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Techniques de prospectiondu Criquet pèlerin

Modules préparés par le Secrétariat de la CLCPRO (2015)

http://clcpro-empres.org

Commission de lutte contre le Criquet pèlerin dans la région occidentale

Programme EMPRES en Région Occidentale

Module de formation

1

Objectifs de la présente formationFournir aux prospecteurs les connaissances et les outils nécessairesafin de : savoir planifier, préparer et mettre en œuvre une prospection et en

assurer le suivi (lutte) mettre à jour les connaissances sur la bioécologie, la dynamique et

le comportement des populations du Criquet pèlerin déterminer où, quand et comment entreprendre une prospection connaître les différents types de prospection et les diverses

méthodes d’évaluation des conditions écologiques et des situationsacridiennes

maîtriser l’utilisation des outils de navigation, de collecte et detransmission de l’information écologique et acridienne sur la basede la fiche de prospection/lutte CLCPRO

assurer la récolte et la conservation des échantillons de criquets etde plantes des zones prospectées

être en mesure d’évaluer correctement les superficies prospectéeset infestées

Structure du module

Présentation générale de la stratégie et objectifs de la CLCPRO

Rappel sur la bio écologie du Criquet pèlerin: Identification,polymorphisme phasaire, cycle biologique, habitat et genèse des invasions

Organisation d’une campagne de prospection et de lutte

Techniques de prospection acridienne Types de prospection Méthodes d’évaluation

Collecte de l’information acridienne et écologique

Outils de navigation, de collecte et de transmission de l’information

Matériel scientifique de prospection

Travaux pratiques sur le terrain pour maîtriser les techniques,méthodes et outils de prospection

Impact des traitements sur la santé humaine et l’environnement

1

Techniques de prospection pour le Criquet pèlerin

2

Programme de la formation « Techniques de prospection »

2


3


3


4


4


55


en vue d’assurer la lutte préventive et faire face aux invasions du Criquet pèlerin dans la région occidentale.

Développer lescapacités de sesEtats membres

Renforcer lacoopérationrégionale

Mettre en œuvredes mécanismesde durabilité

Création :en 2002 Obligations des États membres: Mise en œuvre de toute politique commune de prévention et de lutte approuvée par la Commission

Objectif: Assurer la lutte préventive et faire face aux invasions

STRATÉGIE ET OBJECTIFS DE LA CLCPRO POUR LA LUTTE CONTRE LE CRIQUET PÈLERIN

CLCPRO

6

CLCPRO

6


• Mettre en œuvre le Programme EMPRES(*) en Régionoccidentale (financé à partir de 2006) pour développer lastratégie de lutte préventive (alerte précoce, intervention rapideet recherche opérationnelle)

• Créer/renforcer des Unités nationales de lutte antiacridienneautonomes

• Développer les capacités humaines et matérielles des pays

• Renforcer les capacités humaines de la coordination régionale

• Mieux préparer les pays (volet gouvernance) à gérer les risqueset les ressources et à protéger l’homme et l’environnement

Plans régionaux de formation

• Plan régional deformation I: 2007 - 2009

• Plan régional deformation II: 2011 - 2014

________________________(*) EMPRES: Système de prévention et de réponse rapide contre les ravageurs et les maladies transfrontières des animaux et des plantes / FAO Emergency Prevention System for TransboundaryAnimal and Plant Pests and Diseases

7

CLCPRO

7


Plans régionaux de formation

• Plan régional de formation deformation III: 2015 - 2018

BIOÉCOLOGIE DU CRIQUETPÈLERIN

11

BIOÉCOLOGIE DU CRIQUET PÈLERIN

11


12

IDENTIFICATION

Des essaims giganteques…

Un responsable…

Le criquet pèlerin12


IDENTIFICATION DU CRIQUET PÈLERIN

13

IDENTIFICATION

La position taxonomique du Criquet pèlerin

Classe InsectesOrdre Orthoptères (criquets, sauterelles, grillons courtillières)

Sous-ordre Caelifères (criquets s.l., Tridactyles, Tétrix)

Super-famille Acridoidea (criquets s.s.)

Famille AcrididaeSous-famille CyrtacanthacridinaeGenre SchistocercaEspèce gregaria

13


29 M km2

16 M km2

14

IDENTIFICATION

• Français Criquet pèlerin

• Anglais Desert Locust

• Arabe Al jarad assahraoui

Le nom scientifique du Criquet pèlerin Schistocerca gregaria (Forskål, 1775)

Les noms vernaculaires

Morphologie générale d’un criquet

Vue latérale

mésothorax

antenneoeil composé

pronotummétathorax

élytres

patte antérieur patte médiane patte postérieure

Tête Thorax Abdomen

14


15

Reconnaissance du sexeMâle

Vue latérale Vue ventrale

Femelle

IDENTIFICATION

Vue latérale

valves de l’ovipositeurplaque sous-génitale

cerques

Morphologie des larves

Ébauche alaire

Larves solitaires L۱ et L٥

۰,۷٥ ۰ cm

۱ ۰ cm

L۱ L٥

15


16

masse ovigère

Bouchon de matière spumeuse

Disposition des œufs dans l’ oothèqueA, vue latérale; B, vue dorsale

Morphologie des oothèques

IDENTIFICATION

16


17

IDENTIFICATION

Schistocerca gregaria (Forskål, 1775)Phase solitaire

Anacridium melanorhodon

Anacridium wernerellum

Criquets arboricoles

Schistocerca gregariaCriquet pèlerin

Ailes hyalines

Ailes enfumées

17


Les espèces voisines et les confusions à éviter

18

Anacridium aegyptium(Linnaeus, 1764)

IDENTIFICATION

Anacridium wernerellum

Schistocerca gregaria (solitaire) Anacridium melanorhodon(Walker, 1870)

Ne pas confondre:

Criquets pèlerins

(Karny, 1907)

Criquets arboricoles

18


21

POLYMORPHISME PHASAIRE

PHASES

19


22

PHASES

Quelques aspects du Criquet pèlerin

Pourquoi ? la phase, l’âge, les conditions écologiques…

Définitions (1)

Le Criquet pèlerin est un locuste

Les locustes sont des acridiens grégariaptes,aptes à se grégariser

Ce sont des espèces polymorphes

Selon la densité de la population, elles prennentdes formes, des couleurs, des caractèresphysiologiques et un comportement trèsdifférents 34

20


23

PHASES

Ces différentes formes sont désignées sous leterme de phases

On parle de phase solitaire et de phase grégairepour désigner les formes extrêmes

Ces différentes formes constituent une sériecontinue: les phases extrêmes - solitaire etgrégaire - sont réunies par des formesintermédiaires ou transiens

Définitions (2)

densité faible

densité forte

Solitaire

Transiens congregans

Transiens dissocians

Grégaire

36

21


24

PHASES

Causes du changement de phase

Ces phases caractérisent des états différentsau sein d’une même espèce (tellementdifférents que les phases solitaires etgrégaires étaient considérées autrefoiscomme deux espèces différentes)

La cause de ces modifications, c’est la densitéde la population

Ces changements sont réversibles en fonctionde la densité (S G / G S)

37

Le seuil de changement de phase

Le seuil de transformation phasaire (densité àpartir de laquelle s’amorce le changement dephase) est de l’ordre de 500 imagos / ha

Ce seuil est plus élevé chez les autresespèces de locustes: Criquet migrateur 2000 ailés / ha Criquet nomade 5000 ailés / ha

Ces valeurs sont des ordres de grandeur38

22


25

39

Petites larves 50 000 / hectare (5 / m2)Grosses larves 5 000 / hectare (0,5 / m2)Imagos 500 / hectare (0,05 / m2)

PHASES

Ces valeurs sont des ordres de grandeur

• Ce seuil varie selon l’âge

Le seuil de changement de phase

pigmentation morphologie anatomie physiologie

Caractères phasaires distinctifs

comportement biologie écologie

Le changement de phase affecte tous les aspects de l’insecte:

40

… mais pas nécessairement simultanément

23


26

PHASES

Effets immédiats et transmis

41

Les effets de la densité se manifestentinstantanément (effets immédiats), maiségalement chez la descendance (effets transmis)

Le changement de phase peut se renforcer au fildes générations

Il faut environ 4 générations pour passer dessolitaires aux grégaires et 2 pour le changementinverse

Contrairement aux locustes, les sauteriauxsont des espèces sans phénomène depolymorphisme phasaire Locustes : quelques espèces (cf. diapo suivante)

Sauteriaux : la quasi totalité des acridiens

Le polymorphisme phasaire peut être plus oumoins marqué selon les espèces de locustes

Il est très accentué chez le Criquet pèlerin

Locustes et sauteriaux

42

24


27

PHASES

Imagos grégaires rose chez les jeunes, virant

au brun rouge avec l’âge

jaune chez les individusmatures M et F

pigmentation du corpshomogène

œil très foncé (stries nonvisibles)

pigmentation des élytrestrès contrastée

Imagos solitaires brun clair ou sable

les mâles deviennent jaunepâle à la maturation sexuelle

pigmentation du corpshétérogène

œil clair (stries visibles)

pigmentation des élytrespeu contrastée

Effets de la grégarisation: couleur

Imago solitaire

Imagos grégaires :

immature

mature

La coloration des imagos

44

25


28

45

grégaire immature

grégaire mature

solitaire

PHASES

incolore

rose

jaune

Coloration des ailes postérieures

Brun clair

Imagos solitaires Brun grisâtre

26


29

PHASES

Imagos grégaires immatures

Immature vieuxrouge foncé

Immature

47

Mâle mature jaune vif

Accouplement

Imagos grégaires matures

48

26


30

PHASES

Imago transiens

immature jeune – rose clair

49

Bande pronotale

grégaire solitaire

absente marquée

50

27


31

PHASES

Partie latérale du thorax

grégaire solitairemoins sombre plus sombre

51

solitaire grégairemoins sombre plus sombre

Stries oculaireset degrés d’obscurcissement de l’œil composé

52

28


32

PHASES

Phase grégaire

Noir, jaune, orange

La coloration des larvesColoration d’ensemble

Phase solitaire

53

Vert ou brun (rare)

