DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 1
Diseño de un Protocolo de Bioseguridad para Adenitis y Salmonelosis en el Centro de Genética
Superior “Criadero La Marqueza”
Becerra Rueda María Carolina
Universidad de Santander
Facultad de Ciencias Naturales, Exactas y Agropecuarias
Medicina Veterinaria
Bucaramanga
2021
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 2
Diseño de un Protocolo de Bioseguridad para Adenitis y Salmonelosis en el Centro de Genética
Superior “Criadero La Marqueza”
Becerra Rueda María Carolina
Trabajo de Grado para optar el Título de Médico Veterinaria
Director del proyecto de grado
Goyeneche Patiño Diego
PhD.
Universidad de Santander
Facultad de Ciencias Exactas, Naturales y Agropecuarias
Medicina Veterinaria
Bucaramanga
2021
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DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 4
Dedicatoria
Dedico este proyecto principalmente a Dios, por darme la vida, esta familia y poner en mi
camino personas con experiencias únicas que a través de ellas fueron trazando poco a poco el
camino para formarme profesionalmente en el Médico Veterinario que seré. Por regalarme a mi
hija Gabriela, mi más grande amor quien ha sido el motor fundamental para culminar mis metas
y llegar hasta este momento, a mi padre Rodolfo por creer en mi en todo momento y apoyarme
sin desfallecer como mi mayor maestro de vida y enseñarme que ejercer en la vida profesional
desde el corazón, es vital para vivir una vida plenamente feliz, por confiar en mí y en los tiempos
de Dios.
A mi madre por darme las fuerzas necesarias para continuar y guiarme por el mejor
camino con amor y templanza. A mis hermanos que han sido ejemplo constante de sabiduría,
amor y paciencia guiándome como mis más grande tutores de vida para lograr mis metas y
alcanzar mis sueños.
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Agradecimientos
Agradezco a la Universidad de Santander UDES mi alma mater, por formarme académica
y profesionalmente en el Médico Veterinario que soñé en mi vida y compartir mi más grande
anhelo por cumplir mis sueños con dedicación, ética y constancia.
Al Centro de Genética Superior La Marqueza por abrirme sus puertas y permitirme
aprender de tan excelente equipo médico, especialmente al Dr. Jorge Hernán López Hincapié
quien con paciencia y dedicación me ratifico mil y una vez más que jamás me equivoqué al
elegir la Reproducción Equina en la práctica diaria de la Medicina Veterinaria.
A la Dra. Poliana Villa por su ayuda, apoyo y valioso aporte de conocimientos para mi
proyecto.
A mi tutor Diego Andrés Goyeneche Patiño por exigir lo mejor de mi y sacar este
proyecto adelante.
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Tabla de Contenido
Dedicatoria ...................................................................................................................................... 4
Agradecimientos ............................................................................................................................. 5
Resumen ........................................................................................................................................ 11
Abstract ......................................................................................................................................... 13
1. Problema y Justificación ........................................................................................................... 15
2. Objetivos ................................................................................................................................... 18
2.1 Objetivo General ..................................................................................................................... 18
2.2 Objetivos Específicos.............................................................................................................. 18
3. Estado del Arte .......................................................................................................................... 19
4. Marco Teórico ........................................................................................................................... 21
4.1 Bioseguridad ........................................................................................................................... 21
4.2 Elaboración un Pediluvio ........................................................................................................ 21
4.2.1 Suministros ...........................................................................................................................21
4.2.2 Instrucciones .........................................................................................................................22
4.3 Higiene de Equinos en un Hospital Veterinario ..................................................................... 22
4.4 Desinfección de Pesebreras ..................................................................................................... 23
4.5 Adenitis Equina ....................................................................................................................... 24
4.5.1 Género Streptococcus Spp. ...................................................................................................24
4.6 Salmonelosis ........................................................................................................................... 30
4.6.1 Salmonella Typhimurium .....................................................................................................30
4.6.2 Salmonella Spp. ....................................................................................................................31
4.6.3 Transmisión...........................................................................................................................32
5. Metodología .............................................................................................................................. 35
5.1 Objetivo Específico 1 .............................................................................................................. 35
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5.2 Objetivo Específico 2 .............................................................................................................. 35
5.3 Objetivo Específico 3 .............................................................................................................. 35
6. Cronograma de actividades ....................................................................................................... 36
7. Presupuesto ............................................................................................................................... 37
8. Resultados ................................................................................................................................. 38
8.1 Recolección de la Información ............................................................................................... 38
8.2 Lugar de Ejecución del Trabajo de Grado .............................................................................. 38
8.3 Análisis de los Resultados ...................................................................................................... 38
8.3.1 Las Fórmulas para tal Fin son las Siguientes: .......................................................................38
9. Discusión................................................................................................................................... 42
10. Conclusiones ........................................................................................................................... 43
Referencias Bibliográficas ............................................................................................................ 44
Apéndices ...................................................................................................................................... 49
Apéndice A. Protocolo de Bioseguridad para Streptococcus Equi y Salmonella Spp. en
elCentro de Genética Superior Criadero La Marqueza ............................................................. 49
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Lista de Figuras
Pág.
Figura 1 Ejemplo de Pediluvio Comercial ................................................................................... 21
Figura 2 Limpieza de Pesebreras. ................................................................................................. 23
Figura 3 Adenitis Equina .............................................................................................................. 24
Figura 4 Streptococcus Spp. en Tinción de Gram ........................................................................ 25
Figura 5 Secreción Mucopurulenta Producto de una Adenitis ..................................................... 26
Figura 6 Tumefacción y Edema en Región Masetera por Infarto de Gánglio Subparotídeo ........ 27
Figura 7. Diarrea Acuosa por Salmonelosis ................................................................................. 31
Figura 8 Salmonella Spp. en Tinción de Gram ............................................................................. 31
Figura 9 Hidratación y Medicación de Equino con Streptococcus. .............................................. 34
Figura 10 Charla Capacitación...................................................................................................... 41
Figura 11 Charla Capacitación...................................................................................................... 41
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 9
Lista de Tablas
Pág.
Tabla 1 Fármacos para el Tratamiento de Adenitis Equina .......................................................... 29
Tabla 2 Fármacos para el Tratamiento de Salmonelosis Equina .................................................. 33
Tabla 3 Cronograma de Actividades............................................................................................. 36
Tabla 4 Presupuesto ...................................................................................................................... 37
Tabla 5 Prevalencia de Adenitis y Salmonelosis Equina, en el Centro de Genética Superior
Criadero La Marqueza. ................................................................................................................. 39
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 10
Lista de Apéndice
Pág.
Apéndice A. Protocolo de Bioseguridad para Streptococcus Equi y Salmonella Spp. en
el Centro de Genética Superior Criadero La Marqueza ................................................................ 49
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Resumen
Título
Diseño de un Protocolo de Bioseguridad para Adenitis y Salmonelosis en el Centro de
Genética Superior “Criadero La Marqueza”.
