Litopenaeus vannamei) a nivel laboratorio y...
77
INSTITUTO POLITÉCNICO NACIONAL CENTRO INTERDISCIPLINARIO DE INVESTIGACIÓN PARA EL DESARROLLO INTEGRAL REGIONAL UNIDAD SINALOA TESIS Utilización de una leguminosa y cereales para la formulación de dietas para camarón blanco (Litopenaeus vannamei) a nivel laboratorio y campo PRESENTA Styll de Jesús Armenta Soto Guasave, Sinaloa, México; Diciembre del 2012
Transcript of Litopenaeus vannamei) a nivel laboratorio y...
INSTITUTO POLITÉCNICO NACIONAL CENTRO INTERDISCIPLINARIO DE INVESTIGACIÓN PARA
EL DESARROLLO INTEGRAL REGIONAL UNIDAD SINALOA
TESIS
Utilización de una leguminosa y cereales para la
formulación de dietas para camarón blanco
(Litopenaeus vannamei) a nivel laboratorio y
campo
PRESENTA
Styll de Jesús Armenta Soto
Guasave, Sinaloa, México; Diciembre del 2012
RECONOCIMIENTO A BECAS Y PROYECTOS
Al Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACYT) por la beca de maestría CVU
367261, al Programa Institucional de Formación de Investigadores (PIFI) del Instituto
Politécnico Nacional (IPN). A los proyectos financiados por la Secretaria de Investigación
y Posgrado con número de registro: SIP20100697, SIP20113584, SIP20113638,
SIP20120542 y SIP20120543. Al proyecto FORDECYT-CONACYT titulado: “Desarrollo
sustentable de la cadena agroindustrial de Jathropha curcas, para el rescate de la zona
serrana marginada del Noroeste de México”.
I
ÍNDICE Página
ÍNDICE GENERAL….……………………………………………………………… I
GLOSARIO………………………………………………………………………….. IV
ABREVIATURAS………………………………………………............................ VII
INDICE DE TABLAS……………………………………………………………... VIII
INDICE DE FIGURAS…………………………………………………………….. IX
RESUMEN…………...……………………………………………………………… X
ABSTRACT…………………………………………………………………………. XI
INTRODUCCIÓN…………………………………………………………………… 1
ANTECEDENTES………………………………………………………………….. 3
2.1 Acuacultura en México………………………………………………………………. 3
2.2 Cultivo de camarón…………………………………………………………………… 4
2.3 Ingredientes proteicos……………………………………………………………….. 7
2.3.1. Harina de pescado…………………………………………………………………. 7
2.3.2 Harina de soya………………………………………………………………………. 8
2.3.3 Harina de trigo………………………………………………………………………. 9
2.3.4 Harina de maíz………………………………………………………………………. 10
2.4 Requerimiento de proteínas y aminoácidos de camarón……………………... 12
2.4.1 Requerimientos proteicos………………………………………………………… 12
2.4.2 Nivel proteínico optimo en la dieta………...................................................... 12
2.4.3 Requerimientos de aminoácidos………………………………………… 14
2.4.4 Nivel óptimo de aminoácidos esenciales en la dieta………………… 16
2.5 Sustitución de harina de pescado por harinas de origen vegetal…… 18
JUSTIFICACIÓN……………………………………………………………………. 21
HIPÓTESIS………………………………………………………………………….. 21
OBJETIVOS………………………………………………………………………… 22
5.1. Objetivo general………………………………………………………………… 22
5.2. Objetivos particulares…………………………………………………………. 22
MATERIALES Y MÉTODOS…………………………………………………….... 23
II
6.1 Diseño, formulación y fabricación de alimentos………………………………... 23
6.2 Elaboración de las dietas……………………………………………………………. 24
6.3 Porcentaje de inclusión de las fuentes de proteína……………………………. 24
6.4 Evaluación en laboratorio de las dietas…………………………………………... 25
6.5 Evaluación en campo de las dietas………………………………………………... 26
6.6 Factor de conversión alimenticia………………………………………………….. 27
6.7 análisis químico proximal de los ingredientes de las dietas
experimentales …………………………………………………………………………….
28
6.7.1 Humedad…………………………………………………………………………….. 28
6.7.2 Cenizas………………………………………………………………………………. 28
6.7.3 Proteína……………………………………………………………………………… 28
6.7.4 Extracto Etéreo (EE) …………………………………………………………….. 29
6.7.5 Fibra Cruda………………………………………………………………….. 29
6.7.6 Extracto Libre de Nitrógeno (ELN)………………………………………. 30
6.7.7 Determinación de energía bruta…………………………………………. 30
6.8 Análisis estadísticos…………………………………………………………. 30
RESULTADOS…………………………………………………………………….. 31
7.1 Objetivo 1. Determinar la composición química proximal de la pasta
de soya, harina de trigo y harina de maíz……………………………………..
31
7.2 Objetivo 2. Formular dietas con sustituciones de 0, 25, 50, 75 y
100% de proteína de origen vegetal, manteniendo el requerimiento
óptimo de aminoácidos para camarón blanco……………………………….
32
7.3 Objetivo 3. Evaluar el efecto de la sustitución de fuentes vegetales
en el crecimiento, factor de conversión alimenticia y sobrevivencia en
laboratorio y campo……………………………………………………………….
35
7.3.1 Bioensayo en laboratorio…………………………………………………………….. 35
7.3.1.1 Variables físico-químicas del agua………………………………………………
7.3.1.2 Variables productivas……………………………………………………………… 35
7.3.1.3 Crecimiento…………………………………………………………………………... 37
7.3.1.4 Peso final………………………………………………………………………….. 38
III
7.3.1.5 Tasa de supervivencia (TSA)…………………………………………………… 39
7.3.1.6 Factor de conversión alimenticia (FCA)………………………………. 40
7.3.2 Bioensayo en campo………………………………………………………………. 41
7.3.2.1 Parámetros físicos-químicos…………………………………………………… 41
7.3.2.2 Variables productivas……………………………………………………………. 41
7.3.2.3 Crecimiento………………………………………………………………………... 42
7.3.2.4 Peso final…………………………………………………………………………... 43
7.3.2.5 Tasa de supervivencia (TSA)…………………………………………………… 44
7.3.2.6 Factor de conversión alimenticia (FCA)……………………………………… 45
7.3.2.7 Correlación………………………………………………………………………… 46
DISCUSIÓN…………………………………………………………………………. 47
CONCLUSIONES…………………………………………………........................ 53
RECOMENDACIONES…………………………………………………………….. 54
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS……………………………………………... 55
IV
GLOSARIO
Acuacultura: Cultivo de organismos acuáticos, incluyendo peces, moluscos,
crustáceos y plantas acuáticas. El cultivo implica alguna forma de intervención en
el proceso de cría para aumentar la producción, tales como el aprovisionamiento
regular, la alimentación, la protección contra depredadores, etc., así como la
propiedad individual o colectiva del stock que se cultiva.
Alimento balanceado: Es un alimento que confiere nutrimentos en cantidades y
proporciones que satisfacen los requerimientos y necesidades fisiológicas de los
organismos.
Conversión alimenticia: Es la medida del peso del camarón producido por
kilogramo de alimento abastecido y se calcula mediante el peso del alimento
suministrado y el peso final de los organismos.
Crecimiento: Ganancia en peso de los organismos en un tiempo determinado.
Especie: Se denomina especie (del latín species) a cada uno de los grupos en
que se dividen los géneros, es decir, la limitación de lo genérico en un ámbito
morfológicamente concreto.
Extracto etéreo: En la determinación bromatológica de grasas, la cantidad de
estas se miden después de la extracción por solvente. Pueden hacerse ya sea con
éter etílico anhidro o éter de petróleo. Para el análisis proximal de materias
vegetales, siempre debe hacerse referencia al extracto etéreo y no al de grasa,
para designar a la porción extraída, esto se debe a que además de grasa, el éter
extrae las grasas verdaderas (glicéridos), ácidos grasos, céridos, esteroles,
pigmentos, etc.
Harina de maíz: Se entiende por harina de maíz al polvo fino que se obtiene
moliendo el cereal mediante diferentes métodos, como cultivo tradicional de los
pueblos originarios de América es en esta parte del mundo donde se consume
más asiduamente, especialmente en Latinoamérica donde es parte fundamental
de las cocinas de Colombia, México, Perú y Venezuela.
Harina de pescado: La harina de pescado es un producto obtenido del
procesamiento de pescados, eliminando su contenido de agua y aceite. El aceite
de pescado es un importante producto segundario. Con un 70% a 80% del
producto en forma de proteína y grasa digerible, su contenido de energía es
V
notablemente mayor que muchas otras proteínas animales o vegetales ya que
proporciona una fuente concentrada de proteína de alta calidad y una grasa rica
en ácidos grasos omega-3, DHA y EPA indispensables para el rápido crecimiento
de los animales.
Harina de soya: Harina extraída de las hojuelas del poroto de soya, es una harina
de una textura similar a la harina corriente. Muy nutritiva, tiene 3 veces más
proteínas que la carne, no contiene gluten y es rica en proteínas, minerales y
vitaminas.
Harina de trigo: El trigo generalmente es transformado en harina, y ésta es
destinada principalmente a la fabricación de pan, galletas, pasteles, tortillas,
pastas para sopa y otros productos. Uno de los elementos nutritivos más
importantes es la proteína, misma que se encuentra contenida en el gluten, el cual
facilita la elaboración de levaduras de alta calidad, necesarias para la panificación.
Homocedasticidad: Supuesto en el que las variables dependientes tienen los
mismos niveles de dispersión desde el punto de vista de la variable independiente.
Ingrediente: Materia prima u otro compuesto de la fórmula de un alimento.
Nutrición: Conjunto de procesos físicos y químicos que suministran la energía
necesaria para los organismos y proporcionan las moléculas básicas para su
organización estructural y funcional.
Oxígeno disuelto: En un cuerpo de agua se produce y a la vez se consume
oxígeno. La producción de oxígeno está relacionada con la fotosíntesis, mientras
el consumo dependerá de la respiración, descomposición de sustancias orgánicas
y otras reacciones químicas. También puede intercambiarse oxígeno con la
atmósfera por difusión o mezcla turbulenta. La concentración total de oxígeno
disuelto ([OD]) dependerá del balance entre todos estos fenómenos. Si es
consumido más oxígeno que el que se produce y capta en el sistema, el tenor de
O2 caerá, pudiendo alcanzar niveles por debajo de los necesarios para la vida de
muchos organismos.
Palatable: Es el grado de aceptación por parte de un animal, determinada por la
respuesta sensorial a características específicas tanto químicas como físicas.
Proteína: Macromolécula compuesta por una o varias cadenas polipeptídicas de
más de 100 aminoácidos, cada una de las cuales tiene una secuencia
característica de aminoácidos, unidos por enlaces peptídicos. Las proteínas ceden
VI
sus aminoácidos tras una hidrólisis, para ser asimilados y ayudar a la
reconstrucción de proteína en los ribosomas de las células corporales.
Supervivencia: Capacidad de resistencia de los organismos a eventos
desfavorables tales como enfermedades, cambios climáticos, inanición, etc.
Tasa de crecimiento: Aumento en la talla de un individuo o de una población
durante un período de tiempo en relación con su talla inicial, usualmente
expresado como porcentaje.
VII
ABREVIATURAS
µ Micras
AA Aminoácidos
AAE Aminoácidos esenciales
°C Grado centígrado
ELN Extracto libre de nitrógeno
g Gramo
EE Extracto etéreo
Kg Kilogramo
L Litros
mg Miligramos
mL Mililitros
N Nitrógeno
UPS Unidades prácticas de sal
HSA Harina de subproductos avícolas
HCH Harina de carne y hueso
VIII
ÍNDICE DE TABLAS
Página
1. Composición química proximal de los ingredientes…………………………. 31
2. Perfil de aminoácidos de las dietas formuladas……………………………… 32
3. Formulación de dietas experimentales………………………………………... 33
4. Premezcla de vitaminas y minerales utilizados en la elaboración de las
dietas experimentales para los bioensayos de crecimiento de camarón
blanco………………………………………………………………………………...
34
5. Tabla de la evaluación biológica del camarón (Litopenaeus vannamei) a
90 días de cultivo en laboratorio…………………………………………………..
