SKRIPSI

NUR FITRIA DEWI

UJI AKTIVITAS ANTIBAKTERI KOMBINASI

EKSTRAK ETANOL DAUN Annona squamosa

dan Jatropha gossypifolia DENGAN METODE

DIFUSI CAKRAM

(Studi terhadap Bakteri Staphylococcus aureus dan Escherichia coli)

PROGRAM STUDI FARMASI

FAKULTAS ILMU KESEHATAN

UNIVERSITAS MUHAMMADIYAH MALANG

2018

ii

Lembar Pengesahan

UJI AKTIVITAS ANTIBAKTERI KOMBINASI

EKSTRAK ETANOL DAUN Annona squamosa dan

Jatropha gossypifolia DENGAN METODE DIFUSI

CAKRAM

(Studi terhadap Bakteri Staphylococcus aureus dan

Escherichia coli)

SKRIPSI

Dibuat untuk memenuhi syarat mencapai gelar Sarjana Farmasi pada

Program Studi Farmasi Fakultas Ilmu Kesehatan

Universitas Muhammadiyah Malang

2018

Oleh :

NUR FITRIA DEWI

2014104103111188

iii

Lembar Pengujian

UJI AKTIVITAS ANTIBAKTERI KOMBINASI

EKSTRAK ETANOL DAUN Annona squamosa dan

Jatropha gossypifolia DENGAN METODE DIFUSI

CAKRAM

(Studi terhadap Bakteri Staphylococcus aureus dan

Eschericia coli)

SKRIPSI

Telah diuji dan dipertahankan didepan tim penguji

Pada tanggal 25 Juli 2018

Oleh:

NUR FITRIA DEWI

NIM : 201410410311188

Tim Penguji :

iv

KATA PENGANTAR

Assalamu’alaikum Warahmatullahi Wabarakatuh

Segala puji dan syukur Alhamdulillah penulis panjatkan kepada Allah

SWT karena atas limpahan rahmat, hidayah serta karunia-Nya penulis dapat

menyelesaikan skripsi yang berjudul “aktivitas Antibakteri Ekstrak Etanol Daun

Annona squamosa dan Jatropha gossypifolia (Studi terhadap Bakteri

Staphylococcus aureus dan Escherichia coli dengan Metode Difusi cakram)”.

Penulis menyadari bahwa tanpa bantuan dan dukungan dari berbagai

pihak, skripsi ini tidak akan terselesaikan. Oleh karena itu pada kesempatan ini

penulis ingin mengucapkan banyak terimakasih kepada :

1. Ibu Siti Rofida S,Si.,M.Farm.,Apt selaku dosen pembimbing 1 yang dengan

penuh kesabaran memberikan arahan, dukungan, serta bimbingan kepada

penulis dalam menyelesaikan skripsi ini.

2. Bapak Ahmad Shobrun Jamil, S.Si.,M.P selaku dosen pembimbing II yang

telah memberikan arahan, dukungan serta bimbingan kepada penulis agar

dapat menyelesaikan skripsi ini.

3. Ibu Engrid Juni Astuti M.Farm.,Apt selaku dosen penguji 1 atas kritik dan

sarannya untuk menyempurnakan skripsi ini.

4. Ibu Raditya Weka Anggraeni M.Farm., Apt selaku dosen penguji II atas kritik

dan sarannya dalam menyempurnakan skripsi ini.

5. Bapak Faqih Ruhyanudin, M.Kep.,Sp.Kep.MB selaku Dekan Fakultas Ilmu

Kesehatan Universitas Muhammadiyah Malang.

6. Ibu Dian Ermawati, S.Farm., M.Farm.,Apt selaku Ketua Program Studi

Farmasi yang telah membantu kelancaran pengerjaan skripsi penulis.

7. Ibu Sitoresmi Prabaningtyas, S.si, M.Si selaku kepala Laboratorium

Mikrobiologi Fakultas Matematika dan Biologi Universitas Negeri Malang

yang telah memberikan ijin untuk penulis melakukan penelitian pada

Laboratorium tersebut

8. Bapak Agung Witjoro, S.Pd, M.Kes selaku Kepla Laboratorium FMIPA UM

yang telah membantu kami dalam perijinan penggunaan Laboratorium

Mikrobiologi UM

v

9. Para laboran dari Laboratorium Mikrobiologi FMIPA UM mbak Dina dan

Mbak Yanis serta Ibu Diah sebagai laboran yang telah memberikan arahan

dan bimbingannnya selama penulis melakukan penelitian.

10. Ayah dan ibu tercinta atas doa yang tak henti dan dukungan baik secara moril

maupun materil serta dengan sabar mendengar keluh kesah anakmu ini

selama kuliah hingga penulisan skripsi ini.

