Kajian patogenisitas cendawan Metarhizium anisopliae ... · Kajian patogenisitas cendawan...
Transcript of Kajian patogenisitas cendawan Metarhizium anisopliae ... · Kajian patogenisitas cendawan...
Kajian patogenisitas cendawan Metarhizium anisopliae terhadap hama Oryctes rhinoceros L. tanaman kelapa pada
berbagai waktu aplikasi
TESIS
Untuk Memenuhi Sebagian Persyaratan Untuk Mencapai Derajat Magister
Program Studi Magister
Oleh :
M U L Y O N O S610906007
PROGRAM PASCASARJANA UNIVERSITAS SEBELAS MARET
SURAKARTA 2007
KAJIAN PATOGENISITAS CENDAWAN Metarhizium anisopliae TERHADAP HAMA Oryctes rhinoceros L.
TANAMAN KELAPA PADA BERBAGAI TEKNIK APLIKASI
Disusun Oleh:
M U L Y O N O S610906007
Telah disetujui oleh Tim Pembimbing:
Dosen Pembimbing:
Jabatan Nama Tanda tangan Tanggal Pembimbing I
Prof. Dr. Ir. Sholahuddin, MS NIP. 130 814 806
……………….
……………
Pembimbing II
Dr. Ir. Subagiya, MP NIP. 131 791 747
……………….
……………
Mengetahui: Ketua Program Studi Agronomi
Prof. Dr. Ir. Edi Purwanto, M.Sc. NIP. 131 470 935
KAJIAN PATOGENISITAS CENDAWAN Metarhizium anisopliae TERHADAP HAMA Oryctes rhinoceros L.
TANAMAN KELAPA PADA BERBAGAI TEKNIK APLIKASI
Disusun Oleh:
M U L Y O N O
S610906007
Telah disetujui oleh Tim Penguji:
Jabatan Nama Tanda tangan Tanggal
Ketua
Prof. Dr. Ir. Edi Purwanto, M.Sc
……………….
………….
Sekretaris
Dr. Ir. Ahmad Yunus, MS
……………….
…………
Anggota
Prof. Dr. Ir. Sholahuddin, MS
……………….
…………
Anggota
Dr. Ir. Subagiya, MP
……………….
…………
Mengetahui:
Direktur Program Pascasarjana
Prof. Drs. Suranto, MSc.,Ph.D NIP. 131 472 192
Ketua Program Studi Agronomi
Prof. Dr. Ir. Edi Purwanto, M.Sc NIP. 131 470 935
PERNYATAAN Yang bertanda tangan di bawah ini, saya:
Nama : Mulyono
NIM : S610906007
Menyatakan dengan sesungguhnya bahwa tesis yang berjudul: KAJIAN
PATOGENISITAS CENDAWAN Metarhizium anisopliae TERHADAP HAMA
Oryctes rhinoceros L. TANAMAN KELAPA PADA BERBAGAI TEKNIK
APLIKASI
adalah betul-betul karya sendiri. Hal-hal yang bukan karya saya dalam tesis tersebut
diberi tanda citasi dan ditunjukkan dalam daftar pustaka.
Apabila di kemudian hari terbukti pernyataan saya tidak benar, maka saya bersedia
menerima sanksi akademik berupa pencabutan tesis dan gelar yang saya peroleh dari
tesis tersebut.
Surakarta, Pebruari 2008
Yang membuat pernyataan,
MULYONO NIM. S610906007
MOTTO DAN PERSEMBAHAN
MOTTO
“Sekalipun engkau tahu bahwa besok akan kiamat, budidayakanlah sebutir benih yang ada dalam jangkauanmu” (Hadits).
“Sampaikanlah sesuatu itu kepada orang-orang sesuai dengan kemampuannya” (Hadits).
PERSEMBAHAN
Tesis ini kupersembahkan kepada:
Kedua orang tuaku
Istri dan anakku
ABSTRAK
Mulyono, 2008. KAJIAN PATOGENISITAS CENDAWAN Metarhizium anisopliae TERHADAP HAMA Oryctes rhinoceros L. TANAMAN KELAPA PADA BERBAGAI TEKNIK APLIKASI Tesis Program Pascasarjana Program Studi Agronomi Universitas Sebelas Maret Surakarta.
Penelitian ini bertujuan untuk mengkaji patogenisitas cendawan M. anisopliae terhadap hama O. rhinoceros pada berbagai teknik aplikasi. Penelitian dilaksanakan di Green House Balai Perlindungan Tanaman Perkebunan (BPT-Bun) Dinas Perkebunan Provinsi Jawa Tengah, Desa Mangunsari, Kecamatan Sidomukti, Kota Salatiga – Jawa Tengah selama 4 (empat) bulan yaitu bulan Agustus sampai dengan bulan Desember 2007.
Penelitian ini menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL) Faktorial 3 (tiga) faktor: Faktor pertama, asal M. anisopliae, terdiri atas dua level/jenis;1) M. anisopliae hasil eksplorasi (baru), 2) M. anisopliae dari BPT-Bun yang telah tersimpan dalam kulkas selama dua bulan. Faktor kedua, jenis media sarang, terdiri atas dua level/jenis; 1) Media sarang pupuk kandang, 2) Media sarang serbuk gergaji. Faktor ketiga, waktu pemberian larva O. rhinoceros, terdiri atas empat level; 1) Waktu pemberian 0 (nol) bulan: pemberian larva O. rhinoceros saat aplikasi M. anisopliae, 2) Waktu pemberian satu bulan: pemberian larva O. rhinoceros setelah satu bulan aplikasi M. anisopliae, 3) Waktu pemberian dua bulan: pemberian larva O. rhinoceros setelah dua bulan aplikasi M. anisopliae, 3) Waktu pemberia tiga bulan: pemberian larva O. rhinoceros setelah tiga bulan aplikasi M. anisopliae. Masing-masing teridiri atas 3 (tiga) ulangan. Data hasil pengamatan dianalisis dengan menggunakan Analysis of Variance (ANOVA), jika terdapat perbedaan diantara perlakuan dilanjutkan dengan Uji Duncan Multiple Range Test (DMRT) taraf 5 %.
Hasil penelitian menunjukkan Patogenisitas cendawan M. anisopliae hasil eksplorasi (baru) terhadap larva O. rhinoceros sebesar 81,61 % lebih tinggi dibanding cendawan M. anisopliae yang telah tersimpan selama dua bulan dalam kulkas sebesar 72,51 %. Patogenisitas cendawan M. anisopliae terhadap larva O. rhinoceros pada media sarang serbuk gergaji sebesar 86, 24 % lebih tinggi dibanding media sarang pupuk kandang sebesar 68, 27 %. Terjadi peneurunan patogenisitas cendawan M. anisopliae terhadap larva O. rhinoceros pada aplikasi tiga bulan.
ABSTRACT
Mulyono, 2008. STUDY of PATOGENECITY of Metarhizium anisopliae FUNGUS TO Oryctes rhinoceros L. PEST ON CROP of COCONUT ON VARIOUS APPLICATION TECHNIQUES. Thesis of Master Program in Agronomy Departement, Sebelas Maret University of Surakarta.
The aims of this research are to study the patogenecity of M. anisopliae fungus to O. rhinoceros pest on various application techniques. The research conducted at Green House of Estate Crop Protection Board Central Java Province in Mangunsari Village, Sidomukti, Salatiga for four (4) months from August to December 2007.
The research used Completely Random Design (CRD) Factorial three (3) factors. First factor: M. anisopliae fungus comes from, that consisted of two (2) levels, which is 1) M. anisopliae fungus come from exploration (new), 2) M. anisopliae from fungus from inoculation in Estate Crop Protection Board which storage in refrigerator during two months. Second factor: Type of nest media consisted of two (2) levels that is 1) Nest media from stable manure, 2) Nest media from wood dust. Third factor: Giving time of O. rhinoceros larva consisted of four (4) levels that is 1) Giving time zero (0) month: giving larva of O. rhinoceros at that moment of application M. anisopliae, 2) Giving time one (1) month: giving larva of O. rhinoceros after one (1) month aplication M. anisopliae, 3) Giving time two (2) months, giving larva of O. rhinoceros after two (2) months of application M. anisopliae, 4) Giving time three (3) monts: giving larva of O. rhinoceros after three (3) month: giving larva of O. rhinoceros after three (3) months application of M. anisopliae. Each consisted of three (3) replications. Data observation was analyzed by using Analysis of Variance (ANOVA), if there are differences among treatment continued with Test of Duncan Multiple Range Test (DMRT) at 5 % level.
Result of research showed that patogenecity of M. anisopliae fungus from exploratin (new) to larva of O. rhinoceros was equal to 81,61 % more higher compared to M. anisopliae fungus which have storage during two (2) months in the refrigerator was equal to 72,51 %. The patogenecity of M. anisopliae fungus to larva of O. rhinoceros at wood dust nest media was equal to 86,24 % more higher compared to stable manure nest media was equal to 68,27 %. Three was degradation patogenecity of M. anisopliae fungus to larva of O. rhinoceros at three (3) months application.
KATA PENGANTAR
Puji syukur kami panjatkan kehadirat Allah SWT yang telah melimpahkan rahmat,
taufik dan hidayah-Nya kepada penulis, sehingga penulis dapat menyelesaikan
penelitian dan penulisan tesis yang berjudul: KAJIAN PATOGENISITAS
CENDAWAN Metarhizium anisopliae TERHADAP HAMA Oryctes rhinoceros L.