36
6. Tabla de la evaluación biológica del camarón (Litopenaeus vannamei) a
los 35 días de cultivo en campo…………………………………………………...
41
IX
ÍNDICE DE FIGURAS
Página
1. Sistema de recirculación con biofiltro…………………………………………. 25
2. Ubicación del área de estudio………………………………………………….. 26
3. Jaulas para bioensayo en campo……………………………………………… 27
4. Valores de las curvas de crecimiento promedio de (Litopenaeus
vannamei) alimentados con dietas a diferentes inclusiones de harina de
soya, harina de trigo y harina de maíz……………………………………………
37
5. Valores de peso promedio final de (Litopenaeus vannamei) alimentados
con dietas a base de harina de soya, harina de trigo y harina de maíz………
38
6. Valores de supervivencia de (Litopenaeus vannamei) alimentados con
dietas a diferentes inclusiones de harina de soya, harina de trigo y harina de
maíz…………………………………………………………………………………..
39
7. Valores del factor de conversión alimenticia de (Litopenaeus vannamei)
alimentados con dietas a diferentes inclusiones de harina de soya, harina de
trigo y harina de maíz……………………………………………………………….
40
8. Valores de crecimiento para camarones alimentados con dietas a
diferentes inclusiones de harina de soya, trigo y maíz………………………….
42
9. Valores de peso promedio final para camarones (L. vannamei) blancos
alimentados con dietas a diferentes inclusiones de harina de soya, trigo y
maíz…………………………………………………………………………………..
43
10. Valores de tasa de supervivencia para camarones alimentados con
dietas formuladas con inclusión de harina de soya, trigo y maíz………………
44
11. Valores de FCA para camarones alimentados con dietas a diferentes
inclusiones de harina de soya, trigo y maíz………………………………………
45
12. Correlación inversa entre la inclusión de harina de pescado en las dietas
y el crecimiento……………………………………………………………………...
46
X
RESUMEN
El objetivo de este trabajo fue evaluar fuentes vegetales de proteína para sustituir el uso de la harina de pescado enfocándonos en la combinación de una leguminosa y dos cereales. Se formuló dietas con 0%, 25%, 50%, 75% y 100% de sustitución de harina de pescado con 32% de proteína y 8% lípidos y un contenido de aminoácidos que cubre con los requerimientos óptimos para el camarón blanco Litopenaeus vannamei. Las dietas experimentales y una dieta comercial se evaluaron en un bioensayo en laboratorio y en campo. En el laboratorio la evaluación se realizó en un sistema de recirculación con biofiltro y cajas de 60L. Se sembraron organismos de (1.1 ± 0.1 g) durante 90 días. Al final del bioensayo la dieta de 50% inclusión no tuvo diferencias significativas en comparación con la dieta comercial (p<0.05). El bioensayo en campo se realizó en un estanque de cultivo en jaulas de 1 m² X 1.50m de alto, durante 35 días. Dietas 0%, 25%, 50% de contenido de harina de pescado, presentaron valores mayores incluso que la dieta de solo harina de pescado y la dieta comercial (p<0.05). Se presentó una correlación inversa entre la inclusión de harina de pescado en las dietas y el crecimiento lo que sugiere que está estrechamente relacionado con el contenido de aminoácidos de las dietas ya que esas dieta presentaron menores valores de perfil de aminoácidos.
Palabras clave: Harina de pescado, proteína vegetal, aminoácidos
XI
ABSTRACT
The objective of this study was to evaluate plant sources of protein to replace the
use of fish meal, focusing on the combination of a legume and two cereals. Diets
were formulated with 0%, 25%, 50%, 75% y 100% replacement of fish meal with
32% of protein and 8% lipids and an aminoacid content that covers the optimal
requirements for Litopenaeus vannamei white shrimp. The experimental diets and
a commercial diet were evaluated in a laboratory bioassay and a field bioassay. In
the laboratory, the evaluation was made in a recirculating system using biofilter
and tubs of 60L. Organisms of (1.1 ± 0.1 g) were cultured during 90 days. At the
end of the bioassay the 50% inclusion diet had not no significant differences in
comparison with the commercial diet (p <0.05). The field bioassay was developed
in a pond of 1 m2 X 1.50 m high, for 35 days. Diets of 0%, 25%, 50% content of
fishmeal, showed higher values ,even higher than the only fishmeal and
commercial diets (p <0.05). There was a negative correlation between the
inclusion of fishmeal in diets and the growth, that suggests that the growth is
closely related to the amino acid content of diets because those diets showed
lower values of amino acids.
Keywords: Fish meal, plant protein, amino
1
1. INTRODUCCIÓN
La rápida expansión, intensidad y diversificación de la acuicultura ha obligado la
utilización de alimentos formulados para la alimentación de peces y camarones
cultivados en todo el mundo, además de intensificar el uso sistemático de la harina
de pescadocomo la principal fuente de proteína (Tacon y Akiyama, 1997; Tacon
1999).
La harina de pescado es utilizada por ser una proteína de alta calidad (excelente
fuente de aminoácidos y ácidos grasos esenciales, energía digestible, macro y
minerales traza, vitaminas, poder atractante y palatabilidad) para muchos peces y
camarones (Hertrampf y Piedad-Pascual, 2000). Sin embargo, ésta tiene varias
desventajas que incluyen su alto costo y un abastecimiento inestable, atribuido a
factores de tipo climático como la anomalía de “El Niño”, que aunada a la
sobreexplotación de los recursos pesqueros de las especies tradicionalmente
utilizadas para su elaboración, puede provocar el colapso de las pesquerías
orientadas a la fabricación de harina de pescado y repercutir en su precio (Tacon,
1994; Hardy, 1996).
Aún cuando la harina de pescado es elaborada con especies de pescados que
normalmente no son destinadas al consumo alimentario. Existe la preocupación
social sobre el uso de proteína acuática para alimentar peces, en lugar de dirigirla
para el consumo humano, especialmente para áreas del mundo que sufren
deficiencias nutricionales (Nayloret al., 2000).
2
En 2005, la producción de harina de pescado obtenida fue de 3.1 millones de
toneladas, aportada por Perú en un 57%, Chile 25% y países escandinavos 18%. La
acuacultura consume el 35% de la producción global seguida por la porcicultura y la
avicultura (Hardy y Tacon, 2002). China es el país que demanda un equivalente a
2.0 millones de toneladas. Se espera que la demanda mundial paralelamente a su
precio continúe incrementándose (OLDEPESCA, 2004).
De forma particular, la producción exitosa a nivel mundial de camarón (855,500 t) se
logró a través del uso de 372,000 t de harina de pescado para la manufactura del
alimento para esta especie (Barlow, 2000).
Una forma de satisfacer la demanda futura de harina de pescado requerida por la
industria creciente de la acuacultura es enfocarse a la utilización de productos
agroindustriales como lo son la harina de maíz, harina de soya y harina de trigo ya
que han tenido un gran auge en los últimos años, y su estable abasto principalmente
en el noroeste del país como esenel estado de Sinaloa (Toledo-Pérez et al., 2000).
El contenido de aminoácidos de estos productos agroindustriales comparadas con
caseína, gelatina y harina de pescado han sido presentadas por la NRC (1997), en
ella se observaron los aminoácidos deficientes en cada uno de ellas. Lim y Dominy
(1993), hacen una evaluación de las proteínas de las plantas utilizadas en peces de
3
agua dulce, entre los que analizan la soya y algodón, una importante cantidad de
información se deriva de ese estudio.
El principal problema que se puede presentar con los productos agroindustriales es
su limitante en los aminoácidos metionina y lisina principalmente. Debido a que las
proteínas de origen vegetal son mucho más baratas que las de origen animal, deben
de ser usadas lo más posible en los alimentos para especies de producción acuícola
(Akiyama, 1992; Novell y Smitherman, 1993).
En base a lo anterior, la importancia que tiene hoy en día buscar distintas fuentes de
proteína con el fin de reducir los costos de producción y la contaminación que
genera procesar los productos que se utilizan actualmente, la información generada
en este estudio permitirá optimizar el nivel de proteína en la dieta, reducir el uso de
harina de pescado como ingrediente, limitar el impacto en el ambiente, maximizar la
capacidad de carga del sistema de cultivo y mejorar las tasas de crecimiento de la
especie. Por lo tanto, el objetivo del presente trabajo es evaluar el efecto de
adicionar productos agroindustriales en sustitución de la harina de pescado para
alimentación de camarón blanco L. vannamei.
2. ANTECEDENTES
2.1 Acuacultura en México
El crecimiento de la producción de camarón en México ha tenido un importante
incremento en los últimos cinco años, pero este aumento no se debe a la extracción
pesquera, sino a la camaronicultura que ha superado más del 50 % a la pesca de
4
altamar y cerca del 80 % a la de esteros y bahías. Distintas autoridades científicas y
pesqueras han referido que la pesca ya no puede crecer más a diferencia de la
acuicultura en general (Panorama acuícola, 2009).
A escala nacional, la camaronicultura ha mantenido un crecimiento constante. De
2001 a 2005 fue incrementándose la producción. Únicamente se presentaron
avances más ligeros de 2006 a 2008. En algunos años se ha dado el
entrecruzamiento y coincidencia en los tonelajes. En 1998, el camarón de cultivo y el
de estero tuvieron producciones similares de 24 mil toneladas. En el 2000, el
camarón silvestre y de cultivo aportaron alrededor de las 33 mil 500 toneladas. Es a
partir de este año donde el despunte del crustáceo cultivado empieza a manifestarse
(Panorama acuícola, 2009).
2.2 Cultivo de camarón
El cultivo de camarón representa en México el 90% del total de su producción
acuícola con un volumen cercano a las 130 mil toneladas al cierre de 2009 y con un
valor estimado en más de 670 millones de dólares. Las demás especies de cultivo
(carpas, bagres, truchas, tilapias y algunos moluscos), apenas aparecen en las cifras
de producción nacional (Panorama acuícola, 2010).
Para finales de 2010 se esperaba una producción estimada de camarón de cultivo
de 150 mil toneladas, que combinada con los precios altos que han prevalecido en el
mercado este año, auguraba una excelente temporada para los productores
5
mexicanos, que venían recuperándose de varios años de precios bajos combinados
con producciones medias producto de las enfermedades, especialmente el del
Síndrome del Virus de la Mancha Blanca (WSSV, por sus siglas en inglés). Sin
embargo, 2010 ha sido uno de los años más difíciles para la camaronicultura
mexicana, pues se presentaron brotes agresivos de WSSV en varias áreas de
producción, las más productivas, y las consecuencias han arrojado cifras
preliminares de pérdidas de consideración, tanto en el volumen de producción como
en la derrama económica de las regiones afectadas (Panorama acuícola, 2010).
La producción de camarón de cultivo es más del 50% de la producción total nacional
de camarón, sumando las pesquerías de bahía y de altamar, y siendo el camarón el
producto que más valor aporta a la producción pesquera y acuícola de México, es de
suponer que una disminución de la producción en más del 40% de un año a otro,
debe ser considerada de “Interés Nacional” otorgándole todas las prioridades de
atención necesaria desde las Secretarías de Estado correspondientes, en un trabajo
conjunto con los Gobiernos de los Estados en donde se desarrolla esta
industria.Detal manera que se pueda analizar la problemática general de la
disminución de la producción y las consecuencias que ésta tendrá en la cadena de
producción de toda la industria (Panorama acuícola, 2010).
Sólo mediante un análisis serio de las instituciones del Estado, participativo a su vez
con los productores, se podrán poner en perspectiva las acciones a seguir para
mitigar la tendencia a la baja de la producción y reactivar la industria para que
6
continúe con su ritmo de crecimiento.México ha sido un país productor y exportador
de camarón desde hace más de 70 años, primero con la producción de la pesca y en
los últimos 10 años con la de la acuicultura.Este país tiene un lugar definido en la
producción mundial de camarón y tiene un mercado prioritario en el consumo de los
EE.UU. Existe toda una industria desarrollada en torno a su producción: plantas de
alimento balanceado, plantas de proceso y empaque, empresas comercializadoras y
exportadoras, laboratorios de producción de postlarvas, empresas de suministros de
productos y servicios, entidades financieras; todas generan un importante número de
empleos directos e indirectos en zonas donde no hay muchas alternativas de
desarrollo, y todas se verán afectadas por la disminución de la producción en este
año (Panorama acuícola, 2010).