11. Adikku Rafly atas pengertiannya selama penulis kuliah sampai penyelesaian

skripsi.

12. Sahabatku sekaligus teman seperjuangan skripsi keluarga nonana atas

dukungan dan semangatnya dalam penyelesaian skripsi.

13. Retno Ayu yang dengan sabar menemani dalam belajar sebelum sidang

maupun dalam masa penelitian.

14. Teman-teman angkatan 2014 dan Farmasi D atas rasa kekeluargaan di akhir

perjuangan kita meraih gelar sarjana

15. Serta semua pihak dari dalam maupun luar yang tak dapat dituliskan satu

persatu yang telah membantu penulis menyelesaikan skripsi ini.

Penulis menyadari bahwa dalam penulisan skripsi ini masih banyak

kekurangan. Oleh karena itu penulis mengharapkan kritik dan saran yang

membangun untuk kesempurnaan skripsi ini. Semoga skripsi ini dapat

bermanfaat bagi pembaca serta ilmu pengetahuan terutama di bidang

kefarmasian.

Wassalamualaikum Warahmatullahi Wabarakatuh

Malang, 15 Juli 2018

Penulis,

Nur Fitria Dewi

vi

RINGKASAN

UJI AKTIVITAS ANTIBAKTERI KOMBINASI EKSTRAK ETANOL

DAUN Annona squamosa dan Jatropha gossypifolia DENGAN METODE

DIFUSI CAKRAM

(Studi Terhadap Bakteri Staphylococcus aureus dan Escherichia coli)

Penyakit infeksi merupakan salah satu sebab kematian utama di seluruh

dunia. Di berbagai negara khususnya negara berkembang, peranan antbiotik dalam

menangani penyakit infeksi masih sangat menonjol. Akan tetapi, penggunaan

antibiotik dapat menyebabkan timbulnya resistensi pada bakteri. Adapun

penyebab penyakit infeksi salah satunya yaitu bakteri patogen, contoh dari bakteri

patogen yaitu Staphylococcus aureus dan Escherichia coli. Staphylococcus aureus

merupakan flora normal pada kulit manusia dan Escherichia coli merupakan flora

normal pada usus besar manusia. Penyakit yang bisa disebabkan oleh kedua

bakteri tersebut adalah infeksi saluran kemih dan diare.

Pada penelitian sebelumnya telah diketahui bahwa ekstrak etanol daun

Annona squamosa dan Jatropha gossypifolia secara tunggal memiliki aktivitas

antibakteri. Sehingga pada penelitian ini ingin mengetahui aktivitas antibakteri

pada saat Annona squamosa dan Jatropha gossypifolia dikombinasi. Adapun

tujuan dari penelitian ini adalah untuk mendapatkan data daya hambat ekstrak

etanol kombinasi daun srikaya (Annona squamosa) dan daun jarak merah

(Jatropha gossypifolia) terhadap bakteri Staphylococcus aureus dengan

menggunakan metode difusi cakram.

Bahan yang digunakan pada penelitian ini yaitu ekstrak etanol daun

Annona squamosa dan Jatropha gossypifolia yang digunakan sebagai kontrol uji,

bakteri Staphylococcus aureus dan Escherichia coli sebagai bakteri uji, DMSO

10% sebagai pelarut ekstrak dan kontrol negatif, MHA (Mueller Hinton Agar)

sebagai media agar pertumbuhan bakteri, MHB (Mueller Hinton Broth) yang

digunakan pada saat peremajaan bakteri dan kloramfenikol 30 µg yang digunakan

sebagai kontrol positif.

Ekstrak etanol daun Annona squamosa dan Jatropha gossypifolia masing-

masing ditimbang sesuai dengan konsentrasi yang digunakan, kemudian

dilarutkan menggunakan DMSO 10% sebanyak 1 ml sampai larut dan homogen.

vii

Setelah itu kedua ekstrak dikombinasikan dengan perbandingan 1 : 1 dan ekstrak

siap untuk diujikan. Sebelum pengujian, dilakukan pembuatan media agar yang

diisikan pada cawan. Setelah pembuatan media agar, selanjutnya yaitu proses

peremajaan bakteri dengan mengoleskan 3-4 ose bakteri dari biakan murni pada

tabung reaksi yang berisi MHB, kemudian diinkubasi pada suhu 37ºC selama 24

jam, setelah diinkubasi, maka suspensi bakteri dibandingkan dengan standar

McFarland dengan tingkat kekeruhan 108 CFU/ml.

