Universidad Rafael Landívar Facultad de Ciencias...
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Universidad Rafael Landívar Facultad de Ciencias Ambientales y Agrícolas Licenciatura en Ciencias Agrícolas con énfasis en Cultivos Tropicales Efecto de cuatro tipos de sustratos de origen orgánico sobre la eficiencia biológica del hongo ostra (Pleurotus ostreatus), en Patzún, Chimaltenango Tesis Estuardo Julian Xocop Cujcuj 24139-07 Escuintla, Octubre de 2012 Sede Regional de Escuintla
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Universidad Rafael Landívar Facultad de Ciencias Ambientales y Agrícolas
Licenciatura en Ciencias Agrícolas con énfasis en Cultivos Tropicales
Efecto de cuatro tipos de sustratos de origen orgánico sobre la eficiencia biológica del hongo ostra (Pleurotus ostreatus), en
Patzún, Chimaltenango
Tesis
Estuardo Julian Xocop Cujcuj
24139-07
Escuintla, Octubre de 2012 Sede Regional de Escuintla
Facultad de Ciencias Ambientales y Agrícolas Licenciatura en Ciencias Agrícolas con énfasis en Cultivos Tropicales
Efecto de cuatro tipos de sustratos de origen orgánico sobre la eficiencia biológica del hongo ostra (Pleurotus ostreatus), en
Patzún, Chimaltenango
Tesis
Presentada al Consejo de la Facultad de Ciencias Ambientales y Agrícolas
Por
Estuardo Julian Xocop Cujcuj
Previo a conferírsele, en el Grado Académico de
Licenciado
El Título de
Ingeniero Agrónomo con énfasis en Cultivos Tropicales
Escuintla, Octubre de 2012 Sede Regional de Escuintla
Autoridades de la Universidad Rafael Landívar
Rector: P. Rolando Enrique Alvarado López, S.J. Vicerrectora Académica: Dra. Marta Lucrecia Méndez González de
Penedo Vicerrector de Investigación y Proyección: P. Carlos Rafael Cabarrús Pellecer, S.J. Vicerrector de integración Universitaria: P. Eduardo Valdés Barría, S.J. Vicerrector Administrativo: Lic. Ariel Rivera Irías
Secretaria General: Licda. Fabiola Padilla Beltranena
Autoridades de la Facultad de Ciencias Ambientales y Agrícolas
Decano: Dr. Marco Antonio Arévalo Guerra Vicedecano: Ing. Miguel Eduardo García Turnil, MSc. Secretaria: Inga. María Regina Castañeda Fuentes Director de Carrera: Ing. Luis Felipe Calderón Bran
Nombre del Asesor
Inga. Johanna Martinez Ortiz de Imeri
Tribunal que practicó la Defensa Privada
Dr. Marco Antonio Arévalo Guerra Ing. Julio Roberto Garcia Moran, MA Ing. Danilo Ernesto Dardon Ávila, MA
AGRADECIMIENTOS
A:
Dios por darme la fuerza y sabiduría
La Universidad Rafael Landívar
La Facultad de Ciencias Ambientales y Agrícolas
El Ing. Danilo Ernesto Dardón Ávila, inga. Johanna Martinez Ortiz, Dr. Marco
Antonio Arévalo Guerra y Ing. Julio Roberto Garcia Moran, por su asesoría,
revisión y corrección de la presente investigación.
DEDICATORIA A: Dios: Por su fidelidad, misericordia, sabiduría y fuerza derramada en mi
vida. Mis padres: Imelda Cujcuj Patal, Carlos Alberto Xocop Cumez (+) por darme la
vida, porque los amo, mostrarme siempre su apoyo incondicional, formarme de la mejor manera posible, Gracias.
Mis hermanos: Carlos, Victoria, Ericka, Geobany y Didlan Xocop Cujcuj, por el
apoyo que siempre han mostrado y los consejos que me han brindado
Mis amigos: Bergrin, Espital, Rafael, Italo, Pablo, Marvín, Fonzie, por su apoyo,
consejos y gratos recuerdos que compartí con todos ellos.
INDICE GENERAL
RESUMEN i SUMMARY ii I. INTRODUCCIÓN 1 II. MARCO TEORICO 3
2.1 ANTECEDETES 3 2.2 GENERALIDADES SOBRE HONGOS 4
2.2.1 Importancia de los hongos 5 2.2.2 Partes del hongo y de una seta 5 2.2.3 Reproducción de los hongos 6 2.2.4 Los hongos como alimentos 8 2.2.5 Valor nutritivo de los hongos 9
2.3 EL HONGO OSTRA Pleurotus ostreatus 11 2.3.1 Características generales 11 2.3.2 Clasificación taxonómica del hongo Pleurotus ostreatus 12 2.3.3 Estructura de los hongos Pleurotus ostreatus 13 2.3.4 Características morfológicas Pleurotus ostreatus 13 2.3.5 Características fisiológicas del Pleurotus ostreatus 15 2.3.6 Desinfección de los sustratos para el cultivo de hongos 17
2.3.6.1 Métodos de desinfección 17 2.3.6.1.1 Pasteurización con vapor de agua 17 2.3.6.1.2 Baño de agua caliente 17
2.3.7 Producción 18 2.3.7.1 Bolsas plásticas 18 2.3.7.2 Colonización de los sustratos 18
2.3.7.2.1 Temperatura 19 2.3.7.2.2 Humedad 19 2.3.7.2.3 Luz 19 2.3.7.2.4 Cuarto oscuro 19
2.3.7.3 Formación de primordios 19 2.3.7.3.1 Temperatura 20 2.3.7.3.2 Humedad 20 2.3.7.3.3 Aireación 20 2.3.7.3.4 Luz 20
2.3.7.4 Cuerpos fructíferos 21 2.3.8 Cosecha 21 2.3.9 Contaminación, plagas y enfermedades del cultivo 22
2.3.9.1 Contaminaciones 22 2.3.9.1.1 Causas 22 2.3.9.1.2 Efectos 22 2.3.9.1.3 Soluciones 22
2.3.9.2 Plagas 23 2.3.9.2.1 Colémbolos 23 2.3.9.2.2 Dípteros 23 2.3.9.2.3 Enfermedades 23
2.3.9.2.3.1 Telaraña (Dactylium dandroides) 23
2.3.9.2.3.2 Pseudomonas tolaasii (=P. fluorescens) 24 2.4 INDICADORES DE PRODUCCIÓN 24
2.4.1 Producción 24 2.4.2 Eficiencia Biológica (EB) 25
III. JUSTIFICACIÒN 26 3.1 DEFINICIÓN PROBLEMA Y JUSTIFICACIÓN 26
IV. OBJETIVOS 27 4.1 GENERAL 27 4.2 ESPECIFICOS 27
V. HIPÓTESIS 28 VI. MATERIALES Y METODOS 29
6.1 LOCALIZACIÒN DE LA INVESTIGACIÓN 29 6.2 MATERIAL EXPERIMENTAL 29
6.2.1 Tipos de sustratos utilizados 29 6.3 FACTORES A ESTUDIAR 30 6.4 DESCRIPCIÓN DE LOS TRATAMIENTOS 30 6.5 DISEÑO EXPERIMENTAL 31 6.6 MODELO ESTADISTICO 31 6.7 UNIDAD EXPERIMENTAL 31 6.8 CROQUIS DE CAMPO 31 6.9 MANEJO DEL EXPERIMENTO 32
6.9.1 Material para instalación y desarrollo de cultivo 32 6.9.2 Procedimiento 32
6.10 VARIABLES DE RESPUESTA 34 6.11 ANALISIS DE LA INFORMACIÓN 35
6.11.1 Análisis estadístico 35 6.11.2 Análisis económico 35
VII. RESULTADOS Y DISCUSIÒN 36 VIII. CONCLUSIONES 45 IX. RECOMENDACIONES 46 X. BIBLIOGRAFIA 47 ANEXOS 51
INDICE DE CUADROS
Cuadro 1. Número de especies de hongos silvestres comestibles y medicinales 8
Cuadro 2. Valor alimenticio de diferentes alimentos en peso fresco 9
Cuadro 3. Composición proximal de algunas especies de hongos comestibles
(por ciento de peso fresco) 10
Cuadro 4. Clasificación taxonómica del hongo Pleurotus ostreatus 12
Cuadro 5. Parámetros de crecimiento del hongo Pleurotus ostreatus 16
Cuadro 6. Tratamientos, claves y descripción de los sustratos 30
Cuadro 7. Distribución aleatoria de unidades experimentales 31
Cuadro 8. Producción de Pleurotus ostreatus por tratamiento (g) 36
Cuadro 9. Análisis de varianza para la producción de Pleurotus ostreatus
en peso fresco (g) 37
Cuadro 10. Resumen prueba de Tukey al 05 por ciento de significancia para
Análisis de varianza sobre producción de Pleurotus ostreatus en
peso fresco (g) 37
Cuadro 11. Eficiencia biológica (EB) por tratamientos para producción de
Pleurotus ostreatus (en porcentaje) 39
Cuadro 12. Grados de eficiencia biológica por tratamiento para producción
de Pleurotus ostreatus. 40
Cuadro 13. Resumen de Análisis de Varianza (ANDEVA) de los Grados de
eficiencia biológica, por tratamiento en la producción del
Pleurotus ostreatus en peso fresco. 40
Cuadro 14. Prueba de media de Tukey al 05 por ciento de significancia para
Análisis de Varianza para los tratamientos con datos transformados
de los grados de eficiencia biológica en la producción de Pleurotus
ostreatus en peso fresco 41
Cuadro 15. Resumen de beneficio/costo por tratamientos evaluados. 43
INDICE DE FIGURAS
Figura 1. Partes de una Seta 06
Figura 2. Ciclo biológico de un hongo basidiomiceto 07
Figura 3. Setas representativas de Pleurotus ostreatus 12
Figura 4. Partes del hongo Pleurotus ostreatus 16
Figura 5. Comparación de Eficiencia Biológica en porcentaje, para la
producción de hongo ostra Pleurotus ostreatus. 39
Figura 6. Comparación de beneficio / costo por tratamiento 44
i
Efecto de cuatro tipos de sustratos de origen orgánico sobre la
eficiencia biológica del hongo ostra (Pleurotus ostreatus), en Patzún,
Chimaltenango
RESUMEN Los objetivos de este estudio fueron: identificar el sustrato que presenta la mayor producción del hongo ostra Pleurotus ostreatus, determinar la mayor eficiencia biológica proporcionada por los tratamientos utilizados y determinar la relación beneficio / costo de los tratamientos evaluados. La investigación se realizó en la cabecera municipal del municipio de Patzún, Chimaltenango. El factor estudiado fue el tipo de sustrato de diferente origen orgánico (raquis de maíz/testigo, tallo de maíz, glumas de maíz, valvas de frijol, valvas de frijol mas raquis de maíz, valvas de frijol mas tallo de maíz y valvas de frijol mas glumas de maíz). El diseño experimental utilizado fue completamente al azar, con siete tratamientos y seis repeticiones para hacer un total de 42 unidades experimentales. Las variables respuestas estudiadas fueron: peso fresco del carpóforo, producción, eficiencia biológica en porcentaje y análisis económico beneficio / costo.En base al análisis estadístico y económico; se identifico al tratamiento de la mezcla de valvas de frijol (Phaseolus vulgaris L.) + raquis de maíz (Zea mays) (VF+OM) en proporción 1:1 como el mejor tratamiento, que tuvo la mayor producción del hongo ostra Pleurotus ostreatus en peso fresco con 1549.33 g en un área de 0.28m2 por unidad experimental, como también la mayor en eficiencia biológica con 113.85%. Y en base al análisis económico del beneficio / costo obtuvo una relación de 1.37. Se recomienda realizar esta mezcla como sustrato en lugares donde sea factible el cultivo del hongo ostra Pleurotus ostreatus.
ii
Effect of four types of organic substrata on the biological efficiency of
Oyster mushroom (Pleurotus ostreatus), in Patzún, Chimaltenango
SUMMARY The objectives of this study were to identify the substratum that shows the highest production of Oyster mushroom Pleurotus ostreatus, to determine the highest biological efficiency provided by the treatments that were used, and to determine the benefit/cost relationship of the evaluated treatments. The research was carried out in the municipal head of Patzún, Chimaltenango. The studied factor was the substratum with different organic origin (maize rachis/check, maize stem, bean valve, bean valve plus maize rachis, bean valves plus maize stem and bean valves plus maize husk). A complete randomized block design with seven treatments and six replicates for a total of 42 experimental units was used. The response variables were: fresh weight of the carpophorus, production, percentage of biological efficiency, and benefit/cost economic analysis. Based on the statistical and economic analysis, the treatment that consisted of a mixture of bean valves (Phaseolus vulgaris L.) + maize rachis (Zea mays) (BV+OM) at a proportion of 1:1 was the treatment with the highest production of Oyster mushroom (Pleurotus ostreatus), with a fresh weight of 1549.33 g in an area of 0.28m2 per experimental unit, as well as the highest regarding biological efficiency, with 113.85%. Based on the economic analysis of the benefit/cost relation, it obtained a relationship of 1.37. It is recommended to carry out a mixture substratum in areas where the production of the Oyster mushroom Pleurotus ostreatus is possible.
