Rapport annuel d'activité, année 2015 Laboratoire … · (y compris pour le contrôle de...

1

Rapport annuel d'activité, année 2015

Laboratoire National de Référence

Rage (y compris pour le contrôle de l'efficacité des vaccins antirabiques)

Nom du responsable du LNR

Cliquet Florence

Nom de l'unité où l'activité du LNR est mise en œuvre, le cas échéant précisez les

noms des unités associées au LNR

Unité Lyssavirus

Nom du laboratoire où l'activité du LNR est mise en œuvre, le cas échéant précisez les

noms des laboratoires associés au LNR

Laboratoire de la rage et de la faune sauvage de Nancy

Nombre de laboratoires agréés et/ou reconnus dans le réseau

1

2

Précisez la catégorisation du danger (en SA) sinon la justification de l'existence du

LNR (SA, SV et SSA)

La rage est une zoonose reconnue comme maladie de première catégorie au sens de

l'arrêté du 9 juillet 2013 relatif à la définition des dangers sanitaires de première et deuxième

catégorie pour les espèces animales. Il s'agit d'une maladie à notification obligatoire auprès

de l'OIE (OIE, 2012).

Les faits marquants de l'année

Participation aux soirées d'information et d'échanges (Formation vétérinaires) sur le thème de la "La rage une maladie toujours d'actualités". Intervention orale réalisée le 3 juin 2015 à Strasbourg (67) Formation théorique et pratique de biologie moléculaire (PCR temps réel et PCR point final) pour la mise en évidence du virus rabique au laboratoire vétérinaire de Marrakech au Maroc (27 septembre 2015 – 03 octobre 2015) Etude rétrospective et bilan de 10 ans de campagnes de vaccination orale dans les pays baltes : La vaccination antirabique des renards par voie orale s’est montrée être le seul outil efficace pour lutter contre la rage vulpine. Au cours des trois dernières décennies, la mise en œuvre de programmes de vaccination orales dans 24 pays européens a ainsi conduit à l'élimination de la rage du renard dans l’Europe de l’Ouest est quasiment toute l’Europe Centrale. L’étude rétrospective de ces campagnes de vaccination permet de tirer des leçons des stratégies employées et ainsi améliorer la performance des campagnes actuelles. Dix ans de données ont ainsi été récoltées auprès de différents collaborateurs des pays Baltes (Estonie, Lituanie, Lettonie) afin de réaliser un bilan des premières vaccinations jusqu’à la quasi-élimination de la maladie de cette région. L’analyse statistique du suivi de l’efficacité des campagnes de vaccination a permis de mettre en évidence les différents facteurs ayant influencés les résultats de sérologie et de prise d’appât des populations cibles (renards roux et chiens viverrins). La publication de cette étude vient d’être acceptée dans le journal PLOS Negleted Tropical Disease. En 2014, une méthode utilisant du papier filtre pour collecter le sang des animaux combiné à un test ELISA pour la détection des anticorps antirabiques a été développée et évaluée par l’ANSES-Nancy. Cette méthode a pour but d’améliorer et faciliter l’estimation du taux de couverture vaccinale des renards et des chiens viverrins suite aux campagnes de vaccination orale. Dans ce cadre, L’ANSES-Nancy a travaillé en collaboration avec l’ELIZ pour évaluer la faisabilité de la méthode sur le terrain et obtenir des prélèvements. Les résultats obtenus sont très prometteurs. Cette méthode, qui se révèle être simple et rapide pour la collecte des prélèvements sur le terrain, sans utilisation d’aiguilles et de seringues, et également peu coûteuse pour l’envoi et le stockage des prélèvements, est une alternative à la ponction de fluides sanguins sur les cadavres d’animaux. En Janvier 2015, l’ANSES-Nancy a organisé dans ses locaux un atelier d’une semaine sur cette méthode à l’attention des laboratoires internationaux agréés pour la sérologie rage et/ou impliqués dans le suivi sérologique des campagnes de vaccination orale. Grâce à la collaboration avec l’ELIZ qui a fourni des prélèvements et animé les démonstrations de tirs de nuits, treize scientifiques, venant de dix laboratoires internationaux, ont pu réaliser les techniques de laboratoire et suivre les tirs de nuits et le prélèvement des échantillons.

