Universidad de la Habana Instituto de Farmacia y...
Transcript of Universidad de la Habana Instituto de Farmacia y...
Universidad de la HabanaInstituto de Farmacia y Alimentos
Tesis en opción al grado científico de Doctor en Ciencias Farmacéuticas
Título: Actividad antimicrobiana, balance redox celular, seguridad y ventajas económicas de una crema elaborada con propóleos de Manzanillo, en paceinte con pie diabético.
Autor: Msc. Isis Beatriz Bermúdez CampsTutores: Dra. Olga Sonia León FernándezDra. Ofelia Bilbao Bevoredo.
Ciudad de la HabanaDiciembre 2003
Feliz el hombre que se dedica a
la sabiduría y que se hace preguntas
hasta que obtenga respuestas.
Tirácides 14, 20
Dedicada:
A ti Señor que llenas mi vida, ennobleces mis pasos e iluminas mi camino.A mi esposo y mis hijas, mis más preciados tesoros.A la memoria de mis abuelos y de mi madreA mi padre
Agradecimientos:
El camino para alcanzar una meta no siempre resulta tan fácil como se espera, sólo la fuerza y el empeño que llena nuestro interior, permite que metas inalcanzables sean superadas.Llegar al final de este proyecto fue siempre mi meta, pero sólo fue posible por ti Señor, que con tu amor infinito, me diste la oportunidad de contar con personas en las que encontré un motivo más para agradecerte.Hoy frente a ti, doy las gracais a todos los que supieron entregar parte de si, para hacer realidad este sueño.Ante todo mi esposo y mis hijos que supieron soportat con paciencia y con amor, las horas de soledad, compartiendo con mis éxitos y mis fracasos, por ser únicos e insustituibles en mi corazón.A la Dra. Olga Sonao León Fernández porque a pesar de las múltiples tareas que cada día enfrentaba, supo siempre encontrar un espacio de su escaso tiempo disponible, para trasmitirme su experiencia an el campo de la invetigación científica. Gracias Olga por hacerme sentir segura, por la confianza que depositó en mi trabajo y por hacer de este sueño una realidad.A la Dra. Ofelia Bilbac Bevoredo por sus sabios consejos, por ese optimismo que sipo trasmitirme y por aceptar sis reparos la dirección de este trabajo.A mi querido Gastón, en quién encontré un profesional son límites, con el que pude contar en todo momento y compartir los obstáculos que el camino tuvo durante mi paso.A Idelsys por demostarme una vez más, que puedo contar con ella en los momentos más arduos.A mis abuelos Justo y Esperanza porque siempre fueron mi razón de ser.A mi madre que hoy no comparte mi dicha, pero la fuerza de su espíriu me ha hecho claudicar. Gracias mami porque para llevar este proyecto, siempre tuve tu apoyo incondicional, hoy tu anhelado sueño sa hace realidad.A mi padre por su ayuda material y por trasmitirme ese afán incesante por saber, por investigar, por descubrir algo nuevo, por ahcer ciencia.A Florinda por abrir su corazón en el momento preciso, por darme fuerzas para enfrentar las mazqyundades humanas y por hacerme comprender que toda causa tiene su efecto.
A mi suegro que hoy noestá con nosotros, pero que ha estado a mi lado durante todos estos añios, alentándome
con la fuerza de su espíritu.
A mi suegra por ese granito de arena que aportó en este empeño.
A Mariano porque siempre fue participe de todos los desvelos.
A mi hermano y mi cuñada por darme la oportunidad de ver crecer a mis sobrinas.
A mi tía Esperancita y mis primas Alina y Ana por apoyarme cuando las fuerzas me faltaban.
A Roldy por hacer suyo mis problemas y porque supo hacer feliz a mi mami.
A mis amigas Ivette y Luzell por cada momento compartido, por sus consejos oportunos, por su esímulo diario,
por todo el empeño que pusieron en esta obra y por dalre valor a todas mis cosas.
A mis queridas Charo, Rosa y Data por su amistad y por facilitarme el camino para el ligro de esta meta.
Al Dr. Antonio Iraizos y el Msc. Oscar Rulpeiro por satisfacer mis inquietudes y enriqueces mis conocimientos en
le campo de la tecnología farmacéutica.
A Yami, Anita, Degnis, Lili, Aliocha, Grisell y Tamara por esa amistad que surgió entre nosotros y qu espero que
se conserve por siempre.
A cuca y Carradero por todo su apoyo y en especial por cuidar con tanto cariño a uno de mis tesoros.
A Cora por brindarme siempre lo mejor de si para hacer soportable mi estancia en La Habana.
A mi colega Noralis Rodríguez porque gracias a ella comencé lo que hoy culmino.
Al Dr. Enrique Perdomo, el Dr JorgeBertanga, el Dr. Nelson Merino, la Dra. Marta Deas y el Dr. Gregorio Martínez
por escucharme siempre y trasmitirme sus sabias sugerencias.
A la Dra. Alicia Delgado por sus palabras de aliento y el inagotable empeño e interés en la culminación exitosa de
este trabajo que hoy defiendo.
A la Dr. María Antonia Torres Alemán por guiar mis primeros pasos en el campo de la invetigación científica y por
apoyarme siempre en cada tarea que compartí con ella.
A Boris, Arturo y Aniuska por su desiteresada ayuda, su entera dedicación a buena parte de este trabajo por
mantenerme a toda hora la sonrisa entre los labios, a pesar de que no siempre salieron las cosas como esperaba.
A la Dra. Rosario Del Roso y al Msc. Alejandro Garcés por permitirme continuar y culminar este proyecto.
A Matos, Javier, Alejandro, Boly, Fausto, Basem, Yeny, Dulce, y Husam por hacerme recordar que existen cosas
más importantes que psasr por la vida.
A Diusmel, Rainer, Radamé, Nelson, Edelso, Ivan, Yaima, Pedro y Yaima, por brindarme su sonrisa ante cada
desaliento.
A Matos, Ana, Esther, Isaías, Conchitas, Rita, Omar, Alicia, Marino, Juani, Girón, Deybis, Lisette, Augusto, Javier,
Maruchi y Alba porque en cada uno de ellos encontré el auxilio oportuno.
A Carlitos y Ernesto a quienes conocí en los momentos finales de este proyecto, sin embargo llegaron para
quedarse.
A Ortica, Adrián, Marisel y Beba por trasmitirme su alegría y sus atenciones en los momentos más arduos.
A todos los compañeros del Centro de Investigaciones y Evaluaciones Biológicas por compartir conmigo estos años
intenso trabajo.
A la Dra. Mirtha Casstiñeiras por poner a prueva mis conocimientos y enseñarme el valor de la ética profesional.
Al Dr. eduardo Fernández por demostarme la magnitud de su aprecio.
Al Dr. Osmany Cuesta, al Dr. Armando Cuellar y a la Msc. Nercy Carratalá por sus útiles consejos y sus sabias
recomendaciones.
A Oscar, Obdulia y Rafael porque aunque nada los ató a esta investigación, sus manos estuvieron en muchos de
los ensayos que soportan esta invetigación.
Al Lic. Rubén Castillo por su siempre atenta sonrisa cargada de gentileza y especialmente por ofrecerme su valiosa
ayuda en el procesamiento estadístico de los resultados trasmitiéndome con maestría profesional su experiencia
en este campo.
Al Lic. Jorge Lodos y ak Tec. Dariel Aguiar por sacrificar parte de su tiempo disponible en la realización del análisis
planimétrico de las lesiones evaluadas.
A la Lic: Martha Guerra y la Lic. Leticia Martínez por la calidad del ensayo microbiológico desarrollado
en las etapas de trabajo que fue necesario llevar a cabo el mismo.
A Naylett, Oneida, Liudmila, Sandra, Leonardo, Leonor y Alina de las Mercedes por su ayuda en le
momento preciso.
A Ania, Renato, Villalon, Aurora, Julio, Manuel Collaso y la Dra. Cheyla Romary por dedicar parte de su
tiempo a revisar cautelosamente el documento de tesis y emitir sus valiosas sugerencias, para ellos mis
sinceras gratitud.
A todos mis compañeros del Departamento de Farnaciade la Universidad de Oriente por la confianza
depositada en mi, por la cual hoy hago realidad este sueño.
A todo el personal administrativo que labora enle Instituto de Farnacia y Alimentos y en especial a su
dirección por el respaldo brindado en todos estos años de superación profesional.
A Dra. Celso Suárez Lescay, la Dra. Victoria Frómeta, al Dr. Juan E. Yara, el Dr. Braulio Lima, la Dra.
Niobalis Franco y a todo el personal médico y paramédico de los Servicios de Angiología de los
Hospitales Clínico Quirúrgico Docente``Saturnino Lora``, Hospital Militar`` Joaquín Castillo Duany`` y
Hospital ̀ `Salvador Allende`` por confiar en mí y aceptar dese el primer momento el proyecto de esta
investigación.
A cada uno de los pacientes que facilitaron nuestra labor, a pesar de sus condiciones difíciles de salud.
A todos los quie por un motivo u otro, colocaron pidras en el camino para que este sueño no se hiciera
realidad porque me hicieron comprender que Grande no es el que siempre lleva el triunfo entre las
manos, sino el que jamás se desalienta.
Y no quiero dejar de agradecer de modo especial a todos miscolegas, que como estudiantes colaboraron
con dedicación y responsabilidad en la búsqueda de estos resultados, siendo decisiva su participación
para el logro de mis propósitos, llegue a Odalis, Maislin, Victor, Yanin, Marealis, Marlene, georgina,
Mariela, María Julia, Alina, Martha, Alicia, Rebeca, Monica, Yoagne, hela, ania, Ariel, Keyla, Eliecer,
Irlanda, Yeny, Yasmianis, Ana Mari, Evelyn e Irela, mi más sincera gratitud. A todos Muchas Gracias.
de la región de Manzanillo, para uso clínico en pacientes con Pie Diabético, atendiendo a la ausencia
de una terapia específica para su tratamiento. A tales fines se establece una estrategia de desarrollo
del producto que comprende desde la selección, caracterización y estandarización de la materia
prima y de un sistema medicamentoso adecuado al tipo de lesión hasta la evaluación de su eficacia
y seguridad en el orden experimental.
Se culmina la investigación con un estudio clínico que no solo considera variables de eficacia como
el análisis microbiològico de la lesión, la planimetría y la estadía hospitalaria sino que incluye
también una caracterización sistèmica del estado redox de los pacientes, considerando la
participación de la Especies Reactivas de Oxigeno (ERO) en las complicaciones macroangiopáticas.
Para este ensayo se tomó una muestra de 120 pacientes con pie diabético diagnosticados en los
Servicios de Angiologia del Hospital Clínico Quirúrgico Docente “Saturnino Lora”, el Hospital Militar
“Joaquín Castillo Duany” de Santiago de Cuba y el Hospital “Salvador Allende”de Ciudad de La
Habana, en el período comprendido entre Diciembre de 1996 a Mayo del 2000.
Los resultados demostraron que el propóleos de la región de Manzanillo cumple con los parámetros
de calidad para ser utilizado en forma de crema en el tratamiento del Pie diabético, con seguridad y
ventajas clínicas respecto a la Terapia Habitual, ya que combina sus propiedades antimicrobianas
frente a gérmenes como el Staphylococcus aureus, la Klebsiella y la Pseudomonas aeruginosa
con sus efectos reguladores sistémicos del estado redox celular, alcanzándose en los pacientes una
susceptibilidad a la peroxidación lipidica por debajo de 2460+622 nmol/L, una capacidad
antioxidante mayor del 66,2±10,2 %, con reducción de los hidroperóxidos totales a valores cercanos
a 103,7±17,7 itimol/L, aumento de la superóxido dismutasa por encima de 1460±140 U/L/min y
bajos niveles de Catalasa que no alcanzan el valor de normalidad tomado como referencia
(1000±125 U/L/min); lo cual favoreció la cicatrización de la lesión de los mismos, con reducción de la
estadía hospitalaria, la cantidad y extensión de las amputaciones y la disminución del costo total del
tratamiento con respecto a la terapia convencional entre un 84,8% (con la formulación al 10%) y un
84,3% (con la preparada al 15%).
La Diabetes Mellitus es una causa importante de discapacidad y de muerte. Esta entidad
se encuentra entre las diez principales causas de muerte en nuestro país, ocupando el 7mo lugar
con una tasa de 23, 4 por 100 000 habitantes , perdiéndose 1,1 años de vida potencial po 1000
habitantes de 1-64 años, como consecuencua de esta afección endocrina y sus complicaciones.
Se realiza un estudio con el propósito de disponer de una crema elaborada a partir del propóleos,
SINTESIS
26
29
29
32
32
34
34
35
36
37
37 38
50 54
56
57 57
57
58
59
59 59
60
60
61
62
67
68
70
85 86
INTRODUCCIÓN DESARROLLO Capítulo 1 Revisión Bibliográfica 1.1 Propóleos cubanos. Similitudes y diferencias 1.1.1 Consideraciones generales sobre su composición química 1.1.2 Reportes sobre su actividad antimicrobiana, antioxidante y cicatrizante 1.1.3 Antecedentes de evaluaciones toxicológicas 1.2 Pie diabético. Generalidades 1.2.1 Clasificación 1.2.2 Tratamiento 1.3 Especies Reactivas de Oxígeno y Diabetes mellitus 1.3.1 Especies Reactivas de Oxígeno 1.3.2 Mecanismos de generación e inactivación de ERO 1.3.3 Estrés oxidativo y complicaciones asociadas a la Diabetes mellitus 1.3.4 Mecanismos moleculares y celulares de las complicaciones diabéticas 1.4 Evaluación toxicológica de medicamentos para uso tópico Capítulo 2 Materiales y Métodos 2.1 Preparación de la muestra 2.1.1 Materia prima Propóleos. Control de calidad
2.1.2 Elaboración del extracto blando de propóleos
2.1.2.1 Estandarización de los parámetros de calidad del extracto blando de propóleos2.2 Determinación de la actividad bacteriostática y bactericida in vitro
2.2.1 Comportamiento de la actividad antimicrobiana en el tiempo
2.3 Ensayos toxicológicos
2.3.1 Toxicidad a dosis única oral en roedores y no roedores.
2.3.2 Toxicidad a dosis única dérmica en roedores y no roedores
2.3.3 Irritabilidad dérmica
2.3.4 Irritabilidad oftálmica
2.3.5 Ensayo de Sensibilización
2.4 Ensayo clínico
2.5 Evaluación de la relación Beneficio - Riesgo
2.6 Evaluación de la relación Costo- Eficacia
2.7 Procesamiento estadístico de los resultados
Capítulo 3 Resultados
3.1 Materia prima de propóleos. Control de calidad
3.2 Estandarización de los parámetros de calidad del extracto blando de propóleos 3.3
Actividad antimicrobiana in vitro
3.3.1 Comportamiento de la actividad antimicrobiana en el tiempo
3.4 Evaluación toxicológica
3.4.1 Evaluación de la Toxicidad aguda oral y dérmica en roedores y no roedores 3.4.2
Ensayo de Irritabilidad dérmica
3.4.3 Ensayo de Irritabilidad oftálmica
3.4.4 Ensayo de Sensibilización
3.5 Resultados del ensayo clínico
3.6 Evaluación de la Relación Beneficio- Riesgo
3.7 Evaluación de la Relación Costo- Eficacia
Capítulo 4 Discusión de los resultados
CONCLUSIONES
RECOMENDACIONES
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS 87
26252220181716
16
141313108
881
15
PÁGINA
INTRODUCCIÓN
Introducción
1
INTRODUCCION:
El propóleos ha sido siempre una interrogante para la ciencia por sus numerosas
propiedades terapéuticas atribuidas, aún no demostradas totalmente, desde el punto de vista
científico. Se conoce que la composición química del propóleos, responsable de sus acciones
farmacológicas varía de acuerdo a la región geográfica, climática y sobre todo según la fuente
vegetal de que provenga, con incidencias notables en el índice de oxidación directamente
relacionado con el poder antioxidante, de gran importancia para las acciones terapéuticas
asignadas. 1,2
Desde la antigüedad se conocen los efectos, que lo hacen de utilidad en la curación de
heridas y llagas, existiendo numerosos reportes acerca de su capacidad de intensificar la
proliferación epitelial y el crecimiento del tejido de granulación, disminuyendo el número de
neutrófilos en el sitio lesionado con aumento del número de histiocitos.3'5 Además, este
producto forma una película adherente y protectora, en la superficie de la lesión, que suprime
la acción de irritantes externos garantizando el desarrollo de sus acciones sobre la piel
dañada. 6
Otros autores 5’ 7 plantean que este producto mejora la circulación sanguínea y linfática, con
disminución brusca de la permeabilidad de los vasos superficiales afectados, como
consecuencia de sus propiedades antimicrobianas y cicatrizantes que pueden ser responsables
de inhibir los procesos asociados a la formación de peróxidos lipídicos que se generan en las
lesiones ulcerativas. 8 ,12
El empleo de este apifármaco en el tratamiento del pie diabético, hasta el momento no ha
sido objeto de investigación. En la literatura revisada existen reportes del empleo de tinturas y
cremas con bases de absorción oclusivas y de ungüento hidrófilo elaboradas con el propóleos
de la región occidental y central del país en úlceras flebostáticas, sicklémicas, venosas, así
como en gangrenas 13-16, pero no se habla de su uso en el pie diabético, ni tampoco de
evaluaciones con el propóleos de la región de Manzanillo, zona con una rica fuente de este
producto apícola, de muy buena calidad según estudios realizados 17 que caracterizaron desde
el punto de vista físico-químico las principales fuentes de propóleos de diferentes municipios de
la provincia Granma, demostrando con su evaluación que las localidades El Palmar, La
Demajagua y Calicito del municipio de Manzanillo, son las que poseen los mejores propóleos
con los más bajos índices de oxidación.
En estas regiones abunda una flora rica en Mangle rojo, Mangle negro, Campanilla, Júpiter
y en algunas zonas alejadas de la costa crecen especies del género Clusia. De esta vegetación
las abejas recolectan resinas florales para la fabricación de propóleos ,s y se conoce que el
mangle rojo y el negro son ricos en taninos, la campanilla en alcaloides
2
de propiedades hipnóticas, el Júpiter posee sustancias astringentes y drásticas 19 y las
especies del género Clusia son productoras de benzofenonas premiadas 20, que de hecho
pueden estar presentes en esta resina balsámica objeto de estudio. Existen reportes acerca del
uso de las cuatro primeras para la curación de heridas, llagas, úlceras y procesos
inflamatorios 19, así como de las benzofenonas premiadas presentes en las especies del género
Clusia, como antimicrobianas frente a bacterias gram (+) y gram (-) y hongos como la Candida
albicans.20 Estas referencias justifican los diversos usos del propóleos, referidos en la
literatura y es posible que las abejas al usar las resinas de estas plantas transmitan muchas
sustancias biológicamente activas a este producto apícola.
En el mundo, el propóleos se comercializa en múltiples formas farmacéuticas y en nuestro
país existen algunos productos que ya están a la venta: Propolisina (tintura), Viprol (Tabletas),
Propolium (trosciscos), Propolium (jabón medicinal) entre otros, pero no existen cremas con las
dosis y las condiciones idóneas para tratar lesiones en los miembros inferiores, tales como el
pie diabético, afección en la cual la cicatrización se dificulta, debido al descontrol metabòlico y
la infección sostenida, lo que trae consigo una variación en el modo de inda de los pacientes,
ya que ocasiona innumerables bajas laborales por la invalidez parcial o total que produce,
siendo el costo del tratamiento muy elevado por la demora en la cura definitiva de las mismas.
21
La Diabetes y sus complicaciones constituyen uno de los problemas de salud de mayor
incidencia en el orden económico y social, existiendo un consenso, bastante generalizado, en el
sentido de que en esta enfermedad, la hiperglicemia incrementa la producción de ERO
(Especies Reactivas de Oxígeno) 22- 23 mediante la autoxidación de la glucosa 24 y también por
la glicosidación no enzimàtica de proteínas, 25 además los cambios en el metabolismo lipidico
que ocurren, conducen a complicaciones vasculares y a la aparición de las úlceras en las
piernas. 26
Investigaciones epidemiológicas establecen que las úlceras en las piernas son comunes en
países desarrollados en los cuales se ha elevado la población adulta 21; existen referencias de
que en Estados Unidos estas lesiones afectan a cerca de 2,5 millones de personas,
alcanzándose en Suiza y Norteamérica una prevalendo del 1% en la población cercana a los 60
años. 27
En nuestro país, el Instituto Nacional de Angiologia o Cirugía Vascular (INACV) realizó un
censo de amputados, en 1988, en el municipio Cerro, de Ciudad de La Habana y obtuvo que el
1,6 % de los diabéticos de esta localidad han sufrido una amputación y el 76% es portador del
pie diabético. 28
El pie diabético constituye una patología de tratamiento prolongado, muchas veces de
hospitalización y en el peor de los casos de amputación debido a la infección por gérmenes
gram (+) y gram (-), la literatura destaca 28 que esta afección es la consecuencia más temida de
las angiopatías periféricas y responsable de que entre el 40% y el 50% de las amputaciones se
realicen a pacientes diabéticos. La búsqueda de una terapéutica efectiva, económica y segura
introducción
3
para el paciente, afectado por estas lesiones, ha dado lugar a numerosas investigaciones y
actualmente son muchos los medicamentos usados pero pocos los útiles. 29
Los antecedentes antes expuestos y la necesidad de demostrar científicamente la seguridad
y eficacia clínica del propóleos recolectado en la región oriental del país (Manzanillo), en el
tratamiento del Pie Diabético condicionaron la realización de la presente investigación,
estableciéndose una estrategia científica que permitiera caracterizar la actividad
antimicrobiana de este producto apícola, teniendo en cuenta que la terapia habitualmente
empleada para tratar a este tipo de paciente está basada en el uso de antibióticos específicos
para el microorganismo localizado en la lesión y en el control metabòlico del enfermo. Por otro
lado, se tuvo en cuenta la caracterización del estado redox celular de los pacientes, a fin de
conocer y establecer cómo se comportan los mediadores del estrés oxidativo en esta
complicación vascular, en la que desempeñan un papel importante.
