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Arbeitsanleitung / Manual

Pankreatische Amylase ELISAZur in-vitro-Bestimmung der humanen

pankreatischen Amylase in Stuhl

Pancreatic amylase ELISAFor the in vitro determination of human

pancreatic amylase in stool

Gültig ab / Valid from 2019-03-28

Immundiagnostik AG, Stubenwald-Allee 8a, 64625 Bensheim, Germany

Tel.: +49 6251 70190-0 Fax: + 49 6251 849430

e.mail: [email protected] www.immundiagnostik.com

K 6410+2 °C

+8 °C

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Arbeitsanleitung Pankreatische Amylase

Inhalt

1. VERWENDUNGSZWECK ________________________________________________ 2

2. EINLEITUNG __________________________________________________________ 2

3. INHALT DER TESTPACKUNG ____________________________________________ 2

4. ERFORDERLICHE LABORGERÄTE UND HILFSMITTEL _______________________ 3

5. LAGERUNG UND VORBEREITUNG DER REAGENZIEN _______________________ 3

6. PROBENLAGERUNG UND -VORBEREITUNG _______________________________ 4

Probenlagerung ________________________________________________________ 4Stuhlprobenextraktion ___________________________________________________ 4Probenverdünnung ______________________________________________________ 5

7. TESTDURCHFÜHRUNG _________________________________________________ 6

Testprinzip ____________________________________________________________ 6Pipettierschema ________________________________________________________ 6

8. ERGEBNISSE __________________________________________________________ 7

9. EINSCHRÄNKUNGEN __________________________________________________ 8

10. QUALITÄTSKONTROLLE ________________________________________________ 8

Referenzwerte __________________________________________________________ 9

11. TESTCHARAKTERISTIKA _______________________________________________ 9

Präzision und Reproduzierbarkeit ___________________________________________ 9Analytische Sensitivität ___________________________________________________ 9

12. VORSICHTSMASSNAHMEN _____________________________________________ 9

13. TECHNISCHE MERKMALE _____________________________________________ 10

14. ALLGEMEINE HINWEISE ZUM TEST _____________________________________ 10

15. LITERATUR __________________________________________________________ 11


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1. VERWENDUNGSZWECKDer hier beschriebene Assay ist für die Bestimmung von pankreatischer Amylase aus Stuhl geeignet. Nur zur in-vitro-Diagnostik.

2. EINLEITUNGDie pankreatische Amylase wird wie die Lipase und Elastase vom Pankreas synthe-tisiert. Einige Krankheitsbilder sind mit einer Pankreasinsuffizienz assoziiert (Alkoholismus, Unfalltrauma, Fibrose). In der Laborroutine bestätigt sich die pankreatische Amylase als echte Alternative zur Elastase-I in der Stuhldiagnostik.

Indikationen• Chronische Pankreatitis• Exokrine pankreatische Insuffizienz

3. INHALT DER TESTPACKUNGArt.-Nr. Bezeichnung Kit-Komponenten Menge

K 6410 PLATE Mikrotitermodul, vorbeschichtet 12 x 8 Vertiefungen

K 0001.C.100 WASHBUF Waschpufferkonzentrat, 10 x 2 x 100 ml

K 6410 CONJ Konjugatkonzentrat, peroxidasemarkiert 1 x 150 µl

K 6410 STD Standards, lyophilisiert (0; 440; 1750; 7000; 28000 mU/l) 4 x 5 vials

K 6410 CTRL 1 Kontrolle, lyophilisiert (Bereich der Spezifikation entnehmen) 4 x 1 vial

K 6410 CTRL 2 Kontrolle, lyophilisiert (Bereich der Spezifikation entnehmen) 4 x 1 vial

K 0002.15 SUB Substrat (Tetramethylbenzidin), gebrauchsfertig 1 x 15 ml

K 0003.15 STOP Stopplösung, gebrauchsfertig 1 x 15 ml

Für Nachbestellungen von Einzelkomponenten verwenden Sie als Bestellnummer die Artikel-nummer gefolgt von der Bezeichnung.

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4. ERFORDERLICHE LABORGERÄTE UND HILFSMITTEL• Reinstwasser*• Stuhlprobenaufbereitungssystem wie z.B. Artikel-Nr. K 6998SAS• Präzisionspipetten und Pipettenspitzen für den Einmalgebrauch mit varia-

blen Volumina von 10–1000 µl• Folie zum Abkleben der Mikrotiterplatte• Mikrotiterplattenschüttler• Multikanal- bzw. Multipipette• Vortex-Mixer• Laborübliche Glas- oder Plastikröhrchen (Einmalartikel)• Mikrotiterplattenphotometer (benötigte Filter siehe Kapitel 7)

* Immundiagnostik AG empfiehlt die Verwendung von Reinstwasser nach ISO 3696. Es han-delt sich dabei um Wasser des Typs 1, welches frei von ungelösten und kolloidalen Ionen und organischen Molekülen ist (frei von Partikeln > 0,2 µm) mit einer elektrischen Leitfähigkeit von 0,055 µS/cm bei 25 °C (≥ 18,2 MΩ cm).