TANAMAN KELAPA PADA BERBAGAI TEKNIK APLIKASI di Balai Perlindungan
Tanaman Perkebunan (BPT-Bun) Dinas Perkebunan Provinsi Jawa Tengah, Desa
Mangunsari, Kecamatan Sidomukti, Kota Salatiga – Jawa Tengah.
Dalam kesempatan ini, penulis menyampaikan ucapan terima kasih dan
penghargaan yang tulus, kepada Yth.:
1. Direktur Program Pascasarjana Universitas Sebelas Maret Surakarta
2. Bapak Prof. Dr. Ir. Edi Purwanto, M.Sc., selaku Ketua Program Studi Agronomi,
Program Pascasarjana Universitas Sebelas Maret Surakarta.
3. Bapak Prof. Dr. Ir. Sholahuddin, M.S., selaku Pembimbing Pertama dalam penelitian
ini.
4. Bapak Dr. Ir. Subagiya, M.P., selaku Pembimbing Kedua dalam penelitian ini.
5. Kepala Dinas Perkebunan Provinsi Jawa Tengah.
6. Kepala Balai Perlindungan Tanaman Perkebunan (BPT-Bun) Dinas Perkebunan
Provinsi Jawa Tengah.
7. Semua pihak yang telah banyak memberikan bantuan dalam penelitian dan
penyusunan tesis ini.
Demikian tesis ini semoga bermanfaat bagi semua pihak.
Surakarta, Pebruari 2008
Penulis,
DAFTAR ISI
halaman
HALAMAN JUDUL ………………………………….................. i
HALAMAN PENGESAHAN PEMBIMBING ………………….. ii
HALAMAN PENGESAHAN TESIS ……………………………. iii
PERNYATAAN …………………………………......................... iv
MOTTO DAN PERSEMBAHAN ……………………………..... v
ABSTRAK …………………………………................................. vi
ABSTRACT …………………………………............................... vii
KATA PENGANTAR ………………………………………........ viii
DAFTAR ISI …………………………………………………...... x
DAFTAR TABEL ………………………………………………... xiii
DAFTAR GAMBAR ……………………………………………. xiv
DAFTAR LAMPIRAN ………………………………………….. xv
I PENDAHULUAN ……………………………………………….. 1
A. Latar Belakang .……………………………………………….. 1
B. Rumusan Masalah …………………………………………...... 5
C. Tujuan Penelitian ……………………………………………... 5
D. Manfaat Penelitian ………………………………………......... 6
II KAJIAN TEORI DAN HIPOTESIS …………………………….. 7
A. Tinjauan Pustaka ……………………………………………... 7
1. Hama Oryctes rhinoceros ………………………………….. 7
2. Cendawan Metarhizium anisopliae ………………………… 10
3. Sarang O. rhinoceros ............................................................ 17
B. Kerangka Berpikir ………………………………………......... 17
C. Hipotesis ……………………………………………………… 18
III METODE PENELITIAN ………………………………………... 19
A. Tempat dan Waktu Penelitian ………………………………... 19
B. Bahan dan Alat Penelitian ………………………………......... 19
C. Persiapan Penelitian ………………………………................... 21
D. Cara Penelitian ……………………………………………….. 24
E. Analisis Data …………………………………………………. 33
IV HASIL PENELITIAN DAN PEMBAHASAN …………………. 35
A. Hasil Penelitian ………………………………......................... 35
1. Persentase Kematian Larva Oryctes rhinoceros …………… 35
2. Persentase Larva Menjadi Pupa ……………………………. 40
3. Kelembaban Media Sarang ………………………………… 45
4. Suhu Media Sarang ………………………………………. 46
5. Kerapatan Spora ……………………………………………. 47
6. Viabilitas (Daya Kecambah) ……………………………….. 48
7. pH Media Sarang ………………………………………... 48
B. Pembahasan ………………………………............................... 49
1. Persentase Kematian Larva Oryctes rhinoceros …………… 49
2. Persentase Larva Menjadi Pupa ……………………………. 53
3. Kelembaban Media Sarang ………………………………… 54
4. Suhu Media Sarang ………………………………………. 54
5. Kerapatan Spora ……………………………………………. 54
6. Viabilitas (Daya Kecambah) ……………………………….. 55
7. pH Media Sarang …………………………………………. 55
V KESIMPULAN DAN SARAN ………………………………...... 56
A. Kesimpulan …………………………………………………… 56
B. Saran ………………………………………………………….. 56
DAFTAR PUSTAKA …………………………………………… 57
LAMPIRAN ……………………………………………………... 61
DAFTAR TABEL
halaman
Tabel 1. Persentase Kematian Larva O. rhinoceros pada Berbagai
Minggu Pengamatan ………………………................................
36
Tabel 2. Persentase Kematian Larva O. rhinoceros pada Berbagai
Minggu Pengamatan ………………………................................
36
Tabel 3. Persentase Kematian Larva O. rhinoceros pada Berbagai
Minggu Pengamatan ………………………................................
37
Tabel 4. Persentase Kematian Larva O. rhinoceros pada Berbagai
Minggu Pengamatan ………………………................................
38
Tabel 5. Persentase Kematian Larva O. rhinoceros pada Berbagai
Kombinasi Perlakuan …………………………………………..
39
Tabel 6. Persentase Kematian Larva O. rhinoceros pada Berbagai
Perlakuan ……………………………………………………….
39
Tabel 7. Persentase Larva Menjadi Pupu pada Berbagai Minggu
Pengamatan …………………………………………………….
41
Tabel 8. Persentase Larva Menjadi Pupa pada Berbagai Minggu
Pengamatan …………………………………………………….
41
Tabel 9. Persentase Larva Menjadi Pupa pada Berbagai Minggu
Pengamatan …………………………………………………….
42
Tabel 10. Persentase Larva Menjadi Pupa pada Berbagai Minggu
Pengamatan …………………………………………………….
43
Tabel 11. Persentase Larva Menjadi Pupa pada Berbagai Perlakuan ……. 44
Tabel 12. Persentase Larva Menjadi Pupa pada Berbagai Kombinasi
Perlakuan ……………………………………………………….
44
Tabel 13. Kelembapan media sarang pada berbagai kombinasi perlakuan ... 46
Tabel 13. Suhu media sarang pada berbagai kombinasi perlakuan ............... 47
DAFTAR GAMBAR
halaman
Gambar 1. Persentase kematian larva O. rhinoceros pada berbagai minggu
pengamatan ……………………………………………………..
35
Gambar 2. Persentase kematian larva O. rhinoceros pada berbagai minggu
pengamatan ……………………………………………………..
36
Gambar 3. Persentase kematian larva O. rhinoceros pada berbagai minggu
pengamatan ……………………………………………………..
37
Gambar 4. Persentase kematian larva O. rhinoceros pada berbagai minggu
pengamatan ……………………………………………………..
38
Gambar 5. Hubungan kematian larva dan waktu aplikasi endawan M.
anisopliae ………………………………………………………
40
Gambar 6. Persentase larva menjadi pupa pada berbagai minggu
pengamatan ……………………………………………………..
40
Gambar 7. Persentase larva menjadi pupa pada berbagai minggu
pengamatan ……………………………………………………..
41
Gambar 8. Persentase larva menjadi pupa pada berbagai minggu
pengamatan ……………………………………………………..
42
Gambar 9. Persentase larva menjadi pupa pada berbagai minggu
pengamatan ……………………………………………………..
43
Gambar 10. Larva menjadi pupa pada berbagai waktu aplikasi …………….. 45
Gambar 11. Kelembapan media sarang pada berbagai kombinasi perlakuan ... 45
Gambar 12. Suhu media sarang pada berbagai kombinasi perlakuan ............... 46
Gambar 13. Penghitungan kerapatan spora cendawan M. anisopliae ………. 47
Gambar 14. Penghitungan viabilitas spora cendawan M. anisopliae ….......... 48
DAFTAR LAMPIRAN
halaman
Lampiran 1. Siklus hidup O. rhinoceros …………………………………... 61
Lampiran 2. Eksplorasi cendawan M. anisopliae ………………………….. 62
Lampiran 3. Hasil pemurnian cendawan M. anisopliae …………………… 63
Lampiran 4. Perbanyakan cendawan M. anisopliae pada media jagung …. 64
Lampiran 5. Hasil inokulasi biakan cendawan M. anisopliae pada media
jagung …………………………………………………………
65
Lampiran 6. Tempat penelitian …………………………………………….. 66
Lampiran 7. Persiapan media sarang penelitian …………………………… 67
Lampiran 8. Sterilisasi media sarang ………………………………………. 68
Lampiran 9. Lay-aut penelitian dan serangga uji (larva O. rhinoceros) …... 69
Lampiran 10. Aplikasi O. rhinoceros pada media sarang …………………... 70
Lampiran 11. Kegiatan pengamatan dalam penelitian ……………………… 71
Lampiran 12. Kunjungan dosen di tempat penelitian ……………………….. 72
Lampiran 13. Larva O. rhinoceros terserang cendawan M. anisopliae ……... 73
Lampiran 14. Kondisi tanaman kelapa ……………………………………… 74
Lampiran 15. Hasil Analysys of Variance (ANOVA) Kematian Larva O.
rhinoceros …………………………………………………….
75
Lampiran 16. Hasil Analysis of Variance (ANOVA) Larva O. rhinoceros
Menjadi Pupa …………………………………………………
76
Lampiran 17. Hasil Analysis of Variance (ANOVA) Kelembaban Media
Sarang …………………………………………………………..