1
I. INTRODUCCIÓN
Los hongos comestibles son apreciados por su valor nutricional, por que contienen
todos los aminoácidos esenciales y gran parte de los no esenciales; de 24 a 44% de
proteína, baja proporción de grasas y una fuente importante de vitaminas y minerales.
Son un producto nutritivo y dietético en la alimentación humana; sin embargo, éstos
solo se encuentran y recolectan en una determinada época del año, hay en una gran
variedad de formas, tamaños y colores (Martínez, 2003).
Debido a sus pocos requerimientos nutricionales y a su fácil adaptación a los ambientes
de cultivo, requiere de técnicas simples y baratas para su cultivo y sus desechos, con
capacidad para degradar materiales lignocelulósicos, En ese sentido resulta interesante
obtener un alimento tan rico en proteínas con la simple conversión de residuos
orgánicos (Guzmán y Mata, 1993).
El cultivo de hongos comestibles tiene más de doscientos años en Europa con el cultivo
del Champiñón (Agaricus sp.), y en Asia con el cultivo de Shiitake (Lentinula sp.) y oreja
de negro (Auricularia spp.). Para comprender la evolución del cultivo, vale destacar que
en los últimos cuarenta años la producción mundial de hongos comestibles se
incrementó más de treinta y cinco veces: desde 24 mil t en 1962 a 8,5 millones t en
2002, y ese crecimiento se registró más marcadamente en los últimos quince años, el
valor mundial de los hongos cultivados fue 23 mil millones de dólares. La producción
estimada (peso fresco) de Pleurotus spp. en algunos países de América son: en primer
lugar México con 1825 t (47.53 por ciento), en segundo lugar Estados Unidos 908t
(23.65por ciento), Guatemala se encuentra en cuarto lugar con 22 t (0.57 por ciento).
El consumo nacional de hongos comestibles promedio per cápita es de 100 g/hab/año,
en primer lugar es en Alemania es de 4 kg/hab/año (Gustavo, 2007).
Para la producción del hongo ostra (Pleurotus ostreatus), no es necesaria una alta
inversión económica en infraestructura si se hace a pequeña escala. Con respecto al
manejo, es necesario cumplir con ciertas condiciones sanitarias, que con planificación
se pueden implementar con la finalidad de recuperar la inversión y obtener ganancias
2
económicas a nivel familiar en el área rural. Según el CODEX STAN 38-1981, para la
exportación de los hongos comestibles frescos dice que deberán estar sanos, estar
prácticamente limpios, firmes, no dañados, y exentos en lo posible de daños producidos
por larvas y tener el olor y sabor propios de su especie (FAO, s.f.)
Por otra parte derivado del incremento del valor de la canasta básica, las familias
guatemaltecas del área rural se ven limitadas por el acceso económico a los alimentos
y están siendo afectadas por la pérdida de poder adquisitivo, la falta de oportunidades
de empleo y los bajos salarios (SESAN, 2008). Por lo que es necesario conocer otras
alternativas de generar ingresos económicos, con cultivos no tradicionales.
El presente documento evaluó como sustratos los residuos postcosecha de dos
cultivos tradicionales en nuestro medio, como lo son el maíz (Zea mays L.) y el frijol
(Phaseolus vulgaris L.), utilizándolos como sustratos viables en la producción del
hongo tipo ostra, debido a que estos materiales orgánicos se encuentran en las
comunidades rurales del municipio de Patzún, Chimaltenango, son de fácil acceso y
además es recomendable promover tecnología de aprovechamiento de los recursos
naturales disponibles dentro de los agricultores de la zona.
3
II. MARCO TEORICO
2.1 ANTECEDENTES
En el tema de producción de hongos y del tipo Ostra (Pleurotus ostreatus), ha sido la
Universidad de San Carlos de Guatemala, a través de las Facultades de Agronomía y
de Ciencias Químicas y Farmacia la que ha generado mayor información sobre su
cultivo. Han evaluado diferentes sustratos para el cultivo del hongo ostra (Pleurotus
ostreatus), los cuales han tenido buenos resultados en la producción de hongos en los
cuales se puede cultivar dependiendo la región y los materiales disponibles.
Entre los trabajos realizados se pueden mencionar: en el año 2004 la evaluación del
efecto de la pulpa de café (Coffea arabica) en el incremento de la eficiencia biológica de
la cepa INIREB-8 de Pleurotus ostreatus, utilizando cáscara de cacao (Theobroma
cacao) y bambú (Bambusa vulgaris var. Striata) como sustrato, en el departamento de
Santa Lucía Cotzumalguapa, dio como mejor resultado en una relación 1:0 una
eficiencia biológica de 112.20% utilizando como sustrato la pulpa de café (Tuchan,
2004).
En el año 2004 la evaluación de paja de trigo (Triticum sativum); broza de encino
(Quercus sp.) y caña de milpa (Zea mayz); para el cultivo de hongo comestible
(Pleurotus ostreatus) bajo condiciones artesanales en San Rafael La Independencia
Huehuetenango, tuvo como mejor resultado en una relación 1:1, con los tratamientos de
paja de trigo (Triticum sativum) más broza de encino (Quercus sp.) una eficiencia
biológica de 91.07% (Rojas, 2004).
En el año 1997 la evaluación del cultivo de una cepa mexicana de (Pleurotus ostreatus)
utilizando como sustrato aserrín de caoba y cedro, fibra de coco y olote de maíz, tuvo
como mejor resultado en un relación 1:1, con los tratamientos de aserrín de caoba y
cedro una eficiencia biológica de 71.75% (Coroy, 1997).
4
Los estudios sobre hongos comestibles en Guatemala son muy escasos, sin embargo,
los trabajos que tratan este tema hasta el año 2001 reportan alrededor de 60 especies,
en su mayoría documentadas en los mercados de las cabeceras departamentales
(Sommerkamp, 1990) y en algunos municipios tales como San Juan Sacatepéquez
(Argueta, 1983), Chipotón, Sumpango Sacatepéquez (Herrera, 1991), Todos Santos
Cuchumatanes y San Mateo Ixtatán, Huehuetenango (Flores, 2002), Tecpán
Guatemala, Chimaltenango (Morales, 2001).
En Guatemala, gracias a las distintas zonas de vida del país, existe una gran diversidad
de hongos y un consumo, heredado por tradición, lo cual es notorio en la población
campesina del altiplano. Sin embargo, pocos trabajos de investigación han sido
realizados para conocer la diversidad, distribución, usos, cultivo y mejora de su
producción a nivel comercial. Además en Guatemala, existe un gran depósito de
información cultural sobre hongos en las distintas etnias, el cual no ha sido recopilado y
valorado. Este depósito, que constituye un conocimiento científico Maya, debe ser
rescatado, desarrollado y divulgado, para evitar su desaparición y aprovechar de mejor
manera, este recurso de setas comestibles y naturales del país (Morales, et al., 2002)
2.2 GENERALIDADES SOBRE HONGOS
Los hongos son organismos que pertenecen al reino Fungi, a diferencia de las plantas,
no producen su propio alimento, sino que dependen de otros organismos y su
descomposición para alimentarse; estos pueden ser saprófitos, simbióticos o parásitos.
Forman hifas las cuales son pequeños hilos que se originan de las esporas. Las hifas,
al expandirse y desarrollarse, formarán una masa blanca y algodonosa llamada micelio,
la cual dará lugar a las estructuras reproductivas (Arrúa, 2007).
El hongo está constituido por el micelio, mientras que los cuerpos fructíferos son las
estructuras que se observan a simple vista sobre el sustrato. Su principal función es la
de producir esporas para ser diseminadas en el medio ambiente. Los cuerpos
5
fructíferos son estacionales y de corta vida, al contrario del micelio, el cual puede
permanecer en el sustrato por cientos de años (Mata 1999).
2.2.1 Importancia de los hongos
Los hongos están involucrados en numerosos fenómenos biológicos, tales como:
desintegración de la materia orgánica; causan la mayoría de las enfermedades
conocidas en plantas, animales y humanos; en procesos industriales de fermentación
(pan, vino, cerveza y ciertos quesos) en la producción comercial de sustancias
industriales y medicamentos (ergotina, cortisona, antibióticos; en alimentación humana
(champiñones, trufas, níscalos ), y son útiles en investigación ya que presentan a
menudo un ciclo vital corto, de fácil reproducción y con frecuencia una genética
haploide (Torno, 1996).
2.2.2 Partes del hongo y de una seta
En el hongo hay que diferenciar dos partes fundamentales: el cuerpo vegetativo y el
cuerpo reproductor. El cuerpo vegetativo, que se encuentra bajo el suelo, está formado
por unos filamentos llamados hifas que pueden ser unicelulares (con una sucesión de
núcleos). Al conjunto de todas las hifas se le llama micelio. El micelio se encarga de
absorber las substancias minerales del suelo para alimento del hongo.
El micelio en realidad es el hongo, ya que la seta (a la que comúnmente se la llama
hongo), es su aparato reproductor. Por lo tanto, la seta (carpóforo) es la parte del hongo
que sale al exterior, y constituye el aparato reproductor de los hongos superiores.
El sombrero o píleo es la parte superior, generalmente tiene forma de paraguas,
aunque pueden adoptar diversas formas. Bajo el sombrero se encuentra el himenio que
es una membrana que envuelve a los elementos fértiles, de ahí que se denomine a la
seta como cuerpo reproductor. El himenio puede presentarse de diferentes formas:
como láminas, tubos, pliegues. En ciertas setas, cuando son jóvenes, el sombrero se ve
6
envuelto en una telilla que se rompe cuando este aumenta de tamaño, quedando restos
en el pie (estípite), dando lugar al anillo. La volva es como una envoltura en la parte
inferior del pie (Mendivil, 1996). La figura 1 muestra las partes de una seta.
Figura 1. Partes de una Seta (Gorosti , 2011)
2.2.3 Reproducción de los hongos
La mayoría de los hongos presentan reproducción sexual y asexual. El estado sexual
se denomina teleomorfo o meiospórico y el asexual anamorfo o mitospórico. Es
relativamente común que un mismo hongo tenga dos nombres científicos, el del estado
anamorfo y el del estado teleomorfo, ya que suelen haberse descubierto y nombrado de
forma independiente.
En un grupo importante de hongos solamente se conoce la reproducción asexual, bien
porque no se conocen las condiciones adecuadas para que se desarrolle la forma
sexual o porque ésta se ha perdido a lo largo de la evolución. Aunque la reproducción
7
asexual puede lograrse por fragmentación de las hifas, ya que cada fragmento puede
producir una nueva colonia, normalmente los hongos se reproducen, tanto sexual como
asexualmente, por medio de esporas.
Los hongos producen millones de esporas, cada una con la capacidad para desarrollar
una nueva colonia. Las esporas sexuales se producen tras la fusión de los núcleos de
dos hifas sexualmente compatibles o de dos levaduras y posterior meiosis. La
morfología de las esporas sexuales es muy variada y tiene gran interés para la
identificación fúngica, ya que presentan diferencias características.
Los hongos del Phylum Basidiomycota producen basidiosporas en el exterior de una
estructura denominada basidio, los Ascomycota producen ascosporas en el interior de
una estructura en forma de saco denominada asco y los Zygomycota producen
zigosporas (Bial, 2002), La figura 2 ilustra el ciclo biológico general de un hongo
basidiomiceto
Figura 2. Ciclo biológico de un hongo basidiomiceto (Biología y geología, 2010)
8
2.2.4 Los hongos como alimentos
Los hongos silvestres comestibles han sido recolectados y consumidos por la gente
durante miles de años. Los registros arqueológicos revelan especies comestibles
asociadas con las poblaciones chilenas de hace 13000 años (Rojas y Mansur 1995;
citados por FAO, 2005).