5. LAGERUNG UND VORBEREITUNG DER REAGENZIEN• Bitte achten Sie bei mehrfachem Einsatz des Kits darauf, dass die Reagenzi-

en wie auf dem Etikett angegeben gelagert und nur die für den jeweiligen Ansatz benötigten Reagenzienmengen frisch angesetzt werden. Der Kit kann so bis zu 4 x je nach Probenaufkommen bis zum angegebenen Haltbar-keitsdatum verwendet werden.

• Reagenzien mit einem Volumen kleiner 100 µl sollten vor Gebrauch kurz an-zentrifugiert werden, um Volumenverluste zu vermeiden.

• Vorbereitung des Waschpuffers: Das Waschpufferkonzentrat (WASHBUF) muss vor Gebrauch 1:10 in Reinstwasser verdünnt werden (100 ml WASH-BUF + 900 ml Reinstwasser), gut mischen. Aufgrund des hohen Salzgehalts im Konzentrat kann es zu Kristallbildungen kommen. Die Kristalle lösen sich bei Raumtemperatur bzw. im Wasserbad bei 37 °C auf. Das WASHBUF kann bei 2–8 °C bis zum angegebenen Haltbarkeitsdatum aufbewahrt werden. Der Waschpuffer (1:10 verdünntes WASHBUF) ist 1 Monat bei 2–8 °C in einem geschlossenen Gefäß haltbar.Der Waschpuffer dient auch als Probenextraktionspuffer (siehe Proben-vorbereitung).

• Die lyophilisierten Standards (STD) und Kontrollen (CTRL) sind bei 2–8 °C bis zum angegebenen Haltbarkeitsdatum verwendbar. STD und CTRL werden mit 500 µl Reinstwasser rekonstituiert und kurz geschwenkt, um eine voll-ständige Rekonstitution zu gewährleisten. Sie werden zum Lösen 10 Minuten


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stehen gelassen und anschließend gründlich gemischt. Standards und Kon-trollen (rekonstituierte STD und CTRL) sind nicht stabil und können nicht gelagert werden.

• Vorbereitung des Konjugats: Das Konjugatkonzentrat (CONJ) wird vor Ge-brauch 1:101 in Waschpuffer verdünnt (100 µl CONJ + 10 ml Waschpuffer). Das CONJ ist bei 2–8 °C bis zum angegebenen Haltbarkeitsdatum stabil. Kon-jugat (1:101 verdünntes CONJ) ist nicht stabil und kann nicht aufbewahrt werden.

• Alle anderen Testreagenzien sind gebrauchsfertig und, bei 2–8 °C gelagert, bis zum angegebenen Verfallsdatum (siehe Etikett) verwendbar.

6. PROBENLAGERUNG UND -VORBEREITUNG

Probenlagerung

RohstuhlRohstuhlproben können bei -20 °C für 4 Wochen gelagert werden. Wiederholtes Ein-frieren und Auftauen ist zu vermeiden.

StuhlprobenextraktStuhlprobenextrakt ist nicht haltbar.

StuhlprobenextraktionWaschpuffer (1:10 verdünntes WASHBUF) wird als Probenextraktionspuffer verwen-det. Wir empfehlen folgende Probenvorbereitung:

Stuhlprobenaufbereitungssystem (SAS) (Artikel-Nr. K 6998SAS)

Stuhlprobenröhrchen - AnwendungBitte beachten Sie, dass der Verdünnungsfaktor der Stuhlsuspension von der aufgenommenen Stuhlmenge und dem Puffervolumen abhängig ist:

SAS mit 1,5 ml Probenextraktionspuffer:Aufgenommene Stuhlmenge: 15 mgPuffervolumen: 1,5 mlVerdünnungsfaktor: 1:100

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Die Aufbereitung von Stuhlproben mit Hilfe des SAS wird wie folgt durchge-führt:

a) Die Rohprobe muss aufgetaut sein, bei auffallend inhomogenen Proben empfiehlt sich eine mechanische Homogenisierung durch Spatel, Impföse o. Ä.

b) Das unbefüllte Stuhlprobenröhrchen vor der Verwendung mit 1,5 ml Waschpuffer befüllen. Wichtig: Waschpuffer vor Gebrauch auf Raumtem-peratur bringen!

c) Röhrchen aufschrauben (gelbes Gewinde), der untere Teil des Stäbchens weist Einkerbungen auf, welche durch Einstechen in die Stuhlprobe vollkom-men mit Probe bedeckt werden müssen. Anschließend das Stäbchen durch den Abstreifring zurück ins Röhrchen stecken (leichter Widerstand) und fest verschrauben.

