proceso de

adaptación de acuerdo al protocolo. El agua marina se obtuvo de la bahía

Altata-ensenada del Pabellón y el agua dulce se obtuvo de 4 pozos rústicos de

2 m de profundidad construidos a 100 m de la orilla del mar, con una salinidad

entre 5-11 ‰, con un abasto de 305 L cada 3 horas.



Debido que los alevines de tilapia roja variedad Cubana, presentaron un peso

promedio (1.2 g) menor al previsto, se mantuvieron durante 15 días en la etapa

de pre-engorda, se utilizaron 12,000 alevines mixtos (macho y hembras)

variedad Cubana y 2,500 alevines 100% machos variedad Cubana, en un

tanque circular de fibra de vidrio de 3 m de diámetro por 1.2 m de alto de 8000

L con agua dulce, con aireación contante y se hizo recambios diarios de agua

del 90%, se eliminó las heces y alimento sobrante mediante un sifoneo diario.

En una densidad de 2.6 g/L, hasta que alcanzar un peso de 4.54 ± 0.92 g.

Proceso de adaptación

Una vez que los alevines masculinizados de tilapia roja variedad Cubana

adquirieron un peso de 4.54 ± 0.92 g, se mantuvieron en el mismo tanque de la

etapa de pre-engorda y se dio inicio a el proceso de adaptación de acuerdo al

protocolo ya mencionado. El agua marina se obtuvo del pie de la bahía de

Altata–ensenada del Pabellón en la cercanía del poblado de Aguamitas,

Navolato, Sinaloa y fue trasladada a las instalaciones del centro de cuarentena

mediante un camión tipo pipa.

6.2 Experimento 2: Etapa de engorda

Sitio experimental

La etapa de engorda se realizó con la ayuda de la empresa SCPP y Ostrícola

Faro de Pabellón S.C de R.L., localizada en el campo pesquero las Aguamitas,

Navolato, Sinaloa, en la bahía de Altata-ensenada del Pabellón.

Los ensayos de la etapa de engorda del cultivo en jaulas se realizó durante los

años 2010 y 2011.

6.2.1 Cultivo de engorda en jaulas flotantes año 2010

Diseño experimental

De manera aleatoria y de acuerdo a un diseño completamente al azar (Steel y

Torrie, 1988), se sembraron 2,160 alevines de variedad Cubana durante 58

días y 810 alevines de variedad Pargo-UNAM durante 30 días en seis jaulas

integrando tres replicas para cada uno de los siguientes tratamientos: 1) 80M1:

tilapias rojas masculinizadas variedad Cubana con un peso promedio inicial de

W=10.69 ± 1.20 g, a una densidad de 80 org/m³, 2) 30M: tilapias rojas

masculinizadas variedad Pargo-UNAM con peso promedio inicial de W=35.84 ±

0.61 g, a una densidad de 30 org/m³.


Diseño experimental

De manera aleatoria y de acuerdo a un diseño completamente al azar (Steel y

Torrie, 1988), se sembraron 8,910 alevines de variedad Cubana durante 104

días en nueve jaulas integrando tres réplicas para cada uno de los siguientes

tratamientos: 1) 80M2: tilapias rojas masculinizadas variedad Cubana con un

peso promedio inicial de W=8.39 ± 0.36 g, con una densidad de 80 org/m³, 2)

80MH: tilapias rojas sin masculinizar (machos y hembras) variedad Cubana con

un peso promedio inicial de W=8.39 ± 0.36 g, con una densidad de 80 org/m³,

3) 170MH: tilapias rojas sin masculinizar (machos y hembras) variedad Cubana

con un peso promedio inicial de W=8.39 ± 0.36 g, con una densidad de 170

org/m³.

Unidades experimentales utilizadas en el año 2010 y 2011

En los cultivos de engorda durante los años 2010 y 2011, se utilizó el mismo

diseño de jaulas, el cual está compuesto por jaulas de 3X3 m con un bolso con

dimensiones de 3 X 3 X 1.2 m de red plástica de poliéster impregnadas de PVC

con luz de malla 5 X 5 mm (tanque Sansuy™) (Figura 3), utilizando un metro de

columna de agua por bolso, resultando 9 m³ de área de cultivo. La jaula contó

una estructura de sostén y flotación hecha de tubería de PVC (Duralón™) de 4

pulgadas de diámetro formado dos cuadros de 3 X 3 m, para su unión se

utilizaron codos y se pegaron con pegamento especifico para PVC (IPS Weld-

On®) en todos los extremos. Los dos cuadros se pegaron entre si de manera

paralela por medio de conexiones tipo “T” con una separación de 20 cm. Se

utilizaron el cuadro inferior para mantener la flotabilidad y el bolso fue sujeto

junto con una red anti-pájaros de 10 X 10 mm en el cuadro superior de la jaula.

Para garantizar los 9 m³ de área de cultivo por jaula, se sujeto en los extremos

del fondo de cada bolso un par de lastres fabricados con tubería de PVC de

dos pulgadas de diámetro por tres metros de largo, rellenos de concreto, y

colocados en forma paralela. Para inmovilizar las jaulas, se utilizaron dos sogas

de polipropileno de una pulgada por 100 m con un ancla de hierro de una

pulgada en cada extremo. Se colocaron las sogas en forma paralela a 3 m de

distancia y entre estas se sujetaron 6 jaulas en el año 2010 y 9 jaulas en el año

2011, quedando linealmente acomodadas con una separación 1 m. Por dentro

de cada jaula, se sujeto un comedero en el centro de forma cuadrada de 1 X 1

m de PVC de 2 pulgadas con flotabilidad, en el cual mantenía el alimento

extruido dentro de la jaula. Se colocaron las jaulas con 8 días de anticipación

en el área más profunda de la bahía (dentro de los límites de la empresa), con

una profundidad de 5 m, para verificar la flotabilidad.

Figura 3: Jaula flotante 3X3 m con un bolso 3 X 3 X 1.2 m con luz de malla 5 X

5 mm (tanque Sansuy™).

