微生物与环境检测实验 —— 多管发酵法测量水中大肠菌群

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微生物与环境检测实验 —— 多管发酵法测量水中大肠菌群. 一、目的要求 1 、 学习测定水中大肠菌群数量的多管发酵法 2 、 了解大肠菌群的数量在饮水中的重要性. 若水源被粪便污染,则有可能也被肠道病原菌污染,然而肠道病原菌在水中 易死亡、易变异,数量少,难检测 ,这就要找到一个合适的指示菌,此指示菌要求是: 粪便中大量出的非病原茵,易检出 。 最广泛应用的指示菌是大肠菌群,其特点: 好氧和兼性厌氧; 革兰氏阴性; 无芽胞的杆状细菌; 在乳糖培养基中 37℃ 培养 24 ~ 48h 能产酸产气。 我国规定每升自来水中≤ 3 个; - PowerPoint PPT Presentation

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微生物与环境检测实验——多管发酵法测量水中大肠菌群

一、目的要求

1 、学习测定水中大肠菌群数量的多管发酵法

2 、了解大肠菌群的数量在饮水中的重要性

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二、基本原理 若水源被粪便污染,则有可能也被肠道病原菌污染,然而肠道病原菌在水中易死亡、易变异,数量少,难检测,这就要找到一个合适的指示菌,此指示菌要求是:粪便中大量出的非病原茵,易检出。 最广泛应用的指示菌是大肠菌群,其特点: 好氧和兼性厌氧; 革兰氏阴性; 无芽胞的杆状细菌; 在乳糖培养基中 37℃ 培养 24 ~ 48h 能产酸产气。我国规定每升自来水中≤ 3 个;加氯消毒即供饮用水的水源水≤ 1 000 个;净化及加氯消毒后供饮用水的水源水≤ 10 000 个。

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检查大肠菌群的方法有多管发酵法与滤膜法两种。多管发酵法又称水的标准分析方法,为我国大多数卫生单位与水厂所采用。多管发酵法包括:初步发酵试验、平板分离和复发酵试验三个部分。

1 .初步发酵试验利用大肠菌群能发酵乳酸而产酸产气的原理来检测。乳糖能起选择作用;德汉氏小管收集产生的气体;溴甲酚紫作为 pH 指示剂,产酸后即由紫色变为黄色。溴甲酚紫还有抑制其他细菌如芽胞菌生长的作用。

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1 、平板分离 平板分离使用 EMB( 伊红美蓝琼脂培养基 ) 。大肠菌群

发酵造成酸性环境时, EMB 中伊红与美蓝作为指示剂,结合成复合物,使大肠菌群产生带核心的、有金属光泽的深紫色 ( 龙胆紫 ) 菌落。初发酵管 24h 内产酸产气和 48h产酸产气的均需在以上平板上划成分离菌落。

2 、复发酵实验 以上大肠菌群阳性的菌落的,再通过与第一步相同的原

理来进一步确认。

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1 、培养基: 乳糖蛋白胨发酵管 ( 内有倒置小套管 ) , 三倍浓缩乳糖蛋白胨发酵管 ( 内有倒置小套管 ) , 伊红美蓝琼脂平板,灭菌水。 2 、仪 器:干热灭菌锅,高压蒸汽灭菌锅,洁净工

作台,培养箱,灭菌吸管,灭菌试管,培养皿,灭菌三角瓶。

三、实验器材

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四.操作步骤

1 .培养基配置 (1) .乳糖蛋白胨培养液: 蛋白胨 10g 牛肉膏 3g 乳糖 5g NaCl 5g 蒸馏水 1000ml 调 pH 至 7.2 ~ 7.4 1.6 %溴甲酚紫乙醇溶液 1ml充分混匀,分装于有小倒管的试管中。 115℃ 灭菌 20min 。 (2) .三倍浓缩乳糖蛋白胨培养液具体配置方法同上,除水以外每组分量为原来 3 倍。

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(3) .伊红美蓝培养基: (EMB 培养基 ) 称取伊红美蓝琼脂干粉 35g ,加热溶化溶解于 100

0ml 水中, 116℃ 灭菌 30min 。灭菌后,冷却至 60℃ 左右时倒平板备用。

每升中含以下成分:蛋白胨 10g 乳糖 10g 磷酸氢二钾 2g 2% 伊红水溶液 20ml 0.65% 美蓝水溶液 10ml 琼脂 15g

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2 .自来水检查 (1) .水样的采取:火焰烧灼水龙头 3min 灭菌,放水 5

min 后,以灭菌三角烧瓶接取水样,待分析。 (2) .初发酵试验:在 2 个含有 50ml 三倍浓缩的乳糖

蛋白胨发酵烧瓶中,各加入 100ml 水样。在 10 支含有 5ml 三倍浓缩乳糖蛋白胨发酵管中,各加入 10ml水样。混匀后, 37℃ 培养 24h 。 24h 未产气的继续培养至 48h 。

(3) .平板分离:经 24h 培养后,将产酸产气及 48h 产酸产气的发酵管 ( 瓶 ) ,分别划线接种于伊红美蓝琼脂干板上。再于 37℃ 下培养 18 ~ 24h ,将符合下列特征的菌落的一小部分,进行涂片。革兰氏染色,镜检。

① .深紫黑色、有金属光泽 ② .紫黑色、不带或略带金眉光泽 ③ .淡紫红色、中心颜色较深

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(4) .复发酵试验:经涂片、染色、镜检,如为革兰氏阴性无芽抱杆菌,则挑取该菌落的另一部分。重新接种于普通浓度的乳糖蛋白胨发酵管中,每管可接种来自同一初发酵管的同类型菌落 1 ~ 3 个, 37℃ 培养 24h ,结果若产酸又产气,即证实有大肠菌群存在。