La producción de camarón de cultivo en México debe evolucionar hacia esquemas
productivos de mayor bioseguridad, más eco-eficientes y más sustentables. Esa es
la tendencia mundial. Esto significará una paulatina reingeniería de los esquemas de
producción con una importante inversión de por medio. Es aquí en donde el Estado,
mediante sus instituciones correspondientes, debe trabajar para crear los esquemas
financieros adecuados que faciliten a los productores el acceso a nuevas
tecnologías, el crecimiento en infraestructura más productiva y más eficiente, la
creación de sistemas de coberturas y seguros acordes a los procesos productivos, la
agilización de trámites y permisos y la gestión de leyes que promuevan la seguridad
en la inversión y el crecimiento (Panorama acuícola, 2010).
7
2.3 Ingredientes proteicos
2.3.1 Harina de pescado
En las últimas dos décadas el uso de harina de pescado como ingrediente para
alimento de animales acuáticos (peces y crustáceos) se ha incrementado
notablemente (Hardy, 2006). En el año 2002 el uso de harina de pescado como
ingrediente para piensos para acuicultura fue de 2,217.000 toneladas (Pike y Barlow,
2003).
Tacon y Foster (2000) predicen que el uso de la harina de pescado como ingrediente
para alimentos de acuicultura descenderá de 2,190.000 de toneladas, utilizadas en
el 2002, a 1,550.000 en el 2010. Esto se debe al incremento del precio de este
ingrediente y a la baja en el valor del mercado de los productos cultivados, lo que
hará que la harina de pescado sea reemplazada por otros ingredientes de menor
costo. En el mismo sentido New (2003) sugiere que el uso de proteínas alternativas
en alimentos para la cría de organismos acuáticos resultará en una menor inclusión
de harina de pescado. Estas afirmaciones se contraponen con lo expresado por Pike
y Barlow (2003) y Hardy (2006) quienes consideran que habrá un incremento en la
utilización de harina de pescado como ingrediente en las fabricaciones de alimentos
en acuicultura.
La harina de pescado tiene una alta proporción de aminoácidos esenciales
altamente digeribles, es una buena fuente de lisina, arginina y valina. Además es
rica en ácidos grasos polisaturados de la familia linolénica (n-3). El contenido de
ácidos grasos C20 y C22 varía entre 27 y 35%. Se debe puntualizar que por lo
8
general los lípidos permanecen en la harina más ricos en ácidos grasos insaturados
de la familia n-3 que los que se encuentran en el aceite; este hecho se refleja en la
cantidad de fosfolípidos que permanecen en la harina. Por otra parte, la harina es
una muy buena fuente de minerales como: calcio, fósforo, magnesio, potasio y
vitaminas como: B1, B2, B6 y B12 y micro elementos como zinc, yodo, hierro, cobre,
manganeso, cobalto, selenio y flúor (Villarreal-Colmenares et al., 2007).
2.3.2 Harina de soya
La soya (Glycine máxima), es una leguminosa que ha sido reconocida desde años
atrás como una excelente fuente de proteínas para la alimentación de muchas
especies animales, también ha sido utilizada con éxito en la alimentación de
organismos acuáticos y específicamente de camarones peneidos (Villarreal-
Colmenares et al., 2007).Se le emplea bajo distintas formas de manufactura y se
aprovecha su aceite y las pastas residuales, ricas en proteínas, después de la
obtención del aceite. Es la proteína vegetal más utilizada en la acuicultura y la que
se considera que tiene mayores posibilidades de sustituir a la harina de pescado
como ingrediente en las dietas para cultivo de camarones (LImet al., 1998; Hardy,
1999). Según las estadísticas de la FAO, la producción global de harina de soya se
incrementó en 15 millones de toneladas en 1961 hasta alrededor de 107 millones de
toneladas en el 2001 (Foster et al., 2002).
En los últimos 6 años la producción mundial de harina de soya tuvo un aumento de
38.62 millones de toneladas, pasando de 110,26 millones en la campaña 2000/01 al
record de 148,88 millones de toneladas proyectados para la campaña 2006/07, de
9
acuerdo al último informe publicado por el
NationalNutrientDatabaseForStandartReferent (USDA,2007).
La semilla de soya posee una composición proteica de alta calidad nutricional
probablemente la mejor de las semillas leguminosas. Su contenido de aminoácidos
indica que el aminoácido limitante es la metionina. La harina de soya desgrasada
tiene un nivel de proteína de 40-50% por lo que se sitúa entre las harinas que se
consideran fuentes de alto valor proteico (Villarreal-Colmenares et al., 2007).
2.3.3 Harina de trigo
El trigo pertenece al género Triticum, de la familia de las gramíneas (Gramineae). El
trigo diploide es la especie T. monoccum; el trigo tetraploide, la especie T. turgidum y
el trigo hexaploide o trigo común es la especie T. aestivum.En la actualidad, sólo
tiene importancia las variedades de trigo común, candeal y duro. Aunque aún se
siembren muchas otras adecuadas a las condiciones locales; el color del grano
depende de la variedad (Villarreal-Colmenares et al., 2007).
Los principales productores son China, Estados Unidos, Francia, Rusia y
Canadá.Los productos del trigo, en general, se utilizan como aglutinantes en las
dietas para camarones. El gluten de trigo es una excelente aglutinante y una buena
fuente de proteínas, contienen un mínimo de 60% de proteínas (Akiyama, 1992).La
producción mundial de trigo durante el año 2004 fue de 627,130.584t (FAOSTAT,
2005).
10
El valor nutricional de los productos obtenidos de cereales depende del proceso que
se utilice para preparar los alimentos, así como de las condiciones de cultivo
(Villarreal-Colmenares et al., 2007).Los productos de trigo tienen bajo contenido de
proteínas, además la calidad proteica también es baja, presentan como aminoácidos
limitantes ala lisina y la valina. La mayoría del fósforo está en forma de fitatos lo que
disminuye su biodisponibilidad. Sin embargo son buenas fuentes de vitaminas del
complejo B.Fitohemaglutininas, ácido fítico, factor flatulento, inhibidor de amilasa y
posible contaminación de aflatoxinas (Tacon, 1989).
2.3.4 Harina de maíz
El maíz es una gramínea de la Familia Poacea cultivada para consumo alimentario,
tanto humano como animal o procesado en gran variedad de productos industriales.
El maíz puede ser utilizado como alimento de cualquiera de las etapas de su
desarrollo. Desde el aspecto nutricional presenta mayor cantidad de grasa, hierro y
fibra que el arroz. La principal proteína es la Zeína, que tiene un bajo contenido de
aminoácidos esenciales lisina y triptófano (FAO, 2001).
Mediante el proceso de nixtamalización se logra mejorar el valor nutricional del maíz;
consiste en la cocción del grano de maíz con cal para elaborar una masa que se usa
comúnmente en tortillas. Este proceso facilita la remoción de pericarpio, controlando
la actividad microbiana, mejora la absorción de agua, incrementa el nivel de
gelatinización del almidón y mejora el valor nutricional por el incremento en la
cantidad de niacina (FAO, 2001).
11
Además, por su alto contenido de xantofilas es un valioso elemento de pigmentación
en la formulación para dietas de aves de corral. Comercialmente, la harina de gluten
de maíz tiene un contenido de entre 41% y 60% de proteína. Se utiliza para la
formulación de aves, cerdos, ganado vacuno y dentro de la acuacultura se ha
empleado en la formulación de dietas para peces como el turbotPsetta máxima
(Regostet al., 1999) y la trucha arcoíris Oncorhynchusmykiss (Morales et al., 1994;
Gómez et al., 1995).Wu et al. (1995) obtuvieron una digestibilidad de proteína de
97% en dietas para tilapia Oreochromissp. También se reportan estudios donde se
evalúa la inclusión de harina de gluten de maíz, combinada con harina de soya y
carne en dietas para peces (Watanabeet al., 1993). Pongmancerat et al.
(1993)combinaron los mismos insumos en dietas para carpas Cyprinuscarpio,
adicionando algunos aminoácidos esenciales para mejorar la atractabilidad y
palatabilidad. Todos estos trabajos presentan resultados de digestibilidad
relativamente alta, aunque cuando se incluye una alta proporción de harina de gluten
de maíz los filetes de pescado se tornan amarillos (Weede, 1997); este efecto puede
ser enmascarado con la adición de astaxantina en las dietas (Skonberg et al., 1998).
La harina de maíz tiene un alto nivel de proteína cruda y vitaminas B y C, con bajo
contenido de fibra y cenizas, no contiene factores antinutricionales y es una
excelente fuente de xantofila (102 mg/kg) y metionina, aunque deficiente en lisina
(Regostet al., 1999).
12
2.4 Requerimiento proteínas y aminoácidos de camarones
2.4.1 Requerimientos proteínicos
El estudio de los requerimientos nutricionales en la dieta de peces y camarones, ha
sido basado en su mayoría en estudios comparables a los conducidos con animales
terrestres. Consecuentemente, la mayoría de la información disponible sobre los
requerimientos nutricionales de las especies acuáticas se deriva de ensayos de
alimentación conducidos en laboratorio, en donde los animales son mantenidos en
condiciones controladas y densidades elevadas, sin acceso a algún alimento natural
(Delonget al., 1958).
2.4.2. Nivel proteínico óptimo en la dieta
Basado en las técnicas de alimentación pioneras, desarrolladas para animales
terrestres, los requerimientos proteínicos dietéticos de peces fueron investigados
primeramente en el salmón “chinook” (Oncorhynchustshawytscha) por Delonget al.
(1958). Los peces fueron alimentados con una dieta balanceada, conteniendo
niveles graduales de proteína de alta calidad (caseína: gelatina, suplementada con
aminoácidos cristalinos, a efecto de simular el perfil de aminoácidos mostrado por la
proteína de huevo entero de gallina), durante un período de diez semanas,
tomándose como requerimiento aquel nivel de proteína que diera lugar al
crecimiento óptimoDesde estos primeros estudios, las investigaciones que hoy día
se realizan han cambiado muy poco, si es que lo han hecho, posiblemente la
excepción sea el uso de la técnica de máxima retención proteínica en el tejido o
balance de nitrógeno, por la cual algunos investigadores han mostrado una mayor
13
preferencia en relación a la técnica de ganancia en peso, como criterio para
determinar los requerimientos proteínicos (Ogino, 1980). Los requerimientos
proteínicos en la dieta, normalmente se expresan como un porcentaje fijo o como
una proporción proteína a energía. A la fecha más de 30 especies de peces y
camarones han sido examinadas de esta manera y los resultados muestran una gran
uniformidad en cuanto a los requerimientos proteínicos en sus dietas, fluctuando en
un rango de 24–57%, equivalente al 30–70% del contenido energético grueso de la
dieta en forma de proteína. Aun cuando se esperaba que las especies de peces
carnívoros, mostrasen un requerimiento proteínico elevado tal como el lenguado
(Pleuronectesplatessa -50%; Coweyet al., 1972) o el pez cabeza de víbora
(Channamicropeltes - 52%; Wee y Tacon, 1982), el hecho es que también se
encontró un requerimiento relativamente alto para la carpa herbívora
(Ctenopharyngodonidella 41–43%; Dabrowski, 1977), lo que en parte sugiere que los
requerimientos pueden estar en función de la metodología seguida para la
determinación. El uso de diferentes fuentes proteínicas, substitutos energéticos no
proteínicos, regímenes de alimentación, clases de edad de peces y métodos para la
determinación del contenido energético y requerimientos dietéticos por los diferentes
investigadores, deja muy poco terreno en común que permita hacer comparaciones
directas intra o interespecíficas. Por ejemplo el alto requerimiento energético
observado en alevines de carpa herbívora (41–43%; Dabrowski, 1977) con toda
seguridad surgió del hecho que todos los peces del experimento fueron alimentados
de una manera restringida (peces alimentados dos veces al día, y a un porcentaje
fijo correspondiente al mínimo registrado en una alimentación ad libitum) y por
consecuencia aquellos peces alimentados con las dietas conteniendo los niveles
14
proteínicos mínimos, no pudieron consumir suficiente alimento para cubrir sus
requerimientos de proteína y energía. Una revisión crítica de los métodos empleados
para la estimación de los requerimientos proteínicos y dietéticos en raciones de
peces y crustáceos ha sido realizada por Tacon y Cowey (1985) y Cowey y Tacon
(1983).