3

1. Méthodes développées ou révisées

Nombre de méthodes développées ou révisées proposées à l’autorité compétente

0

Nombre de méthodes développées ou révisées qui sont susceptibles d’être prêtes

pour être proposées à l’autorité compétente au cours de l’année 2016

0

2. Matériels biologiques ou chimiques, échantillons et souches

d'intérêt Information disponible auprès du LNR

3. Activités d'analyse

3.1. Analyses officielles de première intention

Nombre d'analyses officielles de première intention réalisées dans l'année (de

biotypie, sérotypie, caractérisation moléculaire...)

5649

Détaillez ici par type d'analyse de première intention

Diagnostic par immunofluorescence directe : 609 Diagnostic par inoculation à une culture cellulaire de neuroblastomes murins : 199 Recherche de l'ARN viral : 579 RT-PCR temps réel : 72 Séroneutralisation virale, test FAVN : 3959 Test d'efficacité des vaccins vétérinaires inactivés : 77 Test d'efficacité des vaccins inactivés à usage humain : 2 Titrage de virus rabique : 80 Typage de souches : 72

3.2. Analyses officielles de confirmation

Nombre d'analyses officielles de seconde intention réalisées dans l'année (de

biotypie, sérotypie, caractérisation moléculaire...)

7

4

Détaillez ici par type d'analyse de confirmation

Anses ID Date Reception Country Species FAT R TCIT RT-PCR Real time PCR DR-1037a 07/10/2015 Romania Bos taurus + + + + + DR-1037b 07/10/2015 Romania Bos taurus + + + + + DR-1037c 07/10/2015 Romania Bos taurus + + + + + DR-1037d 07/10/2015 Romania Bos taurus + + + + + DR-1046 28/10/2015 Norway Myotis daubentonii / + + + DR-1047 28/10/2015 Norway Myotis daubentonii / + + + DR-1068 18/12/2015 Hungary Vulpes vulpes + + + +

Taux de confirmations par type d'analyse (= nombre de résultats confirmés / nombre

d'analyses officielles de seconde intention réalisées)

7/7 = 100 %

3.3. Autres analyses

Nombre estimé d'autres analyses (non officielles) réalisées dans l'année en lien avec

le mandat de LNR

0

Détaillez ici par type d'autres analyses

Aucune

4. Activités de production et de contrôle de matériaux de référence

et de réactifs biologiques

Le LNR produit-il et fournit-il des réactifs ?

Oui

Cette activité est-elle une obligation découlant de textes réglementaires, normatifs ou

infra-réglementaires (notes de service). Si oui, lesquels?

Mandats de laboratoire de référence OIE et OMS de référence pour la rage

Cadre du mandat LRUE

5

Quels sont les types de réactifs produits et fournis (antigènes, kits, autres) ?

- Contrôle négatif (cerveau sain de renard) lyophilisé, conservé à +4°C, pour le diagnostic de la rage. - Contrôles positifs lyophilisés de différents génotypes (Génotype 1 : renard roux, chien viverrin) - Sérum international positif canin de référence de l'OIE - Sérum de chien dépourvu d’anticorps antirabiques, conservé à -20 °C et mis à la disposition des laboratoires agréés réalisant les titrages sérologiques antirabiques. - Virus rabique CVS-11 lyophilisé, conservé à +4°C et mis à la disposition des laboratoires agréés réalisant les titrages sérologiques antirabiques. - Virus rabiques de différentes espèces : Duvenhage, EBLV1a, EBLV1b, EBLV2, ABLV, BBLV. - Mâchoires et dents de renards négatives et positives en tétracycline.

Quel est le nombre de lots produits et fournis par an ?

(moyenne sur les 5 dernières années)

5

Quelles sont les quantités produites/fournies par lot ?

(moyenne sur les 5 dernières années)

250

Analyse de l'évolution (augmentation, diminution) des tendances en termes d'activité

sur les 5 dernières années

La légère hausse due en 2014 à la reconnaissance par l'OIE du sérum positif en tant que

sérum de référence OIE ne s'est pas maintenue en 2015.

Le LNR fournit-il des matériaux de référence ?

Non

Le LNR réalise-t-il des contrôles de réactifs commerciaux ?

Oui

Cette activité est-elle une obligation découlant de textes réglementaires, normatifs ou

infra-réglementaires (notes de service). Si oui, lesquels?

Cadre de laboratoire OMCL en relation avec l'ANMV. Cadre du LNR rage. Cadre du LRUE rage.