77
Lampiran 18. Hasil Analysis of Variance (ANOVA) Suhu Media Sarang …... 78
Lampiran 19. Hasil Analysis of Variance (ANOVA) pH Media Sarang ……. 79
Lampiran 20. Hasil Analysis of Variance (ANOVA) Kerapatan Spora ……… 80
Lampiran 21. Hasil Analysis of Variance (ANOVA) Viavilitas (Daya
Kecambah) ……………………………………………………
81
I. PENDAHULUAN
A. Latar Belakang
Tanaman kelapa (Cocos nucifera) mempunyai arti ekonomi penting bagi
kehidupan manusia. Hal ini dapat dilihat, bahwa semua bagian tanaman kelapa bisa
dimanfaatkan. Di samping itu, kelapa sebagai bahan dasar kopra, merupakan salah
satu bahan industri dan perdagangan yang memberikan penghasilan cukup besar bagi
masyarakat dan pemerintah. Pemerintah telah menaruh perhatian besar pada
pertanaman kelapa, perhatian ini meliputi peremajaan dan perluasan areal tanaman
kelapa.
Sampai tahun 2005 luas areal tanaman kelapa di Indonesia mencapai
3.890.000 hektar lebih. Laju peningkatan produksi kelapa Indonesia (3,9 %) tidak
dapat mengimbangi laju peningkatan konsumsi (5,9 %) sebagai akibat bertambahnya
penduduk. Sasaran nasional 2005 – 2010 pertumbuhan perkebunan diharapkan
antara 6,01 – 6,49 % (Anonim, 2005). Di Jawa Tengah luas tanaman kelapa
mencapai 269.064,26 ha (Anonim, 2005). Dalam usaha budi daya tanaman kelapa
dijumpai berbagai hambatan, antara lain hama dan penyakit. Salah satu jenis hama
tanaman kelapa adalah kumbang nyiur/ wangwung (Oryctes rhinoceros) yang
termasuk kumbang kelapa (Coleoptera), keluarga Scarabaeidae dan sub keluarga
Dinastinae (Kalshoven, 1981). Serangan hama wangwung di Jawa Tengah pada
tahun 2005 mencapai 13.453,2 ha dengan kerugian yang ditimbulkan mencapai Rp
10.536.311.198,- (Anonim, 2005). Pada tahun 1980 serangan wangwung dilaporkan
sekitar 153.269 ha di 15 provinsi dengan kerugian sekitar Rp 5,5 milyar (Wagiman,
2006). Di Indonesia hama ini merupakan hama utama tanaman kelapa, di Jawa
utamanya menyerang tanaman kelapa, sedang di luar Jawa selain menyerang
tanaman kelapa hama ini menyerang kelapa sawit (Wagiman, 2006). Hosang et al.,
1989, mengatakan di Indonesia akibat hama ini diduga kehilangan hasil pertahun
berkisar 10 – 20 milyar rupiah. Luasnya sebaran hama O. rhinoceros menurut
Cumber (1957) dan Tjoa (1953) karena banyaknya jenis tumpukan bahan organik
yang bisa dijadikan tempat berkembangbiak dan sumber bahan makanan, sehingga
hama ini sangat merugikan.
Dasar kebijakan Pengendalian Hama Terpadu (PHT) Pasal 20 ayat 1
Undang-Undang Nomor 12 Tahun 1992 tentang Sistem Budidaya Tanaman
menyatakan bahwa, Sistem PHT adalah upaya pengendalian populasi atau tingkat
serangan Organisme Pengganggu Tumbuhan (OPT) dengan menggunakan satu atau
lebih dari berbagai teknik pengendalian yang dikembangkan dalam satu kesatuan
untuk mencegah timbulnya kerugian secara ekonomis dan kerusakan lingkungan
hidup. Dalam sistem ini pestisida merupakan alternatif terakhir (Untung, 1993).
Pengertian hama dalam Undang-Undang tersebut tidak dalam arti sempit, PHT
diartikan sebagai pengelolaan OPT secara terpadu, baik hama, penyakit, maupun
gulma, dan pengendalian hayati menjadi komponen utamanya (Pardede et al., 1997).
Konsep PHT merupakan suatu cara pendekatan pengendalian hama yang secara
prinsip berbeda dengan konsep pengendalian hama konvensional yang sangat
bergantung pada penggunaan pestisida. Konsep ini timbul dan berkembang di
seluruh dunia karena kesadaran manusia terhadap penggunaan pestisida bagi
lingkungan hidup. Konsep PHT ingin memanfaatkan dan meningkatkan proses dan
mekanisme pengendalian alami (natural control) yang selalu bekerja di ekosistem
pertanian. Sebagai hasil interaksi antar komponen yang rumit dan dinamis, maka
dihasilkan keadaan seimbang pada populasi antara hama dan pengendali hayati
berupa parasitoid, predator, dan patogen (Untung, 1996)
Hama O. rhinoceros ini sulit dikendalikan dengan cara fisik, mekanis,
maupun kimiawi mengingat cara dan keadaan lingkungan hidupnya yang kurang
menguntungkan dikendalikan dengan cara tersebut. Lebih-lebih yang terjadi pada
pohon tua (produksi) dengan ketinggian yang cukup. Berkat penelitian yang terus-
menerus dilakukan oleh para peneliti, maka telah ditemukan cara pengendalian hama
tersebut dengan mikro organisme yang berupa cendawan Metarhizium anisopliae
yang merupakan salah satu agens pengendali hayati. Metode dengan menggunakan
musuh alami tesebut menunjukan harapan besar untuk berhasil. Dalam praktek
metode ini telah dilakukan secara luas di kepulauan samoa, Fiji, Tonga, dan
Malaysia Barat (Anonim, 1986). Balai Pengembangan dan Penelitian Tanaman
Industri Bogor telah melakukan penelitian penggunaan cendawan M. anisopliae
untuk pengendalian hama ini. Usaha pengendalian hama O. rhinoceros secara hayati
mengunakan cendawan M. anisopliae memberikan hasil yang cukup efektif.
Cendawan M. anisopliae mengendalikan larva/ uret O. rhinoceros dengan tingkat
mortalitas 80 – 90 % (Wikardi, 1983). Pengendalian penggunaan cendawan M.
anisopliae sasarannya adalah sarang aktif.
Perlindungan tanaman dilaksanakan dengan menerapkan sistem
Pengendalian Hama Terpadu (PHT) dengan menekankan pengendalian Organisme
Pengganggu Tumbuhan (OPT) secara hayati (biological control) menggunakan
agens hayati (Herdrajat, 2006). Dalam pengendalian hama O. rhinoceros secara
terpadu dengan menggunakan agens hayati yaitu dengan cendawan M. anisopliae.
Manfaat cendawan M. anisopliae dalam mengendalikan larva O. rhinoceros
sudah terbukti baik, namun setiap kali dilakukan di lapang dalam jumlah luas,
hasilnya kurang memuaskan. Hal ini tidak bisa dipisahkan dari asal inokulum dan
cara penggunaannya di lapang (Sitepu, 1988).
Pengendalian O. rhinoceros sasarannya adalah tempat perkembangbiakan
hama tersebut berupa bahan organik, seperti: kotoran ternak, limbah penggergajian,
sekam padi, sampah yang telah melapuk, tunggul kelapa, dan bahan organik yang
lainnya. Namun, untuk mencari sarang aktif (bahan organik/sarang yang ditemukan
individu stadia hama O. rhinoceros) tidak selalu mudah ditemukan, maka dalam
penelitian ini perlu dibuat sarang buatan (trapping), sehingga perlu dikaji
patogenisitas cendawan M. anisopliae terhadap hama O. rhinoceros pada berbagai
teknik aplikasi.
B. Rumusan Masalah
Cendawan M. anisopliae sebagai agens pengendali hayati (APH) hama O.
rhinoceros bersifat parasitik pada serangga dan saprofit pada tanah (Barnet, H.L dan
B.N. Hunter, 1960). Keberadaan hama O. rhinoceros pada stadia larva/lundi/uret
hidup pada bahan organik yang menjadi tempat perkembangbiakan. Namum, tidak
selalu mudah ditemukan, sehingga aplikasi cendawan M. anisopliae disarankan pada
sarang aktif (bahan organik/sarang yang ditemukan individu stadia hama O.
rhinoceros).
Untuk mengantisipasi kegagalan dalam aplikasi dan mengefektifkan aplikasi
cendawan M. anisopliae di lapang, maka perlu dilakukan kajian patogenisitas
cendawan M. anisopliae terhadap hama O. rhinoceros pada berbagai teknik
apalikasi.
C. Tujuan Penelitian
Penelitian ini bertujuan untuk mengkaji patogenisitas cendawan M. anisopliae
terhadap hama O. rhinoceros pada berbagai teknik aplikasi.
D. Manfaat Penelitian
Penelitian ini diharapkan dapat memberikan manfaat bagi semua pihak dalam
bidang ini dan untuk memberi pedoman teknik pengendalian hama O. rhinoceros
dengan cendawan M. anisopliae agar diperoleh hasil yang maksimal sehingga
kerugian hasil dapat ditekan seminimal mungkin.
II. KAJIAN TEORI DAN HIPOTESIS
A. Tinjauan Pustaka
1. Hama Oryctes rhinoceros
Hama kumbang kelapa O. rhinoceros termasuk dalam famili
Scarabaeidae dan ordo Coleoptera. Selain terdapat di Indonesia, juga tersebar
luas di Kepulauan Samoa, Fiji, Tonga dan Malaysia. Stadium yang aktif
menyerang adalah imago (kumbang dewasa), sedangkan telur dan lundinya
(larva) berada pada sisa-sisa bahan organik di sekitar pohon-pohon kelapa
(Anonim, 1983).