Los elevados requerimientos proteínicos en las dietas de peces y camarones se
atribuyen a sus hábitos alimenticios carnívoros/omnívoros y al uso preferencial de la
proteína dietética sobre los carbohidratos como fuente energética. En contraste con
los animales terrestres, los peces y camarones son capaces de obtener más energía
metabolizable a partir del catabolismo de proteínas que de los carbohidratos (Cowey,
1975).
2.4.2 Requerimientos de aminoácidos
Para propósitos nutricionales, los aminoácidos se pueden dividir en dos grupos; los
aminoácidos esenciales (AAE), y los no esenciales (AANE). Los AAE son aquellos
que no pueden ser sintetizados dentro del cuerpo animal, o bien no lo son a una
velocidad adecuada que permita cubrir las necesidades fisiológicas del animal en
crecimiento, y por lo tanto deben ser suministrados en la dieta, en una forma ya
elaborada. Los AANE, son aquellos aminoácidos que pueden ser sintetizados en el
cuerpo, a partir de una fuente de carbono adecuada y de los grupos
aminoprovenientes de otros aminoácidos o de compuestos simples, como el citrato
de amonio, y consecuentemente no tienen que ser suministrados ya elaborados en
la dieta (FAO, 1989).
15
Los aminoácidos esenciales para peces y crustáceos son (Tacon, 1989):
Treonina Valina
Leucina Isoleucina
Metionina Triptófano
Lisina Histidina
Arginina Fenilalanina
A pesar de que los AANE, no son nutrientes esenciales en la dieta, desempeñan una
variedad de funciones esenciales a nivel del metabolismo celular. Se les denomina
nutrientes dietéticos no esenciales debido únicamente a que el tejido corporal puede
sintetizarlos cuando se necesiten. De hecho a menudo se ha señalado que los
AANE desde el punto de vista fisiológico son tan esenciales, que el cuerpo asegura
un suministro adecuado al sintetizarlos. Desde el punto de vista de una formulación
de una dieta, es importante conocer que los AANE cistina y tirosina, pueden ser
sintetizados en el cuerpo a partir de aminoácidos esenciales como la metionina y
fenilalanina respectivamente y por consecuencia los requerimientos dietéticos para
esos AAE estarán en función de la concentración de sus AANE correspondientes en
la dieta (FAO, 1989).
2.4.3. Nivel óptimo de aminoácidos esenciales en la dieta
Los requerimientos cuantitativos de AAE en peces, tradicionalmente han sido
determinados mediante el suministro de dietas experimentales en las que se
incluyen niveles graduales de cada aminoácido, de tal modo que se obtienen las
16
curvas de crecimiento respectivas (Ketola, 1982; Cowey y Luquet, 1983; Wilson,
1985). El requerimiento dietético es aquel donde cambia el punto de inflexión en la
curva de crecimiento observada. Además de utilizar el crecimiento como criterio para
estimar los requerimientos de aminoácidos, varios investigadores también han usado
el nivel de aminoácidos libres contenidos dentro de un “pool” de algún tejido
específico (sangre entera, plasma sanguíneo o músculo; Kaushik, 1979), o bien la
oxidación de aminoácidos radioactivamente marcados (administrados oralmente o
por inyección; Waltson, Cowey y Adron, 1982).
En las dietas-prueba usadas para determinar los requerimientos de aminoácidos, el
componente proteínico es suministrado casi en su totalidad en forma de aminoácidos
cristalinos o en combinación con fuentes proteínicas “completas” selectas
(normalmente caseína, gelatina, zeína, gluten o harina de pescado); el perfil de
aminoácidos del componente proteínico total de la dieta se balancea de tal modo
que simule el perfil de aminoácidos de una proteína específica de referencia (FAO,
1989).
En contraste con el método estándar arriba descrito en el que los peces son
alimentados con dietas con niveles graduales de aminoácidos (FAO, 1989). Ogino
(1980) determinó los requerimientos cuantitativos de AAE del pez simultáneamente
con la técnica de depositación diaria de aminoácidos individuales en el cadáver del
pez. En el método de Ogino, los peces son alimentados con una dieta que contiene
una fuente proteica de alto valor biológico, y el requerimiento dietético de AAE se
contabiliza tomando como base el valor de la depositación diaria de AAE en el tejido.
17
Los requerimientos cuantitativos conocidos de AAE de peces hasta la fecha
estudiados, utilizando para dicha determinación las técnicas arriba mencionadas.
Los requerimientos cuantitativos para los 10 AAE, han sido determinados
únicamente para 5 especies de peces (carpa común C. carpio, trucha arco-iris S.
gairdneri, bagre de canal I. punctatus, anguila japonesa, A. anguila, y el salmón
“chinook” O. tshawytscha). Hasta el momento, no se cuenta con información
cuantitativa sobre los requerimientos de AAE del camarón, en principio ello se debe
al pobre crecimiento observado en el camarón al suministrarle dietas-prueba a base
de aminoácidos sintéticos, así como los problemas inherentes del lavado de
nutrientes a causa del tiempo tan largo que les toma a los crustáceos para
alimentarse (FAO, 1989).
Aunque recientemente se han realizado un gran número de estudios independientes
sobre los requerimientos de aminoácidos para truchas arco-iris, se ha visto que
existen diferencias significativas en los requerimientos (g de aminoácidos/100 g de
proteína) dentro y entre las especies individuales. Por ejemplo, diferencias del orden
del 114% fueron observadas entre laboratorios independientes, en relación a los
requerimientos de lisina, arginina y metionina en crías/juveniles de trucha arco-iris.
De igual modo las variaciones interespecíficas fluctuaron desde un 22% para la
valina hasta un 122% para el triptófano. Mientras uno podría esperar que los
requerimientos cuantitativos de AAE de los peces disminuyeran con la edad y
decreciera la síntesis proteica (crecimiento), uno bien podría cuestionar si las
18
variaciones observadas en los requerimientos son reales o simplemente se trata de
artefactos del método empleado. En contraste a las variaciones observadas en los
requerimientos de una misma especie de pez, alimentada con dietas prueba
convencionales de aminoácidos, no se encontró una diferencia significativa en los
requerimientos de AAE, para la carpa y trucha según el método de depositación en
el cadáver de Ogino (1980a). Sin embargo, los requerimientos dietéticos observados
caen dentro del rango reportado para peces alimentados condietas prueba de
aminoácidos.
2.5. Sustitución de harina de pescado por harinas de origen vegetal
La soya Glycine máxima es cada vez más común en la alimentación de organismos
acuáticos por su composición química, perfil de aminoácidos, con excepción de la
metionina y en menor grado la lisina como aminoácidos limitantes (Taconet al.,
1983), elevado contenido de vitaminas y menor costo al de la harina de pescado. Sin
embargo, en altos niveles de inclusión reduce la palatabilidad de los alimentos
(Bressani y Elias, 1980; Akiyama, 1992).
La harina de soya también ha sido probada en dietas para camarón. Lawrence et al.
(1986) no encontraron diferencias significativas en el crecimiento y supervivencia de
varias especies de camarón (Litopenaeusvannamei, P. aztecus, P. duorarum, P.
setiferus, P. schmitti, P. stylirostris) alimentados con una dieta comercial que
contenía 10% de inclusión de harina de soya y alimento experimental con
inclusiones del 40 al 50% durante 12 semanas en condiciones de laboratorio. Los
autores mencionan que es posible que se puedan incrementar los niveles en los
19
estanques de tierra en donde existe una productividad natural y los micro-
nutrientes,ácidos grasos esenciales, vitaminas y minerales no sean limitantes. Si
esto es así, la utilización de soya en lugar de harina de pescado o camarón es
altamente significativa en la reducción de costos por alimento en algunos países en
donde la harina de soya tiene precios menores a la harina de pescado.
Carveret al. (1988), procesaron cabezas de camarón, vísceras de calamar y soya
extrudizada. La coextrusión de desechos de vísceras de animales marinos con soya
creó una proteína de alta calidad y de muy bajo costo.
Posteriormente, Lim y Dominy (1993) evaluaron en condiciones de laboratorio el
reemplazo de proteína animal por soya y encontraron que el crecimiento se redujo
conforme se incrementó la inclusión de soya a 42, 56 y 70%, la ingestión de alimento
se redujo en las dietas con 56 y 70%, el contenido de humedad se incrementó en los
camarones alimentados con 70% de soya y el fósforo del cuerpo se redujo
considerablemente a niveles superiores de 42% de inclusión de soya. Por lo tanto se
concluyó que la soya no puede sustituir totalmente a la proteína de origen animal.
Lo anterior es corroborado por Lim y Dominy (1993) cuando probaron harina de soya
extruida sola y mezclada con calamar en dietas para camarón (L. vannamei) y
observaron que el mejor resultado se obtuvo con la dieta con soya/calamar en
proporción 40/60 en la que no hubo diferencias significativas en los resultados con
dietas a base de 50/50 soya/calamar e inclusive tuvieron mejores conversiones
alimenticias que con 44% de pasta de soya extruida.
20
Por su parte, Hernández et al. (2004), mezclaron vísceras de atún con harina de
maíz en una proporción de 40:60, mezcla que sustituyó la harina de pescado en una
dieta para alimentar L. vannamei y no redujo su ganancia en peso cuando se
comparó con una dieta con HP. Estos estudios, recomiendan que extruir y secar una
proteína vegetal con vísceras húmedas de calamar ó atún puede ser un método de
procesamiento recomendado para mejorar una proteína vegetal ya sea para ser
usada como un ingrediente para alimentos de camarón o como un alimento
completo.
Tidwellet al. (1993), trabajaron con Macrobrachiumrosenbergii y reportaron que el
reemplazamiento de 50% o 100% de HP por una combinación de harina de
soya+cebada y solubles de pescado no redujo su ganancia en peso cuando se
comparó con una dieta con HP.
21
III. JUSTIFICACIÓN
La justificación de este trabajo se basa principalmente en la necesidad de realizar
ensayos en sistemas de reacción donde se utilicen mezclas de ingredientes que
cumplan con los requerimientos nutricionales del camarón blanco
(Litopenaeusvannamei) y que sea de menor costo que los alimentos disponibles hoy
día en el mercado, buscando principalmente la sustitución de la harina de pescado
como fuente principal de proteína para las dietas de camarón, esto permitirá reducir
los costos de producción y ayudar en la problemática por la escasez de harina de
pescado.
IV. HIPÓTESIS
La combinación de tres fuentes vegetales (un cereal y dos leguminosas) de proteína
puede suplir hasta en un 50% la inclusión de harina de pescado en dietas para
camarón blanco (Litopenaeusvannamei).
22
V. OBJETIVOS
5.1. Objetivo general
Evaluar la combinación de tres fuentes vegetales de proteína como suplemento
proteico de harina de pescado en dietas para camarón blanco
(Litopenaeusvannamei).
5.2. Objetivos particulares
1. Determinar la composición química (proximal) de la harina de soya, harina de
trigo y harina de maíz.
2. Formular dietas sustituyendo la harina de pescado por 0, 25, 50, 75 y 100%
de proteína de origen vegetal, manteniendo el requerimiento óptimo de
aminoácidos para camarón.
3. Evaluar el efecto de la sustitución de fuentes vegetales en el crecimiento,
factor de conversión alimenticia y sobrevivencia en sistema de laboratorio y
en una granja comercial.
23
VI. MATERIALES Y MÉTODOS
6.1 Diseño y formulación de los alimentos
En el presente estudio se elaborarán dietas compuestas experimentales formuladas
con la ayuda del paquete Excel ® y serán fabricados según el método descrito por
Civera-Cerecedo (1989). Tanto los ingredientes como las dietas elaboradas serán
analizados para conocer la composición química proximal, y el contenido de
aminoácidos calculado, referenciado con los valores descritos por Tacon (1984).