Autor
Becerra Rueda María Carolina
Palabras Clave
Salmonelosis equina, adenitis equina, bioseguridad
Contenido
Los equinos son hospederos de una amplia gama de agentes infecciosos de origen bacteriano, los
cuales pueden tener serias implicaciones en la salud del animal, en este caso enfermedades como
adenitis equina y salmonelosis ocasionadas por las bacterias Streptococcus equi y salmonella
spp. respectivamente, las cuales son altamente transmisibles en las poblaciones, generar un curso
agudo e incluso ser resistentes a antibioticoterapia provocando problemas a nivel de salud
pública (Morales et al. 2010). La incidencia de enfermedades infecciosas en la cría de equinos es
un factor determinante, especialmente si se trata de un criadero con poblaciones numerosas; es
sabido que, en los criaderos con altas prevalencias, la población más susceptible son los potros
entre 0 y 24 meses de edad (Bustos et al. 2012).
Fue realizado un análisis estadístico para evaluar la importancia de Adenitis equina y
Salmonelosis equina en el Centro de Genética Superior Criadero La Marqueza, en el cual se
estimó la prevalencia de dichas enfermedades durante un periodo de once meses; de acuerdo a
esto fue diseñado un protocolo de bioseguridad para dichas enfermedades teniendo en cuenta las
condiciones del criadero.
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 12
Al realizar la presentación del protocolo de bioseguridad para adenitis (Streptococcus
equi) y salmonella (Salmonella tiphymuruium) en el centro de genética superior se encontró que
una de las principales fuentes de transmisión de las enfermedades es a causa de las bajas medidas
de bioseguridad y el éxito en la disminución de los porcentajes de morbilidad y mortalidad está
directamente relacionado a la estricta aplicación de protocolos de bioseguridad.
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 13
Abstract
Title
Design of a biosafety protocol for adenitis and salmonellosis in the "La Marqueza"
hatchery superior genetics center
Authors
Becerra Rueda Maria Carolina
Key Words
Equine salmonellosis, equine adenitis, biosecurity
Content
Horses are hosts to a wide range of infectious agents of bacterial origin, which can have serious
implications on the health of the animal, in this case diseases such as equine adenitis and
salmonellosis caused by the bacteria Streptococcus equi and salmonella spp. respectively, which
are highly transmissible in populations, generate an acute course and even be resistant to
antibiotic therapy causing problems at the public health level (Morales et al. 2010). The
incidence of infectious diseases in horse breeding is a determining factor, especially if it is a
farm with large populations; it is known that, in high prevalence hatcheries, the most susceptible
population are foals between 0 and 24 months of age (Bustos et al. 2012).
A statistical analysis was carried out to evaluate the importance of equine adenitis and
equine salmonellosis at the La Marqueza Criadero Superior Genetics Center, in which the
prevalence of the aforementioned diseases was estimated during a period of one month;
According to this, a biosecurity protocol was designed for these diseases, taking into account the
conditions of the hatchery.
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 14
When presenting the biosafety protocol for adenitis (Streptococcus equi) and salmonella
(Salmonella tiphymuruium) at the higher genetics center, it was found that one of the main
sources of disease transmission is due to low biosecurity measures and Success in reducing
morbidity and mortality rates is directly related to the strict application of biosafety protocols.
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 15
1. Problema y Justificación
La incidencia de enfermedades infecciosas en la cría de equinos es un factor
determinante, especialmente si se trata de un criadero con poblaciones numerosas como es el
caso del centro de genética superior criadero La Marqueza. En estos casos el riesgo de infección
es mayor, lo cual se deriva en aumento del número de enfermos, y por ende en pérdidas
económicas debido a la necesidad de instaurar tratamientos, a la ocurrencia de muertes (Coffman
et al. 2008). Enfermedades como adenitis equina y Salmonelosis ocasionadas por las bacterias
Streptococcus equi y salmonella spp. respectivamente. Si bien estas infecciones presentan
prevalencias variadas en criaderos a nivel mundial (Bustos et al. 2012; Fielding et al. 2013;
Chipangura et al. 2017), es sabido que, en los criaderos con altas prevalencias, la población más
susceptible son los potros (entre 0 y 24 meses de edad) (Bustos et al. 2012).
Los equinos son hospederos de una amplia gama de agentes infecciosos de origen
bacteriano, los cuales pueden tener serias implicaciones en la salud del animal, pero sobre todo
de las poblaciones por ser altamente transmisibles, de curso agudo, e incluso resistente a
antibioticoterapia, lo cual es en la actualidad además es una gran dificultad en salud pública
(Morales et al. 2010). Debido a esto, una estrategia que ha mostrado buenos resultados es la
aplicación de conceptos de la medicina preventiva que en este caso serían medidas de
bioseguridad dirigidas a la población, especialmente en producciones con elevadas densidades
poblacionales, dado que la diseminación de un agente infeccioso se realiza con mayor rapidez y
las secuelas pueden ser mayores (Burgess et al. 2014). La adenitis equina es una enfermedad de
curso agudo o subagudo caracterizada por producir linfadenitis purulenta del tracto respiratorio
anterior de equinos (Bustos et al. 2012), mientras la salmonelosis es una de las infecciones más
común en los animales domésticos, y los animales jóvenes y los gestantes son especialmente
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 16
susceptibles; la manifestación clínica más común es una gastroenteritis, que a menudo se
manifiesta con diarrea sanguinolenta y acuosa acompañada de fiebre (Turki et al 2017). Otras
posibles implicaciones de las infecciones por S. equi y Salmonella typhimurium son retrasos en
el crecimiento de potros, desarrollo de síndrome de mala absorción, así como deficiente
desempeño reproductivo y deportivo (Uzal et al.2015; Neish. 2004; Bustos. et al.2012).
S. equi y Salmonella typhimurium pueden transmitirse a través de las heces, aerosoles y
fómites durante la manipulación del animal (Chandra. 2018). Por esta razón, la implementación
de prácticas de bioseguridad es un factor fundamental para limitar y disminuir el contagio y
propagación de los agentes infecciosos, mejorando la salud poblacional y disminuyendo las
pérdidas económicas causadas por los contagios. Esto se logra mediante el diseño y aplicación de
protocolos de bioseguridad de acuerdo a las condiciones medioambientales y de infraestructura
propias de la producción en la cual se desea poner en práctica (Burgess et al. 2014). Para este
caso en particular, el criadero La Marqueza ubicado en Tenjo-Cundinamarca, que por su
ubicación geográfica presenta condiciones ambientales particulares de temperatura (8 y 24 ºC) y
humedad relativa (60%) las cuales podrían favorecer las infecciones bacterianas. Adicionalmente
este criadero cuenta con una población numerosa de equinos correspondiente a 300 equinos de
diferentes edades e incluso atiende cerca de ocho partos mensuales; sumado a esto los animales
que se crían en este lugar permanecen hasta cierto punto en potrero y son de alto valor
económico, por lo cual la afectación de estos animales puede significar costos muy elevados para
el propietario y el criadero.
