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References  1.  Effectiveness  of  Silane-­‐Quats  Literature  lists  the  following  pathogens  that  are  killed  or  inactivated  following  application  of  Si-­‐QUAT  to  various  substrates  and  materials.  This  table  does  not  reflect  the  activity  of  Si-­‐QUAT  in  the  liquid  form.    PATHOGENS  INACTIVATED  BY  SIQUAT  APPLICATION  

 Algae  Controlled      Anabaena  cylindrica       31  Chlorella  vulgaris       29  Chlorophyta  (green)       31  Chrysophyta  (brown)     31  Cyanophyta  (blue-­‐green)   31  Gonium  species       31  Oscillatoria  borneti     24  Pleurococcus       31  Protococcus       31  Scenedesmus  quadricauda       24  Volvox  species     31        Bacteria  Controlled      Acinetobacter  calcoaceticus   6,  11,  13,  21,  25,  26  Aeromonas  hydrophilia     6,  13,  25      Bacillus  cereus       31  Bacillus  subtilis       6,  13,  25    Bacillus  typhimurium     31  Brucella  abortus       31  Brucella  canis       31  Brucella  suis       31  Burkholderia  cepacia     31  Citrobacter  diversus     6,  13,  25      Citrobacter  freundii     6,  13,  25    Clostridium  difficile  (non-­‐spore  )   31  Clostridium  perfringens     31  Corynebacterium  bovis     31  Corynebacterium  diptheriae     14,  22  Enterobacter  aerogenes   6,  11,  12,  13,  25,  26  Enterobacter  agglomerans    (I,  II)   31  Enterobacter  cloacae     6,  12,  13,  25,    Enterococcus     4  Enterococcus  faecalis     31  Escherichia  coli       4,  6,  12,  13,  14,  20,  21,  22,  25  Haemophilus  influenzae     31  Haemophilus  suis       31  Klebs-­‐Löffler  bacillus     31  Klebsiella  oxytoca     6,  11,  13,  25  Klebsiella  pneumoniae   4,  5,  6,  11,  12,  13,  20,  22,  25  Klebsiella  terrigena     29  Lactobacillus  acidopholus   14  Lactobacillus  casei       31  Legionella  pneumophila   31  Leuconostoc  lactis       31  Listeria  monocytogenes       31  

Micrococcus  species     21,  25,  26  Micrococcus  lutea     6,  13,  25  Morganella  morganii     6,  12,  13,  25  MRSA,  CA-­‐MRSA     31  Mycobacterium  smegmatis   11  Mycobacterium  tuberculosis     11  Propionibacterium  acnes     25  Proteus  mirabilis       6,  12,  13,  25  Proteus  vulgaris       6,  12,  13,  25  Pseudomonas  aeruginosa     6,  11,  12,  13,  20,  21,  22,  25  Pseudomonas  cepacia     31  Pseudomonas  fluorescens     4,  6,  12,  13,  25  Salmonella  choleraesuis   6,  11,  12,  13,  25  Salmonella  enterica       31  Salmonella  typhi     6,  11,  12,  13,  25  Salmonella  typhimurium   6,  12,  13,  14,  25,  6  Serratia  liquefaciens     6,  12,  13,  25  Serratia  marcescens     6,  12,  13,  25  Stachybotrys  chartarum   31  Staphylococcus  aureus     4,  12,  13,  20,  21,  22,  23,  25,  26,  27  Staphylococcus  epidermidis   6,  11,  12,  13,  21,  22,  25,  26  Streptococcus  faecalis   6,  11,  12,  13,  21,  22,  25  Streptococcus  mutans     6,  12,  13,  25  Streptococcus  pneumonia   14  Streptococcus  pyrogenes   6,  12,  13,  25  Vancomycin-­‐resistant  enterococci   31    Xanthomonas  campestris     6,  12,  13,  25      Fungus  Controlled    Alternaria  alternate     3  Aspergillus  flavus     6,  11  12,  13,  21,  25  Aspergillus  fumigatus       31  Aspergillus  niger     3,  6,  11  12,  13,  21,  22,  25  Aspergillus  terreus       6,  11  12,  13,  25  Aspergillus  versicolor     6,  12,  13  21,  25  Aureobasidium  pullulans   3,  6,  12,  13,  25  Bipolaris  australiensis     31  Candida  albicans     6,  11,  12,  14,  21,  25  Candida  parapsilosis       6,  12,  13,  25  Cephaldascus  fragans     31  Chaetomium  globosum   14  Cladosporium  herbarum   31  Clonostachys  rosea           31  Cryptococcus  humicola   31  Cryptococcus  laurentii   31  Dreschslera  australiensis   3  Epidermophyton  floccosum   5  Fusarium  nigrum     31  Fusarium  solani     31  Geotrichum  candidum     31  Gliocladium  roseum     31  Gliomastix  cerealis     3  lternaris  species.     31    Mariannaea  elegans     31  Microsporum  audouinii   5  Monilia  grisea     3  Mucor  sp.       31  Oospora  lactis     31  Penicillium  albicans     31  Penicillium  chrysogenum     6,  12,  13,  25  Penicillium  citrinum     31  Penicilliumn  notatum     31  Penicillium  elegans           31  