d) Das Röhrchen solange vortexen bis keine Stuhlreste mehr in den Einker-bungen auszumachen sind. Für die Erhebung valider Messwerte ist darauf zu achten, dass die Stuhlsuspension nach dem Mischungsprozess eine mög-lichst homogene Konsistenz aufweist. Bei besonders festen Stühlen kann die Homogenität der Suspension durch längeres Einweichen (ca. 10 min) des Stuhls in Extraktionspuffer bedeutend gesteigert werden.

e) Nach erfolgter Suspendierung der Probe wird das Röhrchen ca. 10 Minuten stehen gelassen. Aufschwimmende Schalen von Körnern u. Ä. können hierbei vernachlässigt werden.

f ) Anschließend wird der gesamte Kopf des Stuhlprobenröhrchens (blauer Ring) zusammen mit dem Stäbchen vorsichtig abgeschraubt und verworfen. Beim Abschrauben des Kopfes ist darauf zu achten, dass das abgesetzte Sedi-ment nicht erneut aufgewirbelt wird.

Verdünnung I 1:100

ProbenverdünnungDie Suspension aus der Probenvorbereitung (Verdünnung I) wird 1:20 mit Wasch-puffer weiterverdünnt. Zum Beispiel:

• 50 µl Überstand (Verdünnung I) + 950 µl Waschpuffer, mischen = 1:20 (Verdünnung II) Dies entspricht einer Gesamtverdünnung von 1:2 000.

100 µl der Verdünnung II werden im Test pro Vertiefung eingesetzt.


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7. TESTDURCHFÜHRUNG

TestprinzipDieser ELISA dient zur quantitativen Bestimmung der pankreatischen Amylase im Stuhl. In diesem Assay bindet die pankreatische Amylase aus der Probe an den auf der Platte fixierten anti-pankreatische-Amylase-Antikörper. Nach einem Wasch-schritt erfolgt die Detektion der gebundenen pankreatischen Amylase durch Zugabe eines Peroxidase-Konjugats. Als Peroxidasesubstrat wird Tetra methylbenzidin (TMB) eingesetzt. Die Enzymreaktion wird durch Zugabe von Säure abgestoppt. Dadurch erfolgt ein Farbumschlag von blau nach gelb. Die entstandene chromogene Verbin-dung wird photometrisch gemessen. Die Intensität der Farbe ist direkt proportional zum Gehalt der pankreatischen Amylase. Anhand einer mitgeführten Standardkurve – optische Dichte (Absorption bei 450 nm) versus Standardkonzentration – lässt sich die Konzentration der Probe ermitteln.

PipettierschemaVor Gebrauch alle Reagenzien und Proben auf Raumtemperatur (15–30 °C) brin-gen, gut mischen.Markieren Sie die Positionen für Standards/Proben/Kontrollen im Protokollblatt.Die benötigten Mikrotiterstreifen aus dem Kit nehmen. Nicht verwendete Mikroti-terstreifen müssen zusammen mit dem Trockenmittelbeutel in der verschlossenen Aluminiumverpackung bis zum angegebenen Haltbarkeitsdatum bei 2–8 °C gelagert werden.Im Fall einer automatisierten Abarbeitung des Tests können automatenspezifische Anpassungen der Prozedur notwendig sein, um den jeweiligen technischen Gege-benheiten gerecht zu werden. Für Unterstützung und Rückfragen wenden Sie sich bitte an Ihren Anbieter oder Immundiagnostik AG.Wir empfehlen, die Bestimmungen in Doppelwerten durchzuführen.

1.Die Vertiefungen vor Gebrauch 5 x mit je 250 µl Waschpuffer waschen. Nach dem letzten Waschschritt Reste von Waschpuffer durch Ausklop-fen auf saugfähigem Papier entfernen.

2. 100 µl Standards/Kontrollen/verdünnte Proben in die jeweiligen Ver-tiefungen pipettieren.

3. Streifen abdecken und 1 Stunde bei Raumtemperatur (15–30 °C) unter Schütteln* inkubieren.

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4.Inhalt der Vertiefungen verwerfen und 5 x mit je 250 µl Waschpuffer waschen. Nach dem letzten Waschschritt Reste von Waschpuffer durch Ausklopfen auf saugfähigem Papier entfernen.

5. 100 µl Konjugat (verdünntes CONJ) in jede Vertiefung pipettieren.

6. Streifen abdecken und 1 Stunde bei Raumtemperatur (15–30 °C) inku-bieren.

7.Inhalt der Vertiefungen verwerfen und 5 x mit je 250 µl Waschpuffer waschen. Nach dem letzten Waschschritt Reste von Waschpuffer durch Ausklopfen auf saugfähigem Papier entfernen.

8. 100 µl Substrat (SUB) in jede Vertiefung pipettieren.

9. 10–20 min** bei Raumtemperatur (15–30 °C) im Dunkeln inkubieren.