Teniendo en cuenta lo anteriormente expuesto se hace evidente la necesidad de diseñar e
implementar un protocolo de bioseguridad para el centro de genética superior criadero La
Marqueza, que permite establecer diferentes barreras y estrategias de prevención de transmisión
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 17
de Streptococcus equi. y Salmonella typhymurium. en los animales de este criadero, dado que la
implementación de un protocolo de bioseguridad para estas enfermedades especificas disminuye
la morbilidad y por tanto los costos asociados al tratamiento de salmonelosis y adenitis, también
disminuye las pérdidas económicas asociadas al retraso de crecimiento e insuficiente desarrollo
en potros y deficiencias reproductivas de las yeguas y padrillos, teniendo en cuenta que ésta es
una producción equina es de alta importancia disminuir las perdidas en producción para mejorar
la relación beneficio/ costo; por tanto contar con un protocolo de bioseguridad diseñado para el
centro de genética superior criadero la Marqueza mejora la calidad en el proceso productivo y
fortalece la sanidad de los ejemplares equinos. Esta inquietud surge de la observación personal
durante mi práctica empresarial, pero además de la experiencia empírica del propietario del
criadero quien ha venido observando una alta prevalencia e impacto en los animales a su cargo.
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 18
2. Objetivos
2.1 Objetivo General
Diseñar un protocolo de bioseguridad para Adenitis equina y salmonelosis equina dirigido
a equinos del centro de genética superior criadero La Marqueza.
2.2 Objetivos Específicos
1. Estimar la prevalencia de Adenitis equina y Salmonelosis equina en centro de genética
superior criadero La Marqueza
2. Diseñar protocolos bioseguros basados en la información obtenida a base de registros
y datos anamnésicos.
3. Capacitar al personal para el seguimiento de procesos sanitarios que disminuyan la
prevalencia de enfermedades infectocontagiosas presentes.
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 19
3. Estado del Arte
La Universidad Autónoma del Estado de México creó un manual de bioseguridad para el
hospital veterinario de grandes animales el cual va enfocado tanto para personal veterinario y
como para los pacientes en cuestión, éste indica que en todos los lugares que se realicen labores
veterinarias se pueden aplicar procesos de bioseguridad , de modo que interviene cada actor en
los procesos de bioseguridad, refleja los riesgos más comunes para el personal y para los
pacientes, también menciona el abordaje preventivo y correctivo para cada situación
respectivamente, tales como desinfección del personal, lugares, instrumentos de trabajo,
disposición de cadáveres, eliminación de residuos de riesgo biológico.
El Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria de Argentina diseño un Manual de
normas básicas de bioseguridad de una granja avícola, este describe una serie de medidas
mínimas de bioseguridad para ser implementadas en las explotaciones avícolas el cual ayuda a
evitar que los agentes causales de enfermedades aviares (virus, hongos y bacterias) ingresen a la
granja y poder así garantizar la sanidad poblacional de las aves y obtener productos de mayor
calidad.
Los centros académicos, University of California Davis y Michigan State University han
estructurado un Programa de control de mastitis para vacas lecheras infectadas con Streptococcus
agalactiae, el cual analiza los puntos críticos de control, establecimiento del agente causal en la
producción lechera, formas de transmisión, severidad del impacto, indicadores de la presencia de
S. agalactiae y medidas de prevención y control según la severidad del caso (Kirk., y
Mellenberge. 2019).
En su código sanitario para el 2019 la OIE, presenta un capítulo sobre la prevención y
control de salmonella en los sistemas comerciales de producción de cerdos, en este se aborda
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 20
diferentes aspectos para prevenir y controlar la Salmonelosis en una granja porcina, como son las
medidas sanitarias al ingresar a las instalaciones, al ingresar animales nuevos, al cambiar
animales de corral, almacenamiento y composición de alimentos, suministro de agua,
estabulación, transporte, para cortar el ciclo epidemiológico y evitar la diseminación de la
bacteria Salmonella spp. disminuyendo el impacto económico derivado del tratamiento y,
disminución de la ganancia de peso, (OIE, 2019).
La Universidad de Buenos Aires creó un protocolo de bioseguridad para el hospital
escuela en el área de equinos el cual se dirige tanto al manejo y medidas de seguridad que debe
tener estudiantes, docentes y operarios con los equinos, como las medidas preventivas para evitar
transmisión de enfermedades para los pacientes dentro del hospital, especifica como se debe
realizar desinfección del área quirúrgica, preparación de pacientes en el área prequirúrgica,
limpieza de las caballerizas, bebederos y comederos, de este modo disminuir la presentación de
enfermedades nosocomiales.
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 21
4. Marco Teórico
4.1 Bioseguridad
“Bioseguridad es la implementación de medidas que reducen el riesgo de introducción
(bioexc lusión) y diseminación de agentes infecciosos (biocontención); se requiere la
adopción de un conjunto de actitudes y comportamientos por las personas para reducir el
riesgo en todas las actividades relacionadas con los animales domésticos, salvajes,
exóticos, aves silvestres y sus derivados” (OIE, 2008).
4.2 Elaboración un Pediluvio
Un baño de pies permite a las personas desinfectar sus zapatos mientras se limpian a
través de una estera cubierta con desinfectante (Figura 1).
Figura 1
Ejemplo de Pediluvio Comercial
Nota. Tomado de IDS France (s.f.) 35 pediluvio Recuperado de: https://www.ids-
france.net/es/diversos/35-pediluvio.html )
4.2.1 Suministros.
1. Una bandeja o recipiente bajo de plástico, lo suficientemente amplia como para que
quepa el pie de un adulto y lo suficientemente profunda para que entre fácilmente.
2. Un tapete (el tapete de “césped falso” funcionan bien).
3. Balde para mezclar
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 22
4. Un desinfectante eficaz para la mayoría de las situaciones, tal como o cloro al
0,1%, hipoclorito al 0,5%, yodo al 0,1%.
4.2.1.1 Preparación. Cloro al 0.1%: Diluir 1 ml de cloro al 10% en 1000 ml de agua.
Hipoclorito 0,5%: Diluir 100 ml de hipoclorito en 1000 ml de agua.
Yodo al 0.1%: diluir 4 ml de yodo al 2,5% en 1000 ml de agua.
5. Agua.
4.2.2 Instrucciones
1. En el recipiente, mezcle el desinfectante con agua de acuerdo con las instrucciones de
la etiqueta.
2. Poner el tapete en el recipiente de plástico.
3. Agregar el desinfectante al recipiente, suficiente para cubrir la estera.
4. Todo visitante debe caminar a través del baño de pies, limpiándose los pies en la
alfombra. Cuando el líquido desinfectante este sucio, vacíe el recipiente y rellene con la mezcla
desinfectante. Las soluciones de los pediluvios serán cambiadas cada mañana por el personal
técnico.
4.3 Higiene de Equinos en un Hospital Veterinario
Respecto a la higiene básica que se debe tener en cuenta para disminuir la probabilidad
de infección es de alta importancia que los pacientes del HCVC estén estabulados en una
pesebrera apropiada. Cada que va a ingresar un caballo a una pesebrera esta se debe asear,
remover la cama antigua y desinfectar, diariamente se debe limpiar los pasillos y pesebreras. En
el manejo de neonatos se debe extremar la asepsia, remover inmediatamente heces y orina de la
cama, evitar la humedad en todo momento.