Alimentación en el año 2010 y 2011

Los peces fueron alimentados con alimento balanceado marca Silver Cup® y la

ración fue ajustada cada 14 días con respecto al promedio de peso vivo (W) a

razón de 10 % (0-30 g), 5 % (30-100 g), 3 % (mayores de 100 g). Para

organismos de 0-30 g alimento tipo migaja fina de 52% de proteína (14% grasa,

1.2% fibra, 11% ceniza, 10% humedad), para organismos de 30-50 g se

alimentó con migaja gruesa de 45% (14% grasa, 2.5% fibra, 11% ceniza, 10%

humedad), para organismos de 50-100 g se utilizó extruido 32% (5% grasa, 5%

fibra, 5% ceniza, 10% humedad) y en organismos mayores de 100 g se usó

extruido 25% (5% grasa, 6% fibra, 5% ceniza, 10% humedad), la ración se

distribuyó cuatro veces durante el día (8:00, 12:00, 16:00, 18:00).

Para calcular la cantidad de alimento a suministrar en gramos (F), se determinó

con la siguiente formula:

F= N X W X P

Donde:

F= Alimento a suministrar por día (g)

N= Número de organismos vivos

W= Peso promedio vivo de los organismos (g)

P= Porcentaje de peso vivo del organismo

Toma de parámetros físico-químicos

Durante el transcurso de los experimentos 1 y 2 se realizaron tres lecturas

diarias (9:00, 12:00 y 18:00), de los parámetros de oxígeno disuelto (mg/L),

temperatura (°C), salinidad (‰), pH, amonio (ppm).

Toma de parámetros biométricos en el año 2010 y 2011

Se efectuaron muestreos biométricos cada 14 días en el año 2010 y cada 21

días en el año 2011, los muestreos fueron aleatorios con remplazo del 10% de

la población en cada repetición. Para obtener el peso promedio vivo (W) en

cada muestreo se realizaron 3 pesadas y se utilizó una balanza colgante marca

CRT® modelo Ocs-20. Para obtener la longitud total (L) se utilizó un ictiómetro

de acuerdo al método utilizado por Sparre et al (1997), midiendo la longitud

total del extremo de la boca al extremo posterior de la aleta caudal del lado

izquierdo del pez. Para determinar el número de organismos a evaluar en cada

muestreo, se utilizó como referencia la fórmula de Scheaffer et al (1987) y se

obtuvo que el 4.3% de muestra es representativo de la población. Para

incrementar la confiabilidad del muestreo se utilizó el 10% de muestra para el

cálculo de peso promedio vivo (W) y con el 20% de muestra para longitud total

(L):

n= __ N X σ² .

N-1 (D) + σ2

Donde:

N= Número de peces sembrados en la jaula

σ²= Varianza de la población sustituida por la varianza de una muestra

aleatoria de 7 organismos (σ²=S²).

D= Precisión en la formula (D=B²/4)

B= Error estándar de una muestra aleatoria de 7 organismos.

Calculo de variables de crecimiento y alimentación en el año 2010 y 2011

Para la estimación del preso promedio vivo (W) en gramos de la población, se

utilizó la siguiente formula:

W = Peso total de organismos de la muestra Número de organismos

Se calculó la ganancia diaria de peso (GDP) en gramos por día, con la

siguiente formula (Gallo, 2007), que estima la ganancia de peso en el tiempo.

GDP= (Peso promedio vivo final – Peso promedio vivo inicial) Días transcurridos

Para determinar el factor de conversión alimenticia (FCA) se utilizó la fórmula

(Watanabe, 1985).

FCA= Cantidad de alimento suministrado _ Incremento de peso de la población En la etapa del cultivo de pre-engorda y engorda en jaulas, se utilizó el mismo

término FCA, sólo que en etapa de engorda representó el factor de conversión

alimenticia aparente, ya que se presentó un aporte de alimento natural debido a

la productividad natural del agua marina.

Se calculó la tasa específica de crecimiento (TEC), de acuerdo a la siguiente

formula (Watanabe, 1985), que estima la velocidad de crecimiento en peso.

TEC = (LnWf –LnWi) X 100 t Donde:

TEC = Tasa específica de crecimiento

Ln Wf= Logaritmo natural de peso final

Ln Wi= Logaritmo natural de peso inicial

t= Tiempo (días)

Se calculó el factor de condición (K) para obtener el grado de robustez del pez,

mediante la siguiente fórmula (Likongwe, 1996; Sparre, 1997; Pauly 1987):

K= W X 100 L³ Donde:

K= Factor condición (%)

W= Peso (g)

L= Longitud del pez (cm)

Al final del experimento, se sacrificaron los peces por el procedimiento de

hipotermia mediante la colocación de los mismos en contendores con agua e

hielo picado y se calculó el porcentaje de supervivencia (S) de acuerdo a la

siguiente formula (Gallo, 2007; Likongwe, 1996):

S= _Número final de organismos_ X 100 Número inicial de organismos

Análisis estadístico en el 2010 y 2011

Se estimó el tipo de crecimiento de cada variedad (relación longitud-peso) con

la ecuación de regresión no lineal de tipo exponencial, mediante la

transformación logarítmica de los datos para realizar un análisis de regresión

lineal simple, análisis de correlación y la transformación de antilogaritmo de “a”,

manejando como variable independiente la longitud (cm) y como variable

dependiente el peso (g). Se estimó el incremento de peso durante el tiempo

(relación días de cultivo-peso) con la ecuación de regresión lineal, manejando

como variable independiente días de cultivo y como variable dependiente peso

(g). Para la comparación múltiple entre medias se utilizó la prueba de Tukey

(Steel y Torrie, 1988), utilizando el análisis el programa Statistical Analysis

System (SAS), con un nivel de significancia de P<0.05.

La ecuación de la relación longitud-peso se obtuvo mediante el modelo

estadístico de regresión no lineal de tipo exponencial, que es el tipo de curva

que más se asemeja al crecimiento biológico de la tilapia (Mena, 2002; Steel y

Torrie, 1988; Sparre, 1997):

Y = β0Xᵝ¹, ecuación no lineal ó

log (Y) = log a + b * log X, ecuación lineal con datos transformados

Donde:

Y= Valor representativo del peso de una población

X= Valor representativo de la longitud de una población

β0= Se sustituye por “a” (punto donde la línea recta corta el eje de las Y)

β1= Se sustituye por “b” (coeficiente de regresión)

La ecuación de la relación días de cultivo-peso se obtuvo mediante el modelo

estadístico de regresión lineal (Steel y Torrie, 1988):

Y = a + b X

Donde:

Y= Valor representativo del peso de una población

X= Valor representativo en días de cultivo de una población

a= Intercepto o punto donde la línea recta corta el eje de las Y

b= Coeficiente de regresión

VII. RESULTADOS Y DISCUSIÓN

7.1 Experimento 1: Adaptación a agua marina


Del experimento piloto, ensayado paralelamente al cultivo de pre-engorda del

lote completo de tilapias, se determinó que el peso mínimo para aclimatar este

híbrido oscila entre 1.33 ± 0.03 g con una longitud total de 3.5 cm. Se obtuvo

una supervivencia del 100%, dato que nos indica que este híbrido es capaz de

tolerar el proceso de aclimatación gradual de agua dulce a agua marina con el

protocolo descrito de aclimatación en 5 días con un peso inferior a los 5 g.