Hama kumbang kelapa ini bentuknya seperti badak mempunyai cula
tunggal, maka sering disebut pula sebagai kumbang badak. Kumbang betina
umumnya mempunyai cula pendek, sedang kumbang jantan mempunyai cula
lebih panjang, karakteristik yang paling menonjol kumbang betina pada ujung
abdomen berbulu lebat, sedang kumbang jantan tidak (Purba, 2006).
Siklus hidup O. rhinoceros melewati empat stadia, yaitu stadia telur,
larva, pupa (kepompong), dan imago (dewasa/kumbang) yang lamanya mencapai
293 hari (Kartasapoetra, 1987). Kumbang betina yang telah kawin bertelur pada
bahan organik yang telah lapuk, dengan kemampuan bertelur 35 – 70 butir (Tjoa,
1953). Telur berbentuk lonjong, berwarna putih, panjang 3 – 3,5 mm, terbungkus
media tempat telur diletakkan, masa telur berlangsung 9 - 12 hari. Larva yang
baru keluar dari telur berwarna putih dengan panjang 7 – 8 mm, pada
perkembangan selanjutnya panjang 60 – 105 mm, lebar 25 mm, masa larva
berlangsung 3 – 4 bulan dipengaruhi lingkungannya, yaitu pakan dan iklim
mikro. Pakan larva berupa kotoran atau bahan organik yang telah lapuk.
Kepompong berukuran panjang 50 mm terbungkus hancuran medianya, masa
kepompong rata-rata 20 hari.
Telur : 9 – 12 hari Warna : putih Bentuk : lonjong Panjang : 0,3 – 0,35 cm Lebar : 0,2 cm
Larva instar I : 10 – 20 hari Panjang : 0,4 – 0,7 cm Lebar : 0,2 – 0,4 cm Kepala : 0,3 – 0,4 cm
Imago jantan : 112 – 153 hari Imago betina : 105 – 143 hari
Larva instar II : 21 – 31 hari Panjang : 3 – 6 cm Lebar : 0,6 – 1,5 cm Kepala : 0,6 – 0,8 cm
Larva instar III : 87 – 132 hari Panjang : 5 – 8 cm Lebar : 1,5 – 2,0 cm Kepala : 1,1 – 1,3 cm Pra Kepompong : 7 – 12 hari
Kepompong : 20 – 25 hari Warna : krem – coklat Panjang : 4,5 – 6 cm Lebar : 2,5 cm
Skema siklus hidup O. rhinoceros
Sumber: BPT-Bun
Kumbang berwarna hitam, bagian bawah badan berwarna coklat.
Kumbang jantan bercula dan umumnya lebih panjang dari cula betina dan
kumbang betina mempunyai bulu-bulu pada bagian pasterior abdomen (Lever,
1969 dalam Kartasapoetra, 1987). Kumbang O. rhinoceros mempunyai tipe alat
mulut menggigit-mengunyah, digunakan untuk menggerek pelepah daun muda
yang belum membuka.
Imago melakukan aktivitas pada malam hari yaitu kawin dan memakan
pucuk tanaman kelapa. Kerusakan yang diakibatkannya tanaman baru terlihat
jelas setelah daun membuka 1 – 2 bulan kemudian, berupa gambaran guntingan-
guntingan segitiga seperti huruf V. Sifat memakan ini selalu berpindah-pindah
dari tanaman satu ke tanaman lainnya, 5 ekor kumbang kelapa ini dalam satu
hektar dapat menurunkan produksi 38 % (Anonim, 1989). Stadia telur, larva dan
pupa hidup pada bahan organik seperti kotoran ternak/pupuk kandang, limbah
penggergajian kayu/grajen, sekam padi, sampah yang telah melapuk, tunggul
kelapa, dan bahan bahan organik lainnya. Imago yang masih muda juga berada
dalam sarang-sarang tersebut. Kumbang kelapa O. rhinoceros merupakan hama
yang sangat merugikan sehingga mengancam pertanaman kelapa di daerah-
daerah tertentu. Pada tahun 1992 kerugian mencapai sekitar Rp 6 milyar (Mardy,
1993).
Kedudukan O. rhinoceros dalam klasifikasi adalah sebagai berikut:
Pylum : Arthopoda
Classis : Insekta
Ordo : Coleoptera
Sub Ordo : Polyphaga
Famili : Scarabaeidae
Sub Famili : Dinastinae
Genus : Oryctes
Species : Oryctes rhinoceros (Anonim, 1990).
Kerusakan dan kerugian yang ditimbulkan oleh hama O. rhinoceros dapat
dikendalikan secara biologis dengan penaburan cendawan M. anisopliae ke
dalam tumpukan bahan organik lapuk (Darwis, 1989).
2. Cendawan Metarhizium anisopliae
Barnett (1972), menyatakan cendawan M. anisopliae mempunyai
conidiophore berbentuk tongkat, tegak dan bercabang, bersatu dalam bentuk
kumpulan kompak atau tidak, membentuk selaput spora. Koloni-koloni
berbentuk bulat panjang sampai silindris dengan ujung yang bundar. Massa
berbentuk hijau olive, memparasit serangga yang mengakibatkan “green
muscardine desease”.
Cendawan M. anisopliae masuk ke dalam tubuh serangga tidak melalui
saluran makanan, tetapi melalui kulit. Setelah konidia cendawan masuk ke dalam
tubuh serangga, cendawan memperbanyak diri melalui pembentukan hifa dalam
jaringan epidermis dan jaringan lainnya sampai dipenuhi miselia cendawan.
Perkembangan cendawan dalam tubuh inang sampai inang mati berjalan
sekitar 7 hari dan setelah inang terbunuh, jaringan membentuk konidia primer
dan sekunder yang dalam kondisi cuaca yang sesuai muncul dari kutikula
serangga. Konidia akan menyebarkan sporanya melalui angin, hujan dan air.
Penyebaran dan infeksi cendawan sangat dipengaruhi oleh beberapa faktor,
antara lain padatan inang kesediaan spora, angin dan kelembaban. Kelembaban
tinggi dan angin yang kencang sangat membantu penyebaran konidia dan
pemerataan infeksi patogen pada seluruh individu pada populasi inang.
Larva yang terserang cendawan M. anisopliae akan berwarna hijau
kecoklatan dan akhirnya akan mengalami mummifikasi (terselubung cendawan)
dalam waktu 10 – 12 hari setelah aplikasi (Wikardi, 1983). Lebih lanjut Zelasny
(1975), mendiagnosa larava-larva yang terinfeksi cendawan M. anisopliae pada
tahap permulaan seringkali terlihat bercak-bercak coklat pada bagian tubuhnya
selagi larva masih hidup. Bercak-bercak ini adakalanya terlihat dengan jelas dan
banyak, tetapi sering hanya merupakan bintik kecil saja sehingga tidak terlihat
jelas. Larva yang baru mati berwarna seperti larva hidup, tetapi lama-kelamaan
akan mengeras dan kaku. Selama dua sampai tiga hari setelah mati, cendawan ini
menembus bagian kulit larva sehingga larva tertutup oleh spora-spora seperti
lapisan tepung. Lapisan spora ini berwarna putih dan sehari kemudian warnanya
berubah menjadi hijau. Cendawan ini sangat virulen membunuh larva dalam
jumlah besar dan terdapat variasi serangan pada sarang-sarang yang diaplikasi
cendawan M. anisopliae.
Pracaya (2004) lebih lanjut menjelaskan, pada awal pertumbuhan, koloni
cendawan berwarna putih, kemudian berubah menjadi hijau gelap dengan
bertambahnya umur. Koloni dapat tumbuh dengan cepat pada beberapa media
seperti potato dextrose agar (PDA), jagung dan beras (Pracaya dan Tengkano
2002). Miselium bersekat, diameter 1,98 – 2,97 µm, konidiofor tersusun tegak,
berlapis, dan bercabang yang dipenuhi dengan konidia. Konidia bersel satu
bewarna hialin, berbentuk bulat silindris dengan ukuran 9,94 x 3,96 µm.
Cendawan ini bersifat parasit pada beberapa jenis serangga dan bersifat saprofit
di dalam tanah dengan bertahan pada sisa-sisa tanaman (Barnett dan Hunter,
1972 dalam Pracaya, 2004).
Temperatur optimum untuk pertumbuhan cendawan M. anisopliae
berkisar 22 – 27 ºC, walaupun beberapa laporan menyebutkan bahwa cendawan
masih dapat tumbuh pada temperatur yang lebih dingin. Konidia akan
membentuk kecambah pada kelembaban di atas 90 %, namun demikian konidia
akan berkecambah dengan baik patogenisitasnya meningkat bila kelembaban
udara sangat tinggi hingga 100 %. Patogenisitas cendawan M. anisopliae akan
menurun apabila kelembaban udara di bawah 86 % (Pracaya, 2004).
Ferron, 1985 dalam Pracaya, 2004 menggolongkan empat tahapan
etiologi penyakit serangga yang disebabkan oleh cendawan. Tahap pertama
adalah inokulasi, yaitu kontak antara propagul cendawan dengan tubuh serangga.
Propagul cendawan M. anisopliae berupa konidia karena merupakan cendawan
yang berkembangbiak secara tidak sempurna. Dalam proses ini, senyawa
mukopolisakarida memegang peranan penting. Tahap kedua adalah proses
penempelan perkecambahan propagul cendawan pada integumen serangga.