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 23
Bebederos y comederos deben mantener limpios y desinfectados, cada que ingresa un
caballo nuevo a la pesebrera se debe verificar el estado de los bebederos, y/o poner a disposición
agua fresca y limpia. Hay que limpiar con frecuencia los comederos y tener prioridad al
momento de cambio de paciente y desinfectarlos. Cuando un caballo no consume el alimento se
debe avisar al clínico y retirar el alimento. Los caballos deben permanecer limpios, peinados (por
lo menos una vez al día) cascos limpios, camas sin secreciones ni excreciones. El ambiente que
rodea a la pesebrera del caballo debe estar limpio y ordenado. Sin medicamentos o material
alrededor, ni restos de cama por pasillos (Bioseguridad equina - normas básicas y procedimientos
operativos).
4.4 Desinfección de Pesebreras
Se ha de eliminar toda la cama y las heces antes de la desinfección, pues la materia
orgánica inactiva gran cantidad de desinfectantes. En la limpieza se debe evitar rociar agua se
usa manguera para no crear aerosoles (Bioseguridad equina - normas básicas y procedimientos
operativos).
Figura 2
Limpieza de Pesebreras
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 24
4.5 Adenitis Equina
La adenitis equina es una enfermedad infectocontagiosa que afecta principalmente vías
respiratorias superiores en equinos, su agente causal es Streptococcus equi subsp. equi, un coco
grampositivo, β hemolítico (Bustos, et al.2012), anaerobio facultativo, formador de colonias
mucoides en agar sangre. S. equi es catalasa negativa, sensible a la luz solar, desecación y a la
mayoría de los desinfectantes (Barrandeguy & Carossino 2017).
Figura 3
Adenitis Equina
4.5.1 Género Streptococcus Spp.
Los Streptococcus son bacterias Gram positivas son capaces de sobrevivir durante
semanas en el pus seco, tiene susceptibilidad a temperaturas altas entre 55 y 60 grados
centígrados. Por lo general los Streptococcus spp. se transmiten por inhalación o por ingestión,
transmisión sexual, o indirectamente por manos o fómites.
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 25
Figura 4
Streptococcus Spp. en Tinción de Gram
Nota. Tomado de CDC Public Health Library (PHIL)
S. equi presenta diversos factores de virulencia que facilita la colonización bacteriana y
son responsables de su patogenicidad, receptores Fc, incluyendo una cápsula anti-fagocítica,
enzimas que degradan la matriz extracelular, y endopeptidasas IgG-específicas que degradan IgG
los cuales evitan su unión al microorganismo, exotoxinas pirogénicas, y la proteína M (SeM), la
cual posee propiedades antifagocíticas (Barrandeguy & Carossino, 2017). La infección por S.
equi es endémica en la población de équidos en todo el mundo, y su incidencia es elevada,
aunque no se ha cuantificado, es poca la presentación en animales adultos, tal vez sea por haber
superado alguna epizootia y poseer cierta inmunidad (Nachon & Bosisio, 2005).
4.5.1.1 Transmisión. Puede ser transmitida de forma directa (contacto con ejemplares
infectocontagiosos) o indirecta a través del contacto con secreciones mucopurulentas de caballos
infectados (Barrandeguy & Carossino, 2017). S. equi. coloniza las criptas y epitelio asociado a
glándulas linfoides de las tonsilas, luego se movilizan a linfonódos submandibulares y
retrofaríngeos los cuales drenan linfa de la zona faríngea y tonsilas, también se conoce que puede
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 26
presentar diseminación bacteriana por vía hematógena y/o linfática (Barrandeguy, & Carossino,
2017); Según Nachon & Bosisio para el 2005 la adenitis equina tiene una tasa de morbilidad del
70%.
Figura 5.
Secreción Mucopurulenta Producto de una Adenitis
Tomado de: Equisan (s.f.) Linfoadenopatias Recuperado de:
http://www.equisan.com/images/pdf/linfoadenopatias.pdf)
4.5.1.2 Cuadro Clínico. La sintomatología característica inicia con una secreción serosa
por los ollares y con tos, poco o nulo consumo de alimento y agua, cuadro depresión general,
posteriormente se observa la mucosa nasal congestiva con descargas que se vuelven seromucosas
y más tarde mucopurulentas, la temperatura corporal asciende a 39-41°C (Nachon & Bosisio,
2005). El periodo de latencia para la excreción de S. equi a través de secreciones nasales se inicia
luego de un período de latencia de 4 a 14 días, se puede extender por 3 a 7 semanas posteriores a
la resolución de los signos clínicos (Barrandeguy & Carossino, 2017). S. equi tiene la capacidad
de persistir en las bolsas guturales en un 10% de los animales infectados durante meses o años
(portadores subclínicos), los cuales continúan excretando S. equi en secreciones nasales de modo
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 27
intermitente sin presentar signos clínicos o presentando tos esporádica y descarga nasal unilateral
intermitente asociada al desarrollo de empiema crónico de bolsas guturales y formación de
condroides (Arias, 2013). De este modo, los portadores cumplen un importante rol en la
persistencia de S. equi en las poblaciones equinas (Barrandeguy & Carossino, 2017).
Figura 6.
Tumefacción y Edema en Región Masetera por Infarto de Gánglio Subparotídeo
Tomado de: Equisan (s.f.) Linfoadenopatias Recuperado de:
http://www.equisan.com/images/pdf/linfoadenopatias.pdf)
La adenitis equina es caracteriza por un proceso agudo de hipertermia luego del periodo
de incubación, seguida por signos en las vías respiratorias altas con descarga nasal
mucopurulenta y linfadenitis aguda principalmente en los linfondos submandibulares y
retrofaríngeos que progresa a purulenta, posterior abscedación y fistulización (Barrandeguy &
Carossino, 2017). Dicha linfadenitis puede ocasionar la compresión de la faringe, laringe,
tráquea y esófago provocando disnea, estridor y disfagia y en casos graves muerte por asfixia.
Las metástasis (gurma bastarda) conlleva a caquexia de grave pronóstico, con leucocitosis y
anemia marcada (Bustos, et al. 2017). El 5% de los casos complicados terminan con la muerte
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 28
(Nachon & Bosisio, 2005). Los linfonódos retrofaríngeos se pueden fistulizar y drenar el
material purulento hacia las bolsas guturales. Con el diagnóstico clínico es suficiente para
instaurar un tratamiento temprano, el diagnóstico de laboratorio permite la confirmación del
agente etiológico y resulta críticamente importante en la identificación de animales portadores de
S. equi en las bolsas guturales (Bustos, et al. 2012). El cultivo de S. equi o su detección por
medio de métodos moleculares se realiza por medio de hisopados o lavados nasales, material
purulento aspirado de abscesos sin fistulizar, y lavados de bolsas guturales (Bustos, et al. 2012).