10. 100 µl Stopplösung (STOP) in jede Vertiefung pipettieren, gut mischen

11.

Extinktion sofort im Mikrotiterplattenphotometer bei 450 nm gegen die Referenzwellenlänge 620 nm (oder 690 nm) messen. Ist keine Refe-renzwellenlänge vorhanden, wird nur bei 450 nm gemessen. Falls die Extinktion des höchsten Standards den Messbereich des Photometers übersteigt, sollte sofort bei 405 nm gegen 620 nm (690 nm) gemessen werden.

* Wir empfehlen die Streifen bei 550 rpm (Umdrehungen pro Minute) mit einem Orbit von 2 mm zu schütteln.

** Die Intensität der Farbentwicklung ist temperaturabhängig. Es wird empfohlen, den Farbum-schlag während der Inkubationszeit zu beobachten und entsprechend der Farbentwicklung die Reaktion zu stoppen.

8. ERGEBNISSEDie unten beschriebenen mathematischen Modelle können alternativ zur Auswer-tung benutzt werden. Wir empfehlen die 4-Parameter-Funktion:

1. 4-Parameter-FunktionFür die optische Dichte empfehlen wir eine lineare Ordinate und für die Konzen-tration eine logarithmische Abszisse (bei einer logarithmischen Abszisse muss für den Standard mit der Konzentration 0 ein Wert kleiner 1 eingegeben werden z. B. 0,001).


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2. Punkt-zu-Punkt-AuswertungFür die optische Dichte und für die Konzentration empfehlen wir eine lineare Ordinate bzw. Abszisse.

3. Gewichtete Spline-FunktionFür die optische Dichte und für die Konzentration empfehlen wir eine lineare Ordinate bzw. Abszisse.

Vor jeder automatischen Auswertung sollte stets eine Kontrolle der Doppelwerte auf Plausibilität („Ausreißerkontrolle“) durchgeführt werden; falls dies nicht durch das verwendete Programm erfolgt, sollte die Kontrolle manuell durchgeführt werden.

StuhlprobenDie ermittelten Ergebnisse werden mit dem Verdünnungsfaktor 2 000 multipli-ziert, um die tatsächlichen Konzentrationen zu erhalten.Sollte ein anderer Verdünnungsfaktor verwendet worden sein, so ist die ermittelte Konzentration mit dem verwendeten Verdünnungsfaktor zu multiplizieren.

9. EINSCHRÄNKUNGENProben mit Konzentrationen oberhalb des Messbereichs (Definition siehe unten) müssen stärker verdünnt und erneut gemessen werden. Bitte beachten Sie diese stärkere Verdünnung bei der Ergebnisberechnung.Proben mit Konzentrationen unterhalb des Messbereichs (Definition siehe unten) können nicht klar quantifiziert werden.Die Obergrenze des Messbereichs ergibt sich aus:

höchste Konzentration der Standardkurve × anzuwendender Probenverdünnungs-faktor

Die Untergrenze des Messbereichs ergibt sich aus:Analytische Sensitivität × anzuwendender Probenverdünnungsfaktor

Analytische Sensitivität siehe Kapitel „Testcharakteristika“.

10. QUALITÄTSKONTROLLEImmundiagnostik empfiehlt den Einsatz von externen Kontrollen für die interne Qualitätskontrolle, wenn möglich.Wir empfehlen, bei jedem Testansatz Kontrollen mitzumessen. Die Ergebnisse der Kontrollen müssen auf Richtigkeit überprüft werden. Liegen eine oder mehrere Kon-

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trollen außerhalb des angegebenen Bereiches, kann Immundiagnostik AG die Rich-tigkeit der Messergebnisse nicht gewährleisten.

ReferenzwertePankreatische Amylase: > 1000 U/lGraubereich: 1000–1500 U/l

Wir empfehlen jedem Labor, einen eigenen Referenzbereich zu etablieren.

11. TESTCHARAKTERISTIKA

Präzision und Reproduzierbarkeit

Intra-Assay (n = 40)

Probe Pankreatische Amylase [U/l] VK [%]

1 8567 5,5

2 3172 3,3

Inter-Assay (n = 6)

Probe Pankreatische Amylase [U/l] VK [%]

1 9359 8,2

2 3274 5,6

Analytische SensitivitätDie im Folgenden aufgeführten Werte wurden in Bezug auf die Standardkurve ohne Berücksichtigung eventuell verwendeter Probenverdünnungsfaktoren ermittelt.Die Nachweisgrenze wurde festgelegt als B0 + 2 SD. Gemessen wurde 20-mal der Standard null. Die Messungen ergaben eine Nachweisgrenze von 237 mU/l.

12. VORSICHTSMASSNAHMEN• Alle im Kit enthaltenen Reagenzien dürfen ausschließlich zur in-vitro-Dia-

gnostik verwendet werden.


