Proyecto Evaluación del Componente Faunístico en Dos Ecosistemas Tropicales 2009-2010
description
Transcript of Proyecto Evaluación del Componente Faunístico en Dos Ecosistemas Tropicales 2009-2010
GVI Amazona Ecuador
Proyecto Evaluación del Componente Faunístico en Dos Ecosistemas Tropicales
Informe bajo la Autorización 11-IC-FAU/FLO-DPN/MA 2009-2010
2
GVI Amazon, Ecuador/Proyecto Evaluación del Componente Faunístico en Dos Ecosistemas Tropicales.
Informe bajo la Autorización 11-IC-FAU/FLO-DPN/MA 2009 - 2010 `
Elaborado por:
Andrew Whitworth – Gerente de Campo 2009 Chris Beirne – Gerente de Campo 2010 Oliver Burdekin – Asistente de Campo
y
Karina Berg – Directora de GVI Amazon en Ecuador
GVI Ecuador/ Conservación del Bosque Lluvioso y Desarrollo de la Comunidad Dirección: Casilla Postal 17-07-8832
Quito, Ecuador Email: [email protected]
Página Web: http://www.gvi.co.uk y http://www.gviusa.com
Traducido por:
Germania Estevez
3
Indice
1 Lista de Figuras ....................................................................................................................... 4
2 Lista de Tablas ......................................................................................................................... 4
3 Lista de Apéndices .................................................................................................................. 4
4 Resumen Ejecutivo .................................................................................................................. 5
5 Duración de cada fase de las expediciones ........................................................................... 5
6 Introducción ............................................................................................................................. 6
7 Actualizaciones del Proyecto .................................................................................................. 9
7.1 Redes de Neblina ............................................................................................................. 9
Introduccion ............................................................................................................................... 9
Métodos................................................................................................................................... 11
Resultados............................................................................................................................... 12
Discusión ................................................................................................................................. 14
Trabajo Futuro ......................................................................................................................... 15
7.2 Mapeo de la Avifauna de la Carretera............................................................................ 16
Introducción ............................................................................................................................. 16
Métodos................................................................................................................................... 16
Resultados............................................................................................................................... 17
Discusión ................................................................................................................................. 17
7.3 Confiabilidad de los Voluntarios ................................................................................... 20
Introducción ............................................................................................................................. 20
Métodos................................................................................................................................... 21
Resultados............................................................................................................................... 22
Discusión ................................................................................................................................. 27
7.4 Mamíferos ....................................................................................................................... 28
Introducción ............................................................................................................................. 28
Métodos................................................................................................................................... 28
7.5 Anfibios y Reptiles ........................................................................................................ 29
Introduccion ............................................................................................................................. 29
Métodos................................................................................................................................... 31
Transectos de Encuentros Visuales ......................................................................................... 31
Resultados............................................................................................................................... 32
Discusión ................................................................................................................................. 33
7.6 Mariposas ....................................................................................................................... 34
Introducción ............................................................................................................................. 34
Métodos................................................................................................................................... 35
Resultados............................................................................................................................... 36
Discusión ................................................................................................................................. 37
7.7 Mapeo de Vegetación y Condiciones del Hábitat ........................................................ 38
7.8 Mapeo con GPS .............................................................................................................. 38
7.9 Bénticos .......................................................................................................................... 40
8 Conclusiones y Trabajo Futuro ............................................................................................. 40
Apéndice A .................................................................................................................................... 42
Apéndice B .................................................................................................................................... 46
Apéndice C .................................................................................................................................... 52
Apéndice D .................................................................................................................................... 59
4
1 Lista de Figuras Figura 1 - Mapa del Ecuador, indicando la localización del Campamento de GVI en la Reserva Yachana.
Figura 2 - Ubicación de los puntos donde se pusieron cada una de las redes de neblina. Los puntos en rosado
representan las áreas ―menos alteradas‖ de La Laguna y Frontier, mientras que los puntos verdes representan las áreas
―más alteradas‖ de La Cascada y Ficus. Los círculos azules representan los sitios que requieren separación para
asegurar que las localidades son independientes, mencionado en Barlow y Pérez (2004).
Figura 3 - Posición y número de individuos observados en la carretera que corta en dos a la Reserva Yachana. El
orden y dirección de los transectos en la Fase 094 fue diseñada así para evitar parcialidad. Adicionalmente, mientras los
tiempos originales de colección variaron en la Fase 092 y 093, durante la Fase 094 los datos fueron colectados
exclusivamente entre las 8:00 am o 14:30 pm
Figura 4 - Mapa de la Reserva Yachana y la localización de los sitios de monitoreo de las Pihas (Lipaugus vociferans).
(marcados con puntos rojos).
Figura 5 - Patrones de canto para el ave #1 por ambos observadores por cada día.
Figura 6 - Patrones de canto para el ave #2 por ambos observadores por cada día.
Figura 7 - Patrones de canto para el ave #3 por ambos observadores por cada día.
Figura 8 - Distribución de mariposas capturadas en 093 y 094, agrupadas por tribu y subtribu.
Figura 9 - PCA lote de muestreo de mariposas, las variables ambientales están (indicadas en rojo) y los sitios de
muestreo (en círculos). Las tribus con menos de tres individuos fueron eliminados de la representación gráfica, por esta
razón se eliminó a Coeini, Eurybiini, Euselasiini y Mesosemiini.
Figura 10 - Mapa de la Reserva Yachana indicando los senderos, riachuelos, el Campamento Base de GVI, la carretera
que corta a la Reserva en dos y las fronteras de la Reserva.
2 Lista de Tablas Tabla 1 - Resumen de la información representativa de los mapas de vegetación efectuados para cada sitio donde se
abrieron las redes de neblina.
Tabla 2 - Resumen de la información colectada con redes de neblina en la Fase 101.
Tabla 3 - de la información colectada con redes de neblina en la Fase 094.
Tabla 4 - La columna del ―gran total‖ incluye a los individuos registrados en todas las 29 horas de caminata realizadas en
las Fases 092, 093 y 094.
Tabla 5 - Las siete familias más observadas (aves/hora) divididos por Fase. Fases 092, 093 y 094 representan 60, 50,
35 personas/horas de búsqueda respectivamente.
Tabla 6 - Porcentaje de aciertos entre dos observadores por cada sesión, en base al número de cantos por minuto.
Tabla 7 - Porcentaje de aciertos entre los dos observadores por cada sesión.
Tabla 8 - Detalle de las condiciones climáticas, el número de observadores que grababan y cualquier acción tomada.
Tabla 9 - Número total de individuos encontrados en las trampas pitfall durante la duración del proyecto
Tabla 10 - Número total de individuos encontrados por investigaciones de encuentros visuales durante la duración del
proyecto.
Tabla 11 - Índice de Diversidad de Simpson para los 12 sitios donde se coloco las 12 trampas pitfall . Son resultados
preliminares. P= bosque primario, S=hábitat secundario.
Tabla 12 - Índice de Diversidad de Simpson para los 10 transectos donde se efectuaron los encuentros visuales,
basados en resultados preliminares. P= bosque primario, S=hábitat secundario.
3 Lista de Apéndices Apéndice A - Lista de avistamientos incidentales y especies de interés.
Apéndice B - Identificaciones de las fotos de las especies del Apéndice A.
Apéndice C - Lista de las referencias.
Apéndice D - Lista de las especies de la Reserva.
5
4 Resumen Ejecutivo
Este informe compila el trabajo que las expediciones de Global Vision International (GVI),
para la Conservación del Bosque Lluvioso y Desarrollo de la Comunidad realizan en la en la
Reserva Yachana ubicada en la provincia de Napo, en la Región Amazónica del Ecuador,
las cuales se llevan a cabo mediante el patrocinio de la Fundación Yachana. Durante las
fases 092 a 101 GVI realizó lo siguiente:
Añadió 47 nuevas especies a la lista de especies de la Reserva, la cuales
corresponden a: 12 especies de aves, 7 de reptiles, 10 de escarabajos peloteros, 15 de
mariposas, 1 mamífero, 1 anfibio y 1 araña. (Ver el Apéndice D).
Inició un nuevo proyecto de aves evaluando el efecto del cambio de hábitat en las
comunidades de aves del sotobosque.
Colecto abundantes datos para el programa de investigación de anfibios y reptiles
utilizando trampas pitfall y encuentros visuales, para evaluar el efecto del cambio de
hábitat en las comunidades de herpetofauna.
Realizó un proyecto investigando los efectos de la alteración que produce la carretera
sobre las comunidades de mariposas.
Completó un proyecto investigando el uso de voluntarios – no especialistas para valorar
los patrones de canto de las Pihas Gritonas (Lipaugus vociferans).
Acogió con mucho gusto a estudiantes y a varios estudiantes graduados del Colegio
Técnico Yachana, quienes realizaron pasantías uniéndose a la expedición para
aprender sobre técnicas de investigación biológica y darse cuenta de la importancia de
conservar y proteger esta área de bosque.
5 Duración de cada fase de las expediciones
Fase 101: Desde el 8 de Enero al 19 de Marzo del 2010
Fase 094: Desde el 2 de Octubre al 11 de Diciembre del 2009
Fase 093: Desde el 26 de Junio al 4 de Septiembre del 2009
Fase 092: Desde el 3 de Abril al 12 de Junio del 2009
6
6 Introducción
Las expediciones para la Conservación del Bosque Lluvioso y Desarrollo de la Comunidad
desarrolladas por Global Vision International (GVI) están asentadas en la Reserva Yachana,
provincia de Napo, (0° 50' 45.47" S. 77° 13' 43.65" W entre los 300 a 350 msnm) en la
región amazónica del Ecuador (Figura 1). La Reserva es legalmente designada como un
Bosque Protector de aproximadamente 1000 hectáreas, donde predomina el bosque
primario bajo, también algunas plantaciones abandonadas de cacao y café, bosque
ripariano, bosque en regeneración y una carretera. La Reserva Yachana pertenece y es
manejada por la Fundación Yachana. Está rodeada por extensas áreas de pastizales,
fincas de pequeñas plantaciones de cacao y bosque primario alterado. La carretera dentro
de la Reserva Yachana es larga, de tierra y piedras pequeñas la cual divide a la reserva en
dos localizando al bosque primario hacia el norte y las plantaciones abandonadas de cacao
y pastizales hacia el sur.
Figura 1- Mapa del Ecuador, indicando la localización del Campamento de GVI en la Reserva Yachana
GVI Amazon
Rio Napo, Napo Province
7
La Fundación Yachana se dedica a encontrar soluciones sostenibles a los problemas que
aquejan a la región Amazónica Ecuatoriana trabajando con comunidades que habitan en el
bosque para mejorar su educación, desarrollar a la comunidad en base a cuidados médicos,
establecer prácticas de agricultura sostenible, proveer alternativas económicas y amigables
con el medio ambiente y conservar el bosque. La Reserva Yachana es el resultado de los
esfuerzos de la fundación para comprar pedazos de tierra con el propósito de conservarlos.
La Fundación Yachana está desarrollando un plan a largo plazo de manejo sostenible para
la reserva en acuerdo con la Unión Internacional para la Conservación de la Naturaleza
(IUCN) para proteger el bosque bajo directrices emanadas por el Ministerio del Ambiente del
Ecuador.
Uno de los principales roles de GVI en la reserva es desarrollar el plan de manejo, el cual
incluye la determinación de las fronteras de la reserva; realizar la línea base para
determinar la biodiversidad presente en la reserva, apoyar con información a los visitantes y
desarrollar un centro de investigación.
GVI también trabaja estrechamente con el Colegio Técnico Yachana, el cual constituye la
única posibilidad de educarse para los estudiantes de las áreas cercanas de la región,
también establecido por la Fundación Yachana. El colegio provee a los estudiantes una
educación significativa y experiencia práctica en prácticas agrícolas sostenibles, crianza de
animales, conservación, ecoturismo y operación de pequeños negocios. Como parte de su
programa de aprendizaje experimental los estudiantes hacen uso de la Reserva Yachana y
la presencia de GVI en ella constituye una herramienta de inmenso valor educativo. Como
parte del currículo en las materias de conservación, los estudiantes visitan la reserva y
reciben de manos de GVI entrenamiento en metodologías de investigación, también se les
permite familiarizarse con sistemas ecológicos y se les explica sobre la necesidad de
conservar una área protegida. De forma rotativa los estudiantes pasan un tiempo en la
reserva donde ellos participan de las actividades cotidianas de investigación y reciben
clases de Inglés conversacional de parte de los voluntarios de GVI.
GVI colabora con el Museo Ecuatoriano de Ciencias Naturales, (MECN) el cual provee de
asistencia técnica en la investigación de campo y desarrollo del proyecto. El museo alberga
la información y dirige la investigación sobre la presencia y distribución de especies de flora
y fauna a través del Ecuador. Los datos y especímenes colectados por GVI se entregan al
MECN, quienes verifican los datos que se han tomado en el campo la información para
validarla y de esta manera pueda ser utilizada a nivel nacional e internacional.
8
Los científicos del MECN son invitados continuamente a la Reserva Yachana para entrenar
y educar en el campo a los estudiantes del Colegio Técnico Yachana y al personal de GVI,
también para explorar nuevas oportunidades de investigación, que sin su presencia sería
muy difícil de hacerla. En enero del 2010 GVI y el MECN participaron en un taller en las
instalaciones del MECN en Quito para discutir el trabajo que estaba realizando GVI en la
Reserva Yachana.
Los objetivos de la investigación de GVI en la reserva no sólo son los de obtener un
inventario de especies reconocido para la Reserva Yachana sino también colectar datos
validos para crear un plan de manejo y para publicarlos. En colaboración con todos los
socios locales GVI enfoca su investigación en contestar interrogantes ecológicas
relacionadas a la conservación, con esto en mente algunas metas claves han sido
identificadas.
Llevar a cabo proyectos a largo plazo de investigación biológica y de conservación
enfocándose en la evaluación de los componentes de la fauna en los dos
ecosistemas.
Catalogar la diversidad de especies en la Reserva Yachana en relación a la
diversidad regional. Ver Apéndice D.
Monitorear la integridad biológica dentro de la Reserva Yachana y en el área
circundante.
Publicación de los hallazgos científicos en literatura científica especializada.
Atender solicitudes de investigadores visitantes y colaboradores académicos.
Identificar especies o subespecies endémicas biogeográficas o regionales.
Identificar especies que están incluidas dentro de la IUCN o en los apéndices de la
Convención de Tráfico Internacional de Especies en Peligro de Flora y Fauna
Silvestre (CITES). Ver Apéndices A & B.
Identificar especies claves importantes para la función del ecosistema.
Identificar nuevas especies, subespecies y su rango de extensión.
Identificar especies carismáticas que podrían darle un valor añadido a la Reserva
Yachana para promoverla entre los visitantes.
Para conseguir los objetivos claves, voluntarios participan por cinco o diez semanas
de cada fase, los cuales son entrenados por el personal de GVI para llevar a cabo la
investigación en beneficio de los socios locales.
9
Para lograr estos objetivos clave, voluntarios, entrenado por el personal de GVI, participan
para cinco o diez semanas de cada fase y apoyan en las investigaciones que GVI lleva a
cabo en la reserva en nombre de los socios locales y su trabajo en curso. Este informe
resume la investigación científica llevada a cabo durante el año pasado y bajo las fechas
que nuestro permiso de investigación científica rige.
7 Actualizaciones del Proyecto
7.1 Redes de Neblina
Introduccion
Debido a la forma en que las poblaciones humanas crecen se hace necesario un mejor
entendimiento del cambio antropogénico para comprender la conservación del mundo
natural. El hábitat perdido es indudablemente una de las más grandes amenazas que
enfrenta la biodiversidad del bosque tropical (Hawes et al. 2008), con más de la mitad del
bosque tropical cerca del dosel (definido como cubierta de la corona del árbol que excede el
60%) ya casi ha sido removido para darle otros usos (Wright 2005). A pesar de la
deforestación que alcanza niveles alarmantes, el 15% de la tierra deforestada en los
noventas ha sido remplazada por la sucesión secundaria natural (Wright 2005). Esta
expansión a gran escala de los ambientes secundarios podría tener importantes
implicaciones a largo plazo para la conservación de la vida silvestre (Faria et al, 2007). La
cobertura de plantas no nativas y nativas en regeneración crecería probablemente más, en
un futuro cercano debido a la inversión privada en proyectos que secuestran carbón en los
trópicos e incrementan el interés en los bio combustibles y en la madera (Barlow et al.
2006).
Siendo optimistas muchos estudios concluyen que esta expansión del bosque secundario
contrarrestaría la perdida de la biodiversidad a nivel mundial a través de la destrucción del
hábitat primario (Wright 2005; Wright and Muller–Landau 2006). Afirmando que, los retrasos
observados a través del tiempo entre la destrucción del hábitat y las extinciones de especies
son de suficiente magnitud para permitir que el bosque secundario madure y se regenere
dentro de un hábitat adecuado (Brooks et al; 2002). Dunn (2004) afirma que la
regeneración de los bosques secundarios tropicales se recobraría adecuadamente entre los
20 a 40 años hasta recobrar la diversidad de especies de fauna pero tendrían tres veces
menos especies que los bosques originales.