Kelembaban udara yang tinggi dan bahkan kadang-kadang air diperlukan untuk
perkecambahan propagul cendawan. Pada tahap ini, cendawan dapat
memanfaatkan senyawa-senyawa yang terdapat pada integumen. Tahap ketiga
yaitu penetrasi dan invasi. Dalam melakukan penetrasi menembus integumen,
cendawan membentuk tabung kecambah (appresorium). Dalam hal ini titik
penetrasi sangat dipengaruhi olek konfigurasi morfologi integumen. Penembusan
dilakukan secara mekanis atau kimiawi dengan mengeluarkan enzim dan toksin.
Tahap keempat yaitu destruksi pada titik penetrasi dan terbentuknya blastospora
yang kemudian beredar ke dalam hemolimfa dan membentuk hifa sekunder
untuk menyerang jaringan lainnya. Pada umumnya serangga sudah mati sebelum
proliferasi blastospora. Enam senyawa enzim dikerluarkan oleh M. anisopliae,
yaitu lipase, kithinase, amilase, proteinase, pospatase, dan esterase. Serangga
juga mengembangkan sistem pertahanan diri dengan cara fagositosis atau
enkapsulasi dengan membentuk granuloma.
Pada waktu serangga mati, fase perkembangan saprofit cendawan dimulai
dengan penyerangan jaringan dan berakhir dengan pembentukan organ
reproduksi. Pada umumnya semua jaringan dan cairan tubuh serangga habis
digunakan oleh cendawan, sehingga serangga mati dengan tubuh yang mengeras
seperti mumi. Pertumbuhan cendawan diikuti dengan pengeluaran pigmen atau
toksin yang dapat melindungi serangga dari serangan mikroorganisme lain
terutama bakteri. Tidak selalu cendawan tumbuh ke luar menembus integumen
serangga. Apabila keadaan kurang mendukung, perkembangan saprofit hanya
berlangsung di dalam jasad serangga tanpa ke luar menembus integumen dalam
hal ini cendawan membentuk struktur khusus untuk dapat bertahan, yaitu
arthrospora (Ferron, 1985 dalam Pracaya, 2004).
Widiyanti et al., 2004 menyatakan cendawan M anisopliae memiliki
aktivitas larvisidal karena menghasilkan cyclopeptida, destruxin dan
desmethyldestrusin. Destruxin telah dipertimbangkan sebagai bahan insektisida
generasi baru. Mittler, 1994 dalam Widiyanti et al., 2004 lebih lanjut
menyatakan bahwa efek destruxin berpengaruh pada organella sel target
(mitokondria, retikulum endoplasma dan membran nukleus), menyebabkan
paralisa sel dan kelainan fungsi lambung tengah, tebulus maphigi, hemocyt dan
jaringan otot.
Daya kecambah (viabilitas) cendawan entomopatogen merupakan awal
dari stadia pertumbuhan cendawan sebelum melakukan penetrasi ke integumen
serangga. Oleh karena itu, persentase daya kecambah sangat menentukan
keberhasilan cendawan dalam pertumbuhan selanjutanya. Biakan M. anisopliae
yang baik mengandung spora sebanyak 5 x 108 atau lebih untuk setiap gram
materi (Anonim, 1989). Faktor lingkungan (sinar matahari, kelembaban dan
temperatur) sangat menentukan keberhasilan proses infeksi di samping faktor
ganti kulit (moulting) dari serangga (Pracaya, 2004). Lebih lanjut Pracaya, 2004
menjelaskan, kematian serangga sangat ditentukan oleh kerapatan konidia
cendawan entomopatogen yang diaplikasikan. Makin tinggi kerapatan konidia M.
anisopliae, makin tinggi pula mortalitas serangga. Biakan M. anisopliae yang
baik akan mencapai daya kecambah di atas 90 % (Anonim, 1989).
Penggunaan cendawan M. anisopliae direkomendasikan jika sudah
diketahui tempat perkembangbiakan kumbang kelapa O. rhinoceros. Dengan
cara mengumpulkan larva, menginfeksinya dengan cendawan M. anisopliae dan
mengembalikannya ke tempat perkembangbiakannya. Sesudah 2 minggu tempat
pembiakan diperiksa kembali untuk memastikan apakah larva telah mati atau
sekurang-kurangnya menunjukkan gejala infeksi (bercak-bercak coklat). Larva-
larva terinfeksi yang sudah mati ditumbuhi spora berwarna putih kemudian
berubah warna menjad hijau (green muscardine / green oliv) dan spora-spora
inilah yang menginfeksi larva lain di dalam sarang itu.
Keuntungan menggunaan cendawan M. anisopliae adalah untuk
mencegah sarang-sarang yang menjadi tempat berkembangbiaknya kumbang
kelapa O. rhinoceros terus-menerus. Larva O. rhinoceros dapat diinfeksi dengan
2 cara, yaitu:
a. Dengan menggunakan larva mati terinfeksi cendawan M. anisopliae
dicampurkan dengan larva sehat. Satu larva terinfeksi tadi dapat menulari
dengan cepat sampai ratusan larva sehat dalam satu wadah.
b. Dengan menggunakan cendawan M. anisopliae pada media jagung dengan 1
sendok makan (25 gram) untuk menginfeksi ratusan larva dalam satu wadah.
Kedudukan M. anisopliae dalam klasifikasi adalah sebagai berikut:
Devisi : Eumycotina
Sub Devisi : Deuteromycotina
Klas : Deuteromycetes (Fungi Imperfecti)
Ordo : Moniliales
Famili : Moniliaceae
Genus : Metarhizium
Species : Metarhizium anisopliae (Anonim, 1990).
Cendawan M. anisopliae telah terbukti efektif dalam pengendalian
kumbang kelapa (O. rhinoceros), terutama pada stadia larvanya. Aplikasi
cendawan M. anisopliae dilaksanakan dengan cara ditaburkan pada sarang aktif
O. rhinoceros sebanyak 25 gram/m2 (Djamin, 1992).
Selanjutnya Lactch, 1976 dalam Darwis, 1989 menyatakan cendawan M.
anisopliae bersifat saprofit di dalam tumpukan bahan organik lapuk dan bersifat
patogenik terutama pada stadia larva O. rhinoceros yang hidup dalam tumpukan
bahan organik tersebut.
3. Sarang O. rhinoceros
Hama O. rhinoceros menempatkan telurnya pada bahan organik yang
telah lapuk, seperti kotoran ternak/pupuk kandang, limbah penggergajian
kayu/grajen, sekam padi, sampah yang telah melapuk, tunggul kelapa, dan bahan
bahan organik lainnya. Tempat yang demikian sangat potensial sebagai sarang
hama O. rhinoceros sehingga disebut sarang aktif. Sarang inilah hama ini
berkembangbiak dengan cepat, apalagi bila lingkungannya mendukung, seperti
keadaan iklim dan ketersediaan pakan bagi larvanya.
Ada empat macam media yang umum terdapat di Indonesia dan disukai
oleh kumbang kelapa (O. rhinoceros) untuk meletakkan telur dan tempat larva
hidup, yaitu (1) kotoran sapi lapuk, (2) serbuk gergaji lapuk, (3) sekam padi
lapuk dan (4) batang kelapa lapuk (Darwis, 1989).
B. Kerangka Berpikir
Sejak awal Pelita III (1970/1980) Pemerintah telah menetapkan Program
Pembangunan Perkebunan yang dipercepat (akselerasi) dengan maksud untuk
meningkatkan produksi dan memperbaiki mutu hasilnya untuk keperluan sendiri
maupun ekspor untuk peningkatan pendapatan devisa dan peningkatan pendapatan
petani perkebunan. Sampai tahun 2005 luas areal tanaman kelapa di Indonesia
mencapai 3.890.000 hektar lebih dengan produksi 3.294.000 ton, yang hampir
seluruhnya (97 %) adalah tanaman rakyat. Sasaran luas areal sampai dengan tahun
2010 adalah 3.510.000 hektar dengan produksi 3.462.000 ton.
Untuk mencapai sasaran tersebut, dijumpai berbagai hambatan antara lain
hama dan penyakit pada budidaya tanaman kelapa, salah satu jenis hama tanaman
kelapa adalah kumbang nyiur / wangwung (O. rhinoceros).
Usaha pengendalian dengan penggunaan cendawan M. anisopliae telah diketahui
cukup efektif. Namun demikian dalam aplikasinya tidak selalu mudah untuk
mendapatkan sarang aktif O. rhinoceros, maka perlu dilakukan kajian patogenisitas
cendawan M. anisopliae terhadap hama O. rhinoceros agar diperoleh hasil yang
maksimal sehingga sasaran produksi tahun 2010 sebanyak 3.462.000 ton dapat
terpenuhi.
C. Hipotesis
E. Diduga bahwa patogenisitas cendawan M. anisopliae yang masih baru terhadap
larva O. rhinoceros lebih tinggi dibanding cendawan M. anisopliae yang telah
tersimpan dalam kulkas selama dua bulan.
F. Diduga bahwa patogenisitas cendawan M. anisopliae terhadap larva O.
rhinoceros pada media sarang pupuk kandang berbeda dengan media sarang
serbuk gergaji.
G. Diduga bahwa patogenisitas cendawan M. anisopliae terhadap larva O.
rhinoceros semakin lama semakin menurun.
III. METODE PENELITIAN
A. Tempat dan Waktu Penelitian
Penelitian dilaksanakan di Green House Balai Perlindungan Tanaman Perkebunan
(BPT-Bun) Dinas Perkebunan Provinsi Jawa Tengah, Desa Mangunsari, Kecamatan
Sidomukti, Kota Salatiga – Jawa Tengah dengan ketinggian 580 meter dari
permukaan laut. Penelitian dilaksanakan selama 4 (empat) bulan yaitu bulan Agustus
sampai dengan bulan Desember 2007.
