Le développement embryonnaire des Amphibiens : de l’ovocyte à la larve

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éveloppement embryonnaire des Amphibiens : de l’ovocyte à la Frédéric Seveling Décembre 2004 /Objectifs on et segmentation chez le xénope ocyte avant la fécondation isation d’une fécondation in vitro chez l’Amphibien Xenopus laevis rvation des stades précoces du développement embryonnaire : ocyte fécondé à la blastula ulation chez les Amphibiens odes d’étude et carte des territoires présomptifs rvation histologique d’une gastrula yse des mouvements morphogenétiques nation des axes et inductions embryonnaires tion corticale et détermination de l’axe dorso-ventral ction et régionalisation du mésoderme ction neurale rvations histologiques au stade neurula et bourgeon caudal mples d’organogenèse nogenèse du système nerveux central nogenèse de l’oeil Mots clefs : -Xénope -Pleurodèle -Pôles animal et végétatif -hCG -Rotation corticale -Micromères/mésomères/macromères -Blastula -Gastrula/gastrulation -Neurula/neurulation -Invagination -Epibolie/intercalation -Cellules en bouteille -Transition blastuléenne -Délamination -Carte des territoires présompti -Inductions -Centres de Niewkoop et Spemann -Bourgeon caudal -Vésicules céphaliques -Cupule optique -Vésicule cristalinnienne

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Le développement embryonnaire des Amphibiens : de l’ovocyte à la larve. Frédéric Sevelinge Décembre 2004. Introduction/Objectifs I) Fécondation et segmentation chez le xénope 1) L’ovocyte avant la fécondation 2) Réalisation d’une fécondation in vitro chez l’Amphibien Xenopus laevis - PowerPoint PPT Presentation

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Le développement embryonnaire des Amphibiens : de l’ovocyte à la larve

Frédéric SevelingeDécembre 2004

Introduction/Objectifs

I) Fécondation et segmentation chez le xénope1) L’ovocyte avant la fécondation2) Réalisation d’une fécondation in vitro chez l’Amphibien Xenopus laevis3) Observation des stades précoces du développement embryonnaire :de l’ovocyte fécondé à la blastula

II) La gastrulation chez les Amphibiens1) Méthodes d’étude et carte des territoires présomptifs2) Observation histologique d’une gastrula3) Analyse des mouvements morphogenétiques

III) Détermination des axes et inductions embryonnaires1) Rotation corticale et détermination de l’axe dorso-ventral2) Induction et régionalisation du mésoderme3) Induction neurale4) Observations histologiques au stade neurula et bourgeon caudal

IV) Deux exemples d’organogenèse1) Organogenèse du système nerveux central2) Organogenèse de l’oeil

Conclusion

Mots clefs :-Xénope-Pleurodèle-Pôles animal et végétatif-hCG-Rotation corticale-Micromères/mésomères/macromères-Blastula-Gastrula/gastrulation-Neurula/neurulation-Invagination-Epibolie/intercalation-Cellules en bouteille-Transition blastuléenne-Délamination-Carte des territoires présomptifs-Inductions-Centres de Niewkoop et Spemann-Bourgeon caudal-Vésicules céphaliques-Cupule optique-Vésicule cristalinnienne

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Bibliographie : -F.GILBERT : Biologie du développement ; De Boeck Université 1996-A.LEMOIGNE et J.FOUCRIER : Biologie du développement ; Dunod 5ème édition 2001-L.WOLPERT : Biologie du développement : les grands principes ; Dunod 2000-T.DARRIBERE : Introduction à la biologie du développement ; Belin 2002-T.DARRIBERE : Biologie du développement : le modèle amphibien ; Diderot éditeurs 1997

Corrélations :

Leçons de démonstration secteur A :-Informations de position lors du développement embryonnaire-Les mouvements lors du développement embryonnaire-Les gènes du développement

Leçons de contre-option ab :-Gamètes et fécondation chez les animaux-Les phénomènes d’induction lors du développement embryonnaire-Vitellus et vitellogenèse-Les axes de polarité de l’organisme animal

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Intoduction/Objectifs :

-Connaissance du développement embryonnaire des Amphibiens car développement modèle-En maîtriser les aspects morphologiques, histologiques, cellulaires et moléculaires-Connaître les avantages et les limites du modèle Amphibien-Comprendre la démarche expérimentale qui a permis de caractériser ce développement-Acquérir une bonne connaissance des inductions embryonnaires-Réaliser une manipulation de fécondation in vitro qui peut être faite en lycée

Les deux modèles utilisés :

Avantages et limites du modèle amphibien :

I) Fécondation et segmentation chez le xénope :

1) L’ovocyte avant la fécondation :

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2) Réalisation d’une fécondation in vitro chez Xenopus laevis :

-Protocole

-Effets de la fécondation :

•Création de la membrane de fécondation et rotation d’équilibration :

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•Rotation corticale :

-Dégangage et élevage des embryons :

-Cycle de développement :

1er clivage : 1 heure et demi après fécondation

Durée de la segmentation : 8 heures

Durée de la gastrulation : 10 à 12 heures

Durée de la neurulation : 10 à 12 heures

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3) Observation des stades précoces du développement embryonnaire : de l’ovocyte fécondé à la blastula :

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II) La gastrulation chez les Amphibiens :

1) Méthodes d’étude et carte des territoires présomptifs :

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2) Observation histologique d’une gastrula :

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3) Analyse des mouvements morphogénétiques :

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III) Détermination des axes et inductions embryonnaires :

1) Rotation corticale et détermination de l’axe dorso-ventral :

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2) Induction et régionalisation du mésoderme :

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3) L’induction neurale :

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4) Observations histologiques au stade neurula et bourgeon caudal :

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IV) Deux exemples d’organogenèse :

1) Organogenèse du SNC :

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2) Organogenèse de l’œil :