Protocolo para el seguimiento a largo plazo de anfibios en

Doñana

Este protocolo tiene como objetivo el seguimiento de la comunidad de anfibios de

Doñana y en concreto detectar su presencia o ausencia en una serie de puntos de

agua, así como valorar anualmente que especies han completado con éxito el

desarrollo larvario, es decir, en cuales las larvas y renacuajos han llegado al estadío

de metamórficos o jóvenes adultos.

Para la detección de los anfibios se han combinado cuatro técnicas: prospección

visual, escucha, mangueos y muestreo con nasas camaroneras. Se ha considerado

necesario utilizar este abanico de métodos para poder hacer frente a la gran

variabilidad de medios acuáticos que se dan en Doñana, a la que imponen las lluvias,

también altamente impredecibles, así como a las diferentes estrategias vitales de las

especies de anfibios presentes en Doñana.

Las nasas y mangueos detectan principalmente aquellos estadíos que como las larvas

son estrictamente acuáticos y presentan periodos prolongados de estancia en el agua.

Así mismo son muy útiles en aquellas especies cuyos adultos tienen también hábitos

muy acuáticos o durante el periodo reproductivo de los adultos de la mayoría de las

especies.

La prospección visual por las orillas, con aguas claras, permite detectar la presencia

de larvas, adultos y puestas. Por último, varias especies de Doñana, son fácilmente

identificables por el canto.

El muestreo de anfibios se realiza en cada localidad conjuntamente con los de calidad

de agua, vegetación, invertebrados acuáticos y peces. En cada punto se registran

también datos meteorológicos y párametros de calidad del agua.

Metodología

Una vez en el punto de muestreo, se determina en primer lugar, si es posible o no

realizar el muestreo. Así, si la estación de muestreo estuviese seca u otra

circunstancia impidiera llevar a cabo el muestreo, se consignará expresamente que

éste no ha podido hacerse y las razones por las cuales no se ha hecho.

Si hubiera agua, hay que registrar los encharcamientos adicionales disponibles para

los anfibios en la zona, además del cuerpo principal (en el caso de lagunas o caños),

ya que de existir se muestrearán también.

A continuación se hará una prospección visual, siempre que el agua esté clara,

buscando renacuajos y huevos. Se registrará también cualquier adulto visto u oído.

Nasas

Una vez hecho ésto, se procederá a colocar hasta un máximo de 5 nasas

camaroneras, cuando se muestree en lagunas y arroyos, y hasta 9 en el caso de la

marisma. Es importante señalar que el número final de nasas que se pone en cada

punto de muestreo puede variar de una campaña a otra ya que depende de la

cantidad de agua que presenta el humedal.

Las nasas se instalan en lugares donde el agua tenga una profundidad de entre 20 y

60 cm, en zonas con vegetación acuática preferentemente y a una distancia, unas de

otras, de entre 10 y 20m. Las nasas han de colocarse de tal modo que al menos la

última muerte, quede con la parte superior fuera del agua para evitar el ahogamiento

de los anfibios y otros animales aerobios que se puedan capturar. Las nasas se dejan

actuar durante 24 horas.

El contenido de cada nasa retirada se vuelca en una espuerta para el conteo e

identificación de los individuos capturados. Es conveniente separar lo antes posible los

anfibios del resto de animales capturados para evitar que les produzcan daños.

Nasa camaronera

Mangueos

En las zonas encharcadas de los alrededores de la cubeta principal y en ésta, siempre

que no sea posible la colocación de nasas, se procederá a muestrear un máximo de

10 puntos mediante mangueo, separados al menos unos 5 metros unos de otros. Se

mangueará preferentemente en las orillas y las zonas con vegetación. Para los

mangueos se utilizará una manga, realizándose tres pasadas consecutivas (ida-vuelta-

ida) por el fondo y columna de agua del humedal, permaneciendo estático el

muestreador.

Datos a tomar

Se contabilizaran todos los ejemplares capturados o vistos por especie, diferenciando

por clases de edad: larva, metamórfico (considerando como tal al individuo que

presenta ya trazas de patas delanteras), juvenil y adulto. En el caso de los adultos se

hará distinción entre hembras y machos. En cada nasa se registrará además, el peso

del conjunto de los individuos de la misma especie con el mismo estadio y sexo. Así

mismo se anotará cualquier anomalía que se observe (enfermedades,

malformaciones, animales muertos, mortandades masivas, etc.). Todos los animales

capturados serán devueltos al agua en el menor tiempo posible.

La toma de datos se registra desde 2008 usando ordenadores de mano, tipo PDA,

dotados de GPS. Para ello se utiliza el programa Cybertracker

(http://www.cybertracker.co.za/) con una secuencia específica diseñada para este

muestreo.