Larve grégaire L5

Solitaires 0

Transiens 1-3

Grégaires 4-5

Larves : maculature de la tête

54

29


33

PHASES

Larves : maculature du pronotum

Stades larvaires

1 à 3

Stades larvaires 4 et 5

Solitaires 0

Transiens 1-3

Grégaires 4-5

55

Larves: maculature du fémurpostérieur (face externe)

grégairesolitaireabsente très marquée

0 1 2 3 4 5

56

30


34

PHASES

Larves en phase solitaire

Stade 1 Stade 2Stade 4 Stade 5

57

Larves en phase grégaire

Stade 4

Stade 5

Stade 1 Stade 2 Stade 3

58

31


35

PHASES

Larve 5 transiens

Larve 5 grégaire59

vue latérale vue dorsale vue ventrale

Morphologie du pronotum et du thorax

Grégaire

Solitaire

60

32


36

PHASES

longueur du fémur postérieur

longueur de l’élytre

largeurmaximalede la tête

E

F C

Les mesures usuelles

F/C ♂ ≥ 3,75♀ ≥ 3,85

E/F ♂ ≤ 2,03♀ ≤ 2,03

F/C ♂ ≥ 3,15♀ ≥ 3,15

E/F ♂ ≤ 2,23♀ ≤ 2,27

Solitaires Grégaires

Les indices morphométriques

62

33


37

63

PHASES

2,52,62,72,82,93,03,13,23,33,43,53,63,73,83,94,04,14,24,3

1,4 1,5 1,6 1,7 1,8 1,9 2,0 2,1 2,2 2,3 2,4 2,5 2,6 2,7 2,8

Rapport F/C

Rapport F/C

solitaires

transiens

grégaires

♀

♂

♀♂

L’abaque morphométrique

Rapport E/F

34


41

BIOLOGIECYCLE BIOLOGIQUE

36


42

oeufs(oothèque) mue

imaginale(émergence)

stades larvaires(solitaire ٦-٥ / grégaire ٥)

ponte

jeune imago

۱۲

۳ ٤٥

éclosion

mues larvaires

BIOLOGIE

accouplement

37


œuf larve imagoétat embryonnaire état larvaire état imaginal

Les 3 états du cycle biologique

43

BIOLOGIE

Points essentiels• Nombre annuel de générations : entre ۲

et ۳ (voire ٥ - ٤) selon les conditionsécologiques.

• Possibilité de quiescence à l’étatimaginal dans le cas où l’acridienrencontre des conditions écologiquesdéfavorables.

38


۱۰Oeuf ٦٥

Larve ۹٥۲٤

Ailé ۱٥۰۷٥

۷ ٤ ٥ ٦ ۳ ۲ ۱ ۰ mois

ŒufLarve AiléPonte à mue imaginale Maturation des ailés :

Total pour une génération

۱۰ à ٦٥ jours۲٤ à ۹٥ jours (۳٦ jours en moyenne)۲,٥ à ٥ mois٤۰ à ٥۰ jours۳ semaines à ۹ mois (moyenne de ۲ à ٤ mois)۲ à ٦ mois (ou plus)

Durée du stade : minimum maximum

44

BIOLOGIE

Accouplement

Ponte de criquet pèlerin

Durée: ۷۳۰- h

La femelle fore le sol à l’aide de ses valves génitales situées à l’extrémité de l’abdomen, et pond une oothèque.

39


Accouplement & Ponteet

développement embryonnaire

45

BIOLOGIE

25-55 mm

45-60 mm

bouchonspumeux

grappeovigère

S G

Profondeur : 5 à 10 cm Longueur totale : 90 à 105 mmNombre d’œufs : 30 à 140Densité : jusqu’à 500/m2 en groupe

Les oothèques

Les stades embryonnaires

1 œuf fraîchement pondu, non turgescent < 1mm2 oeuf turgescent > 1 mm3 retournement embryonnaire4 tête vers le pôle antérieur, après retournement, yeux incolores, <1/2 oeuf

5 yeux colorés au 1/3 antérieur6 yeux colorés au ¼ antérieur7 embryon occupant tout l’œuf, blanchâtre8 embryon occupant tout l’œuf, marron clair, prêt à éclore

40


46

BIOLOGIE

• Les femelles ne pondent que dans un solsuffisamment humide (10% d’humidité)

• Le développement embryonnaire commenceimmédiatement après la ponte

• La durée d’incubation est fonction de latempérature du sol à la profondeur de l’oothèque

Facteurs influant sur la duréed’incubation

10

15

20

25

30

24 26 28 30 32 34 36

Durée d’incubation des œufs en fonction de la température moyenne du sol

dans un sol suffisamment humide

Température ( C)

Jours

11 jours

27 jours

75

41


47

BIOLOGIE

Durée d’incubation des œufs en fonction de la température moyenne de l’air

0

20

40

60

80

100

120

140

10 14 18 22 26 30 34Température ( C)

Jours

dans un sol suffisamment humide

100 jours

11 jours

cuticule embryonnaire

larve vermiforme

Eclosionet mue intermédiaire

Jeunes larves L1 sortant du trou de ponte

et effectuant leur mue intermédiaire

42


48

Larveet

développement larvaire

BIOLOGIE

Développement larvaire La larve passe par plusieurs stades au cours de son

développement.

Les criquets possèdent un squelette externe : la cuticule. Cettecarapace impose un mode de croissance par mues successives.

La première mue - la mue intermédiaire - a lieu juste aprèsl'éclosion et donne naissance à une larve de 1er stade.

Il y a ensuite 5 stades larvaires chez les grégaires et 5 ou 6 chezles solitaires.

La dernière mue (5ème chez les grégaires et 6ème chez lessolitaires) s’appelle la mue imaginale.

43


49

1

2

3

4

5

stade supplémentaireL3bisentre L3 et L4 chez les solitaires

Développement larvaire

grégairerares larves brunes

solitaire

Les mues

Chaque mue dure quelques minutes

Au cours de la mue, les criquets sont très vulnérables aux prédateurs et au cannibalisme

Mue L2 / L3 Mue L4 / L5

44


50

BIOLOGIE

stade 1 stade 2 stade 3

Datation des stades larvairesLes ébauches alaires

stade 4 stade 5

Retournement des ébauches alaires entre les stades 3 et 4

La taille

stade 1stade 2

stade 3

stade 4

stade 5pronotum

ébauches alaires

45


51

BIOLOGIE

Datation des stades larvairesLes stries oculaires

Nombre de stries oculaires:

SOLITAIRES L1: 1, L2: 2, L3: 3, L4: 4, L5: 5 striesL1: 1, L2: 2, L3: 3, L3bis: 4, L4: 5, L5: 6 stries

GREGAIRES 1 à 5 stries (L1 à L5) peu ou pas visibles

S G

Durée du développement larvaireen fonction de la température ambiante

Température moyenne de l’air ( C)

Jours

20

25

30

35

40

45

50

24 26 28 30 32

50 jours

25 jours

46


52

BIOLOGIE

Durée du développement larvaire

Chez les grégaires : 25 - 57 jours(selon conditions optimales ou mauvaises)

Chez les solitaires : 30 - 48 jours(selon conditions optimales ou mauvaises)

Zones de reproduction estivale et mer Rouge 30-39 joursPériodes plus fraîche, ex. Afrique du Nord 28-48 jours

Parfois jusqu’à 3 mois en conditions de survie

stades 1 2 3 4 5 T

jours 5 5 6 7 11 34

% de la durée totale

15 15 18 20 32 100

47


53

BIOLOGIE

a

b

cd

e

f

La mue imaginale

Imagoet

vie imaginale

48


54

BIOLOGIE

Imagosdu Criquetpèlerin

Œil composé d’imagos du criquet pèlerin solitaireset dénombrement des stries oculaires

6 stries: 5 stades larvaires

7 stries: 6 stades larvaires

Les stries oculaires

49


55

BIOLOGIE

Etapes de la vie imaginale

Mue imaginale Jeune imago à téguments mous Durcissement des téguments Vols locaux (nomadisme local)

Accumulation de réserves Vols migratoires Quiescence imaginale Maturation sexuelle Pontes

Après la mue imaginale, le jeune imago :

étale ses ailes, les laisse sécher en position droite,puis les replie selon les nervures longitudinales

est de couleur beige chez les solitaires, rose chezles grégaires

ses téguments mous durcissent en 5-10 jours selonla température = phase de durcissement cuticulaire

est capable de marcher en quelques heures, desauter et voler le jour suivant

Durcissement cuticulaire

50


56

BIOLOGIE

Le jeune imago augmente de poids par accumulationde corps gras = réserves nécessaires pour les volsmigratoires

Les ovaires des femelles restent en pré-vitellogénèse

En l’absence de conditions favorables à lareproduction, le jeune imago :

• reste immature, en état de quiescence imaginale

• parfois plusieurs mois (6 au maximum), jusqu’à larencontre de conditions écologiques propices.

Accumulation de réserves

Vols migratoires

51


57

BIOLOGIE

Quiescence imaginale Arrêt facultatif de la maturation sexuelle imposé par des

conditions temporairement défavorables.

Adaptation à la survie en zone aride/fraîche; conditionsécologiques propices à la reproduction aléatoires.

Un imago grégaire qui reste immature pendant plus de deux mois en région fraîche devient rouge foncé.

Dès que les conditions sont favorables à la reproduction, les populations deviennent sexuellement matures.

La coloration des individus se modifie: solitaires : jaunissement des ailes postérieures grégaires : jaunissement général du corps

Maturation sexuelle

Le jaunissement des téguments est très accentué chez les mâles grégaires

52


58

BIOLOGIE

La maturation commence d’abord chez les mâles.

Ils dégagent des substances chimiques qui accélèrent lamaturation sexuelle des femelles.