10
La composición de las comunidades de las especies de flora y fauna a menudo difiere entre
los hábitats primarios y secundarios (Blake and Loiselle 2000). El valor de la regeneración
de los bosques secundarios es dependiente de las especies. Hay un creciente consenso
existente entre la perdida de evidencia empírica para apoyar las teorías de que la
regeneración de los hábitats alterados será suficiente para conservar la mayoría de las
especies del bosque en el futuro (Gardner et al. 2007). Indudablemente, es necesario
investigar más antes de que se pueda establecer sin equivocación el valor real que tiene un
bosque de regeneración secundaria.
No existe un consenso entre las muchas investigaciones que estudian los impactos que
causa el cambio de hábitat sobre las comunidades de aves. A pesar de que las aves son el
taxón más estudiado y entendido en el Neotrópico, una reciente revisión de literatura
encontró que antes del 2008, sólo 17 estudios tomaban en cuenta el valor que tiene el
bosque secundario para las aves tropicales (Barlow et al. 2006). La mayoría de estudios
llevan a datos que concluyen que los bosques secundarios pueden albergar a su
equivalente o a niveles más altos de la riqueza de especies comparados con el bosque
primario o con un bosque relativamente no alterado (Barlow et al, 2006). A pesar de estos
valederos resultados, hay muchas interrogantes con estos estudios existentes, los cuales
arrojan una conclusión muy fuerte sobre el valor del bosque secundario para las aves
neotropicales, la cual es imposible de determinar (Gardner et al. 2006). Por ejemplo, en
muchos estudios se atribuye que la alta riqueza de especies se debe a la cercanía muy
próxima del hábitat primario resultando que las especies primarias han sido transitoriamente
registradas como del hábitat secundario. Algunos estudios también pierden una buena línea
base del bosque primario con el cual comparar sus resultados (Barlow et al. 2006).
Los objetivos de este año fueron tratar los problemas subrayados por Gardner et al (2007),
para comparar las comunidades de aves del sotobosque en parches de bosque alterado de
la Reserva Yachana con los parches de bosque relativamente no alterado.
Lotes de Estudio
Para poner las redes se establecieron cuatro localidades alrededor de la reserva, dos en
áreas relativamente alteradas y dos en áreas relativamente no alteradas (Figura 2). Las
localidades escogidas para poner las redes estaban separadas 500 m entre sí, como Barlow
y Pérez (2004) recomendaron basados en las recapturas de individuos marcados. Los lotes
eran espacialmente independientes apartados a 500m y las localidades estaban restringidas
a senderos dentro de la Reserva, como topográficamente el terreno es montañoso fue
imposible poner las redes en otras localidades, en las que habríamos tenido que destruir
11
grandes áreas de vegetación nativa. Los lotes fueron escogidos al azar mediante los claros
que dejan los árboles caídos, árboles en fructificación u otros factores que influyeron en los
rangos de captura.
Figura 2 - Ubicación de los puntos donde se pusieron cada una de las redes de neblina. Los puntos en rosado representan
las áreas ―menos alteradas‖ de La Laguna y Frontier, mientras que los puntos verdes representan las áreas ―más alteradas‖
de La Cascada y Ficus. Los círculos azules representan los sitios que requieren separación para asegurar que las localidades
son independientes, mencionado en Barlow y Pérez (2004).
Métodos
En el sotobosque, se utilizaron las redes de neblina para examinar la avifauna de cada uno
de los cuatro sitios escogidos dentro de la reserva. Cada sitio fue muestreado por 65 a 70
horas en la Fase 094 y más de 65 a 70 horas en la Fase 101. En cada sitio, se abrieron
cuatro redes de 12 x 2.5 m espaciadas entre 10m a 40m, como lo permitía la difícil
topografía. Todas las redes fueron revisadas en períodos de 10 o 15 minutos. Las redes
fueron abiertas entre las 6.15am hasta las 11.00am por cuatro días seguidos, se trabajó
horas o días extra si hubieron días con períodos persistentes de viento o lluvia fuerte. Las
aves capturadas fueron liberadas de las redes. Todas las aves capturadas fueron colocadas
en una bolsa de tela, para aves y llevadas a la estación de bandeo donde se las identificó
hasta especie, fueron bandeadas, pesadas, medidas y sexuadas hasta donde era posible.
Todas las aves fueron anilladas para identificarlas en caso de recapturarlas excepto los
colibríes que tienen patas extremadamente delicadas.
12
Perfil de Vegetación
Alrededor de cada localidad con las redes de neblina se fijaron transectos de 100m, cada
transecto se iniciaba a 250m del punto central de las redes de neblina y terminaba a 150m
desde el punto central de las redes y fueron espaciados uniformemente para evitar pseudo
replicación. Los transectos fueron estratificados y colocados al azar de acuerdo al hábitat y
la topografía y a lo largo de cada transecto, dos observadores independientes entre sí
hacían cinco estimaciones de las coberturas de la vegetación del dosel y del tipo dominante
de dosel fue anotado (ausente, bajo, medio y alto). Todas las Melostomataceae y
Heliconiaceae dentro de los 5m a cada lado de la línea del transecto fueron contadas.
Todos los arboles > a 30cm de DAP (Diámetro a la Altura del Pecho) fueron medidos dentro
de los 5m a cada lado de la línea del transecto. La presencia o ausencia de arboles del
genero Theobroma y plantas de café también fueron anotados.
Resultados
Perfil de Vegetación
El perfil de vegetación fue realizado inmediatamente en la siguiente semana de cada sesión
de abertura de las redes de neblina, (Tabla 1). El número de individuos de Melostomaceae
variaba de 156 (en La Cascada) a 1393 (en Ficus) y el número de individuos de
Heliconiaceae fluctuaba de 20 (en La Laguna) a 124 (en La Cascada). Los árboles de café
marcaron una gran diferencia entre los dos sitios (en La Laguna) se registró a 3230
individuos (en el Ficus). La altura dominante del dosel fue del (63.3 al 90%) en La Cascada
y Laguna mientras que en los sitios de Ficus y Frontier el dosel medio fue predominante.
Sin embargo solamente en La Cascada y Ficus se encontraron claros en sus doseles. Las
estimaciones de las coberturas del dosel no son concluyentes, en todos los sitios hay un
rango de dispersión del 42 al 53%. Los árboles más altos se localizan en La Cascada
mientras que en Frontier tiene las medidas de DAP más altos. Finalmente, doce troncos de
árboles aparecieron cortados recientemente en el Ficus lo que indica que hay una gran
alteración producida por los humanos que se meten ilegalmente a la reserva.
13
Tabla 1 - Resumen de la información representativa de los mapas de vegetación efectuados para cada sitio donde se abrieron
las redes de neblina.
Localidad Número Plantas Clase de Dosel (%) Cobertura
del Dosel (%) Los cinco árboles con DAP más alto
Notas
Melo Heli. Café Alto Medio Bajo Claro 1 2 3 4 5
Cascada 156 124 924 63.3 26.7 3.3 6.7 42 143 92 82 80 79
Ficus 1393 15 3230 23.3 56.6 13.3 6.7 51 96 90 90 86 76 12 Tocónes
Laguna 664 20 2 90 10 0 0 53 105 96 81 79 76
Frontier 812 30 6 40 53.3 6.7 0 50 128 111 106 99 89
Las más marcadas diferencias observadas entre los sitios fue la presencia de >900
individuos de café en La Cascada y Ficus con claros en la composición del dosel del 6.7%.
En comparación con La Laguna y Frontier que contienen <7 individuos de plantas de café y
tuvieron un 0% en la composición de los claros del dosel. En base a estos resultados La
Cascada y Ficus son clasificados como ―más alterados‖ y La Laguna y Frontier son
clasificados como ―menos alterados‖.
Muestreo de la Avifauna
En la Fase 101 (Tabla 2), se capturaron a 80 aves en 269 horas que estuvieron abiertas las
redes de neblina. Los individuos capturados en cada sitio variaron de 11 a 35 individuos.
Cada sitio estuvo sujeto a 66 horas y 68.3 red de muestreo. El número total de individuos
capturados en las áreas ―más alteradas‖ fue de 23 mientras que el número total de
individuos capturados en las áreas ―menos alteradas‖ fue de 57. Incluso el número de
especies capturadas en los sitios ―menos alterados‖ fue más alto que el capturado en las
áreas ―más alteradas‖. Las aves capturadas en cada una de las áreas ―más alteradas‖ del
sotobosque representan sólo cuatro hasta seis diferentes familias. Mientras que las aves
capturadas en cada una de las áreas ―menos alteradas‖ están representadas por diez hasta
once diferentes familias de aves. La eficiencia de captura está representada por el número
de individuos por red-hora, inclusive donde el número más alto en las áreas ―menos
alteradas‖ es de (0.32 y 0.52 indiv. h-1) en comparación con las áreas ―más alteradas‖ que
es de (0.18 y 0.17 indiv.h-1).
Un total de 127 aves fueron capturadas en 271 horas que estuvieron abiertas las redes de
neblina en la Fase 094, y el número de individuos capturados fluctuó en cada sitio entre 13
a 48 individuos. Cada área fue muestreada entre 64 a 69.2 horas-red. 40 individuos fue el
número de aves capturadas en las áreas ―más alteradas‖. Mientras que el número total de
individuos capturados en las áreas ―menos alteradas‖ fue de 87. El número de especies
14
capturadas en las áreas ―menos alteradas‖ fue incluso más alto que las capturadas en las
áreas ―más alteradas‖ (Tabla 3). Las aves capturadas en cada una de las áreas ―más
alteradas‖ representan solo a cinco diferentes familias de aves capturadas, mientras que las
aves capturadas en las áreas ―menos alteradas‖ representan desde nueve hasta once
diferentes familias. Las eficiencias de captura, representada por el número de individuos por
red-hora fue incluso más alto en las áreas ―menos alteradas‖ (0.56 y 0.75 indiv.h-1) en
comparación con las áreas ―más alteradas‖ (0.39 y 0.19 indiv.h-1).
Tabla 2 - Resumen de la información colectada con redes de neblina en la Fase 101
Más alteradas Menos alteradas
Total Cascada Ficus Laguna Frontier
Horas-red 67.28 66.28 68.30 67.10 269
Número de individuos 12 11 22 35 80
Individuos por hora-red 0.18 0.17 0.32 0.52 0.30
Número total de especies 8 7 15 20 30
Especies por hora-red 0.12 0.11 0.22 0.30 0.11
Número total de familias 6 4 10 11 16
Tabla 3 - Resumen de la información colectada con redes de neblina en la Fase 094
Más alteradas Menos alteradas
Total Cascada Ficus Laguna Frontier
Horas-red 69.16 68.88 69.20 64.00 271
Número de individuos 27 13 39 48 127
Individuos por hora-red 0.39 0.19 0.56 0.75 0.47
Número total de especies 14 8 17 20 33
Especies por hora-red 0.20 0.12 0.25 0.31 0.12
Número total de familias 5 5 11 9 16
La comparación directa de la información resumida con el uso de las redes de neblina de
las Fases 094 (Tabla 3) y 101 (Tabla 2) muestran que el número total de individuos
capturados por Fase ha disminuido de 127 en la Fase 094 a 80 en la Fase 101.
Previamente se anoto que hay una menor diversidad de especies y menos individuos en las
áreas ―más alteradas‖, lo que es consistente entre la Fase 094 y Fase 101.
Discusión
Perfil de Vegetación
Utilizando los métodos para mapas de vegetación, observación en el campo y consulta del
mapa; La Laguna y Frontier fueron clasificados como áreas ―menos alteradas‖ mientras que
15
La Cascada y Ficus han sido clasificadas como ―más alteradas‖. Las diferencias cruciales
parecen ser la presencia/ausencia de plantas de café y claros en el dosel; sin embargo se
necesita colectar más datos antes de que estos datos puedan ser confirmados.
Redes de Neblina en el Sotobosque
Se observaron algunas diferencias entre las áreas ―menos alteradas‖ y las ―más alteradas‖
que incluyen: al número de especies capturadas, el número de individuos capturados,
número de familias representadas y el porcentaje de individuos capturados de una familia
dada en cada sitio. Sin embargo el tamaño actual de muestra es de 207 aves, el cual es
completamente prohibitivo para cualquier análisis estadístico relevante. Las diferencias
observadas podrían deberse y no estar limitadas a; diferencias genuinas de la riqueza y
estructura de las comunidades de aves de cada área, las variaciones estaciónales en los
modelos de forrajeo de las aves, diferentes condiciones climáticas, o simplemente una
función del bajo número de aves en el grupo de datos.
La única forma para empezar a dirigir estos factores potenciales es la de incrementar el
tamaño del grupo de datos a través de muestreos repetidos en cada sitio de estudio hasta
obtener suficientes datos. Por lo que hasta ese punto cualquier conclusión seria
simplemente una especulación.
Es interesante, la comparación de datos entre la Fase 094 y la Fase 101 ya que hubo una
clara caída en el número de individuos capturados en todos los sitios. Esto pudo deberse a
las fluctuaciones del clima estacional, por efecto de conseguir alimento localmente, o la
alteración en sí, fue causada por el método de las redes de neblina. Sería interesante
observar si esta tendencia continua y como se desarrolla este proyecto en las futuras
Fases. El número de diferentes especies capturadas en cada localidad permanece
consistente lo cual podría indicar que la caída observada es de solamente el número de
individuos más no un decrecimiento de la diversidad.
Trabajo Futuro
El proyecto utilizando el método de las redes de neblina, hasta ahora desarrollado en la
reserva se centró en cuatro áreas espacialmente independientes (dos ―más alteradas‖ y dos
―menos alteradas‖). Estas áreas fueron muestreadas con las redes dos veces por día por
un período de seis meses y seguirán realizándose por los próximos seis meses y
posiblemente por un período de tiempo más largo si se nos permite continuar con esta
investigación. Los resultados nos permitirán hacer una comparación total de cómo la
16
alteración afecta a las comunidades de aves del sotobosque. Vemos que las tendencias
indican que el mayor número de aves y el de la riqueza más alta de especies se
encontraron dentro de los dos sitios de ―menor alteración‖. Esperamos que este proyecto
pueda ser suplido con un nuevo proyecto comprometido a utilizar los métodos de
investigación de conteo de puntos (en Inglés point count), para ser utilizado en conjunto con
los datos herpetológicos para que contribuyan a la valoración de múltiples taxones de las
áreas alteradas.
7.2 Mapeo de la Avifauna de la Carretera
Introducción
La carretera que cruza por la reserva es utilizada regularmente por buses y rancheras que
son el transporte público local, así como por camiones y motos que transportan a los
habitantes. Sin embargo la presencia de las carreteras producen un impacto adverso en
muchas especies de aves del sotobosque de los bosques Amazónicos (Laurance et. al.,
2004; Develey & Stouffer, 2001), algunas especies generalistas se ven favorecidas con la
presencia de áreas de hábitat abiertos que ofrecen los bordes a lo largo del bosque, tales
como las asociadas con carreteras. Aunque a veces se los describe como ―avifauna de la
basura‖ (Stotz et al., 1996), su frecuencia y abundancia puede ser un importante indicador
de la salud del hábitat.
Un transecto lineal es la forma efectiva para cuantificar la avifauna presente a lo largo de
una carretera, con un grupo establecido de observadores que caminan a paso constate el
análisis puede incorporar objetivamente las fluctuaciones de la población y de abundancia
relativa a lo largo del tiempo. Siguiendo este concepto e idea GVI tiene dos metas en este
estudio:
1) Valorar la riqueza de la avifauna, abundancia y hábitat preferidos de especies específicas
a lo largo del gradiente de la carretera.
2) Hacer continuas adiciones a la lista de especies de la reserva.
Métodos
Se registraron a las aves a lo largo de un transecto lineal de 3.600m en la carretera que
corta la Reserva Yachana. Se completaron un total de 29 horas de investigación desde que
el proyecto se inició en la Fase 092. Los equipos de investigación consistían en un
miembro experimentado de los empleados y cuatro voluntarios armados de binoculares y
una guía de campo para identificar aves. El transecto de la carretera fue marcado cada
17
20m y se lo cubría caminando en exactamente 1 Km/h. Todas las aves observadas a una
distancia menor a 25m del borde de la carretera fueron registradas. Ambos encuentros;
tanto visual como auditivo fueron anotado así como la dirección del vuelo de la ave.
Algo de la metodología fue cambiada durante la Fase 093; en lugar de dividir la carretera en
tres secciones, el orden y dirección de los transectos fue escalonado por todas partes para
evitar parcialidad. Adicionalmente los tiempos de colección de datos original cambio
durante la Fase 094 en la que se colectó exclusivamente desde las 8:00am o 2:30pm para
estandarizar los resultados venideros.
Resultados
En la Fase 094, GVI completó siete transectos en la carretera haciendo 35 persona - hora
de trabajo. Los datos dan a 275 individuos (7.9 aves/hora/persona) que representan a 23
familias y aproximadamente a 72 especies. Acumulando un total de 1293 aves agrupadas
en 30 familias que fueron registradas desde que el estudio se inició en la Fase 092.
Durante las Fases 092, 093 y 094 arrojó 10.6, 7.7 y 7.9 aves/hora, respectivamente. La
Tabla 4 resume el número de individuos registrados por familia. Icteridae, Tyrannidae y
Thraupidae que siguen siendo las más comunes en las investigaciones, mientras que
Hirundinidae y Apodidae se observaron menos que en fases previas. Siete especies
nuevas fueron añadidas a la lista de especies; la Lora de Cabeza Negra (Pionites
melanocephala), Tangará de Cuello Azul (Tangara cyanicollis), Gran Cacique (Pitangus
sulphuratus), Tangará de Magpie (Tyrannus tyrannus) y Warbler Amarillo (Dendroica
petechia).