4.5.1.3 Tratamiento. En cuanto al tratamiento, tras la ocurrencia de brotes, los casos sin
complicaciones y que se encuentran en los estadios iniciales de la enfermedad pueden ser
sometidos a antibioterapia (penicilina) con excelentes resultados (Bustos, et al. 2017). En los
casos de abscedación el tratamiento tiene como objetivo estimular la maduración y ruptura del
absceso mediante la aplicación de compresas y/o cremas calientes; se recomienda la intervención
quirúrgica (drenaje) si estos no drenan espontáneamente (Barrandeguy & Carossino, 2017). Para
aplacar el dolor y los edemas causados por los abscesos y la faringitis, se usan analgésicos
antiinflamatorios no esteroides y diuréticos, respectivamente. El tratamiento se complementa con
soluciones cristaloides en casos de anorexia. Puede ser necesario realizar una traqueotomía de
urgencia ante casos de disnea manifiesta con evidentes cuadros de asfixia (Nachon & Bosisio,
2005).
Durante los brotes, es fundamental tener aislados y tratados a todos los equinos afectados
de Adenitis (Bustos, 2017). En áreas enzoóticas, todo animal que ingresa nuevo a un
establecimiento debe tener un periodo de cuarentena de 30 días (Barrandeguy & Carossino,
2017). Es importante evitar el hacinamiento y no juntar equinos jóvenes de distintos
establecimientos hasta asegurarse que no hay peligro de contagio (Bustos, 2017).
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 29
La penicilina es considerada en general el fármaco de elección en la enfermedad,
estreptocócica no neumocócica, (Cole, 2015) y los fármacos alternativos se eligen en función de
la facilidad de administración o el lugar de la infección. Entre los demás antibióticos efectivos se
incluyen las cefalosporinas y los macrólidos (Smith, 2010).
Los Streptococcus spp. son sensibles a las penicilinas, cefalosporinas, eritromicina,
cloranfenicol y a las sulfas, (Cortés, 2007). A diferencia de lo dicho por otros autores el uso de
quimioterápicos antes de la maduración es lo indicado puesto que acelera la curación y no
predispone a que la enfermedad se complique (Nachon & Bosisio, 2005). No sin antes tener en
cuenta que hay que evaluar cada caso en particular antes de decidir algún tratamiento.
Algunos fármacos indicados para el tratamiento de adenitis:
Tabla 1
Fármacos para el Tratamiento de Adenitis Equina
Farmaco Posologia
Flunixin meglumine 1.1 mg/kg IV C/12-24horas
Penicilina G sodia- potasica 20-40 millUI/kg IV C/6 horas
Fenilbutazona 2-4 mg/kg IV
furosemida 2-4 mg/Kg IV
oxitetraciclina 10 mg/Kg IM
Ketoprofeno 2.2 mg/Kg IV C/24 horas
4.5.1.4 Control y Prevención. En el control y la prevención de brotes de adenitis equina
los elementos fundamentales son: extremar las medidas de higiene en los lugares que ocupa el
paciente, para controlar la infección por S. equi en gran medida depende de los factores de
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 30
bioseguridad, la vacunación, asepsia, aislamiento y monitoreo de animales que llegan nuevos y
dado el caso realizar los tratamientos respectivos; las instalaciones, tanto bebederos, comederos y
demás deben ser rigurosamente desinfectados diariamente. Ante el riesgo ocasionado por las
secreciones infecciosas en la cama es pertinente incinerarla para cortar el ciclo epidemiológico y
evitar más contagios (Nachon & Bosisio, 2005).
4.6 Salmonelosis
La salmonelosis es una enfermedad infecciosa de origen bacteriano, cuyo agente causal
es Salmonella spp., su afección principal es a nivel gastroentérico, pudiendo evolucionar
sistémicamente (Bao, et al.2020). Además, es una enfermedad zoonótica responsable de
alrededor de un millón de casos en humanos al año (Hernández, et al. 2014).
4.6.1 Salmonella Typhimurium.
Salmonella typhimurium es la principal especie de Salmonella que afecta a equinos
especialmente a potros menores de seis meses de edad, es un patógeno de curso agudo, causa
artritis séptica, fiebre, abdomen agudo y deshidratación y puede llegar a presentar cuadros de
neumonía. Tiene un período de incubación de 12 a 24 horas su pronostico es reservado a grave
su profilaxis se basa en el aislamiento de potros afectados e incineración de sus camas ya que su
propagación es rápida y puede llegara a efector el resto de animales en una población. (Nachon
& Bosisio, 2005).
Los serotipos de Salmonella causantes de enterocilitis en equinos son: Salmonella
enterica subespecies enterica serovar typhimurium, serovar enteritidis, serovar krefeld, serovar
saint-paul, serovar anatum, serovar newport y serovar infantis (Toro, 2016).
En la Enterocolitis Bacteriana los principales afectados son potros de 6 meses en los
cuales se puede presentar en conjunto con septicemia (Nachon & Bosisio, 2005), el patógeno
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 31
puede ingresar al potro sea por contacto con la ubre contamina de excretas, o por el consumo de
heces.
Figura 7
Diarrea Acuosa por Salmonelosis
KNota. Tomado de Equisan (s.f.) Linfoadenopatias Recuperado de:
http://www.equisan.com/images/pdf/linfoadenopatias.pdf
4.6.2 Salmonella Spp.
La Salmonella spp. es un patógeno intracelular anaerobio, gramnegativo, facultativo
(Neish, 2004), oportunista, hace parte del microbiota propia de intestino delgado, ciego y colon
de vertebrados (Burgues, et al, 2014). La Salmonella spp. Puede ocasionar abortos en preñeces
avanzadas, enteritis y artritis en potros (Colville & Berryhill, 200?).
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 32
Figura 8.
Salmonella Spp. en Tinción de Gram
Nota. Tomado de CDC Public Health Library (PHIL)
4.6.3 Transmisión.
La transmisión se da principalmente por el consumo de alimentos contaminados (Turki,
et al.2017), también por contacto con animales que excretan Salmonella (Stewart, 2013), la
excreción de Salmonella spp. en los equinos sanos se da principalmente en condiciones de estrés
(transporte, cambios de dieta, cambios de pesebrera) y se puede desencadenar en colitis (Taintor,
et al. 2014).
4.6.3.1 Disentería y Abdomen Agudo. La disentería tiene manifestaciones clínicas en
potros neonatos dado que son animales más susceptibles (Burgess, 2014), se caracteriza por
presentar depresión, mucho tiempo acostados y baja frecuencia al mamar, heces liquidas de olor
fétido, deshidratación acelerada y marcada, mucosas congestivas (Nachon & Bosisio, 2005).
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 33
Temperatura entre 39,5 -40,5°C (Stewart, 2013), en corto tiempo puede evolucionar a
septicemia y desencadenar en la muerte (CFSPH, 2005).
4.6.3.2 Tratamiento. El tratamiento debe iniciar primariamente con la reposición de
líquidos, dada la característica de eliminación profusa de fluidos que presenta la enfermedad
(Stewart, 2013), a medida que se restablece la volemia se debe suministrar antibióticos para
neutralizar el patógeno, uno de los antibióticos de elección es la amikacina (Cortés, 2007).