larutan uji kombinasi ekstrak Annona squamosa dan Jatropha gossypifoli

kemudian di teteskan pada kertas cakram uji sebanyak 20µl dan dilakukan

pengulangan sebanyak 5 kali. Kemudian cawan yang berisi media agar, diolesi

dengan bakteri uji yang diambil dari hasil peremajaan yang telah disamakan

dengan standar McFarland sebanyak 3-4 ose. Setelah itu, kertas cakram yang

berisi larutan uji , kloramfenikol 30µg dan kontrol negatif ditanam pada media

agar yang kemudian diinkubasi selama 24 jam pada suhu 37ºC. Setelah 24 jam,

maka dilakukan pengamatan zona hambat dengan mengukur zona hambat

menggunakan jangka sorong.

Dari hasil pengujian aktivitas antibaketri kombinasi ekstrak etanol daun

Annona squamosa dan Jatropha gossypifolia terhadap bakteri Staphylococcus

aureus dan Escherichia coli didapatkan data zona hambat pada bakteri

Staphylococcus aureus, konsentrasi 1 EDAS : EDJG (6250 µg: 5000µg) sebesar

11,80 mm ; konsentrasi 2 EDJG : EDAS (6250 µg : 2500µg) sebesar 11,13 mm

dan konsentrasi 3 EDAS:EDJG (12500µg : 2500µg) sebesar 12,35 mm.

Sedangkan pada bakteri Escherichia coli , konsentrasi 1 EDAS : EDJG (6250 µg:

5000µg) sebesar 12,23 mm ; konsentrasi 2 EDJG : EDAS (6250 µg : 2500µg)

sebesar 11,72 mm dan konsentrasi 3 EDAS:EDJG (12500µg : 2500µg) sebesar

13,17 mm. Dari data zona hambat menunjukkan bahwa kombinasi ekstrak etanol

Annona squamosa dan Jatropha gossypifolia lebih efektif terhadap Escherichia

coli dibandingkan terhadap Staphylococcus aureus.

x

DAFTAR ISI

Lembar Pengesahan ........................................................................................... ii

Lembar Pengujian ............................................................................................ iii

KATA PENGANTAR ....................................................................................... iv

RINGKASAN .................................................................................................... vi

ABSTRAK ....................................................................................................... viii

DAFTAR ISI ...................................................................................................... x

DAFTAR TABEL ........................................................................................... xiv