Premiers accouplements qui se poursuivent pendanttoute la vie reproductive.

Copulation durant plusieurs heures (jusqu’à 14h).

Sperme transmis à l’intérieur d’un sac allongé fabriquépar le mâle : le spermatophore, qui est stocké chez lafemelle dans la spermathèque.

Fécondation des ovocytes (futurs oeufs) lors dela ponte.

Maturation sexuelle (suite)

Les ovaires des femellescommencent à croître

Le vitellus s’accumule dans lesovocytes qui deviennent jaunes

La taille des ovocytes s’accroîtjusqu’à atteindre la taille du futuroeuf

Dépôt du chorion (enveloppeexterne de l’œuf)

Maturation achevée en 10 jours

Ponte

Ovaire

Intestin

53


59

BIOLOGIE

Les ovaires : stades de croissance des ovocytes

V0 V1/4

Vmax (=V4/4)Pré-vitellogenèse

VitellogenèseŒuf chorionné

Ponte A n’importe quel moment du jour ou de la nuit

Dans des sols variés : sables assez grossiers aux argileslimoneuses

Le sol doit être humide, au moins sous la surface (- 5 cm)

L’humidité du sol nécessaire à la ponte maintient desconditions favorables pour le développement larvaire

La ponte dure entre 1,5 et 2 heures

Une femelle ayant pondu conserve, sur les valves del’oviscapte, des traces de matière spumeuse permettantde savoir si elle a pondu avant sa capture

54


60

BIOLOGIE

Datation des imagos dans la nature Dureté des téguments (palpation)

Présence de corps gras (ouverture de l’abdomen)

Etat des ovaires (ouverture de l’abdomen) palpation abdominale : peu rempli, bien rempli, distendu taille des ovocytes :

V0 V1/4 V1/2 V3/4 V4/4 Ovocyte chorionné

Valves de l’oviscapte (matière spumeuse)

Etat général du tégument coloration générale et alaire, déchirures, macules pigmentaires,

usure de la pilosité, des valves, des mandibules…

Datation des femelles dans la nature

MPV

V

P

Vieux

ovaire immature:- téguments mous…. 1- téguments durs…… 2

ovocytes en croissance:- n’a pas pondu…..… 3- a pondu:

. aspect jeune…… 4

. aspect vieux…… 5

Jeunes ailésImmatures

Matures

55


61

BIOLOGIE

Durées des principales étapes

Œuf Larve Imago

GD PV V r lgSOLITAIRESBonnes conditionsMauvaises conditions

۱۲٦٥

۳۰۹۰

٦۱۰

٤۱۳٥

٦۱۰

٦۲٥

۳٤۱۸۰

٥۸۳۱۰

GRÉGAIRESBonnes conditionsMauvaises conditions

۱۰۸۰

۲٥٥۲

٦۱۰

۳۱۸۰

٦۱۰

٦۳۰

۳٤۲۳۰

٥۰۳۱۰

D, durcissement cuticulairePV, phase de pré-vitellogénèse (quiescence en cas de mauvaises conditions)V, vitellogénèse; r, rythme de ponte; Ig, longévité de l’imagoG, durée totale d’une génération (de l’œuf à l’œuf)

56


62

BIOLOGIE

Dynamique des populations

La dynamique des populations s'intéresse aux fluctuations d'effectifs des populations dues aux variations de la natalité et de la mortalité, ainsi qu'aux phénomènes d'immigration et d'émigration

Elle prend en compte l'impact des facteurs environnementaux sur l'abondance des populations

Migrations

Adaptation du Criquet pèlerin aux zonesarides

Concentration des populations dans leszones de pluies favorise lagrégarisation (voir génèse des invasions)

Migrations possibles en zonesdéfavorablesfacteur de mortalité, voirede déclin des invasions (cf. genèse des invasions)

57


63

BIOLOGIE

La natalité est un facteur d'accroissementnumérique des populations lié à la naissance.

Le taux de natalité varie en fonction de :

− la fécondité des femelles adultes : nombred’ovarioles, âge des femelles, rang de ponte, état phasaire…

− l'environnement influant sur la production et la viabilité des œufs : alimentation, température, humidité du sol, parasitisme, prédatisme…

Natalité

Nombre d'œufs par ponteNombre d’œufs par ponte Nombre

de pontesP1 P2 P3 P4SOLITAIRESBonnes conditionsMauvaises conditions

14080

11055

90–

70–

plus de 3

GRÉGAIRESBonnes conditionsMauvaises conditions

7040

6530

60–

50–

2 à 3

P1 à P4 : première ponte à quatrième ponteConditions: Il s’agit de conditions écologiques moyennes pour des populationsde criquets pèlerins dans la nature. Si les conditions sont très mauvaises, il n’ya pas de ponte, les individus restant immatures, en quiescence.

58


64

BIOLOGIE

MortalitéLa mortalité est le facteur de décroissance des populations; elle se manifeste à tous les stades: embryon, larve, imago

Elle peut être causée par : des conditions écologiques défavorables divers ennemis naturels (pathogènes,

prédateurs et parasitoïdes)

La lutte anti-acridienne est aussi un important facteur de mortalité

Principaux facteurs de

mortalité œufs

Mortalité embryonnaire

59


65

Mortalité embryonnaire (suite)

Les pertes totales varient de 5 à 65%, y compris : Non-viabilité des œufs : < 10% Échec de l'éclosion : 3 à 4% Prédateurs, parasites : < 40% Maladies fongiques et dessiccation : <10%

Mortalité moyenne :

SOLITAIRES 13%GRÉGAIRES 33%

BIOLOGIE

Mortalité larvaire

* en % de l’effectif de chaque stade; il faut ajouter 5% de mortalité àchaque mue

Seule une fraction de la population larvaire survitjusqu'à la mue imaginale

Mortalité plus importante chez le premier stadelarvaire : jusqu’à 80%

Causes: dessiccation, cannibalisme, prédation et parasitisme

stades 1 2 3 4 5mortalité* 80% 20% 10% 10% 10%

60


66

Mortalité imaginaleMigration à grande échelle versdes zones non propices à la reproduction (rare)

Mauvaise répartition des pluiessaisonnières entraînant un manquede nourriture et des activités de reproduction insuffisantes

BIOLOGIE

La lute antiacridienne est le principal facteur de mortalité lorsdes resurgences/recrudescences/invasion

Ennemis naturels du criquet pèlerinIls sont multiples :prédateursparasitesparasitoïdesagents pathogèneset peuvent entraîner une mortalité significativedes populations acridiennes à tous les stades, œuf, larve et ailéCertains agents pathogènes sont actuellement utilisés pendant la lutte préventive ou dans des zones sensibles.

61


67

BIOLOGIE

LézardChacal

Faucon

Impact globalement limitéPrédateurs de larves et imagos

Reptiles, oiseaux, mammifères :


Fourmis

Araignée

Guêpes Sphecidae Prionyx sp.

62


68

BIOLOGIE


Asilidae Carabidae

Anthia sexmaculataprédateur souvent rencontré dans les habitats du Criquet pèlerin.

Bombylisoma sp.

Diptères Bombylidae

Systoechus sp. Xeramoeba sp.

63


69

BIOLOGIE

Ces micro-organismes provoquent des maladies pouvantcauser des épizooties parmi les criquets

Des champignons pathogènes sont actuellementcommercialisés comme moyen de lutte

Metarhizium anisopliae var.acridum“Green Muscle®” (Afrique)

Beauveria bassiana

Agents pathogènesvirus, bactéries, protozoaires, champignons

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

100

Œufs L1 L2 L3 L4 L5 Imagos

Courbe de mortalité moyenne-13%

-80%

-20%-10% -10% -10%

100

80

60

40

20

0Œufs L1 L2 L3 L4 L5 Imagos

64


70

BIOLOGIE

criquetsennemis naturels

L'accroissement de l’effectif des ennemis naturels est enretard par rapport à l’effectif des acridiens hôtes

Leur rôle comme facteur limitant n’est important qu’enfin d’invasion acridienne dont ils peuvent précipiter la chute

Impact des ennemis naturels

temps

effectifs

Les principaux facteurs régulant la taille, la qualité et la distribution

des populations du Criquet pèlerinsont principalement des facteurs climatiques

Conclusion

65


73

LA PROSPECTION ACRIDIENNE

Objectifs de la prospection

1. Collecter des informations = dépister de façonprécoce la présence de pullulations locales

2. Transmettre de l’information vers l’unitéopérationnelle

3. Gérer en temps réel l’information et planifierles opérations de surveillance et de lutte àcourt, moyen et long termes

4. Nouer et entretenir de bonnes relations avecles populations rurales et pastorales dansl’objectif d’en garantir la collaboration etl’obtention de l’information

66


74

Étapes d’une prospection

Avons nous tout trouvé ?

Prospection intensive ou extensive ?

Traitements ?

4. FAIRE LESUIVI

Collecter, enregistrer et transmettre les données3. METTRE

EN OEUVRE

Equipement & logistique2. PREPARER

Qui ? Où ? Quand ?

Type de prospection (intensive ou extensive) ?

Méthode de prospection (aérienne ou terrestre) ?

1. PLANIFIER

PROSPECTION

1. Planifier

Décider du type de prospection(intensif ou extensif)

Déterminer qui va faire la prospection

Décider de la méthode de prospection(aérienne ou terrestre)

Préparer les véhicules et l’équipe

Déterminer où et quand

67


75

1. Planifier Qui fait les prospections ?

Les agents antiacridiensqualifiés (prospecteurs)

Les agents de vulgarisationformés

Fiable

Dans certains cas:Informateurs locaux et autres

A confirmer

PROSPECTION

Zones d’activité acridienne prévue

1. Planifier Où faire une prospection ?

Zones où l’on a rapporté la présencede criquets, y incus les zonesfrontalières avec les pays abritantdes reproductions

Zones traditionnelles (historiques)

Zones de pluies récentes

Zones sablonneuses et sablo-limoneuses à végétation verte

68


76

PROSPECTION

1. Planifier Quand faire une prospection ?

S’il y a eu une reproduction

De manière régulière (quotidienne,décadaire, bimensuelle, mensuelle ousaisonnière)

Après la pluie

Pour confirmer dessignalisations peu fiables

Lorsqu’on prévoit une résurgence

69


77

En fonction de la température et des saisons…

… de 7h du matin àmidi, et de 16h au coucher du soleil.