6

Quelles sont les modalités de contrôle (initiaux, répétitifs, lot par lot) ?

Contrôle lot par lot

Quel est le nombre de contrôles - ou de lots contrôlés - par an ? (moyenne sur les 5

dernières années)

80

Analyse de l'évolution (augmentation, diminution) des tendances en termes d'activité

sur les 5 dernières années

Stable

5. Activités d'expertise scientifique et technique

5.1. Demandes d’expertise scientifique et technique du ministère

(chargé de l’agriculture, santé, etc…) ou d’instances

communautaires et internationales qui concernent votre domaine

de compétence

Nombre de rapports d'EST rendus dans l'année

10

Détaillez ici les demandes d'EST et les noms des mandataires

Les demandes d'EST émanent de la Commission Européenne et des autorités compétentes

de certains pays Européens

7

5.2. Autres expertises

Les membres de l'équipe du LNR peuvent avoir des activités d'expertise (internes:

CES, GT ou externe: EFSA...) ou des activités auprès de commissions de

normalisation (Afnor...). Détaillez ici ces activités et estimez le temps qui y est

consacré.

- Tuteur d'un projet européen BTSF “Training on movements of dogs and cats” avec 2 cours à présenter : 2 sessions en 2015 (du 16 au 20 mars au Maroc). - RITA meeting : du 05 au 09 octobre 2015 à Fort Collins au Colorado (USA) : deux présentations sur la rage. - un expert invité à Taïwan par le gouvernement pour discussion sur la situation épidémiologique de la rage à Taïwan et illustration par une conférence sur le contrôle de la rage en France en janvier 2015. Le déplacement a aussi été l'occasion de visiter les installations de l'AHRI (Animal Health Research Institute) - un expert invité pour une conférence sur le succès du programme de vaccination orale en Europe; les exemples récents de l'élimination de la rage en Italie et en Estonie au congrès international vétérinaire qui s'est tenu à Moscou du 22 au 24 avril. - un expert invité pour une conférence sur les campagnes de vaccination des chiens par le bureau des experts rage en Europe de l'Est et au Moyen-Orient à Lyon en France du 7 au 9 avril 2015 - Formation à la mise sous qualité de la biologie moléculaire du diagnostic de rage au laboratoire ONSSA de Marrakech au Maroc par un expert du laboratoire du 27 septembre au 3 octobre 2015. Une seconde mission en décembre (du 7 au 11) a été demandée par le laboratoire ONSSA pour vérifier que les actions correctives mises en place lors de la première mission étaient suffisantes et pour renforcer la mise en place du FAVN, technique de contrôle sérologique de la vaccination des carnivores domestiques. Ces missions relevaient du cadre "BTSF World -AENP" qui vise à renforcer le contrôle de la santé animale et éviter les mouvements d'animaux de compagnie infectés. - un expert invité à participer à la "Task Force" de Budapest les 15 et 16 octobre 2015. Le but était d'évaluer la situation de la rage en Hongrie et de fournir des recommandations sur le contrôle et la délivrance des vaccins oraux contre la rage. - Participation au Workshop international sur la surveillance et le contrôle de la rage organisé à l'Institut Pasteur du Cambodge à Phnom Penh par un cours sur le contrôle de la rage. - un expert invité pour une présentation intitulée "La rage en Afrique du Nord: contexte scientifique, épidémiologie et état des lieux" à un meeting dédié à la rage dans les pays d'Afrique du Nord du 4 au 5 novembre 2015 à Tunis. - deux experts invités à participer au "meeting" des centres collaboratif de l'OMS sur la rage le 09 octobre 2015 à Genève. Ce "meeting" a été suivi par une conférence de 2 jours OMS/OIE/FAO sur l'éradication de la rage canine et humaine les 10 et 11 octobre 2015. - un expert invité à présenter une communication orale sur l'épidémiologie de la rage canine et son contrôle durant les journées scientifiques de l'Institut Pasteur d'Alger le 17 décembre 2015.

5.3. Dossiers de demande d'agrément

Nombre de dossiers de demande d'agrément étudiés dans l'année

0

8

5.4. Activités de conseil aux professionnels

Détaillez ici ces activités et estimez le temps qui y est consacré

Sans objet

6. Animation du réseau de laboratoires agréés ou reconnus

6.1. Organisation d'EILA

Précisez ici le nombre d'EILA organisés par le LNR au cours de l’année

5

Nom de l'EILA

Diagnostic de rage par le test d'immunofluorescence (test référencé par l'OIE)

L'EILA est-il réalisé sous accréditation "17043"?