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Penicillium  funiculosum   6,  11,  12,  13,  14,  21,  25Penicillium  humicola     31  Penicillium  notatum     31  Penicillium  variabile       6,  11,  12,  13,  25  Pullularia  pullulans     31  Rhizopus  nigricans       31  Ricoderm  species     31  Stachybotrys  atra     31  Saccharomyces  cerevisiae   6,  11,  12,  13,  22,  25  Trichoderma  flavus     31  Trichosporon  mucoides   31  Trichophyton  interdigitale   21,  11  Trichophyton  mentagrophytes   6,  12,  13,  25,  5    Viruses  Controlled    Adenovirus  Type  II     2,  19,  27  Adenovirus  Type  IV     2,  19,  27  Bovine  Adenovirus  Type  I     2,  19,  27  Bovine  Adenovirus  Type  IV   2,  19,  27  Feline  pneumonitis     27  H1N1       27  H3N2       31  Herpes  Simplex  Type  I     2,  15,  19  Herpes  Simplex  Type  II   27    HIV  B       31  HIV-­‐1  (AIDS)     27    Influenza  A  (Japan)     2,  19  Influenza  A2  (Aichi)     2,  19,  27      Influenza  A2  (Hong  Kong)   2,  19      Influenza  B     2,  19    Parinfluenza  (Sendai)     27  Poliovirus       31      Reovirus  Type  I     2,  19      SARS         31  Simian  Virus  40     2,  19      Vaccinia       2,  19                  REFERENCES    

1. Abbaszadegan,  M.,  et.  al.,  J.  Envir.  Science  &  Health,  Part  A,  41:1201-­‐1210,  2006.    

2. Abbaszadegan,  M.,  et.  al.,  “Evaluation  of  Proprietary  Treated  Zeolite  in  Point  of  Use  Devices  for  Removal  of  Microorganisims”,  NSF  Water  Quality  Center,  Arizona  State  University,  Tempe,  AZ  85257;  12/03.  W.  Peterson  &  R.  Berman,  U.S.  Pat.Pending,  60/472,429  (7/2003).    

3. Avery,  Richard,  Brown,  Colin,  Martin,  Frederick,  Dwyer,  Sean,  “Production  of  Stable  Hydrolyzable  Organosilane  Solutions”;  U.S.  Pat.  5,411,585  (1995).    

4. Battice,  David,  Hale,  Michael,  “Antimicrobially  Effective  Organic  Foams  and  Methods  for  their  Preparation”;  U.S.  Pat.  4,631,297  (1986).    

5. Blank,  Lynne,  White,  William,  Gettings,  Richard,  “Method  of  Treating  Tinea  Pedis  and  Related  Dermatophytic  Infections”;  U.S.  Pat.  4,865,844  (1989).    

6. Blank,  Lynne,  White,  William,  “Antimicrobial  Rinse  Cycle  Additive”;  U.S.  Pat.  5,145,596  (1992)    

7. Dalton,  L.W.,  Chemical  &Engineering  News,  2004,  (2/16).  57-­‐61.  

8. Eudy,  William  “Organosilicon  Quaternary  Ammonium  Antimicrobial  Compounds”;  U.S.  Pat.  4,406892  (1983).    

9. Gettings,  R.L.,  AATCC,  Book  of  Papers,  1978,  p.  259    10. Gettings,  R.L.,  Triplett,  B.L.,  AATCC  Book  of  Papers,  

Natl.  Tech.  Conf.  1978.  p.  259-­‐261.    11. Gettings,  Richard,  Triplett,  Benny,  “A  New  Durable  

Antimicrobial  Finish  for  Textiles”;  Book  of  Papers,  1978,  American  Association  of  Textile  Chemists  and  Colorists  National  Technical  Conference,  pp.  259-­‐261.  Dow  Corning  Technical  Brochure;  24-­‐095-­‐85  (1985).    