B. Bahan dan Alat Penelitian
1. Bahan Penelitian
Bahan penelitian terdiri atas:
a. Bahan persiapan penelitian yaitu untuk menyiapkan biakan cendawan M.
anisopliae, meliputi:
- Larva O. rhinoceros yang terinfeksi cendawan M. anisopliae hasil dari
eksplorasi
- Jagung giling
- Air bersih dan akuades
- Alkohol 70 % dan klorox 1 %
b. Bahan pelaksanaan penelitian
Bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah:
II. Larva O. rhinoceros sehat instar III diperoleh dari daerah Salatiga. Asal
larva belum pernah disebari/dilakukan pengendalian O. rhinoceros
dengan cendawan M. anisopliae. Untuk memenuhi kebutuhan larva dalam
penelitian, mencari larva dari lapangan dan dilakukan rearing di
laboratorium sehingga diperoleh jumlah larva yang dibutuhkan dan dalam
keadaan sehat.
III. Pupuk kandang sapi diperoleh dari daerah Salatiga. Asal pupuk kandang
sapi belum pernah disebari/dilakukan pengendalian O. rhinoceros dengan
cendawan M. anisopliae. Sebelum digunakan dalam penelitian pupuk
kandang disteril terlebih dahulu, agar media bebas dari mikroorganisme
yang tidak dikehendaki.
IV. Serbuk gergaji diperoleh dari daerah Salatiga. Asal serbuk geragaji belum
pernah disebari/dilakukan pengendalian O. rhinoceros dengan cendawan
M. anisopliae. Sebelum digunakan dalam penelitian pupuk kandang
disteril terlebih dahulu, agar media bebas dari mikroorganisme yang tidak
dikehendaki.
V. Cendawan M. anisopliae diperoleh dari:
A. Eksplorasi di lapangan berupa larva mati cendawan M. anisopliae
diperoleh dari Desa Dukuh Seti, Kecamatan Dukuh Seti, Kabupaten
Pati merupakan daerah yang telah disebari/dilakukan pengendalian O.
rhinoceros dengan cendawan M. anisopliae.
B. Diperoleh dari Balai Perlindungan Tanaman Perkebunan (BPT-Bun)
Dinas Perkebunan Provinsi Jawa Tengah, Desa Mangunsari,
Kecamatan Sidomukti, Kota Salatiga – Jawa Tengah yang telah
tersimpan dalam kulkas selama 2 (dua) bulan.
2. Alat Penelitian
Alat penelitian terdiri atas;
a. Alat persiapan penelitian untuk pemurnian dan perbanyakan cendawan M.
anisopliae dari hasil eksplorasi, meliputi:
Test tube, petridish, kotak isolasi, lampu bunsen, disecting set, jarum ose,
autoclave, dandang, timbangan, kantong plastik (panjang 15 cm, lebar 10
cm).
b. Alat pelaksanaan penelitian
Alat-alat yang digunakan antara lain; ember plastik, kertas label, hand
counter, loupe, mikroskop, Haemacytometer type Neubauer Improve,
Thermohygrometer, pH meter, timbangan elektrik, autoclave, cangkul,
sekop, dll.
C. Persiapan Penelitian
1. Menyiapkan pupuk kandang, serbuk gergaji sebagai media sarang O.
rhinoceros.
2. Eksplorasi larva terinfeksi/mati cendawan M. anisopliae dan dilakukan
pemurnian untuk mendapatkan biakan murni cendawan M. anisopliae, meliputi:
a. Isolasi cendawan M. anisopliae dari larva O. rhinoceros hasil eksplorasi
1) Untuk mengisolasi cendawan M. anisopliae digunakan media PDA
(Potato Dextrose Agar)
2) Media PDA dicairkan, dituangkan ke dalam petridish steril dan
dibiarkan hingga dingin/padat.
3) Mengambil larva O. rhinoceros instar III yang mati/terinfeksi cendawan
M. anisopliae, lalu tubuhnya dibelah dengan skalpel steril dan isi
perutnya dikeluarkan/dibuang.
4) Selanjutnya larva didisinfeksi dengan cara merendamnya dalam larutan
klorox 1 % selama 10 menit, kemudian dicuci dengan akuades dan
dikeringanginkan dalam petridish steril.
5) Inokulasi cendawan M. anisopliae dilakukan di dalam kotak isolasi
dengan cara memotong/menyayat daging larva ± 0,5 cm² yang terinfeksi
cendawan dengan skalpel steril, kemudian dimasukkan ke dalam
petridish yang berisi media PDA. Selanjutnya diinkubasikan.
6) Pada hari keempat diadakan pemurnian dengan cara memotong ujung
hifa cendawan yang tumbuh dan dipindahkan ke petridish lain.
b. Penyiapan inokulum
1) Cendawan yang diperoleh dari hasil pemurnian tersebut selanjutnya
dipindahkan/diinokulasikan ke dalam agar miring/test tube.
2) Selanjutnya diinkubasikan selama ± 10 hari, sampai cendawan tersebut
mengalami sporulasi (terbentuk spora), dicirikan adanya perubahan
warna menjadi hijau gelap.
c. Perbanyakan cendawan M. anisopliae pada media jagung
1) Jagung dimasak kemudian dimasukkan ke dalam kantong plastik ± 200
gram/kantong, selanjutnya disterilkan dalam autoclave selama ± 60
menit.
2) Selanjutnya media jagung tersebut dinokulasikan dengan spora
cendawan dari test tube.
3) Kemudian kantong plastik distaples rapat dengan menyisakan ¼ ruang
udara dalam kantong plastik, selanjutnya diinkubasikan.
4) Cendawan siap aplikasi dicirikan media jagung dipenuhi spora berwarna
hijau.
3. Menyiapkan cendawan M. anisopliae yang telah tersimpan (tersimpan dua
bulan dalam kulkas suhu 5 - 10° C).
4. Menyiapkan larva O. rhinoceros sehat instar III sebanyak 480 ekor secara
bertahap, masing-masing tahapan (setiap bulan) 120 ekor dan telah melalui
rearing di laboratorium..
5. Menyiapkan alat dan bahan lain yang diperlukan dalam penelitian.
D. Cara Penelitian
1. Metode Penelitian
Penelitian menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL) Faktorial 3 (tiga)
faktor:
a. Faktor pertama, asal M. anisopliae, terdiri atas dua level/jenis:
1) M. anisopliae hasil eksplorasi (baru) dengan simbul M1.
2) M. anisopliae dari BPT-Bun yang telah tersimpan dalam kulkas
selama dua bulan dengan simbul M2.
b. Faktor kedua, jenis media sarang, terdiri atas dua level/jenis:
1) Media sarang pupuk kandang dengan simbul S1.
2) Media sarang serbuk gergaji dengan simbul S2.
c. Faktor ketiga, waktu pemberian larva O. rhinoceros, terdiri atas empat
level:
1) Waktu pemberian 0 (nol) bulan, pemberian larva O. rhinoceros
bersamaan dengan aplikasi M. anisopliae dengan simbul T0.
2) Waktu pemberian 1 (satu) bulan, pemberian larva O. rhinoceros
dilaksanakan setelah satu bulan aplikasi M. anisopliae dengan simbul
T1.
3) Waktu pemberian 2 (dua) bulan, pemberian larva O. rhinoceros
dilaksanakan setelah dua bulan aplikasi M. anisopliae dengan simbul
T2.
4) Waktu pemberia 3 (tiga) bulan, pemberian larva O. rhinoceros
dilaksanakan setelah tiga bulan aplikasi M. anisopliae dengan simbul
T3.
Masing-masing teridiri atas 3 (tiga) ulangan. Ukuran plot sarang/trapping
menggunakan ember plastik berdiameter 32 cm, setiap sarang diisi 10 ekor
larva O. rhinoceros diinokulasi/disebari 25 gr cendawan. Sehingga dosis tiap
ember =
16722
x ² = 803,84
3,14 x 16² = 803,84
1000084,803
x 25 gram = 2,009 gram (dibulatka = 2 gram)
(Djamin, 1992) d. Aplikasi M. anisopliae dilaksanakan pada awal penelitian untuk semua
percobaan.
2. Tatalaksana Penelitian
V. Sarang yang digunakan adalah bahan organik berupa pupuk kandang dan
limbah penggergajian yang merupakan sarang O. rhinoceros sebagai sarang
buatan (trapping).
VI. Waktu pengamatan dilaksanakan:
A. Pengamatan I: Satu minggu setelah aplikasi larva O. rhinoceros.
B. Pengamatan II: Dua minggu setelah aplikasi larva O. rhinoceros.
C. Pengamatan III: Tiga minggu setelah aplikasi larva O. rhinoceros.
D. Pengamatan IV: Empat minggu setelah aplikasi larva O. rhinoceros.
VII. Cara pengamatan:
Sarang dibongkar/diaduk-aduk untuk mencari larva O. rhinoceros kemudian
dikumpulkan dan diamati. Setelah diamati larva dikembalikan lagi pada
sarang semula pada setiap perlakuan. Cara pembongkaran dan pengamatan
dilakukan dengan hati-hati agar tidak terjadi luka/mati karena mekanis. Ciri
larva luka/mati mekanis berwarna kebiruan. Sedangkan larva mati cendawan
M. anisopliae ditandai tubuh larva menjadi kaku dan adanya bercak-bercak
berwarna coklat atau mati masih berwarna putih, atau sudah berwarna hijau
(green muscardine).
VIII. Variabel yang diamati:
Variabel yang dimati dalam penelitian ini, meliputi:
1) Kematian larva; menghitung larva yang mati setiap kali pengamatan.