En china se nota por primera vez su consumo como alimento, varios siglos antes del
nacimiento de Cristo (Aaronson, 2000; citado por FAO, 2005). Los hongos silvestres
fueron recolectados en los bosques en tiempos de la Antigua Grecia y de los romanos,
siendo apreciados más por personas de alto rango que por la población en general
(Buller, 1914; citado por FAO 2005).
En el cuadro 1, se presentan las distintas categorías de hongos y las especies
identificadas en cada una.
Cuadro 1. Número de especies de hongos silvestres comestibles y medicinales.
CATEGORÍA NO. DE ESPECIES PORCENTAJE TOTAL
Sólo comestibles 1009 43
Comestibles y medicinales sólo
alimento
820 35
Alimento y medicina 249 11
Sólo medicinal 133 6
Otros usos (fuera de los anteriores) 29 1
TOTAL especies silvestres útiles 2327
TODOS sólo comestibles 1097
TODOS alimento 1069
TODOS medicinales 470
(FAO, 2005)
Nota: compilado de más de 200 fuentes diferentes, originarias de 110 países, pero
excluye un resumen detallado de especies desarrollados. Las variedades y las
9
subespecies han sido calculadas por separado. Las categorías alimento y comestible se
excluyen mutuamente. Para distinguir claramente entre el uso y las propiedades de
una especie, hace falta un número importante de especies comestibles que se usan
como alimento, (FAO, 2005).
2.2.5 Valor nutritivo de los hongos
Por mucho tiempo se ha considerado a los hongos como alimento de alta calidad, con
sabor y textura apreciable y sobre todo de alto valor nutritivo. Hoy en día, los hongos
juegan un papel importante en la alimentación del hombre al igual que la carne,
pescado, frutas y vegetales (Rojas, 2004).
Cuadro 2. Valor alimenticio de diferentes alimentos en peso fresco.
Alimentos Valor
energético en
1000 g
(Kcal)
Grasas Minerales Carbohidratos Proteína Agua
Carne 189 0.5 0.5 13.0 18.0 68
Leche 62 0.7 4.8 3.7 3.5 87
Hongos 25 1.0 4.5 0.3 3.5 90
Papa 85 1.1 21.0 0.1 2.0 75
Espinaca 15 1.9 1.0 0.3 2.2 93
Espárrago 20 0.6 2.7 0.1 1.8 95
(Rojas, 2004)
Se observa como el mayor constituyente de los alimentos es el agua, que es variable
en cada especie, pero va del 70 al 95 %, dependiendo de su consistencia (Rojas,
2004).
El mayor interés en el valor nutritivo de los hongos es la cantidad y aún más la calidad
de la proteína. El contenido de proteína promedio es de 3.5 a 4 % en peso fresco y de
30 a 50 % en peso seco (Rojas, 2004).
10
En comparación con el contenido de proteína de otros alimentos, el de hongos en
fresco es el doble que el de los vegetales (excepto soya, fríjol y lentejas) y cuatro a
doce veces mayor que el de las frutas; sin embargo, es inferior al de la carne, pescado,
huevos y lácteos. Desde el siglo pasado ya se habían clasificado los hongos como
alimentos ricos en proteínas, debido a que los contienen hasta en un 5% del peso en
fresco. El valor nutritivo de los hongos estriba no sólo en su contenido de proteínas,
sino también en su aporte de vitaminas, minerales y fibra dietética, entre otros (Lazo,
2001).
Cuadro 3. Composición proximal de algunas especies de hongos comestibles (por
ciento de peso fresco)
ESPECIE HUMEDAD PROTEINA
CRUDA
GRASA
CRUDA
FIBRA
CRUDA
CENIZAS
Agaricus bisporus 84.4 29.4 4.9 9.2 8.5
Agaricus campestris 89.7 33.2 1.9 8.1 8.0
Boletus edulis 87.3 29.7 3.1 8.0 7.5
Cookenia sulcipes 79.9 35.3 2.9 14.3 10.4
Flamulita velutipes 89.2 17.6 1.9 3.7 7.4
Lentinus edodes 90.0 15.5 6.5 7.7 5.4
Pleurotus eous 92.2 25.0 1.1 12.0 9.1
Pleurotus florida 91.5 27.0 1.6 11.5 9.3
Pleurotus ostreatus 82.2 20.5 1.9 8.1 8.0
Pleurotus sajorcaju 90.1 26.6 2.0 13.3 6.5
Valvariella displasia 90.4 28.5 2.6 17.4 11.5
Valvariella volvácea 89.1 25.9 2.45 9.3 8.8
Auricularia sp. 89.1 4.2 8.3 19.8 1.7
(Lazo, 2001)
11
2.3 EL HONGO OSTRA Pleurotus ostreatus
2.3.1 Características generales
El hongo ostra, Pleurotus spp., es un hongo saprófito comercialmente cultivado a nivel
mundial debido al sabor de su basidiocarpo y a la existencia de tecnologías simples
para cultivarlo. Además, sus enzimas lignocelulolíticas para la bioremediación, sus
compuestos de sabor y la extracción de pigmentos naturales lo convierten en un objeto
prometedor para el estudio. Los hongos ostra son principalmente cultivados sobre
residuos agrícolas como paja, bagazo de caña de azúcar o soya, sin embargo, también
poseen potencial para mineralizar y crecer sobre residuos industriales como te, bagazo
de manzana o sustratos no convecionales con contenidos de lignina, celulosa y
hemicelulosa como hojas secas de álamo (Chang, 2004.)
El cultivo de este género pertenece al siglo XX. A pesar de ser relativamente reciente,
ha tenido un desarrollo muy rápido, de tal manera que en la actualidad se cultiva en
casi todas las latitudes del mundo. Su caso merece una atención especial: más que
cualquier otro de los géneros cultivados hasta ahora, debido a la diversidad de
sustratos sobre los que es capaz de desarrollarse, lo que permite apreciar de manera
directa el impacto benéfico de cultivar hongos para el aprovechamiento de desechos
agropecuarios (Chang, 2004).
Actualmente, el cultivo de este género disputa con L. edodes el segundo lugar en
producción mundial, solo después de A. bisporus. La razón de este crecimiento es que
las especies de este género tienen una calidad organoléptica excelente y crecen sobre
una gran diversidad de sustratos en un amplio rango de temperaturas (Chang, 2004).
12
Los carpóforos típicos del Pleurotus ostreatus se observan en la figura 3.
Figura 3: Setas representativas de Pleurotus ostreatus (Oralia, 2011)
2.3.2 Clasificación taxonómica del hongo Pleurotus ostreatus
Cuadro 4. Clasificación taxonómica del hongo Pleurotus ostreatus
Reino Fungi
División Basidiomycotina
Clase Holobasidiomycete
Subclase Hymenomycete
Orden Agaricales
Familia Tricholomataceae
Genero Pleurotus
13
Especie Pleurotus ostreatus
(Rojas, 2004)
2.3.3 Estructura de los hongos Pleurotus ostreatus
Las especies de Pleurotus están formadas de las siguientes estructuras:
a. Hongo: Es una masa algodonosa, generalmente blanca y la cual crece sobre el
sustrato donde se desarrollará. El micelio está compuesto de hifas (Martínez, 2003).
b. Cuerpos fructíferos: Constituyen los cuerpos reproductores o fructíferos de los
mismos, en los cuales forman sus esporas y constituyen la semilla de dispersión del
hongo. Los hongos producen millones o billones de esporas, las cuales se
dispersan en el aire que asegura así su perpetuidad (Martínez, 2003).
c. Micelio: Conjunto de masas de hifas que constituyen un cuerpo o tallo de un hongo
(Martínez, 2003)
d. Contexto: Es la carne de los hongos a la cual técnicamente se llama contexto, la
constituyen las hifas del centro del pie y sobre todo ubicadas ente la superficie del
sombrero (Martínez, 2003).
e. Espora: Es la pequeña unidad de propagación, unicelular o pluricelular, sexual o
asexual, móvil o inmóvil, tiene la función de una semilla, aunque difiere de esta
última por que no contiene un embrión preformado (Martínez, 2003)
2.3.4 Características morfológicas Pleurotus ostreatus
De color blanco a gris pardo-azulado, con el paso del tiempo el color va palidece hasta
tomar un tono amarillo sucio, mide de 6 a 15 centímetros de diámetro, depende de la
edad, aunque pueden encontrarse ejemplares mucho más grandes. Tiene las esporas y
láminas de pie corto y su contexto en ciertas ocasiones es ligeramente elástico, pero
14
sabroso. Se cultivan algunas especies en forma comercial y es de las más deliciosas y
atractivas para su consumo. Se trata de un hongo que, en su ambiente natural, crece
sobre árboles, tocones, arbustos y otras plantas leñosas, alimentándose a costa de su
madera, destruyéndola. (Acosta y Bustos.1998)
El píleo, o parte superior de la seta, es redondeado, con la superficie lisa, abombada y
convexa cuando es joven, aplanándose luego poco a poco. El borde está algo enrollado
al principio. En su parte inferior se presenta el himenio, constituido de unas laminillas
dispuestas radialmente como las varillas de un paraguas, que van desde el pie o tallo
que lo sostiene, hasta el borde de aquel.
Están esparcidas unas de otras y son anchas, blancas o crema, a veces bifurcadas, y
en ellas se producen las esporas destinadas a la reproducción de la especie. Estas
esporas son de tamaño microscópico, oblongas, casi cilíndricas. Aunque no se
distinguen a simple vista, cuando se depositan en masa forman una especie de polvillo
harinoso denominado esporas de color blanco con cierto tono lila-grisáceo.
Las esporas se consiguen fácilmente al colocar un sombrero (sin pie) en su posición
normal sobre un papel oscuro, durante unas horas. El pie suele ser corto (indicador de
su calidad) ligeramente duro, blanco al principio, las laminillas en la parte de arriba y
algo peloso en la base. Su inserción suele ser algo lateral y su dirección ligeramente
oblicua. Tanto su forma como su longitud dependen mucho de la situación del hongo.
Si crecen varios juntos, que suele ser lo más frecuente, forman repisas laterales
superpuestas sobre un costado de los árboles, los pies están unidos a otros, son cortos
y están cerca del borde de los sombreros, que suelen tener forma de abanico o riñón,
pero si crecen aislados, sobre una superficie horizontal, el pie puede ser largo, central y
el sombrero perfectamente circular, la carne es blanca, de olor algo fuerte, tierna al
principio y después correosa. Se suele encontrar en los bosques, sobre todo, en la base
de árboles de hoja ancha (frondosos), en otoño e invierno templados. En sitios
húmedos puede encontrarse también en otras épocas (Acosta y bustos. 1998)
15
El crecimiento de este género está supeditado a ciertos factores como son: la
temperatura, la humedad del ambiente, la humedad del sustrato, el pH, la composición
del sustrato, las concentraciones de CO2, O2 y la luz. Las condiciones más adecuadas
de estos factores dependen del tipo de desarrollo que se busca del hongo, si es para
crecimiento de micelio o para propiciar la fructificación.
El micelio de Pleurotus crece bien en un amplio rango de temperaturas de 10ºC a 40ºC
como límite superior, es alrededor de los 25ºC para la mayoría de las especies (Acosta
y bustos. 1998).
La humedad relativa es un factor sumamente importante en el desarrollo de un hongo.
La falta de humedad ambiental inhibe la fructificación. Según la literatura existen
valores 60 a 95% para la mayoría de las especies de Pleurotus; sin embargo para, el
caso específico de Pleurotus ostreatus se ha observado que una humedad de 80 a 85%
es mejor. La concentración de CO2 es muy importante para el desarrollo de Pleurotus,
se sugiere una concentración relativamente alta de 20-25% ya que es útil para propiciar
el crecimiento del micelio. Sin embargo, concentraciones superiores al 60% inhiben la
formación de primordios (Acosta y bustos. 1998).