Algunos fármacos recomendados y comúnmente usados para el tratamiento de
Salmonelosis son:
Tabla 2
Fármacos para el Tratamiento de Salmonelosis Equina
Fármaco Posología
Ampicilina sódica 20-30 mg/Kg IV C/8 horas
Gentamicina 4mg/Kg IM C/12 horas
Amoxicilina 15mg/Kg IM C/8 horas
Trimetoprim-Sulfadiazina 15 mg/Kg IM C/8 horas
Flunixin meglumina 0.25 mg/Kg IV C/8-12 horas
Amikacina Potros 20-25 mg/kg IM, IV C/24 horas
El uso de analgésicos antiinflamatorios no esteroides (AINEs) es benéfico ya que puede
ayudar prevenir el Shock endotóxico durante la enteritis, se debe administrarlos en dosis bajas
para prevenir que estimulen la inflamación intestinal, se puede utilizar el flunixín de meglumina
(Stewart, 2013), a la dosis de 0,25 mg/kg por vía intravenosa cada 8-12 horas (Cortés, 2007).
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 34
Figura 9
Hidratación y Medicación de Equino con Streptococcus.
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 35
5. Metodología
5.1 Objetivo Específico 1
Análisis de la cadena epidemiológica de los agentes causales de mayor prevalencia
Adenitis equina (Streptococcus equi) y salmonelosis (Salmonella sp.), para determinar los puntos
críticos de control y métodos más eficaces de prevención y control.
Análisis de registros y establecimiento de la prevalencia y morbilidad de Adenitis equina
(Streptococcus equi) y salmonelosis (Salmonella sp.) en el criadero La Marqueza.
5.2 Objetivo Específico 2
Determinación de áreas de cuarentena que cumplan con el perímetro mínimo y
condiciones idóneas de aislamiento para los equinos positivos para Adenitis equina
(Streptococcus equi) y/o salmonelosis (Salmonella tiphymurium).
5.3 Objetivo Específico 3
Realización de dos charlas con evaluación constructiva se socializa el protocolo al
personal médico del criadero, así como al personal técnico, encargado del manejo de los
animales.
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 36
6. Cronograma de actividades
Tabla 3
Cronograma de Actividades
Objetivo Actividad 1 2 3 4 5 6
1. Diseñar un protocolo de
bioseguridad basados en la
cadena epidemiológica de los
agentes Streptococcus equi y
Salmonella sp.
1.1 Análisis de la cadena epidemiológica de
los agentes causales de mayor prevalencia
Adenitis equina (Streptococcus equi) y
salmonelosis (Salmonella sp.), para
determinar los puntos críticos de control y
métodos más eficaces de prevención y
control.
x x
1.2 Establecer la prevalencia y
morbilidad de Adenitis equina
(Streptococcus equi) y salmonelosis
(Salmonella sp.) en el criadero La
Marqueza.
x x
2. Asignar lugares de
cuarentena para los equinos
infectocontagiosos.
2.1 Determinación de áreas de
cuarentena que cumplan con el perímetro
mínimo y condiciones idóneas de
aislamiento para los equinos positivos para
Adenitis equina (Streptococcus equi) y/o
salmonelosis (Salmonella sp.).
x
3. Capacitar el personal
cuidador de los equinos para la
implementación del protocolo.
3.1 Realización de dos charlas con
evaluación constructiva se socializa el
protocolo al personal médico del criadero,
así como al personal técnico, encargado del
manejo de los animales.
x x
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 37
7. Presupuesto
Tabla 4
Presupuesto
Rubros
UDES
Otras fuentes de
financiación externas Sub-total
Efectivo Especie Efectivo Especie
Recurso humano 1.000.000 1.000.000 2.000.000
Servicios técnicos y asesorías 300.000 300.000
Equipos y software
Gastos operacionales 280.000 280.000
Impresos y publicaciones 50.000 50.000
Viajes
Materiales e insumos 300.000 300.000
Comunicaciones y transporte
Otros
TOTAL 1.930.000 1.000.000 2.930.000
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 38
8. Resultados
8.1 Recolección de la Información
La información se obtuvo por medio de registros tomados en el criadero en un año, donde
se clasificaron y cuantificaron los casos clínicos específicos con enfermedades infecciosas tales
como Adenitis equina (Streptococcus equi) y salmonelosis (Salmonella sp.), como base real
informativa para la elaboración del protocolo de Bioseguridad para el centro de genética superior
Criadero La Marqueza.
8.2 Lugar de Ejecución del Trabajo de Grado
El lugar en el cual se llevó a cabo el proyecto fue en el centro de genética superior
criadero La Marqueza, ubicado en el municipio de Tenjo Cundinamarca.
8.3 Análisis de los Resultados
Los resultados de los registros se analizaron calculando la prevalencia y mortalidad de las
enfermedades.
8.3.1 Las Fórmulas para tal Fin son las Siguientes:
1. Tasa de Prevalencia:
P= C / N x 100
C= número de animales afectados existentes o casos
N= numero total de animales
2. Tasa de Mortalidad:
TM = número de defunciones x 100 / población total
Asignar lugares de cuarentena para los equinos infectocontagiosos. Se realizó una
revisión de la infraestructura y distribución de los espacios del criadero. Se encontró una
pesebrera aislada en la cual se puede llevar a cabo la cuarentena, y potreros lejanos con
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 39
distanciamiento alrededor de 10 metros de otros lugares donde permanecen equinos. ética
superior criadero La Marqueza.
Análisis de registros y establecimiento de la prevalencia y morbilidad de Adenitis equina
(Streptococcus equi) y salmonelosis (Salmonella sp.) en el centro de genética superior criadero
La Marqueza.
Se efectuó una revisión de los registros epidemiológicos del Centro de genética superior
criadero La Marqueza, y se calculó la prevalencia de Adenitis equina y Salmonelosis equina en
potros menores a 1 año de edad, para el periodo transcurrido entre noviembre de 2019 y
septiembre de 2020.
Tabla 5
Prevalencia de Adenitis y Salmonelosis Equina, en el Centro de Genética Superior Criadero La
Marqueza.
Prevalencia
Adenitis Salmonelosis Adenitis Salmonelosis
Año Mes 0-6 meses 0-6 meses 7-12 meses 7-12 meses
2019 Noviembre 1,12 % 0,28% 0,6% 0%
2019 Diciembre 0,87% 0% 0,3% 0%
2020 Enero 2,46% 0% 0% 0%
2020 febrero 3,7% 0,37% 0,78% 0%
2020 Marzo 4,42% 0% 1,11% 0,37%
2020 Abril 2,16% 0,54% 0,6% 0%
2020 Mayo 1,2% 0,9% 0,7% 0%
2020 Junio 1,14% 0,76% 0,4% 0%
2020 Julio 1,56% 0% 0% 0%
2020 Agosto 1,26% 0,42% 0% 0%
2020 Septiembre 1,35% 0,45% 0,39% 0%
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 40
Con base a la distribución de las instalaciones se analizaron los lugares mas propicios en
cuanto a distanciamiento para ser utilizados como áreas de cuarentena en el recibimiento de
animales nuevos o en la presentación de casos de adenitis o salmonelosis en el criadero.
Se realizaron dos charlas al con el personal médico veterinario donde se socializa el
protocolo y la importancia de su aplicación, teniendo en cuenta la población equina que posee el
criadero, se explica al personal técnico detalladamente la exposición al riesgo, la gravedad de las
enfermedades y la necesidad de implementar medidas de bioseguridad para minimizar el riesgo y
disminuir el impacto económico de la presentación de adenitis y salmonelosis equina.