Debido a que se plantea una sustitución de harina de pescado en la dieta, se
considera que la dieta base estará formulada a partir de harinas de soya, trigo y
maíz. Con esto se pretende cubrir la demanda de vitaminas y aminoácidos en los
que algunas son deficientes y otras son ricos, esto con la complementación de las
tres. Por ello, se considera necesario contar con al menos 5 niveles de inclusión de
las diferentes fuentes de proteína, a fin de poder utilizar ya sea el método de línea
quebrada o exponencial para determinar el requerimiento óptimo (Hernández-
Llamas, en revisión), en donde la media de inclusión se aproxime al nivel supuesto
de requerimiento. Los análisis químicos se realizarán por triplicado, de acuerdo a los
siguientes métodos: análisis proximal: humedad, proteína, extracto etéreo, fibra y
ceniza (AOAC, 1995). Energía bruta: con calorímetro adiabático, marca PARR.
24
6.2 Elaboración de las dietas
Las dietas fueron elaboradas en CIIDIR IPN-Unidad Sinaloa, en el departamento de
Acuacultura. Las harinas fueron molidas en un pulverizador y se tamizaron para
obtener un mismo tamaño de partícula. Se pesaron cada uno de los ingredientes
componentes de cada dieta y se mezclaron con una mezcladora.
Primeramente se mezclaron los ingredientes secos como harinas y se adicionaron
los ingredientes menores, para después adicionar aceite de pescado lecitina de soya
y un poco de agua tibia para obtener la pasta de consistencia suave.
Posteriormente cada dieta se peletizo en un molino para carne marca Torrey para
después ser colocado en charolas tipo cernidores previamente etiquetadas para su
identificación. Las dietas fueron secadas a temperatura ambiente con circulación de
aire con un abanico, para después ser quebrados manualmente con una longitud de
3-4mm.
6.3 Porcentaje de inclusión de las fuentes de proteína
Se realizaron experimentos de crecimiento por triplicado en las unidades de 60L
para dietas con diferentes fuentes de proteínas (0, 25, 50, 75, 100%). Se
seleccionaron juveniles de 2 (+ 0.5) g, los cuales fueroncolocados a una densidad de
10/m2 en los tanques de 60L. Diariamente se registraronlos parámetros de calidad
de agua (O2, pH, y temperatura), así como el número de muertos. El alimento
residual se retiró junto con las heces y organismos muertos. El primer día de la
evaluación se suministraron los alimentos experimentales a razón de 10% de la
25
biomasa de juveniles. La duración de la evaluación fuede 90 días. Para evaluar las
diferentes dietas se usaron como criterios la sobrevivencia y la biomasa final por
unidad de área, mediante la cosecha del total de los organismos en las unidades
experimentales. Así mismo, se definierondiferencias entre tratamientos utilizando el
paquete Statistica, versión 5.0, mediante el cálculo de los siguientes parámetros de
producción (Naranjo et al., 2004): peso final promedio, tasa de crecimiento absoluta
(TCA), tasa de crecimiento específica (TCE), factor de conversión aparente
alimenticia (FCA), sobrevivencia (S), y biomasa total.
6.4 Evaluación en laboratorio de las dietas
La evaluación en laboratorio de las dietas se llevó a cabo en las instalaciones de
CIIDIR IPN- Unidad Sinaloa en el laboratorio de acuacultura (Figura 1).
Figura 1. Sistema de recirculación con biofiltro para la evaluación en laboratorio de
26
dietas experimentales con sustituciones de 0, 25, 50, 75 y 100% de harina de
pescado, por una mezcla de harina de maíz, trigo y soya.
Se utilizaron cajas de 60L con un sistema de recirculación y aireación que pasara
por un biofiltro compuesto por varias capas de arena, grava y piedra con una bomba
que recirculóel agua a una velocidad de 50L por hora. Las dietas fueron puestas
totalmente al azar en los tanques y se llevaron a cabomuestreos quincenalmente.
6.5 Evaluación en campo de las dieta
La evaluación en campo se llevóa cabo en la granja Acuícola Camaronera Styl
localizada en el ejido Las culebras con una superficie de 40 ha. Consta de 7
estanques de diferente área el estanque seleccionado es el número 6 con una
superficie de 3½ ha (Figura 2).
Figura 2. Ubicación de la granja Acuícola Camaronera Styl para la evaluación en
campo de los alimentos con diferente porcentaje de sustitución (0, 25, 50, 75 y
100%) de harina de pescado para camarones L. vannamei.
27
Se utilizaron jaulas de 1 x 1 m por triplicado forradas con una malla de 500µ para
evitar la fuga o introducción de organismos, se cepillaran cada 3 días para evitar
problemas de taponeo o poca circulación de agua. Se sembraran organismos de 2 g
a una densidad de 10 org/m2
y se alimentaran dos veces al día a razón del 10% de
la biomasa inicial aumentando con las biometrías que se realizaran quincenalmente
(Figura 3).
Figura 3. Jaulas de 1m³ para bioensayo en campo de alimentos con diferente
porcentaje de sustitución (0, 25, 50, 75 y 100%) de harina de pescado para
camarones L. vannamei.
.6.6 Factor de conversión alimenticia
Es un factor que permite medir matemáticamente en forma simple el nivel de
incremento en peso de la población de camarones en relación al alimento que han
consumido en un rango de tiempo determinado, y se expresa de la siguiente forma:
28
FCA= Alimento consumido (kg)
Incremento en peso (kg)
6.7 Análisis químico proximal de los ingredientes y dietas experimentales
Los análisis químicos proximales de los ingredientes y de las dietas se realizaron
en el Laboratorio de Bromatología del Centro de Investigaciones Biológicas del
Noroeste (CIBNOR) siguiendo la metodología descrita por la AOAC (1984).
6.7.1 Humedad
La humedad de la muestra se determinó pesando 2 g de muestra en crisoles a
peso constante, se colocaron a desecación en un horno (TERLAB) a 105º C
durante 4 h hasta obtener un peso constante. Por diferencia de peso se calculó la
humedad de la muestra, con la fórmula siguiente:
% humedad = (Peso crisol + muestra húmeda) - (peso del crisol + muestra seca)
X 100 peso de la muestra húmeda
6.7.2 Cenizas
El contenido de ceniza fue determinado mediante calcinación de la muestra, se
pesaron 2 g de muestra sólida, se incineró en (horno Mufla Termolyne 6000) a
600ºC por 5 h, después se colocó en estufa por 40 min a 100 °C y se pesó.
% cenizas= peso crisol con cenizas - peso crisol vacío
X 100 peso de la muestra
6.7.3 Proteína
El contenido de proteínas (%N x 6.25) se determinó a partir de la composición del
nitrógeno total de las muestras, mediante la técnica Kjeldhal. El método consistió
en la digestión de las muestras en un Sistema de Digestión (FossKjeltec 2400) con
ácido sulfúrico concentrado a 400º C a la que se adicionó un catalizador. Seguido
de una destilación con NaOH en un Sistema de Destilación (FossKjeltec2300) al
29
40% en presencia de una solución indicadora con ácido bórico al 4%. Por último
se realizó una titulación con HCl 0.1 N.
% Proteína= (Valor ml – Valor medida patrón ml) x 0.1 x 14.004 x 6.25 x 100
peso de la muestra (mg)
6.7.4 Extracto Etéreo (EE)
El contenido de extracto etéreo de la muestra se determinó mediante el método de
extracción de grasa en caliente, con un Equipo de Extracción SoxtecAvanti
(FossTecator 2010) usando éter de petróleo.
% E.E = Peso muestra final
X 100 Peso muestra inicial
6.7.5 Fibra Cruda
El contenido de fibra se determinó mediante una digestión ácida de las muestras
desgrasadas con H2SO4
% Fibra =
, seguida de una digestión básica con NaOH, en el
sistema (Fibertec M6 1020 FossTecator). Posteriormente, se secó el residuo
obtenido en una estufa a 105 ºC hasta peso constante, se pesó y calcinó a 550 ºC
durante 30 min en mufla para pesar al final el residuo restante.
Peso muestra seca 105 °C – Peso muestra calcinada 550 °C x100
peso de la muestra desgrasada
30
6.7.6 Extracto Libre de Nitrógeno (ELN)
El contenido de extracto libre de nitrógeno se determinó por la diferencia de 100
menos la suma de los demás nutrientes.
% E.L.N. = 100 – (% cenizas + % proteínas + % E.E. + % fibra)
6.7.7 Determinación de energía bruta
La determinación de energía bruta se determinó mediante la combustión de la
muestra en forma de pastilla en una bomba calorimétrica
(ParrInstrumentCompany).
6.6 Análisis estadísticos
Los datos de supervivencia, crecimiento y factor de conversión alimenticia fueron
analizados con una prueba de normalidad (Prueba de Lilliefors) y una prueba de
homoscedasticidad (Prueba de Bartlett) antes de definir el método de análisis de
varianza a utilizar. Para los análisis que presentaron diferencias significativas, se
llevó a cabo un análisis de comparación múltiple de medias (LSD o Tukey) para
definir qué tratamiento o tratamientos difieren significativamente.
31
VII. RESULTADOS
7.1. Determinar la composición química proximal de la pasta de soya, harina de
trigo y harina de maíz
El resultado del análisis químico proximal de los ingredientes realizados en CIBNOR
La Paz arrojo los siguientes valores que se muestran en la Tabla 1.
Tabla 1. Composición química proximal de los ingredientes.
Ingrediente Proteína
(%)
Lípidos
(%)
Humedad
(%)
Fibra
(%)
Cenizas
(%)
ELN
(%)
H. P. 66.32 13.10 6.39 0.05 17.74 2.79
Pasta de
soya
57.20 0.71 8.34 3.52 8.15 30.41
H. de maíz 9.59
7.14
9.88
2.59
1.93
78.75
H. trigo 10.5 1.6 8.49 3.4 2.52
32
El perfil de aminoácidos de las dietas formuladas no presenta deficiencia con los
requerimientos del camaronL. vannamei reportado por la FAO (1989) (Tabla 2).
Tabla 2. Perfil de aminoácidos de las dietas experimentales de alimentos con
diferente porcentaje de sustitución (0, 25, 50, 75 y 100%) de harina de pescado para
camarones L. vannamei.
AA
100 75 50 25 0
Requerimiento
camarón
Arginina 16.9 20.4 25.4 26.0 25.4 15.5
Cisteína 4.0 5.6 7.9 7.9 7.3 2.7
Metionina 10.1 11.0 12.8 11.1 8.3 5.4
Treonina 14.0 15.8 18.8 17.5 15.1 9.6
Isoleucina 16.1 18.2 21.8 20.7 18.4 6.8
Leucina 23.0 34.7 50.9 49.5 42.8 14.0
Lisina 28.9 26.6 25.3 21.9 17.9 14.7
Valina 18.9 21.5 25.6 24.0 20.8 8.5
Tirosina 11.9 15.5 20.8 19.7 16.6 7.8
Triptófano 3.0 3.1 3.2 3.3 3.5 2.7
Fenilalanina 12.2 16.6 22.9 22.6 20.4 7.7
Histindina 9.8 11.4 13.9 13.0 11.1 4.4
7.2. Formular dietas con sustituciones de 0, 25, 50, 75 y 100% de proteína de
origen vegetal, manteniendo el requerimiento óptimo de aminoácidos para
camarón blanco
33
Las dietas experimentales se formularon según los resultados de los análisis
químicos de los ingredientes cuidando siempre de cumplir con los requerimientos de
proteína, lípidos y aminoácidos para camarón blanco. La formulación final de las
dietas se muestra en la tabla 3.
Tabla 3. Formulación de dietas experimentalescon diferente porcentaje de
sustitución (0, 25, 50, 75 y 100%) de harina de pescado para camarones L.
vannamei.
Ingredientes 100% 75% 50% 25% 0%
H. P. 520 390 260 130 0
H. de maíz 0 95 218.9 218.9 180
H. de trigo 0 95 200 190 218.9
H. de soya 0 95 200 340 480
Celulosa 358.9 203.9 0 0 0
Grenetina 40 40 40 40 40
Aceite de
pescado 40 40 40 40 40
Lecitina de soya 40 40 40 40 40
P. de vitaminas 0.1 0.1 0.1 0.1 0.1
P. de minerales 1 1 1 1 1
Total peso (g) 1000 1000 1000 1000 1000
34
La premezcla de vitaminas y minerales se obtuvo de la fábrica de alimentos AZTECA
y los valores de vitaminas y minerales se muestran en la tabla 4.
Tabla 4.Premezcla de vitaminas y minerales utilizados en la elaboración de las
dietas experimentales para los bioensayos de crecimiento de camarón blanco.