1. Planifier Quand prospecter dans la journée?Perchés et inactifs

InactifsPerchés et s’alimentant

Vol des ailés

Grimpant dans les plantes

Vol des ailés

Vol des ailés (solitaires)

Perchés

Pas d’activité

PROSPECTION

N.B. Rien n’empêche de délimiter une bande larvaire ou un essaim pendant la nuit Penser à exploiter les nouvelles technologies pour prospecter la nuit étant donné les nombreux avantages potentiels

1. Planifier Où s’arrêter ?

100 km

30 k

m

Combien d’arrêts ?

Distance entre les arrêts ?

Cela dépend de laprésence de criquetspèlerins et des conditionsécologiques?

70


78

2. Préparer Matériel de prospection

Loupe

Compteur à main

Carte

Boussole

GPS

Carnet, stylo ou crayon

Formulaire de prospection (ou eLocust)

Boîtes pour échantillons

Trousse à dissection

PROSPECTION

2. Préparer Matériel de campement

71


79

2. Préparer Matériel de campement

2 tentes4 sacs de couchage4 moustiquaires4 lits de camp4 couvertures1 table et 4 chaises pliantes1 caisse popote complète (pour 4 personnes)2 fûts à eau galvanisés2 fûts à gasoil1 trousse de pharmacie d’urgence2 seaux, jerricanes moyennes et petites, taules,

bâches et filet, convertisseurs, torcheset lampes , pelles… etc.

PROSPECTION

Ultra-légère

Légère

2. Préparer Les équipes de prospection

Standard

72

ospection pourle Criquet pèlerin


80

1

2

Disposer : de cartes 1/200 000ème

de donnéespluviométriques

de signalisations d’images satellitaires de données historiques des situations

acridiennes dans lespays frontaliers

2. Préparer Tracé des itinéraires

PROSPECTION

Prospection extensive

Prospection intensive

Evaluation

Recherche

Infestations acridiennes

3. Mettre en œuvre Quel type de prospection ?

Ex. Pour vérification des signalisations

73


81

Évaluer si les biotopes sont favorables à lareproduction et la survie du Criquet pèlerin

Apprécier la situation du Criquet pèlerin Collecter les informations acridiennes et

écologiques auprès des nomades, des populationslocales et des autorités dans l’ensemble du secteur

Faire une prévision sur l’évolution des conditionsécologiques et du comportement des populationsacridiennes

Proposer les actions à entreprendre à court termeselon les spécificités de chaque pays.

3. Mettre en œuvre Prospection extensive(évaluation)

PROSPECTION

3. Mettre en œuvre Prospection intensive(recherche)

Délimiter la zone infestée Evaluer la densité du Criquet pèlerin Évaluer la superficie à traiter S’assurer de l’absence des populations et des

animaux S’assurer du respect des exigences

environnementales (zones tampons…etc) Baliser la zone à traiter Suivre le déroulement du traitement Apprécier l’efficacité de traitement

74


82

3. Mettre en œuvre Résultats de la prospection

RISQUE HabitatPhase défavorable moyen favorable

solitaire faible faible mod-faible

transiens faible modéré élevé

grégaire mod-élevé élevé élevé

Découverte de populations

significatives?

Prospectiond’évaluation

Evaluation(extensif)

Recherche(intensif)

Lutte

Pour détecter des infestations dans

d’autres zones OU confirmer leur

absence

Délimiter l’étendue de l’infestation

Estimer le niveau de risque et le degré

de lutte nécessaire

Réduire les populations acridiennes

oui

non

Faible Populations négligeables ne nécessitant pas d’évaluation ultérieure

Modéré Populations significatives nécessitant une évaluation complémentaire

Modéré élevé et élevé

Populations significatives nécessitant d’importantes évaluations complémentaires et des recherches approfondies

Quel est le risque?

PROSPECTION

Lutte

Exigences environ-nementalesrespectées

3. Mettre en œuvre Exécution de la prospection

Contacter les autorités locales pour les informer de l’objet dela mission (très important)

Contacter les structures de développement rural et de lamétéorologie nationale pour collecter un maximumd’informations pouvant aider à améliorer l’itinéraire initial

Fixer des heures de vacation avec les structuresdépartementales pour échanger les informations et garder debons contacts

Veillez à maintenir un bon contact avec les nomades et lespaysans pour assurer la réussite de la mission

75


83

3. Mettre en œuvre Quelle méthoded’évaluation des criquets ?

A pied

En véhicule

Par aéronef

PROSPECTION

Principalement pour la détectionde la végétation et son état

3. Mettre en œuvre Prospection à pied1. Arrêt dans la végétation

4. Compter les ailés 5. Compter les larves

6. Parcourir 100-300m 7. Remplir la fiche 8. Aller à l’arrêt suivant

2. Prise des coordonnées géographiques

3. Marcher contre le vent

VENT

3a. Marcher dans des directions différentes

VENT

Evaluer suivant la fiche :

- La situation acridienne

- les conditions écologiques

(végétation, humidité,

Météo, ect)

76


84

Comptages à vue sur quadrats imaginairespour les larves et les ailés (en accouplement et ponte)

Transect pédestre pour les ailés Transect par véhicule pour les ailés Distance moyenne interindividuelle (DMI)

pour les larves et ailés

3. Mettre en œuvre Évaluation des densitésd’ailés et de larves

PROSPECTION

Délimiter à 5 m devant soi, un carré imaginaire de 1 m de côté

Marcher en direction de ce carré en comptant toutes les larvesqui s en échappent suite à votre approche

Bien prospecter le m2 en partant de la périphérie vers le centre

Noter le nombre de larves observées

Répéter cette opération au hasard, en divers endroits, 10 à 20fois en fonction du type d’habitat

Densité larvaire à l’hectare:DL = (nombre de larves comptées / nombre de répétitions) x 10 000

3. Mettre en œuvre Densité de larves:comptages à vue

77


85

10 à 20 comptages à vue au hasard

PROSPECTION

3. Mettre en œuvre Densité de larves:dénombrement par touffe

Compter le nombre moyen de larvespar touffe (min. sur 10 à 15 touffeschoisies au hasard)

Estimer la distance moyenne séparantles touffes (DMI; 10 à 15 répétitions)

Calculer le nombre de touffes àl’hectare (= 10 000 / DMI2)

Densité larvaire à l’hectare:DL = nombre moyen de larves/touffe x nombre de touffes à l’hectare

78


86

Pour des populations de faible densité, utiliser :

les comptages à vue sur carrés (comme pour les larves)

la méthode des transects : compter tous les criquets quis’envolent devant soi sur une bande de 100 m de long et de1 m de large (10 répétitions)

Attention ! Dénombrer uniquement les ailés qui s’envolent àvotre approche sur une largeur de un mètre.

3. Mettre en œuvre Densité d’ailés:transects à pied

Densité d’ailés à l’hectare:DA = (nombre d’ailés comptés / superficie prospectée en m2 ) x 10 000

PROSPECTION

100 m

1 m

Transect à pied

79


87

Population faible

Compter à travers le pare-brise les criquets s’envolant devant le véhicule sur une bande d’une largeur égale à celle du véhicule (1,5 m)La longueur d’un transect véhicule doit être d’au moins 1 km

Compter les CP à l’avant

Densité d’ailés à l’hectare:DA = (nombre d’ailés comptés / superficie prospectée en m2 ) x 10 000

3. Mettre en œuvre Densité d’ailés:transect par véhicule

PROSPECTION

Pour avoir une idée plus précise d’une station, on peut mettre 1 ou 2 véhicules en parallèle mais bienEspacés (environ 0,5-1km) pour éviter de compterles même criquets

3. Mettre en œuvre Densités des bandeset des essaims

criquets < sol nufaible

criquets = sol numoyenne

criquets > sol nuélevée

Attention :Prendre en compte l’heure d’observation

80


88

3. Mettre en œuvre Superficie des bandeset des essaims posés

Superficie (m2) = longueur A x largeur B

PROSPECTION

Attention :Prendre en compte l’heure d’observation

3. Mettre en œuvre Superficie des essaimsen vol

Superficie (m2) = temps (s) x largeur (m) x vitesse du vent (m/s)

1. Estimer ladurée de passage

de l’essaim

2. Estimer lalargeur del’essaim

3. Mesurer la vitessedu vent avec un

anémomètre

Utiliser cette formule avec prudence car elle peut conduire à une surestimation importante de la superficie de l’essaim

81


89

Pour repérer la végétation verte1. Voler à environ 300 m au-dessus du sol2. Faire des passages successifs espacés de 50 km3. Prospecter en début, milieu et fin de saison des pluies

Pour repérer des essaims et des bandes larvaires1. Voler à environ 50 m au dessus du sol2. Faire des passages espacés de 10 km (bandes larvaires)

et 50 km (essaims)3. Ne pas prospecter plus de 3 heures consécutives

En fonction de l’habitat et des conditions météorologiques

3. Mettre en œuvre Prospection aérienne

PROSPECTION

3. Mettre en œuvre Prospection par avion

Bandes larvaires (r=500 m)

Essaims en vol (r = 25 km)

Végétation (r = 25 km)