En el Tabla 1, se presentan los valores de las variables de crecimiento durante

el periodo de pre-engorda en agua dulce y en la Figura 4 se muestra la curva

de crecimiento en esta etapa. Una vez que los alevines adquirieron un peso

promedio de 4.99 ± 0.16 g en día el 21 del cultivo, se sometieron al proceso de

aclimatación donde se obtuvo una supervivencia final del 100% y un peso final

de 10.69 ± 1.20 g. Los parámetros fisicoquímicos del agua se mantuvieron

dentro de los rangos óptimos de la especie con una temperatura de 29.48 ±

2.59 °C, oxígeno disuelto de 5.17 ± 0.36 mg/L y pH de 8.66 ± 0.05.

Tabla 1. Peso promedio, GDP, FCA, S% durante la etapa de pre-engorda de la tilapia

roja variedad Cubana año 2010.

Días de cultivo

W GDP FCA TEC S (%)

0 0.20 - - -

7 0.47 ± 0.08 0.05 14.40 6.25

14 1.67 ± 0.26 0.09 9.00 3.90

21 4.99 ± 0.16 0.48 15.70 6.81

30 10.69 ± 1.20 0.64 8.60 3.72 100.00

Media ± DE, W=Peso promedio vivo, GDP= Ganancia diaria de peso (g/d), FCA= Factor de

conversión alimenticia, TEC=Tasa específica de crecimiento, S=Supervivencia (%).

Figura 4: Curva de crecimiento del peso promedio vivo (W) de tilapia roja

variedad Cubana en la etapa de pre-engorda en el año 2010.

7.1.2 Adaptación variedad Pargo-UNAM año 2010

El proceso de adaptación se inició con organismos pre-adaptados a una

salinidad de 20‰. Se obtuvo una supervivencia del 100% de los organismos

con un peso de 25 g y 9.0 cm de longitud. Este resultado nos indica que este

híbrido es capaz de tolerar el proceso de aclimatación gradual a agua marina

de 3 días en etapa temprana de crecimiento. Durante la adaptación los

parámetros fisicoquímicos del agua se mantuvieron dentro de los rangos

óptimos de la especie con una temperatura de 30.28 ± 0.26 °C, oxígeno

disuelto de 5.6 ± 0.27 mg/L y pH de 8.4 ± 0.08.



En el Tabla 2, se presentan los valores de las variables de crecimiento durante

el periodo de pre-engorda y aclimatación de 15 días, en la Figura 5 se muestra

la curva de crecimiento de esta etapa. Después de una pre-engorda de 15 días

una vez que los alevines adquirieron un peso promedio de 4.54 ± 0.92 g en el

día 10 de cultivo, se sometieron al proceso de aclimatación obteniendo una

supervivencia final del 100%. Los parámetros fisicoquímicos del agua se

mantuvieron dentro de los rangos óptimos de la especie con una temperatura

de 29.86 ± 0.65 °C, oxígeno disuelto de 6.13 ± 0.7 mg/L y pH de 8.15 ± 0.2.

Tabla 2. Peso promedio, GDP, FCA, S% durante la etapa de pre-engorda de la tilapia

roja variedad Cubana año 2011.

Días de cultivo

W GDP FCA TEC S (%)

0 1.02 - - - 5 1.78 ± 0.75 0.15 1.00 11.14 10 4.54 ± 0.92 0.55 0.87 18.73 15 8.39 ± 0.36 0.77 0.69 13.90 100.00

Media ± DE, W= Peso promedio vivo, GDP= Ganancia diaria de peso (g/d), FCA= Factor de

conversión alimenticia, TEC=Tasa específica de crecimiento, S=Supervivencia (%).

Figura 5: Curva de crecimiento del peso promedio vivo (W) de tilapia roja

variedad Cubana en la etapa de pre-engorda año 2011.

Durante el proceso de adaptación (experimento 1) a agua marina en los

ensayos efectuados durante los años 2010 y 2011 con ambas variedades, se

observa que la tilapia roja hibrida tiene una supervivencia del 100% al

realizarse una aclimatación gradual a agua marina a 35‰. Siguiendo el

protocolo mencionado que es similar al utilizado por Cabrera-B, et al (2001),

Hopking, et al (1989), Mena, et al (2002) y Watanabe, et al (1988). Aunque no

es posible hacer el análisis estadístico entre las variedades, se puede observar

que para la variedad Cubana se asegura tener una supervivencia aceptable en

el proceso de adaptación a partir de 5 g. El resultado obtenido en el

experimento piloto con organismos de 1.33 g, nos indica que posiblemente este

proceso pueda llevarse a cabo con organismo menores a 5 g. Estos resultados

coinciden con los obtenidos por Castro, 2004; Romana-Eguia 1999; Mostafa,

2005; Muñoz 2009; Watanabe, 1990; Webster, 2006, Villegas, 1990, donde

estos investigadores obtuvieron una alta supervivencia con la tilapia roja

híbrida, donde concluyen que esté pez híbrido desarrollan mecanismos

fisiológicos de adaptación que les permiten sobrevivir y crecer después de ser

transferido a agua marina y conforme se incremento la concentración de sal en

el agua el pez osmorregula igual que los peces marinos. Durante los dos

experimentos de aclimatación en los dos años trabajados, se obtuvo un

crecimiento similar durante el proceso de aclimatación y se observó que el pez

continua creciendo adecuadamente en la etapa de pre-engorda. En el 2010 del

día 21 al día 30 el pez creció 5.7 g en 9 días, con una GDP de 0.64 y un TEC

de 8.60 al día 30 (Tabla 1) y en el año 2011 del día 10 al día 15 creció de 3.85

g en 5 días con una GDP de 0.78 y un TEC de 13.9 al día 15 (Tabla 2). Es de

resaltar que en ambos experimentos iniciando con pesos similares el proceso

de aclimatación, la tasa específica de crecimiento (TEC) disminuye,

posiblemente debido a que el cambio en la salinidad esta provocando un gasto

energético en el organismo. Por otro lado, su FCA aumenta, haciendo su

conversión alimenticia menos eficiente. La alta supervivencia obtenida nos

indica que el organismo se está adaptando fisiológicamente a las nuevas

condiciones del medio. El proceso de adaptación de la variedad Pargo-UNAM

se logra en solo tres días, cuando se comienza con tilapias mayores a 5 g, ya

que los organismos se encuentran ontogénicamente mejor adaptados.