VITAMINAS g/kg MINERALES g/kg
Tiamina
0.011
Calcio
3.0
Ácido fólico 0.005 Fósforo 7.0
Riboflavina 0.02 Magnesio 0.5
Piridoxina 0.011 Yodo 0.001
Colina 0.275 Hierro 0.15
Ácido
pantoténico
0.0035
Cobre
0.003
Niacina 0.088 Zinc 0.20
Vitamina B12 0.00001 Manganeso 0.013
Vitamina K 0.0044 Selenio 0.0004
Vitamina D3 0.000055
Vitamina E 0.04422
Ácido
ascórbico
0.375
35
7.3. Evaluar el efecto de la sustitución de fuentes vegetales en el crecimiento,
factor de conversión alimenticia y sobrevivencia en laboratorio y campo
7.3.1 Bioensayo en laboratorio
7.3.1.1 Variables fisicoquímicas del agua
El registro de los parámetros fisicoquímicos resultaron dentro de los rangos óptimos
para el crecimiento y supervivencia de los organismos, la salinidad se mantuvo en un
promedio de 35.0 ± 0.15 UPS; la concentración de oxígeno disuelto se tuvo en un
promedio de 4.0 ± 0.52 mg/L y una temperatura promedio de 28.96 ± 0.15 °C.
7.3.1.2 Variables productivas
Los valores resultantes de la evolución final del camarón blanco en laboratorio en
cuanto a peso final, peso ganado, tasa de conversión diaria y supervivencia están
representados en la tabla 5. Dietas con 50% de sustitución, presentan el mayor peso
final y peso ganado (p<0.05), sin presentar diferencias significativas con la dieta
comercial.
36
Tabla 5. Evaluación biológica del camarón (Litopenaeusvannamei) a 90 días de
cultivo en laboratorio.
Dieta Peso
Inicial (g)
Peso
Final (g)
Peso
Ganado (g)
TCD
(% día)
Supervivencia
(%)
100% 0.98 ± 0.2 6.14 ± 1.0b 5.1 ± 0.54b 1.82 ± 0.11 83.3 ± 0
75% 0.91 ± 0.3 6.25 ± 0.7b 5.3 ± 0.23ab 1.94 ± 0.14 83.3 ± 0
50% 0.95 ± 0.2 6.46±1.1ab 5.5 ± 0.11ab 1.92 ± 0.13 83.3 ± 0
25% 0.93 ± 0.2 5.75 ± 0.7b 4.8 ± 0.46b 1.82 ± 0.16 88.5 ± 0.57
0% 0.88 ± 0.1 6.38 ± 0.8b 5.4 ± 0.13ab 1.96 ± 0.20 83.3 ± 0
Comercial 0.92 ± 0.2 7.12 ± 0.9a 6.2 ± 0.70a 2.05 ± 0.21 83.3 ± 0
37
7.3.1.3 Crecimiento
El mayor crecimiento de organismos se registró con la dieta comercial pero no se
encontraron diferencias significativas(p<0.05) en comparación con la dieta 50%
harina de pescado, ligeramente inferior la dieta con 0%. Sin embargo, el crecimiento
observado para los organismos alimentados con las demás inclusiones (25%, 75% y
100%) resultaron significativamente (p<0.05) inferiores (figura 4).
Figura 4.Valores de las curvas de crecimiento promedio de (Litopenaeusvannamei)
alimentados con dietas a diferentes inclusiones de harina de soya, harina de trigo y
harina de maíz en laboratorio(Com = comercial).
0.00
1.00
2.00
3.00
4.00
5.00
6.00
7.00
8.00
9.00
-20 0 20 40 60 80 100
Peso
(g)
Dias
com
100
75
50
25
0
38
7.3.1.4 Peso final
Al finalizar el experimento, se observó que los camarones con mayor peso 7.12 ±
0.90 g, fueron los alimentados con la dieta comercial, pero no presento diferencias
significativas(p<0.05) en comparación con la dieta 50%. A diferencia de las demás
dietas que si presentaron diferencias significativas(p<0.05) (0%, 25%, 75& y 100%)
figura 5.
.
Figura 5. Valores de peso promedio final de (Litopenaeusvannamei) alimentados
con dietas a base de harina de soya, harina de trigo y harina de maíz(Com =
comercial).
0.0
1.0
2.0
3.0
4.0
5.0
6.0
7.0
8.0
9.0
com 100 75 50 25 0
% de sustitucion (dietas)
Peso
fina
l(g)
39
7.3.1.5 Tasa de supervivencia (TSA)
La tasa de supervivencia más alta fue para las dietas 25% y 100% de inclusión de
harinas con un valor de 88.9%, sin presentar diferencias significativas (p<0.05). La
supervivencia más baja la obtuvieron las demás dietas 0%, 50%, 75% y comercial
con un valor de 83.3% pero no se encontraron diferencias significativas(p<0.05)
cuando se compararon entre ellas (figura 6).
Figura 6.Valores de supervivencia de camarones (Litopenaeusvannamei)
alimentados con dietas a diferentes inclusiones de harina de soya, harina de trigo y
harina de maíz en bioensayo en laboratorio (COM = dieta comercial).
0.0
10.0
20.0
30.0
40.0
50.0
60.0
70.0
80.0
90.0
100.0
0 25 50 75 100 com
% de sustitucion
TSA(
%)
40
7.3.1.6 Factor de conversión alimenticia (FCA)
La tasa de conversión alimenticia más baja de todas las dietas evaluadas, resultó la
dieta de 100% inclusión de harinas con un valor de 4 ± 0.44. La dieta con el valor
más alto fue la de 50% 4.7 ± 0.55 pero no se encontraron diferencias
significativas(p<0.05) entre las dietas (figura 7).
Figura 7.Valores del factor de conversión alimenticia de camarones
(Litopenaeusvannamei) alimentados con dietas a diferentes inclusiones de harina de
soya, harina de trigo y harina de maíz en bioensayo en laboratorio (COM= dieta
comercial).
0.0
1.0
2.0
3.0
4.0
5.0
6.0
COM 100 75 50 25 0
FCA
Dieta
41
7.3.2 Bioensayo en campo
7.3.2.1. Parámetros físicos y químicos
El registro de los parámetros fisicoquímicos resultaron dentro de las condiciones
adecuadas para el crecimiento y supervivencia de los organismos, la salinidad arrojo
un promedio de 38.0 + 0.15 UPS; la concentración de oxígeno disuelto se mantuvo
en un promedio de 3.2 + 0.52 mg/L y una temperatura promedio de 30.4 + 0.15 °C.
7.3.2.2. Variables productivas
Los valores obtenidos de la evaluación biológica del camarón blanco en estanqueria
comercial fueron los siguientes (tabla 6). No se presentaron diferencias
significativas(p<0.05) en el peso final, peso ganado, tasa de conversión diaria y
supervivencia entre las dietas experimentales.
Tabla 6.Tabla de la evaluación biológica del camarón (Litopenaeusvannamei) a los
35 días de cultivo en campo.
Dieta Peso inicial (g) Peso final (g) Peso ganado (g) TCD (%día) Sobrevivencia (%)
100% 1.02 ± 0.06 8.99 ± 1.36 7.89 ± 1.43 0.26 100
75% 1.09 ± 0.11 9.93 ± 0.57 8.80 ± 0.48 0.28 100
50% 1.10 ± 0.10 10.68 ± 0.21 9.62 ± 0.12 0.31 93.3
25% 1.06 ± 0.12 10.79 ± 0.41 9.69 ± 0.45 0.31 96.6
0% 1.13 ± 0.12 10.91 ± 1.29 9.82± 1.17 0.31 100
comercial 1.10 ± 0.10 10.08 ± 1.64 9.05 ± 1.73 0.29 96.6
42
7.3.2.3. Crecimiento
Al finalizar el bioensayo los organismos que presentaron un mayor crecimiento
fueron los alimentados con la dieta 0% harina de pescado (10.91 ± 0.57g), seguida
de la dieta de 25% (10.79 ± 0.41g) y la dieta 50% (10.68 ± 0.21g) La dieta 100%
presento el menor crecimiento (8.99± 1.39g). Cabe mencionar que aunque el
crecimiento no presentó diferencias significativas(p<0.05) entre las dietas los
crecimientos se dividieron en dos grandes grupos, las de mejor crecimiento: 0%,
25% y 50% y la de menor crecimiento: comercial, 75% y 100% harina de pescado
(figura 8).
Figura 8.Valores de crecimiento para camarones alimentados con dietas a
diferentes inclusiones de harina de soya, trigo y maíz en bioensayo en campo.
0
2
4
6
8
10
12
14
16
1 2 3 4 5 6 7
Cre
cim
ien
to (
g)
COM
0%
25%
50%
75%
100%
Semanas
43
7.3.2.4 Peso final
Al final del bioensayo en campo, la dieta con mayor crecimiento resulto ser la dieta
con 0% harina de pescado aunque fue muy similar el resultado de la dieta con 25% y
50%. La dieta que presento el menor crecimiento fue la de 100% aunque no hubo
diferencias significativas(p<0.05) entre las dietas estudiadas figura 9.
Figura 9.Valores de peso promedio final para camarones (L. vannamei) alimentados
con dietas a diferentes inclusiones de harina de soya, trigo y maíz en bioensayo en
campo(COM = dieta comercial).
0.00
2.00
4.00
6.00
8.00
10.00
12.00
14.00
COM 0 25 50 75 100
Peso
fina
l (g)
Gramos
44
7.3.2.5 Tasa de supervivencia (TSA)
Los valores de supervivencia obtenidos por todas las dietas resultaron ser altos
(figura 10).Los valores estuvieron por encima del 96.7% para las dietas 50% y 100%
harina de pescado y 100% para las dietas COM, 0% y 75%, la dieta con el
porcentaje más bajo fue la dieta 25% 93.3% aun así no presentaron diferencias
significativas(p<0.05) entre ellas.
Figura10.Valores de tasa de supervivencia para camarones (L. vannamei)
alimentados con dietas formuladas con inclusión de harina de soya, trigo y maíz en
bioensayo en campo(COM = dieta comercial).
88.0
90.0
92.0
94.0
96.0
98.0
100.0
102.0
COM 0% 25% 50% 75% 100%
TASA DE SUPERVIVENCIA
Porc
enta
je (%
)
Dietas
45
7.3.2.4 Factor de conversión alimenticia (FCA)
Los valores de factor de conversión alimenticia obtenidos fueron muy similares entre
todas las dietas figura 11, no hubo diferencias significativas entre ellas
estadísticamente (p<0.05).Los valores obtenidos resultaron ser valores dentro de los
límites para obtener una buena ganancia monetariamente hablando.
Figura 11.Valores de factor de conversión alimenticia para camarones alimentados
con dietas a diferentes inclusiones de harina de soya, trigo y maíz en bioensayo en
campo(COM = dieta comercial).
0.0
0.5
1.0
1.5
2.0
2.5
COM 0 25 50 75 100
FCA
Dietas
46
7.3.2.7 Correlación
En este bioensayo pudimos observar que se presentó una correlación inversa entre
los porcentajes de inclusión de las dietas, la dieta con menor inclusión de harina de
pescado presento el menor crecimiento (figura 12).
Figura 12. Correlación inversa entre la inclusión de harina de pescado en las dietas
y el crecimiento(COM = dieta comercial).
y = -0.0188x + 11.2R² = 0.8491
P<0.05
0.0
2.0
4.0
6.0
8.0
10.0
12.0
0 20 40 60 80 100 120
Porcentaje de inclusion
Peso
(g)
47
VIII. DISCUSIÓN
a) Bioensayo en laboratorio
Durante el transcurso del experimento los parámetros fisicoquímicos se mantuvieron
en un intervalo similar al que Wyban y Sweeney (1991) describen como óptimo, solo
la temperatura presento valores un poco por debajo del rango óptimo, ya que se
llevó a cabo el bioensayo en los meses fríos del año con el uso de calentadores
eléctricos.La salinidad y el oxígeno se mantuvieron siempre dentro de los intervalos
óptimos según Yang (1990).
Durante el ensayo realizado bajo condiciones de laboratorio, la tasa de
supervivencia más alta fue para las dietas 25% y 100% de inclusión de harinas con
un valor de 88.9%. La supervivencia más baja fue de 83.3%, sin embargo, se
observó que la mortalidad fue debido a que los organismos saltaban de los tanques
conforme crecían semana a semana así como por estreés durante los muestreos.