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• Das für Kitkomponenten verwendete humane Material wurde auf HIV, Hepa-titis B und Hepatitis C getestet und für negativ befunden. Dennoch wird emp-fohlen, die Kitkomponenten als Vorsichtsmaßnahme immer wie potentiell infektiöses Material zu behandeln.

• Die Kitkomponenten enthalten zum Schutz vor bakteriellen Kontaminationen Natriumazid oder ProClin. Natriumazid bzw. ProClin sind giftig. Auch Substrate für enzymatische Farbreaktionen sind als giftig und karzinogen beschrieben. Jeder Kontakt mit Haut oder Schleimhaut ist zu vermeiden.

• Die Stopplösung besteht aus verdünnter Schwefelsäure (H2SO4). H2SO4 ist eine starke Säure und muss auch in verdünnter Form mit Vorsicht benutzt werden. H2SO4 verursacht bei Kontakt mit der Haut Verätzungen. Es sollte daher mit Schutzhandschuhen, Schutzkleidung und Schutzbrille gearbeitet werden. Bei Kontakt mit der Säure muss die verätzte Stelle sofort mit viel Wasser gespült werden. Dämpfe nicht einatmen und Inhalation vermeiden.

13. TECHNISCHE MERKMALE• Reagenzien der Testpackung dürfen nicht mit anderen Chargen gemischt

werden. Ferner dürfen Kavitäten unterschiedlicher Mikrotiterplatten, selbst der gleichen Charge, nicht zusammengefügt und zur Analyse verwendet wer-den.

• Qualitätskontrollen sollten immer mitgemessen werden.

• Die Reagenzien dürfen nach Ablauf des auf der Kitverpackung angegebenen Haltbarkeitsdatums nicht mehr verwendet werden.

• Substratlösung muss vor Gebrauch farblos sein.

• Mikrotiterstreifen müssen während der Inkubationen mit Folie abgedeckt sein.

• Vermeiden Sie Schaumbildung beim Mischen der Reagenzien.

• Stopfen und Verschlüsse verschiedener Reagenzien dürfen nicht vertauscht werden.

• Der Assay ist immer nach der dem Kit beigefügten Arbeitsanleitung durchzu-führen.

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14. ALLGEMEINE HINWEISE ZUM TEST• Dieser Kit wurde nach der IVD-Richtlinie 98/79/EG hergestellt und in den Ver-

kehr gebracht.

• Für die Qualitätskontrolle sind die für medizinische Laboratorien erstellten Richtlinien zu beachten.

• Die Testcharakteristika wie Inkubationszeiten, Inkubationstemperaturen und Pipettiervolumina der verschiedenen Komponenten wurden vom Hersteller festgelegt. Nicht mit dem Hersteller abgesprochene Veränderungen in der Testdurchführung können die Resultate beeinflussen. Die Firma Immundia-gnostik AG übernimmt für die hierdurch entstandenen Schäden und Folge-schäden keine Haftung.

• Bei Gewährleistungsansprüchen ist das beanstandete Material mit schrift-licher Erklärung innerhalb von 14 Tagen zum Hersteller, der Immundiagnostik AG, zurückzusenden.

15. LITERATUR1. Amann, S.T. et al., 1996. Fecal pancreatic elastase 1 is inaccurate in the diagnosis

of chronic pancreatitis. Pancreas, 13(3), pp.226–30.

2. Katschinski, M. et al., 1997. Duodenal secretion and fecal excretion of pancreatic elastase-1 in healthy humans and patients with chronic pancreatitis. Pancreas, 15(2), pp.191–200.

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Manual pancreatic amylase

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Table of Contents

1. INTENDED USE ______________________________________________________ 15

2. INTRODUCTION ______________________________________________________ 15

3. MATERIAL SUPPLIED _________________________________________________ 15

4. MATERIAL REQUIRED BUT NOT SUPPLIED _______________________________ 16

5. STORAGE AND PREPARATION OF REAGENTS ____________________________ 16

6. STORAGE AND PREPARATION OF SAMPLES _____________________________ 17

Sample storage ________________________________________________________ 17Extraction of the stool samples ____________________________________________ 17Dilution of samples _____________________________________________________ 18

7. ASSAY PROCEDURE __________________________________________________ 18

Principle of the test _____________________________________________________ 18Test procedure _________________________________________________________ 19

8. RESULTS ____________________________________________________________ 20

9. LIMITATIONS ________________________________________________________ 21

10. QUALITY CONTROL ___________________________________________________ 21

Reference range _______________________________________________________ 21

11. PERFORMANCE CHARACTERISTICS ____________________________________ 21

Precision and reproducibility _____________________________________________ 21Analytical Sensitivity ____________________________________________________ 22

12. PRECAUTIONS _______________________________________________________ 22

13. TECHNICAL HINTS ___________________________________________________ 22

14. GENERAL NOTES ON THE TEST AND TEST PROCEDURE ___________________ 23

15. REFERENCES ________________________________________________________ 23

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1. INTENDED USEThis Immundiagnostik AG assay is an enzyme immunoassay intended for the quan-titative determination of pancreatic amylase in stool. For in vitro diagnostic use only.