Discusión
Lo más notable fue que menos aves fueron observadas durante las Fases 093 y 094
comparadas con la Fase 092. Esto podía deberse a los cambios del clima; como lluvias,
luminosidad o temperatura. Sobre todo los cambios en los avistamientos podrían estar
influenciados por el forrajeo de grupos de aves sociales. Por ejemplo los Icteridos Conoto
Aceituno (Psarocolius angustifrons), Arrendajo Culiamarillo (Cacicus cela) y Psittacidae
(como loras, pericos periquitos). Estas fueron las dos familias de aves más observadas en
este estudio pero menos observadas en las Fases 093 y 094 (Tabla 5). Ambos grupos
exhiben un comportamiento social y no se sienten afectados por una alteración humana
moderada. Posiblemente, un cambio en la rutina de su forrajeo basado en la disponibilidad
por conseguir comida pudo haber influido en las observaciones. Finalmente nosotros no
podemos responsabilizarnos por el cambio de habilidad de los voluntarios o miembros de
personal como factores importantes en los avistamientos de las aves.
18
Tabla 4 – La columna del ―gran total‖ incluye a los individuos registrados en todas las 29 horas de caminata realizadas en las
Fases 092, 093 y 094.
Aves Observadas/Hora y por Familia
Familia Todas las Fases Total de Individuos
Icteridae 2.28 331
Psittacidae 1.21 175
Hirundinidae 0.69 100
Apodidae 0.65 94
Ramphastidae 0.64 93
Tyrannidae 0.51 74
Thraupidae 0.51 74
Picidae 0.42 61
Corvidae 0.41 59
Bucconidae 0.34 49
Accipitridae 0.32 47
Trochilidae 0.21 30
Capitonidae 0.15 22
Tinamidae 0.10 15
Thamnophilidae 0.06 9
Falconidae 0.05 7
Cathartidae 0.05 7
Trogonidae 0.04 6
Columbidae 0.03 5
Troglodytidae 0.03 5
Nyctibiidae 0.03 5
Parulidae 0.03 4
Pipridae 0.03 4
Contingidae 0.03 4
Turdidae 0.02 3
Cuculidae 0.02 3
Dendrocolaptidae 0.01 2
Cracidae 0.01 2
Emberizidae 0.01 2
Rtodosidae 0.01 1
Total: 8.92 1293
19
Tabla 5 – Las siete familias más observadas (aves/hora) divididos por Fase.
Fases 092, 093 y 094 representan 60, 50, 35 personas/horas de búsqueda respectivamente.
Familia Fase 092 Fase 093 Fase 094 Todas las Fases
Icteridae 3.5 0.7 2.5 2.3
Psittacidae 1.5 1.4 0.5 1.2
Hirundinidae 0.5 1.3 0.1 0.7
Apodidae 1.1 0.4 0.3 0.6
Ramphastidae 0.9 0.5 0.5 0.6
Tyrannidae 0.7 0.1 0.7 0.5
Thraupidae 0.3 0.7 0.6 0.5
Un ímpetu por cambiar el punto de inicio y la dirección de los transectos durante la Fase
094 fue para evitar la potencial parcialidad en el lapso de atención del observador durante
los sesenta minutos que duraba la investigación. En otras palabras los picos de
observación a los 1700 m y entre los 600-1000 m y las depresiones a los 1400 m y 2200 m
podrían haber impactado en el interés o la pérdida de él en los observadores.
Los datos colectados durante la Fase 094 sugieren que este pudo haber sido el caso
(Figura 3); muy pocos picos y depresiones fueron observadas y solamente una desviación
de ≈10 aves/100m se encuentra entre los 1000m-1100m. Los nuevos métodos de colección
parecen ser más confiables al exponer la presencia de las aves a lo largo de los transectos.
Siete nuevas especies de aves se registraron durante la Fase 094, en este proyecto.
Figura 3 - Posición y número de individuos observados en la carretera que corta en dos a la Reserva Yachana. El orden y
dirección de los transectos en la Fase 094 fue diseñada así para evitar parcialidad. Adicionalmente, mientras los tiempos
originales de colección variaron en la Fase 092 y 093, durante la Fase 094 los datos fueron colectados exclusivamente entre
las 8:00 am o 14:30pm.
20
Los datos pueden ser extremadamente útiles para la Fundación Yachana quienes traen
turistas para visitar la reserva y potencialmente podrían tener áreas especiales en las cuales
se pueden observar aves más fácilmente, las que resultarían atractivas para los turistas que
son los que dan el dinero a la fundación para conservar la reserva.
7.3 Confiabilidad de los Voluntarios
Introducción
Estudios previos han demostrado que utilizando voluntarios no especialistas para llevar a
cabo investigaciones biológicas puede ser productivo en base a que los métodos y técnicas
utilizadas no son súper complicadas y que se les ha entrenado eficientemente (Darwall and
Dulvy, 1996; Foster-Smith and Evans, 2003; Lovell et al, 2009; Newman et al, 2003).
McLaren and Cadman (1999) actualmente, parece que utilizar voluntarios como
observadores no entrenados para monitorear cantos de aves es valioso y se encontró que
ellos pueden proveer de datos confiables. Sin embargo si hay una pequeña perdida en
publicaciones relacionadas al gran mercado de ‗voluntarios en los proyectos de
conservación‘.
Este estudio utilizo a voluntarios no especialistas para estudiar los modelos de canto de tres
machos de Pihas Gritonas en la Reserva Yachana.
Las Pihas Gritonas (Lipaugus vociferans) es una ave de canto suboscine de la familia
Cotingidae de amplia distribución a través de la Amazonia. Ellas se alimentan de frutas e
invertebrados y se las escucha frecuentemente con un distintivo y escandaloso sonido ―pee
haw‖ que es la forma de comunicarse entre los machos de leks que se han formado de
manera dispersa. Las Pihas Gritonas son aves torpes de color café por arriba y abajo que
hace un llamado escandaloso y distintivo para atraer a las hembras. La vocalización de los
machos típicamente consiste entre ninguna y tres (normalmente dos) notas guturales
introductorias de baja amplitud usualmente seguidas por una frase repetida - una alta
amplitud y tono alto ―pee haw‖ de aproximadamente un segundo de duración (Fitzsimmons
et al, 2008). Con estos llamados escandalosos el tamaño del lek puede ser relativamente
calculado y se ha indicado que podría contener a más de 30 individuos en un sólo lek. El
propósito de este estudio es valorar el uso de voluntarios no especialistas para la colección
de datos observatorios.
21
Métodos
Área de Estudio
El lek de las Pihas dentro de la reserva está localizado en un parche de bosque primario
localizado en el lado norte de la carretera que corta a la reserva en dos (Figura 4). Los
puntos de GPS de las tres aves que fueron monitoreadas pueden ser trazados en el mapa.
Figura 4 – Mapa de la Reserva Yachana y la localización de los sitios de monitoreo de las Pihas Gritonas (Lipaugus
vociferans), (marcados con puntos rojos).
Posición con GPS
Los puntos de las tres aves escogidas y sus territorios fueron marcados en el mapa
utilizando un GPS. Abajo se indican las Coordenadas de GPS para cada punto más la
distancia en metros entre cada una de las tres localidades.
Ave 1 - Lat:-0.831585 Long:-77.237804
Ave 2 - Lat:-0.831325 Long:-77.237301
Ave 3 - Lat:-0.830997 Long:-77.236908
Distancia entre los puntos 1 y 2 = 65.4 m
Distancia entre los puntos 2 y 3 = 59.2 m
Distancia entre los puntos 1 y 3 = 123.9 m
22
Monitoreo
Los datos fueron colectados por tres días, del 10 al 12 de noviembre del 2009. Esto datos
fueron precedidos por pruebas preliminares, las cuales se llevaron a cabo el 23, 26, 29 y
30 de Octubre del 2009.
Los tres machos de Pihas Gritonas escogidos para el este estudio estaban en territorios
adyacentes en el mismo lek. Los individuos fueron escogidos en base a la claridad y
facilidad para discernir sus cantos de entre sus aves vecinas, lo cual fue determinado por
los estudios piloto.
Durante los tres días en que se desarrollaron los tres períodos de tiempo de observación
auditiva, cada uno de dos horas de estudio, desde las 6:30am hasta las 8:30am, de
10:30am hasta las 12:30pm y desde las 3:30pm hasta las 5:30pm. Se utilizaron
cronómetros sincronizados, con los cuales se reportaba el tiempo de inicio de cada una de
las frases escandalosas ―pee-haw‖, hasta el próximo segundo para este estudio. Las
sílabas introductorias aisladas que no desembocaban en una frase ―pee haw‖ se ignoraron.
Los tiempos de los cantos para cada ave fueron grabados independientemente por dos
observadores y en estaciones separadas, (separados cinco metros entre si) y cerca del ave
en estudio. Para cada ave una medida de la confiabilidad del inter-observador puede ser
valorada usando las dos observaciones. A los observadores se les solicitaba sentarse para
minimizar la interferencia y tomar un mínimo de diez minutos de tiempo entre su arribo a las
estaciones de observación y antes de empezar a grabar hasta recobrarse de la agitación.
Durante este tiempo también los observadores debían verificar la localidad de sus aves y
sus cantos y seguir grabando los cantos independientemente sin comunicarse entre ellos.
Clima
Los observadores registraron las condiciones climáticas durante sus sesiones de grabación.
Ya que se les solicito anotar cualquier cambio extremo en el clima, tales como lluvia,
truenos o rayos.
Resultados
Confiabilidad del Voluntario
Una puntuación de la confiabilidad del inter-observador fue calculada para cada una de las
aves grabadas en el período de los tres días. Esto fue realizado para calcular el porcentaje
de minutos que tuvieron el mismo número de cantos grabados por ambos observadores
(Tabla 6).
23
El resultado para la ave #1 fue del 87.33%, para la ave #2 fue del 83.01% mientras que
para la ave #3 fue significativamente más bajo, el 68.96%.
Tabla 6 - Porcentaje de aciertos entre dos observadores por cada sesión, En base a número de cantos por minuto.
Día 1 Día 2 Día 3
Ave Mañana Medio día Tarde Mañana Medio día Tarde Mañana Medio día Tarde Promedio
1 80.17 85.95 96.69 75.21 91.74 99.17 71.90 92.56 92.56 87.33
2 69.42 88.43 81.82 76.03 73.55 88.43 85.95 91.74 91.74 83.01
3 87.60 26.45 87.60 26.45 60.33 94.21 88.43 69.42 80.17 68.96
Cuando miramos individualmente cada sesión y las marcadas en rojo en la tabla
observamos que para el ave número 3 en esas dos sesiones el acierto en el número de
cantos por minuto es extremadamente bajo, lo que da una correlación exacta del 26.45% en
ambos casos. Esto debería indicar que uno de los observadores en ambas de estas
sesiones fue el mismo observador y que estas fueron las dos únicas sesiones en las que él
participo.
En relación a valorar visualmente la confiabilidad de estas tendencias, se trazaron los
gráficos para indicar el número de cantos por minuto para cada ave, por cada uno de los
tres días (Ver las Figuras 5-7). Cada gráfico incluye los modelos de cantos para las tres
sesiones (mañana, medio día y tarde). Para cada uno de los observadores se trazó un
gráfico de tal manera que ambas grabaciones puedan ser visualizarse. Cuando se miran
estos gráficos parece que hay un gran acierto entre la mayoría de los inter-observadores, lo
cual apoya los resultados indicados en los porcentajes de los inter-observadores. Sin
embargo cuando se observan los porcentajes bajos de sesiones para el ave #3 (en orden
del 26.45%), podemos ver que el modelo en general es algo similar a pesar que el número
específico de aciertos sigue siendo particularmente bajo (Figura 5).
24
Figura 5 - Patrones de canto para el ave #1 por ambos observadores por cada día.
25
Figura 6 - Patrones de canto para el ave #2 por ambos observadores por cada día.
26
Figura 7 - Patrones de canto para el ave #3 por ambos observadores por cada día.
27
Cuando miramos los porcentajes de los inter-observadores por cada sesión relacionada con
el número total de cantos grabada en una sesión por cada uno de los observadores, parece
como opuesta a la de los cantos por minuto, así podemos ver que el acierto frecuentemente
se encuentra por encima del 90% (Tabla 7). Las dos sesiones que muestran un ligero
acierto considerando los cantos por minuto nos muestran ahora aciertos más altos del 90%.
Tabla 7 - Porcentaje de aciertos entre los dos observadores por cada sesión.
Clima
Los observadores registraron varios períodos de lluvia o truenos, los cuales están
resumidos en la Tabla 8. Las dos mayores connotaciones pasaron en la sesión tres de los
días uno y dos. En ambas ocasiones vientos fuertes y truenos precedieron a fuertes lluvias,
como se lo registró, lo cual produjo que ambas sesiones de grabación sean abandonadas
justo a un poco más de una hora de grabación. Esta es una medida de seguridad que debe
ser seguida debido a la alta incidencia de árboles que caen durante las lluvias fuertes en los
bosques tropicales y que causan severos daños.
Tabla 8 - Detalle de las condiciones climáticas, el número de observadores que registraban y cualquier acción tomada.
Día Sesión Duración (minutos) Clima Número de
observadores Acciones Tomadas
1 2 19, 24 Viento 1
1 3 37-42 Truenos todos
1 3 50 Vientos Fuertes todos
1 3 53 LLuvia fuerte todos Abandonado - 63 mins
2 2 80,88 Vientos Fuerte todos
2 3 22, 38 Vientos Fuertes – truenos todos
2 3 59 LLuvia fuerte todos Abandonado - 67 mins
3 1 83-98 LLuvia 5
3 2 35 LLovizna 3
3 2 72 Lluvia 4
Discusión
Los resultados de este estudio indican que si es posible utilizar a voluntarios no
especialistas para valorar modelos de los cantos de aves. El porcentaje de aciertos entre
Dia 1 Dia 2 Dia 3
Ave Mañana Medio día Tarde Mañana Medio día Tarde Mañana Medio día Tarde Promedio
1 94.39 98.25 96.97 94.34 100.00 96.43 97.13 99.50 98.82 97.31
2 97.00 99.81 62.00 99.01 97.96 97.40 95.80 80.79 94.23 91.56
3 94.24 99.78 99.65 91.99 91.45 94.87 98.85 89.08 95.00 94.99
28
los observadores fue generalmente alto si se consideran; los cantos por minuto en cada
sesión y aun el porcentaje más alto cuando se observa el número total de cantos grabados
en una sola sesión. Las dos sesiones que muestran un acierto pobre del 26.45% son las
dos únicas sesiones que fueron realizadas por el mismo observador. Las razones pueden
ser que el observador necesitó más entrenamiento para grabar cantos de aves en el punto
correcto o que el observador falló al sincronizar su cronómetro en el segundo exacto al igual
que los otros observadores. Esto resalta la importancia de la sincronización exacta y
también en la necesidad de un entrenamiento efectivo a los observadores antes de realizar
un período de este actual estudio. A pesar del bajo acierto en el número de cantos por cada
minuto, estas dos sesiones indican un porcentaje alto de aciertos si se observa el número
total de cantos a través de todas las sesiones. Esto refuerza la idea de que el observador
estuvo grabando los cantos en un punto incorrecto o no sincronizó exactamente su
cronómetro. Al mirar los gráficos para las tres aves se pueden visualizar que tan similares
son los modelos de cantos grabados entre los dos observadores. Los gráficos aparecen
muy similares y parecen mostrar los mismos modelos de canto a través de todas las tres
sesiones por los tres días. Estos resultados ponen en evidencia que si es útil usar a
voluntarios no especialistas que han sido entrenados apropiadamente y con una guía en
técnicas de investigación ecológica de cantos.
Los voluntarios son un recurso valioso en proyectos de conservación, tendencia que se
expande y que deben ser utilizados dándoles un apropiado entrenamiento especializado y
asistencia.
7.4 Mamíferos
Introducción
GVI continúa documentando la presencia de especies de mamíferos la cual se realiza
predominantemente por avistamientos incidentales o por hallazgos de sus huellas. La baja
ocurrencia de mamíferos diurnos conspicuos solamente nos permite el registro incidental,
debido a este factor las excesivas investigaciones en mamíferos no han sido lo
suficientemente productivas.
Métodos
Todas las especies de mamíferos encontradas fuera de una investigación específica de
mamíferos fueron registradas. Los avistamientos incidentales pueden tomar lugar mientras
se realiza cualquier otra investigación dentro de la reserva o durante las largas caminatas
dentro de la selva. La ocurrencia de cada uno de estos avistamientos, la incidencia, el
29
tiempo, localidad, fecha, especies y cualquier característica clave se anotan para
ingresarlas en la base de datos cuando se llega al campamento. Es importante anotar que
durante este año de observaron un gran número de huellas de animales que incluyen a
venados, agoutis, tapires y huellas de pequeños felinos, lastimosamente no hemos visto
físicamente a estos animales.