Anggawatiet al. (1990), tuvieron una supervivencia mayor a 75% en un experimento
donde se evaluó el hidrolizado de pescado para P. monodon. Lo que quiere decir
que nuestros porcentajes de supervivencia estuvieron por encima de un resultado
favorable.
El mayor crecimiento de organismos se registró con las dietas comercial y la dieta
con 50% de inclusión de harina de pescado. Sin embargo, el crecimiento observado
para los organismos alimentados con las demás inclusiones (25%, 75% y 100%)
resultaron significativamente inferiores. Lo que sugiere de acuerdo con los
48
resultados de perfil de aminoácidos de nuestras dietas que está estrechamente
relacionado con el contenido de aminoácidos ya que a 50% inclusión de harina de
pescado encontramos una mayor concentración de aminoácidos en la dieta, lo que
se pudo reflejar en un mayor crecimiento de los organismos. Hernández et al. (2008)
usaron ensilado de atún y pasta de soya para alimentar camarón blanco y en sus
dietas de 25% y 50% de sustitución de pasta de soya obtuvieron que no tuvo
diferencias significativas en comparación con una dieta comercial. González et al.
(2007) indican, que niveles de 15% de inclusión de ensilado de pescado, se cumple
con las exigencias nutricionales de los camarones ya que no mostró diferencias
significativas con respecto al crecimiento de los camarones alimentados con una
dieta comercial, indicando que el uso de ensilado de pescado puede ser una fuente
alternativa de proteína en las dietas para L. schmitti.
La tasa de conversión alimenticia más baja de todas las dietas evaluadas, resultó la
dieta de 100% inclusión de harinas con un valor de 4. La dieta con el valor más alto
fue la de 50% inclusión de harinas. Hernández et al. (2008) reportaron valores por
debajo de los nuestros lo que sugiere que por haberse llevado acabo el bioensayo
en los meses fríos pudo haber tenido una repercusión en lento crecimiento de los
organismos.
b) Bioensayo en campo
Durante el bioensayo en granja los parámetros físicoquímicos se mantuvieron dentro
de los rangos óptimos según Wyban y Sweeney, (1991). Es por eso que la salinidad
y la temperatura no tuvieron un efecto sobre el crecimiento y la supervivencia de los
49
camarones. En cuanto al oxígeno disuelto se mantuvo en un rango óptimo según
Yang (1990).
Al finalizar el bioensayo los organismos que presentaron un mayor crecimiento
fueron los alimentados con la dieta 0% harina de pescado con 10.91 ± 0.57g. La
dieta 100% presentó el menor crecimiento con 8.99 ± 1.36grs. Cabe mencionar que
aunque las dietas no presentaron diferencias significativas entre ellas los
crecimientos se dividieron en dos grandes grupos, las de mejor crecimiento: 0%,
25% y 50% y la de menor crecimiento: comercial, 75% y 100% harina de pescado,
los crecimientos de los organismos fueron superiores en campo ya que en el agua
de mar podemos encontrar una trama trófica que favorece a los organismos
principalmente en sus primeras etapas ya que es el alimento natural del camarón y
que en combinación con nuestras dietas 0%, 25% y 50% ricas en aminoácidos
esenciales se logró un crecimiento incluso por encima del obtenido por los
camarones fuera de las jaulasTacon (1984). Se han hecho estudios que
comprueban que la combinación de un cereal y una leguminosa es perfecto para
obtener una proteína de muy alta calidad, rica en aminoácidos esenciales y de alto
valor biológico (Gutierrez-Dorado et al., 2008). Al igual que en el bioensayo en
laboratorio se observó la tendencia a disminuir el crecimiento conforme se aumentó
la inclusión de harina de pescado, esto lo atribuimos a la correlación inversa entre el
bajo contenido de aminoácidos a mayor inclusión de harina de pescado, lo que
afecto directamente el crecimiento de los organismos. Hernández et al.
(2008)probaron harina de subproductos pecuarios (porcícola y avícola) y no
50
encontraron diferencias significativas cuando la compararon con una dieta
comercial.Fosteret al. (2003) no encontraron diferencias significativas en crecimiento
de L. vannamei alimentado con harina de carne y hueso de diferente calidad. En la
misma línea se tiene a Macrobrachiumnipponense alimentado con harina de
subproductos avícolas (Xie y Yu, 2003). Liu y Yu (2002) y Zhu y Yu (2002)
alimentaron L. vannamei con dietas de HCH y/o HSA. La ganancia en peso
registrada fue similar para dietas con HCH y/o HSA. De la misma forma Smith (1996)
alimentó a P. monodon con HCH sin encontrar diferencias significativas para las
distintas inclusiones. Por su parte Allan et al. (1999) alimento a camarones P.
monodon con dietas incluidas con HCH. En contraste con Tan y Yu (2002) a quienes
alimentaron P. vannamei con dietas incluidas con HCH y HSA, estos autores
encontraron mayor ganancia en peso para HSA comparado con los organismos que
consumieron las dietas incluidas con HCH. Davis y Arnold (2000) alimentaron L.
vannamei con dietas incluidas con HSA en sustitución de harina de pescado,
reportando mejores crecimientos para las dietas experimentales con respecto a la
dieta con únicamente HP. Tan y Yu (2002) encontraron diferencias significativas
para camarones alimentados con dietas contenidas HCH con diferentes reemplazos
de HP. La dieta con una tasa de reemplazo del 40% mostró mejor ganancia en peso
que la dieta con HP, así mismo resultó superior que las dietas con 50, 60 y 80 de
reemplazo.
La tasa de supervivencia para todas las dietas fueron valores por encima del 96.7%
para las dietas 50% y 100% inclusión de harinas y 100% para las dietas COM, 0% y
75% de inclusión de harinas, la dieta con el porcentaje más bajo fue la dieta 25%
inclusión de harinas aunque no presentaron diferencias significativas entre ellas
51
cabe destacar que las mortalidades se debieron al manejo de las jaulas durante las
biometrías. Xie y Yu et al, (2003) registraron similares valores, con un valor mínimo
de 77% y máxima de 87% con dietas a varios niveles de sustitución de HP con HSA
para Macrobrachiumnipponense. Sin embargo, han reportado supervivencias
inferiores a la obtenida en el presente trabajo. Fegan y Yu, (2002), obtuvieron
valores de supervivencia entre 68% y 89%, durante un experimento donde
sustituyeron la HP con harinas de carne y hueso (HCH) o HSA sobre el crecimiento
de camarón tigre P. monodon. En la misma línea Van Hao y Yu (2003) publicaron
valores de supervivencia entre 41% a 60% para juveniles de camarón de la misma
especie camarón al ser alimentado con dietas con sustituciones de HP con (HCH) y
HSA. A diferencia de Menasveta y Yu (2002) quienes obtuvieron valores entre 89% y
97% con el uso de los mismos ingredientes en la misma especie. Sin embargo, Allan
et al. (2000, 1999) registraron una supervivencia por arriba del 92% mediante el uso
de HCH para la misma especie. Para L. vannameiZhu y Yu registraron una
supervivencia cercana al 100% (99%) al evaluar el efecto de sustitución parcial de la
HP con HCH y HSA.
Los valores de factor de conversión alimenticia obtenidos fueron muy similares entre
todas las dietas, no hubo diferencias entre ellas estadísticamente y viéndolo desde
el punto de vista del productor resultaron ser valores dentro de los límites para
obtener una buena ganancia monetariamente hablando. Hernández et al. (2008)
obtuvieron valores por debajo de los nuestros. Por su parte, Tan et al. (2005),
observaron que la conversión alimenticia también se deterioró en un 9% a un nivel
alto de sustitución ellos obtuvieron un factor de conversión de 1.5 como valor más
alto. Similares resultados obtuvo (Millamena, 2002), el cual sustituyo la HP por
52
harina de subproductos de origen animal en un 0%, 10%, 20%, 30%, 40%, 60%,
80%, y 100%,elaborando dietas para alimentar Epinepheluscoioides, obteniendo un
FCA de 0.93 a 1.05. Xue y Yu, (2005) reportaron valores superiores, para camarón
P. monodon con un peso inicial de 0.2 g, logrando una conversión alimenticia con
rangos de 2.9-3.6 muy por encima de nuestro rango.
53
IX. CONCLUSIONES
1) Dietas con 50% de sustitución de harina de pescado por harina de maíz, trigo
y soya presentan un mayor crecimiento en camarones después de 90 días de
cultivo en laboratorio.
2) No se presentó diferencia entre los porcentajes de sustitución por la harina de
pescado en el crecimiento de los camarones en jaulas en estanquerías.
3) Dietas con 50% de sustitución de harina de pescado por harina de maíz, trigo
y soya presentan el mayor contenido de aminoácidos esenciales por lo que se
recomienda este porcentaje para su uso en acuacultura.
4) La combinación de harina de origen vegetal en la formulación de dietas para
camarón blanco es una alternativa para sustituir la inclusión de harina de
pescado en el alimento comercial y con esto reducir los costos de producción
por su alta disponibilidad en nuestro país.
54
Recomendaciones
• Incrementar los estudios en campo con la utilización de proteína vegetal.
• Seguir evaluando en campo la dieta que resulto con mejor crecimiento.
• Considerar la combinación de las harinas de soya, trigo y maíz como
ingredientes alternos de potencial valor nutritivo para la sustitución de la
harina de pescado, para así, reducir la dependencia de este ingrediente en
alimentos balanceados.
55
X. REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS
A.O.A.C., 1995. Official Methods of Analysis of the Association of Analytical
Chemisth.16th. Ed. Washington, D.C., USA.935 p.
Akiyama, D.M., Dominy, W.G. and Lawrence, A.L., 1991. Penaeid shrimp nutrition
for the commercial feed industry: In: Marine Shrimp Culture: Principles and
Practices (Fast, A. L & Lester, L.J. Eds), pp. 535-568. Elsevier Science Publishers
BV, Amsterdam. The Netherlands.
Akiyama, D.M.: 1992. Utilización de la pasta de soya en los alimentos acuícolas.
Asociacion Americana de Soya. ASA/MEXICO. A:N: No.89. 12.pp.
Allan, G.L., K. C. Williams, D. M. Smith, y C. G. Barloo. 1999. Use of meat and
bone meal in the Giant Tiger prawn (P. monodon) feed. NSW Fisheries, NSW,
Australia 2316 Fifth international Symposium, world rendering Beyond 2000,
Barlow, S. M., 2000. Fishmeal and fish oil: Sustainable feed ingredients for
aquaculture. The global aquaculture advocate 3 (2).85-86.
Bligh, E. and Dyer, J. (1959).A rapid method of total lipid extraction and
purification. Can. J. Biochem Physiol., 37: 911-917.
Bradford, M. 1976. A rapid and sensitive method for microgram quantities of
protein utilizing the principle of protein - dye binding. Anal biochem 72: 245 - 248.
Bressani, R. y L.G. Elías. 1980. The nutritional role of polyphenols in beans. pp.
105-111. En: Hulse, J.H. (ed.). Polyphenols in cereals and legumes. IDRC, Otawa,
Canadá.
Carver, L.A.; Akiyama, D.M.; Dominy, W.G. (1988). Processing of wet Shrimp
heads squid viscera with soy meal by a dry extrusion process. Proc. World
congress on vegetable Rpotein Utilization in Human Foods and Animal Feedstuff,
Amem Oil Chemists Soc. Champaing, Illinois. 167-170.
CIVERA-CERECEDO R., 1989. Effets du phytate de sodium sur la crolssance et la
mineralisation de diverstissus de crevettespenaeides (CRUSTACEA:DECAPODA).
56
Rote de ce composant en tant que source de phosphore et d inositol. Tesis de
doctorado. Universite de Bretagne Occidentale, France. 153p.
Cowey, C.B., Pope, J.A., Adron, J.W. and Blair, A. (1972).Studies on the nutrition
of marine flatfish.The protein requirements of plaice, Pleuronectesplatessa. Brit. J.
Nutr. 28: 447–456.
Cowey, C.B., J.W. Adron and D. Knox, 1975 Studies on the nutrition of marine
flatfish.The thiamin requirement of turbot, Scophthalmusmaximus.Br.J.Nutr., 34:383–
390.