Debido a esto, cuando se desea producir hongos de manera comercial, es necesario
implementar un buen sistema de ventilación en la sala de fructificación, de tal manera
que se retire constantemente el CO2 formado por la respiración del propio hongo. Una
ventilación deficiente se manifiesta en deformaciones del cuerpo fructífero. Esto puede
ser un ligero alargamiento del estípete, la no formación del píleo o ambas cosas (Acosta
y bustos. 1998).
2.3.5 Características fisiológicas del Pleurotus ostreatus
El P. ostreatus posee un píleo de 3-12 cm de diámetro, convexo en forma de abanico o
de concha, algunas veces semicircular, o plano con pequeña depresión en el centro;
16
posee una superficie lisa de color blanco a blanco-grisáceo o gris-parduzco. El contexto
mide de 0.3 -1.0 cm de ancho, blanco y de olor y sabor agradable. El himenóforo está
conformado por lámelas blancas cuando joven a amarillentas cuando maduro. El
estípite es excéntrico o de posición lateral, puede estar ausente o reducido, de 0.3-1.0
cm de longitud y 0.5-1.5 de ancho, con forma de tapón; posee una superficie de lisa a
aterciopelada principalmente hacia la base, color blanco a blanco-grisáceo y esporas
blancas (Arrúa, 2007).
Figura 4. Partes del hongo Pleurotus ostreatus
Fuente: Arrúa, 2007.
Cuadro 5. Parámetros de crecimiento del hongo Pleurotus ostreatus
Condiciones Micelio Formación de
primordios
Desarrollo
cuerpo fructífero
Duración 12-21 días 3-5 días 4-7 días
Temperatura 24º C 10-15.6 ºC 10-21ºC
Humedad relativa 85-95 % 95-100% 85-90%
Requerimiento de
luz
n/a 1000-1500 lux 1000-1500 lux
Concentración de 5000 ppm <1000 ppm <1000 ppm
17
CO2
Fuente: Arrúa, 2007
2.3.6 Desinfección de los sustratos para el cultivo de hongos
El uso de instrumentos a presión para la esterilización del sustrato no es recomendado
debido a que elimina tanto, microorganismos benéficos como patógenos. Al mismo
tiempo, los nutrientes presentes son degradados a formas más favorables para el
crecimiento de microorganismos competidores (Arrúa, 2007).
Los sustratos de paja generalmente pasteurizados y después enfriados, son inoculados
con micelio. Dicha pasteurización elimina a los microorganismos sensibles a las altas
temperaturas, y aquellos no eliminados, no representan competencia para el hongo en
las primeras dos semanas; dándole suficiente tiempo a este para que alcance su óptimo
desarrollo (Stamets, 2000, citado por Arrúa, 2007).
2.3.6.1 Métodos de desinfección
2.3.6.1.1 Pasteurización con vapor de agua
El sustrato es introducido en un estañón y colocado en un parrilla situada por encima
del agua a 100 ºC, dejar que el vapor caliente las bolsas con el mismo; a esta
temperatura el sustrato es pasteurizado por 2-3 h depende del tamaño y volumen de las
bolsas. Cuando el proceso se efectúa a temperaturas de 60-70 ºC, los sustratos deben
permanecer de 6-8 horas bajo el mismo (FAO 1990).
2.3.6.1.2 Baño de agua caliente
La paja es introducida en una canasta de alambre y sumergida en un estañón de agua
a una temperatura de 65-82 ºC por 1 hora. El estañón es calentado por la parte inferior
con un quemador a gas propano. Una vez que la temperatura del agua (tomada con un
termómetro) ha alcanzado el punto deseado, la canasta con el sustrato es sumergida
18
con la ayuda de un objeto pesado. Después de removida, la paja se deja secar y enfriar
en una superficie plana y limpia. Al momento de inocular el sustrato se recomienda
utilizar guantes de látex, para disminuir la contaminación cruzada. El sustrato inoculado
se introduce en las bolsas en donde se dará la fructificación final (Stamets, 2000, citado
por Arrúa, 2007).
2.3.7 Producción
2.3.7.1 Bolsas plásticas
Pueden utilizarse diferentes tipos de recipientes para sustratos pasteurizados o
esterilizados, siempre y cuando cumplan los ciertos requerimientos como: proveer
suficiente flujo de aire para evitar condiciones anaeróbicas, estar limpios, tener el
tamaño adecuado para evitar la fermentación espontánea y aumentar la temperatura
interna del sustrato y ser económicamente viables (O.E.I., 2003, citado por Arrúa 2007).
Las bolsas plásticas son utilizadas especialmente para sustratos pasteurizados, debido
a que son económicas, están disponibles en varios tamaños y son muy higiénicas si se
utilizan sólo una vez. El material más comúnmente empleado es el polipropileno.
Algunos proveedores ofrecen bolsas micro-perforadas, para aumentar el intercambio de
gases entre el sustrato y el ambiente. Cuando se usan bolsas cerradas es necesario
realizar perforaciones para evitar condiciones anaeróbicas (O.E.I., 2003, citado por
Arrúa 2007).
2.3.7.2 Colonización de los sustratos
Según Stamets, 2000, citado por Arrúa, 2007, es importante conocer que la cantidad de
micelio colocado en las bolsas de producción afecta directamente el crecimiento del
micelio y su fructificación. Además, para que el micelio pueda realizar una adecuada
19
colonización del sustrato es necesario propiciarle las siguientes condiciones
ambientales
2.3.7.2.1 Temperatura
La temperatura interna del sustrato no debe exceder los 35 ºC, ya que de lo contrario
puede incentivar el desarrollo de mohos competidores u otros organismos termófilos,
especialmente en las condiciones de CO2 generadas por el desarrollo del micelio
(Stamets, 2000, citado por Arrúa, 2007).
2.3.7.2.2 Humedad
El contenido de humedad del sustrato estar de 60 a 75 %; por debajo del 40 % el
crecimiento del micelio presenta un comportamiento lento y esporádico. Los hongos
tienen un contenido de humedad del 90 %, por lo cual es vital el mantenimiento de una
constante humedad en el medio, más aún después de la primera cosecha (Stamets,
2000, citado por Arrúa, 2007).
2.3.7.2.3 Luz
Una luminosidad moderada no provoca ningún efecto adverso o inconveniente en el
desarrollo del micelio, pero si es perjudicial cuando existe una incidencia directa de la
luz solar sobre el mismo (Stamets, 2000, citado por Arrúa, 2007).
2.3.7.2.4 Cuarto oscuro
La forma del cuarto oscuro debe permitir que exista una adecuada circulación de aire, y
una fácil manipulación de los sustratos; la mayoría de los cuartos son de forma
rectangular con un radio de 3:1. Así mismo, éstos deben mantener una temperatura
constante, por lo cual es importante la colocación de material aislante que permita
mantener una temperatura constante del lugar (Stamets, 2000, citado por Arrúa, 2007).
2.3.7.3 Formación de primordios
20
Es sin duda la etapa más crítica del proceso de producción, debido al requerimiento de
cambios en las condiciones ambientales circundantes al sustrato y al micelio. La
humedad y la temperatura son los factores de mayor importancia en esta fase y a los
cuales se les debe prestar mayor atención debido a que, de estos, depende la iniciación
en la formación de los cuerpos fructíferos. Así mismo para la adecuada formación de
los primordios es necesario asegurarse de que se cumplan los siguientes parámetros
(Stamets, 2000, citado por Arrúa, 2007).
2.3.7.3.1 Temperatura
En ciertas variedades de hongos el sustrato necesita que se le administre una
disminución drástica en su temperatura interna, para que pueda accionarse el
mecanismo de producción de cuerpos fructíferos de dicho organismo. A este proceso
se le conoce como “choque térmico” (Stamets, 2000, citado por Arrua, 2007).
2.3.7.3.2 Humedad
Dentro del cuarto oscuro, se requiere la humedad 95 a 100 %; para esto debe existir
riego directo acompañado de una tasa controlada de evaporación. Una vez formado el
primordio, una reducción de la humedad a 90- 95 % es usualmente beneficioso
(Stamets, 2000, citado por Arrua, 2007).
2.3.7.3.3 Aireación
El recambio del aire también es un factor clave, ya que, para una adecuada formación
de los primordios, el nivel de CO2 debe de estar por debajo de las 1000 ppm (Stamets,
2000, citado por Arrua, 2007).
2.3.7.3.4 Luz
Controla la elongación del tallo y la formación de “carpóforos”. La cantidad ideal varía
de acuerdo a la especie, pero en general, una luz filtrada y tenue es considerada la más
adecuada. Para la mayoría de las especies, un nivel de intensidad de 50 a 1000 lux, se
21
considera estimulante en la formación de primordios. Una exposición directa o de alta
intensidad es considerada dañina, pero una total ausencia de esta provocaría la mal
formación de los primordios en estructuras tipo coral (Stamets, 2000, citado por Arrua,
2007).
2.3.7.4 Cuerpos fructíferos
Cuando ya ha crecido bien el micelio y a formado una superficie blanco algodonosa, la
cual cubre todo el sustrato, es el momento de eliminar la bolsa de polietileno y colocar
el agregado del hongo y sustrato en un lugar adecuado para su fructificación, este lugar
debe poseer una temperatura de 26 a 28 °C, una humedad relativa de 85 a 90 %, una
iluminación suficiente para leer y una adecuada ventilación (Lazo, 2001).
Además es importante indicar que es necesario el aspecto de riego aunque sea solo
unas horas al día, pero es indispensable para una buena fructificación, que no se deje
resecar el sustrato y se deba aumentar la humedad del ambiente. (Lazo, 2001)
Luego de 2 días después de haber quitado las bolsas al sustrato empiezan a aparecer
los primordios o primeros cuerpos fructíferos, cuatro días después, los primordios se
han desarrollado bien y cubren la totalidad del sustrato y están en su madurez
comercial, listos para ser cosechados. Luego de que el micelio ha invadido todo el
sustrato y la temperatura es adecuada, las setas empiezan a salir y poco tiempo
después puede empezarse a cosechar. (Lazo, 2001)
2.3.8 Cosecha
Para establecer el recoger las setas en el momento optimo de comercialización, hay
que tener en cuenta dos factores que son el aspecto y el tamaño. En cuanto al aspecto
no debe darse la ocasión de que los bordes de sombrero se ricen excesivamente, en
cuanto a esto, lo más que se puede esperar es cuando el borde empieza a volverse
hacia arriba, con relación al tamaño no es conveniente recoger setas ni muy pequeñas
22
ni gigantescas. Así pues, los criterios para su recolección teniendo en cuanta lo anterior
es el siguiente:
Deben recogerse aquellas setas a alas cuales se les empieza a rizar el borde aunque
no hayan alcanzado un gran tamaño (Lazo, 2001).
2.3.9 Contaminación, plagas y enfermedades del cultivo
2.3.9.1 Contaminaciones
2.3.9.1.1 Causas
Mala pasteurización o descuidos en el manejo del sustrato en el proceso.
Deficiencias en la limpieza de incubación.
Orificios donde entra aire y microorganismos, insectos y roedores (García, 2000).
2.3.9.1.2 Efectos
Crecimiento pobre o nulo.
Hongos mal formados o defectuosos (García, 2000).
2.3.9.1.3 Soluciones
Trabajar en condiciones asépticas, realizar buena esterilización y pasteurización.
Buena limpieza y lavado de los cuartos de incubación y fructificación.
Alrededor de los cuartos debe mantenerse muy limpio siempre (García, 2000).
23
2.3.9.2 Plagas
2.3.9.2.1 Colémbolos
Los colémbolos son artrópodos de pequeño tamaño (de 0,25 a 8 mm) que junto a
Dipluros y Proturos son agrupados como Hexápodos entognatos. Su posición
sistemática es objeto de discusión y muy recientemente se ha sostenido que pueden
estar más próximos a los Crustáceos que a los insectos. Son artrópodos primitivos y
presentan características (Uribe, 200)
2.3.9.2.2 Dípteros
El daño lo causan sus larvas que se comen las hifas del micelio, hacen pequeñas
galerías en los pies de las setas y luego en los sombreros. Destacan algunas especies
de mosquitos de los géneros Lycoriella, Heteropeza, Mycophila y moscas del género
Megaselia (Maroto, 1995). Para el control de Colémbolos y de dípteros se recomiendan
medidas preventivas como colocación de filtros junto a los ventiladores, eliminación de
residuos, tratamiento térmico de los sustratos para eliminar huevos y larvas, etc.