DAFTAR GAMBAR ........................................................................................ xv

DAFTAR LAMPIRAN ................................................................................... xvi

DAFTAR SINGKATAN DAN LAMBANG .................................................. xvii

BAB 1 PENDAHULUAN................................................................................... 1

1.2 Rumusan Masalah ...................................................................................... 3

1.3 Tujuan Penelitian ........................................................................................ 4

1.4 Manfaat Penelitian ...................................................................................... 4

BAB II TINJAUAN PUSTAKA ........................................................................ 5

2.1 Srikaya ....................................................................................................... 5

2.1.2 Deskripsi Srikaya ................................................................................. 6

2.1.3 Habitat dan Cara Penyebaran................................................................ 6

2.1.4 Kandungan Senyawa Kimia ................................................................. 6

2.2 Jarak Merah ................................................................................................ 9

2.2.1 Klasifikasi Jarak Merah ........................................................................ 9

2.2.2 Deskripsi Tanaman Jarak Merah ........................................................ 10

2.2.3 Habitat dan Cara Penyebaran.............................................................. 11

2.2.4 Kandungan Senyawa Kimia ............................................................... 12

2.2.5 Aktifitas Secara Empiris dan Ilmiah ................................................... 13

2.3 Tinjauan Bakteri Escherichia Coli ........................................................... 14

2.3.1 Klasifikasi .......................................................................................... 14

2.3.2 Deskripsi ............................................................................................ 14

2.3.2.1 Morfologi .................................................................................... 15

xi

2.3.2.2 Struktur Antigen .......................................................................... 15

2.3.2.3 Media Pertumbuhan ..................................................................... 16

2.3.2.4 Kondisi Optimum ........................................................................ 16

2.3.2.5 Cara Identifikasi .......................................................................... 16

2.3.3 Manifestasi Klinis .............................................................................. 16

2.4 Tinjauan Bakteri Staphylococcus aureus .................................................. 18

2.4.1 Klasifikasi .......................................................................................... 18

2.4.2 Deskripsi ............................................................................................ 19

2.4.2.1 Morfologi .................................................................................... 19

2.4.2.2 Struktur Antigen .......................................................................... 19

2.4.2.3 Media Pertumbuhan ..................................................................... 20

2.4.2.4 Kondisi Optimum ........................................................................ 20

2.4.2.5 Cara Identifikasi .......................................................................... 21

2.4.3 Manifestasi Klinis .............................................................................. 21

2.5 Tinjauan Umum Infeksi ............................................................................ 22

2.6 Antibiotik ................................................................................................. 23

2.6.1 Kloramfenikol .................................................................................... 23

2.7 Tinjauan Aktivitas Aktibakteri Senyawa Metabolit Sekunder ................... 24

2.7.1 Alkaloid ............................................................................................. 24

2.7.2 Flavonoid ........................................................................................... 25

2.7.3 Polifenol ......................................................................................... 25

2.7.4 Antrakuinon ....................................................................................... 26

2.7.5 Triterpenoid ....................................................................................... 26

2.8Tinjauan Metode Pengujian Antibakteri ..................................................... 26

2.8.1 Metode Difusi .................................................................................... 26

2.8.2 Metode Dilusi Tes .............................................................................. 27

2.8.3 Standar Mc Farland ............................................................................ 28

2.9 Kombinasi Ekstrak ................................................................................... 29

BAB III KERANGKA KONSEPTUAL .......................................................... 31

3.2 Kerangka Konseptual................................................................................ 32

BAB IV METODE PENELITIAN .................................................................. 35

4.1 Desain Penelitian ...................................................................................... 35

xii

4.2 Lokasi Penelitian ...................................................................................... 35

4.3 Alat Penelitian .......................................................................................... 35

4.4 Bahan Penelitian ....................................................................................... 36

4.4.1 Bahan Uji ........................................................................................... 36

4.4.2 Sampel Bakteri ................................................................................... 36

4.4.3 Pengujian Difusi Cakram ................................................................... 36

4.5 Sterilisasi Bahan dan Alat ......................................................................... 36

4.5.1 Sterilisasi Pemanasan Kering ............................................................. 36

4.5.2 Sterilisasi Pemanasan Basah ............................................................... 37

4.6 Media Uji Bakteri ..................................................................................... 37

4.7 Metode Penelitian ..................................................................................... 37

4.7.1 Rancangan Penelitian ......................................................................... 37

4.7.2 Kerangka Operasional ........................................................................ 38

4.8 Variabel Penelitian ................................................................................... 38

4.8.1 Variabel Terikat ................................................................................. 38

4.8.2 Variabel Bebas ................................................................................... 38

4.9 Prosedur Kerja .......................................................................................... 38

4.9.1 Preparasi Sampel ................................................................................ 38

4.9.1.1 Persiapan Ekstrak Etanol 96% Daun Jarak Merah ........................ 38

4.9.1.2 Pembuatan Ekstrak Etanol Daun Annona squamosa ..................... 39

4.10.1 Tahap Persiapan ............................................................................... 39

4.10.1.1 Persiapan Dosis Larutan Uji ....................................................... 39

4.10.1.2 Pembuatan Larutan Uji .............................................................. 40

4.10.1.3 Preparasi Media Mueller Hinton Agar ........................................ 41

4.10.1.5 Pembuatan Standar Mc Farland.................................................. 42

4.10.1.6 Preparasi Bakteri........................................................................ 42

4.10.1.7 Pewarnaan Bakteri Uji ............................................................... 42

4.10.2 Tahap Pengujian ............................................................................... 43

4.10.2.3 Pengujian Penghambatan Pertumbuhan Bakteri Dengan Difusi

Cakram ................................................................................................... 43

4.11 Analisis Data .......................................................................................... 45

BAB V HASIL PENELITIAN ......................................................................... 46

xiii

5.1 Hasil Uji Aktivitas Kombinasi Ekstrak ..................................................... 46

5.1.1 Hasil Pengecekan Pewarnaan Bakteri Uji ........................................... 46

5.1.1.1. Pewarnaan Peremajaan Bakteri Uji ............................................. 47

BAB VI PEMBAHASAN ................................................................................. 52

BAB VII KESIMPULAN DAN SARAN ......................................................... 58

7.1 Kesimpulan .............................................................................................. 58

7.2 Saran ........................................................................................................ 58

DAFTAR PUSTAKA ....................................................................................... 59

LAMPIRAN ..................................................................................................... 65

xiv

DAFTAR TABEL

Tabel Halaman

II. 1 Diameter zona hambat kontrol dan perlakuan pada bakteri E.coli dan

S.aureus hari pertama ............................................................................ ...7

II. 2 Diameter zona hambat kontrol dan perlakuan bakteri E.coli dan S.aureus

hari kedua ................................................................................................. 7

II. 3 Diameter zona hambat kontrol dan perlakuan pada bakteri E.coli dan

S.aureus hari ketiga .................................................................................. 8