2) Larva menjadi pupa; menghitung larva menjadi pupa setiap pengamatan.
Data pendukung dengan mengamati:
A. Kelembapan media sarang; diukur kelembaban media sarang setiap
pengamatan.
B. Suhu media sarang; diukur suhu media sarang setiap pengamatan.
C. Kerapatan spora; kerapatan spora cendawan M. anisopliae dihitung
sebelum aplikasi, adalah sebagai berikut:
Mengambil dan menimbang 1 gram biakan cendawan M. anisopliae
pada setiap sampel dan campur dengan akuades 100 ml di dalam gelas
piala (beaker glass). Menambah 0,5 gram kristal detergent untuk
membantu pemisahan spora. Suspensi diaduk dengan alat pengaduk
(magnetik stirrer) selama 10 menit.
D. Viabilitas (daya kecambah); viabilitas cendawan M. anisopliae dihitung
sebelum aplikasi, sebagai berikut:
Mencampur 1 gram biakan cendawan M. anisopliae dalam 1 liter air
steril dalam gelas piala, ditutup dengan aluminium foil dan diaduk
dengan magnetik stirrer selama 20 menit. Dengan pipet steril
mengambil satu tetes dan diteteskan pada petridsh steril. Menuangkan
media cair CMA (Corn Meal Agar) yang sudah dingin tapi belum kental
ke atas suspensi cukup untuk melapisi dasar petridish, lalu petridish
digoyang-goyang ke berbagai arah agar spora tersebar dalam media
CMA dan dibiarkan kental. Diinkubasikan selama 24 jam. Kemudian
dilakukan penghitungan spora di bawah mikroskop dengan besaran 100
kali. Jumlah spora yang berkecambah dan tidak. Kriteria spora
berkecambah yang dihitung mulai pertumbuhan yang panjangnya 2 kali
spora dan jumlah spora yang mewakili dalam satu sampel sebanyak 200
spora.
E. pH media sarang; diukur pH media sarang setiap pengamatan.
IX. Tata letak penelitian (lay-out penelitian)
Penelitian dilaksanakan dengan menggunakan Penelitian Faktorial 2x2x4
Rancangan Acak Lengkap (Completely Randomized Design) dengan 3 (tiga)
ulangan.
Perlakuan Faktorial 2x2x4
Waktu Pemberian Larva (T) Asal
Metarhizium Level – Media
Sarang 0 Bulan (T0)
1 Bulan (T1)
2 Bulan (T2)
3 Bulan (T3)
M1 S1 M1S1T0 M1S1T1 M1S1T2 M1S1T3
S2 M1S2T0 M1S2T1 M1S2T2 M1S2T3
M2 S1 M2S1T0 M2S1T1 M2S1T2 M2S1T3
S2 M2S2T0 M2S2T1 M2S2T2 M2S2T3
Tata Letak Penelitian (lay-out penelitian)
Perlakuan Faktorial 2 x 2 x 4 = 16 perlakuan x 3 Ulangan = 48 pot
M1S1T2 M2 S1T3 M1 S1T3 M1S2T1 M1 S2T2 M1 S1T2
M2 S2T0 M2 S2T1 M2 S1T0 M1 S1T0 M2 S2T2 M2 S1T1
M2 S2T3 M1S1T1 M1S1T1 M2S1T2 M2S2T2 M2S1T3
M1S2T1 M2S1T2 M2S1T0 M1S2T3 M1S2T2 M2S1T3
M2S1T1 M1S2T3 M2 S1T0 M1S2T0 M1S1T0 M1S1T2
M1S2T2 M2 S2T0 M2 S1T2 M2S1T1 M1S1T0 M1S2T0
M2S2T2 M2S2T3 M1S2T0 M1S2T1
M1S1T3 M2S2T0
M2S2T1 M2S2T3
M1S1T3 M2S2T1 M1S1T1 M1S2T3
Faktor yang diuji asal cendawan M. anisopliae hasil eksplorasi dan cendawan telah
tersimpan dalam kulkas dua bulan, media/sarang pupuk kandang dan limbah
penggergajian/serbuk gergaji serta waktu aplikasi cendawan M. anisopliae:
M1S1T0 = Metarhizium hasil eksplorasi (baru) pada media sarang
pupuk kandang, aplikasi larva O. rhinoceros bersamaan
dengan aplikasi cendawan M. anisopliae.
M1S1T1 = Metarhizium hasil eksplorasi (baru) pada media sarang
pupuk kandang, aplikasi larva O. rhinoceros 1 (satu)
bulan setelah aplikasi cendawan M. anisopliae.
M1S1T2 = Metarhizium hasil eksplorasi (baru) pada media sarang
pupuk kandang, aplikasi larva O. rhinoceros 2 (dua) bulan
setelah aplikasi cendawan M. anisopliae.
M1S1T3 = Metarhizium hasil eksplorasi (baru) pada media sarang
pupuk kandang, aplikasi larva O. rhinoceros 3 (tiga) bulan
setelah aplikasi cendawan M. anisopliae.
M2S1T0 = Metarhizium dari Laboratorium BPT.Bun (telah
tersimpan) pada media sarang pupuk kandang, aplikasi
larva O. rhinoceros bersamaan dengan aplikasi cendawan
M. anisopliae.
M2S1T1 = Metarhizium dari Laboratorium BPT.Bun (telah
tersimpan) pada media sarang pupuk kandang, aplikasi
larva O. rhinoceros 1 (satu) bulan setelah aplikasi
cendawan M. anisopliae.
M2S1T2 = Metarhizium dari Laboratorium BPT.Bun (telah
tersimpan) pada media sarang pupuk kandang, aplikasi
larva O. rhinoceros 2 (dua) bulan setelah aplikasi
cendawan M. anisopliae.
M2S1T3 = Metarhizium dari Laboratorium BPT.Bun (telah
tersimpan) pada media sarang pupuk kandang, aplikasi
larva O. rhinoceros 3 (tiga) bulan setelah aplikasi
cendawan M. anisopliae.
M1S2T0 = Metarhizium hasil eksplorasi (baru) pada media sarang
serbuk gergaji, aplikasi larva O. rhinoceros bersamaan
dengan aplikasi cendawan M. anisopliae.
M1S2T1 = Metarhizium hasil eksplorasi (baru) pada media sarang
serbuk gergaji, aplikasi larva O. rhinoceros 1 (satu) bulan
setelah aplikasi cendawan M. anisopliae.
M1S2T2 = Metarhizium hasil eksplorasi (baru) pada media sarang
serbuk gergaji, aplikasi larva O. rhinoceros 2 (dua) bulan
setelah aplikasi cendawan M. anisopliae.
M1S2T3 = Metarhizium hasil eksplorasi (baru) pada media sarang
serbuk gergaji, aplikasi larva O. rhinoceros 3 (tiga) bulan
setelah aplikasi cendawan M. anisopliae.
M2S2T0 = Metarhizium dari Laboratorium BPT.Bun (telah tersimpan
dua bulan dalam kulkas) pada media sarang serbuk gergaji,
aplikasi larva O. rhinoceros bersamaan dengan aplikasi
cendawan M. anisopliae.
M2S2T1 = Metarhizium dari Laboratorium BPT.Bun (telah tersimpan
dua bulan dalam kulkas) pada media sarang serbuk gergaji,
aplikasi larva O. rhinoceros 1 (satu) bulan setelah aplikasi
cendawan M. anisopliae.
M2S2T2 = Metarhizium dari Laboratorium BPT.Bun (telah tersimpan
dua bulan dalam kulkas) pada media sarang serbuk gergaji,
aplikasi larva O. rhinoceros 2 (dua) bulan setelah aplikasi
cendawan M. anisopliae.
M2S2T3 = Metarhizium dari Laboratorium BPT.Bun (telah tersimpan
dua bulan dalam kulkas) pada media sarang serbuk gergaji,
aplikasi larva O. rhinoceros 3 (tiga) bulan setelah aplikasi
cendawan M. anisopliae.
X. Pelaksanaan Penelitian
1. Menyiapkan media untuk sarang O. rhinoceros pada ember yang telah
dirancang sesuai dengan penelitian yang digunakan.
2. Pelaksanaan penelitian aplikasi cendawan M. anisopliae dan aplikasi
larva O. rhinoceros sesuai dengan perlakuan.
3. Melakukan pengamatan sesuai dengan jadwal penelitian.
E. Analisis Data
1. Data hasil pengamatan dianalisis dengan menggunakan Analysis of Variance
(ANOVA), jika terdapat perbedaan diantara perlakuan dilanjutkan dengan Uji
Duncan Multiple Range Test (DMRT) atau Uji Jarak Duncan (UJD) taraf 5 %.
2. Persentase kematian larva digunakan rumus sebagai berikut:
ba
x 100 %
dimana: a = jumlah larva mati yang diuji
b = jumlah larva yang diuji
3. Kerapatan spora digunakan rumus sebagai berikut:
S = 1025,0.
.x
ndt 6
dimana:
S = jumlah spora per gram media
t = banyaknya spora yang dihitung pada kotak penghitungan (a, b, c, d, dan e)
d = tingkat pengenceran
n = banyaknya kotak yang diamati yaitu 5 x 16 = 80 kotak
106 = nilai konstanta dengan tingkat pengenceran 100 kali (Anonim, 1989)
4. Viabilitas (Daya Kecambah) digunakan rumus sebagai berikut:
K = mt
t+
x 100 %
dimana: K = persentase spora kecambah
t = jumlah spora tumbuh
m = jumlah spora tidak tumbuh (Anonim, 1989)
VI. HASIL DAN PEMBAHASAN
H. Hasil Penelitian
Penelitian kajian patogenisitas cendawan Metarhizium anisopliae terhadap
hama Oryctes rhinoceros tanaman kelapa pada berbagai teknik aplikasi berupa hasil
pengamatan kematian larva. Kematian merupakan respon serangan target uji yang
diamati akibat perlakuan Agens Pengendali Hayati (APH) dari cendawan M.
anisopliae yaitu berupa enzim dan toksin yang masuk ke dalam tubuh serangga
melalui kontak kulit.