7.2 Experimento 2: Etapa de engorda


En el Tabla 3, se presentan los valores obtenidos de las variables biométricas

de tilapia roja variedad Cubana durante el periodo de engorda en agua marina.

Los parámetros fisicoquímicos del agua se mantuvieron dentro de los rangos

óptimos de la especie con una temperatura de 29.98 ± 1.99 °C, oxígeno

disuelto de 5.7 ± 0.65 mg/L, salinidad de 35.02 ± 0.19 y pH de 8.56 ± 0.21.

Tabla 3. Peso promedio, longitud promedio, GDP, FCA, TEC, K en ciclo de engorda de tilapia roja

variedad Cubana cultivadas en jaulas flotantes en agua marina (cultivo año 2010 80M1: 80

org/m³, machos).

Días de cultivo

W (g) L (cm) GDP FCA TEC K S (%)

0 10.69 ± 1.20 5.33 ± 1.66 - - - - -

14 24.64 ± 2.05 10.07 ± 0.12 1.00 1.24 6.00 2.42 -

28 49.63 ± 4.07 12.53 ± 0.33 1.78 1.39 5.00 2.52 -

43 86.43 ± 7.98 15.04 ± 0.25 2.45 1.76 3.70 2.54 -

58 113.34 ± 3.08 16.48 ± 0.09 1.79 1.90 1.81 2.53 97.82

Media ± DE, W=Peso promedio vivo, L=Longitud total promedio, GDP=Ganancia diaria de peso (g/d),

FCA=Factor de conversión alimenticia, TEC=Tasa específica de crecimiento, K= Factor de condición,

S=Supervivencia (%).(%), 80M1= 80 org/m3, sólo machos.

Figura 6: Curva de crecimiento del peso promedio vivo (W) de la tilapia roja

variedad Cubana en la etapa de engorda durante el cultivo en jaula flotante en

agua marina (80M1= 80 org/m3 sólo machos).

Figura 7: Curva de crecimiento de la longitud total (L) de la tilapia roja variedad

Cubana en la etapa de engorda durante el cultivo en jaula flotante en agua

marina (80M1).

En el Tabla 4, se presentan los valores obtenidos de las variables biométricas

de tilapia roja variedad Pargo-UNAM durante el periodo de engorda en agua

marina durante el cultivo 2010. Los parámetros fisicoquímicos del agua se

mantuvieron dentro de los rangos óptimos de la especie con una temperatura

de 29.16 ± 2.31 °C, oxígeno disuelto de 5.27 ± 0.24 mg/L, salinidad de 34.97 ±

0.23 y pH de 8.43 ± 0.06.

Tabla 4. Peso promedio, longitud promedio, GDP, FCA, TEC, K en ciclo de engorda de tilapia

roja variedad Pargo-UNAM cultivadas en jaulas flotantes en agua marina (cultivo 2010; 30M: 30

org/m³, machos).

Días en cultivo


0 35.84 ± 0.61 11.46 ± 0.16 - - - - -

15 68.28 ± 3.52 13.46 ± 0.15 2.16 1.58 4.30 2.8 -

30 84.80 ± 10.62 14.17 ± 0.51 1.1 2.31 1.44 2.98 78.02

Media ± DE, W=Peso promedio vivo, L=Longitud total, GDP=Ganancia diaria de peso (g/d),

FCA=Factor de conversión alimenticia, TEC=Tasa específica de crecimiento, K=Factor de condición,

S=Supervivencia (%), 30M: 30 org/m³ sólo machos).


variedad Pargo-UNAM en la etapa de engorda durante el cultivo en jaula

flotante en agua marina (30M= 30 org/m³ sólo machos).

Figura 9: Curva de crecimiento de la longitud total (L) de la tilapia roja variedad

Pargo-UNAM en la etapa de engorda durante el cultivo en jaula flotante en

agua marina (30M).

En el Tabla 5, se presentan los valores finales obtenidos de las variables de

crecimiento de tilapia roja variedad Cubana y Pargo-UNAM durante el periodo

de engorda en agua marina durante el cultivo 2010.

Tabla 5. Peso promedio, longitud promedio, GDP, FCA, TEC, K en ciclo de engorda de tilapia roja

variedad Cubana y tilapia roja variedad Pargo-UNAM cultivadas en jaulas flotantes en agua marina

(cultivo 2010 80M1: 80 org/m3 machos, 30M: 30org/m3 machos).

Variedad Días W

inicial W final L inicial L final GDP FCA TEC K S (%)

80M1 58 10.69 113.34 5.34 16.48 1.77 1.63 4.07 2.53 97.82

30M 30 35.84 84.80 11.46 14.17 1.63 1.83 2.87 2.98 78.02

Media ± DE, W=Peso promedio vivo, L=Longitud total promedio, GDP=Ganancia diaria de peso (g/d),

FCA=Factor de conversión alimenticia, TEC=Tasa específica de crecimiento, K=Factor de condición,

S=Supervivencia (%).