De hecho, el uso en la clínica del propóleos para tratar el pie diabético no resulta fácil
porque es un principio activo resinoso y pegajoso, que dispensado en tinturas con vehículo
alcohólico puede irritar dicha lesión, además de ser incomodo su uso para el paciente por el
ardor que puede ocasionar. Por otro lado, las preparaciones semisólidas con base de absorción
oclusiva, no son idóneas para pacientes con pie diabético porque forman un lecho hidrófilo
sobre la piel y no dejan evaporar la humedad, creando un medio favorable para el crecimiento
microbiano, que indiscutiblemente condiciona el empeoramiento. 30'32 y la base de ungüento
hidrófilo que ha sido utilizada para preparar las formulaciones usadas en evaluaciones
clínicas, para pacientes con lesiones en sus miembros inferiores, es una base universal,
extemporánea, con una estabilidad limitada por 15 días y que contiene lauril sulfato, excipiente
irritante para la piel dañada. 30 ,31
Estos inconvenientes condicionaron la elaboración de un sistema medicamentoso, en forma
de crema, que facilitara su empleo teniendo en cuenta que en la lesión en la cual será usado se
requiere de una base emulsionada que garantice la penetrabilidad diadérmica.
Para llevar a cabo las evaluaciones clínicas correspondientes fue necesario que el sistema
medicamentoso, en forma de crema, diseñado a nivel de laboratorio, cumpliera con las
exigencias de calidad y seguridad que permitieran la exposición segura del ser humano a la
misma.
A tales fines nos planteamos la siguiente:
El propóleos procedente de Manzanillo, incorporado a una crema, mantiene su actividad
antimicrobiana y favorece el balance redox sistèmico, siendo seguro, efectivo y económico en el
tratamiento del pie diabético
Para corroborar la hipótesis antes formulada nos trazamos los objetivos siguientes:
Objetivo general:
Demostrar la seguridad y eficacia clínica, en términos de actividad antimicrobiana y
introducción
Hipótesis:
4
regulación sistèmica del estado redox celular, así como las ventajas económicas de una crema
elaborada a partir del propóleos de la región de Manzanillo, en pacientes con pie diabético.
Objetivos específicos:
1. Realizar la estandarización de los parámetros de calidad del extracto blando de
propóleos como materia prima
2. Establecer la actividad bacteriostática y bactericida in vitro del producto evaluado
3. Realizar los estudios de toxicidad exigidos por las agencias regulatorias, que permitan
la utilización clínica, de forma segura del propóleos de la región de Manzanillo.
4. Evaluar las propiedades antimicrobianas, antioxidantes y cicatrizantes de la nueva
formulación en pacientes diabéticos, con lesiones en sus miembros inferiores
5. Establecer la relación Beneficio/Riesgo y Costo/Eficacia de la terapia propuesta en el
estado fisiopatolàgico analizado.
Novedad científica:
Se desarrolla por primera vez, un estudio con el propóleos de la región de Manzanillo,
dirigido al uso en el humano, a partir de la definición de su aplicación farmacoterapéutica que
comprendió: selección de la materia prima, caracterización, estandarización, incorporación de
ésta a un sistema medicamentoso definido, determinación de su seguridad y eficacia y la
demostración, de estos atributos en el orden clínico. También por primera vez, se realiza un
análisis de Beneficio Riesgo y de Costo Eficacia de la terapia
Introducción
propuesta y se lleva a cabo la caracterización antioxidante prooxidante de pacientes con pie
diabético sometidos a esta terapia farmacológica.
Aporte teórico: La investigación desarrollada aporta básicamente nuevos conocimientos
teóricos acerca del probable mecanismo de acción del propóleos, que lo hacen efectivo en el
tratamiento del pie diabético, estableciendo la relación entre el control glicémico, la generación
de ERO y la eliminación del germen de la lesión, como requisitos indispensables para el éxito
de la terapia con este apifármaco.
El trabajo de tesis, también avala sobre bases científicas el uso del propóleos, en crema, en
pacientes con pie diabético demostrando su eficacia a través de un estudio clínico controlado,
en el cual se caracteriza el estado redox sistèmico de los mismos y se demuestra la
participación de mediadores del estrés oxidativo en esta afección.
Aporte práctico social: El documento de tesis establece parámetros de calidad para la
materia prima y el extracto blando de propóleos de la región de Manzanillo, adecuadamente
estandarizados, que avalan su utilización como principio activo en preparaciones
farmacéuticas, además demuestra con rigor científico que el sistema medicamentoso utilizado
para llevar a cabo las evaluaciones es seguro y mantiene e incrementa el espectro de acción
antimicrobiano del principio activo por lo que puede ser estudiado como nueva forma
farmacéutica para su futura venta y comercialización en el mercado.
Se establece además la relación Beneficio/Riesgo cuantificada a través de un modelo
matemático y la relación Costo/Eficacia de la nueva terapia propuesta, para el tratamiento del
Pie Diabético, demostrándose que la crema de propóleos al 10% y al 15% reduce en un 84,8% y
en un 84.3% respectivamente el costo total del tratamiento de un paciente con respecto a la
terapia habitual.
Los resultados de la investigación desarrollada han sido objeto de publicaciones en revistas
nacionales y extranjeras, así como presentados en eventos y constituyen las bases científicas
que sustentan la solicitud de patente: Crema a base de propóleos para el tratamiento del
pie diabético con número de solicitud: 2002-0310 presentada en Ciudad de La Habana a los
9 días del mes de Diciembre del 2002 en las oficinas de la OSPI. (Anexo no. 1)
A continuación relaciono las publicaciones en el tema y los eventos en los que han sido
presentados los resultados del presente estudio:
PUBLICACIONES DEL TEMA:
1. Bermúdez IB, Suárez CL, Megret RD, Rodriguez N. Ulceprol una alternativa en el
tratamiento de las lesiones en los miembros inferiores. Parte I. Revista OFIL 1996, 6(4):215-
218. España.
2. Bermúdez IB, Reyes IH, León OS. Actividad antioxidante, antimicrobiana y cicatrizante
Introducción
5
6
asociada a la terapia con propóleos. Revista Cubana de Farmacia 1998. Suplemento Especial
32: 215-218. Cuba.
3. Bermúdez IB, Suárez CL. Beneficios clínicos de la crema Ulceprol según la procedencia
del propóleos utilizado en su elaboración. Revista OFIL 1999, 9(3): 49-53. España.
4. Bermúdez IB, León OS, García GS. Farmacotoxicología del propóleos de la región de
Manzanillo. Revista Cubana de Farmacia 2000 Suplemento Especial 34: 521-522 Cuba.
5. Bermúdez IB, Reyes IH, León OS. Evaluación de la actividad antioxidante del propóleos
de la región de Manzanillo. Provincia Granma. Cuba. Revista Bioquímica 2000, 25(3): 69-74.
México.
6. Bermúdez IB, García GS, Piloto AA, Valdivieso AG. Evaluación de la irritabilidad dérmica,
oftálmica y el efecto sensibilizante de la crema Ulceprol. Anuario de Toxicología. Cuba, (en
prensa)
7. Bermúdez IB. Frómeta VR, Suarez CL. Eficacia terapéutica de la crema Ulceprol.
Resultados de un estudio multicéntrico. Revista OFIL. España.(en prensa)
8. Bermúdez IB, García GS, Piloto AA, Valdivieso AG. Evaluación de la toxicidad aguda oral
y dérmica en roedores y no roedores del propóleos de la región de Manzanillo. Revista
Brasilera de Toxicología. Brasil, (en prensa)
9. Bermúdez IB, León OS, Reyes IH, Suarez CL, Frómeta VR, Franco NP. Clinical advantage
in the diabetic foot of the Cuban propolis collected in the Manzanillo area. Phytother Res. (en
prensa)
10. Bermúdez IB, León OS, Reyes IH Cellular redox state in diabetic foot patients. Revista
Diabetologia. Austria, (en prensa)
11. Reyes IH, Bermúdez IB, León OS, Pérez YG. Mecanismos oxidativos asociados a la
farmacoterapia con propóleos. Revista Cubana de Farmacia 2003 Suplemento Especial 37.
ISSN 0034-7515.
12. Bermúdez IB. Suárez CL, Frómeta VR, Franco NP, Otero YS, Torreblanca SS. Beneficio
riesgo y costo eficacia de la terapia con propóleos en el pie diabético. Revista Cubana de
Farmacia 2003 Suplemento Especial 37. ISSN 0034-7515.
EVENTOS:
1. IX Jomada Provincial de la Sociedad Cubana de Farmacia. Santiago de Cuba. Cuba.
Octubre 1994.
2. IX Forum de Ciencia y Técnica. Evento Provincial. Santiago de Cuba. Cuba. Octubre
1994.
3. X Forum de Ciencia y Técnica. Evento de Base. Santiago de Cuba. Cuba. Octubre
1995.
4. VI Seminario de Ciencia y Técnica. Labor 95. Teatro Heredia. Santiago de Cuba. Cuba.
Diciembre 1995.
5. VII Congreso de la Sociedad Cubana de Farmacia. IV Taller Internacional del Profesional
Introducción
7
Farmacéutico. III Taller Internacional de Sistemas Avanzados de Administración de
Medicamentos. Palacio de las Convenciones. Ciudad de La Habana. Cuba. Octubre 1998.
6. I Congreso Internacional Farmacología 98. Centro de Eventos Ortopédicos. Complejo
Ortopédico Internacional "Frank País". Ciudad de La Habana. Cuba. Octubre 1998.
7. II Jomada Científica Provincial de Angiología y Cirugía Vascular. Hospital Clínico Quirúrgico
Docente "Saturnino Lora". Santiago de Cuba. Cuba. Octubre 1998.
8. Generalización de Calidad de los Servicios Farmacéuticos. Hospital Infantil Norte "Juan de
la Cruz Martínez Maceira Santiago de Cuba. Cuba. Diciembre 1999.
9. III Jornada de Farmacia Clínica. CIMEQ. Ciudad de La Habana. Cuba. Mayo 2000.
10. IV Encuentro Iberoamericano sobre las Ciencias Farmacéuticas y Alimentarias. Palacio de
las Convenciones. Ciudad de La Habana. Cuba. Junio 2000.
11. XIII Forum de Ciencia y Técnica. Evento Provincial. Santiago de Cuba. Cuba. Septiembre
2000. RELEVANTE.
12. CUBAFARMACIA 2002. VIII Congreso de la Sociedad Cubana de Farmacia. V Taller
Internacional del Profesional Farmacéutico. V Encuentro Iberoamericano sobre las Ciencias
Farmacéuticas y Alimentarias. Palacio de las Convenciones. Ciudad de La Habana. Cuba.
Octubre 2002.
13. II Conferencia Interamericana de Farmacia y Nutrición. Hotel Nacional. Ciudad de La
Habana. Cuba. Marzo 2003.
Introducción
DESARROLLO
Capítulo no. 1 Revisión bibliográfica
8
CAPÍTULO 1 REVISIÓN BIBLIOGRÁFICA
1.1 Propóleos cubanos. Similitudes y diferencias
1.1.1 Consideraciones generales sobre su composición química
El propóleos es un producto balsámico resinoso natural colectado por las abejas a partir de
diferentes resinas de las plantas y potencializado por enzimas segregadas por sus glándulas
salivales lo cual le confiere propiedades terapéuticas muy valiosas. 33,34
La composición química del propóleos varía de acuerdo a la región geográfica, sobre todo
según la fuente vegetal de donde provenga dado el hecho básico, de que la abeja elabora el
propóleos de acuerdo a sus necesidades y a la disponibilidad de fuentes de materia prima en el
sitio donde habita, 1 además ella no siempre msita los mismos árboles en la búsqueda de las
resinas que requiere para la elaboración del propóleos y atendiendo a la ubicación ecológica de
la colmena y el entorno de su vivienda que condiciona la infección microbiana de la misma, ella
extrae las resinas de las plantas con propiedades antimicrobianas específicas para combatir
dicho proceso infeccioso; 3S- 36 por lo que internacionalmente se ha demostrado que será muy
difícil encontrar 2 colmenas que produzcan propóleos idénticos, aún cuando estén ubicadas en
la misma zona geográfica; es aún más significativo que los propóleos de las distintas partes de
la colmena, no tengan exactamente la misma composición química .1,2
Sí resulta bueno aclarar que estas variaciones no están dadas por la diversidad de los
elementos que están presentes en su composición, que básicamente se mantendrán estables,
sino en las cantidades de cada uno de ellos presentes en cada muestra. 37
Este producto no es una sustancia definida, por lo que no tiene una fórmula química; de ahí
que se considere una resina constituida por una mezcla de sustancias distintas que pueden
aislarse por medio de solventes3- 38 De modo general los propóleos se caracterizan por tener un
40-80% de resinas y bálsamos aromáticos, 13-50% de ceras, 4,5-15% de aceites esenciales y un
5-11% de granos de polen ricos en minerales simples 3
La literatura reporta 39- 40 que se han identificado más de 150 componentes en los propóleos
de Europa y América del Norte de los cuales los flavonoides son los constituyentes principales.
Sin embargo, en Venezuela, solo han sido detectadas trazas de flavonoides en las muestras
correspondientes a las áreas templadas y los principales componentes encontrados son
benzofenonas polipreniladas.41
9
Al respecto existen referencias 42, 43 acerca de que el propóleos obtenido de zonas tropicales
no posee como componentes mayoritaños flavonoides los cuales abundan fundamentalmente en
el propóleos europeo.
En Cuba, la composición química de los propóleos ha sido estudiada por prestigiosos
colectivos que han establecido su relación con la vegetación predominante, en cada región del
país. 2,7,44,45 Estudios desarrollados, 44 a distintas muestras de propóleos rojo y pardo
recolectadas en diferentes localidades de nuestro país, demostraron que en el primero
predominan las quinonas y en el segundo los triterpenos y esteroides.
En Nuevitas, Camagüey se llevó a cabo una investigación con el propóleos de la región
costera; aislándose y caracterizándose una benzofenona premiada como principal componente,
de peso molecular 502, muy activa como antimicrobiana, antifúngica y citostàtica in vitro. 20- 36
Al respecto existen reportes 20 acerca de la abundancia de estas benzofenonas en los propóleos
cubanos que hasta el momento han sido estudiados.
Investigaciones desarrolladas 44 a otras muestras procedentes de San José, Los Palos, Nueva
Paz, Melena del Sur, Topes de Collantes y Holguín permitieron aislar y caracterizar 4 productos:
- Una mezcla de ácidos carboxílicos de cadena larga
- El acetato de B amirina, un triterpenoide pentaciclico que no presenta
actividad antimicrobiana 2
- Una benzofenona premiada
- El flavonoide naringenina
Estudios recientes 44 han determinado la presencia en muestras de otras localidades de
triterpenoides pentacíclicos, del tipo de las amirinas: como triterpenoles, ésteres, el flavonoide
naringenina, sesquiterpenoides y ácidos grasos saturados.
Sobre el propóleos de la región de Manzanillo, no se han efectuado hasta el momento
evaluaciones clínicas que demuestren su eficacia farmacológica, pero si se conoce que esta zona
oriental cuenta en las localidades El Palmar, La Demajagua y Calicito con una rica fuente de
este producto apícola de muy buena calidad, que se considera esté relacionado con la flora de
estos territorios en las que abunda el Mangle rojo, el Mangle negro, la Campanilla blanca, el
Júpiter y en algunas regiones alejadas de la costa crecen especies del género Clusia; de esta
vegetación las abejas recolectan resinas florales para la fabricación de propóleos 18 y se conoce
que el mangle rojo y el negro son ricos en taninos, la campanilla en alcaloides de propiedades
hipnóticas, el Júpiter posee sustancias astringentes y drásticas19 y las especies del género
Clusia son productoras de benzofenonas premiadas, 45 que de hecho pueden estar presentes en
esta resina balsámica objeto de estudio.
Existen reportes acerca del uso del Mangle en poblaciones aisladas de origen primitivo, en la
cura de heridas, en la tuberculosis, la lepra, las hemorragias y las disenterías; la Campanilla
para las inflamaciones de las piernas y en el tratamiento de las úlceras rebeldes; el Júpiter para
curar la estomatitis, la hinchazón y las irritaciones l9- 46 y las benzofenonas premiadas presentes
en las especies del género Clusia son de utilidad como antimicrobianas 20 frente a bacterias
gram (+) y gram (-), así como a hongos como la Candida albicans.
Las referencias anteriormente expuestas apuntan hacia el criterio de que el propóleos cubano
Capítulo no1 Revisión bibliográfica
Capítulo no.1 Revisión bibliográfica
10
es heterogéneo y que sus componentes fundamentales varían en dependencia de la zona en que
éste ha sido recolectado.
No obstante, se maneja entre los prestigiosos colectivos científicos del mundo que las
propiedades terapéuticas atribuidas a esta sustancia se conservan independientemente del sitio
geográfico de procedencia de las muestras sometidas a ensayos, ya que las respuestas logradas
en las investigaciones llevadas a cabo coinciden plenamente. 7 47
En nuestro país se han desarrollado numerosos estudios con muestras de propóleos
recolectadas en diversas regiones con la finalidad de demostrar las propiedades farmacológicas
atribuidas, muchas de las cuales ya han sido extrapoladas a la clínica para el tratamiento de
numerosas afecciones, demostrándose la utilidad de esta sustancia en la terapéutica.
A continuación referiremos los resultados de algunos estudios llevados a cabo en nuestro
país, a propóleos de diferentes localidades que nos permitirán establecer semejanzas y
diferencias en cuanto a su actividad farmacológica. Como es conocido al propóleos se le
atribuyen una gama de propiedades terapéuticas, pero solo haremos referencia a los resultados
que se han obtenido en la evaluación de la actividad antimicrobiana, antioxidante y cicatrizante.
1.1.2 Reportes sobre su actividad antimicrobiana, antioxidante y cicatrizante
Las primeras referencias de investigaciones sobre las propiedades antimicrobianas del
propóleos cubano datan de 1984; 48 estos estudios condicionaron el planteamiento de que los
extractos de propóleos presentan mayor actividad frente a las cepas gram (+) ya que se obtuvo
una marcada inhibición del crecimiento de las mismas (>80%), alcanzándose en las gram (-) una
inhibición de un 11,8% a un 71,4%.
Sin embargo, en 1990 49- 50 se demostró que la Escherichia coli y Pseudomonas
aureaginosa son sensibles a muestras de propóleos procedentes de colmenas cercanas a los
mangles del municipio Mariel de la provincia de La Habana, siendo el valor medio de la
concentración mínima bactericida (CMB) de 10,8 mg/ml.
Este resultado también fue obtenido con muestras de propóleos recolectadas en la región
costera de Nuevitas, provincia de Camagüey, siendo la Escherichia coli sensible a
concentraciones superiores a 0,0125 mg/ml. 44
Por otro lado, en 1993 51 y en 1995 52- 53 se realizaron evaluaciones microbiológicas al
propóleos rojo colectado en Artemisa, Los Palos y Nueva Paz que mostraron efecto
antimicrobiano a una concentración de 5 mg/ml frente a Staphiloccocus aureus,
Pseudomonas aeruginosa y Escherichia coli y a 2,5 mg/ml frente a Staphiloccocus
epidermidis.
Relacionado con la actividad antioxidante de esta sustancia, en 1994 11 el Departamento de
Bioquímica Clínica del Centro Nacional de Investigaciones Científicas de Cuba trabajó con
Capítulo no.1 Revisión bibliográfica
11
extractos etanólicos de 2 tipos de propóleos cubano: R obtenido en Baracoa (Guantánamo) y P
recolectado en Pinar del Río, los cuales exhibieron efectos semejantes frente a diferentes
especies de radicales oxigenados que se generaron por reacciones químicas específicas.
Estos investigadores reportan que la quimioluminiscencia amplificada por luminol producida
por el anión superóxido, generado en la reacción de la xantina-xantina oxidasa, fue inhibida en
un 50% por 5 /.ig/ml de propóleos R y 9,5 /ug/ml de propóleos P y en cuanto al radical alcoxilo
se obtuvo que 0,6 ¡ig/ml de ambos propóleos inhibían la quimioluminiscencia del mismo en un
50%.
En un estudio en tejido de hígado de ratón con Salmonellosis 54 se obtuvo que la peroxidación
lipídica desarrollada en las células hepáticas se estabilizó con la administración continua de
propóleos, estas propiedades inhibidoras de la peroxidación lipídica y antioxidantes fueron
también descritas en 1998 55 por un colectivo de investigadores que evaluaron el efecto
hepatoprotector del propóleos rojo cubano y plantearon que el mismo es debido al poder
antioxidante de esta sustancia.
En cuanto al efecto cicatrizante del propóleos existen reportes 56 de estudios en ratas con
lesiones tisulares, sometidas a tratamientos con tintura de esta sustancia, en las que se observó
un proceso de reparación tisular ya que al cuarto día la costra superficial de los animales
lesionados era más pequeña, la inflamación había cedido y el resto de la piel estaba sana.