Début

82


90

3. Mettre en œuvre Prospection par hélicoptère

Pour repérer la végétation verte Repérer les infestations acridiennes

(essaims et bandes larvaires) Vérifier les signalisations non

confirmées Prospecter les zones d’accès

difficiles

Pour repérer végétation verte et criquets Voler à environ 300 m au-dessus du sol Faire des passages successifs espacés de 50 km Voler en direction de la végétation verte et à une altitude

de 5 m maximum Réduire la vitesse à 40 - 50 km/h

PROSPECTION

Il n’y a pas de méthode meilleure qu’une autre : elles sont complémentaires

3. Mettre en œuvre Comparaison des 3méthodes de prospection

PEDESTRE VEHICULE AERIENNECouverture de la zone faible mieux la meilleureDifficultés facile la plus facile difficileTemps requis lente rapide la plus rapideOn ne peut pas voir… - larves solitairesEquipement requis faible modéré importantCoût faible modéré important

83


91

A pied

En véhicule

Par aéronef

3. Mettre en œuvre Evaluation de la végétation

PROSPECTION

X arrêts végétation

3. Mettre en œuvre Autres méthodesd’échantillonnage

Habitats favorables

Sites traditionnels

plaine

oued

cuvette

Arrêts systématiques

10 km10 km10 km

84


92

En cours de verdissement

3. Mettre en œuvre Evaluation de la végétation:l’état phénologique

Verte

En cours de dessèchement

Sèche

PROSPECTION

Dense

végétation > sol nu

Moyenne

végétation = sol nu

Faible

végétation < sol nu

3. Mettre en œuvre Evaluation de la végétation:la densité

85


93

3. Mettre en œuvre Evaluation de l’humiditédu sol

2. Prendre unepoignée de terre etla serrer dans lapaume de la main

3. Si la terre resteamalgamée, le solest humide

1. Creuser un troudans le sol

10 à 15 cm

PROSPECTION

Humidité

3. Mettre en œuvre Evaluation des conditionsmétéorologiques

Vitesse et direction du vent

Température

86


94

Informations sur lesprécipitations et la végétation

Humidité du sol Informations sur le criquet :

o Présence/absenceo Apparenceo Comportemento Etat développement et

maturitéo Densité et taille

Lutte Commentaires divers

3. Mettre en œuvre Quelles informations àrecueillir ?

PROSPECTION

Fiche standard de prospection FAO

1

2

Par radio

Par courrier électronique

Transmission par eLocust

Remplir la fiche CLCPRO

3. Mettre en œuvre Transmission desrésultats de prospection

87


95

Collecte et conservation des criquets

IDENTIFICATION

Capturer les criquets : le filet

Sac de capture

cordon de serrage

sac en toile de coton(h = 25 cm, Ø = 15 cm)

Poche du filet

poche du filet en toile nylon (profondeur 70 cm)

bord du filet en toile de

bâche(Ø = 40 cm)

Armature du filet

fer à béton 6 mm maxi (Ø = 40 cm)

écrou de fixationmanche 20 cm

88


96

IDENTIFICATION

Tuer les criquets : le flacon à cyanure

bouchon en liège

bocal en plexiglass

mousse plastiqueplâtre + cyanure

bouchon inférieur

Petit modèle Grand modèle

couper ici

début d’incision

tergite

sternite membrane

papier (imbibé d’acide borique si possible)

organes internes

Vider les criquets pour mieux les conserver

89


97

IDENTIFICATION

Confection d’une couche entomologique

feuille avec références : date,

lieu, captureur

coton hydrophile

(13 x 20 cm)

enveloppe en papier

feuille (avec références : date,

lieu, captureur)

boîte d’emballage en carton

couche ouverte

coton hydrophile

(13 x 20 cm)

enveloppe papier

Stockage des couches entomologiques

couche fermée

90


98

Récolte et conservation d’échantillons végétaux

Objectif:

Conserver un ou plusieurs échantillons de chaque taxonrécolté dans une région déterminée

Précautions:

L’herbier doit être constitué d’échantillons aussi complets quepossible, comportant en particulier les organes porteurs descaractères spécifiques de chaque plante.

Ces herbiers sont destinés à être fréquemment manipulés etdoivent donc faire l’objet d’une présentation robuste etpratique.

Constitution d’un herbier de référence

91


99

Un échantillon complet est constitué de:

parties hypogées ou souterraines (racines,rhizomes, tubercules)

tige ou prélèvement d’écorce

feuilles

fleurs

fruits et graines

92


HABITATS

103

Etapes à suivre pour la récolte et concervation d’un échantillon

Récolter l’échantillon lorsque les feuilles sont en pleineturgescence

Le conserver dans un sac en plastique (pour limiter sonflétrissement) puis sous presse le plus rapidement possible

Le nettoyer préalablement Le disposer dans un cahier de deux feuilles de papier journal, dans

une position aussi naturelle que possible L’accompagner d’une étiquette portant mention de la date

(chronoréférencement), du lieu de récolte (géoréférencement), etdu biotope d’origine

Indiquer la couleur des fleurs (qui peut disparaître ou se modifierau séchage) et la présence éventuelle de latex et sa couleur



e : étiquette d’herbier ; p : presse ; pg : papier gris pour herbier ; pj :papier journal ; ph : papier bulle pour herbier ; r : références de l’échantillon de plante ; s : sac en plastique.

e

Etapes à suivre pour la récolte et la conservation d’un échantillon

96


104

۱. Introduction۲. Objet de la mission۳. Déroulement de la mission٤. Pluviométrie et conditions écologiques٥. Situation du Criquet pèlerin

٥٫۱. Signalisations reçues des nomades٥٫۲. Informations issues des prospections

٦. Analyse des résultats de prospection۷. Prévisions۸. Ressources allouées et utilisées۹. Difficultés rencontrées۱۰. Conclusions et recommandations

Rapport de prospection

PROSPECTION

97


105

HABITATS

Aire de rémissionZones désertiques à végétation clairsemée

Végétation

Le Criquet pèlerin a besoind’eau et de végétation vertepour assurer sa survie et sa reproduction :végétation verte : maturation sexuelle sol humide : ponte et développement des oeufs végétation verte : développement larvaire

Or, il vit en zones arides...

Les besoins du criquet

98


HABITATS

106

HABITATS

La stratégie de survieLe Criquet pèlerin ne peut survivre en zone aride qu’en exploitant des sites temporairement humides.

Ceci est possible grâce :− à la quiescence imaginaleattente de conditions

favorables− à une grande aptitude au volexplorer et découvrir

les milieux favorables à la reproduction.

Pas d’habitat occupé en permanence,mais des habitats saisonniers.

Les types d’habitats

Tous les habitats ne sont pas également propices en fonction de leur sol et de la végétation qui s’y développe. On distingue :habitats hostiles : ni abri ni nourriturehabitats de survie : subsister en l’attente de conditions

meilleureshabitats de reproduction : peut accomplir sa

maturation sexuelle et pondrehabitats de grégarisation : bonnes conditions de

reproduction; de plus, la structure de la végétationfavorise la concentration et la grégarisation

99


107

Aires hostiles (regs rocailleux, massifs rocheux, depressions salées ou inondées, grande forêt,…) : 5%

Aires de survie (regs argileux, limoneux, graveleux, rocailleux… à végétation peu abondante) : 70%

Aires de reproduction (sables et regs couverts de végétation [steppes arbustives] en zone nord-sahélienne vers le 15ème parallèle nord : 8%

Aires de grégarisation (oueds grands et moyens, dépressions humides et épandages, ensablementshétérogènes à dunes et interdunes : 17%

Part en % des différentes aires dans l’habitat du Criquetpèlerin en Afrique de l’Ouest e du Nord-Ouest

HABITATS

Exemples de milieux hostilesHamada

Dunes vives

100


108

HABITATS

Reg graveleux(Tamesna nigero-malien)

Reg graveleux(Tamesna nigero-malien)

Exemples de milieux de survie

Exemple de milieux de reproduction

Pelouse arbustive(zone nord-sahélienne)

101


109

HABITATS

Exemples de milieux de grégarisationLande à Schouwia purpurea Grand oued

Inter-dunes

Point essentiel

Dans les aires de grégarisation existent des Foyers de grégarisation

habitats les plus favorables au Criquet pèlerin à surveiller régulièrement

102


110

HABITATS

Composition floristique et structure =indicateur de la nature de l’habitat et de saqualité intrinsèque pour le criquet pèlerin(favorisant la survie, la reproduction ou lagrégarisation)

Phénologie (herbes) = indicateur de la qualitéinstantanée du milieu pour l’insecte et de capacitéà assurer le développement correcte des larvesjusqu’à la mue imaginale, le développement desoeufs déjà pondus, ou à demeurer attractif pourles femelles susceptibles de pondre.

La végétation des habitats du Criquet pèlerin

assure sa nourriture : plus ou moins favorable àla reproduction et à la croissance selon lesespèces végétales (le criquet pèlerin est trèspolyphage : plus de 400 espèces végétalesconsommées ; il a néanmoins des préférencesalimentaires)

fournit un abri contre les prédateurs

permet à l’insecte de s’abriter à l’ombre et deréguler sa température interne

joue le rôle de perchoir pour la mue des larves

103

111

HABITATS

Peut favoriser la grégarisation concentrer lespopulations de criquets et augmenter leur densitéau dessus du seuil de grégarisation:

structure : touffe ou homogène

phénologie: dessèchement et restrictionprogressive, localement, des zones favorables

composition floristique: plantes attractives

/

La végétation des habitats du Criquet pèlerin

Il est déterminant pour la ponte.

Le Criquet pèlerin préfère les sols sableux, sablo-limoneux, ou argilo-limoneux couverts

de sable.

Le sol

Rocheux Caillouteux Graveleux Sableux Limoneux Argileux >7,5cm 2-7,5cm 0,2-2cm 50 µ à 2 mm 2 et 50 µ <2µ

104


112

HABITATS

30 - 35 C moyenne / an

Température dans l’aire d’habitat

<-30-30 à -25-25 à -15-15 à -10-10 à -5

-5 à 00 à 5

5 à 1010 à 1515 à 2020 à 3030 à 3535 à 40

>40

Détermine les durées de développement.

Maintient les imagos en quiescence si trop basse.