2. INTRODUCTIONLike lipase and elastase, the pancreatic amylase is synthesised in the pancreas. In case of a chronic pancreatitis, pancreatic amylase is decreased. Some forms of dis-ease (alcoholism, accidental trauma) are associated with a pancreatic insufficiency. In the routine laboratory, pancreatic amylase has proved itself to be a genuine alterna-tive to elastase-I in stool diagnosis.

Indications• Chronic pancreatitis• Exocrine pancreas insufficiency

3. MATERIAL SUPPLIEDCat. No. Label Kit components Quantity

K 6410 PLATE Microtiter plate, pre-coated 12 x 8 wells

K 0001.C.100 WASHBUF Wash buffer concentrate, 10 x 2 x 100 ml

K 6410 CONJ Conjugate concentrate, peroxidase-labelled 1 x 150 µl

K 6410 STD Standards, lyophilised (0; 440; 1750; 7000; 28000 mU/l) 4 x 5 vials

K 6410 CTRL 1 Control, lyophilised (see specification for range) 4 x 1 vial

K 6410 CTRL 2 Control, lyophilised (see specification for range) 4 x 1 vial

K 0002.15 SUB Substrate (tetramethylbenzidine), ready-to-use 1 x 15 ml

K 000.15 STOP Stop solution, ready-to-use 1 x 15 ml

For reorders of single components, use the catalogue number followed by the label as product number.


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4. MATERIAL REQUIRED BUT NOT SUPPLIED• Ultrapure water*• Stool sample application system such as Cat. No.: K 6998SAS• Calibrated precision pipettors and 10–1000 µl single-use tips• Foil to cover the microtiter plate• Horizontal microtiter plate shaker• Multi-channel pipets or repeater pipets• Vortex• Standard single-use laboratory glass or plastic vials, cups, etc. • Microtiter plate reader (required filters see chapter 7)

* Immundiagnostik AG recommends the use of ultrapure water (water type 1; ISO 3696), which is free of undissolved and colloidal ions and organic molecules (free of particles > 0.2 µm) with an electrical conductivity of 0.055 µS/cm at 25 °C (≥ 18.2 MΩ cm).

5. STORAGE AND PREPARATION OF REAGENTS• To run the assay more than once, ensure that reagents are stored at the condi-

tions stated on the label. Prepare only the appropriate amount necessary for each run. The kit can be used up to 4 times within the expiry date stated on the label.

• Reagents with a volume less than 100 µl should be centrifuged before use to avoid loss of volume.

• Preparation of the wash buffer: The wash buffer concentrate (WASHBUF) has to be diluted with ultrapure water 1:10 before use (100 ml WASHBUF + 900 ml ultrapure water), mix well. Crystals could occur due to high salt con-centration in the concentrate. Before dilution, the crystals have to be redis-solved at room temperature or in a water bath at 37 °C. The WASHBUF is stable at 2–8 °C until the expiry date stated on the label. Wash buffer (1:10 diluted WASHBUF) can be stored in a closed flask at 2–8 °C for 1 month.

• The wash buffer is also used as sample extraction buffer (see storage and preparation of samples).

• The lyophilised standards (STD) and controls (CTRL) are stable at 2–8 °C until the expiry date stated on the label. Before use, the STD and CTRL have to be reconstituted with 500 µl of ultrapure water and mixed by gentle inver-sion to ensure complete reconstitution. Allow the vial content to dissolve for 10 minutes and then mix thoroughly. Standards and controls (reconstituted STD and CTRL) are not stable and cannot be stored.

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• Preparation of the conjugate: Before use, the conjugate concentrate (CONJ) has to be diluted 1:101 in wash buffer (100 µl CONJ + 10 ml wash buffer). The CONJ is stable at 2–8 °C until the expiry date stated on the label. Conjugate (1:101 diluted CONJ) is not stable and cannot be stored.

• All other test reagents are ready-to-use. Test reagents are stable until the ex-piry date (see label) when stored at 2–8 °C.

6. STORAGE AND PREPARATION OF SAMPLES

Sample storage

Raw stoolRaw stool samples can be stored at -20 °C for 4 weeks. Avoid repeated freezing and thawing.

Stool sample extractStool sample extracts are not stable and cannot be stored.

Extraction of the stool samplesWash buffer (1:10 diluted WASHBUF) is used as a sample extraction buffer. We rec-ommend the following sample preparation:

Stool Sample Application System (SAS) (Cat. No.: K 6998SAS)

Stool sample tube – Instructions for usePlease note that the dilution factor of the final stool suspension depends on the amount of stool sample used and the volume of the buffer.