También existen referencias 57 de un estudio desarrollado con miel propolizada y tintura de
propóleos en quemaduras que demostró que el primero aventaja al segundo porque no causa
irritación y facilita la eliminación de la costra pero ambos mantienen la asepsia, permiten la
rápida cicatrización e inhiben los procesos oxidativos que ocurren en la zona donde el tejido se
ha necrozado.
Todas estas acciones farmacológicas atribuidas a este producto apícola y demostradas
preclínicamente han condicionado el empleo clínico del propóleos cubano para el tratamiento de
pacientes con lesiones en los miembros inferiores, que presentan dificultades para su
cicatrización.
En 1988 13 se desarrolló la evaluación del propóleos procedente de distintas localidades de
Ciudad de La Habana, en forma de tintura, en pacientes con úlceras y gangrenas en las
extremidades inferiores, alcanzándose un 59% de cicatrización y un 100% de evolución
satisfactoria en las gangrenas secas.
Similar trabajo fue desarrollado en los Servicios de Angiología y Cirugía Vascular del Hospital
Provincial de Sancti Spíritus, en 60 pacientes con lesiones abiertas. En esta ocasión pudo
comprobarse que el propóleos y la miel de abeja poseen un alto poder cicatrizante, causan pocas
reacciones adversas y eliminan gran cantidad de microorganismos de las lesiones en poco
tiempo. 14
De 1988 a 1989 se acometió un estudio en 30 pacientes con úlceras flebostáticas a los que se
Capítulo no. 1 Revisión bibliográfica
12
le aplicó una crema de propóleos con base de ungüento hidrófilo y una pincelada del mismo al
2%, elaboradas en el Hospital “Freyde de Andrade”, que al ser ensayada, demostró la eficacia
cicatrizante de esta sustancia y no así su efecto antibactenano. 15
Por otro lado, en el poblado La Fe se hicieron estudios en pacientes con úlceras venosas
(varicosas-post flebíticas) por el método ciego aleatorio, a los cuales se le aplicó una crema de
propóleos al 3% con base de ungüento hidrófilo y placebo. De esta prueba se derivó que este
producto es eficaz como cicatrizante, que tiene parcial efecto antimicrobiano y que sólo provoca
un bajo número de efectos indeseables. 16
También existen referencias 58 de investigaciones en el Hospital “Salvador Allende” de
Ciudad de La Habana con una crema de propóleos con base de ungüento hidrófilo en pacientes
con lesiones tróficas, obteniéndose una evolución satisfactoria en los mismos, en un menor
tiempo que el requerido con el tratamiento tradicional en el 86,7% de los pacientes tratados; el
estudio arrojó que en todos los casos los esfacelos se desprenden de la segunda a la tercera
cura, cambiando la coloración de la lesión a partir de la 3ra o 4ta cura con la aparición del tejido
de granulación en el 70% de los casos a partir de este momento, siendo evidente la epitelización
entre el 8vo y el lOmo día en el 88% de la muestra.
Capítulo no. 1 Revisión bibliográfica
1.1.3 Antecedentes de evaluaciones toxicológicas:
En nuestro país se han desarrollado estudios toxicológicos a muestras de propóleos de
diferentes regiones del país, al respecto la literatura destaca que el uso oral y subcutáneo del
propóleos en dosis de lml/kg de peso e intraperitonial de 0,5 a 10ml/kg en ratones blancos, así
como de 10 a 40ml/kg en conejos puede ocasionar una intoxicación aguda. 7 Evaluaciones
llevadas a cabo en 1986, al propóleos recolectado en el Norte de Nuevitas en ratones OFI de
ambos sexos, con un peso entre 18-20g por vía oral, demostraron que este producto no es tóxico
a dosis de 2000mg/kg.59
En 1988 se estudió la posible acción irritante de una solución hidroalcohólica al 60% de
propóleos suministrada en forma de pinceladas sobre la piel rasurada de conejos, no siendo
detectado ningún índice de acción irritante.60
La toxicidad a dosis repetida fue ensayada en 1989 en ratones, ratas y Hámster por vía oral,
durante 6 meses, demostrándose que el propóleos cubano evaluado no provocó daños hísticos
en los órganos analizados, ni efectos teratógenos. 61
La literatura también reporta 62 el gran poder ábsortivo de las radiaciones UV del espectro
electromagnético que presenta el propóleos, alcanzándose el máximo valor a la A=320 nm
comportamiento apropiado para su uso como protector solar; así como que los estudios de
fototoxicidad lo clasifican como débilmente fototóxico y capaz de proteger en gran medida la piel
frente a radiaciones ultravioletas tanto de la zona A del espectro como de la B, cualidad que
aumenta proporcionalmente con la concentración que se emplee.
1.2 Pie diabético. Generalidades
En nuestro país las investigaciones desarrolladas hasta el momento, a propóleos de
diferentes regiones, especialmente de la zona occidental y central, abogan por la utilidad de este
apifármaco como antimicrobiano y antioxidante, propiedades estas que pueden ser de utilidad
para tratar al pie diabético, ya que en esta afección la cicatrización se retarda por el descontrol
metabòlico y la infección, sin embargo no se cuenta con una forma farmacéutica adecuada para
estos fines. Sobre esta base establecimos la necesidad de buscar información actualizada
acerca de esta afección y las estrategias actuales de tratamiento de la misma, con finalidad de
precisar el curso de la investigación.
El pie es en los diabéticos, la encrucijada donde confluyen las complicaciones de orden
neurològico (secundarias a una neuropatía), isquémicas (secundarias a la angiopatía) e
infecciosas, de forma que la enfermedad vascular (pie isquémico) o la neuropatía (pie
neuropàtico), o ambos conjuntamente, llevan la responsabilidad de los problemas que es posible
apreciar en el pie diabético. 63
13
Capítulo no. 1 Revisión bibliográfica
14
Es conocido que uno de cada cuatro pacientes con úlceras en las piernas es diabético, siendo
la zona afectada el pie en el 24 % y las piernas en el 1%, existiendo un consenso entre
especialistas acerca de que toda lesión que se localiza en este sitio, aunque obedezca a variados
mecanismos etiopatogénicos, se define clínicamente como pie diabético y suele ser un fenómeno
tardío en la vida del paciente como consecuencia de un control inadecuado de la glicemia en
sangre durante varios años.64
La presencia y prevalencia de estas lesiones en el pie del diabético se asocia a diversos
factores entre los que cabe destacar la edad del paciente, el tiempo de evolución de la
enfermedad, la presencia de neuroangiopatía, el sexo masculino y el control metabòlico de la
enfermedad. 65~69
Básicamente en el enfermo diabético como consecuencia de las alteraciones metabólicas,
fundamentalmente la hiperglicemia, se produce una afectación neuropàtica y angiopática que
desencadena trastornos en el pie por afectación sensitivo motora y en mayor medida isquémica,
dando origen a un pie de riesgo. 70
Existe universalmente un acuerdo en cuanto a que la isquemia, la neuropatía y la infección
son los factores determinantes principales en la aparición de las úlceras así como, con alta
frecuencia, más de uno de estos factores, y en ocasiones los tres, participan en su producción. 71
1.2.1 Clasificación
De lo expresado anteriormente se desprende la siguiente clasificación:
Pie isquémico: La lesión inicial es una úlcera o gangrena isquémica que puede acompañarse de
un componente infeccioso. Existen pacientes que presentan insuficiencia arterial y pie doloroso
sin lesiones manifiestas, aunque sí tienen ausencia de pulsos, pies fríos, prolongación del tipo
de repleción venosa y rubor intenso cuando el pie está en posición baja. A pesar del compromiso
vascular el dolor está siempre ausente, no existen lesiones abiertas y los pulsos pedios y tibiales
posteriores pueden estar presentes. Su expresión clínica es en forma de úlcera isquémica y
gangrena isquémica. 71
Pie neuropàtico: Se caracteriza por una sensibilidad pobre y una buena circulación,71 de hecho
no puede olvidarse que el pie neuropàtico conlleva muchas veces a la existencia de
deformidades que van desde el dedo en martillo, hallux valgus y alteraciones de los arcos
plantares que forman la cúpula, hasta la hiperqueratosis, úlcera perforante y articulación de
Charcot. Los síntomas más destacados son el dolor, que va desde una sensación sorda o de
desasosiego hasta la de quemazón o calambre y las parestesias con sensación de frialdad,
entumecimiento, quemazón, hormigueo o sensaciones raras (pisar algodón).72
Finalmente el pie neuropàtico e isquémico del diabético puede experimentar una infección.
Muchos son los argumentos científicos que fundamentan esta tendencia, que parece anclada a
Capítulo no.1 Revisión bibliográfica
15
nivel celular y en relación con una función leucocitaria alterada y con la destrucción intracelular
de gérmenes igualmente debilitados. Mientras el individuo sin diabetes responde a la infección
con inflamación, incremento del flujo sanguíneo y emigración de leucocitos, un diabético
responde desarrollando trombosis vascular y necrosis. 69 Una vez que ha empezado la infección,
sea un pie neuropàtico, sea un pie isquémico, la morbilidad y mortalidad se incrementan
deforma significativa (Figura no.l).
1.2.2 Tratamiento
En el tratamiento de estas lesiones se han ensayado un gran arsenal de medicamentos y
aunque se cree que la profilaxis es la mejor, cuando ya está establecida la lesión hay que actuar
deforma enérgica. 73
Se han utilizado: Antibióticos por vía parenteral como las Penicilinas, los Aminoglucósidos y
las Cefalosporinas y por vía oral las Tetraciclinas y el Cloranfenicol. El tratamiento antibiótico en
inicio es empírico, pues la selección del antimicrobiano o la combinación de los mismos se basa
en el conocimiento de la microbiología de las lesiones a través de la prevalencia de
microorganismos patógenos obtenidos en cortes periódicos que son realizados a los mismos. 74
Las curas locales son muy utilizadas para lograr la limpieza, la desinfección y la
cicatrización, los fomentos de permanganato de potasio al 2 %, ácido acético al 0,7 % y suero
salino isotónico tres o cuatro veces al día durante 20 minutos, permiten remover las costras y
escaras promoviendo la epitelización y se acompañan de diversos productos tales como:
Nitrofurazona, Sulfadiacina de plata, Neomicín, Neobatín, Gentamicina, ungüento de enzimas
proteolíticas, Nitrato de plata al 0,25 % entre otras. 75
Para favorecer la cicatrización se han usado diversas técnicas y sustancias como: Tisoacril,
Dermocer, Duoderm o Granuflex, el Factor de Crecimiento de origen plaquetaño 73, la
Ketanserina tópica 76, la exposición al ozono y la electroterapia. 77
Por otro lado, es necesario el control metabòlico riguroso usando pautas móviles de insulina,
ajustando las dosis según controles de glicemia capilar cada seis horas, subcutánea o en
perfusión continua venosa. Una vez controlado el cuadro, se volverán a ajustar las pautas
estándar de insulina o hipoglicemiante oral según los requerimientos de cada paciente. 65
Capítulo no. 1 Revisión bibliográfica
16
Cuando existe neuropatía, además del control metabòlico es necesario valorar terapéuticas
encaminadas al mecanismo etiopatogénico de la afección y hasta el momento los mejores
resultados se han obtenido con los inhibidores de la aldosa reductasa, que producen un bloqueo
de la vía de los polioles, alcanzándose las ventajas terapéuticas más significativas con el
Sorbinil, con el que se demostró un retraso en la aparición de las alteraciones neurofisiológicas,
un incremento en la velocidad de conducción nerviosa y en la reparación de las fibras
mielínicas,78 sin embargo fue detenido su uso por reacciones adversas hipertensivas entre el 3 y
el 10% de la población.79
Otro medicamento lanzado al mercado como inhibidor de la aldosa reductasa fue el
Tolrestat, que parecía ser muy efectivo en las pruebas iniciales y fue lanzado al mercado en
1989, retirándose en 1996, debido a su baja eficacia;80 tal fue el caso también del Ponalrestat
detenido por ausencia de clara eficacia en la retinopatía y la neuropatía diabética 81 y
actualmente se encuentran en fase de ensayo clínico el Epalrestat (aprobado en Japón), el
Zopolrestat y el Zenarestat. 82,83
Como puede observarse existe una gran variabilidad en cuanto a la entrada y salida de
medicamentos para el tratamiento del pie diabético y la amputación sólo es indicada cuando
han fallado las medidas para controlar los gérmenes que atacan la lesión, cuando aparece
gangrena o cuando la infección fulminante amenaza la vida del paciente. 84
Se conoce que el pie diabético es una complicación de la diabetes mellitus y que en esta
afección metabòlica, predomina fundamentalmente un estado de hiperglicemia capaz de
incrementar la producción de ERO, de ahí la necesidad de buscar información actualizada
acerca de las novedades científicas en este campo que nos permitan establecer una estrategia
científica para evaluar el propóleos, producto apícola al que se le atribuyen propiedades
antioxidantes, pero se desconoce aún el mecanismo por el cual, esta sustancia ejerce sus
efectos.
1.3 Especies Reactivas de Oxígeno y Diabetes Mellitus
1.3.1 Especies Reactivas de Oxígeno
En la biosfera, el más importante receptor de electrones (ej es el oxigeno molecular (O2), el
cual en virtud de su naturaleza birradicalaria fácilmente acepta un par de electrones dando
lugar a una serie de especies reducidas llamadas ERO.
Las ERO son los átomos, iones y moléculas con uno o más electrones no pareados en el
orbital más externo y las moléculas derivadas del oxígeno que tengan alta capacidad reactiva.
Las ERO más importantes son:
• Radical anión superóxido O2
17
• Radical hidroperoxil HO2
• Peróxido de hidrógeno H2O2
• Radical hidroxilo OH
• Radical peroxilo RO2
• Oxígeno singlete ‘02
• Oxido nítrico NO
• Ácido hipocloroso (HOCL)
Estas entidades desempeñan determinadas funciones pero cuando su producción excede la
capacidad antioxidante del organismo se produce una ruptura del equilibrio entre los sistemas
generadores y secuestradores de ERO hacia la producción descontrolada de las mismas y se
inicia una cascada de reacciones radicalarias que conllevan al estrés oxidativo y por
consiguiente al daño de los tejidos con el desarrollo de diversos estados fisiopatológicos. 85- 86
1.3.2 Mecanismos de generación e inactivación de ERO
La vía fundamental de generación de ERO es la reducción del oxígeno a agua, en los tejidos
vivientes, que puede proceder por dos rutas:
- Durante la fosforilación oxidativa a nivel del citocromo mitocondrial, mediante la acción del
complejo citocromo oxidasa, enzima mitocondrial, que genera el 95% del oxígeno consumido en
los tejidos, donde éste se convierte en agua por reducción tetravalente sin la producción de
ningún intermediario y sí de ATP.
- El 5% restante del oxígeno sale de esta cadena oxidativa y se transforma, por la ruta de
oxidación univalente, en intermediados tóxicos.
El O2- constituye el primer metabolito de la cascada de reacciones radicalarias. Se forma en
la célula animal tanto por vía enzimàtica como no enzimàtica. La vía enzimàtica comprende
ciertas reacciones redox con la participación de enzimas entre las cuales las más conocidas son
la xantina oxidasa y NADPH oxidasa y la vía no enzimàtica se trata de reacciones de ciclaje
redox de diversos xenobióticos. 87 88
Este radical se forma a partir de la molécula de oxígeno en presencia de una cantidad de
energía suficiente que le permita adquirir un electrón suplementario, su reactividad es débil pero
puede penetrar en las membranas biológicas y causar daños a blancos específicos.
Capítulo no. 1 Revisión bibliográfica
18
Capítulo no.1 revisión bibliográfica
Una vez formado el radical anión superóxido se produce su dismutación, lo cual puede
proceder espontáneamente o puede ser catalizado por la enzima Superóxido dismutasa (SOD)
El primer paso en esta transformación se produce cuando el O2' se combina para formar el
HO2 -, estructura intermediaria radicalaria que participa en la formación del H2O2 La segunda
ERO de la cascada es el H2O2, éste puede formarse también por la vía enzimàtica y no
enzimàtica. La transformación enzimàtica se produce por acción de la enzima SOD a partir del
radical O2 . Esta dismutación puede ocurrir deforma espontánea, aunque menos eficientemente,
y la segunda es a partir del ácido ascòrbico utilizando el cobre y el oxígeno molecular.
El H2O2 formado, por acción de la SOD, es eliminado por la catalasa y por la glutation
peroxidasa (GSX -PX). Ambas enzimas son intracelulares.
La catalasa se encuentra localizada en los peroxisomas y desempeña un papel rector cuando
existe una superproducción de H2O2. La GSX -PX juega un papel más importante cuando no
existe superproducción de H2O2 y se encuentra tanto en el citosol como en la mitocondria. El
H2O2 formado no es una especie radicalaria, sin embargo, es un sustrato para la formación de
otras especies, altamente reactivas y muy tóxicas, como el radical OH 85
El OH se genera a través de la reacción de Haber-Weiss catalizada por hierro 89 y constituye
otra ERO que, sin lugar a dudas, resulta ser el más nocivo y peligroso para la célula, por ser
este el más poderoso oxidante capaz de reaccionar con cualquier molécula biológica vecina,
oxida a ciertos residuos aminoácidos de las proteínas, a las bases purímcas y pirimidínicas de
los ácidos nucleicos, causando por lo tanto inactivación de enzimas y estallidos del ADNfácido
desoxirribonucleíco), desencadena la cascada de peroxidación lipidica, esta peroxidación de
ácidos grasos polinsaturados de las membranas celulares ocasiona escape de fluidos,
rompiendo el equilibrio de las funciones secretoras de la membrana y los gradientes iónicos
transmembranales. 90
1.3.3 Estrés oxidativo y complicaciones asociadas a la Diabetes Mellitus
La Diabetes Mellitus es un trastorno caracterizado por una serie de complicaciones
relacionadas con el estrés oxidativo. En esta afección metabòlica, debido a la pérdida de la
homeostasis de la glucosa, predomina fundamentalmente un estado de hiperglicemia capaz de
incrementar la producción de especies reactivas (ERO, hidroxialdehídos, productos finales de la
glicosilación avanzada, etc) por la vía de la autoxidación de la glucosa y por la
vía no enzimàtica de glicosilación de proteínas, alterando de esta forma las funciones celulares
y generando un daño oxidativo a nivel de las membranas, además se producen algunas
alteraciones en la estructura y función de proteínas circulares y estructurales que son
Capítulo no. 1 Revisión biliográfica
19
glicosiladas, siendo estas en gran medida las responsables de las complicaciones que se
producen en esta enfermedad. 91
Este trastorno endocrino se asocia con reacciones redox, particularmente de oxidación
catalizadas por metales de transición, los cuales se hallan incrementados en el plasma en esta
enfermedad, por otro lado también aparecen o aumentan sustancias como el malondialdehído,
los dienos conjugados y sustancias reactivas del ácido tiobarbitúnco 89 92 que dan una medida
de la peroxidación lipidica presente en esta afección metabòlica, lo que evidencia la relación
entre la diabetes mellitus y el estrés oxidativo.
Existen reportes acerca de que las ERO causan ruptura del ADN y este daño activa las poli
(ADP-ribosa) sintetasa, las que eliminan el NAD+ celular, 93 cofactor necesario para la enzima
gliceraldehído-3-fosfato deshidrogenasa en la ruta glucolítica, de manera que se produce la
inhibición de la glicólisis y de los componentes de la cadena transportadora de electrones a nivel
mitocondrial, disminuyendo por lo tanto el ATP intracelular; 94 tales efectos provocan la
disfunción de las células fi del páncreas afectándose por tanto la secreción de insulina y
manifestándose la hiperglicemia característica de la diabetes mellitus.
Por otro lado, el exceso de glucosa provoca que los grupos amino libres de las proteínas
reaccione lentamente con azúcares reducidos como la glucosa por la reacción de glucosilación o
reacción de Maillard, en la que no solo participa la glucosa sino otros monosacáridos
(glicosilación). Las bases de Schiff formadas por esta reacción experimentan un reordenamiento
intramolecular lento que la transforman en un compuesto más estable (cetoamina, fructosamina
o productos de Amadori). Los productos de Amadori o fructosamina subsecuentemente se
degradan hasta compuestos más reactivos que el azúcar a la hora de reaccionar con los grupos
aminos de las proteínas para formar los productos finales de la glicosilación avanzada (PFGA),
que son irreversibles y se encuentran asociados con proteínas estructurales de larga vida como
la colágena 9S, elastina, mielina, actina y miosina 96
Los productos iniciales (cetoaminas o fructosaminas) y los PFGA afectan las propiedades de
las proteínas, los primeros modifican la carga eléctrica, la solubilidad y la movilidad y los
segundos generan puentes que unen una cadena polipeptídica con otra, modificándose la
estructura original de las mismas, que una vez modificadas comprometen las funciones propias
de la estructura o tejido del que forman parte 97 98, lo cual puede jugar un importante papel en
las complicaciones a largo plazo de la diabetes. 91
Por otro lado, la glicosilación no enzimàtica de las proteínas y la autoxidación de la glucosa
pueden atenuar las defensas antioxidantes endógenas mediante la glicosilación de las enzimas
secuestradoras de ERO, por lo que estos procesos juegan un papel importante en el estrés
oxidativo que se produce en la diabetes mellitus. 99
Capítulo no. 1 Revisión bibliográfica
20
1.3.4 Mecanismos moleculares y celulares de las complicaciones diabéticas
Mecanismos de dis función vascular inducidos por la hiperglicemia:
Muchos factores de riesgo han sido identificados en pacientes diabéticos responsables del
desarrollo de complicaciones microvasculares y macrovasculares, siendo la hiperglicemia una de
las más importantes.