Debido a que en el experimento de engorda del año 2010 se trabajó con pesos

iníciales de siembra, densidades y la duración de cultivo fue diferente, por lo

que no es posible efectuar un análisis estadístico de las variables de

crecimiento como ganancia diaria de peso (GDP), factor de conversión

alimenticia (FCA), tasa específica de crecimiento (TEC) y peso promedio final

(Wf) entre las variedades de tilapia aclimatadas. Por lo que sólo se analizó el

incremento de peso con respecto al tiempo de cada variedad o su velocidad de

crecimiento, mediante un análisis de regresión lineal entre días de cultivo y

peso promedio, en la Figura 6, y se obtiene la ecuación de la relación días de

cultivo-peso de la variedad Cubana Y=1.845X + 4.163, con un coeficiente de

correlación de r²=0.98 y se muestra en la Figura 8, la ecuación de la relación

días de cultivo-peso de la variedad Pargo-UNAM es igual a Y=1.632X + 38.48,

con un coeficiente de correlación de r²=0.97, estas dos ecuaciones demuestran

que las dos variedades en un tiempo estimado (X) mantienen un peso (Y)

similar con una variación no mayor de 5% en las dos variedades, por lo que las

dos variedades crecen igual dentro de los rangos de pesos ensayados en

condiciones marinas con valores promedio de condiciones ambientales con una

temperatura de 28.8°C, O2 de 5.4 mg/L y un pH de 8.4, que son valores

adecuados para el cultivo de estas especies (El-Sayed, 2006; Morales, 2003;

Rakocy, 2006).

La supervivencia estimada de las dos variedades variaron de un 78.02 y

97.82%, para variedad Pargo-UNAM y variedad Cubana respectivamente, bajo

las condiciones experimentales de este ensayo (Tabla 5).

Como ya se mencionó anteriormente, la adaptación de los alevines se inició a

partir de los 5 g, con un 100% de supervivencia sin embargo se observó que su

aclimatación se puede iniciar en un peso menor, lo que reduciría el tiempo

requerido de pre-engorda en agua dulce. La talla inicial de siembra en jaula de

engorda, únicamente se ensayó con tilapias que sobrepasan los 8 g y no se

tiene el dato experimental con organismos más pequeños.

Los resultados obtenidos de las variables de crecimiento, de ganancia diaria de

peso (GDP) y factor de conversión alimenticia (FCA) al final del cultivo (Tabla

5), del ensayo de engorda del año 2010, al utilizar la densidad de 80 org/m³

para la variedad Cubana y la densidad 30 org/m³ para la variedad Pargo-

UNAM, coinciden con resultados obtenidos por Watanabe et al (1987), en

estudios de crecimiento de tilapia roja en jaulas en agua marina, durante 51

días con una densidad de 305 org/m³, donde encuentran ganancia diaria de

peso menor de 1.4 g/d y un FCA de 2.62, el valor superior de FCA obtenidos

por el autor, puede ser puede ser un efecto de la densidad al hacer la

comparación con otros estudios realizados por Watanabe, 1990 y Balcázar,

2004, con diferentes densidades. Por otro lado, los resultados obtenidos en la

densidad de 30 org/m³ en el ensayo con la variedad Pargo-UNAM, coincide con

el estudio de Watanabe et al (1990) donde cultivó tilapia roja en jaula en agua

marina a una densidad de 25 org/m³.

Las variedades ensayadas en esta tesis presentan un aumento diario de peso

similar cuando son cultivadas en agua marina, aun cuando se trabajó con

densidades diferentes, el comportamiento de los organismos fue similar.

Aparentemente la única diferencia encontrada fue el factor de condición (K) del

pez ya que la variedad Pargo-UNAM presenta una K de 2.98 y la variedad

Cubana una K de 2.53, lo que aparentemente nos muestra que

anatómicamente la variedad Pargo-UNAM es más robusto que la variedad

Cubana, hasta las tallas ensayadas.


Después de 104 días del periodo de engorda a una densidad de 80 org/m³,

utilizando organismos solo machos fueron obtenidos peces con un peso

promedio de 264.33 ± 24.13 g, utilizando la misma densidad pero ensayando

con un cultivo mixto (machos y hembras) se obtuvo un peso promedio de

240.66 ± 13.58 g, con la densidad de 170 org/m³ se obtuvo un peso promedio

menor de 201.66 ± 15.82 g (Tabla 6). La supervivencia observada varió de un

84 a 97% ya que durante el cultivo de engorda se presentó mortandad en las

primeras tres semanas de cultivo de la siguiente manera: Para el cultivo 80M2

fue de 4%, para 80MH fue de 6%y para 170HM fue de 2%. Estudios realizados

por Webster (2006) nos indica que es normal una mortalidad de 6 a 8% con

peces sanos dentro de las primeras semanas después de la siembra.

En el Figura 10 y Figura 11, se presentan la curva de crecimiento con los

valores obtenidos de peso y longitud durante el cultivo 2011 de engorda en

ambiente marino de tilapia roja variedad Cubana.



agua marina (80M2: 80 org/m³, 80MH: 80 org/m³, 170MH: 170 org/m³).

Figura 11: Curva de crecimiento de la longitud total (L) de la tilapia roja


agua marina (80M2: 80 org/m³, 80MH: 80 org/m³, 170MH: 170 org/m³).

Ninguna de las variables registradas GDP, FCA, TCE, Wf (P > 0.05), fue

significativamente diferente en tres los tres tratamientos, sin embargo la

densidad de 80 org/m³ con organismos solo machos presentó mejores

resultados en las variables de crecimiento, seguido por 80 org/m³ (mixto) y 170

org/m³ (mixto) que obtuvo un peso final menor, lo que nos indica que de

acuerdo al tipo y condiciones del cultivo empleado en este experimento no tuvo

efecto significativo el tratamiento en cuanto a densidad, ni a sexo de los

organismos.

Tabla 6. Peso promedio, longitud promedio, GDP, FCA, TEC, K finales en ciclo de engorda de

tilapia roja variedad Cubana cultivadas en jaulas flotantes en agua marina (cultivo 2011; 80M2,

80MH, 170MH).

Variedad Días W inicial W final L inicial L final GDP FCA TEC K S (%)

80M2 104 8.39 264.33a - 21.90a 2.46a 1.33a 3.32a 2.56a 93.17

80MH 104 8.39 240.67a - 21.01a 2.23a 1.45a 3.23a 2.60a 84.70

170MH 104 8.39 201.67a - 20.23a 1.86a 1.52a 3.06a 2.44a 82.56

Media ± DE, W=Peso promedio vivo, L=Longitud total, GDP=Ganancia diaria de peso (g/d), FCA=Factor

de conversión alimenticia, TEC=Tasa específica de crecimiento, K=Factor de condición, S=Supervivencia

(%), 80M2=80 org/m³ 100% machos, 80MH=80 org/m³ (machos y hembras) y 170MH=170 org/m³

(machos y hembras).

Las letras diferentes en los columnas, indican que existe diferencia significativa P<0.05 por comparación

de medias de Tukey.