Non

Nombre de laboratoires participants

46

Nombre de laboratoires agréés participants (Na)

0

Le LNR a-t-il participé à l'EILA?

Oui

Nombre de laboratoires participants en cours de demande d'agrément

0

Nombre d'autres laboratoires participants

0

9

Nombre de laboratoires ayant obtenu des résultats défavorables

4

Nombre de laboratoires agréés non conformes (Nc)

0

Taux de non conformités Nc/Na

0 %

Evolution du réseau dans le temps

Stable

Nom du 2ème EILA

Diagnostic de rage par la technique d’isolement viral sur culture cellulaire (test référencé par

l’OIE)

Cet EILA est-il réalisé sous accréditation "17043"?

Non

Nombre de laboratoires participants à cet EILA

27

Nombre de laboratoires agréés participants (Na) à cet EILA

0

Le LNR a-t-il participé à cet EILA?

Oui

Nombre de laboratoires participants à cet EILA, en cours de demande d'agrément

0

Nombre d'autres laboratoires participants à cet EILA

0

10

Nombre de laboratoires ayant obtenu des résultats défavorables lors de cet EILA

4

Nombre de laboratoires agréés non conformes (Nc) lors de cet EILA

0

Taux de non conformités Nc/Na lors de cet EILA

0 %

Evolution du réseau de cet EILA dans le temps

Stable

Nom du 3ème EILA

PCR conventionnelle


Non


33


0


Oui


0


0

11


3


0


0/33 = 0 %


Stable

Nom du 4ème EILA

PCR temps réel


Non


26


0


Oui


0


0

12


2


0


0 %


Stable

Nom du 5ème EILA

Sérologie rage chiens et chats


Non


68


61


Oui


7


0

13


4


4


4/61 = 7 %

Nature des non conformités (limiter aux laboratoires agréés) de cet EILA

Stable

Gestion des non conformités (limiter aux laboratoires agréés) de cet EILA: actions

mises en œuvre pour l'identification des causes et des mesures correctives

Propositions d'assistance technique (formation sur place ou au laboratoire)

Suivi de décisions sur l'agrément pour cet EILA

Sans objet


Stable

Nom (s) et nombre(s) d'EILA que vous prévoyez d'organiser au cours de l’année 2016

6 EILA seront organisés l'an prochain, les 5 de l'année écoulée et un supplémentaire sur la

détection de la tétracycline dans les dents de renards qui est organisé tous les 2 ans.

Précisez le nombre d'EIL (hors EILA - dont EILV en lien avec méthodes en cours de

validation telles que précisées dans le paragraphe 1) organisés par le LNR au cours

de l’année

0

Précisez le nombre d'EIL (hors EILA) que vous prévoyez d'organiser au cours de

l’année 2016

0

14

6.2. Formation, organisation d'ateliers, accueil de stagiaires

Nombre de journées d'échange et de restitution rassemblant les laboratoires agréés

du réseau, organisées dans l'année

0

Nombre de sessions de formation des personnels des laboratoires agréés aux

méthodes utilisées pour les contrôles officiels, organisées dans l'année

7

Détaillez ici ces activités et indiquez la durée moyenne des sessions et le nombre de

participants par session

- Test FAVN : 7 participants, 5 jours de formation en moyenne par participant sauf 1 participant de longue durée (2 mois) sur l'ensemble des techniques de sérologie rage. - Sérologie rage sur papier filtre : 13 participants, 5 jours de formation - Biologie moléculaire : 2 participants, 5 jours de formation en moyenne par participant. - Diagnostic de rage : 2 participants, 5 jours de formation en moyenne par participant.

6.3. EILA auxquels le LNR a participé dans l'année

Détaillez les EILA auxquels le LNR a participé dans l'année, dans le cadre : National;

UE ( EILA organisé par le LRUE); International

5 EILA, tous dans le cadre LRUE: - Diagnostic de la rage par le test d’immunofluorescence (test référencé par l’OIE) - Diagnostic de rage par la technique d’isolement viral sur culture cellulaire (test référencé par l’OIE) - PCR conventionnelle - PCR temps réel - Sérologie rage chiens et chats

7. Participation aux activités de surveillance

7.1 PS/PC

Existe-t-il un ou plusieurs PS/PC élaboré(s) par l'autorité sanitaire dans le champ du

LNR?