Los mecanismos propuestos para explicar los efectos adversos de la hiperglicemia son
múltiples, pero de ellos cuatro teorías son las que actualmente se manejan en la clínica:
1. Vía de los polioles.
2. Alteraciones redox
3. Activación diacilglicerol proteinquinasa.
4. Glicosidación no enzimàtica.
Una de las teorías más antiguas es la vía de los polioles de gran trascendencia en las
complicaciones diabéticas.100 El metabolismo de la glucosa por esta vía se basa en dos
reacciones:
1. La reducción de la glucosa a sorbitol por la aldosa reductasa
Esta reacción utiliza NADPH (fosfato de dinucleótido de adenina nicotinamida reducido) como
donador de hidrógeno y favorece una disminución del cociente NADPH/ NADR.
2. El sorbitol es oxidado a fructosa por la enzima sorbitol deshidrogenasa
Esta reacción usa NAD+(dinucleótido de adenina nicotinamida) como aceptor de hidrógeno y
favorece el incremento del cociente NADH/NAD*. 101
Normalmente el metabolismo de la glucosa por esta vía eleva los niveles de sorbitol, dando
lugar a un aumento en la captación de agua por las células debido a la capacidad osmótica del
mismo, generándose edema que causa isquemia y daño neurològico, a su vez el sorbitol actúa
como inhibidor competitivo del mioinisitol disminuyendo este último y la ATPasa Na*/K\
activándose la proteinquinasa C (PKC) con aumento de la fosfolipasa A2 y el incremento de
prostaglandinas vasodilatadoras en varios, pero no en todos los tejidos blancos del daño
hiperglicémico. 102'105
Capítulo no. 1 Revisión bibliográfica
El segundo mecanismo propuesto involucra la alteración del cociente NADH/NAD* que refleja
el estado redox de la célula. Esta teoría postula que un incremento en el NADH causa mayores
problemas a los que ocasiona el aumento de metabolitos oxidativos; ya que se producen
cambios en la fluidez y permeabilidad vascular y también se incrementa el precursor del
diacilglicerol por inhibición de la reacción del gliceraldehido 3-fosfato deshidrogenasa. Pero una
posible limitación de esta teoría es el hecho de que el potencial de oxidación - reducción inducido
por la reacción de la aldosa reductasa puede no ser suficiente para alterar el cociente
NADH/NAD* de la célula porque menos del cinco porciento de la glucosa es metabolizado por
esta vía. Por lo que se hace necesario desarrollar estudios en animales y en el hombre que
permitan medir los niveles de NADH/NAD+ intracelulares para confirmar esta hipótesis.106
El tercer mecanismo (Figura no. 2) plantea que los niveles elevados de glucosa incrementan
la síntesis del diacilglicerol en las células vasculares y este activa un sistema de traducción
importante, la vía de la PKC.107
Múltiples estudios han mostrado que la hiperglicemia y la diabetes disminuyen la actividad
de la ATPasa Na*/K* en los nervios periféricos y vasculares.108 El mecanismo por el cual la
hiperglicemia inhibe esta enzima no está claro, pero existen reportes recientes 107 acerca de que
la misma es inhibida debido a la activación de la PKC con el subsecuente incremento de la
actividad de la fosfolipasa A¿ producto a la fosforilación de ésta. La activación de la fosfolipasa
A2 aumenta la producción de ácido araquidónico y los niveles de prostaglandina E2 los cuales
han sido reportados como inhibidores de la ATPasa Na*/K*. Además se ha planteado que la
activación de la PKC por hiperglicemia puede regular la expresión genética de muchas proteínas
incluyendo la involucradas en la contractibilidad vascular localizadas en la membrana basai.
I09’110
Existen planteamientos 111 acerca de que los niveles elevados de glucosa pueden disminuir
la expresión de la calmodulina, proteína que interactúa con la misma y la actina en células del
músculo liso vascular para regular la contractibilidad vascular (Figura no. 2).
El cuarto mecanismo asociado a las disfunciones vasculares por hiperglicemia es el que
involucra la modificación acelerada no enzimàtica de macromoléculas, debido a la glucosa y
otros azúcares, para formar los PFGA.
Existen tres mecanismos generales por los cuales la formación de PFGA puede causar
cambios patológicos. n2'1,5
1- Formación rápida intracelular de PFGA por glucosa, fructosa y muchos de los intermediarios
derivados de esta vía metabòlica altamente reactiva los que pueden directamente alterar la
función de las proteínas.
21
23
2- Los PFGA pueden alterar vías de traducción involucrando ligandos de la matriz extracelular.
3- Los PFGA pueden alterar la expresión genética a través de la interacción con receptores celulares específicos de los PFGA.
La producción de ERO inducida por la hiperglicemia puede ser una consecuencia común de
muchos de los mecanismos planteados. La autoxidación de los azúcares y los productos de la
glicosidación no enzimàtica producen ERO, así como, el incremento de los niveles de NADH
activa enzimas oxidativas y el aumento de PKC se conoce que regula y activa varios NADP
oxidasas por lo que son necesarios estudios que permiten aclarar los diversos mecanismos
celulares propuestos a través de los cuales la hiperglicemia puede inducir ERO y determinar si
ellas son las responsables de la disfunción vascular que se produce. 116,117
Varios reportes 1,8 han demostrado que en la Diabetes mellitus se produce un marcado
decremento en un número de mecanismos de defensa antioxidante, esto incluye al glutation, la
SOD, el ácido ascòrbico, el ácido úrico y la vitamina E; por lo tanto, si al propóleos se le
atribuyen propiedades antioxidantes marcadas, resulta adecuado evaluarlo en el pie diabético,
en el que la capacidad antioxidante del paciente está disminuida.
Bajo estas premisas y teniendo en cuenta que la sustancia a evaluar es una resina
balsámica cuya aplicación tópica se dificulta por la pegajosidad y de hecho la ausencia de
extendibilidad; se hace necesario elaborar un sistema medicamentoso que permita llevar a cabo
las evaluaciones biológicas, dicho sistema debe ser inocuo para poder ser ensayado en seres
humanos, pues no existe en la actualidad un modelo animal adecuado de pie diabético, siendo
obligado desarrollar las pruebas en el hombre y para ello existen regulaciones que a
continuación abordaremos.
1.4 Evaluación toxicológica de medicamentos para uso tópico:
El conocimiento de la toxicidad de las sustancias sólo puede obtenerse además de las
predicciones teóricas, por dos vías: estudios retrospectivos de casos de intoxicación y ensayos
experimentales. 119
El objetivo fundamental de los ensayos toxicológicos es determinar el daño a los tejidos
biológicos, por lo que la sustancia debe administrarse desde un nivel tan bajo que no provoque
daño alguno hasta dosis adecuadas que se consideren suficientes para causar un efecto nocivo.
De esta forma se impone el desarrollo de dichos estudios, donde los resultados serán sin lugar a
dudas lo más importante, que permitirá dar una validación toxicológica de la sustancia
investigada, de lo que depende su utilización o rechazo. ,2ü
Un estudio riguroso de un agente con fines terapéuticos exige el cumplimiento de las
exigencias normadas y reguladas internacionalmente por la OECD y la ISO para su registro y
postenor uso en la práctica médica.
Teniendo en cuenta, que el producto elaborado es para uso tópico en pacientes con pie
diabético, fue indispensable someter el mismo a los ensayos en la primera barrera, en los
cuales es necesario llevar a cabo los siguientes estudios:
A. Toxicidad a dosis única:
Primer paso lógico en la evaluación toxicológica de un medicamento y permite establecer su
capacidad tóxica tras una sola dosis dentro de las 24h o por administraciones repetidas en
Capítulo no. 1 Revisión bibliográfica
24
intervalos cortos. 1I9‘ 120
La vía de administración seleccionada, clasifica el tipo de estudio de toxicidad a dosis única
y de forma general se recomiendan como mínimo 2 vías, incluyendo siempre la vía tópica 121 y
utilizar la clasificación tóxica aguda (CTA). 122
Esta clasificación establece dosis prefijadas de 25, 200 y 2000 mg/kg y son empleados 3
animales por sexo para cada dosis. En dependencia de la mortalidad encontrada con el nivel de
dosis inicial, se determina si es necesario ensayar un segundo nivel de dosis y en
circunstancias excepcionales un tercer nivel de dosis. La sustancia se clasifica según las
siguientes categorías:
Dosis < 25 mg/Kg ..........................Muy tóxico.
25< Dosis < 200 mg/Kg ................ Tóxico.
200< Dosis < 2000 mg/Kg ............. Dañino.
Dosis > 2000 mg/Kg ...................... Prácticamente inocuo 122
B. Toxicidad local:
Donde se incluyen los siguientes ensayos:
Ensayos de irritación: Diseñados con el objetivo de determinar el peligro potencial de una
exposición aguda a irritantes, sustancias químicas, medicamentos y cosméticos ya sean
naturales o sintéticos a los que el hombre rutinariamente está expuesto de modo accidental o
intencional y que tienen contacto con membranas mucosas y piel.
Irritación primaria dérmica: Este tipo de ensayo se desarrolla si la sustancia a ensayar
presenta una toxicidad aguda dérmica menor de 2000mg/kg, 2 < pH < 11.5 y sea irritante o
corrosiva por su relación estructura actividad. 123
Irritación primaria oftálmica: Para desarrollar este ensayo el producto debe tener un 2 - pH
< 11.5, el ensayo de irritabilidad dérmica debe ser negativo y en los ensayos in vitro que se
lleven a cabo la sustancia evaluada no debe ser ni corrosiva, ni irritante severo.
Ensayos de sensibilización
1- Sensibilización:
Se lleva a cabo a todos aquellos productos que tienen contacto con la piel, se basa en
determinar el efecto sensibilizante de una sustancia al ponerse en contacto con la piel, siendo
las mismas capaces de desarrollar después de la reacción de desafío, reacciones eritematosas,
edematosas o de formación de escaras y están mediadas por mecanismos inmunológicos. 124
2- Ensayos de Fotosensibilización
La Fotosensibilización es un proceso en el cual la luz inducida provoca reacciones anormales
a nivel de la piel, por la conjugación con sustancias químicas 125
Los ensayos de Fotosensibilización se realizan en aquellos productos de uso tópico que por
Capítulo no. 1 Revisión bibliográfica
25
su estructura química pueda conjugarse con la luz solar o inducida, dando lugar a
reacciones anormales en la piel y se clasifican en:
❖ Ensayos de Fototoxicidad:
La fototoxicidad está definida como una respuesta no inmunológica de la piel ante un
fármaco o químico fotoactivo, inducido por la luz. Las reacciones fototóxicas pueden aparecer en
cualquier individuo después de la exposición a una cantidad de energía radiante de longitud de
onda apropiada y una adecuada concentración del agente inductor y en dependencia del mismo
el cuadro clínico puede variar, siendo los síntomas tempranos: sensaciones de quemazón,
picazón y dolor, así como respuestas adversas que ocurren pocas horas después de la
exposición y que pueden incluir la aparición de eritema, edema, hiperpigmentación, erupción
vesicular y descamación en el sitio de exposición, ya en las etapas tardías.
Los productos naturales por lo general son mezclas complejas, cuyos ingredientes activos
pueden producir reacciones fototóxicas al combinarse con la luz ultravioleta, de ahí la necesidad
de desarrollar este tipo de ensayo para poder definir si la sustancia evaluada puede o no ser
usada en el humano.126
❖ Ensayos de Fotoalergia:
La fotoalergia es la reacción de la piel a las radiaciones ultravioletas y/o visible producida
por agentes químicos sobre bases inmunológicas 127 Los ensayos de fotoalergia son de gran
importancia en las pruebas toxicológicas, pues nos dan criterio acerca de respuestas
exageradas del ser humano ante un producto determinado.
Capítulo no. 1 Revisión bibliográfica
Capítulo 2 Materiales y Métodos
26
CAPITULO 2 MATERIALES Y MÉTODOS
La presente investigación estuvo encaminada a demostrar la eficacia terapéutica del
propóleos de la región de Manzanillo en pacientes con pie diabético, partiendo de las conocidas
propiedades antimicrobianas y antioxidantes de esta sustancia que pueden jugar un papel
importante en el cierre de estas lesiones.
Se consideró que el propóleos de la región de Manzanillo tiene un índice de oxidación bajo y
en su composición química pueden estar presentes compuestos fenólicos como, las benzofenonas
premiadas, debido a la vegetación predominante en la zona donde es recolectado, dichas
benzofenonas pueden ser las responsables de las propiedades antimicrobianas y antioxidantes
atribuidas a este producto apícola
Se tuvo en cuenta además, que en el paciente diabético como consecuencia de las
alteraciones metabólicas, fundamentalmente la hiperglicemia, se produce una afectación
neuropàtica y angiopática que desencadena trastornos en el pie por afectación sensitivo motora
y en mayor medida isquémica, dando origen a una lesión ulcerosa. Este tipo de lesión
generalmente sufre infección por las condiciones antes expuestas y es necesario tratarla con
antimicrobianos específicos para los gérmenes que en ellas crecen. Los gérmenes detectados con
mayor frecuencia en estas lesiones son: Staphylococcus aureus. Klebsiella pneumoniae.
Enterobacter aerógenes, Pseudomona aeruginosa y Escherichia coli.
El propóleos es muy eficaz frente a estos microorganismos según los estudios desarrollados
por numerosos investigadores en muestras de la región occidental y central48 53 y además esta
sustancia forma una película adherente y protectora, en la superficie de la lesión, que suprime
la acción de irritantes externos garantizando el desarrollo de sus acciones sobre la piel dañada.
6
Resulta importante destacar que este producto apícola es altamente soluble en alcohol y
soluble en disolventes con tendencia a la apolaridad, características estas que lo hacen
liposoluble, lo cual favorece el ataque del mismo a bacterias gram (-), ya que las mismas poseen
una membrana externa hidrofóbica, que solo puede ser atravesada por medicamentos
liposolubles, este criterio se confirma en la literatura revisada donde se reportan las
propiedades antimicrobianas del propóleos, no solo frente a gérmenes gram (+), sino también
frente a gram (-). 48 Por otro lado se conoce la actividad antioxidante de esta sustancia 1 S 4 } 55
que al combinarse con la antimicrobiana, la convierten en un compuesto adecuado para tratar al
paciente diabético con úlceras en sus miembros inferiores.
Ahora bien, los productos empleados en formulaciones medicinales para pacientes con este
tipo de lesión son sistemas emulsionados, prefiriéndose los de tipo oleoacuosos por su fácil
extendibilidad, por ser lavables, por su suavidad y por su penetrabilidad diadérmica, ya que
otros tipos de sistemas, por ejemplo: los sistemas emulsionables que contienen lanolina, no
resultan factibles, porque los mismos forman una capa oclusiva, que absorbe agua, creando un
medio favorable para el crecimiento microbiano que indiscutiblemente condiciona el
empeoramiento del paciente diabético con úlceras en los miembros inferiores. 30, 31, 32, 128
Por todo lo anteriormente expuesto, se seleccionó una formulación semisólida de tipo crema
con base emulsionada aceite en agua para desarrollar las evaluaciones biológicas
correspondientes, especialmente demostrar que la forma farmacéutica diseñada no modificaba
la potencia antimicrobiana, ni antioxidante del principio activo.
Para elaborar el sistema medicamentoso seleccionado fue imprescindible la estandarización
de la materia prima y del extracto blando, teniendo en cuenta que el propóleos varía de acuerdo
a la región geográfica, sobre todo según la fuente vegetal de donde provenga.
2.1 Preparación de la muestra
2.1.1 Materia prima Propóleos. Control de Calidad
Para la elaboración del extracto blando se utilizó propóleos materia prima, suministrado por
el sectorial de Salud Pública de la región de Manzanillo, provincia Granma. Para el estudio se
tomaron nueve lotes recolectados en dicha región, en los meses:
Lote 001 Enero-Febrero 1996
Lote 002 Marzo-Abril 1996
Lote 003 Agosto-Septiembre 1997
Lote 004 Marzo-Abril 1998
Lote 005 Abril-Mayo 1999
Lote 006 Agosto-Septiembre 1999
Lote 007 Enero-Febrero 2000
Lote 008 Marzo-Abril 2000
Lote 009 Noviembre-Diciembre 2000
A todos estos lotes se le determinaron los parámetros de calidad según lo especificado, para
el propóleos bruto en la Norma Técnica de Tintura de Propóleos de 1992 del Laboratorio
Biológico y Farmacéutico. 129
Los parámetros analizados fueron los siguientes:
• Especificaciones organolépticas: Se analizaron los parámetros de aspecto, color y
olor a cada uno de los lotes en estudio según Norma Técnica. 129
• Especificaciones físico-químicas:
Consistencia: Este ensayo se realizó a cada lote objeto de análisis realizando la evaluación
visual y a través del tacto según Norma Técnica.129
Contenido de impurezas mecánicas: Se analizaron 3 réplicas de cada lote en estudio y se
procedió según Norma Técnica. 129 Los cálculos se realizaron según la siguiente ecuación:
C
Capítulo 2 Materiales y Métodos
27
Capítulo 2 Materiales y Métodos
28
Donde:
a = Peso del papel de filtro con impurezas, en gramos (g) b = Peso inicial del papel de filtro (g) c =
Peso de la muestra tomada para cada análisis (g)
X = Contenido de impurezas mecánicas (%)
Contenido de ceras: Se analizó este parámetro utilizando 3 réplicas para cada lote según
Norma Técnica. 129 Los cálculos se registraron mediante las ecuaciones siguientes:
c
Donde:
Y = Contenido de mezclas mecánicas y ceras (%) a = Peso del papel de filtro con mezclas
mecánicas y ceras (g) b = Peso inicial del papel de filtro (g) c = Peso de la muestra tomada para
el análisis (g)
Z(%) = Y -X
Donde:
Z = Contenido de ceras (%)
Y = Contenido de mezclas mecánicas y ceras (%)
X = Contenido de mezclas mecánicas (%)
Determinación cualitativa de compuestos flavonoides: Se tomaron 3 réplicas de cada lote
y se llevó a cabo la evaluación utilizando para el primer ensayo hidróxido de sodio al
20% (NaOH) y para el segundo acetato de plomo al 10% (PbAc) según la metodología descrita en
la norma establecida. 129
La prueba resulta positiva si se observa la aparición de una coloración de anaranjada a
amanillo rojiza frente al NaOH y de un precipitado amarillo verdoso a verde pálido con el PbAc.
Determinación del número yódico: A todos los lotes se les realizaron 3 réplicas y se llevó a
cabo la determinación mediante la titulación con Tiosulfato de sodio 0,1 N hasta la decoloración
de la solución según los procedimientos establecidos por la norma. 129 Los cálculos se realizaron
a partir de la ecuación:
Donde:
0,01269 = constante de relación del yodo
a = cantidad de la solución de Tiosulfato de sodio 0,1 N empleada en la titulación de la prueba
control (mi)
b = cantidad de solución de Tiosulfato de Sodio 0,1 N empleada en la titulación de la muestra
(ml)
0,05 = muestra de propóleos (g)
Determinación del índice de Oxidación: Se realizaron 3 réplicas a cada lote y se procedió
según norma 129 utilizando permanganato de potasio 0,1 N para medir el tiempo de disipación
del color rosado de la solución evaluada.
2.1.2 Elaboración del extracto blando de propóleos
Comprobada la calidad de la materia prima se procedió a elaborar el extracto blando, según
el método descrito por Cuellar y colaboradores en 1987, 44 el cual se muestra en el Anexo no.2.
Partiendo de los lotes de propóleos bruto se prepararon respectivamente, los lotes de extracto
blando igualmente clasificados.
2.1.2.1 Estandarización de los parámetros de calidad del extracto blando de
propóleos:
Se determinaron los siguientes parámetros:
Características organolépticas: A cada lote de extracto blando se les realizó las evaluaciones
sensoriales de aspecto y olor, según la NRAG 1129/ 1994. 130
29
Capítulo 2 Materiales y Métodos
30
Determinación del contenido de sólidos totales: Para la realización de este ensayo se procedió como
indica la NRAG 1129/1994 ¡30. Se analizaron 3 réplicas para cada lote y los resultados se expresaron a
partir de la siguiente ecuación:
M
Donde:
S.T. = Contenido de sólidos totales (%)
Pi = Peso de la cápsula de porcelana con la muestra seca (g)
Pj = Peso de la cápsula de porcelana (g)
M = Peso de la muestra (g)
Determinación del contenido de impurezas mecánicas: Se realizaron 3 réplicas a todos los
lotes y se empleó la técnica descrita para este ensayo en la NRAG 1129/1994. 130 Los cálculos
se efectuaron según la ecuación descrita en la página 27.
Determinación de la actividad antibacteriana: Este ensayo fue realizado a cada lote según
la NRAG 1129/1994. 130
Para obtener el inoculo fue preparada una suspensión en medio caldo triptona de soya, del
microorganismo Staphylococcus aureus ATCC 25923 (a partir de tubos de agar nutriente con
18-24 horas) e incubada hasta alcanzar fase logarítmica de desarrollo, ajustándose la
concentración al patrón 4 de la escala de Me Farland (1,2 xlO 9 cel/ mi) para trabajar el método
de difusión y al patrón 0,5 (1,5x10 8 cel/ mi) para el método de dilución.