Figura 12: Producción obtenida final (kg) y alimento suministrado (kg) durante

el cultivo de engorda durante 104 dias.

Los datos mostrados en la Figura 12, es resultado de la producción final

obtenida en kilogramos por metro cúbico y la cantidad en kg de alimento

añadidos durante el cultivo. El factor de conversión alimenticia no tuvo una

diferencia significativa entre los tratamientos, sin embargo el cultivo utilizando

170 org/m³ se obtuvo un FCA mayor, por lo que se requirió añadir más

alimento.

En las Tabla 7, 8 y 9, se presentan los valores obtenidos de las variables de

crecimiento de tilapia roja variedad Cubana durante el transcurso de la etapa

de engorda para los tres tratamiento ensayados respectivamente.

Tabla 7. Peso promedio, longitud promedio, GDP, FCA, TEC, K, durante el ciclo de engorda de

tilapia roja variedad Cubana cultivadas en jaulas flotantes en agua marina (cultivo 2011 80M2: 80

org/m³).

Días de cultivo


0 8.39 ± 0.36 - - - - - -

20 31.40 ± 0.53 10.45 ± 0.14 1.15 1.47 6.60 2.75 -

41 72.38 ± 3.73 14.06 ± 0.26 1.95 1.09 3.98 2.61 -

62 124.40 ± 16.99 17.04 ± 0.55 2.48 1.46 2.58 2.51 -

83 183.11 ± 9.39 19.53 ± 0.06 2.80 1.60 1.84 2.52

104 264.33 ± 24.13 21.90 ± 0.20 3.87 1.48 1.75 2.52 93.17 Media ± DE, W= Peso promedio vivo, L=Longitud total, GDP=Ganancia diaria de peso (g/d), FCA=Factor

de conversión alimenticia, TEC=Tasa específica de crecimiento, K= Factor de condición, S=Supervivencia

(%), 80M2=80 org/m³ 100% machos.

Tabla 8. Peso promedio, longitud promedio, GDP, FCA, TEC, K, durante el ciclo de engorda de tilapia

roja variedad Cubana cultivadas en jaulas flotantes en agua marina (cultivo 2011 80MH: 80

org/m³).

Días de cultivo


0 8.39 ± 0.36 - - - - - -

20 28.46 ± 3.07 9.93 ± 0.17 1.00 1.68 6.11 2.91 -

41 66.82 ± 3.30 13.59 ± 0.12 1.83 1.16 4.06 2.66 -

62 101.53 ± 2.68 16.24 ± 0.19 1.65 2.18 1.99 2.37 -

83 171.10 ± 10.18 19.02 ± 0.22 3.31 1.09 2.49 2.49 104 240.67 ± 13.58 21.01 ± 3.10 3.31 1.66 1.62 2.60 84.70

Media ± DE, W=Peso promedio vivo, L=Longitud total, GDP=Ganancia diaria de peso (g/d), FCA=Factor de

conversión alimenticia, TEC=Tasa específica de crecimiento, K=Factor de condición, S=Supervivencia (%),

80M2=80 org/m³ machos y hembras.

Tabla 9. Peso promedio, longitud promedio, GDP, FCA, TEC, K, durante el ciclo de engorda de

tilapia roja variedad Cubana cultivadas en jaulas flotantes en agua marina (cultivo 2011 170MH:

170 org/m³).

Días de cultivo


0 8.39 ± 0.36 - - - - - -

20 30.63 ± 1.38 10.37 ± 0.20 1.11 0.90 6.47 2.75 -

41 65.10 ± 0.78 13.40 ± 0.08 1.64 1.31 3.59 2.71 -

62 96.59 ± 17.51 15.70 ± 0.65 1.50 2.20 1.88 2.50 -

83 148.62 ± 4.12 18.25 ± 0.08 2.48 1.36 2.05 2.44

104 201.67 ± 15.82 20.23 ± 0.42 2.53 2.00 1.45 2.44 82.56

Media ± DE, W= Peso promedio vivo, L= Longitud total, GDP= Ganancia diaria de peso (g/d), FCA= Factor

de conversión alimenticia, TEC=Tasa específica de crecimiento, K=Factor de condición, S=Supervivencia

(%), 170MH=170 org/m³ machos y hembras.

Durante el cultivo de engorda en el año 2011, los parámetros fisicoquímicos del

agua se mantuvieron dentro de los rangos óptimos para la especie, lo

contribuyó favorablemente al valor de la supervivencia y crecimiento de las dos

variedades de tilapia; con una temperatura promedio de 31.39 ± 1.16 °C,

oxígeno disuelto de 5.52 ± 0.8 mg/L, salinidad de 35.0 ± 0.01 y un pH de 8.3 ±

0.05 durante los meses de junio a octubre (El-Sayed, 2006; Morales, 2003;

Rakocy, 2006). El cultivo fue instalado en un lugar donde la circulación del

agua se mantiene constante con pocas variaciones de mareas o estacionales,

por lo que las desviaciones de los parámetros son pequeñas.

Sin embargo se observó un baja en la supervivencia de 93.17 a 82.56%, que

se atribuye al efecto de la densidad. Así mismo la densidad tiene un efecto

negativo sobre el peso (W), longitud (L), GDP, TEC y un aumento del FCA de

1.33 a 1.52, todas estas diferencias no son significativas como se comento

anteriormente. Se encontró que los resultados obtenidos de disminución en las

variables de crecimiento con respecto a la densidad, son similares a los

resultados de los trabajos de Watanabe, 1990 y Balcázar, 2004. En el cultivo

ensayado con 170 org/m³ con tilapias machos y hembras, se obtuvo 42% más

producción y un 5% mayor consumo de alimento y un 16% de crecimiento más

lento contra la densidad de 80MH utilizando también tilapias machos y hembras

(Tabla 6). En los dos últimos tratamientos 80MH y 170MH se pude identificar

que el consumo de alimento de los organismos no se ve afectado

drásticamente por la densidad y solo disminuye ligeramente la tasa de

crecimiento.