También pueden emplearse distintos insecticidas: diazinón o malatión en polvo
mezclados con el sustrato, nebulizaciones con endosulfán o diclorvos, etc (Maroto,
1995).
2.3.9.3 Enfermedades
2.3.9.3.1 Telaraña (Dactylium dandroides)
Los filamentos de este hongo crecen rápidamente y se extienden sobre la superficie
del sustrato y de las setas, cubriéndolas con un moho blanquecino, primero ralo y luego
denso y harinoso (Maroto, 1995)
En las partes viejas las formas perfectas forman puntos rojizos. Los ejemplares
atacados se vuelven blandos, amarillento parduscos, y se acelera su descomposición.
Puede atacar a las setas recolectadas (Maroto, 1995).
24
Esta enfermedad aparece con humedad excesiva, el calor y la escasa ventilación. Para
su control se deben cubrir con cal viva en polvo, sal, formalina 2% o soluciones de
benomyl las zonas afectadas. También se puede emplear zineb, mancozeb,
carbendazin o thiabendazol (Maroto, 1995).
2.3.9.3.2 Pseudomonas tolaasii (= P. fluorescens)
Esta bacteria ataca en cualquier fase del cultivo, desde el micelio en incubación a las
setas ya formadas, disminuyendo o anulando la producción. En los sombreros de los
ejemplares enfermos aparecen zonas de tamaño variable de color amarillo-pardusco o
anaranjado, acaban pegajosos y si la temperatura y humedad son altas, se pudren
pronto y huelen mal. (Maroto, 1995)
Para su control se aconseja procurar evitar el exceso de humedad, la adición de
sustancias nitrogenadas y el calor. Se puede añadir hipoclorito sódico al agua de riego,
solución de formalina al 0,2-0,3%, formol u otros productos (Maroto, 1995)
2.4 INDICADORES DE PRODUCCIÓN
2.4.1 Producción
La producción de estos hongos son estimados en mas o menos 100 a 200 kilos del
hongo por tonelada de sustrato preparado y húmedo, rendimiento que se tiene en
aproximadamente 7 a 9 semanas. La producción puede escalonarse a lo largo del año
teniendo en cuenta que el ciclo total del cultivo se supone entre 2 y 4 meses repartidos
así: De 15 a 30 días de incubación y crecimiento de micelio, de 15 a 20 días en la zona
de cultivo, de 45 a 60 días de cosecha (Aldana, 2000).
25
2.4.2 Eficiencia Biológica (EB)
Para expresar el grado de bioconversión de energía a partir de la biodegradación del
substrato, el concepto generalmente aceptado es la eficiencia biológica; que es la
relación en porcentaje, entre el peso fresco de hongos producidos y el peso seco de
substrato empleado. Una eficiencia biológica del 100 por ciento es equivalente a decir
que de un substrato con un contenido de agua de 75 por ciento, el 25 por ciento de su
peso húmedo será recogido en carpóforos frescos, cuyo contenido de agua es en
promedio 90 por ciento (Ardon, 2004). La eficiencia biológica depende esencialmente
de las características físico-química del substrato a utilizar. La calidad productiva de un
substrato se percibe como aceptable a partir de eficiencias biológicas del 100 por ciento
(Salmones, Pérez, y Guzmán, 1997).
EB = _Pfc_ X 100 Pss
Donde:
EB: Eficiencia biológica en porcentaje.
Pfc: Peso fresco de carpóforos.
Pss: Peso seco del substrato.
26
III. JUSTIFICACIÓN
3.1 DEFINICION PROBLEMA Y JUSTIFICACIÓN
En el municipio de Patzún, departamento de Chimaltenango, es muy común que los
agricultores siembren el cultivo de maíz (Zea mays L.) y el cultivo de frijol (Phaseolus
vulgaris L.) actividades cuyo resultado ha sido destinado al autoconsumo. Sin
embargo, los fenómenos climáticos adversos, cada vez más frecuentes, disminuye la
probabilidad de éxito en la producción de dichas especies.
En la actualidad los agricultores solamente aprovechan los granos de estos dos cultivos
(maíz y frijol) y el resto de la planta no lo utiliza, por lo que los agricultores andan
buscando nuevas alternativas económicas y que se aprovechen el resto de la planta del
maíz y frijol, ya que es factible y es de fácil acceso los desechos orgánicos de estas dos
plantas.
Por lo que se desea aprovechar los residuos del maíz y frijol, utilizándolos como
sustratos para la producción del hongo ostra Pleurotus ostreatus, según Gustavo (2007)
vale destacar que en los últimos cuarenta años la producción mundial de hongos
comestibles se ha incrementado más de treinta y cinco veces. A demás que puede ser
un ingreso económico y fuente de trabajo para los agricultores.
Y la producción del hongo ostra (Pleurotus ostreatus), no es necesaria una alta
inversión económica en infraestructura si se hace a pequeña escala. Con respecto al
manejo, es necesario cumplir con ciertas condiciones sanitarias, que con planificación
se pueden implementar con la finalidad de recuperar la inversión y obtener ganancias
económicas a nivel familiar en el área rural. El hongo Pleurotus ostreatus contiene
aproximadamente un 30% (en material seco) de proteínas constituidas por
aminoácidos, vitaminas del complejo B y minerales.
27
IV. OBJETIVOS
4.1 GENERAL
Contribuir a la producción del hongo comestible Ostra Pleurotus ostreatus utilizando
restos orgánicos provenientes de subproductos de los cultivos de maíz (Zea mays
L.) y frijol (Phaseolus vulgaris L.)
4.2 ESPECÍFICOS
Identificar que sustrato presenta mayor producción del hongo ostra Pleurotus ostreatus.
Determinar la mayor eficiencia biológica proporcionada por los tratamientos utilizados.
Determinar y conocer la relación beneficio / costo, de los tratamientos evaluados.
28
V. HIPÓTESIS
Por lo menos uno de los tratamientos a evaluar dará como resultado una mayor
producción en base a peso fresco y eficiencia biológica en porcentaje.
29
VI. MATERIALES Y METODOS
6.1 LOCALIZACIÓN DE LA INVESTIGACIÓN
El estudio se realizo en el municipio de Patzún, departamento de Chimaltenango. Está
situado en la región V o región central. Ubicado en las coordenadas geográficas,
14º40’58.27’’, 91º00’51.69’’O. Con una altitud de 2213 msnm (ODP, 2010).
6.2 MATERIAL EXPERIMENTAL
6.2.1 Tipos de sustratos utilizados
Raquis de mazorca del maíz (Zea mays L.)
Presenta celulosa, hemicelulosa y lignina (Lorena y Quintero , s.f.)
Glumas de maíz (Zea mays L.)
Presenta valores de proteína cruda comprendidos entre 1.5 – 2.1 % y fibra cruda 33-
37.5% (Rodenas, 1999).
Tallos de maíz (Zea mays)
Los tallos presentan las estructuras más lignificadas y de menor contenido de proteína
bruta (3.1%) y las hojas de 4 - 7%. La composición química indica que el rastrojo de
maíz es bajo en materias nitrogenadas (4.5% de proteína bruta promedio). La pared
celular presenta un mayor porcentaje de hemicelulosa que de celulosa. Su bajo
porcentaje de lignina lo hace ser más digestible que las pajas de cereales. El mismo es
rico en azúcares solubles que éstas (Rojas, 2001).
30
Valvas de frijol (Phaseolus vulgaris)
El fríjol de color negro es el preferido y es un cultivo practicado por agricultores de bajos
recursos económicos y utiliza principalmente suelos marginales y frecuentemente en
asociación con otros cultivos, contiene entre el 15 y 27 por ciento de proteína (Carrillo,
1998).
En el desarrollo de la investigación se evaluaron cuatro sustratos orgánicos (desechos)
propios del área, estos son: raquis, glumas y tallos de maíz (Zea mays L.), y valvas de
frijol (Phaseolus vulgaris).
6.3 FACTORES A ESTUDIAR
El factor estudiado durante este proceso fue: el tipo de sustrato.
6.4 DESCRIPCION DE LOS TRATAMIENTOS
Cuadro 6. Tratamientos, claves y descripción de los sustratos
TRATAMIENTO CLAVE DESCRIPCIÓN
T1 OM Raquis de maíz (testigo)
T2 CM Tallo de maíz
T3 TM Glumas de maíz
T4 VF Valvas de frijol
T5 VF+OM Valvas de frijol + raquis de maíz (1:1)
T6 VF+CM Valvas de frijol + tallo de maíz (1:1)
T7 VF+TM Valvas de frijol + glumas de maíz (1:1)
31
6.5 DISEÑO EXPERIMENTAL
Se utilizo el diseño experimental Completamente al azar, con 7 tratamientos y 6
repeticiones para hacer un total de 42 unidades experimentales.
6.6 MODELO ESTADÍSTICO
El modelo estadístico para este diseño experimental es
Yij = µ + Ʈi + εij
Dónde:
Yij = Respuesta del rendimiento de Pleurotus ostreatus obtenido en el ij-esimo
tratamiento.
μ = Media general del rendimiento.
Ʈi = Efecto asociado al i-esimo sustrato
εij = Error experimental asociado a la ij-esima unidad experimental
6.7 UNIDAD EXPERIMENTAL
Se tomó como unidad experimental un contenedor equivalente a 1,360.8 g de sustrato
seco. El espacio por cada unidad experimental fue de 0.28 metros cuadrados.
6.8 CROQUIS DE CAMPO
Cuadro 7. Distribución aleatoria de unidades experimentales
Ubicación 1 2 3 4 5 6 7
1 VF+TM TM VF VF TM VF OM
2 VF TM OM VF+OM VF+OM VF+CM VF+OM
3 VF OM VF+CM OM VF+OM CM VF+TM
4 CM VF+CM VF VF+OM VF+TM CM TM
5 OM TM VF+TM CM VF+CM OM VF+OM
6 VF+CM CM VF+CM CM VF+TM VF+TM TM
32
6.9 MANEJO DEL EXPERIMENTO
6.9.1 Material para instalación y desarrollo de cultivo
La investigación se realizo en un cuarto (5.7 m de largo por 3.8 m de ancho), y donde
se implementó lo siguiente: 12 blocks, 12 m de plástico negro, 3 L de alcohol, 42
bolsas de arroba, 11 Lb de semilla de hongo (micelio), 40 lb de cal, 84 bolsas de gaza,
1 tarea de leña (360 unidades), 1 tonel metálico (capacidad de 200 L), 7.5 costales de
sustrato, 10 pares de guantes, 10 m de pita, 10 m de alambre para energía eléctrica, 1
foco de 75 watts, 1 machete, 1 Gal de cloro, 5 mascarillas, 1 kg de jabón detergente, 2
frascos de gel antibacterial de manos, 1 navaja, 1 mochila aspersora, 150 bandejas de
duroport, 1 rollo de envoltura plástica transparente, 12 tablas, agua.
6.9.2 Procedimiento
Compra del micelio
La semilla (micelio) se adquirió en la Cooperativa Integral de Producción Pueblo Unido,
R,L., ubicada en el municipio de Zaragoza, departamento de Chimaltenango.
Recolección del sustrato
Los cuatro sustratos utilizados fueron recolectados en el cantón sur manzana 11, del
municipio de Patzùn, Chimalatenango propiedad del señor Carlos Xocop Cumez.
Preparación del sustrato
El olote y la caña de maíz se cortaron en trozos de 3 a 4 cm aproximadamente, con
la ayuda de un machete afilado; la tusa se pico y las valvas del frijol no se realizo
modificaciones.
33
Baño de agua caliente
Se sumergieron los sustratos en agua caliente a 65-82º C (temperatura de agua antes
de hervir o cuando apenas empiezan a ebullir) cada tratamiento durante 1 min.
Entonces se colocaron los sustratos húmedos sobre una cubierta de nylon limpio
para que el material tomara temperatura ambiente y que se eliminaran el excedente de
agua aproximadamente unas dos horas.
La metodología utilizada para determinar el porcentaje de humedad, es la que usan
los productores por su experiencia con la mano se apretó los sustratos y cuando de 6
a 8 gotas permisibles de escorrentía en el puño es cuando se tiene un porcentaje de
humedad 60%.
Inoculación del micelio
Las bolsas que se utilizaron fueron las de 11.363 kg de plástico transparente y donde
se introdujeron los sustratos, metiendo primeramente una capa de material y luego
parte del micelio activado.