Para evaluar la actividad antibacteriana se adicionaron 2,5 mi de medio agar nutriente (capa
base) a cada placa de Petri y posteriormente 8 mi del medio con el inoculo adecuado (capa
semilla: 3,3 mi del inoculo fueron adicionados por cada 100 mi de agar nutriente). Una vez seca
la superficie agarizada, se horadaron pocilios de 8 mm de diámetro y se añadieron 100 ¡uL de
las muestras, exponiéndose la placa a 4°C durante 3 horas. Finalmente se incubó 24 horas a
37°C. La lectura fue el resultado de la media aritmética de 6 réplicas y 2 experimentos y se
realizó determinando el tamaño de los halos de inhibición (solo la zona trasparente). Se
emplearon controles de solvente y antibiótico (Gentamicina 100 U/ml)
Determinación del pH: Se evaluó el pH de cada lote. El equipo utilizado (Peachímetro CG- 824,
SCHOTT) se calibró antes de cada medición con soluciones buffer de pH = 4 y pH = 7. Se
analizaron 3 réplicas.
Capítulo 2 Materiales y Métodos
31
Determinación del índice de Oxidación: Se realizaron 3 réplicas a cada uno de los lotes en
estudio según el método descrito para el propóleos bruto, en la Norma Técnica de la Tintura de
propóleos. 129
Determinación del contenido de fenoles totales: Este ensayo se realizó por triplicado a
cada lote en estudio. Se procedió según el método descrito por Villalón C. en 1998 131 para la
determinación de fenoles totales en extractos de propóleos. El método se fundamenta en la
reacción de los iones férricos, que se generan en el medio por la reacción del ferrocianuro con
cloruro férrico, estos iones interactúan con los grupos fenólicos de la sustancia evaluada, basta
que la molécula tenga un OH. o grupo fenólico para que se desencadene la reacción.
El porcentaje de fenoles totales, en el extracto blando analizado, referido por cada 1 OOg de
propóleos en base seca, se determinó a partir de la siguiente ecuación:
Donde:
A.M = Absorbancia de la solución muestra
A.P = Absorbancia de la solución patrón de ácido gálico
PS = Peso del ácido gálico (g)
PM = Peso de la muestra (g)
v = Contenido o pureza de ácido gálico en la sustancia de referencia (%)
S.T = Sólidos totales (%)
Los intervalos de confianza para los parámetros de calidad evaluados, tanto a la materia
prima como al extracto blando júeron calculados a través del programa Statistica versión 6.0.
Una vez estandarizado el extracto blando, el Colectivo de Investigadores del Laboratorio de
Tecnología Farmacéutica del Departamento de Farmacia de la Universidad de Oriente llevó a
cabo un estudio de compatibilidad con los excipientes candidatos de la formulación y luego
elaboró el sistema medicamentoso aplicando un diseño factorial 32; la formulación óptima
seleccionada fue preparada al 10% y al 15% por el método de fusión 31
Se tomaron testigos que fueron sometidos a estudios tecnológicos, por el Laboratorio de
Tecnología Farmacéutica de la Universidad de Oriente, y microbiológicos por el Departamento de
Infección Hospitalaria del Laboratorio de Higiene y Epidemiología de Santiago de Cuba y por el
Centro de Investigación y Desarrollo de Medicamentos (CIDEM)
de Ciudad de La Habana, los resultados de dichas evaluaciones se muestran en el Anexo no. 3.
El producto sometido a ensayo se conservó protegido de la luz, a una temperatura de 25 C,
en potes plásticos de 25 g aptos para contener productos de consumo humano.
La selección de las concentraciones referidas anteriormente se fundamentó en los criterios de
la literatura consultada que a continuación se refieren:
En 1994 se desarrollaron estudios en 62 perros con quemaduras y heridas traumáticas
Capítulo 2 Materiales y Métodos
32
tratados con ungüento al 10%, elaborado a partir del propóleos recolectado en la región de
Nuevitas, dichos estudios demostraron la eficacia de este producto apícola, al favorecer
el crecimiento del tejido de granulación y la epitelización.132
También existen referencias del uso de una crema al 2% elaborada con propóleos de la región
occidental del país, con base ungüento hidrófilo, en 30 pacientes con úlceras flebostáticas, que
mostró eficacia cicatrizante pero no efecto antibacteriano 15 y el empleo de la formulación al 3%
en úlceras venosas (varicosas postflebíticas) que permitió obtener un efecto antibacteriano
parcial, con un bajo número de reacciones adversas.16
En 1978 se llevaron a cabo pruebas clínicas en pacientes con quemaduras y úlceras en las
piernas que recibieron tratamiento con ungüento de propóleos europeo elaborado a diferentes
concentraciones de un 5% a un 20%, alcanzándose los mejores resultados en preparaciones al
10%.133
Sin embargo, en 1989 se reportó la aplicación de un ungüento al 30% a base de propóleos
recolectado en la región Occidental, en 35 pacientes con micosis superficial y úlceras en las
piernas que desarrollaron reacciones adversas a los 15 días de tratamiento, siendo necesario
suspender la aplicación.6 Al respecto Asis en 1979 refirió la eficacia sobre la piel de
formulaciones de propóleos preparadas del 5% al 10% siendo las del 20% al 30% irritantes 33 y
Braileanu en 1970 planteó que para la piel, las tinturas elaboradas con este apifármaco por
debajo del 10% no resultan eficaces, siendo las preparadas al 20% y al 30% irritantes.134
Este planteamiento fue confirmado en 1989 al detectarse la aparición de exantema populoso
generalizado después de la aplicación de un ungüento de propóleos al 20% en pacientes con
quemaduras.4
Ahora bien, antes de someter el propóleos de la región de Manzanillo a una evaluación
clínica, se desarrolló un estudio de la actividad antioxidante in vitro del mismo, en el cual se
obtuvieron importantes efectos antioxidantes por encima de un 70% de inhibición de la
peroxidación lipídica, pero este efecto no fue dependiente de la dosis ,J ’ y se conoce la
importancia que tiene en el orden farmacológico que las acciones del fármaco sean dosis
dependientes; de ahí que la atención en los ensayos preclínicos se centrara en las propiedades
antimicrobianas muy importantes para las complicaciones diabéticas y no se
Capítulo 2 Materiales y Métodos
Capítulo 2 Materiales y Métodos
reflejaran los resultados en relación con el estado redox, pero sí se consideró el mismo, al
evaluar clínicamente al paciente, ya que muchas de las técnicas in nitro utilizadas en
evaluaciones preclínicas son interferidas por las características de la sustancia evaluada.
El propóleos es una resina pegajosa, oscura y soluble en alcohol, en la que se mezclan
varias sustancias biológicamente activas, por lo que cabe la posibilidad que esta halla sido la
causa de los resultados obtenidos en la evaluación preclínica, de ahí que se decidiera ensayar
este producto en pacientes con pie diabético neuroinfeccioso, que sabemos es una patología
muy relacionada con el estrés oxidativo, teniendo en cuenta además los reportes en literatura
acerca de las propiedades antioxidantes del propóleos de otras regiones del país y que la clínica
es la mejor vía para demostrar los efectos de los fármacos en el humano.
2.2 Determinación de la actividad bacteriostática y bactericida in vitro
En este ensayo se tuvo en cuenta la necesidad de evaluar el propóleos de la región de
Manzanillo, partiendo de los antecedentes de que esta sustancia varía su composición química
de acuerdo a la región geográfica de procedencia, sobre todo según la fuente vegetal que
predomine en la misma. Por otro lado resulta indispensable demostrar que la potencia
antimicrobiana de este apifármaco se conserva en el sistema medicamentoso diseñado para su
futuro empleo en la práctica clínica, es por ello que esta evaluación se llevó a cabo no solo para
la crema, sino también para el extracto blando, ya que existen reportes de estudios
desarrollados 136 a una crema cosmética a base de propóleos, elaborada al 0,25%, que no
mostró actividad antimicrobiana frente al Staphylococcus aureus y se recomendó aumentar
la concentración del principio activo, si se deseara obtener dicha propiedad.
La evaluación se llevó a cabo por el Centro de Investigación y Desarrollo de Medicamentos
(CIDEM) de Ciudad de La Habana y por el Departamento de Infección Hospitalaria del
Laboratorio de Higiene y Epidemiología de Santiago de Cuba que llevaron a cabo la siguiente
metodología:
Preparación de la muestra: El extracto blando de propóleos fue disuelto en etanol absoluto,
de forma tal que se lograra una concentración de sólidos totales entre 3% y 5% similar a lo
descrito en la Norma Ramal de la Agricultura 1129 de 1994. ,J"
A partir del extracto blando de propóleos (75% de sólidos totales) se preparó una solución
madre que contenía 0,53 mi de dicho extracto en 10 mi de etanol absoluto (4/6 de sólidos
totales) y se realizaron diluciones con dicho solvente para alcanzar las concentraciones de 20;
10,5; 2,5; 2; 1,25; 0,6; 0,2 y 0,02 mg/ml.
En el caso de las cremas evaluadas se prepararon soluciones de trabajo de 100 mg/ mi,
disolviendo 1 g de crema en 10 mi de etanol absoluto, a partir de la cual se realizaron diluciones
en agua destilada para alcanzar las concentraciones de 50; 25; 12,5; 6,25; 5; 3,12; 1,6; 0,5 y
0,05 mg/ml.
33
Capítulo 2 Materiales y Métodos
34
Metodología seguida:
Se empleó el método de las diluciones seriadas en medio de caldo triptona de soya. 137 138 y
se utilizó una batería integrada por 7 microorganismos controles:
Staphylococcus aureus (S. aureus) ATCC 25923
Staphylococcus epidermidis (S. epidermidis) ATCC 12228
Pseudomonas aeruginosa (P. aeruginosa) ATCC 27853
Escherichia coli (E. coli) ATCC 25922
Klebsiella pneumoniae (K. pneumoniae) ATCC 10033
Proteus vulgaris (P. Vulgaris) ATCC 13315
Enterobacter aerogenes (E. aerogenes) ATCC 13088
A partir de cada uno de ellos se prepararon suspensiones que se incubaron hasta alcanzar
la fase de desarrollo logarítmica ajustándose la concentración al patrón 0,5 de la escala de Me.
Farland.
Los tubos que contenían las diluciones de las muestras se enfrentaron a los microorganismos
controles incubándose a 37°C para determinar visualmente a las 24 h la concentración mínima
inhibitoria (CMI) del crecimiento, evaluada por la presencia de turbidez en los tubos.
En los casos en los que se observó inhibición se tomaron alícuotas de 5 piL y se sembraron
en medios agarizados específicos libres del agente antimicrobiano, para lo cual se empleó el
agar Voges Thonson, agar CLED, agar de Cetrimide o agar Me. Conkey en dependencia del
microorganismo en cuestión.
El inoculo empleado fue de 105 ufe/mi y como el etanol absoluto se utilizó como disolvente
del extracto blando se llevó a cabo de modo paralelo una serie blanco. Se aplicó neutralizante
(suero inactivado al 10%) que es de gran utilidad para eliminar el efecto de detergentes,
antisépticos, etc.
Se tomó como CMI la menor concentración que inhibió el desarrollo in vitro de las bacterias y
como concentración bactericida mínima (CBM) la menor concentración que produjo un daño letal
sobre la célula microbiana en estudio. 139
2.2.1 Comportamiento de la actividad antimicrobiana en el tiempo
Una vez conocida la actividad antimicrobiana de la crema de propóleos frente al
Staphylococcus aureus, se tomaron muestras de las cremas al 10% y al 154) a diferentes
tiempos (O, 30, 90, 180, 360 días) y se determinó según la NRAG 1129/1994 130 si se mantenía
la sensibilidad de esta bacteria al sistema medicamentoso diseñado, en los distintos tiempos
evaluados.
2.3 Ensayos toxicológicos
Partiendo de la aplicación terapéutica de la crema elaborada para desarrollar el estudio de
eficacia y según lo establecido por la OECD (1996) 140 en un estudio de toxicidad a dosis limite,
siempre deben considerarse, todas las vías de administración por las que pudiera ser utilizado,
el medicamento que se evalúa. De forma general se recomiendan como mínimo
2 vías, incluyendo siempre una que garantice los niveles sistémicos.
Teniendo en cuenta las características del propóleos, que es insoluble en agua y soluble en
alcohol, se escogió como vía que garantizara los niveles sistémicos, la vía oral.
Los biomodelos se llevaron a cabo según los procedimientos normalizados por la OECD en
1996 140 y las normas ISO de 1999; 124 los animales utilizados en los mismos, se mantuvieron en
cuarentena según los procedimientos normalizados de laboratorio con un ciclo de luz/oscuridad
de 12h, temperatura controlada (22± 1°C) y humedad (50±5%), con acceso al agua y comida
suministrados ad libitum.
En la tabla no. 1 se describen las características fundamentales de cada uno de los ensayos
realizados, en cuanto al tipo y cantidad de animales empleados, el sexo, las sustancias
administradas y la dosis.
2.3.1 Toxicidad a dosis única oral en roedores y no roedores
Los animales se seleccionaron al azar, se pesaron y se agruparon en el caso de los roedores
a razón de 5 ejemplares por caja, diferenciados por sexo e identificados individualmente y por
grupos: (I) control y (II) tratado ; y los no roedores fueron agrupados e identificados
individualmente. A todos los animales en estudio se les retiró el alimento 18 h antes de la
administración y se utilizó el etanol al 30% para evitar la muerte del animal; en ambos casos se
empleó la vía oral utilizando una cánula intragástrica y teniendo en cuenta no excederse de 2 mi
(roedores) y 10 mi (no roedores) como volumen total por esta vía, el suministro de agua se
mantuvo ad libitum.
Bajo estas condiciones y teniendo en cuenta que una sola dosis no puede ser administrada
en los animales no roedores debido al peso y a la concentración del producto que no puede
aumentarse debido a la baja solubilidad de éste en agua, se determinó aplicar la dosis en 5
tomas de 10 mi cada una (V=50 mi) cada 2 h para este grupo. 1
Capítulo 2 Materiales y Métodos
35
Tabla no.l Descripción de los ensayos toxicológicos realizados
Ensayo Tipo de
animales
Total de
animales
Sexo Peso Sustancia
administrada
Dosis
Toxicidad a
dosis única
oral
Roedores:
Ratas
Sprague
Dawley
No
roedores:
Conejos
Chinchila
20
6
Hembras y
Machos (10
de cada
uno)
Hembras
180±10g
2,22±1 kg
Tratados:
Tintura de
propóleos
C=100
mg/ml
Control:
Etanol al
30%
2000mg/kg
Toxicidad a
dosis única
dérmica
Roedores:
Ratas
Sprague
Dawley
No
roedores:
Conejos
Nueva
Zelandia
20
6
Hembras y
Machos (10
de cada
uno)
Machos
220±10g
2,22±lkg
Tratados:
Tintura de
propóleos C=
100 mg/ mi
Control:
Etanol al 30%
Tratados:
Tintura de
propóleos C=
860 mg/ml
Control: Etanol
al 90%
2000mg/kg
Irritabilidad
dérmica No
roedores
Conejos
Fi
3 Machos 1,8 kg Crema al 15% 0,5g de
Crema de
propóleos al
15%
Irritabilidad
oftálmica No
roedores
Conejos
Fi
3 Machos 1,8 -2 kg Crema al 10%
Crema al 15%
0,lg de la
crema de
propóleos al
10% y al
15%
Sensibilidad No
roedores
Curíeles
Hartley
20 Hembras y
Machos (10
de cada
uno)
>250±4g Crema de
propóleos al
2%
0,5g
37
La observación de los animales se ejecutó a las 6 y 12 h posteriores al tratamiento, sobre la
base de las manifestaciones que se refieren en el Anexo no.4. A las 24 horas después del
tratamiento se registró el número de animales muertos por grupo, practicándose la necropsia, el
examen macroscópico y las valoraciones histopatológicas según procedía. 141
Los sobrevivientes fueron regresados a sus jaulas para la observación en los 14 días
subsiguientes, controlando su peso corporal a los 7 y 14 días. 128‘ 140 y las manifestaciones
expresadas en el anexo referida anteriormente, anotándose las mismas en el modelo habilitado
al efecto, con una frecuencia no menor de 3 veces por semana. Al término de los 14 días se tomó
el peso de todos animales y se realizó la necropsia a los mismos.
2.3.2 Toxicidad a dosis única dérmica en roedores y no roedores
Para este ensayo los animales se seleccionaron al azar y se pesaron, los roedores se
agruparon a razón de 5 animales por caja, diferenciados por sexo e identificados
individualmente y por grupos y los no roedores fueron agrupados e identificados
individualmente; el afeitado de los mismos se llevó a cabo 24 horas antes del ensayo,
ejecutando el mismo en el lomo en un área equivalente aproximadamente a un 10 % de la
superficie total del cuerpo (3x4).123
Con una jeringuilla se aplicó el producto y se colocó una gasa en la superficie de aplicación
que fue cubierta con esparadrapo hipoalergénico atado deforma segura a la piel.
La sustancia en estudio se dejó en el sitio de aplicación por 24 h, tiempo después del cual la
cubierta fue removida y el agente residual fue eliminado por lavado con la ayuda de una
almohadilla de gasa, empleando jabón y agua templada. A los animales se le controló el peso
corporal con una frecuencia no menor de 3 veces, anotando el mismo en el modelo habilitado al
efecto.
Teniendo en cuenta que la vía de administración es dérmica se incluyeron como signos y
síntomas de toxicidad retardada los que aparecen en el Anexo no. 5, los cuales fueron anotados
en el modelo adecuado.
2.3.3 Irritabilidad Dérmica
La prueba de Irritabilidad Dérmica se realizó en un área aproximada de 6 cm2 de la piel; la
cual se cubrió con una gasa y se mantuvo sostenida a la misma mediante el empleo de un
esparadrapo hipoalergénico. Transcurridas 4 h de la aplicación única de la sustancia en
ensayo, se retiraron los parches, la zona se limpió con agua destilada y se secó con algodón
estéril.
El día antes del ensayo se depilaron los animales en la región dorsal, buscando siempre
aquellas zonas en las cuales el pelo tiende a demorar en aparecer. Las observaciones se
Capítulo 2 Materiales y Métodos
38
efectuaron a la 1, 24, 48 y 72 h de retirado el parche y los posibles daños se determinaron
según lo referido en el Anexo no. 5 y se anotaron en los modelos habilitados al efecto.
Todos los animales fueron ubicados en cubículos individuales. El cálculo del índice de
Irritación Primario (I.I.P) se efectuó sumando todas las observaciones de los días 2, 3 y 4,
dividiéndolas por el número de observaciones realizadas. El valor obtenido se comparó con la
categoría de respuestas referidas en el Anexo no. 6 para clasificar el producto y de esta forma
determinar su aprobación o rechazo.124’142 ,43
2.3.4 Irritabilidad Oftálmica
Para desarrollar este ensayo, no más de 24 h antes del inicio del mismo, se revisaron
rigurosamente todas las estructuras oculares (córnea, iris, conjuntiva) para de esta manera
descartar los animales que pudieran constituir falsos positivos.
La crema de propóleos al 10 % y al 15 % (0,1 g) se aplicó en el fondo del saco conjuntival del
ojo derecho, permaneciendo cerrado por espacio de 15 seg. En el ojo izquierdo no se aplicó
producto alguno, tomándose a manera de control.
Las observaciones se realizaron a la 1, 24, 48 y 72 horas después de la aplicación única del
material en estudio. Se aplicó una gota de Fluoresceína Sódica al 2% para de esta forma
visualizar mejor el posible daño corneal.
Todas las observaciones realizadas en las estructuras oculares fueron registradas en los
modelos habilitados al efecto. Se emplearon los parámetros referidos en el Anexo no. 7 para
graduar las afectaciones que se presentaron y para la evaluación de los resultados se tomó en
cuenta el sistema de clasificación que muestra el Anexo no. 8
El cálculo del I.I.O se determinó mediante la suma de todas las observaciones que se
encontraron en las tres estructuras analizadas (córnea, iris y conjuntiva), en los tiempos que se
prefijaron y este valor se dividió entre 12, el resultado obtenido fue el I.I.O. ' "
2.3.5 Ensayo de Sensibilización
Este ensayo se llevó a cabo según las normas ISO establecidas en 1999. El día antes del
ensayo se depiló la región dorsal del animal, inmediatamente debajo del área escapular en una
zona de 4 x 4. El día de la prueba se revisaron los animales con la finalidad de detectar daños
en la piel y si estos se presentaban, se eliminaban los animales afectados, luego de la
inspección se inyectó por vía intradérmica en la zona derecha 0,1 mL del adyuvante completo de
Freund diluido 1:1 en cloruro de sodio al 0,9 %. El mismo día, pero en leí zona izquierda, se hizo
también una aplicación tópica de 0,5 g de la sustancia en ensayo por 48 h. La superficie tratada
fue de 4 cm2 para ambos grupos.
La crema de propóleos ensayada se elaboró al 2 % dado a que en este tipo de ensayo se
utiliza la mayor concentración que no produzca irritación a la piel; esta concentración se
determinó mediante la aplicación de diferentes concentraciones de la formulación (2%, 8%, 10%,
Capítulo 2 Materiales y Métodos
39
15%), al inicio del ensayo, en 4 curíeles jóvenes, adultos, sanos, de la línea Hartley, con un peso
mayor de 250+4 g.
Se efectuaron exámenes macroscópicos después de la remoción del parche, evaluándose el
desarrollo de eritema y edema de acuerdo a su grado utilizando los modelos establecidos y el
sistema de clasificación que se muestra en el Anexo no. 9. Los días 2, 4, 7,9, 11 y 14 en la zona
derecha se hizo aplicación tópica por 48 h de 0,5 g de la sustancia sobre una superficie de 4
cm2.