Permet les vols migratoires nocturnes des populations solitaires si > 20-22 C. (est responsable de la limite N de l’aire de rémission où les basses températures nocturnes empêchent les vols des populations solitaires).

Température dans les habitats

105


113

02575

125225275375475725975

1475247549757475

HABITATS

< 200 mm / an

Pluies dans l’aire d’habitat

Les habitats ne deviennent favorables ( selon leurscaractéristiques) qu’en cas de pluies OU d’arrivéed’eau par écoulement.

Pluie > 20 mm suffisante pour permettre:

développement de la végétation, maturation sexuelle, ponte, et développement larvaire.

Pluies et humidité dans les habitats

106


114

Pluies

HABITATS

Pluies et humidité

Chaque année, les conditions météorologiques créent une mosaïque spatiale de zones favorables, proches, grandes et dont la qualité évolue dans le temps.

Cette mosaïque régit en grande partie la dynamique des populations de criquets et détermine leur abondance.

Une bonne connaissance de l'état des habitats permet d’anticiper l’évolution de la situation acridienne et de développer une stratégie préventive plus efficace.

107


GENÈSEDES INVASIONS

DU CRIQUET PÈLERIN

117

GENÈSE DES INVASIONS

DU CRIQUET PÈLERIN

110


118

Les étapes de la grégarisation dans la nature

GENESE DES INVASIONS

La concentrationd’imagos solitaires

Le regroupementdes femelles dansles sites de ponte

La grégarisation, ou la formation des bandes

larvaires et des essaimsd’imagos

La multiplicationdes effectifs

111


119


Le comportement des solitaires et des grégaires

1Les larves

Les groupesAvec l'accroissement de leurs effectifs, le comportement des larves solitaires change.

Elles se concentrent et peuvent former des groupes.

Cela se produit fréquemment lorsque la végétation commence à se dessécher.

Leur couleur change également et une maculature noire apparaît.

Les bandes se formentensuite.

solitaire

transiens

grégaire

isolés

groupés

bandes

Début de grégarisation

Poursuite de la grégarisation

112


120


Les bandes larvairesPeu de temps après l’éclosion, les larves forment de petites taches noires et denses

Ces taches fusionnent,formant de plus grandes bandes

Dans les bandes, les larves se déplacent toutes dans la même direction

Leur comportement alterne 3 types d'activités : la marche la prise de nourriture le repos / perchage

Durant la journée, le comportement estinfluencé par l'habitat, et surtout par le type de végétation

113


121


Les bandes larvaires (suite)

De 20 min avant à 2h 1/2 après le lever du soleil

Descente de la végétation; marche lente et dense

De 45 min à 2h après le lever du soleil Regroupement au sol

De 1h 1/2 après le lever du soleil à la mi-journée Marche

Après-midi Perchage dans la végétation

De la fin d’après-midi à 1h avant le coucher du soleil Marche

De 80 min avant à 5 min après le coucher du soleil

Regroupement au sol

Pendant la nuitMarche éventuelle de quelques heures; perchage dans la végétation

Perchage dans la végétation

Descente au sol

Marche et alimentation

Rassemblement avant perchage

114


122


115


123

Densité des bandesGENESE DES INVASIONS

Stades Densité (larves / m2)1 10 000 – 30 0002 4 000 – 12 0003 1 500 – 5 0004 700 – 2 2005 300 – 1 000

Estimation photographique de la densité au sein d’une bande

1m

Taches larvaires (stade 1)

116


124


Bande larvaire (stade 5)Maroc 2004

Grande bande larvaireNiger 1988

117


125


Le comportement des solitaires et des grégaires

2Les ailés

Quand la végétation commence à se dessécher, les ailés solitaires peuvent se concentrer et former des groupes.

Ce phénomène peut se produire pendant qu’ils se chauffent au soleil, s’alimentent, se perchent ou volent.

Au cours de ce processus, lecomportement des ailés change.

Les groupes d’ailés

Le dessèchement de la végétation entraînela concentration des Criquets pèlerins

118


126


Vols diurnes

Les essaims grégaires

Les jeunes ailés s’éloignent de la zone de reproduction. Des agrégations peuvent se former, rassemblant d’autres essaims nés dans la région. La grégarisation peut s’en trouver renforcée.

Les ailés grégaires forment les essaims qui peuvent se déplacer sur grandes distances et volent de jour. Ils passent la nuit perchés sur la végétation.

Caractéristiques des essaimsDimensions < 1km2 à x100km2

Couleur rose (immatures)

jaune (matures)

Durée de maturation 2 semaines à 6 moisDensité moyenne au sol 50/m2 (500000/ha)

Densité au sol min/max 20 à >120/m2

(200000 à 1200000/ha)Densité en vol 1/1000 m3 à 10/m3

119


127


Altitude : 1000 - 3000 mDistance inter-individuelle: 1 à 9 m

Altitude : 1 à 1 000 mDistance inter-individuelle: 0,3 à 1 m

Cumuliforme

Stratiforme

Caractéristiques des essaims: forme

Essaim cumuliforme Essaim Stratiforme

120


128


Migrations

121


129


ISOLE (PEU, DES) très peu d’individus présents et pas d’interaction entre eux 0-1 aile /transect pédestre de 400 m (ou moins de 25/ha)

EPARS (QUELQUES, FAIBLES EFFECTIFS)suffisamment d’individus pour qu’une interaction soit possiblemais pas de regroupements visibles au sol ou sur perchoir1-20 ailés/transect pédestre de 400 m (ou 25-500/ha)

GROUPESles individus présents forment des groupes au sol ou perchésplus de 20 ailés/transect pédestre de 400 m

Densitédes ailés et larves non grégaires

Tailledes essaims et des bandes larvaires

TRES PETIT(E) essaim < 1 km² bande 1-25 m2

PETIT(E) essaim 1-10 km² bande 25-2 500 m2

MOYEN(NE) essaim 10-100 km² bande 2 500 m2-10 ha

GRAND(E) essaim 100-500 km² bande 10-50 ha

TRES GRAND(E) essaim > 500 km² bande > 50 ha

122


130

Seuil d’alerte (au niveau du terrain)

Ailés et larves perchés Arrivée continue de populations allochtones

dans les zones favorables à la reproductionet augmentation de densité

Apparition d’un comportement de groupe(début de grégarisation)


Seuils d’alerte (au niveau international)Aucune menace aux cultures. Maintenir les prospections et un suivi régulier.

Menace potentielle aux cultures. Une vigilance accrue est requise, des opérations de lutte peuvent être nécessaires.

Menace aux cultures. Des prospections et des opérations de lutte doivent être entreprises.

Importante menace sur les cultures. Des prospections intensives et des opérations de lutte doivent être entreprises.

situationMENACE

situationDANGER

situationCALME

situationPRUDENCE

123


131


Les invasions

Rémission

• En période de rémission, le Criquet pèlerin estprésent à de faibles densités dans des zonessemi-arides ou arides (pluie < 200mm / an)

• Aire de rémission: 15 M km2, 30 pays

124


132


Reproduction et migration en rémission

125


133

126

Délimitation des trois Commissions FAO


134


Essaims matures en vol

Iles du Cap Vert, 1988 Canaries, 2004

127


135


EssaimMaroc 1987

128


136

Le cycle des invasions

Invasion Début

ExtensionCroissance

RémissionRécession

Recrudescence

Résurgence(nombreuses pullulations)

Déclin de l’invasion


ETEZones rouges : bandes larvaires de juillet à septembre

Flèches : migration des essaims d’août à octobre

Reproduction et migration en invasion

129

137


HIVERZones bleues : bandes larvaires d’octobre à février Flèches : migration des essaims de décembre à mars

PRINTEMPSZones vertes : bandes larvaires de février à mai Flèches : migration des essaims d’avril à juillet

130




138


Déclenchement des invasions

Succession de pluies abondantes sur dessurfaces très étendues

Importance du suivi de l’humidité du sol

Facteurs naturels:

mauvaise répartition des pluies dans leszones de reproduction migration vers des zones défavorables

Intervention humaine: opération de lutte

Déclin des invasions

131


139

La stratégie de lutte préventive


Opérations de lutte

Rémission

… et son efficacité

05

101520

4550

1910 20 30 40 50 60 70 80 90 2000

te

plagueonsetplaguepeak

Nombre de territoires signalant des essaims

débutpicdéclinrémission

132


2530

4035

140

Etudes récentes supériorité de la stratégie de lutte préventive en termes debénéfices nets et d’économie de ressources.


La prévention est toujours préférable

Amélioration possibles− délimitation plus précoce des zones favorables− meilleure estimation du risque de grégarisation− interventions chimiques plus limitées, insecticides biologiques avantages économiques plus grands préjudices moindres à l’environnement, à la santé

humaine et animale.