Sans objet

15

7.2 Activités de surveillance hors PS/PC

7.2.1 Dispositif(s) hors PS/PC

Indiquer si le LNR est intégré à un (ou des) dispositif(s) de surveillance (hors PS/PC) ?

Oui

En dehors du dispositif PS/PC de la DGAl préciser si le LNR est intégré à un autre

dispositif (Résapath, Salmonella, Resabeille, ...)

Réseau de surveillance de la rage

7.2.2 Gestionnaire du dispositif

Indiquer qui est le gestionnaire de ce dispositif de surveillance

DGAl

7.2.3 unités intégrées dans le dispositif

Préciser si d'autres unités/entités de l'agence sont intégrées dans ce dispositif à vos

cotés

Non

7.2.4 Les partenaires et acteurs de ce dispositif de surveillance

Sont acteurs ou partenaires de ce dispositif (plusieurs réponses possibles) :

Le réseau de laboratoires du LNR

7.2.5 Modalités de surveillance

Préciser si ce dispositif repose (plusieurs réponses possibles) :

Sur des modalités de surveillance événementielles (notification de cas par des acteurs de

terrain)

16

8. Activités de recherche en lien avec l’activité de référence

8.1. Recherches méthodologiques pour la référence

Détaillez ici les recherches méthodologiques que vous avez réalisées dans l'année :

objectifs, partenariats, apports du LNR, projets retenus dans le cadre d'appels à

projets...

- FP7-PREDEMICS (Preparedness, Prediction and Prevention of Emerging Zoonotic Viruses with Pandemic Potential using Multidisciplinary Approach (2011-2016): l'ANSES est un partenaire de ce projet et est impliqué dans deux workpackages en étroite collaboration avec l'Institut Pasteur de Paris. Le premier workpackage consiste à caractériser génétiquement les souches de virus rabiques des chauves-souris positives enregistrées en France depuis 1989. Malgré le fait que l'espèce virale bat lyssavirus 1 (EBLV-1) est très répandue en Europe, on en sait peu sur son histoire évolutive. La plupart de ces isolats sont trouvés sur des sérotines (Eptesicus serotinus), ce qui suggère cette espèce comme hôte principal. L'objectif est de procéder à une analyse du génome complet du virus pour étudier les pressions de sélection, les taux de substitution de nucléotides, l'âge de la diversité génétique, la répartition géographique de la population. 79 isolats d' EBLV ont été sélectionnés, l'ARN extrait. La caractérisation génétique des isolats est toujours en cours. Les trois dernièrs EBLV-1 cas enregistrés en 2014 en France par le laboratoire ont été ajoutés à l'étude en décembre 2014. Le NGS est maintenant en cours pour ces trois derniers cas. Les séquences générées ont été analysées pour toutes les autres souches testées, les séquences consensus générées sont satisfaisantes et peuvent être analysées. Le deuxième workpackage consiste à étudier l'évolution des souches de virus canins et vulpins sur les renards et les chiens dans des essais expérimentaux effectués sur des animaux en cage. Le chien reste le réservoir et le vecteur principal de l'infection de la rage chez l'homme, et, sans doute aussi, pour la transmission du virus entre espèces. Cependant, les mécanismes moléculaires de base impliqués dans le processus d'adaptation de l'hôte sont mal compris. Le virus canin dont un variant génétique est répandu chez le renard et le chien viverrin fournit un modèle naturel et expérimentalement reproductible de l'adaptation. Des passages expérimentaux homologues et hétérologues sont en cours chez le chien et le renard en utilisant divers lyssavirus sauvage isolats spécifiquement adaptés (souche renard renards; souche de renard pour chiens; souche chien à chiens; souche chien à renards). Ces essais ont été lancés en septembre 2012 dans nos installations expérimentales. En 2014, cinq renards et 7 chiens ont été inoculés avec une souche de chien isolé en Tunisie et sept renards et quatre chiens avec une souche de renard isolé en France. - Etude de la caractérisation génétique, à l’aide de la technique NGS, des trois vaccins vétérinaires actuellement utilisés dans le cadre de la vaccination orale des renards. Collaboration avec trois Laboratoires Nationaux de Référence (Italie, Lettonie, Lithuanie), l’Institut Vétérinaire et alimentaire de Zvolen (République Slovaque), l’Institut de recherche vétérinaire à Brno (République Tchèque) et la Faculté de Pharmacie (République Tchèque). Cette étude a fait l’objet d’une publication dans un journal scientifique international à comité de lecture (F. Cliquet, E. Picard-Meyer et al., 2015, PLoS ONE).