12. Gettings,  Richard,  White,  William,  “Opthalmic  Fluid  Dispensing  Method”;  U.S.  Pat.  5,013,459  (1991).    

13. Higgs,  Bruce,  White,  William,“Solid  Antimicrobial”;  U.S.  Pat.  5,359,104  (1994).  This  patent  also  describes  the  method  of  antimicrobial  activity.    

14. Hsiao,  Y.,  Chinese  Pat.  Appl.,  PCT/CN98/00207  (1998)    15. I-­‐Fu  Tsao,  Wang,  Henry,  “Removal  and  Inactivation  of  

Viruses  by  a  Surface  Bonded  Quaternary  Ammonium  Chloride”,  ACS  Synp.Ser.1990,  Volume  Date  1988,  419,  pp.  250-­‐67.  Reaction  with  Lipidophilic  Viruses.    

16. Isquith,  A.J.,  et.al.,  Applied  Microbiology,  24,  859-­‐863  (1972).    

17. Katan  Tech  Third  Party  Testing  18. Kemper,  R.A.,  White,  W.C.,  Gettings,  R.L.,  Dev.  Indust.  

MicroBio.,31,  (J.  Ind.  Micro  Bio.3,)  p.237-­‐244,  (1990).    19. Klein,  M.,  DeForest,  A.,  “Principles  of  Viral  

Inactivation”,  Disinfection,  Sterilization  and  Preservation.  3rd  Ed.,  S.  Block,  Ed.,  (Lea  &Febiger,  Philadelphia,  PA)  1983,  pp.422-­‐434.    

20. Klein,  Stewart,  “3-­‐(trimethoxysilyl)propyldidecylmethyl  Ammonium  Salts  and  Method  of  Inhibiting  growth  of  Microorganisms  Therewith”;  U.S.  Pat.  4,394,378  (1983).    

21. Malek,  James,  Speir,  James,  “Method  of  Reducing  the  Number  of  Microorganisms  in  a  Media  and  a  Method  of  Preservation”;  U.S.  Pat.  4,259,103  (1981)    

22. McGee,  J.,  Malek,  J.,White,  W.,“New  Antimicrobial  Treatment  for  Carpet  Applications”,  Am.  Dyestuff  Rep.,  1983,  (6),  pp.56-­‐59.  Dow  corning  Technical  Brochure;  22-­‐994-­‐83  (1983).    

23. McGee,  J.B.,  et  .al.,  Am.  Dyestuff  Rep.,  6:  56-­‐59  (1983).    24. Peterson,  W.,  Giaccio,  D.,  Berman,  R.,  “Antimicrobial  

Skin  Preparations  Containing  Organosilane  Quaternaries”,  U.  S.  Patent  6,613,755  (9/2/03).    

25. Skin  Treatment  Method”;  U.S.  Pat.  4,908,355.(1990)    26. Tsao,  I-­‐Fu,  Wang,  Henry,  Shipman,  Charles,  

“Interaction  of  Infectious  Viral  Particles  with  a  Quaternary  Ammonium  Chloride  Surface”;  Biotechnol.  Bioeng,  34,  (5),  pp.  639-­‐46  (1989).  

27. U.S.  EPA,  Press  Release,  (5/2001)    28. UT,  (2005).    29. Westerhoff,  P.,  Bruce,  D.,  “Biocide  Coating  

Experiment”,  Arizona  State  University,  Tempe,  AZ  85257;  (2000).    

30. White,  William,  Olderman,  Jerry,  “Antimicrobial  Techniques  for  Medical  Nonwovens:  A  Case  Study”;Book  of  Papers,  1984,  12th  Annual  Nonwovens  Tech.  Symposium,  pp.  13-­‐46.  No  bacterial  adaption  (no  increased  bacterial  resistance  to  Zoonocide)  reported.

31. Katan  Technologies  Third  Party  Testing