Los días del 16 al 27 los animales se mantuvieron en reposo, o sea, no se aplicó tratamiento
alguno. El día 28 se hizo una aplicación tópica oclusiva por 48 h sobre un área de 4 cm2 de 0,5g
de la sustancia de ensayo en el flanco derecho (también depilado el día antes) tanto para los
animales sometidos a ensayo como para los controles, que recibieron en el flanco izquierdo el
vehículo.
Se observaron los animales a las 24, 48 y 72 h; después de la remoción del parche se
graduaron las reacciones para eritema, edema y formación de escaras para cada sitio tratado y
en cada intervalo de tiempo. La lectura tomada a la hora no se tuvo en cuenta.
El cálculo se realizó dividiendo el total de los animales que presentaron sensibilidad entre el
total del grupo (% de animales sensibilizados) y se comparó el resultado obtenido con lo
establecido por Draize (Anexo. 10) 143<145
Basándonos en las referencias expuestas en el capítulo de la Revisión bibliográfica y
teniendo en cuenta que los resultados de las evaluaciones toxicológicas desarrolladas en la
presente investigación coinciden con estudios realizados a propóleos cubanos de otras regiones
del país 59> 60, así como el criterio acerca de que el propóleos cubano es heterogéneo, pero que
su variabilidad no está dada por la diversidad de los elementos presentes en el mismo, sino por
la cantidad de cada uno de ellos; 140 se decidió por razones económicas, no llevar a cabo los
estudios de fototoxicidad, ni fotoalergia, ni tampoco las evaluaciones de toxicidad a dosis
repetida, que son exigencias para el registro del medicamento pero no para evaluaciones
clínicas, siempre que la literatura refiera ensayos con el producto objeto de estudio.61 62
2.4 Ensayo clínico
Una vez cumplimentadas las exigencias de seguridad establecidas por los organismos
reguladores se procedió a iniciar la evaluación de la eficacia del sistema medicamentoso
diseñado para estos fines, a través de un ensayo clínico que se llevó a cabo según la
Declaración de Helsinki de la Asociación Médica Mundial (Guía de Recomendaciones médicas
para la Investigación Biomédica en humanos, adoptada por la 18 Asamblea Médica Mundial en
Finlandia, Junio de 1964, enmendada por la 52 Asamblea General en Edimburgo, Escocia,
Octubre del 2000) y en correspondencia con las regulaciones establecidas en nuestro país por el
CECMED, una vez emitida la aprobación por esta entidad regulatoria; clasificándose el mismo
en fase II tardía, cerrado, a doble ciegas, controlado, estratificado según el tamaño de la lesión
y multicéntrico, con un diseño experimental de comparación interindividual o en grupos
paralelos.
Capítulo 2 Materiales y Métodos
40
Para lograr el doble ciego se establecieron las siguientes condiciones: todos los
medicamentos utilizados se colocaron en frascos plásticos iguales, aptos para contener
productos de consumo humano; la cura de la lesión se llevó a cabo por personal que no
intervenía en la evaluación de los resultados del ensayo; se cuidaba que antes del pase de
visita, la lesión estuviera lavada, para ello se ponían fomentos durante 20 min, de esta forma el
médico evaluaba, sin conocer que tratamiento recibía el paciente y luego se llevaba a cabo la
curación por el personal seleccionado; el paciente sabía que estaba en un ensayo clínico, pero
no conocía la forma farmacéutica que se estaba aplicando, pues la Terapia habitual estaba
constituida por cremas y ungüentos de diferentes tipos: Nitrofurazona (Amarñlla, untuosa),
Factor de crecimiento epidérmico (Blanca, cremosa), Sulfadiacma de plata (Blanca, cremosa), y
Neomicina (Transparente, untuosa).
El tamaño muestral de 40 pacientes para cada grupo experimental, calculado a través del
sistema MEDSTAT versión 2,1 de 1989, se obtuvo partiendo de una tasa de curación de un 20%
con la terapia habitual, para obtener al mes de tratamiento con la formulación ensayada una
tasa de curación de un 60%, con un error de tipo I de 0,05 y una potencia para encontrar
diferencias entre los grupos de 0,2 con un 99% de confiabilidad.
Se incluyeron en el ensayo 120 pacientes atendidos en los Servicios de Angiología del
Hospital Clínico Quirúrgico Docente "Saturnino Lora , el Hospital Militar Joaquín Castillo Duany
" de Santiago de Cuba y el Hospital Salvador Allende de Ciudad de La Habana con pie
diabético, en el período comprendido entre Diciembre de 1996 a Mayo del 2000.
La muestra estuvo constituida por 70 mujeres y 50 hombres cuyas edades oscilaban entre
28 y 74 años, dividiéndose la misma en tres grupos experimentales.
Grupo A: Voluntarios enfermos tratados con la crema de propóleos al 10 /o (n-40)
Grupo B: Voluntarios enfermos tratados con la crema de propóleos al 15 % (n=40)
Grupo C: Voluntarios enfermos tratados con la terapia habitual (n=40).
La estratificación del tamaño de la lesión se llevó a cabo estableciendo la definición de
úlceras pequeñas y úlceras grandes según criterio del facultativo:
Úlceras pequeñas: Lesión con área <,10 cm2 y perímetro < 10 cm
Úlceras grandes: Lesión con área > 10 erri2 y perímetro > 10 cm
Para establecer la eficacia de la crema se utilizaron criterios clínicos, el análisis
microbiològico de la lesión y los indicadores bioquímicos, estableciendo:
Variables principales:
• Análisis microbiològico de la lesión
• Determinación en suero de indicadores bioquímicos
• Planimetría
Estas variables fueron estudiadas del siguiente modo:
Análisis microbiològico de la lesión: Permitió evaluar el efecto antimicrobiano de la crema, para
ello se tomaron muestras de la lesión, antes de tratar al paciente con la terapia propuesta para
el ensayo y una vez que el especialista determinaba la mejoría notable.
Esta evaluación fue realizada por el laboratorio clínico de los hospitales en los que se llevó a
cabo el ensayo, aplicando la técnica microbiològica para muestras de secreciones referida en el
Manual de Normas Técnicas de Microbiología Clínica y Sanitaria de estos laboratorios,147 y el
Capítulo 2 Materiales y Métodos
41
test de difusión en disco por el método de Kirby Bawer para determinar la resistencia y
sensibilidad antimicrobiana de los gérmenes patógenos.
Determinación en suero de indicadores bioquímicos: Constituyó un importante indicador del
efecto antioxidante del producto, para evaluar el mismo se tomaron muestras de sangre del
paciente, antes de iniciar el tratamiento y una vez que el especialista determinaba la curación
del mismo, para medir la Susceptibilidad a la peroxidación lipidica o Potencial de peroxidación
(SPOX) de éste y su Capacidad antioxidante.
Planimetría: Variable que dio criterio cuantitativo de cicatrización de la lesión que incluye área y
perímetro de la lesión y velocidad de cicatrización, como la variación de ambos parámetros en
función del tiempo y se evaluó mediante la toma de impresión en acetato para realizar el cálculo
del área y perímetro de la lesión por planimetría digital computarizada a través del paquete
procesador de imágenes DIGIPAT SYSTEM, EICISOFT (La Habana, Cuba). Este procedimiento
se ejecutó antes de aplicar al paciente el tratamiento y cada 10 días, al ser sometido éste a
evaluación por el especialista.
Variables secundarias:
• Evolución clínica de la lesión
• Determinación en suero de otros indicadores bioquímicos
Estos indicadores permitieron explicar los efectos antioxidantes del producto y el control
metabòlico del paciente, para ello se tomaron muestras de sangre en los 2 momentos señalados
anteriormente y se determinaron los niveles de Glucosa, Contenido relativo de Fructolisina
(CRF), Productos Reactivos del Ácido Tiobarbitúrico (PRATB), SOD, CAT, Hidroperóxidos totales
(HT), Fosfolipasa A2 (PLA2), Albúmina y Grupos sulfhidrilos no proteicos o Glutation (SH). • Duración del tratamiento
Se tomó el tiempo de duración de cada uno de los tratamientos en cada grupo experimental,
teniendo en cuenta las categorías establecidas para determinar la evolución final de la lesión,
emitida por el especialista, que a continuación relacionamos:
> Empeorado: Paciente que presentó reacciones perilesionales con aumento del tamaño de la
lesión al terminó del tratamiento o en el transcurso del mismo.
> Igual: Paciente que finalizó el tratamiento con los mismos síntomas y signos de la lesión.
> Mejorado: Paciente que al terminar el tratamiento presenta úlcera de menor tamaño, bordes
activos y fondo limpio.
> Curado: Paciente que finalizó el tratamiento sin lesión.
Variables de seguridad:
• Reacciones adversas
Se estableció la recogida de información sobre todo efecto adverso que apareciera, para ello
el médico debía registrar esta información en la planilla de reporte de reacción adversa (Anexo
no. 11), lo más explícitamente posible, describiendo la intensidad y la dosis del tratamiento
necesaria para aliviar los síntomas detectados. Para determinar la intensidad se tuvo en cuenta
la siguiente clasificación:
> Ligera: No requiere de medicación.
> Moderada: Cede con la medicación aplicada
> Severa: No cede con la medicación aplicada
Capítulo 2 Materiales y Métodos
42
La reacción adversa que se presentó se identificó, teniendo en cuenta los resultados
obtenidos en estudios precedentes i4S‘,5°, por lo que todo cuadro de prurito, irritación,
enrojecimiento y edema durante el tratamiento con la crema de propóleos se atribuyó a dicha
medicación.
Al presentarse el cuadro de reacción adversa se suspendió de inmediato la aplicación del
producto responsable de la misma y se realizó por el especialista las indicaciones terapéuticas
necesarias de acuerdo con la forma de presentación de la misma.
Como conducta se siguió la aplicación de un antihistamínico durante 7 días y el leimcio de la
cura de la lesión con otra medicación, considerándose este evento como criterio de salida. Acto
seguido se abrió el código para este paciente de manera que el médico
Capítulo 2 Materiales y Métodos
conociera el tipo de tratamiento que recibía y se llenaron los datos que al respecto se recogen en
la planilla para estos fines (Anexo no. 12). La incidencia detectada se comunicó al farmacéutico
de cada centro hospitalario que se encargó de hacer los trámites correspondientes para estos
casos, enviando la planilla establecida al Centro Piloto de Farmacovigilancia de la Provincia y a
la Consultoría del Centro Provincial de Toxicología.
Variables de control:
. Edad
. Sexo
. Raza
. Antecedentes patológicos (AP)
. Situación laboral
. Nivel de instrucción
. Tratamientos anteriores (TA)
. Tratamientos concominantes
. Tipo de Diabetes
. Tiempo de evolución de la enfermedad (TEE)
. Hábitos de vida
Controlados a través de la anamnesis farmacológica (Anexo no. 13) y recogidos en planilla
diseñada para estos fines (Anexo no. 12)
Método de asignación aleatoria:
Para formar los distintos grupos de tratamiento, los pacientes se asignaron de acuerdo a su
ingreso al hospital, haciendo coincidir su número de inclusión de forma aleatoria con la letra del
frasco que contenía el tratamiento, de la siguiente manera: IB - 2A - 3C - 4A - 5B - 6C y así
sucesivamente hasta completar cada grupo, de manera que el número total de pacientes en
cada uno fuera igual (n=40). El listado estuvo en poder de una enfermera y no fue manejado por
los investigadores.
Los criterios de inclusión, exclusión y salida, previos al ensayo, se refieren a continuación:
^ Criterios de inclusión: Pacientes hospitalizados o ambulatorios, de ambos sexos, cualquier
raza, menores de 75 años con diagnóstico positivo de pie diabético, que no consuman
bebidas alcohólicas y no fumen, que no hayan recibido suplementos vitamínicos ni
antioxidantes en los tres meses anteriores al inicio de este ensayo y que otorguen su
consentimiento para participar en el mismo.
'y Criterios de exclusión. Pacientes que no acepten ser incluidos en el ensayo, que no cumplan
con los criterios de inclusión y que presenten hepatopatias, nefropatías, linfangitis o
gangrenas, eczemas, urticarias, problemas de tiroides y asma bronquial, así como, aquellos
alérgicos a las abejas, picaduras de éstas y productos apícolas. Se excluyen las mujeres
embarazadas para evitar complicaciones durante este periodo.
> Criterios de salida: Pacientes que abandonen voluntariamente el ensayo, que presenten
reacciones adversas que puedan agravar su lesión, así como, aquellos que fallezcan y que
Capítulo 2 Materiales y Métodos
43
44
por causas ajenas a su enfermedad no cumplan los requisitos del tratamiento.
Procedimiento:
En la captación de los pacientes, se procedió a la recolección en historia clínica de sus datos
a través de la planilla correspondiente, la realización de la anamnesis farmacológica y el
llenado de la planilla de consentimiento (Anexos no. 12, 13, 14)
Para el estudio fue necesario medir la variable nivel de instrucción ya que la misma permitía
enfocar la anamnesis farmacológica para que el paciente la comprendiera y de esta forma se
obtenía información valiosa para el estudio, que no haya sido comunicada al facultativo y por
otro lado la situación laboral dio criterio de los hábitos de vida del enfermo que podían influir en
su estado de salud.
El tratamiento se realizó bajo la hospitalización del pacientes y se continuó en régimen
ambulatorio si, después de los 30 días de tratamiento, el especialista emitía el criterio de
mejoría, o se llevaba a cabo de forma ambulatoria. La curación fue ejecutada por personal
adiestrado que no intervenía en la evaluación de los resultados, cuando el paciente se
encontraba hospitalizado y por el personal de enfermería del consultorio médico de cada
paciente si este era ambulatorio.
El seguimiento de los pacientes hospitalizados se realizaba diariamente por el especialista,
anotando los cambios que se producían, así como, las manifestaciones de los enfermos sobre
los síntomas y estado general. Cada 10 días el especialista realizaba la valoración general del
paciente según los criterios establecidos para determinar la evolución final de la lesión y se
realizaba la anamnesis farmacológica para mantener controlados los requisitos del tratamiento,
su eficacia y las variables de seguridad y de control, en el caso de los pacientes atendidos
ambulatoriamente se garantizaba que cada 10 días fueran evaluados por el especialista, a
través de consulta previamente coordinada, para que el
estudio fuera homogéneo.
Los frascos con el tratamiento eran entregados al Médico de la Familia de cada paciente que
era atendido ambulatoriamente, con las orientaciones correspondientes en el método, para ello
se realizaba un contacto previo con el mismo que asegurara la calidad y continuidad del
ensayo.
Para llevar a cabo la cura de la lesión se procedía al lavado de las manos del personal que
ejecutaba la misma, toda la manipulación se realizaba con guantes, pinzas y materiales
previamente esterilizados; la torunda de algodón, así como, el aplicador se cambiaban para
cada paciente, de manera que no se contaminara el producto ni la lesión de los pacientes.
Para prevenir reacciones de intolerancia, se aplicaba en los pacientes la formulación en un
sitio alejado de la lesión, manteniendo la misma por 24 horas. Una vez concluido dicho período
se observaba la evolución y se determinaba el inicio o no del tratamiento.
La crema se aplicaba una vez al día en los grupos Ay B siguiendo el método descrito por
varios autores ¡si-is3t se aplicaba al paciente fomentos de suero fisiológico durante 20 minutos
antes de ser curado con la crema, con la finalidad de limpiar la lesión eliminando el tejido
muerto y la costra, lo cual facilita la formación del tejido de granulación y promueve la
Capítulo 2 Materiales y Métodos
45
epitelización. A continuación se secaba la lesión con torunda estéril y se aplicaba una fina capa
de la crema en el sitio afectado, cubriendo la lesión con apósitos y vendajes que se mantenían
durante 24 horas para contribuir a una mejor regeneración epitelial.
El grupo C recibía la terapia habitual, también 1 aplicación diaria, la cual se llevaba a cabo
con fomentos de Suero fisiológico al 0,9% o Permanganato de potasio al 2% o Ácido bórico al
0,5% o Ácido acético al 0,75% durante 20 minutos y crema de Nitrofurazona o Sulfadiacina de
Plata o Neomicina o Factor de Crecimiento según criterio médico, siguiendo la metodología
expuesta para los grupos Ay B.
Los pacientes que lo requerían recibían el tratamiento establecido por vía oral o parenteral
para controlar su enfermedad de base (Diabetes), siendo supervisada dicha terapia por el
personal de enfermería o por algún familiar en caso de pacientes ambulatorios.
El tratamiento se interrumpía si el enfermo desarrollaba linfangitis, gangrenas, eczemas,
lesiones dermatológicas, cualquier manifestación alérgica de etiología no precisada o
presentaba reacciones adversas propias del producto tales como prurito, enrojecimiento,
inflamación y edema.
Se estableció como evolución positiva del paciente, cuando éste mostraba una lesión libre de
microorganismos, con disminución del 60% del área y el perímetro de la lesión con respecto al
valor obtenido antes de iniciar el tratamiento, una susceptibilidad a la peroxidación lipídica por
debajo de 2460±622 nmol/L y una capacidad antioxidante mayor del 66%
Para aquellos pacientes en los que no se alcanzó respuesta, se descodificó su número de
áleatorización y se les brindó la oportunidad de continuar su tratamiento con la terapia
establecida, según criterio del médico, realizándose su seguimiento por consulta.
Criterios de evaluación de la respuesta:
Éxito terapéutico:
Se considerò éxito terapéutico si el 60% de los pacientes involucrado en el estudio, tratados
con la crema de propóleos, tenían una evolución positiva y si esta mejoría era al menos en un
20% superior a la obtenida en el grupo tratado con la terapia habitual. Fracaso terapéutico:
Cuando más del 40% de los pacientes tratados con propóleos no presentaban una evolución
positiva y la lesión mostraba reacciones perilesionales o profundización de la misma, con
aparición de esfacelos o incremento de la secreción, tardanza en la aparición del tejido de
granulación, o se mantuvieran los mismos signos o síntomas motivo de ingreso.
Técnicas utilizadas para medir los indicadores bioquímicos:
Para medir los indicadores bioquímicos se extrajeron de los pacientes muestras de 5 mi de
sangre total, a las 8:00 am después de 12 horas de ayuno, las mismas se centrifugaron en una
centrífuga SIGMA 2K-15 a 1800 r.min1. durante 20 min. El suero fue dividido en 11 partes y
conservado a -20°C hasta el momento de la determinación individual.
Se utilizaron variables bioquímicas de referencia para establecer comparaciones con las
obtenidas en la muestra poblacionál evaluada. Los valores de referencia normales fueron
tomados de 60 pacientes supuestamente sanos con edad, sexo y raza similar a la de la
muestra poblacionál objeto de investigación y de reportes de la literatura científica.154
Capítulo 2 Materiales y Métodos
46
1- Glucosa: Las concentraciones de glucosa fueron determinadas por el método colorimétrico
de la glucosa oxidasa, utilizando el juego de reactivos Rapigluco ® comercializado por la EPB “
Carlos J. Finlay” (Ciudad de La Habana. Cuba) que se fundamenta en lo siguiente:
La glucosa presente en la muestra reacciona enzimàticamente, formándose un complejo
coloreado que se cuantifica espectrofotométricamente a 505 nm. ,ao
Glucosa + O2 ----------- ► Acido glucónico + H2O2
H2O2 + 4 aminofenona ------- ► Quinonaimina + H2O
Las concentraciones fueron estimadas por el método de los mínimos cuadrados a partir de
los valores de absorbancia de 5 patrones de concentración conocida con la finalidad de
establecer la curva de mejor ajuste para interpolar. Los valores se expresaron en mmol/L.
2- CRF (Producto de Amadori): La Fructolisina (proteina del suero glicosilada) es precursora
de los PTGA. Su contenido relativo se determina por la reducción que estos originan sobre el
indicador nitrobluetetrazolium (NBT) dando lugar a un compuesto
coloreado formazano. La cantidad de Fructolisina se monitorea por los cambios de absorbancia
a 530 nm en los siguientes 10 minutos. 156 El CRF se calculó del siguiente modo: CRF= D02 - DO1
Donde:
DO2 = Densidad óptica de la lectura 2 a los 10 min DOi = Densidad óptica de la lectura 1 al
inicio
Los valores de Fructolisina fueron corregidos con el contenido de albúmina y se expresaron
en unidades de ADO. min1. 157
Fructosamina = (Fructosamina/Albúmina) x Albúmina promedio
3- PRATB: Los PRATB se forman por la ruptura de ácidos grasos polinsaturados y constituye
un índice adecuado para determinar la magnitud de las reacciones de peroxidación lipídica
(POL). Esta determinación se basa en la reacción que ocurre entre los lipoperóxidos presentes en
la muestra y el ácido tiobarbitúrico, utilizado en la solución reactivo, como sustrato en dicha
reacción. Los PRATB se liberan de la misma y rinden un compuesto coloreado que absorbe a
535 nm. La solución reactivo contenía 15 g de Ácido Tricloroacético (TCA), 375 mg de Ácido
tiobarbitúrico (ATB) en 100 mL de HCl 0,25 N. 158 160
Los cálculos se llevaron a cabo según la siguiente fórmula:
C = DO/1,56 x 10 4 nmol/L
Donde:
C= Concentración de PRATB DO= Densidad óptica
1,56 x 10 4 = Coeficiente de extinción
4- SPOX: Esta técnica se basa en inducir los procesos de peroxidación lipídica en el suero del
paciente incubado por 24h a 37°C por catálisis con Cu 2*(2 mM) para conocer el balance entre
factores prooxidantes y antioxidantes sobre la base de la formación de PRATB antes y después
de la inducción de dicho proceso. Los valores obtenidos se expresaron en nmol/L.