133


141

Schéma d’une campagne de lutte antiacridienne

Campagnede lutte

CAMPAGNE

Structure organisationnelle d’une campagnede lutte

Poste central de commandement

Autres Service météo FAO

DG Centre

Base de terrain-Ravitaillement-Base aérienne-Pesticides

Secteur d’une base de terrain

Médias

134


ORGANISATION D’UNE CAMPAGNE DE PROSPECTION ET DE LUTTE

142

Déploiement de personnel et de moyens

Établir une carte de localisation des cibles

Maintenir le personnel sur le terrain informé

Tenir à jour une base de données

sur les pesticides

Évaluer la situation

Informer la FAO

Poste central de commandement (PCC)

Prendre note de la localisation des ressources matérielles et humaines

Enregistrer les rapports transmis par radio

CAMPAGNE

Informer le PCC de l’évolution de la situation

Enregistrer les déplacements de l’aéronef

Superviser le ravitaillement de l’aéronef

Analyser la situation et organiser des réunions quotidiennement

Tenir à jour une carte de localisation et de base de données

Remplir les fiches de lutte antiacridienne

Agent antiacridien de terrain

Enregistrer l’information fournie par le pilote

Bases de terrain: rôle des agents antiacridiens

135


143

Stratégiesà adopter

Oui : la stratégie a réussi

Non : la stratégie a échoué

CAMPAGNE

Prospection

Découverte et traitement destaches larvaires

Appareils de traitement manuelsdisponibles (100)

Appareils de traitement montéssur véhicules disponibles (10)

Pesticides disponibles(10 000 litres)

Stratégie en période de rémission

136


144

Petites infestations

Recrudescences

Invasions généralisées

(fléau)

8 9

Stratégie lors des recrudescences et invasions

CAMPAGNE

Prévisions à moyen terme :Imprécises en raison de prévisions météorologiques peu fiables et d’incertitudes sur la situation acridienne

Prévisions à long terme :Imprécises en raison de prévisions météorologiques peu fiables et de la forte variabilité de la répartition des criquets

Planification prévisionnelle

137


145

Plan d’action prévisionnel

Organisation et logistique efficaces

Pesticides rapidement disponibles

Ressources humainesqualifiées

Procédures d’intervention standards

Fonds d’urgence

Stock et entretien de l’équipement

Formation du personnel

Aéronefs de pulvérisation

disponibles rapidement

CAMPAGNE

Planification annuelle des activités de prévention et adaptation du plan au besoin

Véhicules équipés de pulvérisateurs

Pulvérisateurs manuels et portés

par l’homme

Véhicules de ravitaillement et

pesticides disponibles

Campagne de traitement terrestre

138


146

Pesticides et pompes

Camions

Radios, GPS, cartes, talkie-walkies

Aéronefs et pistes d’atterrissage

Carburant et pompes

Campagne de traitement aérien

CAMPAGNE

Précautions à prendre

Insister sur : La nécessité de vérifier les véhicules et le lot de

bord avant d’aller sur le terrain Vérifier l’état du matériel de camping et de

cuisine Trousse pharmaceutique S’assurer d’une autonomie en carburant et en

eau avant d’aller sur le terrain Fixer une fréquence radio avec la base centrale

et des heures de communication

139


147

Privilégier et valoriser : l’esprit d’équipe la rigueur la ponctualité

Veiller : à l’entretien des véhicules à responsabiliser le personnel à vérifier l’état du matériel

Gestion des équipes et des moyens

CAMPAGNE

Le rapport final doit comprendre des précisions surles points suivants: la superficie prospectée et traitée par voie

terrestre et aérienne le nombre et le type de véhicules, de

pulvérisateurs, d’aéronefs et de personnels les quantités de pesticides utilisées et leurs

différentes formulations l’assistance locale fournie l’assistance extérieure fournie

Compte-rendu de fin de campagne

140


148

FICHE DE PROSPECTIONCLCPRO

CAMPAGNE

141


OUTILS

151

OUTILS

LE GPS

Garmin Oregon 550 / 550t

Le GPS (Global Positioning System) est un système depositionnement par satellite.

Le système fonctionne grâce à un dispositif de 24satellites sur orbite à basse altitude (environ 20 000 km)disposés de telle sorte que l’on puisse capter les signauxde 4 à 8 d’entre eux de n’importe quel point de la terre, dejour comme de nuit.

Les applications civiles du GPS ont été développéesprincipalement pour la navigation aérienne et maritime,permettant un positionnement précis et instantané.

Principe

144


152

OUTILS

Au moins 3 satellitespour déterminer uneposition à la surface de laterre (2D).

Un quatrième signal estnécessaire pour obtenirun positionnement entrois dimensions (3D)permettant de déterminerl’altitude du lieu.

Nombre de satellites pour la navigation

24 satellites(jour et nuit)

3 sont nécessaires

Latitude / longitudePrécision de 10 m

: GPS

Différents modèles de GPSun fonctionnement identique

Garmin

MagellanTrailblazer 315

Oregon550 GPSMAP 62 12XL 48

145


146


OUTILS : GPS

Utilisation du GPS en lutte antiacridienne

Aujourd’hui, les données GPS sont devenuesindispensables à la conduite des prospections et desopérations de lutte contre les acridiens.

Globalement, le GPS est utilisé dans les domainessuivants : détermination de la position navigation détermination des superficies infestées balisage des cibles aériennes réglage de l’alignement des passes pendant les

traitements.

Les applications du GPS en lutte antiacridienne sontmultiples :

recherche et localisation des infestations application des pesticides.

L’utilisation du GPS différentiel (DGPS) permet deréduire la marge d’erreur de 10 m à 1 mètre.

Le DGPS est utilisé dans les aéronefs pour faciliter lalocalisation précise du site à traiter et garantir le respectdes paramètres de l’application.

Utilisation du GPS en lutte antiacridienne (suite)

OUTILS : cartes et boussoles

147


CARTESET BOUSSOLES

Savoir lire les coordonnées

Parallèles

Méridiens

Secondes

Minutes

Degrés

Latitude et longitude

25 03’35’’N/20 01’20’’E

25 03’35’’N/20 01’20’’E

L O N G I T U D E

L O N G I T U D E

L A

T I T

U D

E

L A

T I T

U D

E

Déterminer latitude et longitude d’un point

Situer un point de latitude et longitude données

164

OUTILS

1. Lecture de l’échelle etde la légende

2. Calculer la distanceentre deux points sur lacarte en km

3. Chercher un pointcoordonnée sur unecarte

4. Introduire une routedans un GPS à l’aided’une carte

Comment exploiter les cartes ?

: cartes et boussoles

Exercice de lecture de carte Réponses

1.Quelle est l’échelle de cette carte ? (1:500 000)2.1 cm = 5 km3.Où est le Nord sur cette carte ? (haut)4.Où est la frontière Yémen / Arabie Saoudite (en bas à droite, en bas à gauche)5.Que sont les polygones, cercles et carrés bleus? (espaces aériens non autorisés pour les avions)6.Quelles sont les unités d’altitude ? (mètres)7.Où est l’échelle des latitudes ? (côtés gauche et droit dela carte)8.Où est l’échelle des longitudes ? (côtés haut et bas dela carte)9.De quelle couleur sont les routes ? (rouge) Les rivières? (bleu clair) Les aéroports ? (bleu foncé) Les grandes villes ? (gris) Les lits des lacs assèchés ? (points blancs et bleus) La mer ? (bleu clair)10.Comment sont indiquées les zones sablonneuses ? (petits points) Et les dunes ? (lignes parallèles et ombres)

Trouver et suivre un azimut

1. Tenez la boussole devant vous

1. Pivotez pour vous mettre face à l’objet en question

1. Tournez le cadran pourl’aligner sur l’aiguille

2. L’azimut est le nombre indiqué par la grande flèche

cadran

Trouvez

1. Tournez le cadran à l’azimut indiqué

2. Pivotez jusqu’à ce que…

3. … la flèche du cadran et l’aiguille soient alignées

4. Trouvez un objet dans la direction indiquéepar la grande flèche

5. Marchez vers cet objet (en gardant la flèche et l’aiguille alignées)

cadran

Suivre

148


165

OUTILS

eLocust3 et gestion de l’information

acridienne

eLocust3 est une application développée par la FAO encollaboration avec la firme Novacom Services, afin defaciliter la collecte et la transmission des donnéesacridienne de la fiche FAO de prospection/lutte.

L'application est incorporée dans une tablette PanasonicFZ-A1 – Toughpad, que le prospecteur sur le terrain peututiliser à coté du véhicule ou à une distance éloignée, vuqu’elle dispose de sa propre alimentation électrique et nedépend pas du véhicule (sauf lors du rechargement de labatterie, ou de la transmission).

eLocust3 ?

149


166

OUTILS

eLocust3 (application & tablette) vient succéder à deux précédentes versions qui sont eLocust1 et eLocust2.

eLocust1 eLocust2 eLocust3

: eLocust3 et gestion I.A.

150

Schéma d’acheminement en utilisant eLocust3

NOVACOM (Toulouse)

RAMSES

Possibilité de télécharger les données directement

vers RAMSES

Antenne

Prospecteur eLocust3

Station terrestre Inmarsat

1 3’

3

56

Satellites Inmarsat

Satellites GPS 24

Liaison Bluetooth


167

OUTILS: eLocust3 et gestion I.A.

Kit eLocust 3

Malette de transport

151

Durabilité : Châssis en alliage de magnésium, résistant aux chutes, étanche à l'eau et à la poussière

Ecran : 10.1" Multi-Touch Capacitif et Digitizer

Orientation : GPS Satellite et boussole numérique

Connectivite : Wifi & Bluetooth Batterie : Jusqu'à 10 heures d'autonomie /

se recharge en 3h

Caméra

HDMI

USB

Audio

4G(option)Alimentation électrique

Carte SD

Fonctionnementde l’écrantactile

Fonctionnementde l’écranMulti-TouchCapacitifet Digitizer


168


Interface du prospecteurPage d’accueil

VLC

Application eLocust3

152


Arabe Français Anglais

Interfaces de l’eLocust3eLocust3 dispose de trois interfaces linguistiques:

169


La Radio

153


Les équipes de lutte antiacridiennes utilisent la radio pour plusieurs raisons: dont notament:

- Communiquer avec le siège de l'UNLA- Communiquer entre les équipes- Transmettre les données en cas de problèmesavec eLocust3

Dans la région occidentale les Radios les plus utilisées sont de type Codan. Il existe deux sortes de Radios:

- Fixe : au niveau du siège et des basesopérationnelles des UNLAs.

- Mobile: utilisées par les équipes déployées surle terrain.