II. 4 Aktivitas antimikroba dari ekstrak Annona squamosa dalam konsentrasi

1mg/mL .................................................................................................... 8

II. 5 Kadar Hambat Minimal (KHM, dalam µg/ml) dari ekstrak Isquamosa

terhadap bakteri ........................................................................................ 9

II. 6 Kandungan Senyawa Tanaman Jatropha gossypifolia ............................. 12

II. 7 Khasiat antibakteri ekstrak daun Jatropha gossypifolia dalam berbagai

pelarut .................................................................................................... 13

II. 8 Standar McFarland .................................................................................. 28

V. 1 Hasil Rata-rata Diameter Zona Hambat Aktivitas Antibakteri Kombinasi

EDAS dan EDJG dengan Metode Difusi Cakram terhadap Bakteri

S.aureus......................................................................................................48

V. 2 Hasil Rata-rata Diameter Zona Hambat Aktivitas Antibakteri Kombinasi

EDAS dan EDJG dengan Metode Difusi Cakram terhadap Bakteri

E.coli..........................................................................................................50

V.3 Perbandingan zona hambat EDAS dan EDJG tunggal dengan hasil

kombinasi ekstrak EDAS dan EDJG.........................................................52

xv

DAFTAR GAMBAR

Gambar Halaman

2. 1 Daun Srikaya ............................................................................................ 5

2. 2 Daun Jarak Merah .................................................................................... 10

2. 3 Bakteri Escherichia coli ........................................................................... 14

2. 4 Struktur Antigen Escherichia coli ............................................................ 15

2. 5 Bakteri Staphylococcus aureus ................................................................. 18

2. 6 Struktur kimia kloramfenikol ................................................................... 24

2. 7 Penghambatan sintesis protein bakteri olehkloramfenikol................. ........ 24

3. 1 Kerangka konseptual ................................................................................ 31

4. 1 Kerangka operasional ............................................................................... 38

4. 2 Bagan Prosedur Pengujian Antibakteri dengan Metode Difusi Cakram..... 45

5. 1 Pewarnaan bakteri peremajaan S.aureus dan E.coli .................................. 47

5. 3 Hasil cek pewarnaan bakteri S.aureus dan E.coli. ..... Error! Bookmark not

defined.

5. 5 Hasil uji daya hambat kombinasi EDAS : EDJG terhadap bakteri

S.aureusdan E.coli .................................................................................. 48

5. 7 Diagram perbandingan diameter zona hambat pada bakteri S.aureus dan

E.coli ...................................................................................................... 50

xvi

DAFTAR LAMPIRAN

Lampiran Halaman

1 Daftar Riwayat Hidup .......................................................................... 65

2 Surat Pernyataan .................................................................................. 66

3 Determinasi Tanaman ........................................................................... 67

4 Bagan Alir ............................................................................................ 69

5 Penimbangan Ekstrak ........................................................................... 76

6 Perbandingan Hasil Zona Hambat ........................................................ 78

7 Hasil Pengujian Antibakteri Secara Tunggal ......................................... 79

8 Hasil Pengujian Antibakteri dengan 3 kali replikasi ..…………...….....80

9 Hasil Pewarnaan Bakteri pada Cawan Replikasi Uji Antibakteri……...81

10 Alat dan Bahan ..................................................................................... 82

xvii

DAFTAR SINGKATAN DAN LAMBANG

µg = mikrogram

µL = mikroliter

CFU = Coloni Forming Unit

DMSO = Dimetil Sulfoksida

DNA = Deoxyribose Nucleic Acid

EDAS = Ekstrak Daun Annona squamosa

EDJG = Ekstrak Daun Jatropha gossypifolia

EPEC = Entero Patogen Escherichia coli

ETEC = Entero Toksigenik Escherichia coli

EHEC = Entero Hemoragik Escherichia coli

EAEC = Entero Agregatif Escherichia coli

HPTLC = High Performance Thin Layer Chromatography

ISK = Infeksi Saluran Kemih

KHM = Kadar Hambat Minimal

KLB = Kejadian Luar Biasa

LAF = Laminar Air Flow

mL = Mililiter

mm = Milimeter

MHA = Mueller Hinton Agar

MHB = Mueller Hinton Broth

59

DAFTAR PUSTAKA

Abdusyafi,M., 2013. Potensi Antibiotik Isolat Actinomycetes dari Material

Vulkanik Gunung Merapi Erupsi Tahun 2010 terhadap Bakteri

Staphylococcus aureus Multiresisten. Surakarta: Skripsi

Alex, S..2011. Budidaya dan Khasiat Srikaya untuk Kesehatan dan Bisnis

Makanan. Yogyakarta: Pustaka Baru Press, hal 16-17.