Al realizar la socialización del protocolo de bioseguridad para Adenitis (Streptococcus
equi) y Salmonelosis (Salmonella) en el centro de Genética Superior Criadero la Marqueza se
evidencio que no existe una medida preventiva ante la presentación de las anteriores
enfermedades, por lo cual se puede decir que el uso de un protocolo de bioseguridad es una
herramienta eficaz para disminuir la casuística de tales patologías infecto contagiosas.
Asistentes a la charla:
1. Dra. Poliana Villa
2. Juan Sebastian Trujillo
3. Dr. Diego Grisolia
4. Dr. Jorge Hernan Lopéz
5. Susana Toro
6. Julian Ramirez
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 41
Registro Fotográfico
Figura 10
Charla Capacitación.
Figura 11
Charla Capacitación.
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 42
9. Discusión
Ante la presentación de enfermedades infectocontagiosas como adenitis (Streptococcus
equi) y salmonella (Salmonella tiphymuruium), que tienen un curso agudo y una alta tasa de
contagios, la aplicación de protocolos de bioseguridad son la herramienta mas eficaz para
controlar y erradicar el contagio de tales agentes, dado que interrumpir su ciclo biológico
garantiza sanidad en la población y disminución del riesgo epidemiologico.
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 43
10. Conclusiones
Al realizar la presentación del protocolo de bioseguridad para adenitis (Streptococcus
equi) y salmonella (Salmonella tiphymuruium) en el centro de genética superior se encontró que
una de las principales fuentes de transmisión de las enfermedades es a causa de las bajas medidas
de bioseguridad.
El éxito en la disminución de los porcentajes de morbilidad y mortalidad esta
directamente relacionado a la estricta aplicación de protocolos de bioseguridad.
El protocolo tuvo buena aceptación por parte del personal médico veterinario, el cual es
consciente de la importancia de implementar medidas de bioseguridad para interrumpir el ciclo
epidemiológico.
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 44
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DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 49
Apéndices
Apéndice A. Protocolo de Bioseguridad para Streptococcus Equi y Salmonella Spp. en el
Centro de Genética Superior Criadero La Marqueza
PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD PARA STREPTOCOCCUS EQUI Y
SALMONELLA TYPHIMURIUM EN EL CENTRO DE GENÉTICA SUPERIOR
CRIADERO LA MARQUEZA
Elaborado por
María Carolina Becerra Rueda
Practicante/ Medicina Veterinaria
Jorge Hernán López Hincapié
Médico veterinario zootecnista/Criadero la Marqueza
Identificacion del Lugar para la Aplicación del Protocolo
El mejor método para la prevención de Streptococcus equi. Y Salmonella spp. es y será
limitar la exposición, esto se realiza principalmente por medio de medidas de bioseguridad
que disminuyen el riesgo de contagio y, en cuestión de presentación de casos positivos
disminuir los factores de estrés para los animales susceptibles.
Identificacion del Lugar para la Aplicación del Protocolo
El mejor método para la prevención de Streptococcus equi. Y Salmonella spp. es y será
limitar la exposición, esto se realiza principalmente por medio de medidas de bioseguridad
que disminuyen el riesgo de contagio y, en cuestión de presentación de casos positivos
disminuir los factores de estrés para los animales susceptibles.
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 50
MATERIALES DE LIMPIEZA Y DESINFECCIÓN
1. Desinfectantes:
2. Cloro 10%
3. Hipoclorito 10%
4. Yodo 2,5%
5. Cal viva
6. Herramienta de limpieza y desinfección:
7. Máquina de aspersión manual (fumigadora).
8. Pediluvios o pocetas de desinfección.
9. Vasijas plásticas (alto 15, ancho 30).
10. Cinta de señalización.
11. Letreros de riesgo biológico.
12. Bolsas de color rojo.
17 Rastrillo agrícola.
18. Cepillo de cardas duras.
19. Mangueras.
20. Baldes plásticos.
21. Detergente.
Preparación de los desinfectantes:
Cloro al 0.1%: Diluir 1 ml de cloro al 10% en 1000 ml de agua.
Hipoclorito 0,5%: Diluir 100 ml de hipoclorito en 1000 ml de agua.
Yodo al 0.1%: diluir 4 ml de yodo al 2,5% en 1000 ml de agua.
Acceso a Instalaciones
Acceso a instalaciones
1. Cada potrero y/o área de pesebreras en su entrada debe contar con un pediluvio con
desinfectante. Algunos desinfectantes eficaces contra Streptococcus equi y Salmonella
spp. son: hipoclorito, derivados de amonio, compuestos de amonio cuaternario,
compuestos yodados, cloro.
2. El personal debe contar con zapatos cerrados (botas de caucho) y guantes impermeables
(guantes de látex, nitrilo o caucho).
3. Lavado de manos antes de ingresar a una pesebrera o potrero.
4. Ubicar un pediluvio en la entrada de las pesebreras y un recipiente plástico (uso para
manos) ambos conteniendo el mismo desinfectante.
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 51
5. Antes de ingresar a una pesebrera o potrero debe sumergir los pies en un pediluvio con
desinfectante y sumergir las manos con los guantes en un recipiente plástico con el mismo
desinfectante.
6. Al salir de la pesebrera o potrero el personal debe repetir el proceso de desinfección en
pies y manos.
7. Cambiar diariamente el contenido del pediluvio y del recipiente plástico para
desinfección de manos.
Figura 1.
Ejemplo de pediluvio comercial
3. Medidas de Limpieza y Desinfección
1. Limpiar comederos y bebederos diariamente (eliminar residuos usando guantes de
caucho, cepillo de cerdas duras y agua).
2. La limpieza de las camas de las pesebreras deberá ser realizada mínimamente una vez al
día.
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 52
3. Cada que sale un animal o grupo de estos de una pesebrera se deben remover todas las
heces, fluidos corporales, cama y residuos de alimento de paredes, pisos, comederos y
bebederos.
4. Limpiar comederos y bebederos diariamente (eliminar residuos usando guantes de
caucho, cepillo de cerdas duras y agua).
5. La limpieza de las camas de las pesebreras deberá ser realizada mínimamente una vez al
día.
6. Cada que sale un animal o grupo de estos de una pesebrera se deben remover todas las
heces, fluidos corporales, cama y residuos de alimento de paredes, pisos, comederos y
bebederos.
Figura 2.
Limpieza de pesebreras.
7. Las paredes, comederos y bebederos deben ser lavados con detergente de tal forma que
se remueva todo el material que sea fuente de contaminación (tener cuidado especial en
hendiduras y rincones), cada vez que se desocupen.
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 53
8. Aplicación del desinfectante sobre todas las superficies (utilizando una máquina de
aspersión manual), se deja actuar por 15 minutos y posteriormente remueve con agua.
Algunos desinfectantes eficaces para neutralizar el Streptococcus equi. y Salmonella spp.
son hipoclorito, cloro, yodo (solución al 0.5%, 0,1% y 0,1% respectivamente).