17

8.2. Recherches associées

Détaillez ici les recherches associées auxquelles vous avez participé dans l'année:

participations à des études cliniques, études d'incidences, modèles d'infections

expérimentales, études toxicologiques, essais vaccinaux...

Sans objet

9. Relations avec le CNR

Existence d'un CNR

Oui

Intitulé du CNR

CNR Rage

Organisme porteur du CNR

Institut Pasteur Paris

Collaboration dans le cadre de la surveillance, détailler:

Le CNR reçoit les prélèvements à l'origine de contamination humaine pour diagnostic de

rage

Collaboration dans le cadre de projets de recherche, détailler:

Projet Predemics (voir paragraphe 8.1)

Autres collaborations, le cas échéant détailler:

Sans objet

10. Autres mandats

Le LNR détient-il d'autres mandats de référence dans le même domaine de

compétences

Oui

18

Précisez :

Laboratoire de référence de l'OIE Centre Collaborateur de l'OMS LRUE sérologie rage LRUE rage

19

Annexes

a) Publications professionnelles : 0

b) Publications scientifiques internationales : 6

Cliquet F., Picard-Meyer E., Mojzis M., Dirbakova Z., Muizniece Z., Jaceviciene I., Mutinelli F., Matulova M., Frolichova J., Rychlik I. and Celer V.-In-depth characterization of live vaccines used in Europe for oral rabies vaccination of wildlife. PLoS One, 2015, 10, n°10, e0141537. Picard-Meyer E., Peytavin de Garam C., Schereffer J.L., Marchal C., Robardet E. and Cliquet F.- Cross-platform evaluation of commercial real-time SYBR green RT-PCR kits for sensitive and rapid detection of European bat lyssavirus type 1. Biomed Res. Int., 2015, 18 p. Picard-Meyer E., Moutou F., Croyère A., Rosières X. et Cliquet F.- Risques d’introduction de maladies exotiques liés à l’importation de chauves-souris et de leurs produits. Bull Epidémiol Santé Anim - Alimentation, 2015, n°66, pp 40-43. Servat A.,Dacheux L. , Picard-Meyer E. , Rosinska M., Robardet E. , Bourhy H. and Cliquet F.- Bilan de la surveillance de la rage animale en France : trois cas détectés sur des sérotines communes en 2014. Bull. Epidémiol. Santé Anim. - Alimentation, 2015, n°71, pp 88-91. Servat A., Herr J., Picard-Meyer E., Schley L., Harbusch C., Michaux C., Pir J., Robardet E., Engel E. and Cliquet F.- First Isolation of a rabid bat Infected with European Bat Lyssavirus in Luxembourg. Zoon. Public Health, 2015, 62, pp 7-10. Servat A., Kempff S., Brogat V., Litaize E., Schereffer J.L. and Cliquet F.- A step forward in the quality control testing of inactivated rabies vaccines — Extensive evaluation of European vaccines by using alternative methods to the in vivo potency tests. ATLA, 2015, 43, pp 19-27.

c) Communications nationales : 3 Cliquet F.- What protocol in a dog vaccination campaign? MEEREB - Middle East and Eastern Europe Rabies Expert Bureau Meeting, Lyon, 7-9 April 2015. Picard-Meyer E., Robardet E., Servat A. et Cliquet F.- Bilan des 24 ans de surveillance évènementielle de la rage des chauves-souris en France.- Journées scientifiques des laboratoires, Anses Maisons-Alfort, 18 novembre 2015. Rizzo F. et Cliquet F.- Accréditation des techniques de diagnostic de rage au Laboratoire de la rage et de la faune sauvage de Nancy. Rencontres Francophones sur la Qualité et la Mesure (RFQM ), Angers, 21-24 avril 2015.

d) Communications internationales : 13 Cliquet F., Niin E., Mutinelli F., Robardet E. and de Benedictis P.- Success of oral vaccination programs against rabies in Europe: examples of recent rabies elimination in Italy and Estonia. International Veterinary Congress, Moscow, Russia, 22-24 April 2015. Cliquet F., Aubert M. and Brochier B.- First operational use of V-RG in Europe. 26th Rabies in the Americas meeting (RITA), Fort Collins, Colorado, October 4-8, 2015. Cliquet F.- La rage en Afrique du Nord : contexte scientifique, épidémiologie et état des lieux. RECOMSA Rabies Communication Seminar, Tunis, Tunisa, 4-5 November 2015.