7.5 Anfibios y Reptiles
Introduccion
El cambio de hábitat es uno de los problemas claves que provoca la pérdida de especies a
nivel mundial, entiéndase como perdida de hábitat a; la deforestación, fragmentación o
deterioro (Urbina-Cardona, 2008). La rápida conversión en los Neo trópicos es
compensada por la expansión a gran escala de bosque secundario, plantaciones y
pastizales (Wright SJ, 2005; Gardner et al. 2007b). A pesar del papel dominante e
incrementado de estos hábitat degradados en el paisaje tropical hay un pequeño consenso
dentro de la comunidad científica del alcance que tiene el valor de su conservación
(Gardner et al. 2007c, Lo-Man-Hung1, et al. 2008). Wright & Muller-Landau (2006) predicen
que la futura perdida de bosque primario será compensada por la regeneración de bosque
secundario y consecuentemente sugieren que la perdida de especies debido al cambio de
hábitat puede ser prematura. Sin embargo, actualmente existe una pérdida de evidencia
empírica para apoyar la teoría de que los bosques regenerados pueden mantener
totalmente a las especies del bosque nativo (Gardner 2007c).
Dos recientes valoraciones de múltiples taxones llevados a cabo en plantaciones de cacao
cubraca en Bahía, Brasil (Pardini et al. En imprenta) y plantaciones de eucalipto del
proyecto de reforestación del Jari, en Brasil (Barlow et al. 2007) encontró que responden al
cambio estructural del hábitat para un taxón específico. Barlow et al. (2007) encontraron
que cuatro de los quince taxones analizados (árboles y lianas, aves, mariposas frugívoras y
anfibios de hojarasca) encontraron que la riqueza de especies decrece cuando la alteración
del hábitat se incrementa. Sin embargo cinco taxones (mamíferos grandes, arácnidos,
lagartijas, escarabajos peloteros y murciélagos) exhiben respuestas idiosincrásicas al
cambio de hábitat (Barlow et al. 2007). Ambos estudios concluyeron que las respuestas al
cambio estructural de hábitat serán específicas para las especies más no para un taxón
específico. El análisis de la respuesta de un taxón generalista es como esconder un nivel
bien alto de especies que responden a una alteración específica, las cuales son importantes
cuando se diseñan estrategias de conservación (Barlow et al 2007; Pardini et al. 2009).
30
Estos estudios resaltan la importancia de evaluar a múltiples taxones que sólo a las
especies específicas relacionadas con el valor de conservar los bosques secundarios y las
plantaciones.
Resumen del Problema
Se estima que los Neotropicos contienen casi el 50% de los anfibios del mundo (IUCN,
2007) y el 32% de los reptiles del mundo (Young et al. 2004), para alcanzar a casi las 3000
especies de cada taxón. En los 17 países de Centro y Sur América que se encuentran en
los Neotrópicos continentales hay 1685 especies de anfibios y 296 especies de reptiles
considerados en peligro de extinción. Los anfibios y reptiles son los grupos de vertebrados
terrestres considerados en mayor peligro de extinción (J. Gardner 2007b). Puesto que
existen muchos factores implicados que ponen en peligro de extinción a las poblaciones de
reptiles y anfibios; incluyendo el cambio y la pérdida de hábitat, el virulento patógeno
Batrachochytrium dendrobatidis, el cambio climático (Whitfield et al. 2007), la radiación
ultravioleta B (Broomhall et al. 2000) y los contaminantes agroquímicos (Bridges et al.
2000).
Estado Actual de la Investigación de Anfibios y Reptiles
Los anfibios y reptiles están en la cima y en el nivel medio de los consumidores primarios en
los ecosistemas Neotropicales, sin embargo es importante entender como estos organismos
responden al cambo estructural del hábitat (Bell et al. 2006). A pesar de su aparente
seriedad y la cantidad del tiempo de investigación que ha llevado para estudiar los impactos
que producen los cambios de hábitat sobre las poblaciones de anfibios y reptiles es
relativamente poco, especialmente en los Neotropicos donde solamente se han realizado el
10% de los estudios herpetológicos en el mundo (Gardner et al 2007a), a pesar de que el
89% de especies en peligro han sido afectadas por la pérdida de hábitat. Hay un consenso
general entre los herpetólogos que el efecto del cambio estructural del hábitat para
determinar anfibios y reptiles y sus distribuciones es limitada (Pearman, 1997;
Krishnamurthy, 2003; Urbina-Cardona, 2006; Gardner et al, 2007b).
Una revisión reciente a nivel global sobre el estado de estudio de los anfibios y reptiles de
acuerdo al cambio estructural del hábitat resalto algunas deficiencias serias: i) Actualmente
existe una gran parcialidad de estudio fuera de los Neotropicos dirigida hacia Norte América
y Australia. ii) Muchos estudios publicados reportan respuestas contradictorias del cambio
de hábitat sobre las poblaciones de anfibios y reptiles iii) Hay muchas limitaciones comunes
en la metodología de estudio y análisis (Gardner et al. 2007a).
31
Objetivos
Evaluar la capacidad del bosque secundario (plantaciónes abandonadas de cacao)
para preservar la riqueza de la herpetofauna en la hojarasca, distribución y
abundancia comparada con hábitat de bosque primario.
Entender los efectos del cambio estructural del hábitat en los Neotrópicos.
Identificar las respuestas de diferentes grupos/especies de herpetofauna al cambio
estructural del hábitat.
Métodos
Transectos de Encuentros Visuales
Durante este año se establecieron doce transectos de 75m en localidades de bosque
primario y secundario. Se tuvo especial cuidado de espaciar suficientemente los transectos
para evitar la pseudo replicación. Los transectos se marcaron con cinta colorida de marcaje
para evitar la modificación innecesaria del hábitat. Donde fue posible se trazaron los
transectos a por lo menos 10m de los riachuelos y a 100m de los bordes del bosque para
evitar parcialidades resultantes del incremento en la riqueza de especies y de la
abundancia, lo cual podría crear confusiones sobre el efecto verdadero del cambio
estructural del hábitat en la diversidad de los anfibios y reptiles.
Las investigaciones de encuentros visuales han demostrado ser uno de los métodos más
efectivos para muestrear la herpetofauna tropical (Bell et al, 2006). En recientes
publicaciones repetidamente se indica que se producen números altos de individuos por el
esfuerzo que los otros métodos de muestreo (Ernst and Rodel, 2004; Donnelly et al 2005) y
en investigaciones preliminares llevadas a cabo por GVI. Cada transecto fue investigado
por seis observadores (ancho de banda = 6m, duración = 1h 30m).
Trampas Pitfall
En bosque primario y secundario se pusieron doce series de trampas pitfall, cada serie
consistía en cuatro baldes de 25li conectados linealmente por una barrera de plástico de 8m
de longitud y 0.50m de alto; una vez que fueron colocadas las trampas se las revisaba
diariamente.
Se tuvo especial cuidado en asegurarse de que el mismo esfuerzo en el muestreo se puso
tanto en el hábitat primario como en el secundario, para así asegurar la máxima
comparabilidad de los datos resultantes de los grupos.
32
Todo anfibio o reptil encontrado por cualquiera de los dos métodos fue liberado una vez que
fue identificado en el campo utilizando literatura confiable. Los individuos que no pudieron
ser identificados en el campo eran llevados al campamento base de GVI para un mejor
análisis. Sin embargo una pequeña proporción de individuos capturados incluyendo a
aquellos que no pudieron ser identificados fueron anestesiados con Lidocaina y fijados con
formalina al 10% para ser enviados al MECN para que el herpetólogo Mario Yánez nos
ayude con la identificación taxonómica. Todos los especímenes se encuentran depositados
en el Museo Ecuatoriano de Ciencias Naturales (MECN).
Investigar en hábitat de bosque primario es una oportunidad privilegiada sin embargo existe
un efecto potencial que afecta negativamente al ecosistema por transmitir infecciones entre
los sitios y las especies. Por lo que es importante tener prácticas estrictas para asegurar
que esto no ocurra. La limpieza sistemática de herramientas, equipos y que las bolsas
estériles sean cambiadas cuando se manipulan a diferentes individuos, estas prácticas
aseguran el éxito.
Resultados
Durante todo el proyecto hasta la actualidad se han identificado 1479 individuos de anfibios
y reptiles encontrados. En las Tablas 9 y 10 se muestra un corte entre los dos métodos
aplicados; trampas pitfall y encuentros visuales.
Trampas Pitfall
Tabla 9 - Número total de individuos encontrados en las trampas pitfall durante la duración del proyecto
Anfibios y reptiles Anfibios Reptiles
Total 701 589 122
Investigaciones de Encuentros Visuales
Tabla 10 - Número total de individuos encontrados por investigaciones de encuentros visuales durante la duración del
proyecto.
Anfibios y reptiles Anfibios Reptiles
Total
(aproximadamente 5.760
minutos de investigación con
5/6 investigadores)
778 719 59
Los resultados preliminares están basados en la aplicación de un índice de diversidad
simple el cual indica que hay claras diferencias entre la multitud de especies del bosque
primario, plantaciones viejas de cacao y los invasivos pastos (Tablas 11 & 12).
33
Tabla 11 - Índice de Diversidad de Simpson para los 12 sitios donde se coloco las trampas pitfall basados en resultados
preliminares. P= bosque primario, S=hábitat secundario.
P1 P2 P3 P4 P5 P6 S1 S2 S3 S4 S5 S6
0.84 0.77 0.82 0.79 0.60 0.82 0.71 0.67 0.66 0.68 0.56 0.50
Tabla 12 - Índice de Diversidad de Simpson para los 10 transectos donde se efectuaron los encuentros visuales, basados en
resultados preliminares. P= bosque primario, S=hábitat secundario.
P1 P2 P3 P4 P5 S1 S2 S3 S4 S5
0.71 0.70 0.73 0.75 0.74 0.64 0.42 0.57 0.72 0.43
Discusión
El trabajo con anfibios y reptiles continua para proveer una riqueza de especies, los cuales
continúan mostrando prevalencia de unas especies sobre otras y que hay ciertamente
algunas diferencias en los números y tipos de especies encontrados en las diferentes áreas
de la reserva. Los anfibios Ameerga bilinguis, Pristimantis kichwarum, Pristimantis
lanthanites, la Salamandra Enana Trepadora Bolitoglossa peruvianus y la lagartija Lepsoma
parietale, aun se encuentran en números grandes que otras especies en varios hábitats
alrededor de la reserva.
Las áreas de pastizales son un asunto particular en la reserva ya que no parece que ellos
puedan regenerarse a un mayor estado natural al contrario de lo que sucede con las áreas
de las plantaciones de cacao. Se ha discutido sobre realizar proyectos de restauración en
estas áreas de la reserva pero los hallazgos de este proyecto solamente muestran alguna
indicación de los impactos que producirían dichos proyectos. A pesar de contener una
diversidad de especies considerablemente muy baja, hay especies particulares como
Pristimantis variablilis y Leptodactylus andreae que parecen asentarse muy bien y florecer
en estas áreas, la intervención en estas áreas definitivamente alteraría a los grupos de las
especies florecientes.
Cabe anotar que Pristimantis ockendeni ha sido identificada como tres diferentes especies
sin embargo las especies encontradas en la reserva han sido identificadas como
Pristimantis kichwarum. La identificación fue posible gracias a observaciones de patrones
morfológicos y la verificación de fotografías por especialistas que están trabajando en la
identificación inicial de estas especies.
34
El análisis que resulte de las investigaciones será utilizado cuando una mayor cantidad de
datos haya sido recogida, aplicaríamos un análisis multivariado, como un análisis del
componente principal y también el análisis del árbol de decisiones que podría ser aplicado
para el desarrollo de un modelo que ayude a determinar los tipos de anfibios y reptiles que
son encontrados en los diferentes tipos específicos de hábitat. Actualmente, el análisis del
grupo de datos está en camino y se espera producir un artículo científico detallando los
resultados de este proyecto.
7.6 Mariposas
Introducción
Las mariposas son ampliamente reconocidas como importantes indicadores ecológicos
debido a la dependencia que tienen los estadios larvales a una planta hospedera especifica
combinada a los roles polinizadores cuando es adulta (Ehrlich and Raven, 1965). Las
especies herbívoras son consideradas para indicar la diversidad y salud de su hábitat ya
que ellas podrían reflejar fielmente patrones de diversidad tanto como las alteraciones en
las especies de las plantas (DeVries and Walla, 1999; Sparrow et al. 1993). En base a esto
las mariposas podrían ser utilizadas para predecir modelos en otros grupos taxonómicos.
Los sistemas de carreteras marcan y fragmentan los ecosistemas de bosque dando como
resultado; cambios en la composición y estructura de las plantas desde los bordes de
carretera hasta el interior (Bennett, 1991). La presencia de carreteras y de senderos
abiertos arriba del dosel del bosque crea huecos de luz, modifica las comunidades de
plantas y los recursos validos para otras especies. Se ha demostrado que las comunidades
de mariposas son sensibles a variables ambientales tales como la luz del sol, claros y
bordes en el bosque (Ramos, 2000). Sparrow et al. (1994) encontró 74% más especies de
mariposas a lo largo de un transecto de carretera que dentro de un bosque no alterado.
Más de la mitad de la diversidad global está representada por los insectos y todavía existen
pocos estudios que demuestren el impacto de alteraciones en pequeña escala sobre estas
poblaciones (Hamer et al., 2004). Una carretera de 15m de ancho atraviesa por medio de la
reserva conectándola a paisajes agrícolas adyacentes, en adición a esto hay un sinnúmero
de senderos al otro lado de la carretera por donde transitan regularmente los pobladores
locales, turistas y grupos de voluntarios de GVI. Por lo que este estudio investiga el impacto
35
(si hay alguno) de la alteración causada por la presencia de la carretea y de los senderos
que causan en las comunidades de nymfalidos dentro de la Reserva Yachana.
Métodos
Para este estudio utilizamos dos transectos de 200m en los senderos Frontier y Colombia
para valorar el impacto de la presencia de los senderos en las comunidades de mariposas
frugívoras nymphalidae. Cada sitio de muestreo tenía dos trampas; una que fue localizada
sobre el sendero y su par a 75m fuera del bosque no alterado. Las mariposas frugívoras
representan entre el 40 al 55% de especies de mariposas nymphalidae (Devries and Walla,
1999), por lo que tienen la ventaja de ser fácilmente muestreadas utilizando trampas
cebadas con fruta podrida (Ramos, 2000). Cada sendero fue establecido perpendicular a la
carretera atravesando la reserva para así medir la alteración asociada a la carretera. En
total hubieron cuatro sitios en la carretera (trampas #1,2,11,12), ocho sitios en el sendero
(números raros 3-19) y ocho sitios en la selva (números 4-20).
Dos períodos de 14 días de muestreo se efectuaron dentro de cada expedición de diez
semanas y las trampas fueron revisadas diariamente en la tarde. En cada sitio se
suspendieron dos trampas con cebo, las que estaban a aproximadamente 5m de la base
colgante y a 1 - 1.5m sobre el suelo. Las trampas eran cebadas con dos cucharadas de
cebo de plátano aplastado y fermentado, el cual se cambiaba cada tres días. El cebo se
preparó siguiendo los métodos de DeVries and Walla (1999).
Todas las mariposas capturadas fueron identificadas en el campo por empleados y
voluntarios de GVI. A las mariposas se las marcaba en el ala inferior con un código de
puntos para monitorear la recaptura y dispersión entre los sitios de muestreo y luego eran
liberadas. Debido a las dificultades para identificarlas, todos los individuos de la subfamilia
Ithomiinae se las agruparon como especies de Ithomiinae. En cada sitio de muestreo se
tomaron datos por triplicado de los niveles de luz, humedad relativa y temperatura.
Análisis Estadístico
El factor simple de ANOVA fue utilizado para evaluar las diferencias entre la abundacia de
las tribus en los sitios de muestreo y se valoró la similitud de comunidades de mariposas
entre los sitios, en un espacio multivariado con el Componente de Análisis Principal (PCA).
Con el programa Microsoft Excel se realizó el análisis de ANOVA y CANOCO v4.5 se uso
para el PCA.
36
Resultados
Al momento, se completaron tres períodos de muestreo de mariposas lo que da como
resultado 1680 trampa-días (40 trampas x 42 días) y 459 individuos fueron capturados que
se agrupan en 79 especies, 35 géneros y 17 tribus o sub tribus. De éstas, el 21.1%
pertenecen a la tribu Euptychiini, el 20.7% a Epicaliini, el 13.3% fueron Preponini y el 12% a
Brassolini (Ver Figura 8). Nessaea hewitisoni y Archaeoprepona demophon suman
respectivamente el 10.2% de todas las mariposas capturadas.
Solamente en la fase 094, se atraparon e identificaron cuatro especies nuevas para la lista
de la reserva: Catoblepia cassiope (Satyrinae - Brassolini), Eriphanes automedon (Satyrinae
- Brassolini), Eriphanes mandana (Riodinidae) y Memphis offa (Charaxinae – Anaeini).
Adicionalmente cuatro especies capturadas en la última fase ya fueron identificadas y son:
Chloreuptychia agatha, Euptychia myncea, Magneuptychia analis, Pareuptychia hesionides.
Figura 8 - Distribución de mariposas capturadas en las Fases 093 y 094, agrupadas por tribu y subtribu.
De las 14 tribus y subtribus capturadas solamente se encuentra una diferencia estadistica
para la subtribu Euptychiini en relacion a los sitios de captura (F2,17= 3.59, p <0.001), en que
la mayoria de especies de Euptychiini fueron encontrados en los sitios de la carretera
(n=56), seguida por las colectadas en el bosque (n=30) y en los senderos (n=14).