154
Para los cálculos se restó para cada muestra el valor de la determinación de PRATB
Capítulo 2 Materiales y Métodos
47
correspondiente a las 24 h con la determinada a las O h.
5• Capacidad antioxidante: Para llevar a cabo este ensayo se utilizó el homogenado de
cerebro de rata que es rico en fosfolípidos, estos sufren procesos peroxidativos (catalizados
o no por metales) que se pueden medir por el incremento de los niveles de PRATB durante el
proceso. Al colocar la muestra biológica, podemos conocer si esta inhibe o no los procesos
peroxidativos de los fosfolípidos y determinar así su capacidad antioxidante.
Capítulo 2 Materiales y Métodos
48
Preparación del homogenado: Se tomaron 10 ratas machos Sprague Dawley con un peso de
250-300 g, adultas, con su correspondiente certificado de calidad, suministradas por
CENPALAB.
Los animales se dejaron en ayunas 24 h antes del sacrificio, llevando a cabo éste por
dislocación cervical. El cerebro fue extraído mediante cirugía y se lavó con solución
amortiguadora fosfato salina (PBS) pH=7 helado.
Por cada 3,2 g de cerebro se añadieron 12,8 mL de PBS pH=7 helado y se homogenizó 10
min a 1000 r.min1 posteriormente se centrifugó a 4 °C durante 15 min a 5000 r.min', se congeló
a - 20 °C hasta el momento de la determinación. Por cada 2,5 mL de homogenato se añadieron
7,5 mL de PBS pH=7 a temperatura ambiente utilizándose esta solución en los ensayos.
a- Autoxidación espontánea: La peroxidación transcurre con la intervención de las enzimas y
el hierro del medio. El medio de reacción contenía 1 mL del homogenado de cerebro y 10 piL de
la muestra o de PBS en el caso del control.
b- Autoxidación catalizada por hierro exógeno: Al medio se le adiciona 50 piL de FeCL3
C=100 mM, 50 piL de ácido ascòrbico C=100 mM (indicador de la reacción) y 10 ¡iL de la
muestra o de PBS como control. En ambos casos se incubó durante 60 min y luego se tomaron
400¡iL para determinar los PRATB.
Los resultados se reflejaron como % de actividad antioxidante (AA) y se calcularon según la
fórmula siguiente:
6- SOD: La determinación de la actividad de la SOD se realizó por el método de inhibición del
pirogállol en medio básico, I6J| 162 generándose en dicho medio Oz', de esta forma la reacción
radicalaria se propaga acelerando la autoxidación del pirogállol cuya forma oxidada absorbe la
luz a 420 nm. La presencia de un secuestrador de radicales superóxido en el medio, como la
SOD, inhibe la autoxidación al evitar las reacciones de propagación. Por convenio se tomó 1U de
SOD como la cantidad de enzima que inhibió en un 50% la reacción de autoxidación del
pirogállol a 25°C y pH= 8,2
La actividad de la SOD se calculó según la siguiente fórmula.
U/L/min = | [(ADOm/ADOb) 100J - 100 \
Donde:
U/L/min = Actividad de SOD
ADOm: Diferencia de densidad óptica de la muestra A4 = 100 x 1-
ADOb: Diferencia de densidad óptica del blanco
7- CAT: La presente técnica se fundamenta en el seguimiento de la variación de densidad
óptica a 240 nm que tiene lugar durante la descomposición del H2O2 por la CAT.161
La actividad de la CAT se calcula a través de la siguiente ecuación:
AE= (VT/ 0,1 mL xl cmx A DO) x 1000 AE= ADOx 30x1000
Donde:
AE (U/L/min) = Actividad de CAT VT- Volumen total 3 mi 0,lml = Cantidad de muestra lcm=
Capítulo 2 Materiales y Métodos
Capítulo 2 Materiales y Métodos
49
Ancho de la cubeta ADO= Variación de la densidad óptica
8- HT: La captura de HT se midió mediante la determinación cuantitativa colorimétrica de esta
ERO utilizando el ensayo basado en la oxidación del hierro ferroso a hierro férrico por H2O2 en
condiciones ácidas:
Fe 2++ H2O2 ----- ► Fe 3+* OH + OH
El enlace del hierro férrico con el indicador naranja xilenol (3,3- bis [ N, N-di(carboxy metil) -
aminometil ]-o-cresolsulfonphthálein,sál sódica) forma un complejo coloreado estable que puede
medirse a 560 nm. 163- 164
Fe 3++ XO ---- ► Fe2** XO
Se prepararon para el ensayo 500 ¡xL de la solución reactivo la misma contenía: 250/.iL de
Ri[( NH4) 2Fe SO4 x 6 H2O C=25 mM y H2SO4 C=2,5 M] y 25 mi de R2 (Sorbitol C=100 mM y
naranja xilenol C=125 mM en agua). Todas las muestras fueron incubadas a 37°C y se midió la
concentración de HT a las 24 h después de la reacción.
La concentración de HT se determinó aplicando la siguiente fórmula:
[ ] HT ]iM= DO x 100 pM/0,138
[ ]HTpM = DO x 724,6
Donde:
[ ] HT = Concentración de HT DO = Densidad óptica
0,138 = Densidad óptica del patrón de concentración conocida 100 yM = Concentración del
patrón
9- PLA2: La PLA2 actúa sobre los fosfolípidos y provoca la liberación de lisofosfolípidos y ácidos
grasos. Estos últimos producen una acidificación del medio que origina disminución en la
absorbancia de la solución sustrato a 578 nm 1« Se empleó como sustrato lecüina de yema de
huevo (Merck. Alemania).
Se determina, la hidrólisis espontánea del sustrato leyendo la absorbancia de dicha solución
a tiempos de 30s y 90s, luego se calcula el factor de proporcionalidad (E) añadiendo 30 UL de
HCL (0,1N) a 1,5 mi de solución sustrato leyendo la absorbancia a los 30s y luego se resta este
valor de absorbancia al obtenido para el sustrato antes de adicionar HCL, finalmente se
determinò la actividad enzimàtica de la muestra añadiendo 0,1 mi del suero sanguineo a 1,4 mi
de solución sustrato, leyendo la absorbancia a los 30s y 90s
La actividad enzimàtica se calculó como sigue:
A E= ( ( VT/ Ex lem x 0.1 mi) ADO) 1000
A E= 68181 xADO
Donde:
AE= Actividad enzimàtica
VT= Volumen total (1.5 mi)
E= factor de proporcionalidad (0.22)
1 cm = Grosor de la cubeta
0,1 mi = Volumen de la muestra (0,05 mi)
ADO= Diferencia de densidad óptica
ADO = Amuestra - Ad
50
Donde:
Amuestra = Ab 30s muestra-Ab 90s muestra
Ad = Ab 30s (sustrato) - Ab 90s (sustrato)
Donde:
Amuestra = Diferencia de densidad óptica de la muestra
Ad = Diferencia de densidad óptica del sustrato (Hidrólisis espontánea)
Cálculo del factor de proporcionalidad:
E=Ab 30s (sustrato) - Ab 30s (sustrato)
0,15< E < 0.3 Si esto se cumple, el valor de E que se debe utilizar para el cálculo de la actividad
enzimàtica es de 0,22
10- Albúmina: La medición de albúmina en suero se basa en su unión cuantitativa con el
indicador 3,3', 5,5' tetrabromo m cresol sulfontaleina (verde de bromocresol BGG). El complejo
albúmina verde de bromocresol presenta una absorción máxima a 578 nm.1 La concentración
de albúmina se calcula del siguiente modo:
Concentración de albúmina = A muestra/ A patrón x Concentración del patrón
Donde:
A muestra = Absorbancia muestra A patrón = Absorbancia patrón
11 SH: La muestra se precipitó con ácido Tricloroacético al 10% p/v más EDTA iaj y el
sobrenadante se hizo reaccionar con el reactivo de Ellman’s (ácido 5,5' Ditiobis (2 nitrobenzoico)
para rendir un compuesto coloreado que absorbe a 412 nm. >67- 168 Estos grupos fueron
cuantificados utilizando la curva patrón de GSH (glutatión) mediante interpolación de la densidad
óptica obtenida para cada muestra. Se utilizaron patrones de GSH de concentraciones conocidas
(100-150 mg/L). Los resultados se expresaron como mg/L de GSH.
2.5 Evaluación de la relación beneficio-riesgo
El cálculo de la relación beneficio-riesgo de cada tratamiento, se llevó a cabo según el criterio de
diversos autores; I69'170 utilizando un modelo matemático que permitió cuantificar esta relación, la
cual fue modificada de acuerdo a nuestras condiciones experimentales.
Relación beneficio-riesgo:
Capítulo 2 Materiales y Métodos
51
Descripción de las variables asociadas al beneficio:
Bi - Duración del tratamiento, con evolución satisfactoria con evolución no satisfactoria - O
10- 20 días = 20
21-30 días = 10 más de
30 días = 5
Se partió del hecho que un tratamiento con evolución satisfactoria, en un periodo de 10 a 20
días constituye un criterio de beneficio significativo, en este tipo de paciente, con
dificultad en la cicatrización
B'2 - Sensibilidad del germen aislado a la terapia.
O- 10% = o 11 -
30% = 5
31-60% =10 más de 61 % = 20
Se estableció que más de un 61% de sensibilidad al germen aislado constituye un criterio de
probada eficacia pues el paciente responde con la cura de su lesión.147 B3 - Evolución clínica.
Curado = 20
Mejorado =10 Igual
= 5
Empeorado o fallecido = O
Se partió de las categorías establecidas para determinar la evolución final de la lesión, emitida por
el especialista y que fueron descritas anteriormente.
B4 - Capacidad antioxidante
más de un 66% = 20 26%-65% =
10 11%-25% = 5 0-10% = O
Se tuvo en cuenta para establecer la puntuación, los reportes de la literatura 154 acerca de la
actividad antioxidante medida en pacientes sanos (n=25) y pacientes diabéticos (n=38) que alcanza
valores de 66,2± 10,2% en los primeros y 66,7± 10,8% en los segundos. Por lo que todo paciente con
más de un 66% de capacidad antioxidante se le asigna el mayor puntaje establecido para dicha
variable.
Descripción de variables asociadas al riesgo:
Ri - Resistencia del germen aislado a la terapia, más de
61 % = 20 31% -60%= 10 11% - 30 %
= 5 0%-10%= O
Se consideró que más de un 61% de resistencia del germen aislado a la terapia no permite la cura
de la lesión por lo que se le asigna la máxima puntuación. 147 R2 - Susceptibilidad a la peroxidación
lipídica. más de 7401 = 20 4931- 7400 = 10 2471 - 4931 = 5
0 - 2470 = O
Capítulo 2 Materiales y Métodos
52
Se tomó como criterio de máxima puntuación una susceptibilidad a la peroxidación lipidica mayor
de 7401 nmol/L teniendo en cuenta que la literatura reporta 154 valores por debajo de 2460 nmol/L ±
622 en pacientes sanos (n=25).
R3 - Velocidad de disminución del área.
No disminución = 20 0.01 -
0.15= 10 0.16-0.30= 5
más de 0.31 = O
Se sustenta en los resultados obtenidos en nuestra población partiendo del tamaño de la lesión,
antes de recibir el tratamiento y una vez concluido el mismo.
Ri - Velocidad de disminución del perímetro de la lesión.
No disminución = 20 0,01 -
0,15= 10 0,16-0,30= 5
más de 0,31 = O
El resultado final se cuantificó a través de la relación beneficio-riesgo, la cual se calculó en cada
uno de los tratamientos aplicados al paciente, teniendo en cuenta que:
❖ Si B/R < 1, el tratamiento produce mayor riesgo que beneficio.
❖ Si B/R = 1, el tratamiento tiene igual probabilidad de producir un beneficio o un riesgo.
❖ Si B/R > 1, el tratamiento produce mayor beneficio que riesgo.
Para conocer la eficacia de las terapias ensayadas, se empleó el resultado de la relación beneficio-
riesgo en los tres tratamientos aplicados en la muestra sometida a estudio. Para ello se estableció el
número relativo a través del cálculo de las razones matemáticas correspondientes y la resultante de
ellas se compararon entre sí.171
Nr= TB/TR
Donde:
NR = Número relativo
TB = Total de tratamientos beneficiosos
TR = Total de tratamientos riesgosos
La probabilidad de que un paciente estuviera sometido a una terapia riesgosa o beneficiosa con los
tratamientos aplicados 171 se calculó a través de la relación:
Cantidad de pacientes que no curaron
Pr - ------------------------------------------------
Cantidad total de pacientes evaluados Cantidad de pacientes que curaron
Pb = ----------------------------------------------------------------------------------------
Cantidad total de pacientes evaluados
Pr = Probabilidad de producir un riesgo.
Pb = Probabilidad de producir un beneficio.
Capítulo 2 Materiales y Métodos
53
2.6 Evaluación de la relación costo eficacia
Para el análisis de la relación costo eficacia, se partió de un tipo de evaluación económica muy
similar: el análisis costo efectividad, cuya única diferencia con la seleccionada para la presente
investigación, es el nivel de efectos que tiene en consideración, que refleja condiciones reales para la
intervención médica.172’ 173
En este estudio, la unidad de beneficios en términos de salud que se desea obtener es la eficacia,
que es una medida del efecto o resultado de una tecnología o procedimiento médico concreto
utilizando condiciones ideales. En la presente investigación se parte de un ensayo clínico en fase III,
cuyo objetivo es evaluar la eficacia y seguridad del propóleos en el pie diabético por comparación con
las alternativas disponibles, por esta razón la evaluación se desarrolla de modo controlado, ya que se
utiliza la aleatorización, la técnica a doble ciego, se establecen criterios de inclusión y exclusión, dosis
bien definidas y duración fija del tratamiento; aspectos estos que no se tienen en cuenta cuando la
unidad de beneficio es la efectividad. 174
El costo de las formulaciones objeto de estudio, al 10% y al 15% cuando son elaboradas en el
dispensario de los servicios farmacéuticos de los hospitales seleccionados, para llevar a cabo la
presente investigación, se calculó en moneda nacional y se obtuvo utilizando las ecuaciones
matemáticas tomadas de la literatura revisada. ' 7S~'78 El costo total fue calculado según la siguiente
expresión:
Ct = Mp + Im + E + St + D Donde:
Ct— Costo total
Mp= Costo de materiales
Im= Costo de insumos de materiales de limpieza E=
Energía St— Salario D= Depreciación
Capítulo 2 Materiales y Métodos
Al costo total de las formulaciones objeto de estudio obtenido, se le adicionó un 5% de merma, la cual
fue calculada del siguiente modo: $2.00 ------ 100%
x-------------------- 5% x = $0.1
El modo en que fueron calculadas cada una de las variables de la ecuación se describe a
continuación:
> Mp = Costo de materiales Mp =
Ii + h + .................... In
I = C x P
I = Importe C =
Cantidad P =
Precio
El importe de cada uno de los materiales empleados en la elaboración de las formulaciones objeto
de evaluación se relacionan en las Tablas no.2 y no.3. Para calcular el costo de insumos de
materiales de limpieza se utilizaron los datos expresados en la Tabla no. 4 y se procedió según las
siguientes ecuaciones:
> Im = Costo de insumos de materiales de limpieza Im =X,
+ X2 + .... Xn
X = Pz/Cd
X = Insumos de materiales de limpieza
Pz = Precio cuando el insumo de materiales es utilizado en un día Cd =
Cantidad de departamentos de la farmacia
El cálculo del costo del alcohol, al no consumirse un litro diano, sino sólo 10 mi para la limpieza
de los utensilios empleados en la elaboración de las cremas, se efectuó de la siguiente forma:
1000 mi ------ $12,248
10 mi ------ y
Y = Precio de 10 mi
Y =0,12248
En cuanto a la vida útil estimada se hizo corresponder la misma con su precio para establecer a
cuánto equivale este valor cuando el insumo de materiales es utilizado en un día por ejemplo:
30 días ------- $0,50
54
Capítulo 2 Materiales y Métodos
Tabla, no. 2 Costo de materiales para 100 g de crema de propóleos al 10% Descripción U.M. Cantidad Precio ($) Importe ($)
Propóleos Kg 0,01 0,0625 0,000625
Monoestearato de glicerilo Kg 0,003 1,64 0,00492
Tnetanolamina L 0,00336 0,34 0,0011424
Propilenglicol L 0,00515 1,16 0,005974
Ácido Esteárico Kg 0,012 1,42 0,01704
Propil Parabeno Kg 0,00002 3,628 0,00007256
Metil Parabeno Kg 0,00018 3,06 0,00018
Costo total ( Mp) 0,0303839 * 0,03
Tabla no. 3 Costo de materiales para 100 g de crema de propóleos al 15% Descripción U.M. Cantidad Precio ($) Importe ($)
Propóleos Kg 0,015 0,09375 0,001406
Monoestearato de glicerilo Kg 0,003 1,64 0,00492
Tnetanolamina L 0,00336 0,34 0,0011424
Propilenglicol L 0,00515 1,16 0,005974
Ácido Esteárico Kg 0,012 1,42 0,01704
Propil Parabeno Kg 0,00002 3,628 0,00007256
Metil Parabeno Kg 0,0002 3,06 0,00018
Costo total ( Mp) 0,0311669 *0,03
Tabla no.4 Costo de insumos de materiales de limpieza Descripción U.M. Cantidad
Vida útil
Estimada
Precio ($) Pz($) (X) Insumo ($)
Escoba U 1 1 mes 0,50 0,01667 0,00277
Trapeador u 1 6 meses 1,00 0,00556 0,000926
Frazada u l: 1 mes 0,80 0,02667 0,00444
Alcohol mi 10 24 horas 0,12248 0,005103 0,005103
Total (Im) 0,013239
56
Teniendo en cuentas que las farmacias tienen de modo general seis departamentos se utiliza la fórmula X = Pz/Cd y se obtiene el insumo descrito en la tabla anterior.
Para el caso del alcohol, como 10 mi se consumen en una hora, se procede de la siguiente manera:
Y como los 10 ml se emplean en un sólo departamento de la Farmacia, que es donde se elabora
la crema, el valor del importe se obtiene dividiendo Pz entre 1.
En la tabla no. 5 se reflejan los parámetros empleados para calcular el costo estimado de energía
utilizando las siguientes ecuaciones:
> E = Energía
E = Tku>/día x Vk.iv Tkw/día = Ckw/h x h Tkw/ día = Total de kw/ día Vkw = Valor de kw en
pesos Ckw/h = Consumo de energía kw/h h = Cantidad de horas
El cálculo de los costos de salario se llevó a cabo según se muestra a continuación:
> St = Salario St = Sb + Se
St = Salario total Sb = Salario básico Se = Salario complementario Sb = Salario en 1 h = Salario
diario/ 8horas Se = Sb x 0,0909 Seguridad Social: 14 % de St Sb = $ 7,125/8 horas = $
0,89/horas Se = $ 0,89/horas x 9,09 % = $ 0,08 St = (Sb + Sc)x 14 %
St = ($ 0,89 + $ 0,08) x 14 % = 0,14
En el caso del cálculo de la depreciación los parámetros que se tuvieron en cuenta aparecen
reflejados en la Tabla no. 6 y las ecuaciones empleadas fueron las siguientes, y D = Depreciación D =
DI + D2 + D3
Capítulo 2 Materiales y Métodos
Tabla no. 6 Depreciación
Tabla no. 5 Costo estimado de energía Descripción Cant
Valor de 1
kw/h ($)
Consumo
kw/h
Cantidad
de horas
Total
Kw/día
Costo de
energía
E ($ )
Ventilador 1 0,09 0,042 24 1,008 0,09072
Lámpara 40 w 1 0,09 0,020 24 0,48 0,0432
Balanza digital 1 0,09 0,052 0,0035 0,00018 0,00002
Termostato 1 0,09 0,032 24 0,768 0,06912
Mezcladora 1 0,09 0,047 0,014 0,000658 0,00006
Total 0,20312
Medios básicos U.M. Cantidad Precio Tasa (T)
%
D
Balanza digital U 1 2300,75 20 1,28
Termostato U 1 532,35 10 0,15
Mezcladora U 1 723,55 9 0,18
Total 1,61
58
D = Depreciación
P = Precio T =
Tasa
Una vez obtenido el costo total de las cremas de propóleos objeto de estudio, se calculó el
costo total del tratamiento para un paciente ingresado en el Servicio de Angiología, de cada uno
de los hospitales investigados, a través de la siguiente expresión matemática:
Costo total del tratamiento = Cm x Tt
Donde:
Cm = Costo medio diario del tratamiento hospitalizado Tt
= Tiempo medio de tratamiento hospitalizado
Para calcular el costo medio diario del tratamiento se partió del valor de éste en un paciente
hospitalizado en el servicio de Angiología por día, sin recibir medicación (atención médica y
estadía hospitalaria) durante el período de la investigación (Diciembre 1996 a Mayo 2000), el
cual se obtuvo a partir de los datos suministrados por el Departamento de Contabilidad de los
hospitales seleccionados para este ensayo, a dicho dato se le adicionó el costo de la
formulación propuesta de acuerdo a la siguiente ecuación:
Cm = Cp + Ct
Cp = Costo del paciente hospitalizado sin recibir medicación
Ct = Costo total de la formulación evaluada
En relación con el costo total del tratamiento para la terapia habitual se procedió de modo
similar, pero el dato de costo medio del tratamiento hospitalizado utilizado fue el suministrado
por el Departamento de Contabilidad de cada hospital, que incluye costo de atención médica,
estadía hospitalaria y medicamentos utilizados.