Los efectos observados en los resultados obtenidos de las diferentes variables

de crecimiento en las diferentes densidades ensayadas de 80 org/m³ y 170

org/m³ (Tabla 6), nos muestran al igual que el estudio realizados por Watanabe

et al (1990) en cultivo en jaulas flotantes en agua marina con tilapia roja en las

densidad de 100, 200 y 300 org/m³, se presenta un efecto de la densidad de la

población en la variación del peso final (Wf), y donde es evidente un mayor

coeficiente de variación de peso corporal (W) y la longitud (L) entre los peces

en una densidad de 100 org/m³ contra los de densidades más altas. Al igual,

los resultados coinciden con estudios realizados por Balcázar et al (2004) con

la tilapia roja cultivada en jaulas marinas, en las densidades de 100, 200 y 300

org/m³ durante 120 días. El cultivo tuvo un decremento en las variables de

crecimiento a medida que se incrementó la densidad, la GDP varió de 1.71 a

1.57 g/d, con un resultado similar en FCA de1.29. En el ensayo también se

observó un decremento poco revelador y se considera que es una buena

estrategia el cultivo a alta densidad, ya que el decremento en la GDP, es

beneficiado por la alta biomasa obtenida por metro cúbico.

Sobre el efecto del sexo, en los cultivos utilizando solo machos o machos y

hembras en el mismo cultivo, lo que podemos decir, es que el tratamiento

80M2 se obtuvo 17% mayor producción, 7% menor consumo de alimento y un

crecimiento acelerado diario del 9% contra tratamiento mixto 80MH (Tabla 6),

estos resultados obtenidos coinciden con estudios por Dan et al (2000) en

cultivo en jaula en agua dulce con otra especie de O. niloticus. En tratamientos

mixtos (80MH y 170MH: machos y hembras) no se presentó reproducción,

posiblemente a que no existe la posibilidad de construir nidos por los machos

dentro de la jaula para generar el cortejo con las hembras, si esto se diera, no

será posible la colocación de huevos para ser fertilizados en el nido, ya que los

huevecillos escaparían por la malla de jaula antes de ser fertilizados. De

acuerdo al peso y longitud final en los diferentes tratamientos, se observa que

la densidad tiene mayor efecto negativo, en el crecimiento que el sexo (Figura

10).

La mayor velocidad de crecimiento (Tabla 7 y Tabla 8), se obtuvo con cultivo

sólo machos 80M2 con TEC de 3.32, a diferencia del cultivo mixto 80MH con

TEC de 3.23 y 170MH con TEC de 3.06 , sin embargo estos resultados fueron

superiores a reportados por Romana-Eguia, (1999) en estudios en tanques

durante 60 días con agua marina con cinco variedades hibridas de tilapia roja

de importados de Pilipinas, Tailandia y Taiwán (O. mossambicus X O. niloticus

y O. hornorum X O. niloticus) con un tasa específica de crecimiento de 1.10 a

1.23.

El peso final al término de un periodo de tiempo, es un indicativo del ritmo de

crecimiento del pez, se considera que los tratamientos utilizando 80 org/m³ solo

machos (80M2), se obtiene un peso final de 264.33 g y con 80 org/m³ machos y

hembras (80MH) se obtiene 240.67 g. Ambos cultivos mantuvieron un ritmo de

crecimiento similar con 8% de diferencia. En cambio, en la densidad de 170

org/m³ machos y hembras (170MH) se obtuvo un peso final de 201.67 g,

manteniendo una tasa de crecimiento con 16% de diferencia con 80MH y 23%

con 80M2 (Tabla 7, 8, 9, y Figura 10), como ya se mencionó, estas diferencias

no son significativa.

En el año 2011, al considerar densidades ensayadas y los datos finales

obtenido de GDP que van de 1.86 a 2.46 g/d y FCA de 1.33 a 1.52, tantos en

cultivo de 100% machos o mixto (machos y hembras) en Tabla 6, coinciden los

resultados con diversos trabajos por otros autores en cultivos en jaulas con

tilapia roja en tiempo similar, pero realizados en agua salobre, como los

obtenidos por Wedler et al (2006), en cultivo con diferente rango de salinidad

desde 12.6 a 37.4‰ donde obtuvieron una menor ganancia en peso de 1.79

g/d y menor supervivencia del 69% durante 180 días. Por otro lado, en estudios

de Cremer et al (2002) con tilapia roja en jaula en agua salobre (0-19‰) con

una densidad de 250 org/m³, obtuvieron una mayor GPD de 3.46 g/d, menor

FCA de 1.41 y mayor supervivencia de 91.7% durante 124 días, donde el autor

demostró que la tilapia roja es capaz de crecer y sobrevivir en concentraciones

variables de salinidad que se presentan en las áreas costeras. Yang et al

(2001) obtuvo con tilapia roja en agua salobre (10‰) cultiva en estanques a

una densidad de 62.5 org/m³, durante 90 días, una GDP de 1.17 menor al

obtenido en el trabajo.

Los datos de crecimiento de las dos especies de tilapia roja obtenidos en los

ensayos de los años 2010 y 2011, de GDP que van de 1.63 a 2.46, y de FCA

de 1.33 a 1.83, coinciden con estudios de cultivos de agua dulce hechos por

Zapata et al (2008) en cultivo en jaula con tilapia roja con densidades de 50

org/m³, donde obtuvieron una similar GDP de 2.4 g/d, similar con FCA de 1.7,

con una TEC de 1.79 durante 91 días. Estos resultados nos indican que las

diferentes especies de acuerdo a sus características particulares (genéticas),

ya sea cultivada en agua dulce o adaptada a agua salada presentan

crecimientos similares.

El sistema de cultivo en jaulas puede ser comparado con otros sistemas

intensivos, como resultados de los estudios realizados por Leyva et al (2008),

con sistema tipo raceway con agua marina a una densidad de 76 org/m³ donde

obtuvieron una GDP de 1.9 g/d, FCA de 1.1 y supervivencia del 85% durante

111 días, datos muy similares a los obtenidos en el ensayo. Cheong et al

(1987) con tilapia roja cultivada en tanques de fibra de vidrio con agua marina a

una densidad de 125 org/m, obtuvieron una GDP de 1.8 g/d durante 240 días,

muy similar a datos obtenido con 170MH. Mena et al (2002) utilizando la tilapia

roja a una densidad de 50 org/m³, en un sistema de estanque de cemento agua

marina y obtuvo una GDP de 1.9 g/d durante 189 días y supervivencia 58%,

ligeramente menor a los obtenidos en el ensayo. Clark et al (1990), en cultivo

en estanque en con alto recambio de agua marina con tilapia roja a una

densidad de 25 org/m³ obtiene una GDP de 3.5 g/d y supervivencia de 97%

durante 120 días, en este trabajo vemos la influencia positiva de la densidad

sobre le crecimiento, además del efecto del sistema de cultivo.