SAS with 1.5 ml sample extraction buffer:Applied amount of stool: 15 mgBuffer Volume: 1.5 mlDilution Factor: 1:100Please follow the instructions for the preparation of stool samples using the SAS as follows:

a) The raw stool sample has to be thawed. For particularly heterogeneous sam-ples we recommend a mechanical homogenisation using an applicator, in-oculation loop or similar device.


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b) Fill the empty stool sample tube with 1.5 ml wash buffer before using it with the sample. Important: Allow the wash buffer to reach room tempera-ture.

c) Unscrew the tube (yellow part of cap) to open. Insert the yellow dipstick into the sample. The lower part of the dipstick has notches which need to be cov-ered completely with stool after inserting it into the sample. Place dipstick back into the tube. When putting the stick back into the tube, excess material will be stripped off, leaving 15 mg of sample to be diluted. Screw tightly to close the tube.

d) Shake the tube well until no stool sample remains in the notches. Important: Please make sure that you have a maximally homogenous suspension after shaking. Especially with more solid samples, soaking the sample in the tube with buffer for ~ 10 minutes improves the result.

e) Allow sample to stand for ~10 minutes until sediment has settled. Floating material like shells of grains can be neglected.

f ) Carefully unscrew the complete cap of the tube including the blue ring plus the dipstick. Discard cap and dipstick. Make sure that the sediment will not be dispersed again.

Dilution I: 1:100

Dilution of samplesThe suspension of the sample preparation procedure (dilution I) is diluted 1:20 in wash buffer. For example:

• 50 µl supernatant (dilution I) + 950 µl wash buffer, mix well = 1:20 (dilution II) This results in a final dilution of 1:2 000.

For analysis, pipet 100 µl of dilution II per well.

7. ASSAY PROCEDURE

Principle of the testThis ELISA is designed for the determination of pancreatic amylase in stool. In a first incubation step, the pancreatic amylase from the sample is bound to the specific anti-pancreatic amylase antibodies coated on the plate. To remove all unbound sub-stances, a washing step is carried out. In a further incubation step, peroxidase-labeled antibody is added. Tetramethylbenzidine (TMB) is used as a substrate for peroxidase. Finally, an acidic stop solution is added to terminate the reaction. The colour changes

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from blue to yellow. The intensity of the yellow colour is directly proportional to the concentration of pancreatic amylase in the sample. A dose response curve of the absorbance unit (optical density, OD at 450 nm) vs. concentration is generated, using the values obtained from the standard. Pancreatic amylase, present in the patient samples, is determined directly from this curve.

Test procedureBring all reagents and samples to room temperature (15–30 °C) and mix well.Mark the positions of standards/samples/controls on a protocol sheet.Take as many microtiter strips as needed from kit. Store unused strips together with the desiccant bag in the closed aluminium packaging at 2–8 ° C. Strips are stable until expiry date stated on the label.For automated ELISA processors, the given protocol may need to be adjusted accord-ing to the specific features of the respective automated platform. For further details please contact your supplier or Immundiagnostik AG.We recommend to carry out the tests in duplicate.

1.Before use, wash the wells 5 times with 250 µl wash buffer. After the final washing step, remove residual wash buffer by firmly tapping the plate on absorbent paper.

2. Add each 100 µl standards/controls/diluted samples into the respec-tive wells.

3. Cover the strips and incubate for 1 hour at room temperature (15–30 °C) on a horizontal shaker*.

4.Discard the content of each well and wash 5 times with 250 µl wash buffer. After the final washing step, remove residual wash buffer by firmly tapping the plate on absorbent paper.

5. Add 100 µl conjugate (diluted CONJ) into each well.

6. Cover the strips and incubate for 1 hour at room temperature (15–30 °C).

7.Discard the content of each well and wash 5 times with 250 µl wash buffer. After the final washing step, remove residual wash buffer by firmly tapping the plate on absorbent paper.

8. Add 100 µl substrate (SUB) into each well.

9. Incubate for 10–20 min** at room temperature (15–30 °C) in the dark.


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10. Add 100 µl stop solution (STOP) into each well and mix well.

11.

Determine absorption immediately with an ELISA reader at 450 nm against 620 nm (or 690 nm) as a reference. If no reference wavelength is available, read only at 450 nm. If the extinction of the highest standard exceeds the range of the photometer, absorption must be measured immediately at 405 nm against 620 nm as a reference.

* We recommend shaking the strips at 550 rpm with an orbit of 2 mm.

** The intensity of the colour change is temperature sensitive. We recommend observing the colour change and stopping the reaction upon good differentiation.

8. RESULTSThe following algorithms can be used alternatively to calculate the results. We rec-ommend using the “4 parameter algorithm“.