Al colocar los 1,360.80 g de sustrato en la bolsa se enrollo y se hizo un nudo o amarre
con las puntas de la misma bolsa y luego se llevo al lugar de desarrollo.
Cuarto oscuro y colonización (ambiente protegido)
Para la primera etapa de producción (crecimiento miceliar) las bolsas se incubaron en el
invernadero, bajo condiciones de oscuridad entre 20 días, se tuvo el cuidado de no
abrir el medio en este período de tiempo.
Luego de 20 días de la siembra del micelio, se observo que dentro de la bolsa se volvió
de color blanco y saturada de él, se perforó longitudinalmente (6 incisiones
aproximadamente a cada unidad experimental) con una hoja de Gillette desinfectada
con alcohol.
34
Se dejo un lapso de cinco días entre perforación de bolsas y apertura de instalación
(para proporcionar luz y ventilación) para darle tiempo al hongo de adaptarse a perder
agua del sustrato y a la humedad relativa que se presento en la instalación.
Fructificación y cosecha
Para que los cuerpos fructíferos se desarrollaran de la manera más óptima, fue
necesario mantener dentro del cuarto oscuro una alta humedad relativa, para que el
sustrato no se secara, y con ello se obtuvo un hongo bien desarrollado.
La cosecha se realizo por medio de un cuchillo previamente desinfectado. Con el corte
de los hongos que se encontraban en las bolsas. Se registró y se tabularon datos
respecto de su peso.
6.10 VARIABLES DE RESPUESTA
Peso fresco del carpóforo o cuerpo fructífero por unidad experimental, medido en
gramos, la cual se medio por medio de una balanza después de cada cosecha.
Producción; es la medición del peso fresco del carpóforo o cuerpo fructífero de
cada uno unas unidades experimentales, acumuladas por tratamiento.
Eficiencia biológica en porcentaje; tomado de la división entre el peso del hongo
en fresco y el peso del sustrato en seco multiplicado por 100
Análisis económico; a través de la relación beneficio/costo, consiste en la
relación que se obtiene de dividir los ingresos actualizados de efectivo dentro de
los egresos actualizados de efectivo
35
6.11 ANÁLISIS DE LA INFORMACIÓN
6.11.1 Análisis estadístico
Se realizó por medio de un Análisis de Varianza (ANDEVA) y para las variables que
presenten significancia estadística se realizó la prueba de medias según Tukey (5%).
La Eficiencia biológica en porcentaje los datos se transformaron a angular o Arcoseno,
para luego realizar la ANDEVA.
6.11.2 Análisis económico
El análisis económico se utilizado es el de beneficio/costo, este método evalúa la
eficiencia con se emplean los recursos en un proyecto; y consiste en la relación que se
obtiene de dividir los ingresos actualizados de efectivo dentro de los egresos
actualizados de efectivo. (Rojas, 2004).
La relación Beneficio / costo está representada por la relación: ingresos/ egresos
El análisis de la relación B/C, toma valores mayores, menores o iguales a 1, lo que
implica que:
a. B/C > 1 implica que los ingresos son mayores que los egresos, entonces el proyecto
es aconsejable.
b. B/C = 1 implica que los ingresos son iguales que los egresos, entonces el proyecto
es indiferente.
c. B/C < 1 implica que los ingresos son menores que los egresos, entonces el proyecto
no es aconsejable. Al aplicar la relación Beneficio / costo, es importante determinar las
cantidades que constituyen los Ingresos llamados "Beneficios" y qué cantidades
constituyen los Egresos llamados "Costos" (Rojas, 2004).
Se llevaron registros económicos para contar con la información necesaria para el
cálculo del beneficio-costo del tratamiento que obtuvo mayor eficiencia biológica.
36
VII. RESULTADOS Y DISCUSION
Con el propósito de llevar una secuencia lógica en la presentación y discusión de
resultados, esta se presenta a continuación.
Primero, se analizaron los resultados de producción de Pleurotus ostreatus para
establecer que tratamiento presenta mayor rendimiento, seguido con los datos de
eficiencia biológica por unidad experimental se analizaron cuál de ellos presenta el
mayor porcentaje, esto para establecer si el primer resultado que es rendimiento está
de acuerdo al de eficiencia biológica y con ello poder confirmar la información obtenida.
Y para luego se efectuó un análisis económico de los 7 tratamientos para establecer
finalmente la relación beneficio/costo.
Producción de Pleurotus ostreatus
Pasaron 69 días desde la inoculación hasta obtener la tercera cosecha (28/04/2011 al
06/07/2011) que se baso para dar a conocer los siguientes resultados. La primera
cosecha se hizo en el tratamiento de gluma de maíz (TM), seguido de Tallo de maíz
(CM), raquis de maíz (OM), valvas de frijol (VF), valvas de frijol y tallo de maíz
(VF+CM), valvas de frijol y raquis de maíz (VF+OM) y la mezcla de valvas de frijol y
glumas de maíz (VF+TM). A continuación se presenta en el cuadro 8 los resultados de
producción de Pleurotus ostreatus por tratamiento.
Cuadro 8. Producción de Pleurotus ostreatus por tratamiento (g)
COD TRATAMIENTOS REPETICIONES Total Media (%)
1 2 3 4 5 6
VF+OM Valvas de frijol + Raquis de maíz 1559.25 1403.33 1627.29 1389.15 1941.98 1374.98 9295.98 1549.33
OM Raquis de maíz 1190.7 957.2 1120.6 1247.4 1502.55 1105.65 7124.10 1187.35
VF Valvas de frijol 1077.33 992.25 921.38 1202.55 1222.15 904.37 6320.03 1053.34
VF+CM Valvas de frijol +tallo de maíz 1089.15 1048.95 978.85 793.8 1071.63 1233.23 6215.61 1035.94
VF+TM Valvas de frijol + glumas de maíz 968.8 947.4 765.45 771.12 935.55 884.52 5272.84 878.81
TM Glumas de maíz 850.5 822.15 796.9 765.45 708.75 776.79 4720.54 786.76
CM Tallo de maíz 595.35 705.92 637.88 620 665.45 610.3 3834.90 639.15
Total 42784.00
37
Los resultados del Cuadro 8 de producción se realizó un análisis de varianza (Ver
cuadro 9) con un 05 por ciento de significancia.
Cuadro 9. Análisis de varianza para producción de Pleurotus ostreatus en peso fresco
(g).
Fuente de
variación
Grados de
Libertad
Suma de
Cuadrados
Cuadrados
medios F Pr>F
Tratamientos 6 3173603.568 528933.928 27.823 <0.0001
Error Experimental 35 665380.271 19010.865
Total 41 3838983.839
Fuente: El Autor
Cuadro 10 Resumen prueba de Tukey al 05 por ciento de significancia para Análisis de
varianza sobre producción de Pleurotus ostreatus en peso fresco (g).
TRATAMIENTO MEDIA GRUPO
VF+OM 1549.33 a
OM 1187.35 B
VF 1053.34 B C
VF+CM 1035.94 B C
VF+TM 878.81 C d
TM 786.76 d
CM 639.15 d
Valor de Tukey 0.05 de significancia
En base a la ANDEVA y la prueba de Tukey (Cuadro 9 y 10), se valida la hipótesis
planteada en esta investigación, por lo que se puede decir que si tiene incidencia los
sustratos evaluados en el rendimiento del hongo ostra Pleurotus ostreatus. El
tratamiento consistente de la mezcla entre Valvas de frijol + raquis de maíz (VF+OM)
38
fue el que tuvo mayor producción con 9295.98 g/1.68m2 con un promedio por repetición
de 1549.33 g/0.28 m2; le sigue el tratamiento raquis de maíz (OM) con 7124.10
g/1.68m2 con un promedio por repetición de 1187.35 g/0.28m2; valvas de frijol (VF) con
6320.03 g/1.68 m2 con un promedio por repetición de 1053.34g/0.28m2; valvas de frijol
+ Tallo de maíz (VF+CM) con 6215.61 g/1.68 m2 con un promedio por repetición de
1035.94/0.28m2; Valvas de frijol + glumas de maíz (VF+TM) con 5272.84 g/1.68 m2 con
un promedio por repetición de 878.81 g/0.28 m2; glumas de maíz (TM) con 4720.54
g/1.68 m2 con un promedio por repetición de 786.76 g/0.28 m2 y el tratamiento con
menos producción fue Tallo de maíz (CM) con 3834.90 g/1.68m2 y un promedio por
repetición de 639.15 g/0.28 m2
Los tratamientos que no incluyen mezclas como son glumas de maíz (TM) Y tallo de
maíz (CM) son los que presentaron menos producción (4720.54 y 3834.90 g
respectivamente) y según la prueba de Tukey (Cuadro10) pertenecen al último grupo (
d ) de producción. Como también podemos decir que el tratamiento con mezcla de
valvas de frijol + gluma de maíz (VF+TM) pertenece al penúltimo grupo ( c ) según la
prueba de Tukey, por lo que se considera que el sustrato de glumas de maíz no es
bueno para la producción del hongo ostra Pleurotus ostreatus.
Por tanto, se demuestra estadísticamente que cultivar el hongo ostra Pleurotus
ostreatus utilizando la mezcla de los sustratos de valvas de frijol + raquis de maíz
(VF+OM) brinda la mayor producción en peso fresco de carpóforos con una media de
producción de 1549.33 g en un área de 0.28 m2
Eficiencia biológica en porcentaje de los tratamientos
Con el rendimiento en peso fresco de carpóforos por unidad experimental y los 1,360.8
g de peso seco del sustrato en un área de 0.28 m2, se empezó a calcular la eficiencia
biológica para cada tratamiento. El cuadro 11 se muestra la eficiencia biológica (%) del
hongo Pleurotus ostreatus obtenidas en las 6 repeticiones.
39
Cuadro 11: Eficiencia biológica (EB) por tratamientos para producción de Pleurotus
ostreatus (en porcentaje)
COD TRATAMIENTOS REPETICIONES Media (%)
1 2 3 4 5 6
VF+OM Valvas de frijol + Raquis de maíz 114.58 103.13 119.58 102.08 142.71 101.04 113.85
OM Raquis de maíz 87.5 70.34 82.35 91.67 110.42 81.25 87.25
VF Valvas de frijol 79.17 72.92 67.71 88.37 89.81 66.46 77.41
VF+CM Valvas de frijol +tallo de maíz 80.04 77.08 71.93 58.33 78.75 90.63 76.13
VF+TM Valvas de frijol + glumas de maíz 71.19 69.62 56.25 56.67 68.75 65 64.58
TM Glumas de maíz 62.5 60.42 58.56 56.25 52.08 57.08 57.82
CM Tallo de maíz 43.75 51.88 46.88 45.56 48.9 44.85 46.97
A continuación se aprecia en la figura 5, la comparación de la eficiencia biológica en
porcentaje de la producción de hongo ostra Pleurotus ostreatus, obtenidos en la
investigación por tratamientos.
Figura 5. Comparación de Eficiencia Biológica en porcentaje, de la producción de
Hongo Ostra Pleurotus ostreatus.
40
Como se muestra en la figura 5, el tratamiento con mayor eficiencia biológica en
porcentaje fue el VF+OM, seguido del tratamiento OM y el tratamiento con menor
eficiencia biológica es CM.
Cuadro 12: Grados de eficiencia biológica por tratamiento para producción de Pleurotus
ostreatus.
COD TRAMIENTOS REPETICIONES Media
1 2 3 4 5 6
CM tallo de maíz 41.45 46.04 43.23 42.24 44.35 42.54 43.31
OM Raquis de maíz 69.30 57.00 65.15 73.24 108.82 64.38 72.98
TM Glumas ( de maíz 52.20 51.05 49.94 48.55 46.15 49.05 49.49
VF Valvas de frijol 68.82 58.65 55.40 70.03 71.41 54.58 63.15
VF+CM Valvas de frijol + tallo de maíz 63.43 61.36 58.05 49.80 62.53 72.17 61.22
VF+OM Valvas de frijol + Raquis de maíz 112.46 100.20 108.02 98.25 130.83 109.44 109.87
VF+TM Valvas de frijol + glumas de maíz 57.53 56.57 48.55 48.80 56.05 53.70 53.53
Datos transformados: Transformación angular o Arcoseno.