Amalia R., Sari R., Robiyanto. 2017. Penentuan Nilai FICI Kombinasi

EkstrakKulit Daun Lidah Buaya (Aloevera (L.) Burm.f.) dan Gentamisin

Sulfat terhadap BakteriStaphylococcus aureus. Traditional Medicine

Journal. Volume 22(3). Page 175-181.

Ashutosh kar, 2014. Farmakognosi dan Farmakobioteknologi. Volume 2.

Jakarta. Penerbit buku kedokteran egc, hal : 633

Aswarita, R., 2013. Interaksi Ekstrak Daun Lidah Buaya (Aloe vera L.) dan Daun

Jambu biji (Psidium guajava L.) Terhadap Daya Hambat Escherichia coli

Secara In vitro. Jurnal Edubio Tropika, volume 1, nomor 2.

Back Matter, 2001. Benson: Microbiological Applications Lab Manual, Eigth

Edition. The McGraw−Hill Companies, pp. 261, 441

Badan Pengawas Obat dan Makanan, 2010. Acuan Sediaan Herbal. Departemen

Kesehatan Indonesia. Hal. 1-3

Baratawidjaja, Karnen Garna., & Rengganis, Iris., 2010. Imunologi Dasar, Ed. 9.

Jakarta: Balai Penerbit Fakultas Kedokteran Universitas Indonesia, hal 477-

513.

Borong, Meyta. F. 2012. Kerasionalan Penggunaan Antibiotik Pada Pasien

RawatInap Anak Rumah Sakit M.M Dunda Limboto Tahun 2011.

Gorontalo: Laporan Hasil Karya Tulis Ilmiah.Program Studi D-III

Farmasi Fakultas Ilmu-ilmu Kesehatan dan Keolahragaan Universitas

Negeri Gorontalo.

Brito R. C., Silva G. N., Farias T. C., Ferreira P. B., Ferreira S. B. 2017.

Standarization of Safety Level of the Use of DMSO in Viability Assays in

Bacterial Cells. MOL2NET. International Conference Series on

Multidisciplinary Sciences.

Clinical and Laboratory Standards Institute. 2015. Perfomance Standards for

Antimicrobial Susceptibility Testing; Twenty-Fifth Informational

Supplement. USA: CLSI document M100-S25. Hal. 48-51 dan 74-

81.Dalimartha, S. (2005). Tumbuhan Obat Indonesia. Jakarta:Penerbit

Puspa Swara.

60

Dalynn Biologicals, 2002, McFarland Standard for in vitro use only,

http://www.dalynn.com/dyn/ck_assets/files/tech/TM53.pdf. Diakses tanggal

26 Desember 2017.

Department of Agriculture, 2013, Fisheries and Forestry: Feral deer

management strategy. Australia : State of Queensland,pp.35-37.

Depkes, RI., 2011. Buku Saku Petugas Kesehatan Lintas Diare. Jakarta:

Departemen Kesehatan RI.

Dewi, A.K., 2013. Isolasi, Identifikasi dan Uji Sensitivitas Staphylococcus aureus

Terhadap Amoxicillin dari Sampel Susu Kambing Peranakan Ettawa (PE)

Penderita Mastitis Di wilayah Girimulyo, Kulonprogo, Yogyakarta. Jurnal

Sain Veteriner, Vol.2 No.31, p. 138-150.

Dewi, Fajar kusuma. 2010. Aktivitas Antibakteri Ekstrak Etanol Buah Mengkudu

(Morinda citrifolia L) Terhadap Bakteri Pembusuk Daging Segar.

Surakarta: Skripsi.

Dhale, D.A., A.R. Birari, G.S. Dhulgande. 2010. Preliminary Screening of

Antibacterial and Phytochemical Studies of Jatropha gossypifolia Linn.

Ecobiotechnology. Vol. 2 No. 7, p 24-28.

Djajanegara, R. & Wahyudi, P., 2009, Pemakaian Sel Hela dalam Uji Sitotoksik

Fraksi Kloroform dan Etanol Ekstrak Daun Annona squamosa, Jurnal Ilmu

Kefarmasian Indonesia, Vol. 7, No. 1, hal. 7-11.