Identificación

En caso de duda, los anfibios capturados se transportarán al laboratorio para su

identificación posterior. Para ello se utilizarán botes de plástico de al menos 1 litro de

capacidad, en los que se tomará también agua de la misma charca y que irán

identificados con el nombre de la localidad y la fecha. Debe evitarse que estos

recipientes se calienten durante el transporte al laboratorio, para que no mueran las

larvas.

Ya en el laboratorio se usará una lupa para la identificación. En el caso de larvas muy

pequeñas, será necesario habilitar pequeños acuarios individuales, en los cuales los

renacuajos puedan desarrollarse hasta el momento en que sea posible su

identificación. Una vez identificados, los animales capturados serán devueltos a sus

lugares de origen en el menor tiempo posible.

Localidades de muestreo

El número de localidades a muestrear se fija, a partir de 2007, en 39 puntos repartidos

por toda la comarca de Doñana (Tabla 1). La selección de localidades se ha hecho de

modo que esten representados todos los tipos de hábitats acuáticos que usan los

anfibios en Doñana: charcas efímeras, caños, zacallones, lagunas temporales y

marisma, procurando además que la distribución de puntos de muestreo sea

equilibrada espacialmente.

Tabla 1. Localidades donde se llevan a cabo los muestreos de anfibios y número máximo de nasas que se colocan en cada una de ellas.

Código Nombre Nº máximo de nasas

1 Laguna Dulce 5 7 Laguna del Navazo del Toro 5 9 Laguna del Sopetón 5 12 Laguna del Hilillo Rosado 5 13 Laguna de la Espajosa 5 15 Charco de la Boca 5 17 Laguna de la Mata de los Domínguez 5 18 Laguna de Caño Salado 5 21 Caño de Zorrabarba 5 22 La Dehesa 5 23 Laguna del Carrizal 5 26 Veta Hornito 9 27 Llanos del Taraje 5 30 Marisma del Rocío 9

Código Nombre Nº máximo de nasas

31 Laguna de los Mimbrales 5 34 Caño de la Caquera 9 37 Caño Guadiamar-FAO 9 38 Caño Guadiamar en Cancela Millán 9 39 Lucio Ánsares. R. los Corros 9 40 Lucio del Membrillo 9 42 Caño Travieso 9 43 Caño Travieso en Leo Biaggi 9 46 Honduras del Burro 9 49 Lucio de Marilópez 9 52 Arroyo de la Laguna de los Reyes 5 53 Caño Marín 5 54 Arroyo del Partido 5 55 Brazo de la Torre-Veta de Alí 5 59 Marisma RBD 9 62 Caño Mayor 5 81 Lucio del Lobo 9 82 Lucio del Rey 9 83 Veta Lengua 9 84 Caño Travieso junto a Huerta Tejada 9 85 Laguna de las Hormigas 5 87 Laguna del Vivero de la Mata 5 88 Laguna de la Anguila 5 89 Lucio del Cuquero Chico 9 90 Laguna del Vivero de Sancho Mingo 5

Calendario y periodicidad

Se llevan a cabo dos muestreos anuales (conjuntos con otros muestreos acuáticos):

1) Muestreo de llenado tras la inundación, con fecha móvil. A realizar 15 días después

que haya cogido agua la marisma y las lagunas temporales (entre octubre y febrero).

2) Muestreo de máxima productividad. Fecha fija: entre abril y mayo.

Periodicidad anual.

Resultados

Los resultados que aparecen en la página web son un resumen de los tomados y se

muestran en tablas excel.

Tabla de presencia – ausencia y éxito reproductivo. Se da: el número de muestreos

realizados cada año hidrometeorológico (del 1 de septiembre al 31 de agosto del

siguiente año); la precipitación total caída durante este periodo; los meses en que se

realizaron los muestreos; las especies detectadas en cada localidad (1 = presente; 0 =

no detectado); y las especies en que se han detectado metamórficos o juveniles por

punto de muestreo ( se señalizan en color rosa).

Tabla con el Listado de estaciones. Se da el listado completo de estaciones en las que

se ha muestreado desde 2003.

Tabla de metadatos. Se dan detalles sobre los parámetros que aparecen en la tabla de

presencia – ausencia.

Los datos originales detallados, así como los que se toman de otros organismos

acuáticos, calidad del agua y meteorología, están disponibles bajo petición.

Referencias

Díaz-Paniagua, C., Gómez Rodríguez, C. Portheault, A. y de Vries, W. 2005. Los

anfibios de Doñana. Serie técnica. Ministerio Medio Ambiente, OAPN, Madrid. 198 pp.

Asesora científica: Dra. Carmen Díaz-Paniagua. Investigadora. Estación Biológica de

Doñana. CSIC.

Otros seguimientos relacionados

Seguimiento de la inundación de charcas y lagunas temporales (http://www-

rbd.ebd.csic.es/Seguimiento/mediofisico/aguassuperficiales/charcas/charcas.xls )

Ana C. Andreu. Equipo de Seguimiento de Procesos Naturales. Estación Biológica de

Doñana. CSIC.

Última actualización: 19-agosto-2009