El análisis de los principales componentes fue realizado para valorar la similitud de
comunidades de mariposas entre los sitios de espacio multivariado. Respectivamente, el
eje1 PCA y eje2 se toman en cuenta para el 90% y 9% de la variacion total. La Figura 9
37
indica que todos los tres lotes de hábitat muestreados (carretera, bosque y senderos) varian
diferentemente en ambos ejes 1 y 2, siendo que los sitios del bosque y carretera tienen más
similitud que con el de la carretera.
Los sitios de la carretera estan bastante correlacionados con la luz y la temperatura. Las
mariposas que corresponden al grupo de las tribus Anaeini, Limentidini y subtribu Eutychiini
(tribu Satyrini) se aproximan bastante hacia el sitio de la carretera que está a lo largo de la
luz y temperatura. El grupo de las mariposas de las tribus Ageroniini, Preponini y
Nymphalini hacia el hábitat de sendero mientras que el grupo de las especies de las
especies de Ithomiinae Brassolini, Morphini y Haeterini se dirigen hacia los sitios de bosque.
Las mariposas del grupo de la tribu Epicaliini cerca a 0 en el eje 2 de PCA indica que no hay
diferencia en el número de capturas entre los sitios del sendero y los del bosque.
Figura 9 – PCA. Lote de muestreo de mariposas, variables ambientales (indicadas en rojo) y sitios de muestreo
(En círculos). Las tribus con menos de tres individuos fueron eliminados de la representación gráfica, por esta razón se elim inó
a Coeini, Eurybiini, Euselasiini y Mesosemiini.
Discusión
Aunque es necesario estudiarlas más por lo que esperamos continuar con el proyecto por lo
pronto los resultados de este estudio sugieren que tanto la carretera como los senderos en
eje 1
Eje 2
22222
1
38
la Reserva Yachana están afectando y cambiando las comunidades de mariposas locales.
Como se esperaba los resultados más drásticos fueron observados entre los sitios de la
carretera y los sitios boscosos. La creación de la carretera a través de la reserva ha
fragmentado el bosque y creado un borde que tiene niveles de luz intensa (más del doble
de los sitios del sendero o del bosque) el cual es bastante caluroso menos húmedo que las
áreas circundantes. Estas condiciones podrán ciertamente plantear una barrera a la
dispersión de ciertas especies de mariposas. Las especies de Euptychiini, a menudo
encontradas a lo largo de los bordes del bosque (DeVries, 1987), fueron significativamente
más abundantes en las trampas de la carretera. Las Limentidini (Adelpha sp.) se
observaron solo a lo largo de la carretera y estas fueron las únicas mariposas vistas en días
muy calurosos y muy soleados.
El período de muestreo de la 094 fue realizado durante la estación seca, por lo cual pudo
haber impactado sobre las mariposas ya que algunas especies son altamente estacionales
(Hamer, 1997). El clima durante los períodos de muestreo durante la fase 094 fueron
mucho más calurosos, alcanzando los 41oC al sol y fue más seco que en la fase 093. Las
especies como Archaeoprepona amphimachus y Memphis arachne fueron atrapadas sólo
en la fase 094 y adicionalmente menos individuos (275 en la fase 093 versus 184 en la fase
094) se capturaron en las cuatro semanas en que se llevó a cabo el muestreo en la fase
094 comparado al de las dos semanas del período de muestreo en la fase 093.
Tomando en cuenta la variación estacional, este proyecto espera continuar con el mismo
protocolo de muestreo que incluya un año completo de muestreo y posiblemente se
investigue en senderos que son distintivamente independientes espacialmente.
7.7 Mapeo de Vegetación y Condiciones del Hábitat
Para cada uno de los proyectos mencionados anteriormente se llevó a cabo un mapeo de la
vegetación del hábitat de acuerdo a los tipos de hábitat y a los cambios del uso del suelo.
Estos datos pueden ser utilizados dentro del análisis final para empíricamente clasificar los
tipos de hábitat. También procuramos colectar datos climáticos relacionados a lluvias,
temperatura, humedad y niveles de luz para cada uno de los proyectos.
7.8 Mapeo con GPS
Este año intentamos re mapear la reserva utilizando un software de GPS para verificar la
confiabilidad del mapa anterior, corregir algunos inexactitudes y actualizar nuevos senderos
que pueden haber sido añadidos. También nosotros somos capaces de utilizar este
39
software para mapear sitios en los cuales realizamos nuestras investigaciones lo cual es
vital para la replicación de los estudios sobre el monitoreo de poblaciones que se llevan a
cabo por largo tiempo. Una vista de este mapa puede verse en la Figura 10.
Figura 10 – Mapa de la Reserva Yachana indicando los senderos, riachuelos, el Campamento Base de GVI, la carretera que
corta en dos a la Reserva y las fronteras de la misma.
Esperamos que nosotros podamos continuar utilizando este software para empezar a
mapear exactamente los diferentes tipos de hábitat y las características alrededor de la
reserva, tales como los tamaños de los pastizales, áreas de cacao y parches de bosque
primario. Esto podría ser extremadamente útil para evaluar los esfuerzos a largo plazo de
hacer frente a las áreas de crecimiento secundario, así por ejemplo si las áreas de
pastizales se están expandiendo, reduciendo o se mantienen en un área convenientemente.
40
7.9 Bénticos
Debido al incremento de recursos y del tiempo necesario para realzar la calidad de la
investigación en todas las áreas descritas anteriormente, el trabajo propuesto sobre fauna
béntica no fue realizado durante este año. No deseábamos embarcarnos en un proyecto
que pudo haber arrojado hallazgos pobres y datos limitados debido a la falta de voluntarios
y empleados, quienes estaban trabajando en los otros compromisos. Sin embargo este
proyecto se lo ha postergado para posiblemente comienzos del próximo año en que será re
evaluado cuando se haya decidido el curso de los otros proyectos.
8 Conclusiones y Trabajo Futuro
Como puede verse en nuestros datos anuales hasta ahora estamos incrementando el
número de especies encontradas en la Reserva Yachana. Con la ayuda de proyectos
científicos bien diseñados también estamos dirigiendo interrogantes relacionadas a la
conveniencia de los tipos de hábitat secundarios para grupos de especies de la reserva.
Estamos encontrando evidencia que indican que el bosque primario alberga una alta
diversidad de especies comparada con el bosque secundario pero también encontramos
algunas diferencias del hábitat secundario de pastizales y las áreas de cacao.
Mediante la determinación de grupos de poblaciones dentro de diferentes tipos de hábitat
se ha visto que ciertas especies se asientan bien en áreas de hábitat secundario que a
través de una amalgamación de datos provenientes de las aves, anfibios y posiblemente
invertebrados esperamos ser capaces de producir una evaluación de multi taxones de los
tipos de hábitat de la reserva. Esto sería más fuerte que enfocarse solamente en un grupo
particular de animales.
Podemos usar estos hallazgos en términos de ayuda para desarrollar un mejor y
estructurado acercamiento científico para los planes de manejo dentro de la reserva con
consideraciones específicas a las áreas bajo consideración para proyectos de restauración.
A través del estudio de especies indicadoras como es el caso de anfibios y mariposas
podemos evaluar con precisión la salud de la reserva y sus tipos de hábitat. Así como
nuevos métodos para el conteo de puntos relacionado al proyecto de aves, también
esperamos expandir más la investigación herpetológica con un nuevo y gran enfoque en los
riachuelos dentro de la reserva ya que durante este año la investigación se enfocó más en
el interior del bosque. Existe también la libertad de dirigir interrogantes relacionadas a como
41
la estructura del hábitat, temperatura, niveles de luz, etc. Permiten a especies particulares
que puedan adaptarse a ambientes secundarios.
Debido a la eficiente documentación de estos proyectos y la precisión de la información
tomada con GPS a los sitios relacionados con la investigación será posible volver a
investigar en estas áreas en el futuro; lo cual es esencial para lograr la meta de monitorear
en la reserva las poblaciones a largo plazo. Este es una aspecto esencial de investigación
cuando consideramos los datos mostrados en el Apéndice A. Aunque las especies de la
lista roja en este apéndice están consideradas como de ―menor preocupación” podría haber
tendencias poblacionales que estén decreciendo. Debido a las tendencias al monitorear las
poblaciones es vital mantener las prácticas de replicación estándar.
También realizamos investigación para solidificar el uso de voluntarios dentro de un
contexto científico y esto es algo que esperamos continuar monitoreando en el futuro, al
lado de aspectos basados en lo ecológico y de conservación
42
Apéndice A – Lista de avistamientos incidentales y especies de interés.
Numero de ID
Genus Especies Nombre Comun Especies
Nuevo Fecha Locación Puntos GPS
Estatus IUCN
Tendencias poblacionales
1 Imantodes lentiferus Cordoncillo del
Amazonas 6-jul-2009 Laguna Sendero
S 00°49.750'
W077°13.975'
2 Hypsiboas calcaratus 6-jul-2009 Laguna S 00°49.656'
W077°13.947' MP Estable
3 Phyllomedusa vailanti 6-jul-2009 Laguna S 00°49.656'
W077°13.947'
4 Rana palmipes 6-jul-2009 Laguna S 00°49.656'
W077°13.947' MP Estable
5 Osteocephalus deridens 7-jul-2009 Green Inferno
1140m
S 00°49.885'
W077°14.225' MP Decreciente
6 Epicrates cenchria gaigei Boa Arco Iris 6-jul-2009 Carretera 800m S 00°50.455'
W077°13.985'
7 Sarcoramphus Papa Rey Gallinazo /
Buitre Real 9-jul-2009 Laguna Mirador
S 00°49.699'
W077°13.941' MP
8 Enyalioides laticeps Guichenot Enano
Iguana 8-jul-2009 Laguna Mirador
S 00°49.699'
W077°13.941'
9 Nasua nasua Coati 6-jul-2009 Laguna Mirador S 00°49.699'
W077°13.941' MP
Decreciente
10 Nasua nasua Coati 10-jul-2009 Fin de Access A S 00°50.656'
W077°13.631' MP
Decreciente
11 Eurysternus caribaeus Escarabajo pelotero Sí 7-jul-2009 DB2 (Bloop) S 00°83.791'
W077°22.975'
12 Eurysternus plebejus Escarabajo pelotero Sí 14-jul-2009 DB8 (Buena Vista) S 00 84.122
W077 23.969
13 Eurysternus inflexus Escarabajo pelotero Sí 14-jul-2009 DB1 (Ficus/Inca
cruce)
S 00 84.219
W077 22.866
14 Canthon luteicollis Escarabajo pelotero Sí 14-jul-2009 DB1 (Ficus/Inca
cruce)
S 00 84.219
W077 22.866
15 Micrurus nigrocinctus Coral anillada 20-jul-2009 Carretera (al lado
de Access C)
S 00°50.567'
W077°13.772'
16 Potos flavus Kinkajú 21-jul-2009 Carretera (Upper
Bloop entrada)
S 00°50.095'
W077°14.374' MP Decreciente
17 Lithodytes lineatus 21-jul-2009
Lower Frontier
Transecto de
anfibios
S 00°49.872'
W077°14.320' MP Estable
18 Eutoxeres condamini Pico de Hoz
Colihabano Sí 22-jul-2009
Cascada lugar de
redes de neblina
S 00°50.258'
W077°14.414' MP
43
19 Euptychia labe Sí 9-ago-2009 Frontier trampa 2a S 00°83.044'
W077°24.504'
20 Euptychia renata Sí 9-ago-2009 Frontier trampa 2b S 00°83.044'
W077°24.504'
21 Catoblepia berecynthia Sí 10-ago-2009 Frontier trampa 9a S 00°82.918'
W077°24.382'
22 Dichotomius ohausi Escarabajo pelotero Sí 9-jul-2009 DB9 ( Cacao
Arboleda )
S 00 83.954
W077 23.601
23 Dichotomius pretoi Escarabajo pelotero Sí 9-jul-2009 DB9 (Cacao
Arboleda)
S 00 83.954
W077 23.601
24 Eurysternus confusus Escarabajo pelotero Sí 9-jul-2009 DB2 (Bloop) S 00 83.791 W
077 23.748
25 Eurysternus foedus Escarabajo pelotero Sí 6-ago-2009 DB9 (Cacao
Arboleda)
S 00 83.954
W077 23.601
26 Cacicus haemorrhous Arrendajo de Lomo
Rojo Sí 27-jul-2009
Carretera afuera de
Lower Bloop
S 00°84.157'
W077°23.168'
27 Tangara nigrocincta Tangara Pechinegra 4-ago-2009 Ridge Mirador S 00°84.033'
W077°23.643' MP
28 Pseudoboa coronata Culebra roja del
Amazonas Sí 7-ago-2009
Stream 1 – abajo
del arbol caido
antes del ficus
S 00 84.061
W077 22.936
29 Threnetes niger Barbita Colipálida 12-ago-2009 INCA lugar de
redes de neblina
S 00°83.763'
W077°24.022' MP
30 Caligo illioneus Sí 16-ago-2009 Frontier trampa 6a S 00°83.001'
W077°24.426'
31 Taeniophallus brevirostris Serpiente Nariz
Corta 17-ago-2009 PPF6
S 00°82.913'
W077°24.438'
32 Taygetis sosis Sosis Satyr Sí 12-ago-2009 Frontier trampa 9a S 00°83.003'
W077°24.559'
33 Taygetis echo Echo Satyr Sí 20-ago-2009 Colombia trampa
17b
S 00°82.950'
W077°24.664'
34 Taygetis cleopatra Cleopatra Satyr Sí 14-ago-2009 Colombia trampa
18b
S 00°82.891'
W077°24.672'
35 Ectima thecla lerina Sí 19-ago-2009 Colombia trampa
11b
S 00°83.080'
W077°24.382'
36 Deltochilum howdeni Escarabajo pelotero Sí 25-ago-2009 DB3 (Inca) S 00 83.432
W077 23.482
37 Magneuptychia analis Sí 14-jul-2009 Frontier trampa 7a S 00°82.943'
W077°24.428
38 Chloreuptychia agatha Sí 24-jul-2009 Frontier trampa 5b S 00°82.962'
W077°24.470
44
39 Leptodactylus pentadactylus Rana Toro de la
Selva Sí 22-may-2009 SPF 4
S 00°84.157'
W077°23.479 MP Estable
40 Catonephle antinoe Sí 21-ago-2009 Frontier trampa 1b S 00°83.089'
W077°24.662
41 Pareuptychia hesionides Hesionides Satyr Sí 10-oct-2009 Unidentificado sp.
de las placas
S 00 84.061
W077 22.936
42 Euptychia myncea Sí 12-sep-2009 Frontier trampa 1b S 00°83.089'
W077°24.662
43 Magneuptychia tiessa Sí 9-sep-2009 Frontier trampa 1a S 00°83.089'
W077°24.662
44 Catoblepia cassiope Sí 17-oct-2009 Frontier trampa 8 S 00°83.879'
W077°24.469
45 Eurybia dardus Sí 14-ago-2009 Colombia 12 S 00°83.089'
W077°24.662
46 Memphis Offa Sí 20-oct-2009 Frontier trampa 1 S 00°83.089'
W077°24.662
47 Sarcoramphus Papa Rey Gallinazo /
Buitre Real 15-oct-2009
Green Inferno otra
lado como viper
S 00 83.119
W077 23.866 MP
48 Baryphthengus martii Momoto Yerúva
Occidental 7-oct-2009
Stream 1 – abajo
del arbol caido
antes del ficus
S 00 84.061
W077 22.936 MP
49 Bothrocophias hyoprora Hocico de Puerco Sí 16-oct-2009 Cascada S 00 83.932
W077 24.107
50 Gymnomystax mexicanus Tordo Maicero Sí 20-oct-2009 Ridge – afuera de
SPF6
S 00 84.033'
W077°23.643' MP
51 Bothriopsis bilineata bilineata Bosque pitviper dos-
rayados Sí 23-oct-2009
100m antes del
riachuelo en Green
Inferno
S 00 83.119
W 077 23.866
52 Emesis mandana Sí 19-nov-2009 Comedor -
campamento
S 00°84.596'
W077°22.879
53 Galbula albirostris Barranquero Pico
Amarillo Sí 19-nov-2009
Laguna red de
neblina
S 00 83.003
W077 23.421 MP
54 Eriphanes automedon Mariposa Buho Sí 19-nov-2009 Comedor -
campamento
S 00 84.596 W
077 22.879
55 Dendroica Aestiva Reinita Amarillo Sí 28-oct-2009 Carretera 2420m S 00 83.481
W077 23.929
56 Terenotriccus erythrurus Mosquerito Colirrojo Sí 16-nov-09 Laguna red de
neblina
S 00 83.003
W077 23.421 MP
57 Deconychura longicauda Trepatroncos
Colilargo Sí 20-nov-09
Laguna red de
neblina
S 00 83.003
W077 23.421 MP
58 Dendropsophus marmoratus Sí 11-ene-2010 Bloop pantano
(carretera)
S 00 83.481
W077 23.929 MP Estable
45
MP = Menor Preocupación
59 HemIphractus scutatus 18-ene-2010 PPF2 S 00 83.213
W 077 23.366 MP Decreciente
60 Spizaetus Ornatus Águila-azor Galana Sí 3-mar-2010 Carretera S 00 83.856 W
077 24.680 MP
61 Pachyramphus polychopterus Cabezón Aliblanco Sí 1-abr-2010 Careterra, fin de
Access C
S 00 84.445
W077 22.808 MP Estable
62 Pachyramphus polychopterus Cabezón Aliblanco 13-abr-2010 Cascada lugar de
redes de neblina
S00 83.866
W077 24.171 MP Estable
63 Accipiter supercilious Gavilancito
Americano Sí 12-abr-2010
Carretera, entrada
a Frontier
S 00 83.078
W 077 24.595 MP Decreciente
64 Threnetes niger Barbita Colipálida Sí 27-abr-2010 Frontier lugar de
redes de neblina
S 00 82.743
W077 24.096 MP
65 Floriduga mellivora Jacobino Nuqiblanco Sí 20-abr-2010
Carretera entre de
Upper Bloop y
Cascada
S 00 83.481
W077 23.929 MP
66 Dendrocolaptes picumnus Trepatroncos
Variable Sí 15-abr-2010 Campamento GVI
S 00 84.596
W 077 22.879 MP Estable
67 Philydor erythropterum Ticotico Alicastaño Sí 15-abr-2010
Carretera entre de
Upper Bloop y
Frontier
S 00 83.481
W077 23.929 MP Estable
68 Xenops minutus Picolezna Menudo Sí 13-abr-2010 Cascada lugar de
redes de neblina
S 00 83.866
W077 24.171 MP
69 Platyrinchus coronatus Picoplano Coronado Sí 26-abr-2010 Frontier lugar de
redes de neblina
S 00 82.743
W077 24.096 MP Decreciente
70 Griseotyrannus aurantioatrocristatus Mosquero Coronado Sí 26-abr-2010 Carretera al fin de
Ridge
S 00 84.064
W077 23.466 MP Estable
71 Wilsonia canadensis Reinita Collareja Sí 16-abr-2010 Ridge justo encima
del campemento
S00°84.596'
W077°22.879 MP Decreasing
72 Dacnis lineata Dacnis Carinegro Sí 27-abr-2010
Carretera entre de
Upper Bloop y
Frontier
S 00 83.078
W 077 24.595 MP Estable
73 Gymnopithys leucapis Hormiguero Bicolor Sí 25-abr-2010 Frontier lugar de
redes de neblina
S 00 82.743
W077 24.096 MP Decreciente
46
Apéndice B - Identificaciones de las fotos de las especies del Apéndice A.