9. Ingresar viruta o cisco para usar como cama a la pesebrera.
10. Esparcir cal viva sobre la cama.
11. Aplicación del desinfectante sobre todas las superficies (utilizando una máquina de
aspersión manual), se deja actuar por 15 minutos y posteriormente remueve con agua.
Algunos desinfectantes eficaces para neutralizar el Streptococcus equi. y Salmonella spp.
son hipoclorito, cloro, yodo (solución al 0.5%, 0,1% y 0,1% respectivamente).
12. Ingresar viruta o cisco para usar como cama a la pesebrera.
13. Esparcir cal viva sobre la cama.
4. Personal Veterinario
1. Antes de la exploración física de un paciente el médico veterinario debe lavarse las manos,
usando povidona yodada o jabón de clorhexidina.
2. La exploración física debe realizarse con guantes.
3. Los objetos de examen físico como termómetros y fonendoscopios, Los objetos de examen
físico como termómetros y fonendoscopios, deben ser desinfectados previa y
posteriormente al uso con alcohol.
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4. En caso de descargas mucoides sobre la piel o la ropa limpiar usando gasas y alcohol, y
posterior cambio de vestimenta.
5. Al finalizar el examen físico debe lavarse nuevamente las manos, usando povidona yodada
o jabón de clorhexidina.
Figura 3.
Toma de muestra sanguínea
5. Recibimiento de Animales Nuevos
A la llegada de un animal nuevo al criadero debe realizarse un examen físico minucioso
1. Evaluar mucosas.
2. Vías respiratorias altas y bajas.
3. Temperatura.
4. Frecuencia cardiaca
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 55
5. Frecuencia respiratoria.
6. El estado de ánimo, y actitud al medio.
7. Aumento de volumen en nódulos linfáticos retrofaríngeos, mandibulares y/o
mandibulares.
8. Secreción de moco por los ollares.
9. Rastros de excreción de heces acuosas en miembros posteriores y cola.
10. Los animales nuevos deben estar aislados un periodo mínimo de 2 semanas.
11. Sí los animales en estado de cuarentena presentan estados febriles y posteriores
descargas de moco en caso de adenitis, o excreción de heces acuosas y mal olientes en
caso de salmonelosis deben permanecer 3 semanas en cuarentena a partir de la fecha que
se evidencian los signos y síntomas.
12. Los animales con sintomatología deben recibir tratamiento de acuerdo a la enfermedad y
evolución de la misma.
13. Pasada la cuarentena el animal puede pasar a pesebrera, si su destino es potrero con más
animales, debe ser a un grupo que no esté sometido a estrés.
14. Finalizado el periodo de cuarentena se debe limpiar completamente el lugar de
aislamiento, removiendo heces, restos de fluidos y descargas corporales, desechos de
alimento, posteriormente desinfectado.
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 56
6. Limpieza y Desinfección de Vehículos de Transporte
Estos pueden ser fuente importante en la transmisión de enfermedades, pues el transporte de
équidos es un proceso altamente estresante, y las exposiciones a estrés incrementan la
excreción de agentes patógenos y de igual modo deprimen el sistema inmune.
1. Limpiar el vehículo, removiendo heces, secreciones y fluidos.
2. Lavar con detergente y abundante agua.
3. Asperjar solución de desinfectante líquido utilizando una máquina de aspersión manual,
dejando actuar por 15 minutos y posteriormente remover con agua.
7. En Caso de Contagios
1. Cuando se detecte un contagio de Adenitis o Salmonelosis en el criadero se debe señalizar
que el lugar es de riesgo biológico, usando letreros y preferiblemente cintas amarillas.
2. En caso de presentarse animales contagiados las áreas implicadas deben estar vacías
posterior del proceso de desinfección por un tiempo mínimo de 3 días.
3. Las heces, restos de comida y cama deben ser depositadas en un área aislada, y posterior
aplicación de desinfectante.
4. Aislamiento de animales infectocontagiosos por 3 semanas en caso de presentar signos y
síntomas patognomónicos de adenitis o salmonela.
5. Los animales se deben separar en tres grupos: sintomáticos, sospechosos y no sospechosos
(determinar si es sospechoso un animal esta dado por el contacto directo con un animal con
síntomas en las últimas tres semanas).
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 57
6. Si están en potrero los grupos deben estar separados por medio de dos cercas para evitar
el contacto directo entre animales.
7. Tomar temperatura diaria de los animales en el grupo de no sospechosos, si un animal
presenta pirexia pasa al grupo de animales sintomáticos.
8. El recorrido del personal debe ser en el orden de nula sospecha, sospecha y sintomáticos.
9. Si se presenta un caso en pesebrera se debe limpiar todo tipo de residuos en el lugar, lavar
las superficies, y desinfectar y limitar el ingreso de otros animales y personal mínimo por
3 días.
10. Si se presenta un caso en potrero se debe asperjar con bactericidas lugares contaminados
y limitar el ingreso de otros animales y personal mínimo por 3 días.
11. Lavar con detergente el cabestro luego del uso en un animal sospechoso de Adenitis
equina.
12. Posterior al lavado con detergente aplicar desinfectante al cabestro.
13. El personal debe lavarse las manos antes y después de manipular animales sospechosos o
contagiados y la herramienta de trabajo usada con ellos.
14. Luego del lavado de manos el personal se debe aplicar alcohol en las manos.
15. La herramienta usada para la limpieza de pesebreras, comederos y bebederos de animales
sospechosos y contagiados no debe salir del área de cuarentena.
16. La herramienta usada para la limpieza de pesebreras, comederos y bebederos de animales
sospechosos y contagiados debe ser lavada y desinfectada posterior a su uso.
17. La herramienta usada para la limpieza de pesebreras, comederos y bebederos de animales
sospechosos y contagiados debe ser usada solo para estos.
DISEÑO DE UN PROTOCOLO DE BIOSEGURIDAD 58
18. En caso de contagios la cama y material removido debe salir en una bolsa de color rojo y
desechada en un lugar con distancia mínima de 10 metros de animales, se debe aplicar
desinfectante, y preferiblemente incinerar).
19. Aplicar cama nueva y a esta esparcir cal viva sobre esta.
8. Tratamiento
La antibioterapia es de elección y según el criterio médico veterinario. Generalmente usada
en casos de presentarse sintomatología avanzada y prolongada como lo es la pirexia. Los
antibióticos más recomendados son: Penicilina G, Cefotaxime, Ampicilina Sulbactam,
Azitromicina. Por su parte el fármaco de elección para el tratamiento de salmonelosis es
Amikacina, también se puede usar Ceftiofur, Ampicilina.
Para adenitis en caso de presentarse abscesos, para estimular la maduración de estos se
aplicarán cataplasmas calientes o cremas calientes, porque estos ayudan a madurar el absceso
y se dará resolución al problema con mayor celeridad.
Figura 4.
Secreción mucopurulenta producto de una adenitis
Para Sospecha de salmonelosis en primera instancia se debe hidratar el paciente e iniciar
terapia antibiótica con antibióticos como Amikacina, Trimetoprim Sulfa, Gentamicina,
Penicilina sódica.
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