Dzen, S.M., Roekistiningsih., Santoso, S., Winarsih S., Sumarno., Islam S.,

Noorhamdani A.S., Murwani S., Santosaningsih D. 2003. Bakteriologi

Medik. Malang. Bayumedia Publishing

Elfidasari, Dewi., Anita M,. Grariani., Rugayah., Viki., 2011. Perbandingan

Kualitas Es diLingkungan Universitas Al-Azhar Indonesia dengan Restoran

Fast Food di Daerah Senayan dengan Indikator Jumlah Eschericha coli

Terlarut, Jurnal Al-Azhar Indonesia Seri Sains dan Teknologi, Vol 1. No

1, hal 3-5.

Entjang, Indan., 2003., Mikrobiologi dan Parasitologi., Penerbit : Citra Aditya

Bakti.

Enwa, F.O., Michael, O., Anie, C., Ayeh, R.A., 2016. Antibacterial Screening of

the Ethanol and Aqueous Extract of the Fruit Peel of Persea Americana Mill

Against Selected Enteric Bacteria. Academia Journal of Microbiology

Research 4(3): 040-046.

61

Eucast, 2015. Antimicrobial Susceptibility Testing, EUCAST disk diffusion

method. European Comittee on Antimicrobial Susceptibility Testing,

version 5.0, pp. 10.

Gilman, A.G., 2006, Goodman & Gilman Dasar Farmakologi Terapi, Ed.10.

Jakarta: Penerbit Buku Kedokteran, EGC, hal 718

Hafsan., Eka, S., Mashuri, M. 2015. Penuntun Praktikum Mikrobiologi.

Makassar: Laboratorium Mikrobiologi Fakultas Sains dan Teknologi

Universitas Islam Negeri Alaudin Makassar.

Hariana Arief. 2006. Tumbuhan obat dan khasiatnya. Penebar Swadaya :

Jakarta hal 73-74.

Haryati, N.A., Saleh, C., Erwin., 2015. Uji Toksisitas dan Aktivitas Antibakteri

Ekstrak Daun Merah Tanaman Pucuk Merah (Syzygium myrtifolium Walp.)

Terhadap Bakteri Staphylococcus aureus Dan Escherichia coli. Jurnal

Kimia Mulawarman, Vol 13, No 1.

Hernani, 2011. Pengembangan Biofarmaka Sebagai Obat Herbal Untuk

Kesehatan. Buletin Teknologi Pascapanen Pertanian, Vol 7, No 1.

Hidayat, S., dan Napitupulu, R.M , 2015. Kitab umbuhan Obat. Jakarta: Agriflo

(Swadaya Grup). Hal. 375-376.

Jawetz E, Melnick JL., Adelberg EA, 2005, Mikrobiologi Kedokteran, Ed. 23,

Jakarta: Penerbit Buku Kedokteran EGC.

Jawetz, E., Melnick, J.L., Adelberg, E.A. 2012. Mikrobiologi Kedokteran, Ed.

26. Jakarta: Penerbit Buku Kedokteran EGC.

Katzung, B. G., 2004. Farmakologi Dasar dan Klinik. Ed. 13. Jakarta: Salemba

Medika.

Karou, Daintoti., Savadogo, Aly., canini, Antonella., Yameogo, Saydou.,

Montesano, Carla., Simpore, Jacques., Colizzi, Vittorio., dan Traore, Alfred

S. 2006. Antibacterial Activity of Alkaloids From Sida acuta. African

Journal of Biotechnology, Vol. 5 No. 2 hal 195-200

Karsinah, Lucky HM, Mardiastuti H W, 2010. Buku Ajar Mikrobiologi

Kedokteran, Edisi Revisi, Tanggerang: Binapura Aksara Publisher.

62

Kemenkes RI, 2017.Profil Kesehatan Indonesia tahun 2016. Jakarta :

Kemenkes RI.

Kementrian Kesehatan RI , 2011. Situasi Diare di Indonesia. Jakarta. Jendela

Datinkes.

Kunaepah, U. 2008. Pengaruh Lama Fermentasi dan Konsentrasi Glukosa

Terhadap Aktivitas Antibakteri, Polifenol Total dan Mutu Kimia Kefir Susu

Kacang Merah. Semarang: Tesis Program Pascasarjana.

Levinson, W., 2004, Medical Microbiology & Imunology, Examination &

Board review, Ed. 8. New York: McGraw-Hill.

Miksusanti, Fitrya, & Marfinda, N., 2011, Aktivitas Campuran Ekstrak Kulit

Manggis (Garcinia mangostana L.) dan Kayu Secang (Caesalpina sappan

L.) Terhadap Bacillus cereus, Jurnal Kimia, Vol 11, No 3, hal 41-47.

Muwarni, S. 2015. Dasar-dasar Mikrobiologi Veteriner. Malang: Universitas

Brawijaya Press, hal 289-290.