188

OUTILS

154


une console avec combiné, unmicrophone à col de cygne, uneboîte de jonction (interne) et unhaut-parleur

une unité RF

une alimentation d’émetteur-récepteur

une antenne fixe appropriée

Poste typique fixe

un combiné et un berceau

une boîte de jonction

un haut-parleur

une unité RF et un berceau demontage sur véhicule (y compriscâble d’alimentation courantcontinue)

une alimentation 12 V courantcontinu (batterie)

une antenne à syntonisationautomatique

Poste typique mobile

Radio codan NGT fixe

Radio codan NGT mobile

189

OUTILS : radio

155

Préservation et maintenance

La fixation de la radio doit être faite dans un endroit protégé (Depréférence sous le siège droit du chauffeur )

Les fils doivent être encastrés et protégés pour ceux qui sontvisibles avec des gaines ininflammables tels que les fils du micro

Eviter de jeter des lots de bords ou criques sur la radio Eviter de mettre des liquides (eau, lait, etc.) dans son voisinage

(car cela peut créer des masses électriques et faire cramer laradio)

Antenne :

Installer l’antenne dans unendroit le plus protégé

Une plaque de protection doitprotéger le bas de l’antenne leconnectant à la radio

Les connexions de l’antennedoivent être tournées vers lavoiture

Les fils de connexion doivent êtreencastrés et protégés


Radio :

SUIVI DE LA SANTE ET DEL’ENVIRONNEMENT

195

SUIVI DE LA SANTE ET DE L’ENVIRONNEMENT

Approche de la FAO

Définition du suivi Collecte, analyse, interprétation et diffusion

des données sur les effets (à la foisintentionnels et non intentionnels) de la lutteantiacridienne opérationnelle

Objectif du suivi Identifier ce qui fonctionne correctement et ce

qui peut être amélioré en lutte opérationnelle :– optimiser la lutte– améliorer le rapport coût/efficacité– minimiser les effets indésirables sur la santé

humaine et l’environnement

Le suivi est, par conséquent, un élément essentield’une campagne de lutte !!

158


196

Le suivi de la lutte contre le Criquet pèlerin comporte plusieurs éléments : suivi de la qualité des traitements suivi de la santé des opérateurs de lutte suivi environnemental suivi des incidents

Ensemble : le suivi environnemental, sanitaire et dela qualité des traitements

PRINCIPES DU SUIVI

Approche de la FAO

Le suivi est fait à 3 niveaux :

Évaluations rapides équipes de traitement

Suivi opérationnel équipes de suivi spécialisé

Suivi approfondi équipes de recherche

Pour ces 3 niveaux, les acteurs, les activités effectuées, les délais de réalisation du travail, et les liens fonctionnels avec l’organisation de la campagne sont différents

159


197

Type ? Qui ?Combien

de temps ?

Quoi ?

Efficacité Santé Organismes non cibles Résidus

Évaluations rapides

Équipes de traitement

quelques heures à 1 jour

oui oui oui non

Suivi opérationnel spécialisé

Équipes de suivi spécialisé

1 jour à 1 semaine oui oui oui oui

Suivi approfondi

Équipes de recherche

quelques semaines à quelques mois

(non) oui oui oui

PRINCIPES DU SUIVI

Approche de la FAO

1. Faire le suivi – évaluations rapides

2. Faciliter le suivi – pour les équipes de suivi spécialisées

3. Être suivi – par les équipes de suivi spécialisées

Rôle des équipes de traitement dans le cadre du

suivi de la lutte antiacridienne

160


198

Faire le suivi – évaluations rapides

1. Détails techniques sur la qualité de la pulvérisation

2. Efficacité du traitement

3. Incidents d’empoisonnement parmi les agents

4. Incidents de contamination de l’environnement

5. Mortalité d’organismes non cibles

6. Incidents / plaintes de la population

Objectif = ALERTE : informer le responsable de la campagnesur les éventuels problèmes.

Note: la tâche principale des équipes de traitement est d’effectuer les traitements – elles ont donc peu de temps !

EQUIPES DE TRAITEMENT

c’est de savoir : Quelle était la localité exacte du traitement ? Quel insecticide a été utilisé ? Quels étaient les paramètres & conditions de traitement ?

- dose réelle appliquée (= superficie traitée & quantité deproduit pulvérisée)

- conditions météorologiquesOutils

Fiche standard de prospection en Région occidentale (CLCPRO) Données du GPS et/ou de l’ordinateur de bord

1. Détails techniques sur qualité de la pulvérisation

La base essentielle de tout suivi environnemental et sanitaire

161


162199

Fiche CLCPRO



Les données précises sur les traitements sont importantes :

Carte des passes faites par l’avion de traitement (produite par l’ordinateur de bord)

Mêmes passes superposées sur une carte écologique (satellitaire) de la zone traitée


200

Comment remplissez-vous la fiche standard de prospection enRégion occidentale ? Quelles données/informations notez-vous? Avec quel détail notez-vous ces informations ? Remplissez-vous une fiche pour chaque traitement ? Même pour les petitessuperficies traitées ?

Est-ce que les informations sur la fiche sont suffisammentdétaillées pour qu’une équipe de suivi, qui n’était pas sur placedurant le traitement, puisse retrouver exactement la parcelletraitée et comprendre comment le traitement a été réalisé ?

Discussion – Tour de table


2. Efficacité du traitement

Aspect essentiel pour toute évaluationcoûts–bénéfices des opérations de lutte

Le calcul objectif de la mortalité descriquets est très important !

Outils

Fiche standard de prospection/lutte enrégion occidentale (CLCPRO)

Directives de la FAO sur le Criquet pèlerin– Tome 4 : Lutte antiacridienne


163


201

3. Incidents d’empoisonnement parmi les agentsLe chef d’équipe doit signaler tout incident d’empoisonnement ou

d’exposition accidentelle parmi les agents de l’équipe : veiller sur la santé des collègues signaler des problèmes éventuels avec l’insecticide, le

pulvérisateur, l’équipement de protection, ou la formation

Action : Alerter immédiatement les responsables (pour faire éventuellement un suivi médical)

Outils Fiche standard de prospection/lutte en région occidentale (CLCPRO) Formulaire FAO d’incident d’empoisonnement (plus détaillé)



Fiche standard de prospection / lutte

164


202

Comment allez-vous remplir le formulaire FAO d’incidentd’empoisonnement ?

Est-ce que toutes les informations/données à fournir sontclaires ?

Discussion – Tour de table


4. Incidents de contamination de l’environnementLe chef d’équipe doit signaler tout incident de contamination de

l’environnement, par exemple : fuite importante d’insecticide contamination importante du sol accident avec véhicule de transport d’insecticide contamination d’une source d’eau potable

Action : Alerter immédiatement les responsables – afin de permettre, éventuellement, un suivi environnemental spécialisé

Outil: Notez l’incident sur la fiche CLCPRO (il n’y a pas de rubriques spécifiques)


165


203

5. Mortalité d’organismes non ciblesLe chef d’équipe doit signaler tout incident de mortalité excessive

d’organismes non cibles, surtout d’importance économique : orienter les équipes spécialisées de suivi signaler des problèmes éventuels avec l’insecticide

Action: Alerter les responsables – afin de permettre, éventuellement, un suivi environnemental spécialisé

Outil: Fiche standard de prospection en région occidentale (CLCPRO)



Fiche CLCPRO

166


204

6. Incidents / plaintes de la populationLe chef d’équipe doit signaler tout incident ou toute plainte de la

population locale : recevoir le rapport d’incident d’empoisonnement ou d’impact

environnemental obtenir l’information de base sur le problème (localité, date, nom

de la personne de contact, insecticide impliqué) ne pas faire une enquête détaillée !! transmettre les informations au responsable de la campagne

Action: Alerter les responsables (pour faire éventuellement une investigation spécialisée)

Outil: Notez l’incident sur la fiche ou formulaire de traitement (il n’y a pas de rubriques spécifiques)



Faciliter le suivi – pour l’équipe spécialisée

Les équipes de traitement peuvent grandement faciliter le travail de l’équipe de suivi spécialisé

Rôle de l’équipe de traitement : Prévenir, aussitôt, le responsable de la campagne ou du suivi

des éventuels incidents durant/après les traitements Recevoir l’équipe de suivi spécialisée sur le site du traitement, et

l’assister :– fournir les informations détaillées sur le(s) traitement(s)– fournir les informations sur les environs du traitement (habitations,

zones sensibles, etc.)– fournir les informations sur les éventuels incidents– introduire l’équipe de suivi chez les populations locales– [éventuellement, assister pour la collecte des données]

167


205

Les équipes de traitement ont généralement le plus d’informations sur « leurs » traitements, et sur la zone d’intervention.

Une bonne collaboration entre l’équipe de traitement et l’équipe de suivi spécialisée est donc indispensable pour que le suivi de la lutte contre le Criquet pèlerin soit efficace !!

Faciliter le suivi – pour l’équipe spécialisée


Etre suivi – par l’équipe spécialisée

Suivi sanitaireLes agents de terrain courent le plus haut risque d’être exposés aux insecticides.

Il est donc important de contrôler régulièrement l’exposition aux insecticides, surtout aux organo-phosphorés.

Un indicateur utilisé pour l’absorption d’insecticides organo-phosphorés est le taux d’inhibition de l’acétylcholinestérase (dans les globules rouges) et de la pseudocholinestérase (dans le plasma).

Le taux d’inhibition peut être contrôlé après analyse d’un prélèvement sanguin en utilisant un kit de test de terrain ou dans un laboratoire spécialisé.

168


206

Kit de terrain pour tester le taux de cholinestérase

Se faire contrôler le taux de cholinestérase


Prélèvements sanguins sur le terrain pour évaluer l’exposition aux insecticides organo-phosphorés

Se faire contrôler le taux de

cholinestérase

169


207

Si le taux de cholinestérase descend au-dessous du seuil considéré comme acceptable, il faut (temporairement) soustraire l’agent aux opérations de traitement jusqu’à son rétablissement.


Rappel

Les équipes de traitement peuvent:

Faire le suivi : évaluations rapides- Noter les détails techniques sur qualité de la pulvérisation- Evaluer l’efficacité du traitement- Transmettre les incidents d’empoisonnement- Transmettre les incidents de contamination de

l’environnement- Transmettre la mortalité excessive d’organismes non cibles- Transmettre les incidents ou les plaintes auprès de la

population

Faciliter le travail de l’équipe spécialisée de suivi

Etre suivies elles mêmes


170

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