证实有大肠菌群存在后,再根据初发酵试验的阳性管( 瓶 ) 数查表 2.3 ,即得大肠菌群数。

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3 .池水.河水或湖水等的检查 (1) .水样的采取:取距水面 10 ~ 15cm 的深层水样,先将灭

菌的带玻璃塞瓶瓶口向下浸入,然后翻转过来,除塞后盛满水样,再从水中取出,即得所测水样。须及时检测,否则应放入后冰箱中保存。

(2) .初发酵试验 ① .将水样稀释成 10-1 、 10-2 。 ② .分别吸取 1ml 10-1 、 10-2 的稀释水样和 1ml 原水样各注

入装有 10ml 普通浓度乳糖蛋白胨发酵管中,另取 10ml 和 100ml 原水样,分别注入装有 5ml 和 50ml 三倍浓缩乳糖蛋白胨发酵管中。

③ .混匀, 37℃ 培养 24h ,观察细菌产酸产气情况。 (3) .平板分离实验 将产酸产气 ( 阳性 ) 发酵管分别接种于 EMB 上, 37℃ 下培养 1

8 ~ 24h ,观察是否为阳性菌落。 (4) .复发酵实验:(同上),查表 2-4 , 2-5 。

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五.实验结果1 .自来水 100 ml 水样的阳性管数是多少? 10 ml水样的阳性管数是多少 ? 查表- 2.1 得每升水样中大肠菌群数是多少 ?

2 .池水、河水或湖水 阳性结果记“ +” ,阴性结果记“ -” 。水样管溶液 /ml

现象发酵结果

初发酵 平板分离 复发酵

100

10

1

10-1

10-2

查表- 2.2 得每升水样中大肠菌群数是多少 ?查表- 2.3 得每升水样中大肠菌群数是多少 ?

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实验日程安排周一1 、领取器材500ml 三角瓶 ×1 (取自来水) 150ml 具塞三角瓶 × 1 (取湖水) 250ml 三角瓶 ×4 ( 1 个无菌水、 2 个自来水初发酵、 1 个湖水初

发酵)试管 × 25 ( 10 支自来水初发酵, 4 支湖水初发酵, 3 支配湖水梯

度, 8 支预留复发酵)9cm 培养皿 ×8 (预留复发酵)1ml 移液管 ×3 (配湖水梯度用)10ml 移液管 ×3 ( 1 支配培养基用, 1 支自来水, 1 支湖水)试管架 ×1记号笔 × 1

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2 、配培养基( 1 )普通浓度蛋白胨培养基 200ml 每支试管分装 10ml ,装入德汉氏小管,共 10 支。其中 3 支

湖水初发酵, 7 支预留复发酵。( 2 ) 3 倍浓度蛋白胨培养基 400ml 1> 每个 250 ml 三角瓶中分装 50ml ,装入德汉氏小管,共 3

个。其中 2 个自来水初发酵, 1 个湖水初发酵。 2 > 每支试管分装 5ml ,装入德汉氏小管,共 11 支。其中 10

支自来水初发酵, 1 支湖水初发酵。( 3 )无菌水 250ml 三角瓶中装入蒸馏水 150ml ,灭菌待用。

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3 、灭菌( 1 )干热灭菌 培养皿 ×8 1ml 移液管 ×3 10ml 移液管 ×3 500ml 三角瓶 ×1 150ml 具塞三角瓶 × 1( 2 )湿热灭菌 试管 ×25 250ml 三角瓶 ×4

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1 、采样 自来水 湖水(九曲桥)2 、接种 ( 1 )自来水 2 个 50ml 三倍培养基三角瓶中分别接 100ml 水样 10 支 5ml 三倍培养基试管中分别接 10ml 水样( 2 )湖水 1 个 50ml 三倍培养基三角瓶中接 100ml 水样 1 支 5ml 三倍培养基试管中接 10ml 水样 3 支 10ml 普通培养基试管中分别接入 10-1 稀释、 10-2 稀释、原水样各 1ml3 、培养: 37 摄氏度培养箱中培养4 、配 EMB 培养基 100ml ,装入 250ml 三角瓶中灭菌。取出后在洁净工作

台上倒入无菌培养皿中,制成 EMB 平板

周二:初发酵实验

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1 、观察 24h 初发酵实验结果,并记录产酸产气结果。未产酸产气的继续培养至 48 h 。阳性管记“ +” ,阴性管记为“ -” 。

2 、初发酵阳性管划线接种到 EMB 平板中, 37 度倒置培养。

周三:平板分离

周四:观察平板分离结果,染色,复发酵实验1 、取培养 24h 的 EMB 平板观察,挑选出具有以下特征的菌落 ① .深紫黑色、有金属光泽 ② .紫黑色、不带或略带金眉光泽 ③ .淡紫红色、中心颜色较深2 、挑取符合特征的菌落其中一小部分做革兰氏染色观察,是否为革兰氏阴性、无芽胞的杆状细菌,是则记为阳性。3 、在阳性平板中挑取涂片观察过的菌落 1-3 个接种到复发酵培养基中。

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1 、观察复发酵结果,确认阴性或者阳性。2 、查表计算出水样中大肠菌群数量。3 、清洗平板、试管等实验器材并归还。

周五:观察复发酵结果

周六个别初发酵需 48h 的观察实验结果