Se puede identificar las ventajas del uso del sistema de cultivo en jaulas,

cuando comparamos los resultados con diferentes sistemas de cultivo, ya que

se obtienen mejores crecimientos, mayor kilogramos por m³ y en un menor

tiempo o con una tasa de crecimiento mayor, favorecido por el alto recambio de

agua y al alimento natural disponible en el sistema, que es aprovechado por el

pez, de tal manera que pueden ser comprado con sistemas altamente

tecnificado como el cultivo en raceway.

Los resultados obtenidos en esta tesis coinciden con cultivos en jaula con otras

especies del género Oreochromis estudiadas por Cruz et al (1989) en jaulas

con agua marina, como por ejemplo: la especie O. spilurus estudiada a una

densidad 100, 200 y 300 org/m³, donde no encontró una diferencia significativa

entre las diferentes densidades en GDP, FCA y supervivencia, al igual que los

resultados obtenidos en tilapia roja por Balcázar et al (2004) y Watanabe et al

(1990), donde los autores concluyen que observa una disminución de los

valores de las variables de crecimiento conforme se incrementa la densidad,

por lo que recomienda que la densidad óptima es de 200 org/m³. Al igual,

estudios en jaula en agua dulce con O. niloticus elaborado por Marengoni

(2006) utilizando las densidades de 200, 250, 300, 350 y 400 org/m³, observó

que al incrementar la densidad disminuyen las variables de crecimiento con un

decremento en la GDP que va de 3.43 a 3.01 g/d y un incremento FCA de 1.54

a 1.65, por lo tanto concluye que el aumento en la densidad de cultivo genera

un impacto económico por el aumento del FCA y en consecuencia un

incremento en los costos de producción.

Las diferencias en el crecimiento de la tilapia roja hibrida en este experimento,

en comparación con los otros trabajos, puede ser explicada por las variaciones

en condiciones experimentales tales como sistema de cultivo, línea genética de

la especie, densidad y tipo de sistema (agua dulce, salobre o marina) entre

otros y se sugiere que el cultivo en jaula en agua marina con esté híbrido

puede ser buena estrategia considerando que responde a altas densidades que

van desde los 80 a 170 org/m³, manteniendo una elevada producción por

unidad de volumen de 19.70 a 28.30 kgs/m³, sin encontrar un diferencia

significativa del efecto de sexo en el cultivo y una alta supervivencia que puede

ser debida a una alta resistencia a enfermedades y una óptima adaptación.

Al realizar el análisis peso-longitud de entre los tratamientos realizados en el

año 2010 utilizando las densidades 80M1 y 30M con la variedad Cubana y

variedad Pargo-UNAM respectivamente, se encontró que están relacionados

linealmente la dos variables al ser transformadas logarítmicamente, se

encontró que están significativamente relacionados en el análisis de correlación

(P<0.05).

En la Figura 13, se muestra la ecuación de la relación longitud-peso de la

tilapia variedad Cubana encontrando la relación Y=0.02X3.03, con un coeficiente

de correlación de r²=0.99 y un coeficiente de regresión de b=3.03. En la Figura

14, se muestra la ecuación de la relación longitud-peso de la variedad de tilapia

Pargo-UNAM encontrando la relación Y=0.03X2.94, con un coeficiente de

correlación de r²=0.96 y un coeficiente de regresión de b=2.94. Ambas

ecuaciones muestran que las dos especies en las condiciones que se presentó

los experimentos, presentan un crecimiento de tipo isométrico (las partes del

pez crecen proporcionalmente), porque el valor de b=3 o muy cercano a éste; a

diferencia al crecimiento de tipo alométrico donde el valor de b≠3 (que las

partes del pez no crecen proporcionalmente) (Mena, 2002; Santos 2006;

Sparre, 1997). Esté tipo de crecimiento isométrico coincide con estudios

hechos con la tilapia híbrida O. niloticus x O. aureus por Gómez-Ponce et al

(2010) donde obtuvo un valor de la pendiente b de 2.98.

Figura 13: Ecuación de la curva de crecimiento de relación longitud-peso de la

tilapia roja variedad Cubana de una muestra al azar de 17 organismos del

cultivo de engorda.

Figura 14: Ecuación de la curva de crecimiento de relación longitud-peso de la

tilapia roja variedad Pargo-UNAM de una muestra al azar de 13 organismos del

cultivo de engorda.

VIII. CONCLUSIÓN

De los resultados obtenidos, se puede inferir que bajo las condiciones en que

se realizaron los estudios descritos, las especies de tilapia roja hibrida

ensayadas (variedad Cubana (O. mossambicus X O. aureus) y variedad Pargo-

UNAM (tilapia roja variedad Florida (O. urolepis hornorum X O. mossambicus)

X O. niloticus X tilapia Rocky Mountain (O. niloticus X O. aureus)) desarrollan

mecanismos fisiológicos de adaptación, al ser transferida paulatinamente del

agua dulce al agua marina, que les permite en esta etapa adaptarse y crecer

con una supervivencia del 100%, con organismos con pesos promedio

cercanos o mayores a los 5 g. Los resultados de crecimiento durante la etapa

de engorda nos muestran que posible cultivar organismos sin reversión sexual,

obteniendo datos de producción semejante, con la ventaja que se puede omitir

el periodo de reversión sexual después de la eclosión de los alevines, con la

consecuente optimización de tiempo y agua dulce. Con los tiempos ensayados,

no se llego a encontrar estadísticamente un efecto de la densidad sobre el

crecimiento, sin embargo se observó un ligera disminución del crecimiento en

el cultivo con mayor densidad, que es posible compensar aumentado el tiempo

de engorda, para obtener producciones mayores. Se demuestra la viabilidad de

cultivar los híbridos variedad Cubana y variedad Pargo-UNAM en jaulas

flotantes en zonas costeras en condiciones de agua marina. Sin embargo, es

necesario continuar evaluando el comportamiento del crecimiento,

supervivencia y densidad óptima de la tilapia roja bajo el mismo sistema de

cultivo durante un ciclo completo hasta obtener tamaños comerciales de 400 a

500 g.

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CRECIMIENTO Y SUPERVIVENCIA DE TILAPIA ROJA HÍBRIDA (Oreochromis spp.) CULTIVADA EN JAULAS...

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