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Hematocrito Macro Micro

Dr Med Vet Gerardo J Larotonda

Facultad de Ciencias Veterinarias. UBA ARGENTINA

Email : lavetlab@gmail.com

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Hematocrito de Wintrobe

• Verificar que este seco el tubo de W• Aguja larga +jeringa seca• Homogenizar la sangre con edta• Cargar jeringa 1,5 cc• Llenar el tubo de W hasta la• Marca 10 • Colocar en centrífuga• Balancear con otro W• Tres lecturas iguales.A la mayor velocidad.• Leer resultado .en el tubo. En %

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Microhematocrito

• Homogenizar la muestra. • Llenar por capilaridad el tubo de vidrio en forma

horizontal.

• Mantener horizontal. • ( Gota en porta para frotis) opcional.• En forma horizontal sellar con plastilina. • Colocar vertical en plastilina hasta llevar a centrífuga• Colocar en centrífuga con sellado hacia afuera.• Centrifugar hasta tres lecturas iguales leer con el ábaco.

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Ya cargado mantener horizontal hasta obturar el fondo

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Obturar con plastilina

CENTRIFUGAR

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Luego de centrifugado se realiza la lectura

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Leer

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Lectura con el ábaco del microhematocrito

100 %

0

43%

Límite entre sangre y plastilina

Límite superior del plasma.

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Frotis de sangre

• Colocar gota de sangre homogenizada en portaobjeto, limpio y desengrasado .

• Con extensor de bordes romos extender la sangre con un ángulo de 45 Grados

• Sosteniendo ambos portas realizar el frotis con movimiento lento ( 10 segundos)

• Secar al aire agitando el frotis.

• Colorerar según técnica.

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Frotis

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Transporte de las muestras

• No refrigerar frotis !!! ( Los tubos si .!!!)

• No humedecer .

• Identificar

• Evitar que contacten los frotis ( y se peguen)

Envolver con papel o caja

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MG-Giemsa.

• 12 a 15 gotas de MG ( 1 minuto Fija ) • 12 a 15 gotas de agua destilada 3 minutos

(colorea)• Preparar Giemsa en proporción de 1 gota 1 cc

H2O. • Quitar excedente de MG y cubrir con Giemsa• Dejar actuar 20 a 30 minutos según intensidad

de coloración deseada.• Lavar, secar, leer. Con 40 X ( cubrir fina capa de

aceite de inmersion para evitar refringencia)

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May-Grunwald - Giemsa

• 12 a 15 gotas de MG

• Dejar actuar 2 minutos ( fijación)

Luego de 2 minutos agregar igual cantidad de gotas de agua destilada.

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Coloración 15 “

• Fijar con frasco “F” 5 segundos sumergir y retirar 5 veces

• Retirar el exceso de colorante con secante• Color frasco “1” 5 segundos .(rojo)• Retirar el exceso con secante.• Color frasco “2” 5 segundos, o más si se

desea más coloración basófila. (azul) • Lavar con agua corriente. • Secar .• Con aceite de inmersión en superficie leer con

40X o 100X

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Proteínas totales con refractómetroclínico.

• Verificar limpieza del instrumento.

• Con gotero colocar unos 50 ul. Entre la tapa y el prisma.

• Apretar y leer ajustando el ocular a la visión frente a fuente de luz homogénea

• Ulilizar para leer la escala SP ( proteinas totales séricas)

• Limpiar el instrumental con papel suave.

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Lectura refractómetro

SP DU

DU= UG

Linea divisoria

Campo celeste

Campo blanco

Densidad urinariaProteinas totales séricas

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Recomendación • Luego de hacer la práctica de las técnicas

anteriores, dejar limpio y ordenado el lugar asi como lo encontró al llegar.

• El material descartable debe terminar en la basura.

• El material biológico se debe descartar en el recipiente de residuos patogénicos.

• Gracias