El cálculo del tiempo medio de tratamiento del paciente hospitalizado que recibió la
formulación objeto de evaluación, así como la terapia habitual fue calculado a partir de los 120
pacientes ensayados, seleccionando todos aquellos con criterio de curado, teniendo en cuenta
que si a los 30 días de recibir medicación egresaba del centro hospitalario con criterio de
mejorado, se seguía el mismo hasta su curación en servicio ambulatorio con ingreso domiciliario
con la finalidad de no introducir sesgos en la investigación. Por lo tanto se tomó como unidad de
eficacia a medir todo caso curado partiendo de los porcentajes de eficacia obtenidos como caso
curado en cada alternativa de tratamiento. % de eficacia terapia al 10% = 72.5%, % de eficacia
terapia al 15% = 67.5%, % de eficacia terapia habitual = 20%.
Capítulo 2 Materiales y Métodos
59
Finalmente el costo total del tratamiento calculado se relacionó con la eficacia alcanzada en el estudio clínico realizado,
a través de la siguiente expresión:
Costo total del tratamiento
RCE = ------------------------------------
Eficacia del tratamiento
Donde:
RCE = Relación costo eficacia
El valor obtenido se comparó con el de la terapia que habitualmente es utilizada para el tratamiento de la afección objeto
de estudio, determinando cuál es la mejor relación costo eficacia para valorar las ventajas económicas de la nueva
formulación, m iso
2.7 Procesamiento estadístico de los resultados
El análisis estadístico de los resultados se llevó a cabo del modo siguiente:
❖ Revisión de los datos para detectar puntos aberrantes /butliers^
❖ Análisis descriptivo para calcular la media y la desviación estándar para cada grupo experimental
❖ Ensayo de homogeneidad de varianza de Levene
❖ Ensayo de comparación múltiple de medias de Students Newman Keuls, para procesar los indicadores del control
de calidad a la materia prima y al extracto blando de propóleos.
❖ Prueba hipótesis para media por T students para procesar estadísticamente la variable peso, en los ensayos
toxicológicos.
•> Análisis de regresión correlación lineal utilizando el GRAPHAD INPLOT versión 3,01 para caracterizar la velocidad de
cicatrización de la lesión de los pacientes.
pendientes, área, perímetro, período de tratamiento y mediadores del estado redox obtenidos en cada grupo
experimental.
❖ Test de Chi cuadrado para caracterizar la población seleccionada, analizar los porcentajes de curación en cada
terapia aplicada, así como, el comportamiento de la evolución clínica en cada servicio sometido a ensayo,
estableciendo un nivel de significación para p<0,05. CCAPITULO 3 RESULTADOS
3.1Materia prima Propóleos. Control de calidad
Las investigaciones cubanas relativas a la composición química del propóleos confirman la variabilidad y
heterogeneidad de este producto apícola. 20- «-m £n nuestro país la recolección de este tipo de sustancia en una
determinada región, se lleva a cabo uniendo los propóleos de todas las colmenas, sin tener en cuenta un área específica, lo
cual puede incrementar la heterogeneidad y diversidad del mismo-, de ahí la necesidad de llevar a cabo el control de
calidad de esta materia prima y su estandarización, para su uso en el sistema medicamentoso diseñado para las
evaluaciones biológicas.
Los resultados obtenidos en la evaluación de los diferentes lotes de propóleos estudiados (001-009) mostró lo siguiente:
Especificaciones organolépticas: Masa sólida en pedazos sueltos sin comprimir, no homogéneas, con impurezas
mecánicas y ceras, algo terrosa.
Color: Pardo
Olor: Característico a resinas y bálsamos Especificaciones físico-químicas:
Consistencia: De 20°C a 4CPC pegajosa
Menos de 20°C pegajosa, dura.
En la tabla no. 7 se muestran los resultados de las determinaciones de los restantes indicadores de calidad de cada lote
Capítulo 2 . Material y Métodos
57
de propóleos materia prima estudiado y los intervalos de confianza para cada uno de ellos.
3.2 Estandarización de los indicadores de calidad del extracto blando de propóleos
La complejidad en la composición c¡uímica del propóleos, obliga al tecnòlogo que diseña una forma terminada con este
producto apícola, a caracterizar y controlar la calidad de dicho principio activo, es por ello que una vez comprobado, que los
lotes de propóleos cumplían con las exigencias especificadas en la norma, se elaboraron los lotes correspondientes de
extracto blando, para su incorporación al sistema medicamentoso diseñado para llevar a cabo la evaluación biológica y se
realizó la estandarización de sus parámetros de calidad, cuyos resultados aparecen referidos a continuación.
■ Especificaciones organolépticas:
Aspecto: Líquido muy viscoso de color ámbar oscuro y con brillo
Leyenda: Los valores se representan como la media ± desviación estándar. Letras diferentes
indican significación estadística para p<0,05 entre lotes dentro de la misma columna. (Ensayo
de comparación múltiple de medias de Students Newman Keuls)
INT: Intervalo de confianza. (Cálculo según programa Statistica versión 6.0)
Color: Ámbar oscuro Olor: Característico
■ Especificaciones microbiológicas: Presencia de un halo de inhibición trasparente
frente a cepas de Staphylococcus aureus ATCC 25923 Se observó que el tamaño del halo de
inhibición de crecimiento fue de 23 mm2 para el extracto blando y de 20 mm2 para la
Gentamicina
Respecto a los controles de solvente no se obtuvieron halos de inhibición de crecimiento
alrededor de los pocilios. No obstante, debe tenerse en cuenta la posibilidad real de
evaporación de los mismos lo que no ocurrió con la Gentamicina, cuya solución de trabajo se
Lotes Impurezas
mecánicas (%)
Contenido de
ceras (%)
Compuestos
flavonoides
Número yódico (%) índice de
oxidación (seg)
001 7,34 ± 0,15 a 21,27 ±0,06° No responde 43,57± 0,04 a 8,11 ± 0,07a
002 3,41 ± 0,01 b 20,95 ± 0,05a No responde 49,09 ± 0,03 b 6,32 ± 0,08 b
003 5,49 ± 0,07 « 25,62 ± 0,24 b No responde 47,36 ±0,46? 7,93 ±0,la
004 3,74 ± 0,36 b 20,84 ± 0,22 a No responde 49,93 ± 0,73 d 6,73 ± 0,33 b
005 8,37 ± 0,24 d 24,32 ± 0,06' No responde 40,93 ±0,04* 11,57 ±0,08?
006 4,49 ± 0,04 e 20,52 ± 0,05 a No responde 49,36 ± 0,04 d 6,43 ± 0,1 b
007 6,92 ± 0,02 í 22,01 ± 0,56 d No responde 41,78 ± 0,09 f 9,61 ±0,ld
008 3,64 ± 0,44 b 20,54 ± 0,06 a No responde 49,53 ± 0,03d 6,46 ± 0,08b
009 10,42 ±0,18 9 25,72 ± 0,06b No responde 38,86+ 0,13 9 20 ± 0,18 e
Norma < 30% < 45% Positivo >35% < 30seg
INT 3,2-8,7 20,4-24,9 No responde 40,8 - 50,4 4,3 - 14,2
Capítulo 3. Resultados
60
61
preparó en agua destilada.
En la tabla no. 8 se representan los resultados de la evaluación de los restantes
indicadores de calidad a los diferentes lotes de extracto blando de propóleos y los intervalos de
confianza para cada uno de ellos.
Una vez estandarizado el extracto blando se procedió a elaborar el sistema medicamentoso
óptimo, a partir de los lotes recolectados en los meses de Marzo y Abril (002, 004, 008)
teniendo en cuenta los resultados de los estudios de preformulación, tomándose testigos para
llevar a cabo las evaluaciones tecnológicas requeridas que son detalladas en el Anexo no.3
3.3 Actividad antimicrobiana in vitro:
En las tablas no. 9, 10 y 11 se muestran los resultados de la evaluación de la actividad
antimicrobiana del extracto blando y la crema de propóleos a diferentes concentraciones.
Como puede observarse el extracto blando de propóleos mostró actividad frente al
Staphylococcus aureus y al Staphylococcus epidermidis y no frente a los gram (-). Para
ambos microorganismos la CMI coincidió con la CMB (0,2 y 0,6 mg/ml, respectivamente).
De modo similar las cremas no fueron activas frente a los gram (-), ni tampoco al
Staphylococcus epidermidis, siendo sólo efectivas contra Staphylococcus aureus. La
CMI y la CMB también coincidieron siendo de 3 mg/ mL para la crema al 10% y de 0,5
mg/mL para la crema al 15%.
Nótese que para concentraciones de 0,2 mg/L de extracto blando, aún hay actividad
microbiológica, la cual debió manifestarse en las concentraciones correspondientes (0,02 mg/L
crema al 10% y 0,03 mg/L crema al 15%), sin embargo, esta se comienza a manifestar a
concentraciones 156 y 16 veces superiores en el sistema medicamentoso.
Capítulo 3. Resultados
Tabla no. 8 Resultados de los indicadores de calidad evaluados a los diferentes lotes de extracto blano de propóleos de la región de Manzanillo.
8 Resultados de los indicadores de calidad evaluados a los diferentes
Leyenda: Los valores se representan como la media ± la desviación estándar. Letras diferentes indican
significación estadística para p<0,05 entre lotes dentro de la misma columna. (Ensayo de comparación
múltiple de medias de Students Newman Keuls)
INT: Intervalo de confianza. (Cálculo según programa Statistica versión 6.0)
Lotes Sólidos totales
(%)
Impurezas
mecánicas
(%)
pH índice de
oxidación (seg)
Fenoles totales (%)
001 76,17 ± Ia 0,9± 0,18a 4,19 ±0,1 Ia 4,82 + 0,65a 8,16 ± 0,29a
002 81,31+ 0,21 b 0,8± 0,36a 4,15± 0,22 a 4,11 ± 0,52a 10,81 ± 0,63b
003 76,22± 0,37a 0,9± 0,04 a 4,21± 0,37a 4,41 ± 0,16a 8,21 ± 0,33 a
004 80,56± 0,59b 0,85±0,31a 4,17± 0,28 a 4,19 ± 0,08a 10,16 ±0,1'
005 75,26± 0,27a 0,8± 0,25a 4,19+ 0,14a 8,29 ± 0,07b 7,75 ± 0,52 d
006 76,62± 0,72 a 0,9± 0,01a • 4,13± 0,02 a 4,05 ± 0,27a 8,62 ± 0,43a
007 76,85± 0,14 a 0,9± 0,11a . 4,3± 0,36 a 8,41 ± 0,87b 7,38 ±0,lld
008 80,33± 0,66 b 0,9± 0,01a .4,14 ± 0,03a 4,14 ± 0,23a 10,74 ± 0,51 b
009 78,02± 0,09 c 0, 7± 0,03 a 4,5± 0,08a 16,12 ±0,87* 6,01 + 0,44«
Norma
70-85% 1% - - >4 %
INT 75,4 - 86,4 0,77-0,93 4,08-4,35 2-10,99 6,8-10,5
Tabla no. 9 Actividad antimicrobiana del extracto blando de propóleos
Microorganismos Concentración mg/ml
20 10 5 2,5 2 1,25 0,6 0,2 0,02
S. aureus - - - - - - - - +
S. epidermidis - - - - - - - + +
P. aeruginosa + + + + + + + + +
E. coli _L + + + + + + + +
K. pneumoniae + + + + + + + + +
P. vulgaris + + + + + + + +
E. aerogenes + + + + + + + + +
Tabla no. 10 Actividad antimicrobiana de la crema de propóleos al 10% Microorganismos Concentración mg/mL
50 25 12,5 6,25 5 3,12 1,6 0,5 0,05
S. aureus - - - - - - + + +
S. epidermidis + + + + + + + + +
P. aeruginosa + + + + + + + + +
E. coli + + + + + + + + +
K. pneumoniae + + + + + + + + +
P. vulgaris + + + + + + + + +
E. aerogenes + + + + + + + + +
62
Leyenda: + Crecimiento
Tabla no. 11 Actividad antimicrobiana de la crema de propóleos al 15% Microorganismos Concentración mg/ml
50 25 12.5 6.25 5 3.12 1.6 0.5 0.05
S. aureus - - - - - - - - +
S. epidermidis + + + + + + + + +
P. aeruginosa + + + + + + + + +
E. coli + + + + + + + + +
K. pneumoniae + + + + + + + + +
P. vulgaris + + + + + + + + +
E. aerogenes + + + + + + + + +
- Ausencia de crecimiento
63
Capítulo 3. Resultados
64
3.3.1 Comportamiento de la actividad antimicrobiana en el tiempo
Al evaluar la actividad antimicrobiana de la crema de propóleos a ambas concentraciones
frente al Staphylococcus aureus se observó que en los diferentes tiempos (O, 30, 90, 180,
360 días) se mantenía la misma, lo cual demostró que el semisólido evaluado conserva su
efecto antibiótico al año de elaborado.
3.4 Evaluación toxicológica
Atendiendo a las propiedades antimicrobianas de las cremas de propóleos al 10% y al 15%
respectivamente y considerando que la vía de administración en el humano sería la tópica,
resultaba indispensable caracterizar estas cremas en el orden toxicológico, a partir de las
exigencias establecidas por la Oficina del Registro Sanitario
3.4.1 Evaluación de la Toxicidad Aguda Oral y Dérmica en roedores y no roedores
Durante los 14 días que duró la prueba, no se encontraron afectaciones clínicas en ninguno
de los animales atribuibles al producto, dado a que los signos clínicos observados el primer día
de la prueba se presentaron tanto en el grupo tratado como en el control, para ambas especies.
En las tablas 12, 13, 14 y 15 se muestra el comportamiento del peso corporal en los días O, 7 y
14 de ambas experiencias para las especies roedoras y no roedoras.
Como puede observarse se produce aumento de peso significativo para p<0,05 en los
animales de todos los grupos experimentales tanto hembras como machos en los tiempos / y 14
en relación con el inicio del experimento.
Sin embargo, en la especie no roedora (Tabla no. 13) el incremento del peso para el grupo
tratado fue significativo para p<0,05 en los tiempos 7 y 14 con respecto al inicio del estudio; no
así para el grupo control en el que este aumento no mostró significación estadística.
Relacionado con el ensayo de toxicidad aguda dérmica, en la tabla no. 14 se destaca la
elevación significativa para p<0,05 del peso de los machos tratados en los tiempos 7 y 14 con
respecto al inicio del experimento, mientras que el grupo control y las hembras tratadas
aumentaron de peso pero dicho aumento solo fue significativo al compararse el día 14 con el
inicio de la experiencia.
En la tabla no. 15 se destaca como aumenta el peso de la especie no roedora en el ensayo
de la toxicidad aguda dérmica. Nótese que este comportamiento no resulta significativo desde el
punto de vista estadístico para p<0,05
Tabla no. 12: Peso corporal(g) en el tiempo de la especie roedora en el
toxicidad aguda oral.
Leyenda: Los valores se representan como la media ± la desviación estándar Letras
diferentes indican diferencias significativas para p<0.05 del peso del animal en el tiempo (O,
7,14 días) para “ControV’y “Tratados”. (Prueba hipótesis para media por T students)
Tabla no. 13: Peso corporal (g) en el tiempo para la especie no roedora en el ensayo de
toxicidad aguda oral
Leyenda: Los valores se representan como la media ± la desviación estándar Letras
diferentes indican diferencias significativas para p<0.05 del peso del animal en el tiempo (O,
7, 14 días) para “ControV’y “Tratados”. (Prueba hipótesis para media por T students)
GRUPO TIEMPO (días)
0 7 14
1- Control (n=20)
Hembras (n=l 0)
Machos (n=l 0)
185 ± 3,2 a
189,8 ± 3,9 a
202,1 ± 9,8 b
225,8 ± 8,8 b
215,2 ± 8,6 h
236,5 ±8b
11- Tratados
(n=20) Hembras
(n=l 0) Machos (n-
10)
182.2 ± 3,7 a
186.2 ± 4,6 a
222,7 ± 7,8 b
196,1 ±8b
233,7 ± 4,7 b
226,1 ± 10,9 b
GRUPO TIEMPO (días)
0 7 14
I- Control (n=3) 260 ± 0,2 a 303 ± 0,4 a 330 ± 0,3 a
II- Tratados (n-3) 257 ±0,1 a 287 ±0,1 b 313 ± 0,2 c
65
Tabla no. 12: Peso corporal (g) en el tiempo de la especie roedora en el ensayo de toxicidad aguda oral.
Tabla no. 4: Peso corporal (g) en el tiempo de la especie roedora en el ensayo de toxicidad aguda dérmica
icde Grupoicidad aguda dérm a.
Leyenda: Los valores se representan como la media ± la desviación estándar Letras
diferentes indican diferencias significativas para p<0.05 del peso del animal en el tiempo
(O, 7, 14 días) para “Control”y “Tratados”. (Prueba hipótesis para media por T students)
Tabla no. 15: Peso corporal (g) en el tiempo de la especie no roedora en el ensayo de
toxicidad aguda dérmica.
Leyenda: Los valores se representan como la media ± la desviación estándar Letras
iguales indican que no hubo diferencias significativas en el peso del animal con el tiempo
(O, 7, 14 días) para “ControV’y “Tratados”. (Prueba hipótesis para media por T students)
0 7 14
I- Control (n=20)
Hembras (n=l 0)
Machos (n=l 0)
228,6 ±3,8°
219,2 ±1,7«
233,9 ±3,1 °
240,4 ±15,1°
239.3 ± 4,8 b
249.3 ± 22,7 b
II- Tratados (n=20)
Hembras (n=l 0)
Machos (n=l 0)
230,2 ±'5,8°
219,6 ±2,9°
236,1 ± 8,4 •
242,5 ±8b
246.7 ± 8,75 b
269.8 ±5,7'
GRUPO TIEMPO (días)
0 7 14
I- Control (n=3) 187 ±0,1 a 197 ±0,1 a 207 ±0,1 °
II- Tratados (n=3) 190 ± 0,2 a 200 ±0,1° 207 ±0,1 a
66
Grupo Tiempo (días)
3.4.2 Ensayo de Irritabilidad Dérmica
En esta experiencia se trabajó solo con la crema al 15% porque es la que posee mayor
contenido de sustancia irritante, de las 2 formas farmacéuticas que fueron ensayadas en la
clínica, si al 15% no se observa irritación dérmica, puede suponerse que allO% tampoco se
desarrollará la misma.
En esta evaluación, el día del ensayo, y durante los tres días posteriores se efectuaron
lecturas de la piel para eritema, edema y escaras según el sistema de evaluación referido en el
Anexo no. 5, sin observar en ninguna de las lecturas efectuadas alteraciones de índole
entematosas, edematosas, ni la aparición de escaras. Tampoco se presentaron signos clínicos en
los animales sometidos a prueba, por lo que el índice de Irritación Primario para la crema al 15 %
es de 0-0, lo cual cataloga a la sustancia como potencialmente no irritante para la piel, según la
escala establecida en la literatura revisada. 123
3.4.3 Ensayo de Irritabilidad Oftálmica
En la Tabla no. 16 se presentan las afectaciones que se encontraron en las distintas
estructuras estudiadas en las diferentes lecturas realizadas a la crema al 15 %, asi como, el
índice de Irritación Ocular.
Como puede apreciarse se presentaron alteraciones en la conjuntiva, materializadas en la
aparición de eritemas y secreciones en todos los animales durante las primeras 48 horas del
ensayo. La evaluación que recibe esta estructura al finalizar la prueba es de 38 puntos.
En el Iris se apreciaron daños a profundidad, iritis marcada y fotofobia durante el primer día
de la prueba. La evaluación para el mismo es de 30 puntos.
Por otra parte también resultó dañada la Córnea, lo cual se evidencia por la tinción que se
realiza con Fluoresceína Sódica al 2%, alcanzando esta estructura 291 puntos.
El índice de Irritación Ocular fue de 29,9 por lo que la crema de Propóleos al 15% se clasifica
como moderadamente irritante según lo establecido en la literatura.
67
Capítulo 3 . Resultados
Al obtenerse un aumento de este parámetro en todos los grupos de ambas especies sin diferencias entre tratados y controles puede afirmarse que el producto ensayado no afecta el incremento normal del peso de los animales.
Las muestras tomadas de los órganos seleccionados no mostraron afectaciones desde elpunto de vista macroscópico, por lo que se decidió no tomar las mismas para el procesamiento histopatológico y en la piel no se observó daño alguno por lo que tampoco se tomaron muestras de la misma.
Tabla no. 16: Evaluación de la Irritabilidad Oftálmica de la crema al 15%
Los valores descritos indican el grado de afectación de cada estructura según sistema de
evaluación establecido por la OECD en 1992
Los valores descritos indican el grado de afectación de cada estructura según sistema de
evaluación establecido por la OECD en 1992
HORAS ESTRUCTURAS OBSERVADAS
CONJUNTIVA IRIS CORNEA
1 20 30 240
24 14 0 46
48 4 0 5
72 0 0 0
SUMA 38 30 291
TOTAL: 359
INDICE DE IRRITACION OCULAR: 29,9
Tabla no. 17: Evaluación de la Irritabilidad Oftálmica de la crema al 10%.
HORAS. ESTRUCTURAS OBSERVADAS.
CONJUNTIVA. IRIS CORNEA.
1 22 30 240
24 88 0 30
48 4 0 0
72 0 0 0
SUMA 34 30 270
TOTAL: 334
INDICE DE IRRITACION OCULAR: 27,8
68