1. 4 parameter algorithmIt is recommended to use a linear ordinate for the optical density and a logarith-mic abscissa for the concentration. When using a logarithmic abscissa, the zero standard must be specified with a value less than 1 (e. g. 0.001).

2. Point-to-point calculationWe recommend a linear ordinate for the optical density and a linear abscissa for the concentration.

3. Spline algorithmWe recommend a linear ordinate for the optical density and a linear abscissa for the concentration.

The plausibility of the duplicate values should be examined before the automatic evaluation of the results. If this option is not available with the programme used, the duplicate values should be evaluated manually.

Stool samplesThe obtained results have to be multiplied by the dilution factor of 2 000 to get the actual concentrations.In case another dilution factor has been used, multiply the obtained result by the dilution factor used.

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9. LIMITATIONSSamples with concentrations above the measurement range (see definition below)can be further diluted and re-assayed. Please consider this higher dilution when cal-culating the results.Samples with concentrations lower than the measurement range (see definition be-low) cannot be clearly quantified.The upper limit of the measurement range can be calculated as:

highest concentration of the calibration curve × sample dilution factor to be usedThe lower limit of the measurement range can be calculated as:

Analytical sensitivity × sample dilution factor to be usedAnalytical sensitivity see chapter “Performance characteristics”.

10. QUALITY CONTROLImmundiagnostik AG recommends the use of external controls for internal quality control, if possible.Control samples should be analysed with each run. Results, generated from the analysis of control samples, should be evaluated for acceptability using appropriate statistical methods. The results for the patient samples may not be valid if within the same assay one or more values of the quality control sample are outside the accept-able limits.

Reference rangePancreatic amylase: > 1000 U/lGrey area 1000–1500 U/l

We recommend each laboratory to establish its own reference range.

11. PERFORMANCE CHARACTERISTICS

Precision and reproducibility

Intra-Assay (n = 40)

Sample Pancreatic amylase [U/l] CV [%]

1 8567 5,5

2 3172 3,3


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Inter-Assay (n = 6)

Sample Pancreatic amylase [U/l] CV [%]

1 9359 8,2

2 3274 5,6

Analytical SensitivityThe following values have been estimated based on the concentrations of the stand-ard curve without considering possibly used sample dilution factors.The zero-standard was measured 20 times. The detection limit was set as B0 + 2 SD and estimated to be 237 mU/l.

12. PRECAUTIONS• All reagents in the kit package are for in vitro diagnostic use only.

• Human materials used in kit components were tested and found to be nega-tive for HIV, Hepatitis B and Hepatitis C. However, for safety reasons, all kit components should be treated as potentially infectious.

• Kit reagents contain sodium azide or ProClin as bactericides. Sodium azide and ProClin are toxic. Substrates for the enzymatic color reactions are toxic and carcinogenic. Avoid contact with skin or mucous membranes.

• The stop solution consists of diluted sulphuric acid, a strong acid. Although diluted, it still must be handled with care. It can cause burns and should be handled with gloves, eye protection, and appropriate protective clothing. Any spill should be wiped up immediately with copious quantities of water. Do not breath vapour and avoid inhalation.

13. TECHNICAL HINTS• Do not interchange different lot numbers of any kit component within the

same assay. Furthermore we recommend not assembling wells of different microtiter plates for analysis, even if they are of the same batch.

• Control samples should be analysed with each run.

• Reagents should not be used beyond the expiration date stated on kit label.

• Substrate solution should remain colourless until use.

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• To ensure accurate results, proper adhesion of plate sealers during incubation steps is necessary.

• Avoid foaming when mixing reagents.

• Do not mix plugs and caps from different reagents.

• The assay should always be performed according to the enclosed manual.

14. GENERAL NOTES ON THE TEST AND TEST PROCEDURE• This assay was produced and distributed according to the IVD guidelines of

98/79/EC.

• The guidelines for medical laboratories should be followed.

• Incubation time, incubation temperature and pipetting volumes of the com-ponents are defined by the producer. Any variation of the test procedure, which is not coordinated with the producer, may influence the results of the test. Immundiagnostik AG can therefore not be held responsible for any dam-age resulting from incorrect use.

• Warranty claims and complaints regarding deficiencies must be logged with-in 14 days after receipt of the product. The product should be send to Immun-diagnostik AG along with a written complaint.

15. REFERENCES1. Amann, S.T. et al., 1996. Fecal pancreatic elastase 1 is inaccurate in the diagnosis

of chronic pancreatitis. Pancreas, 13(3), pp.226–30.

2. Katschinski, M. et al., 1997. Duodenal secretion and fecal excretion of pancreatic elastase-1 in healthy humans and patients with chronic pancreatitis. Pancreas, 15(2), pp.191–200.


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Immundiagnostik AGStubenwald-Allee 8a D-64625 Bensheim

Tel.: +49 (0) 62 51/70 19 00 Fax: +49 (0) 62 51/84 94 30

[email protected] www.immundiagnostik.com

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