Especies ID # 1 Especies ID # 2
Especies ID # 3
Especies ID # 4
Especies ID # 5 Especies ID # 6
Especies ID # 8
Especies ID # 11
47
Especies ID # 13
Especies ID # 15
Especies ID # 18
Especies ID # 19
Especies ID # 21
Especies ID # 22
Especies ID # 28 Especies ID # 30
48
Especies ID # 31
Especies ID # 32
Especies ID # 33
Especies ID # 7
Especies ID # 37
Especies ID # 38
Especies ID # 39
Especies ID # 41
49
Especies ID # 42
Especies ID # 44
Especies ID # 45
Especies ID # 46
Especies ID # 47 Especies ID # 49
Especies ID # 51
Especies ID # 52
50
Especies ID # 53
Especies ID # 56
Especies ID # 57
Especies ID # 58
Especies ID # 59
Especies ID # 60
Especies ID # 62
Especies ID # 63
51
Especies ID # 64
Especies ID # 65
Especies ID # 68
Especies ID # 73
N.B. No todos las espcies alistadas en Apéndice A tienen la correlación de fotos. En lugares
donde no hay fotos presente es porque el animal se movia demasiado rapido para captura
en la camera o no hubo presente una camera funcionando en el momento.
52
Apéndice C – Lista de las Referencias
Referencias Generales
Allen, T., Ginkbeiner, S.L., and Johnson, D.H., 2004. Comparison of detection rates of
breeding marsh birds in passive and playback surveys at Lacreek National Wildlife refuge,
South Dakota. Waterbirds 27, 277-281.
Bennett, A. F., 1991. Roads, roadsides and wildlife conservation: A review. In: Saunders, D.
A., Hobbs, R. J. (eds.). Nature Conservation 2: The role of corridors. Chipping Norton, NSW,
Australia: Surrey Beatty 99-118.
Daszak, P., Berger, L., Cunningham, A.A., Hyatt, A.D., Green, D.E., Speare. R., 1999.
Emerging infectious diseases and amphibian population declines. Emerging Infectious
Diseases. 5, 735-48.
Ehrlich, P. R., Raven, P. H., 1965. Butterflies and plants: A study in co-evolution. Evolution
18: 586-608.
Gardner T.A., Fitzherbert E.B., Drewes R.C., Howell K.M., Caro T., 2007. Spatial and
temporal patterns of abundance and diversity of an east African leaf litter amphibian fauna.
Biotropica 39(1):105-113.
Heyer W.R., Donnelly M.A., McDiarmid R.W., Hayek L.A.C., Foster M.S., 1994. Measuring
and Monitoring Biological Diversity - Standard Methods for Amphibians.
Kroodsma, D.E., 1984. Songs of the Alder Flycatcher (Empidonax alnorum) and Willow
Flycatcher (Empidonax traillii) are innate. Auk 101, 13-24.
Lacher, T., 2004. Tropical Ecology, Assessment, and Monitoring (TEAM) Initiative: Avian
Monitoring Protocol version 3. Conservation International, Washington, DC.
www.teaminitiative.org.
Menendez-Guerrero P.A., Ron S.R. and Graham C.H., 2006. Predicting the Distribution and
Spread of Pathogens to Amphibians. Amphibian Conservation 11:127-128.
Ridgely, R.S., Greenfield, P.J., 2001. The birds of Ecuador. Volume I. Status, Distribution,
and Taxonomy. Cornell University Press, New York.
53
Sutherland, W.J., 1996. Ecological census techniques: a handbook. University press,
Cambridge.
Weldon, C., du Preez, L.H., Hyatt, A.D., Muller, R., Speare, R., 2004. Origin of the
amphibian chytrid fungus. Emerging Infectious Diseases. 10 (Issue 12).
Convention on International Trade in Endangered Species of Wild Fauna and Flora (CITES)
para Ecuador. http://www.cites.org/eng/resources/species.html
Textos Unificado Legislacion Secundaria (TULAS)
http://www.ambiente.gov.ec/contenido.php?cd=83
The IUCN Red List of Threatened Species http://www.iucnredlist.org/
Referencias Utilizado en el Campo
Bartlett, R.D., Bartlett, P., 2003. Reptiles and Amphibians of the Amazon. An ecotourist‘s
guide. University Press of Florida, Gainsville.
Bollino, M., Onore G., 2001. Butterflies & Moths of Ecuador. Volume 10a. Familia:
Papilionidae. Pontificia Universidad Católica del Ecuador, Quito.
Carrera, C., Fierro, K., 2001. Manual de monitoreo los macroinvertebrados acuáticos.
EcoCiencia, Quito.
Carrillo, E., Aldás, S., Altamirano, M., Ayala, F., Cisneros, D. Endara, A., Márquez, C.,
Morales, M., Nogales, F, Salvador, P., Torres, M.L., Valencia, J., Villamarín, F., Yánez, M.,
Zárate, P., 2005. Lista Roja de los Reptiles del Ecuador. Novum Milenium, Quito.
de la Torre, S., 2000. Primates of Amazonian Ecuador. SIMBIOE, Quito.
DeVries, P.J., 1997. The Butterflies of Costa Rica and their Natural History. Volume II:
Riodinidae. Princeton University Press, Princeton.
Duellman, W.E., 1978. The Biology of an Equatorial Herpetofauna in Amazonian Ecuador.
The University of Kansas, Lawrence.
54
Eisenberg, J.F., Redford, K.H., 1999. Mammals of the Neotropics: The Central Neotropics.
Volume 3 Ecuador, Peru, Bolivia, Brazil. The University of Chicago Press, Chicago.
Emmons, L.H., Feer, F., 1997. Neotropical Rainforest Mammals. A Field Guide, second
edition. The University of Chicago Press, Chicago.
Moreno E., M., Silva del P., X., Estévez J., G., Marggraff, I., Marggraff, P., 1997. Mariposas
del Ecuador. Occidental Exploration and Production Company, Quito.
Neild, A.F.E., 1996. The Butterflies of Venezuela. Meridain Publications. London.
Ridgely, R.S., Greenfield, P.J., 2001. The Birds of Ecuador. Volume I. Status, distribution
and taxonomy. Christopher Helm, London.
Ridgely, R.S., Greenfield, P.J., 2001. The Birds of Ecuador. Volume II. A Field Guide.
Christopher Helm, London.
Tirira S., D., 2001. Libro Rojo de los Mamíferos del Ecuador. SIMBIOE/EcoCiencia, Quito.
Referencias Utilizado de los Voluntarios
DARWALL, W. & DULVY, N. (1996) An evaluation of the suitability of non-specialist
volunteer researchers for coral reef fish surveys. Mafia Island, Tanzania—a case study.
Biological Conservation, 78, 223–231.
ENGEL, S, R. & VOSHELL J,R. (2002) Volunteer Biological Monitoring: Can It Accurately
Assess the Ecological Condition of Streams? American Entomologist, 48 164-177(14).
FITZSIMMONS, L, P. BARKER, N, K. & MENNILL D, J. (2008) Individual Variation and Lek-
Based Vocal Distinctiveness in Songs of the Screaming Piha (Lipaugus Vociferans), A
Suboscine Songbird. The Auk, 125, c3-c4.
FOSTER-SMITH, J. & EVANS S, M. (2003) The value of marine ecological data collected by
volunteers. Biological Conservation, 113, 199-213.
LOVELL, S. HAMER, M. SLOTOW, R & HERBERT, D. (2009) An assessment of the use of
volunteers for terrestrial invertebrate biodiversity surveys. Biodiversity and Conservation,18.
55
MCLAREN M, A. & CADMAN M, D. (1999) Can Novice Volunteers Provide Credible Data for
Bird Surveys Requiring Song Identification? Journal of Field Ornithology, 70, 481-490.
NEWMAN, C. BUESCHING, C, D. & MACDONALD, D, W. (2003) Validating mammal
monitoring methods and assessing the performance of volunteers in wildlife conservation--
'Sed quis custodiet ipsos custodies ?', Biological Conservation, 113, 189-197.
Referencias de los Anfibios
J. Barlow, T. A. Gardner, I. S. Araujo, T. C. Avila-Pires, A. B. Bonaldo, J. E. Costa, M. C.
Esposito, L. V. Ferreira, J. Hawes, M. I. M. Hernandez, M. S. Hoogmoed, R. N. Leite, N. F.
Lo-Man-Hung, J. R. Malcolm, M. B. Martins, L. A. M. Mestre, R. Miranda-Santos, A. L.
Nunes-Gutjahr, W. L. Overal, L. Parry, S. L. Peters, M. A. Ribeiro-Junior, M. N. F. da Silva,
C. da Silva Motta, and C. A. Peres (2007) Quantifying the biodiversity value of tropical
primary, secondary, and plantation forests PNAS vol. 104 no. 47 18555–18560
Beebee, T.J.C., Griffiths, R.A., (2005). The amphibian decline crisis: A watershed for
conservation biology? Biological Conservation 125, 271–285.
K. E. Bell and M. A. Donnelly (2006) Influence of Forest Fragmentation on Community
Structure of Frogs and Lizards in Northeastern Costa Rica Conservation Biology Volume 20,
No. 6, 1750–1760
Bridges, C.M., Semlitsch, R.D., (2000). Variation in pesticide tolerance of tadpoles among
and within species of Ranidae and patterns of amphibian decline. Conservation Biology 14,
1490–1499.
Broomhall, S.D., Osborne, W.S., Cunningham, R.B. (2000). Comparative effects of ambient
ultraviolet-B radiation on two sympatric species of Australian frogs. Conservation Biology 14,
420–427.
Samuel A. Cushman (2006) Effects of habitat loss and fragmentation on amphibians: A
review and prospectus Biological Conservation 128; 231 –240
56
Donnelly, M. A., M. H. Chen, and G. C.Watkins. (2005) Sampling amphibians and reptiles in
the Iwokrama Forest ecosystem. Proceedings of the Academy of Natural Sciences of
Philadelphia 154:55–69.
Toby A. Gardner*, Jos Barlow, Carlos A. Peres (2007a) Paradox, presumption and pitfalls in
conservation biology: The importance of habitat change for amphibians and reptiles
Biological Conservation 138; 166–179
T. A. Gardner, M.A.Ribeiro-Junior, J. Barlow, T. S. Avila-Pires, M.S. Hoogmeod and C. A.
Peres (2007b) The Value of Primary, Secondary, and Plantation Forests for a Neotropical
Herpetofauna Conservation Biology Vol 21, 3; 775–787
T. A. Gardner, J. Barlow, L. W. Parry, and C. A. Peres (2007c) Predicting the Uncertain
Future of Tropical Forest Species in a Data Vacuum BIOTROPICA 39(1): 25–30 2007
Gibbons, J. W., Scott, D. E., Ryan, T. J., Buhlmann, K. A., Tuberville, T. D., Metts, B. S.,
Greene, J. L., Mills, T., Leiden, Y., Poppy, S. and C. T. Winne. 2000. The global decline of
reptiles, deja-vu amphibians. Bioscience 50: 653–667.
S.V. Krishnamurthy (2003) Amphibian assemblages in undisturbed and disturbed areas of
Kudremukh National Park, central Western Ghats, India Environmental Conservation 30 (3):
274–282
P. B. Pearman (1997) Correlates of Amphibian Diversity in an Altered Landscape of
Amazonian Ecuador Conservation Biology, Volume 11, No. 5 Pages 1211–1225
R. Pardini, D. Faria, G. M. Accacio, R. R. Laps, E. Mariano-Neto,
M. L.B. Paciencia, M. Dixo, Julio Baumgarten (2009) The challenge of maintaining Atlantic
forest biodiversity: A multi-taxa conservation assessment of specialist and generalist species
in an agro-forestry mosaic in southern Bahia Biological Conservation 142; 1170-1182
M. Rödel & R. Ernst (2004) MEASURING AND MONITORING AMPHIBIAN DIVERSITY IN
TROPICAL FORESTS. I. AN EVALUATION OF METHODS WITH RECOMMENDATIONS
FOR STANDARDIZATION Ecotropica 10: 1–14,
Sala, O.E., Chapin, F.S.I., Armesto, J.J., Berlow, E., Bloomfield, J., Dirzo, R., Huber-
Sanwald, E., Huenneke, L.F., Jackson, R.B., Kinzig, A., Leemans, R., Lodge, D.M., Mooney,
57
H.A., Oesterheld, M., Poff, N.L., Sykes, M.T., Walker, B.H., Walker, M., Wall, D.H., (2000).
Global biodiversity scenarios for the year 2100. Science 287, 1770–1774.
Stuart, S.N., Chanson, J.S., Cox, N.A., Young, B.E., Rodrigues, A.S.L., Fischman, D.L. and
Waller, R.W. (2004). Status and trends of amphibians declines and extinctions worldwide.
Science 306: 1783-1786.
J. N. Urbina-Cardona, M. Olivares-Pe´rez, V. H. Reynoso (2006) Herpetofauna diversity and
microenvironment correlates across a pasture–edge–interior ecotone in tropical rainforest
fragments in the Los Tuxtlas Biosphere Reserve of Veracruz, Mexico Biological
Conservation 132; 61–75
J. N. Urbina-Cardona (2008) Conservation of Neotropical Herpetofauna: Research Trends
and Challenges Tropical Conservation Science Vol.1(4):359-375
Wright SJ (2005) Tropical forests in a changing environment Trends Ecol Evol 20:553–560.
Whitfield SM, Pierce MSF (2005) Tree buttress microhabitat use by a Neotropical leaf-litter
herpetofauna. Journal of Herpetology 39:192-198.
Whitfield SM, Bell KE, Philippi T, Sasa M, Bolanos F, Chaves G, Savage JM, DonnellyMA
(2007) Amphibian and reptile declines over 35 years at La Selva, Costa Rica Proc Natl Acad
Sci 104:8352–8356.
Young, B.E., Stuart, S.N., Chanson, J.S., Cox, N.A., Boucher, T.M., 2004. Disappearing
Jewels: The Status of New World Amphibians. Natureserve, Arlington, VA.
Referencias de las Mariposas
Bennett, A. F., 1991. Roads, roadsides and wildlife conservation: A review. In: Saunders, D.
A., Hobbs, R. J. (eds.). Nature Conservation 2: The role of corridors. Chipping Norton, NSW,
Australia: Surrey Beatty pp. 99-118.
Cottam, G., Curtis, J.T., 1956. The use of distance measures in phytosociological sampling.
Ecology 37: 451-460.
58
DeVries, P. J., Walla, T. R., 1999. Species diversity in spatial and temporal dimensions of
fruit-feeding butterflies from two Ecuadorian rainforests. Biological Journal of the Linnean
Society 68: 333-353.
Ehrlich, P. R., Raven, P. H., 1965. Butterflies and Plants: A study in co-evolution. Evolution
18: 586-608.
Ramos, A. F., 2000. Nymphalid butterfly communities in an Amazonian forest fragment.
Journal of Research on the Lepidoptera 35:29-41.
Sparrow, H. R., Sisk, T. D., Ehrlich, P. R., Murphy, D. D., 1994. Techniques and guidelines
for monitoring Neotropical butterflies. Conservation Biology. 8: 800-809.