20

Cliquet F.- Dog rabies control vaccination of dogs, Institut Pasteur International Workshop on Surveillance and Control of Rabies, Phnom Penh, Combodia, 27 October - 7 November 2015. Cliquet F.- La rage canine : Epidémiologie et méthodes de contrôle. 2ème Journée Scientifique de l’Institut Pasteur d’Algérie. Alger, Algérie, 17 décembre 2015. Picard-Meyer E., Peytavin de Garam C., Marchal C., Robardet E. and Cliquet F.- Comparison of different real time PCR methods: Evaluation of six commercial TaqMan RT-PCR kits for sensitive and rapid detection of rabies virus. 7th Workshop for Rabies, Zagreb, Croatia, 27-28 May 2015. Picard-Meyer E.- Genetic characterization of rabies vaccine strains used in Europe for oral vaccination of wildlife. Annual meeting of the Veterinary batch release network, Brussels, Belgium, 5 June 2015. Robardet E., Rieder J., Demerson J.M. and Cliquet F.- Inter-laboratory comparison test for tetracycline determination in fox teeth. 7th Workshop for Rabies, Zagreb, Croatia, 27-28 May 2015. Robardet E., Rieder J., Servat A., Picard-Meyer E. and Cliquet F.- Inter-laboratory test for rabies diagnosis 2014. 7th Workshop for Rabies, Zagreb, Croatia, 27-28 May 2015. Robardet E., Picard-Meyer E., Dobrostana M., Jaceviciene I., Mähar K., Muizniece Z., Pridotkas G., Masiulis M., Niin E., Olsevskis E. and Cliquet F.- Control and elimination of rabies in the Baltic states. 26th Rabies in the Americas meeting (RITA), Fort Collins, Colorado, 4-8 October 2015. Robardet E. and Cliquet F.- Experience from an EU-Ref lab: mandate, responsibilities, challenges in disease diagnostic and networking. Workshop 5 on Veterinary Laboratory Systems and Policy, Vienna, Austria, 14 October 2015. Robardet E. and Cliquet F.- Performance evaluation of laboratories in rabies diagnostic test: which technique(s) lead to reliable results in practice ? Rabies WHO Collaborating Centres Meeting. Geneva, 9 December 2015. Servat A., Kempff S., Brogat V., Litaize E., Schereffer J.L. and Cliquet F.- Potency determination of inactivated rabies vaccines using a serological potency assay based on FAVNt seroneutralisation technique The consistency approach and alternative methods: Towards non-animal-based testing in vaccine development and QC. IABS Conference, Egmond aan Zee, The Netherlands, September 16-18, 2015.

e) Autres : 4

Cliquet F. and Robardet E.- Proficiency test report. Inter-laboratory test for rabies diagnosis. Anses

Nancy EURL for Rabies Report. Anses Nancy EURL, Malzéville, 2015, 48 p.

Cliquet F. and Wasniewski M.- The Fluorescent Antibody Virus Neutralization test In: Rupprecht C, Nagarajan, T., editors. Current laboratory techniques in rabies diagnosis, research and prevention. Academic Press, San Diego, 2015, pp. 217-231.

21

Servat A. and Cliquet F.- Mouse potency testing of rabies vaccines. In “Current laboratory techniques in rabies diagnosis, research and prevention” Rupprecht C.E. and Nagarajan T. Eds.,. Academic Press, San Diego, 2015, 2, pp 269-279. Servat A., Picard-Meyer E. et Cliquet F.- Programme d'épidémiosurveillance des infections à lyssavirus chez les chiroptères. Bulletin 2014. Rapport Anses - Laboratoire de la rage et de la faune sauvage de Nancy, 2015, pp 1-17.

Rapport annuel d'activité, année 2015 Laboratoire … · (y compris pour le contrôle de...

Documents

Transcript of Rapport annuel d'activité, année 2015 Laboratoire … · (y compris pour le contrôle de...