Cowey, C. B., 1975. Aspects of protein utilization by fish. Proc. Nutr. Soc., 34: 57-
63.
Cowey, C.B., A. Tacon. 1983. Fish Nutrition relevance to marine invertebrates. En:
Proc. 2nd International conference on Aquaculture Nutrition: Biochemical
approaches to shellfish nutrition. Baton Rouge, United States: 13-30.
Dabrowski, K &Piechowski, M.M. (1977).Theory of levels of emotional
development (Vols.1 & 2). Oceanside, NY: Dabor Science.
Davis, D.A. y Arnold C.R., 2000. Replacement of fishmeal in practical diets for the
pacific white shrimp, Litopenaeusvannamei.Journal of the World Aquaculture
Society.Vol. 185.281-298 pp.
DE LONG, D. C.; HALVER, J. E. & MERTZ, E. T. 1958. Nutrition of salmonoid
fishes: VI Protein requirement of chinook salmon at two water temperatures. 10
pp.
FAO, 1989. Nutrición y alimentación de peces y camarones cultivados. Manual de
capacitación. pp 592.
http://www.fao.org/docrep/field/003/AB492S/AB492S00.htm
FAO. 2010. El Estado Mundial de la Pesca y la Acuacultura. 2010
http://www.fao.org/docrep/013/i1820s/i1820s00.htm
Fegan, D y Yu, Y 2002 Replacement of fish meal with meat and bone meal or
poultry byproduct meal (pet food grade) on growth performance of Black Tiger
Shrimp (P. monodon). P. monodon Report No. 2. NRA Research Report No 23.
57
Foster, D.R., Hall, B., Barry, S., Clayden, S., Parshall, T., 2002b. Cultural,
environmental, and historical controls of vegetation patterns and the modern
Forster, I.P., Dominy, W., Obaldo, L., Tacon, A.G., (2003). Rendered meat and
bone meals as ingredients of diets for shrimp Litopenaeusvannamei (Boone,
1931). Aquaculture 219, 655-670.
Fox, J.M., Lawrence, A.L., and Li-Chan E., 1995.Dietary requirement for lysine by
juvenile Penaeusvannamei using intact and free amino acid sources. Aquaculture
131, 279-290.
GallagerJ.J. , Anderson RW, KasellJ. , Rice JR, Pritchett ELC, Gault JH et al.
Cryoanblation of drug-resistant ventricular tachycardia in patient with a variant
scloderma. Circulation 1978; 57: 190-197.
Guerin, E., Napias, C., 1978. Phosphate transport in yeast mitochondria:
purification and characterization of a mitoribosomal synthesis dependent
proteolipid showing a high affinity for phosphate. Biochemistry, vol. 17-2510-2516.
Hardy, R.W. 1996. Alternative Protein sources for salmon and trout diets. Anim.
Feed Sci. Technol. 59, 71-80.
Hardy, R.W., Tacon, A.G.J., 2002. Fish meal: Historical uses, production trends
and future aoutlook for sustainable supplies. In: stickey. R.R. McVey, J.P. (Eds),
Responsible Marine Aquaculture. CABI Publishing, Wallingford, UK. Pp. 311-325.
Hardy, R.W., Sealey, W.M., Gatlin, D.M. III. 2005. Fisheries by catch and by
product meals as protein sources for rainbow trout Oncorhinchusmykiss. J. world
aquacult. Soc. (3), 293-400.
Hertrampf, J.W., Piedad-Pascual, F., 2000. Handbook on Ingredients For
Aquaculture Feeds. KluwerAcademic Publisher, Dordrech. TheneTherlands,
573pp.
Hernández, C., Sarmiento-Pardo, J., González-Rodríguez, B., Abdo de la Parra l.,
2004. Replacement of fish meal with co-extruded wet tuna viscera and corn meal
in diets for white shrimp (Litopenaeusvannamei). Aquac Res. 35, 1153-1157.
Ketola, H.G. 1982. Comp. Biochem. Physiol., 73B: 17-24.
Lawrence, A.L., Castille, Jr., F.L., Sturmer, L.N., and Akiyama, D.M. 1896.
Nutritional response of marine shrimp to different levels of soybean emal in fees.
USA- ROC and Economic Council’tenth anniversary join Bussines Conference,
Taipei, Taiwan, ROC, December, 1986.
58
Lim, C.; Dominy, W. Evaluation of soybean meal as a replacement for marine
animal protein in diets for shrimp Penaeusvannamei.Aquaculture. 87:53-64. 1990.
Liu, Y. y Yu., Y 2002., Replacement of fish meal with meat and bone meal
performance and body composition of white leg shrimp (P. vannamei). P.
vannamei Report No. 1. NRA Research Report No 12.
Lovell, RT. Y RO. Smitherman. 1993. Status and potencial for the use of soy in
acuaculture. April 14, 1993.
Meade, M. E., Watts, S. A., Weight gain and survival of juvenile Australian crayfish
Cheraxquadricarinatus fed formulated feeds. Journal of the World Aquaculture
Society, 26(4): 469-474.
Millamena, M. O., 2002. Replacement of fish meal by animal by-product meals in a
practical diet for grow-out culture of grouper Epinepheluscoioides. Aquaculture
204, 75-84.
Naylor, R. L., Goldburg, R. J., Primavera, J. H., Kautsky, N., Beveridge, M. C. M.,
Clay, J., Folke, C., Lubchenco, J., Mooney, H. and Troell, M., 2000.'Effect of
aquaculture on world fish supplies', Nature, vol. 405, pp. 1017-24.
Ogino, C. and G.Y. Yang, 1980 Requirements of carp and rainbow trout for dietar
manganese and copper. Bull.Jap.Soc.Sci.Fish., 46:455–458
Ogino, C. 1980. Requirements of carp and rainbow trout for essential amino
acids.Bull. Jap. Soc. Sci. Fish., 46: 171-174.
Organización latinoamericana del desarrollo pesquero (OLDEPESCA), 2004.
Tendencias del Comercio Pesquero en América Latina y el Caribe.Panorama
acuícola magazine., 2009. Acuacultura supera 50% a altamar y esteros en Sinaloa.
14 de mayo 2009.
http://www.panoramaacuicola.com/noticias/2009/05/14/acuicultura_supera_50_a_alt
amar_y_esteros_en_sinaloa_.html
Panorama acuícola magazine., 2010. El camarón, el principal producto acuícola en
México. 01 de noviembre del 2010.
http://www.panoramaacuicola.com/editorial/2010/11/01/el_camaron_el_principal_pro
ducto_acuicola_de_mexico.html
59
Pike, I.H. and Barlow, S.M. 2003. Impact of fish farming on fish stocks. Fish
Farmer, 26(1): 14-16.
Regost C., Arzel J., Kaushik S.J (1999). Partial or total replacement of fish meal by
corn meal in diets for turbot (Psetta maxima) Aquaculture, 180. 99-117.
Sokal, RR & J. Roblf. 1981. Biometry. W.H. Freeman & Company, San Francisco.
Smith, D.M., 1996 Evaluation of meat and bone meal in aquaculture diets for the
Giant Tiger prawn (P. monodon). P. monodon Report No. 7.
Tacon, A.G.J. and Rodriguez, A.M.P., 1983. Comparison of chromic oxide, crude
fibre, polyethylene and acid- insoluble ash as dietary markers for the estimation of
apparent digestibility coefficients in rainbow trout. Aquaculture, 43, 391-399.
Tacon, A.G.J. and C.B. Cowey, 1985.“Protein and amino acid requeriments”. In:
Fish Energetics, New Perspectives. Tytler, P. and Calow, P. (eds) pp. 349.
CroomHelm, London and Sydney.
Tacon, A.G. (1989). Nutrición y alimentación de peces y camarones cultivados.
Manual de capacitación. Organización de las Naciones Unidas para la Agricultura
y Alimentación. FAO ed., Roma, Italia.Pp.288-300.
Tacon, A.G.J., 1994. Feed ingredients for carnivorous fish species: Alternatives to
fishmeal an the other fishery resources. FAO fisheries circular No. 881. FAO,
rome, Italy. Pp.35.
Tacon A.G.J. and Akiyama D.: 1997. Feed ingredients. In: L.R. D’ Abramo, D.E
Conklin and D.M. Akiyama (Editors), Crustacean nutrition, Advances in World
AcuacultureVolumen 6. World Acuaculture Society, Baton rouge, Lousiana. Pp.
411-472.
Tacon, A.G.J. and Forster, I.N. 2000. Global trends and challenges to aquaculture
and aquafeed development in the new millennium, pp.4-25. International Aquafeed
Directory y Buyers Guide 2001, Turret RAI plc, Uxbridge, Middlesex, UK.
Tan, B.P., y Y. Yu. 2002 a.- Digestibility of fish meal, meat and bone meal, and
poultry byproduct meal (pet food grade) by white leg shrimp (P. vannamei). P.
vannamei Report No. 2. NRA Research Report No 13.
Tan, B.P., K.S. Mai, S.X. Zheng, Q.C. Zhou, L.H. Liu and Y. Yu,
2005.Replacement of fish meal by meal and bone meal in practical diets for the
60
white shrimp Litopenaeusvannamei (Boone, 1931).Aquaculture Research 36:439-
444.
Tidwell, V., Carpenter, K. y Brooks, W. (1999).Oryctos, 2, 21-37.
Toledo-Pérez, S.J. y M. C. García-Capote. 2000. Nutrición y alimentación de tilapia
cultivada en América Latina y el Caribe. En: Civera-Cerecedo, R., Pérez-Estrada,
C.J., Ricque-Marie, D. y Cruz-Suárez, L.E. (Eds.) Avances en Nutrición Acuícola IV.
Memorias del IV Simposium Internacional de Nutrición Acuícola. La Paz, B.C.S.,
México.pp 83-137.
Van Hao, N. y Yu., Y 2003. Replacement of fish meal with MBM and PBM on
growth performance of juvenile Black Tiger Shrimp (P. monodon). P.
monodonReport No. 3. NRA ResearchReport No 31.
Villarreal-Colmenares, H., García G, T., Fenucci, J.L. 2007. Manual de Ingredientes
proteicos y aditivos empleados en la formulación de alimentos balanceados para
camarones peneidos. Universidad Nacional de Mar de Plata Argentina.
http://www3.cibnor.mx/biohelis/pdf/MANUAL_INGREDIENTES_PROTEICOS.pdf
Walton, M.J.; Cowey, C.B.; Coloso, R.M.; Andron, J.W. y Knox, D. 1982. Br. J. Nitr.
51: 289-287.
WATANABE, H., MIAKE, K. and SASAKI, J. (1993a). Immunohistochemical study
of the cytoskeleton of osteoblasts in the rat calvaria.Intermediate filaments and
microfilaments as demonstrated by detergent perfusion.Acta. Anat. 147: 14-23.
Wee, K. L. and A. G. J. Tacon, 1982.A preliminary study on the dietary protein
requirement of juvenile snakehead.Bull. Jap. Soc. Sci. Fish., 48:1463–1468.
Weede, N., 1997. Low phosphorus plant protein ingredients in finishing diets for
rainbow trout (Oncorhynchusmykiss). 97. Seattle, WA, University of Washington.
97. salmonoid fishes: VI Protein requirement of chinook salmon at two water
temperatures. 10 pp.
Wyban, J.A. y J.N. Sweeney. 1991.The Oceanic Institute Shrimp Manual. The
Oceanic Institute, Honolulu, Hawaii, 158 p.
Yang, C.H., 1990.Effects of some environmental factors on the growth of the
Chinese shrimp, Penaeuschinensis.92-96 pp.Main K. L., and Fulks, W. (Eds).The
culture of cold tolerant shrimp.
Xie, S. y Y. Yu., 2003.Replacement of fish meal with Pet Food Grade Poultry
Byproduct Meal on growth performance of Fresh Water Shrimp
(Macrobrachiumnipponense). Fresh Water Shrimp Report No. 2. NRA Research
Report No 27 B.
61
Zhu, W. y Yu., Y 2002 Effect of partial replacement of dietary fish meal with meat
and bone meal or poultry by-product meal (pet food grade) on growth performance
of white leg shrimp (P. vannamei). P. vannamei Report No. 4. NRA Research
Report No 19.