59
Apéndice D – Reserva Yachana Lista de Especies ** = adiciones recientes a la lista
Class Aves
Tinamiformes
Tinamidae Tinamous
Crypturellus bartletti Bartlett's Tinamou
Crypturellus cinereus Cinereous Tinamou
Crypturellus soui Little Tinamou
Crypturellus undulatus Undulated Tinamou
Crypturellus variegatus Variegated Tinamou
Tinamus major Great Tinamou
Ciconiformes
Ardeidae Herons, Bitterns and
Egrets
Ardea cocoi Cocoi Heron
Bubulcus ibis Cattle Egret
Butorides striatus Striated Heron
Egretta caerulea Little Blue Heron
Egretta thula Snowy Egret
Tigrisoma lineatum Rufescent Tiger-Heron
Cathartidae American Vultures
Cathartes aura Turkey Vulture
Cathartes melambrotus Greater Yellow-headed
Vulture
Coragyps atractus Black Vulture
Sarcoramphus papa King Vulture
Falconiformes
Accipitridae Kites, Eagles, Hawks etc
Accipiter superscilious Tiny Hawk**
Spizaetus ornatus Ornate Hawk-eagle
Buteo magnirostris Roadside Hawk
Buteo polyosoma Variable Hawk
Elanoides forficatus Swallow-tailed Kite
Harpagus bidentatus Double-toothed Kite
Ictinia plumbea Plumbeous Kite
Leptodon cayanensis Gray-headed Kite
Leucopternis melanops Black-faced Hawk
Leucopternis albicollis White Hawk
Pandion haliaetus Osprey
Falconidae Falcons and Caracaras
Daptrius ater Black Caracara
Falco rufigularis Bat Falcon
Ibycter americanus Red-throated Caracara
Herpetotheres cachinnans Laughing Falcon
Micrastur gilvicollis Lined Forest-Falcon
Micrastur semitorquatus Collared Forest-Falcon
Milvago chimachima Yellow-headed Caracara
Galliformes
Cracidae Curassows, Guans, and Chachalacas
Nothocrax urumutum Nocturnal Curassow
Ortalis guttata Speckled Chachalaca
Penelope jacquacu Spix's Guan
Odontophoridae New World Quails
Odontophorus gujanensis Marbled Wood-Quail
Charadriiformes
Scolopacidae Sandpipers, Snipes and
Phalaropes
Actitis macularia Spotted Sandpiper
Tringa solitaria Solitary Sandpiper
Recurvirostridae Plovers and Lapwings
Hoploxypterus cayanus Pied Plover
Gruiformes
Rallidae Rails, Gallinules, and Coots
Anurolimnatus castaneiceps Chestnut-headed Crake
Aramides cajanea Gray-necked Wood-Rail
Columbiformes
Columbidae Pigeons and Doves
Claravis pretiosa Blue Ground-Dove
Columba plumbea Plumbeous Pigeon
Geotrygon montana Ruddy Quail-Dove
Leptotila rufaxilla Gray-fronted Dove
Psittaciformes
Psittacidae Parrots and Macaws
Amazona farinosa Mealy Amazon
Amazona ochrocephala Yellow-crowned Amazon
Ara severa Chestnut-fronted Macaw
Psittacidae Cont. Parrots and Macaws
Aratinga leucophthalmus White-eyed Parakeet
Aratinga weddellii Dusky-headed Parakeet
Pionites melanocephala Black-headed Parrot
Pionopsitta barrabandi Orange-cheeked Parrot
Pionus menstruus Blue-headed Parrot
Pyrrhura melanura Maroon-tailed Parakeet
Cuculiformes
Cuculidae Cuckoos and Anis
Crotophaga ani Smooth-billed Ani
Crotophaga major Greater Ani
Piaya cayana Squirrel Cockoo
Piaya melanogaster Black-bellied Cuckoo
60
Opisthocomidae Hoatzin
Opisthocomus hoazin Hoatzin
Strigiformes
Strigidae Typical Owls
Glaucidium brasilianum Ferruginous Pygmy-Owl
Lophostrix cristata Crested owl
Otus choliba Tropical Screech-Owl
Otus watsonii Tawny-bellied Screech-owl
Pulsatrix perspicillata Spectacled owl
Caprimulgiformes
Nyctibiidae Potoos
Nyctibius aethereus Long-tailed Potoo
Nyctibius grandis Great Potoo
Nyctibius griseus Common Potoo
Caprimulgidae Nightjars and Nighthawks
Nyctidromus albicollis Pauraque
Nyctiphrynus ocellatus Ocellated Poorwill
Apodiformes
Apodidae Swifts
Chaetura cinereiventris Grey-rumped Swift
Streptoprocne zonaris White-collared Swift
Trochilidae Hummingbirds
Heliothryx aurita Black-eared Fairy
Amazilia franciae cyanocollis Andean Emerald Hummingbird
Amazilia fimbriata Glittering-throated Emerald
Anthracothorax nigricollis Black-throated Mango
Campylopterus largipennis Grey-breasted Sabrewing
Eutoxeres condamini Buff-tailed Sicklebill
Glaucis hirsuta Rufous -breasted Hermit
Thrrenetes niger Pale-tailed Barbthroat**
Phaethornis bourcieri Straight-billed Hermit
Phaethornis hispidus White-bearded Hermit
Phaethornis malaris Great-billed Hermit
Thalurania furcata Fork-tailed Woodnymph
Floriduga mellivora White-necked Jacobin**
Heliodoxa aurescens Gould's Jewelfront
Piciformes
Galibulidae Jacamars
Jacamerops aureus Great Jacamar
Galbula albirostris Yellow-billed Jacamar
Bucconidae Puffbirds
Chelidoptera tenebrosa Swallow-winged Puffbird
Bucco macrodactylus Chestnut-capped Puffbird
Malacoptila fusca White-chested Puffbird
Monasa flavirostris Yellow-billed Nunbird
Monasa morphoeus White-fronted Nunbird
Monasa nigrifrons Black-fronted Nunbird
Notharchus macrorynchos White-necked Puffbird
Capitonidae New World Barbets
Capita aurovirens Scarlet-crowned Barbet
Capita auratus Gilded Barbet
Eubucco bourcierii Lemon-throated Barbet
Ramphastidae Toucans
Pteroglossus azara Ivory-billed Aracari
Pteroglossus castanotis Chestnut-eared Aracari
Pteroglossus inscriptus Lettered Aracari
Pteroglossus pluricinctus Many-banded Aracari
Ramphastos vitellinus Channel-billed Toucan
Ramphastos tucanus White-throated Toucan
Selenidera reinwardtii Golden-collared Toucanet
Picidae Woodpeckers and Piculets
Campephilus melanoleucos Crimson-crested Woodpecker
Campephilus rubricollis Red-necked Woodpecker
Celeus elegans Chestnut Woodpecker
Celeus flavus Cream-coloured
Woodpecker
Celeus grammicus Scale-breasted Woodpecker
Chrysoptilus punctigula Spot-breasted Woodpecker
Dryocopus lineatus Lineated Woodpecker
Melanerpes cruentatus Yellow-tufted Woodpecker
Picumnus lafresnayi Lafresnaye's piculet
Veniliornis passerinus Little Woodpecker
Woodcreepers
Dendrocolaptidae
Dendrocolaptes picumnus Black-banded
Woodcreeper**
Dendrexetastes rufigula Cinnamon-throated Woodcreeper
Dendrocincla fuliginosa Plain Brown Woodcreeper
Glyphorynchus spirurus Wedge-billed Woodcreeper
Lepidocolaptes albolineatus Lineated Woodcreeper
Xiphorhynchus guttatus Buff-throated Woodcreeper
Xiphorhynchus ocellatus Ocellated Woodcreeper
Xiphorhynchus picus Straight-billed Woodcreeper
Furnariidae Ovenbirds
Ancistrops strigilatus Chestnut-winged Hookbill
Phylidor erythropterum Chestnut-winged Foligae-gleaner**
Automolus rubiginosus Ruddy Foliage-gleaner
Philydor pyrrhodes Cinammon-rumped Foliage-gleaner
Xenops minutus Plain Xenops**
Scelerurus caudacutus Black-tailed Leaftosser
Scelerurus mexicanus Tawny-throated Leaftosser**
Scelerurus rufigularis Short-billed Leaftosser**
61
Trogoniformes
Trogonidae Trogons and Quetzals
Pharomachrus pavoninus Pavonine Quetzal
Trogon melanurus Black-tailed Trogon
Trogon viridis Amazonian White-tailed Trogon
Trogon collaris Collared Trogon
Trogon rufus Black-throated Trogon
Trogon violaceus Amazonian Violaceous Trogon
Trogon curucui Blue-crowned Trogon
Coraciiformes
Alcedinidae Kingfishers
Chloroceryle amazona Amazon Kingfisher
Chloroceryle americana Green Kingfisher
Chloroceryle inda Green and Rufous
Kingfisher
Megaceryle torquata Ringed Kingfisher
Momotidae Motmots
Baryphthengus martii Rufous Motmot
Electron platyrhynchum Broad-billed Motmot
Momotus momota Blue-crowned Motmot
Cotingidae Cotinga
Cotinga cayana Spangled Cotinga
Cotinga maynana Plum-throated Cotinga
Gynnoderus foetidus Bare-necked Fruitcrow
Iodopleura isabellae White-browed Purpletuft
Querula purpurata Purple throated Fruitcrow
Pipridae Manakins
Chiroxiphia pareola Blue-backed Manakin
Chloropipo holochlora Green Manakin
Dixiphia pipra White-crowned Manakin
Lepidothrix coronata Blue-crowned Manakin
Machaeropterus regulus Striped Manakin
Manacus manacus White-bearded Manakin
Pipra erythrocephala Golden-headed Manakin
Tyranneutes stolzmanni Dwarf Tyrant Manakin
Tyrannidae Tyrant Flycatchers
Platyrinchus coronatus Golden-crowned Spadebill**
Attila spadiceus Bright-rumped Attila
Colonia colonus Long-tailed Tyrant
Conopias cinchoneti Lemon-browed Flycatcher
Conopias parva Yellow-throated Flycatcher
Contopus virens Eastern Wood-Pewee
Hemitriccus zosterops White-eyed Tody-tyrant
Legatus leucophaius Piratic Flycatcher
Griseotyrannus aurantioatrocristatus
Crowned Slaty Flycatcher**
Leptopogon amaurocephalus Sepia-capped Flycatcher
Lipaugus vociferans Screaming Piha
Megarynchus piangu Boat-billed Flycatcher
Mionectes oleagineus Ochre-bellied Flycatcher
Myiarchus ferox Short-crested Flycatcher
Myiarchus tuberculifer Dusky-capped Flycatcher
Myiobius barbatus Whiskered Flycatcher
Myiodynastes luteiventris Sulphur-bellied Flycatcher
Myiodynastes maculatus Streaked Flycatcher
Myiozetetes granadensis Gray-capped Flycatcher
Myiozetetes luteiventris Dusky-chested Flycatcher
Myiozetetes similis Social Flycatcher
Ochthornis littoralis Drab Water-Tyrant
Pachyramphus marginatus Black-capped Becard
Pachyramphus viridis White-winged Becard**
Pitangus sulphuratus Great Kiskadee
Rhynchocyclus olivaceus Olivaceous Flatbill
Rhytipterna simplex Grayish Mouner
Tityra inquisitor Black-crowned Tityra
Tityra semifasciata Masked Tityra
Tityra cayana Black-tailed Tityra
Terenotriccus erythrurus Ruddy-tailed Flycatcher
Todirostrum chrysocrotaphum Yellow-browed Tody-Flycatcher
Tolmomyias poliocephalus Gray-crowned Flatbill
Tolmomyias viridiceps Olive-faced Flatbill
Tyrannulus elatus Yellow-crowned Tyrannulet
Tyrannus melancholicus Tropical Kingbird
Tyrannus savana Fork-tailed Flycatcher
Tyrannus tyrannus Eastern Kingbird
Zimmerius gracilipes Slender-footed Tyrannulet
Corvidae Crows, Jays, and Magpies
Cyanocorax violaceus Violaceous Jay
Vireonidae Vireos
Vireo olivaceus Red-eyed Vireo
Turdidae Thrushes
Catharus ustulatus Swainson's Thrush
Turdus albicollis White-necked Thrush
Turdus lawrencii Lawrence's Thrush
Hirundinidae Swallows and Martins
Atticora fasciata White-banded Swallow
Stelgidopteryx ruficollis Southern rough-winged swallow
Neochelidon tibialis White-thighed Swallow**
Tachycineta albiventer White-winged Swallow
Troglodytidae Wrens
Campylorhynchus turdinus Thrush-like Wren
Donacobius atricapillus Black-capped Donacobius
Henicorhina leucosticta White-breasted Wood-wren
Microcerculus marginatus Southern Nightingale-Wren
Thryothorus coraya Coraya Wren
62
Polioptilidae Gnatcatchers and
Gnatwrens
Microbates cinereiventris Tawny-faced Gnatwren
Parulidae New World Warblers
Wilsonia canadensis Canada Warbler**
Dendroica aestiva Yellow Warbler
Basileuterus fulvicauda Buff-rumped Warbler
Dendroica fusca Blackburnian Warbler
Dendroica striata Blackpoll Warbler
Tanagers
Thraupidae
Chlorophanes spiza Green Honeycreeper
Cissopis leveriana Magpie Tanager
Cyanerpes caeruleus Purple Honeycreeper
Dacnis flaviventer Yellow-bellied Dacnis
Dacnis lineata Black-faced Dacnis**
Euphonia laniirostris Thick-billed Euphonia
Euphonia rufiventris Rufous-bellied Euphonia
Euponia xanthogaster Orange-bellied Euphonia
Euphonia chrysopasta White-lored Euphonia
Euphonia minuta White-vented Euphonia**
Habia rubica Red-crowned Ant-Tanager
Hemithraupis flavicollis Yellow-backed Tanager
Piranaga olivacea Scarlet Tanager
Piranaga rubra Summer Tanager
Ramphocelus carbo Silver-beaked Tanager
Ramphocelus nigrogularis Masked Crimson Tanager
Tachyphonus cristatus Flame-crested Tanager
Tachyphonus surinamus Fulvous-crested Tanager
Lanio fulvus Fulvous Shrike-tanager**
Tangara callophrys Opal-crowned Tanager
Tangara chilensis Paradise Tanager
Tangara nigrocinta Masked Tanager**
Tangara mexicana Turquoise Tanager
Tangara schrankii Green-and-gold Tanager
Tangara xanthogastra Yellow-bellied Tanager
Tersina viridis Swallow Tanager
Thraupis episcopus Blue-gray Tanager
Thraupis palmarum Palm Tanager
Thamnophilidae Typical Antbirds
Cercomacra cinerascens Gray Antbird
Chamaeza nobilis Striated Antthrush
Dichrozona cincta Banded Antbird
Formicarius analis Black-faced Antthrush
Frederickena unduligera Undulated Antshrike
Hersilochmus dugandi Dugand's Antwren
Hylophlax naevia Spot-backed Antbird
Hylophylax poecilinota Scale-backed Antbird
Hypocnemis cantator Warbling Antbird
Gymnopithys leucapis Bicoloured Antibird**
Hypocnemis hypoxantha Yellow-browed Antbird
Megastictus margaritatus Pearly Antshrike
Myrmeciza hyperythra Plumbeous Antbird
Myrmeciza immaculata Sooty Antbird
Myrmeciza melanoceps White-shouldered Antbird
Myrmornis torquata Wing-banded Antbird
Myrmothera campanisona Thrush-like Antpitta
Myrmotherula axillaris White-flanked Antwren
Myrmotherula hauxwelli Plain-throated Antwren
Myrmotherula longipennis Long-winged Antwren
Myrmotherula obscura Short-billed Antwren
Myrmotherula ornata Ornate Antwren
Mymotherula brahyrura Pygmy Antwren**
Phlegopsis erythroptera Reddish-winged Bare-eye
Phlegopsis nigromaculata Black-spotted Bare-eye
Pithys albifrons White-plumbed Antbird
Schistocichla leucostigma Spot-winged Antbird
Thamnomanes ardesiacus Dusky-throated Antshrike
Thamnophilus murinus Mouse-colored Antshrike
Thamnophilus schistaceus Plain-winged Antshrike
Cardinalidae Saltators, Grosbeaks etc
Cyanocompsa cyanoides Blue-black Grosbeak
Saltator grossus Slate-colored Grosbeak
Saltator maximus Buff-throated Saltator
Emberizidae Emberizine Finches
Ammodramus aurifrons Yellow-browed Sparrow
Oryzoborus angloensis Lesser Seed-Finch
Fringillidae Cardueline Finches
Carduelis psaltria Lesser Goldfinch
Icteridae American Orioles, and Blackbirds
Cacicus cela Yellow-rumped Cacique
Cacicus solitaries Solitary Cacique
Clypicterus oseryi Casqued Oropendola
Gymnomystax mexicanus Oriole Blackbird
Icterus croconotus Orange-backed Troupial
Molothrus oryzivorous Giant Cowbird
Psarocolius angustifrons Russet-backed Oropendola
Psarocolius decumanas Crested Oropendola
Psarocolius viridis Green Oropendola
Class Mammalia
Marsupialia
Didelphidae Opossums
Caluromys lanatus Western woolly opposum
Chironectes minimus Water opossum
Didelphis marsupialis Common opossum