Nafrialdi ; Setawati, A., 2007. Farmakologi dan Terapi. Ed. 5. Jakarta:

Departemen Farmakologi dan Terapeutik Fakultas Kedokteran UI.

Neal, M.J. 2006. At a Glance Farmakologi Medis Edisi Kelima. Jakarta :

Penerbit Erlangga. pp. 85.

Novita Dilla. 2015. Uji Aktivitas Antioksidan Ekstrak Etanol 96% Daun Jarak

Merah (Jatropha gossypifoliaLinn) dengan DPPH. Malang. Skripsi

Nurheti Yuliarti. 2011. 1001 Khasiat Buah-Buahan.Yogyakarta: ANDI. hal 40-

51.

Okoh S.O., Iweriebor B.C., Okoh O.O., Nwodo U.U., Okoh A.I., 2016.

Antibacterial and Antioxidant Properties of the Leaves and Stem Essential

Oils of Jatropha gossypifolia L.BioMed Research International. Vol 2016

No 9

Pasiana, A.D., 2010. Pengaruh Ekstrak Etanol Daun Jarak Merah (Jatropha

gossypifolia L.) Pada Formula Pasta Gigi Terhadap Bakteri Streptococcus

mutans. Makassar: Skripsi.

Patel, J.D., Kumar, V., 2008. Annona squamosa L.: Phytochemical Analysis and

Antimicrobial Screening. Journal of Pharmacy Research. Vol 1, No 1.

63

Plantamor, Your Database Plant, http://www.plantamor.com/index.php?plant=728

Di akses tanggal 27 Desember 2017.

Putra, I.N.K., 2010. Aktivitas Antibakteri Ekstrak Kulit Buah Manggis (Garcinia

mangostana L.) serta Kandungan Senyawa Aktifnya. J.Teknol. dan

Industri Pangan, Vol. 21, No. 1, p.1-5.

Radji, M. 2011. Mikrobiologi. Buku Kedokteran. Jakarta : ECG

Randall, A., Shane, C., Wayne, V., 2009. Bellyache Bush (Jatropha

gossypiifolia) Management Manual. Control Options and Management

Case Studies from Across Australia. Australia: Department of

Employment, Economic Development and Innovation.

Rofida, S., Ahmad Firdiansyah, Endah Fitriyastuti. 2015. Aktivitas

Antihiperlipidemia Ekstrak Etanol Daun Annona squamosa L.

Antihyperlipidemic Activity of Annona squamosa L. Journal Of

Pharmaceutical Science And Pharmacy Practice. Voume 2 Number 1.

Sastrahidayat, I.R dan Soemarno. 1991. BudidayaTanaman Tropika. Surabaya:

Usaha Nasional.

Shenoy, C., Patil, M.B., Kumar, R., 2009. Antibacterial and Wound Healing

Activity of Leaves of Annona squamosa Linn. (Annonaceae). Research

Journal of Pharmacognosy and Phtochemistry, Volume 1, nomor 1.

Soeryoko,Hery.2011.20 TanamanObat Paling Berkhasiat Penakluk Asam

Urat.Yogyakarta: Andi.

Sunarjono, 2005. Sirsak dan Srikaya: Budidaya untuk Menghasilkan Buah

Prima. Depok: Penebar Swadaya.

Tansil, A.Y.M., Nangoy, E., Posangi, J., Bara, R.A., 2016. Uji daya hambat

ekstrak etanol daun srikaya (Annona squamosa) Terhadap Pertumbuhan

Bakteri Escherichia coli dan Staphylococcus aureus.Jurnal e-Biomedik.

Vol 4, No 2.

Utami, E. R., 2012. Antibiotika, Resistensi, dan Rasionalitas Terapi. Saintis. Vol.

1 No. 1, p. 128.

Warsa, U.C. 2010. Buku Ajar Mikrobiologi Kedokteran : Kokus Positif Gram

Staphylococcus. Tangerang : Binarupa Aksara Publisher

64

Wati, Eka prasetya., 2010. Uji Aktivitas Antibakteri Kombinasi Ekstrak Etanol

Buah Mengkudu (Morinda citrifolia Linn) dan Rimpang Jahe Merah

(Zingiber officinale Roscoe) Terhadap Pertumbuhan Escherichia coli Secara

In Vitro. Jember : Skripsi

Wijaya, Rahmadi., 2007. Penggunaan Sistem Pakar dalam Pengembangan portal

Informasi untuk Spesifikasi Jenis Penyakit Infeksi. Jurnal Informatika,

Vol.3 No.1, p. 63-88.

Yuliarti, Nurheti. 2010. Kultur Jaringan Tanaman Skala Rumah Tangga.

Yogyakarta: Lily Publisher.