Cuadro 13: Resumen del Análisis de Varianza (ANDEVA) de los Grados de eficiencia
biológica, por tratamiento en la producción del Pleurotus ostreatus en peso fresco.
Fuente de
variación
Grados de
Libertad
Suma de
Cuadrados
Cuadrados
medios F Pr>F
Tratamientos 6 17492.517 2915.419 33.494 <0.0001
Error Experimental 35 3046.466 87.042
Total 41 20538.983
41
Cuadro 14. Prueba de media de Tukey al 05 por ciento de significancia para Análisis
de Varianza para los tratamientos con datos transformados de los grados de eficiencia
biológica en la producción de Pleurotus ostreatus en peso fresco.
TRATAMIENTO MEDIA (EB) GRUPO
VF+OM 109.87 a
OM 72.98 b
VF 63.15 b c
VF+CM 61.22 b c
VF+TM 53.53 c d
TM 49.49 c d
CM 43.31 d
Valor de Tukey 0.05 de significancia
Para el análisis estadístico fue necesario modificar los datos a la transformación
angular o arcoseno puesto que dichos (eficiencia biológica en porcentaje) datos
estaban expresados como porcentaje, estos tienden a una distribución binomial, en vez
de una distribución normal (Vivas, et al. 2007)
En base a los cuadros 13 y 14 el tratamiento consistente es la mezcla de valvas de
frijol + raquis de maíz (VF+OM) dio el mejor resultado en esta investigación con un
promedio de 109.87 grados de eficiencia biológica (113.85 por ciento). Y según
Salmones et al. 1997, la calidad productiva de un sustrato se percibe como aceptables
a partir de eficiencias biológicas del 100 por ciento, por lo que esta investigación logro
determinar un tratamiento que cumple con este requisito la fue el tratamiento con la
mezcla de valvas de frijol con raquis de maíz (VF+OM).
El siguiente grupo ( b ) según la prueba de Tukey, podemos mencionar los siguientes
tratamientos: raquis de maíz (OM), valvas de frijol (VF) y valvas de frijol + tallo de maíz
(VF+CM) con 72.98 (87.25%), 63.15 (77.41%) y 61.22 (76.13%) grados y porcentaje de
eficiencia biológica en promedio respectivamente, la cual demuestra que existe
42
obstáculos que impiden la extracción y aprovechamiento de nutrientes que en el
tratamiento VF+OM.
El resto de tratamientos que son VF+TM, TM y CM que la eficiencia biológica se
encuentra entre 64.58 a 46.97 por ciento, porque se puede decir que el hongo ostra
Pleurotus ostreatus tiene dificultad al momento de sintetizar proteínas, aminoácidos y
minerales a partir de tales sustratos.
En base a la prueba de medias de Tukey podemos decir que el mejor tratamiento es la
mezcla de los sustratos de Valvas de frijol + raquis de maíz (VF+OM), por lo al
mezclarlos presentan un buen medio de bioconversiòn de energía y de biodegradación
beneficiando al hongo ostra Pleurotus ostreatus.
Tomando en cuenta los resultados de producción y eficiencia biológica, del hongo ostra
Pleurotus ostreatus, se puede decir estadísticamente que el mejor tratamiento de valvas
de frijol + raquis de maíz (VF+OM), por lo que el hongo ostra Pleurotus ostreatus puede
degradar esta mezcla de sustratos y hacer buen uso de su contenido de proteínas,
aminoácidos y minerales.
ANÁLISIS ECONÓMICO
Este análisis de rentabilidad simple se enmarca en un estudio de cuantificación de la
mano de obra, materia prima e insumos, que se utilizaron en la ejecución de esta
investigación.
Se determinaron los costos de cada uno de los tratamientos (anexos 5) Utilizados en
esta investigación, bajo las siguientes condiciones.
a. Se supone tener dentro del cuarto oscuro 42 unidades experimentales, por
tratamiento, en un área útil de 11.76 m2 .
43
b. Se calcula el costo de inversión de los 7 tratamientos por separado.
c. La producción por tratamiento se calculo utilizando los resultados obtenidos de
cada uno de los tratamientos evaluados por promedio.
d. El precio de venta del hongo ostra Pleurotus ostreatus fue de Q 66.14 el kg
Por las condiciones anteriores, se presenta el cuadro 14, donde se puede observar
cada tratamiento con respecto a su producción, precio de venta, ingresos, costos y
benéfico / costo.
Cuadro 15. Resumen de beneficio / costo por tratamiento evaluados.
TRATAMIENTO CLAVE PRODUCCIÓN
(kg)
ÀREA
UTILIZADA m
2
PRECIO Q/(Kg)
INGRESOS (Q)
Costos (Q)
B/C
Valvas de frijol + raquis de maíz VF+OM 65.07 11.76 66.14 4303.73 3138.39 1.37
Raquis de maíz OM 49.896 11.76 66.14 3300.12 3133.39 1.05
valvas de frijol VF 44.24 11.76 66.14 2926.03 3048.39 0.96
Valvas de frijol + tallo de maíz VF+CM 43.5 11.76 66.14 2877.09 3069.39 0.94
Valvas de frijol + glumas de maíz VF+TM 36.91 11.76 66.14 2441.23 3108.39 0.79
Glumas de maíz TM 33.04 11.76 66.14 2185.27 3178.39 0.69
Tallo de maíz CM 26.84 11.76 66.14 1775.20 3095.39 0.57
Referencias:
Producción: Se refiere a la cantidad de hongo ostra Pleurotus ostreatus cosechado en
47 unidades experimentales por tratamiento.
Área utilizada: Se refiere al espacio necesario para las 42 unidades experimentales
Precio: Precio de venta del hongo ostra Pleurotus ostreatus
Ingresos: Se calculo multiplicando la producción por el precio
Costos: Se calculo los gastos ocasionados por tratamiento.
44
En la figura 6, se observa quien es el obtuvo mayor beneficio / por tratamiento
Figura 6. Comparación de beneficio /costo por tratamiento.
Por medio del cuadro 15 y la figura 6, el que obtuvo mayor rentabilidad es el
tratamiento de valvas de frijol + raquis de maíz (VF+OM) con un beneficio / costo de
1.37, seguido del tratamiento de raquis de maíz (OM) con un beneficio / costo de 1.05,
por lo que estos dos tratamientos cumplen con la premisa de que la relación
beneficio/costo es superior a 1 (uno). Por lo podemos decir que los tratamientos
VF+OM y OM por cada quetzal invertido genera de ganancia Q0.37 y Q 0.05
respectivamente.
El resto de tratamiento no cumplen con la premisa del análisis a través del beneficio /
costo por lo que es inferior a 1 (uno).
45
VIII. CONCLUSIONES
La producción de hongo ostra Pleurotus ostreatus del tratamiento de valvas de frijol +
raquis de maíz fue de 1,549.33 g en un área de 0.28 m2 por unidad experimental, lo
que demuestra ser el mayor de los siete tratamientos utilizados.
La eficiencia biológica de valvas de frijol + raquis de maíz fue de 113.85 por ciento y fue
la más alta.
La relación beneficio-costo del tratamiento valvas de frijol + raquis de maíz con la
producción de 42 unidades experimentales en un área de 11.76 m2 fue de 1.37.
46
IX. RECOMENDACIONES
En lugares donde sea factible el cultivo del hongo ostra Pleurotus ostreatus y se tenga
la disponibilidad de valvas de frijol y raquis de maíz, se recomienda utilizar estos dos
sustratos realizando una mezcla (1:1), para la producción del hongo ostra Pleurotus
ostreatus.
Es conveniente medir el pH del sustrato al momento de realizar otros experimentos
como este, para realizar un análisis en la productividad del desarrollo del hongo.
En la actualidad muchos agricultores del altiplano central desperdician los desechos
orgánicos de la agricultura, por lo que solo lo utilizan como abono orgánico de los
suelos, pero se recomienda evaluar esos desechos orgánicos (arveja china, brócoli,
coliflor) para la producción del hongo ostra Pleurotus ostreatus.
.
47
X. BIBLIOGRAFIA
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51
ANEXOS
Anexo 1: Instalaciones utilizadas para la producción de Pleurotus ostreatus
Fig. 7. Desinfección de la instalación Fig. 8. Entrada a la instalación
Anexo 2. Sustratos utilizados.
Fig. 9. Sustrato de tusa de maíz Fig. 10. Sustrato de caña de maíz
Fig. 11. Sustrato de olote de maíz. Fig. 12. Sustrato de valvas de frijol
52
Anexo 3. Pasteurización de los sustratos.
Fig. 13. Desinfectando el tonel Fig. 14. Desinfección de los sustratos. Anexo 4. Condiciones de de iluminación de incubación y fase de fructificación.