Marmosa lepida Little rufous mouse opossum
Micoureus demerarae Long-furred woolly mouse opossum
Philander sp. Four-eyed opossum
63
Xenarthra
Megalonychidae
Subfamily Choloepinae Two-toed sloths
Choloepus diadactylus Southern two-toed sloth
Dasypodidae Armadillos
Cabassous unicinctus Southern naked-tailed
armadillo
Dasypus novemcinctus Nine-banded armadillo
Chiroptera
Carollinae Short-tailed Fruit bats
Carollia brevicauda
Carollia castanea
Carollia perspicullatus Short-tailed fruit bat
Rhinophylla pumilio Little fruit bat
Desmodontinae Vampire bats
Desmodus rotundus Common vampire bat
Emballonuridae Sac-winged/Sheath-tailed
Bats
Saccopteryx bilineata White-lined bat
Glossophaginae Long tongued bats
Glossophaga soricina Long tongued bat
Lonchophylla robusta Spear-nosed long-tongued bat
Stenodermatidae Neotropical Fruit bats
Artibeus jamaicensis Large fruit-eating bat
Artibeus lituratus Large fruit bat
Artibeus obscurus Large fruit bat
Artibeus planirostus Large fruit bat
Chiroderma villosum Big-eyed bat
Sturrnia lilium Hairy-legged bat
Sturnria oporaphilum Yellow shouldered fruit bat
Uroderma pilobatum Tent-making bat
Vampyrodes caraccioli Great Stripe-faced bat
Phyllostominae Spear-nosed Bats
Macrophyllum macrophyllum Long-legged bat
Mimon crenulatum Hairy-nosed bat
Phyllostomus hastatus Spear-nosed bat
Vespertilionidae Vespertilionid Bats
Myotis nigricans Little brown bat
Primates Monkeys
Callitrichidae
Saguinus nigricollis Black-mantle tamarin
Cebidae
Allouatta seniculus Red howler monkey
Aotus sp. Night monkey
Cebus albifrons White-fronted capuchin
Carnivora Carnivores
Procyonidae Raccoon
Nasua nasua South american coati
Potos flavus Kinkajou
Mustelidae Weasel
Eira barbara Tayra
Lontra longicaudis Neotropical otter
Felidae Cat
Herpailurus yaguarundi Jaguarundi
Leopardus pardalis Ocelot
Puma concolor Puma
Artidactyla Peccaries and Deer
Mazama americana Red brocket deer
Tayassu tajacu Collared peccary
Rodentia Rodents
Echimyidae
Dactylomys dactylinus Amazon bamboo rat
Nectomys squamipes Water rat
Proechimys semispinosus Spiny rat
Sciuridae Squirrels
Sciurus sp. Amazon red squirrel
Sciurillus pusillus Neotropical pygmy squirrel
Large Cavylike Rodents
Agouti paca Paca
Coendou bicolor Bi-color spined porcupine
Dasyprocta fuliginosa Black agouti
Hydrochaeirs hydrochaeirs Capybara
Myoprocta pratti Green acouchy
Class Sauropsida
Lizards
Gekkonidae
Gonatodes concinnatus Collared forest gecko
Gonatodes humeralis Bridled forest gecko
Pseudogonatodes guianensis Amazon pygmy gecko
Gymnophthalmidae
Alopoglossus striventris Black-bellied forest lizard
Arthrosaura reticulata
reticulata Reticulated creek lizard
Cercosaurra argulus
Cercosaura ocellata
Leposoma parietale Common forest lizard
Neusticurus ecpleopus Common streamside lizard
Prionodactylus argulus Elegant-eyed lizard
Prionodactylus oshaughnessyi White-striped eyed lizard
64
Iguanas
Hoplocercidae
Enyalioides laticeps Amazon forest dragon
Polychrotidae
Anolis fuscoauratus Slender anole
Anolis nitens scypheus Yellow-tongued forest anole
Anolis ortonii Amazon bark anole
Anolis punctata Amazon green anole
Anolis trachyderma Common forest anole
Scincidae
Mabuya nigropunctata Black-spotted skink
Tropiduridae
Tropidurus (Plica) plica Collared tree runner
Tropidurus (plica) umbra
ochrocollaris Olive tree runner
Teiidae
Kentropyx pelviceps Forest whiptail
Tupinambis teguixin Golden tegu
Snakes
Colubridae
Atractus elaps Earth snake sp3
Atractus major Earth snake
Atractus occiptoalbus Earth snake sp2
Chironius fuscus Olive whipsnake
Chironius scurruls Rusty whipsnake
Clelia clelia clelia Musarana
Dendriphidion dendrophis Tawny forest racer
Dipsas catesbyi Ornate snail-eating snake
Dipsas indica Big-headed snail-eating snake
Drepanoides anomalus Amazon egg-eating snake
Drymoluber dichrous Common glossy racer
Helicops angulatus Banded south american water snake
Helicops leopardinus Spotted water snake
Imantodes cenchoa Common blunt-headed tree snake
Imantodes lentiferus Amazon blunt-headed tree
snake
Leptodeira annulata annulata Common cat-eyed snake
Leptophis cupreus Brown parrot snake
Liophis miliaris chrysostomus White-lipped swamp snake
Liophis reginae Common swamp snake
Oxyrhopus formosus Yellow-headed calico snake
Oxyrhopus melanogenys Black-headed calico snake
Oxyrhopus petola digitalus Banded calico snake
Pseustes poecilonotus polylepis
Common bird snake
Pseustes sulphureus Giant bird snake
Sphlophus compressus Red-vine snake
Spilotes pullatus Tiger rat snake
Tantilla melanocephala melanocephala
Black-headed snake
Xenedon rabdocephalus Common false viper
Xenedon severos Giant false viper
Xenoxybelis argenteus Green-striped vine snake
Viperidae
Bothriopsis taeniata Speckeled forest pit viper
Bothriopsis bilineata bilineata Western Striped Forest Pit
Viper
Bothrops atrox Fer-de-lance
Bothrops hyoprora Amazonian Hog-Nosed Lancehead
Lachesis muta muta Amazon Bushmaster
Boidae
Boa constrictor constrictor Red-tailed boa
Boa constrictor imperator Common boa constrictor
Corallus enydris enydris Amazon tree boa
Epicrates cenchria gaigei Peruvian rainbow boa
Elapidae
Micurus hemprichii ortonii Orange-ringed coral snake
Micrurus langsdorfii Langsdorffs coral snake
Micrurus lemniscatus Eastern ribbon coral snake
Micrurus spixii spixxi Central amazon coral snake
Micurus surinamensis
surinamensis Aquatic coral snake
Crocodilians
Alligatoridae
Paleosuchus trigonatus Smooth-fronted caiman
Class Amphibia
Caecilians
Typhlonectidae
Caecilia aff. tentaculata
Plethodontidae Lungless Salamanders
Bolitoglossa peruviana Dwarf climbing salamander
Bufonidae Toads
Rhinella marina Cane Toad
Rhinella complex margaritifer Crested Forest Toad
Rhinella dapsilis Sharp-nosed Toad
Dendrophryniscus Leaf Toads
Dendrophryniscus minutus Orange bellied leaf toad
Centrolenidae Glass Frogs
Centrolene sp. undescribed Glass Frog
Cochranella anetarsia Glass Frog
Cochranella midas Glass Frog
Cochranella resplendens Glass Frog
65
Dendrobatidae Poison Frogs
Ameerega bilinguis
Ameerega ingeri Ruby Poison Frog
Ameerega insperatus
Ameerega parvulus
Ameerega zaparo Sanguine Poison Frog
Colostethus bocagei
Colostethus marchesianus Ucayali Rocket Frog
Dendrobates duellmani Duellmans Poison Frog
Hylidae Tree Frogs
Cruziohyla craspedopus Amazon Leaf Frog
cf. Sphaenorhychus carneus Pygmy hatchet-faced Tree Frog
Dendropsophus bifurcus Upper Amazon Tree Frog
Dendropsophus marmorata Neotropical Marbled Tree Frog
Dendropsophus rhodopeplus Red Striped Tree Frog
Dendropsophus triangulium Variable Clown Tree Frog
Hemiphractus aff. scutatus Casque-headed Tree Frog
Hyla lanciformis Rocket Tree Frog
Hyla maomaratus
Hylomantis buckleyi
Hylomantis hulli
Hypsiboas boans Gladiator Tree Frog
Hypsiboas calcarata Convict Tree Frog
Hypsiboas geographica Map Tree Frog
Hypsiboas punctatus Common Polkadot Tree Frog
Hypsiboas geographica Map Tree Frog
Hypsiboas punctatus Common Polkadot Tree
Frog Osteocephalus cabrerai complex
Forest bromeliad Tree Frog
Osteocephalus cf. deridens
Osteocephalus leprieurii Common bromeliad Tree Frog
Osteocephalus planiceps Flat-headed bromeliad Tree Frog
Trachycephalus resinifictrix Amazonian Milk Tree Frog
Phyllomedusa tarsius Warty Monkey Frog
Phyllomedusa tomopterna Barred Monkey Frog
Phyllomedusa vaillanti White-lined monkey Tree Frog
Scinax garbei Fringe lipped Tree Frog
Scinax rubra Two-striped Tree Frog
Trachycephalus venulosus Common milk Tree Frog
Microhylidae Sheep Frogs
Chiasmocleis bassleri Bassler's Sheep Frog
Leptodactylidae Rain Frogs
Edalorhina perezi Eyelashed Forest Frog
Prystimantis acuminatus Green Rain Frog
Prystimantis aff peruvianus Peruvian Rain Frog
Prystimantis altamazonicus Amazonian Rain Frog
Prystimantis conspicillatus Chirping Robber Frog
Prystimantis lanthanites Striped-throated Rain Frog
Prystimantis malkini Malkini's Rain Frog
Prystimantis martiae Marti's rainfrog
Prystimantis ockendeni complex
Carabaya Rain Frog
Prystimantis sulcatus Broad-headed Rain Frog
Prystimantis variabilis Variable Rain Frog
Hypnodactylus nigrovittatus Black-banded Robber Frog
Strabomantis sulcatus Broad-headed Rain Frog
Engystomops petersi Painted Forest Toadlet
Leptodactylus andreae Cocha Chirping Frog
Leptodactylus knudseni Rose-sided Jungle Frog
Leptodactylus mystaceus
Leptodactylus rhodomystax Moustached Jungle Frog
Leptodactylus wagneri Wagneris Jungle Frog
Lithodytes lineatus Painted Antnest Frog
Oreobates quixensis Common big headed Rain Frog
Vanzolinius discodactylus Dark-blotched Whistling
Frog
Ranidae True Frogs
Rana palmipes Neotropical Green Frog
Class Arachnida
Araneae
Nephila clavipes Golden Silk Spider
Ancylometes terrenus Giant Fishing Spider
Class Insecta
Coleoptera
Euchroma gigantea Giant Ceiba Borer
Homoeotelus d'orbignyi Pleasing Fungus Beetle
Scarabaeidae
Canthon luteicollis
Deltochilum howdeni
Dichotomius ohausi
Dichotomius prietoi
Eurysternus caribaeus
Eurysternus confusus
Eurysternus foedus
Eurysternus inflexus
Eurysternus plebejus
Grylloptera
Panacanthus cuspidatus Spiny Devil Katydid
Hemiptera
Dysodius lunatus Lunate Flatbug
Lepidoptera
Lycaenidae
Celmia celmus
Janthecla sista
Thecla aetolius
Thecla mavors
Colobura annulata
66
Colobura dirce
Nymphalidae
Apaturinae
Doxocopa agathina
Doxocopa griseldis
Doxocopa laurentia
Doxocopa linda
Biblidinae
Biblis hyperia
Callicore cynosura
Catonephele acontius
Catonephele esite
Catonephele numilia
Diaethria clymena
Dynamine aerata
Dynamine arthemisia
Dynamine athemon
Dynamine gisella
Ectima thecla lerina
Eunica alpais
Eunica amelio
Eunica clytia
Eunica volumna
Hamadryas albicornus
Hamadryas arinome
Hamadryas chloe
Hamadryas feronia
Hamadryas laodamia
Nessaea batesii
Nessaea hewitsoni
Nica flavilla
Panacea prola
Panacea regina
Paulogramma peristera
Phrrhogyra amphiro
Pyrrhogyra crameri
Pyrrhogyra cuparina
Pyrrhogyra cf nasica
Pyrrhogyra otolais
Temenis laothoe
Charaxinae
Agrias claudina
Archaeoprepona amphimachus
Archaeoprepona demophon
Archaeoprepona demophon muson
Archaeoprepona licomedes
Consul fabius
Hypna clytemnestra
Memphis arachne
Memphis oenomaus
Memphis philomena
Memphis offa
Prepona eugenes
Prepona dexamenus
Prepona laertes
Prepona pheridamas
Zaretis isidora
Zaretis itys
Cyrestinae
Marpesia berania
Marpesia crethon
Marpesia petreus
Danainae
Pieridae
Appias drusilla
Dismorphia pinthous
Eurema cf xanthochlora
Perrhybris lorena
Phoebis rurina
Danainae
Danaini
Danaus plexippus
Ithomiini
Aeria eurimidea
Ceratinia tutia
Hypoleria sarepta
Hyposcada anchiala
Hyposcada illinissa
Hypothyris anastasia
Hypothyris fluonia
Ithomia amarilla
Ithomia salapia
Mechanitis lysimnia
Mechanitis mazaeus
Mechanitis messenoides
Methona confusa psamathe
Methone cecilia
Oleria gunilla
Oleria ilerdina
Oleria tigilla
Tithorea harmonia
Heliconinae
Acraeini
Actinote sp.
Heliconiini
Dryas iulia
Eueides eunice
Eueides isabella
Eueides lampeto
Eueides lybia
67
Heliconius erato
Heliconius hecale
Heliconius melponmene
Heliconius numata
Heliconius sara
Heliconius xanthocles
Heliconius doris
Philaethria dido
Limenitidinae
Adelpha amazona
Adelpha cocala
Adelpha cytherea
Adelpha erotia
Adelpha iphicleola
Adelpha iphiclus
Adelpha lerna
Adelpha melona
Adelpha mesentina
Adelpha naxia
Adelpha panaema
Adelpha phrolseola
Adelpha thoasa
Adelpha viola
Adelpha ximena
Nymphalinae
Anartia amathae
Anartia jatrophae
Baeotus deucalion
Eresia eunice
Eresia pelonia
Historis odius
Historis acheronta
Metamorpha elisa
Metamorpha sulpitia
Phyciodes plagiata
Siproeta stelenes
Smyrna blomfildia
Tigridia acesta
Satyrinae
Brassolini
Bia actorion
Caligo eurilochus
Caligo idomeneus idomeneides
Caligo illioneus
Caligo teucer
Catoblepia cassiope
Caligo placidiamus
Catoblepia berecynthia
Catoblepia cassiope
Catoblepia generosa
Catoblepia sorannus
Catoblepia xanthus
Opsiphanes invirae
Haeterini
Cithaerias aurora
Cithaerias menander
Cithaerias pireta
Haetera macleannania
Haetera piera
Pierella astyoche
Pierella hortona
Pierella lamia
Pierella lena
Pierella lucia
Morphini
Antirrhea hela
Antirrhea philoctetes avernus Common Brown Morpho
Morpho achilles
Morpho deidamia
Morpho helenor
Morpho menelaus
Morpho peleides
Morpho polycarmes
Satyrini
Caeruleuptychia scopulata
Chloreuptychia agatha
Chloreuptychia herseis
Euptychia binoculata
Euptychia labe
Euptychia myncea
Euptychia renata
Hermeuptychia hermes
Sarota chrysus
Sarota spicata
Setabis gelasine
Stalachtis calliope
Stalachtis phaedusa
Synargis orestessa
Magneuptychia analis
Magneuptychia libye
Magneuptychia ocnus
Magneuptychia ocypete
Magneuptychia tiessa
Pareuptychia hesionides Pareuptychia hesionides
Pareuptychia ocirrhoe
Taygetis cleopatra Cleopatra Satyr
Taygetis echo Echo Satyr
Taygetis mermeria
Taygetis sosis Sosis Satyr
Papilionidae
Battus belus varus
68
Battus polydamas
Papilio androgeus
Papilio thoas cyniras
Parides aeneas bolivar
Parides lysander
Parides pizarro
Parides sesostris
Riodinidae
Amarynthis meneria
Ancyluris endaemon
Ancyluris aulestes
Ancyluris etias
Anteros renaldus
Calospila cilissa
Calospila partholon
Calospila emylius
Calydna venusta
Cartea vitula
Emesis fatinella
Emesis lucinda
Emesis mandana
Emesis ocypore
Eurybia dardus
Eurybia elvina
Eurybia franciscana
Eurybia halimede
Eurybia unxia
Hyphilaria parthenis
Isapis agyrtus
Ithomiola floralis
Lasaia agesilaus narses
Lasaia pseudomeris
Leucochimona vestalis
Livendula amaris
Livendula violacea
Lyropteryx appolonia
Mesophthalma idotea
Mesosemia loruhama
Mesosemia latizonata
Napaea heteroea
Nymphidium mantus
Nyphidium nr minuta
Nymphidium lysimon
Nymphidium balbinus
Nymphidium caricae
Nymphidium chione
Pandemos pasiphae
Perophtalma lasus
Pirascca tyriotes
Rhetus arcius
Rhetus periander