Fig. 15. Fase inicial FIg. 16. Invasión de micelio Fig. 17. Invasión de micelio Fig. 18. Invasión de micelio Caña de maíz tusa de maíz
53
Fig. 19. Fase de fructificación
54
Anexo 5. Cálculo de costos por tratamiento Tratamiento: Valvas de frijol + raquis de maíz (VF+OM)
DESCRIPCION PRECIO MEDIDA CANTIDAD TOTAL Q
Alcohol Q20.60 Lts 3 Q61.80
semilla de hongo Q25.00 lbs 11 Q275.00
Nylon negro Q18.00 mts 12.375 Q222.75
Bolsas de arroba Q0.62 unidad 42 Q26.04
Cal Q0.52 lbs 40 Q20.80
Gazas Q0.30 unidad 84 Q25.20
Leña Q180.00 tarea 1 Q180.00
Tonel Q125.00 unidad 1 Q125.00
Sustrato valvas de frijol Q5.00 costal 5 Q25.00
Sustrato raquis de maíz Q5.00 costal 6 Q30.00
Guantes Q1.00 par 10 Q10.00
Pita Q0.25 mts 10 Q2.50
alambre para luz Q6.00 mts 10 Q60.00
Foco Q3.50 unidad 1 Q3.50
Machete Q35.00 unidad 1 Q35.00
Cloro Q18.20 galon 1 Q18.20
Mascarillas Q1.00 unidad 5 Q5.00
Jabón detergente Q16.00 1 kg 1 Q16.00
Gel antibacterial manos Q16.00 unidad 2 Q32.00
Navaja Q35.00 unidad 1 Q35.00
Bomba de mochila Q450.00 unidad 1 Q450.00
Bandejas para empaque Q0.35 unidad 150 Q53.10
envoltura plástica transparente Q14.00 Rollo 1 Q14.00
Terreno Q100.00 Mes 2.5 Q250.00
Tablas Q25.00 mes 2.5 Q62.50
Agua Q2 Mes 2.5 Q5.00
Subtotal Q2,043.39
55
Mano de obra
DESCRIPCION PRECIO MEDIDA CANTIDAD TOTAL Q
Acondicionamiento del lugar Q40 jornal 4 Q160
Acarreo, corte y picado de sustrato Q40 jornal 5 Q200
Esterilización Q40 jornal 5 Q200
Inoculaciòn Q40 jornal 2 Q80
Riego Q5 hora 52 Q260
Para cosecha Q5 hora 39 Q195
Subtotal Q Q1,095
Resumen Descripción Subtotal Materia prima y materiales Q2,043.39
Mano de obra Q1,095 Total Q3,138.39
56
Tratamiento: Raquis de maíz
DESCRIPCION PRECIO MEDIDA CANTIDAD TOTAL Q
Alcohol Q20.60 Lts 3 Q61.80
semilla de hongo Q25.00 Lbs 11 Q275.00
Nylon negro Q18.00 Mts 12.375 Q222.75
Bolsas de arroba Q0.62 unidad 42 Q26.04
Cal Q0.52 Lbs 40 Q20.80
Gazas Q0.30 unidad 84 Q25.20
Leña Q180.00 Tarea 1 Q180.00
Tonel Q125.00 unidad 1 Q125.00
Sustrato raquis de maíz Q5.00 costal 11 Q55.00
Guantes Q1.00 Par 10 Q10.00
Pita Q0.25 Mts 10 Q2.50
alambre para luz Q6.00 Mts 10 Q60.00
Foco Q3.50 unidad 1 Q3.50
Machete Q35.00 unidad 1 Q35.00
Cloro Q18.20 Galón 1 Q18.20
Mascarillas Q1.00 unidad 5 Q5.00
Jabón detergente Q16.00 1 kg 1 Q16.00
Gel antibacterial manos Q16.00 unidad 2 Q32.00
Navaja Q35.00 unidad 1 Q35.00
Bomba de mochila Q450.00 unidad 1 Q450.00
Bandejas para empaque Q0.35 unidad 150 Q53.10
envoltura plástica transparente Q14.00 Rollo 1 Q14.00
Terreno Q100.00 Mes 2.5 Q250.00
Tablas Q25.00 Mes 2.5 Q62.50
Agua Q2 Mes 2.5 Q5.00
Subtotal Q2,043.39
57
Mano de obra
DESCRIPCION PRECIO MEDIDA CANTIDAD TOTAL Q
Acondicionamiento del lugar Q40 jornal 4 Q160
Acarreo, corte y picado de sustrato Q40 jornal 5 Q200
Esterilización Q40 jornal 5 Q200
Inoculaciòn Q40 jornal 2 Q80
Riego Q5 hora 52 Q260
Para cosecha Q5 hora 38 Q190
Subtotal Q Q1,090
Resumen Descripción Subtotal Materia prima y materiales Q2,043.39
Mano de obra Q1,090 Total Q3,133.39
58
Tratamiento: Valvas de frijol
DESCRIPCION PRECIO MEDIDA CANTIDAD TOTAL Q
Alcohol Q20.60 Lts 3 Q61.80
semilla de hongo Q25.00 lbs 11 Q275.00
Nylon negro Q18.00 mts 12.375 Q222.75
Bolsas de arroba Q0.62 unidad 42 Q26.04
Cal Q0.52 lbs 40 Q20.80
Gazas Q0.30 unidad 84 Q25.20
Leña Q180.00 tarea 1 Q180.00
Tonel Q125.00 unidad 1 Q125.00
Sustrato valvas de frijol Q5.00 costal 11 Q55.00
Guantes Q1.00 par 10 Q10.00
Pita Q0.25 mts 10 Q2.50
alambre para luz Q6.00 mts 10 Q60.00
Foco Q3.50 unidad 1 Q3.50
Machete Q35.00 unidad 1 Q35.00
Cloro Q18.20 galon 1 Q18.20
Mascarillas Q1.00 unidad 5 Q5.00
Jabón detergente Q16.00 1 kg 1 Q16.00
Gel antibacterial manos Q16.00 unidad 2 Q32.00
Navaja Q35.00 unidad 1 Q35.00
Bomba de mochila Q450.00 unidad 1 Q450.00
Bandejas para empaque Q0.35 unidad 150 Q53.10
envoltura plástica transparente Q14.00 Rollo 1 Q14.00
Terreno Q100.00 Mes 2.5 Q250.00
Tablas Q25.00 mes 2.5 Q62.50
Agua Q2 Mes 2.5 Q5.00
Subtotal Q2,043.39
59
Mano de obra
DESCRIPCION PRECIO MEDIDA CANTIDAD TOTAL Q
Acondicionamiento del lugar Q40 jornal 4 Q160
Acarreo, corte y picado de sustrato Q40 jornal 2 Q80
Esterilización Q40 jornal 5 Q200
Inoculaciòn Q40 jornal 2 Q80
Riego Q5 hora 59 Q295
Para cosecha Q5 hora 38 Q190
Subtotal Q Q1,005
Resumen Descripción Subtotal Materia prima y materiales Q2,043.39
Mano de obra Q1,005 Total Q3,048.39
60
Tratamiento: Valvas de frijol + caña de maíz
DESCRIPCION PRECIO MEDIDA CANTIDAD TOTAL Q
Alcohol Q20.60 Lts 3 Q61.80
semilla de hongo Q25.00 lbs 11 Q275.00
Nylon negro Q18.00 mts 12.375 Q222.75
Bolsas de arroba Q0.62 unidad 42 Q26.04
Cal Q0.52 lbs 40 Q20.80
Gazas Q0.30 unidad 84 Q25.20
Leña Q180.00 tarea 1 Q180.00
Tonel Q125.00 unidad 1 Q125.00
Sustrato valvas de frijol Q5.00 costal 5 Q25.00
Sustrato tallo de maíz Q3.00 costal 7 Q21.00
Guantes Q1.00 par 10 Q10.00
Pita Q0.25 Mts 10 Q2.50
alambre para luz Q6.00 Mts 10 Q60.00
Foco Q3.50 unidad 1 Q3.50
Machete Q35.00 unidad 1 Q35.00
Cloro Q18.20 Galón 1 Q18.20
Mascarillas Q1.00 unidad 5 Q5.00
Jabón detergente Q16.00 1 kg 1 Q16.00
Gel antibacterial manos Q16.00 unidad 2 Q32.00
Navaja Q35.00 unidad 1 Q35.00
Bomba de mochila Q450.00 unidad 1 Q450.00
Bandejas para empaque Q0.35 unidad 150 Q53.10
envoltura plástica transparente Q14.00 Rollo 1 Q14.00
Terreno Q100.00 Mes 2.5 Q250.00
Tablas Q25.00 mes 2.5 Q62.50
Agua Q2 Mes 2.5 Q5.00
Subtotal Q2,034.39
61
Mano de obra
DESCRIPCION PRECIO MEDIDA CANTIDAD TOTAL Q
Acondicionamiento del lugar Q40 jornal 4 Q160
Acarreo, corte y picado de sustrato Q40 jornal 4 Q160
Esterilización Q40 jornal 5 Q200
Inoculación Q40 jornal 2 Q80
Riego Q5 hora 52 Q260
Para cosecha Q5 hora 35 Q175
Subtotal Q Q1,035
Resumen Descripción Subtotal Materia prima y materiales Q2,034.39
Mano de obra Q1,035 Total Q3,069.39
62
Tratamiento: Valvas de frijol + glumas de maíz
DESCRIPCION PRECIO MEDIDA CANTIDAD TOTAL Q
Alcohol Q20.60 Lts 3 Q61.80
semilla de hongo Q25.00 lbs 11 Q275.00
Nylon negro Q18.00 mts 12.375 Q222.75
Bolsas de arroba Q0.62 unidad 42 Q26.04
Cal Q0.52 lbs 40 Q20.80
Gazas Q0.30 unidad 84 Q25.20
Leña Q180.00 tarea 1 Q180.00
Tonel Q125.00 unidad 1 Q125.00
Sustrato valvas de frijol Q5.00 costal 5 Q25.00
Sustrato glumas de maíz Q10.00 costal 6 Q60.00
Guantes Q1.00 par 10 Q10.00
Pita Q0.25 mts 10 Q2.50
alambre para luz Q6.00 mts 10 Q60.00
Foco Q3.50 unidad 1 Q3.50
Machete Q35.00 unidad 1 Q35.00
Cloro Q18.20 galon 1 Q18.20
Mascarillas Q1.00 unidad 5 Q5.00
Jabón detergente Q16.00 1 kg 1 Q16.00
Gel antibacterial manos Q16.00 unidad 2 Q32.00
Navaja Q35.00 unidad 1 Q35.00
Bomba de mochila Q450.00 unidad 1 Q450.00
Bandejas para empaque Q0.35 unidad 150 Q53.10
envoltura plástica transparente Q14.00 Rollo 1 Q14.00
Terreno Q100.00 Mes 2.5 Q250.00
Tablas Q25.00 mes 2.5 Q62.50
Agua Q2 Mes 2.5 Q5.00
Subtotal Q2,073.39
63
Mano de obra DESCRIPCION PRECIO MEDIDA CANTIDAD TOTAL Q
Acondicionamiento del lugar Q40 jornal 4 Q160
Acarreo, corte y picado de sustrato Q40 jornal 4 Q160
Esterilización Q40 jornal 5 Q200
Inoculación Q40 jornal 2 Q80
Riego Q5 hora 52 Q260
Para cosecha Q5 hora 35 Q175
Subtotal Q Q1,035
Resumen Descripción Subtotal Materia prima y materiales Q2,073.39
Mano de obra Q1,035 Total Q3,108.39
64
Tratamiento: Glumas de maíz
DESCRIPCION PRECIO MEDIDA CANTIDAD TOTAL Q
Alcohol Q20.60 Lts 3 Q61.80
semilla de hongo Q25.00 lbs 11 Q275.00
Nylon negro Q18.00 mts 12.375 Q222.75
Bolsas de arroba Q0.62 unidad 42 Q26.04
Cal Q0.52 lbs 40 Q20.80
Gazas Q0.30 unidad 84 Q25.20
Leña Q180.00 tarea 1 Q180.00
Tonel Q125.00 unidad 1 Q125.00
Sustrato glumas de maíz Q10.00 costal 12 Q120.00
Guantes Q1.00 par 10 Q10.00
Pita Q0.25 mts 10 Q2.50
alambre para luz Q6.00 mts 10 Q60.00
Foco Q3.50 unidad 1 Q3.50
Machete Q35.00 unidad 1 Q35.00
Cloro Q18.20 galon 1 Q18.20
Mascarillas Q1.00 unidad 5 Q5.00
Jabón detergente Q16.00 1 kg 1 Q16.00
Gel antibacterial manos Q16.00 unidad 2 Q32.00
Navaja Q35.00 unidad 1 Q35.00
Bomba de mochila Q450.00 unidad 1 Q450.00
Bandejas para empaque Q0.35 unidad 150 Q53.10
envoltura plástica transparente Q14.00 Rollo 1 Q14.00
Terreno Q100.00 Mes 2.5 Q250.00
Tablas Q25.00 mes 2.5 Q62.50
Agua Q2 Mes 2.5 Q5.00
Subtotal Q2,108.39
65
Mano de obra
DESCRIPCION PRECIO MEDIDA CANTIDAD TOTAL Q
Acondicionamiento del lugar Q40 jornal 4 Q160
Acarreo, corte y picado de sustrato Q40 jornal 5 Q200
Esterilización Q40 jornal 5 Q200
Inoculación Q40 jornal 2 Q80
Riego Q5 hora 52 Q260
Para cosecha Q5 hora 34 Q170
Subtotal Q Q1,070
Resumen Descripción Subtotal Materia prima y materiales Q2,108.39
Mano de obra Q1,070 Total Q3,178.39
66
Tratamiento: Caña de maíz
DESCRIPCION PRECIO MEDIDA CANTIDAD TOTAL Q
Alcohol Q20.60 Lts 3 Q61.80
semilla de hongo Q25.00 lbs 11 Q275.00
Nylon negro Q18.00 mts 12.375 Q222.75
Bolsas de arroba Q0.62 unidad 42 Q26.04
Cal Q0.52 lbs 40 Q20.80
Gazas Q0.30 unidad 84 Q25.20
Leña Q180.00 tarea 1 Q180.00
Tonel Q125.00 unidad 1 Q125.00
Sustrato de tallo de maíz Q3.00 costal 14 Q42.00
Guantes Q1.00 par 10 Q10.00
Pita Q0.25 mts 10 Q2.50
alambre para luz Q6.00 mts 10 Q60.00
Foco Q3.50 unidad 1 Q3.50
Machete Q35.00 unidad 1 Q35.00
Cloro Q18.20 galon 1 Q18.20
Mascarillas Q1.00 unidad 5 Q5.00
Jabón detergente Q16.00 1 kg 1 Q16.00
Gel antibacterial manos Q16.00 unidad 2 Q32.00
Navaja Q35.00 unidad 1 Q35.00
Bomba de mochila Q450.00 unidad 1 Q450.00
Bandejas para empaque Q0.35 unidad 150 Q53.10
envoltura plastica transparente Q14.00 Rollo 1 Q14.00
Terreno Q100.00 Mes 2.5 Q250.00
Tablas Q25.00 mes 2.5 Q62.50
Agua Q2 Mes 2.5 Q5.00
Subtotal Q2,030.39
67
Mano de obra
DESCRIPCION PRECIO MEDIDA CANTIDAD TOTAL Q
Acondicionamiento del lugar Q40 jornal 4 Q160
Acarreo, corte y picado de sustrato Q40 jornal 5 Q200
Esterilización Q40 jornal 5 Q200
Inoculaciòn Q40 jornal 2 Q80
Riego Q5 hora 52 Q260
Para cosecha Q5 hora 33 Q165
Subtotal Q Q1,065
Resumen Descripción Subtotal Materia prima y materiales Q2,030.39
Mano de obra Q1,065 Total Q3,095.39