1. Persentase kematian larva
0
20
40
60
80
100
%
1 2 3 4Minggu
Persentase Kematian Larva Perlakuan Nol Bulan
M1S1T0
M2S1T0
M1S2T0
M2S2T0
Gambar 1. Persentase kematian larva O. rhinoceros pada berbagai minggu
pengamatan Keterangan: M1 = Cendawan M. anisopliae baru M2 = Cendawan M. anisopliae telah tersimpan dua bulan dalam kulkas S1 = Media sarang pupuk kandang S2 = Media sarang serbuk gergaji T0 = Waktu aplikasi nol bulan
Tabel 1. Persentase Kematian Larva O. rhinoceros pada Berbagai Minggu Pengamatan
Pengamatan Minggu ke
Perlakuan I II III IV
M1S1T0 13,3 66,7 100,0 100,0 M2S1T0 6,7 63,3 86,7 86,7 M1S2T0 30,0 93,3 100,0 100,0 M2S2T0 10,0 80,0 93,3 100,0
0
20
40
60
80
100
%
1 2 3 4
Minggu
Persentase Kematian Larva Perlakuan Satu Bulan
M1S1T1
M2S1T1
M1S2T1
M2S2T1
Gambar 2. Persentase kematian larva O. rhinoceros pada berbagai
minggu pengamatan Keterangan: M1 = Cendawan M. anisopliae baru M2 = Cendawan M. anisopliae telah tersimpan dua bulan dalam kulkas S1 = Media sarang pupuk kandang S2 = Media sarang serbuk gergaji T1 = Waktu aplikasi satu bulan Tabel 2. Persentase Kematian Larva O. rhinoceros pada Berbagai Minggu
Pengamatan
Pengamatan Minggu ke Perlakuan
I II III IV M1S1T1 0,0 53,3 86,7 100,0 M2S1T1 0,0 13,3 76,7 76,7 M1S2T1 0,0 56,7 93,3 100,0 M2S2T1 0,0 26,7 73,3 100,0
0
20
40
60
80
100
%
1 2 3 4
Minggu
Persentase Kematian Larva Perlakuan Dua Bulan
M1S1T2
M2S1T2
M1S2T2
M2S2T2
Gambar 3. Persentase kematian larva O. rhinoceros pada berbagai minggu
pengamatan Keterangan: M1 = Cendawan M. anisopliae baru M2 = Cendawan M. anisopliae telah tersimpan dua bulan dalam kulkas S1 = Media sarang pupuk kandang S2 = Media sarang serbuk gergaji T2 = Waktu aplikasi dua bulan Tabel 3. Persentase Kematian Larva O. rhinoceros pada Berbagai Minggu
Pengamatan
Pengamatan Minggu ke Perlakuan I II III IV
M1S1T2 0,0 36,7 83,3 83,3 M2S1T2 0,0 26,7 70,0 70,0 M1S2T2 0,0 60,0 86,7 100,0 M2S2T2 0,0 26,7 60,0 100,0
0
20
40
60
80
100
%
1 2 3 4
Minggu
Persentase Kematian Larva Perlakuan Tiga Bulan
M1S1T3
M2S1T3
M1S2T3
M2S2T3
Gambar 4. Persentase kematian larva O. rhinoceros pada berbagai minggu
pengamatan Keterangan: M1 = Cendawan M. anisopliae baru M2 = Cendawan M. anisopliae telah tersimpan dua bulan dalam kulkas S1 = Media sarang pupuk kandang S2 = Media sarang serbuk gergaji T3 = Waktu aplikasi tiga bulan Tabel 4. Persentase Kematian Larva O. rhinoceros pada Berbagai Minggu
Pengamatan
Pengamatan Minggu ke Perlakuan I II III IV
M1S1T3 0,0 26,7 76,7 76,7 M2S1T3 0,0 13,3 26,7 63,3 M1S2T3 0,0 53,3 76,7 93,3 M2S2T3 0,0 36,7 73,3 90,0
Tabel 5. Persentase Kematian Larva O. rhinoceros pada Berbagai Kombinasi Perlakuan
T0 T1 T2 T3
M1 S1 100,0a 100,0a 83,6cd 76,8de
S2 100,0a 100,0a 100,0a 95,4b
M2 S1 87,0bcd 76,8de 70,0e 63,4e
S2 100,0a 100,0a 100,0a 93,2bc
Keterangan: M1 = Cendawan M. anisopliae baru M2 = Cendawan M. anisopliae telah tersimpan dua bulan dalam kulkas S1 = Media sarang pupuk kandang S2 = Media sarang serbuk gergaji T0 = Waktu aplikasi nol bulan T1 = Waktu aplikasi satu bulan T2 = Waktu aplikasi dua bulan T3 = Waktu aplikasi tiga bulan Tabel 6. Persentase Kematian Larva O. rhinoceros pada Berbagai Perlakuan
Perlakuan Rata-rata Persentase Kematian Larva M1 81,61a M2 72,51b
S1 68,27b S2 86,24a
T0 84,40a T1 82,49a T2 75,53b T3 66,61c
Keterangan: M1 = Cendawan M. anisopliae baru M2 = Cendawan M. anisopliae telah tersimpan dua bulan dalam kulkas S1 = Media sarang pupuk kandang S2 = Media sarang serbuk gergaji T0 = Waktu aplikasi nol bulan T1 = Waktu aplikasi satu bulan T2 = Waktu aplikasi dua bulan T3 = Waktu aplikasi tiga bulan
Gambar 5. Hubungan antara kematian larva dan waktu aplikasi cendawan M anisopliae
2. Persentase larva menjadi pupa
0
5
10
15
%
1 2 3 4
Minggu
Persentase Larva Menjadi Pupa Perlakuan Nol Bulan
M1S1T0
M2S1T0
M1S2T0
M2S2T0
Gambar 6. Persentase larva menjadi pupa pada berbagai minggu
pengamatan Keterangan: M1 = Cendawan M. anisopliae baru M2 = Cendawan M. anisopliae telah tersimpan dua bulan dalam kulkas S1 = Media sarang pupuk kandang S2 = Media sarang serbuk gergaji T0 = Waktu aplikasi nol bulan
80.0
85.0
90.0
95.0
100.0
105.0
0 0.5 1 1.5 2 2.5 3 3.5
waktu aplikasi (bulan)
kem
atia
n la
rva
Y = 98.94 + 1.78T - 2.22T2
Tabel 7. Persentase Larva Menjadi Pupa pada Berbagai Minggu Pengamatan
Pengamatan Minggu ke Perlakuan
I II III IV M1S1T0 0 0 0 0 M2S1T0 0 0 0 13.3 M1S2T0 0 0 0 0 M2S2T0 0 0 0 0
05
10152025
%
1 2 3 4
Minggu
Persentase Larva Mendai Pupa Perlakuan Satu Bulan
M1S1T1
M2S1T1
M1S2T1
M2S2T1
Gambar 7. Persentase larva menjadi pupa pada berbagai minggu
pengamatan Keterangan: M1 = Cendawan M. anisopliae baru M2 = Cendawan M. anisopliae telah tersimpan dua bulan dalam kulkas S1 = Media sarang pupuk kandang S2 = Media sarang serbuk gergaji T1 = Waktu aplikasi satu bulan Tabel 8. Persentase Larva Menjadi Pupa pada Berbagai Minggu Pengamatan
Pengamatan Minggu ke Perlakuan
I II III IV M1S1T1 0,0 0,0 0,0 0,0 M2S1T1 0,0 0,0 0,0 23.3 M1S2T1 0,0 0,0 0,0 0,0 M2S2T1 0,0 0,0 0,0 0,0
0
5
10
15
20
25
30
%
1 2 3 4
Minggu
Persentase Larva Menjadi Pupa Perlakuan Dua Bulan
M1S1T2
M2S1T2
M1S2T2
M2S2T2
Gambar 8. Persentase larva menjadi pupa pada berbagai minggu
pengamatan Keterangan: M1 = Cendawan M. anisopliae baru M2 = Cendawan M. anisopliae telah tersimpan dua bulan dalam kulkas S1 = Media sarang pupuk kandang S2 = Media sarang serbuk gergaji T2 = Waktu aplikasi dua bulan Tabel 9. Persentase Larva Menjadi Pupa pada Berbagai Minggu Pengamatan
Pengamatan Minggu ke Perlakuan
I II III IV M1S1T2 0,0 0,0 0,0 16,7 M2S1T2 0,0 0,0 0,0 30,0 M1S2T2 0,0 0,0 0,0 0,0 M2S2T2 0,0 0,0 0,0 0,0
05
10152025303540
%
1 2 3 4
Minggu
Persentase Larva Menjadi Pupa Perlakuan Tiga Bulan
M1S1T3
M2S1T3
M1S2T3
M2S2T3
Gambar 9. Persentase larva menjadi pupa pada berbagai minggu
pengamatan Keterangan: M1 = Cendawan M. anisopliae baru M2 = Cendawan M. anisopliae telah tersimpan dua bulan dalam kulkas S1 = Media sarang pupuk kandang S2 = Media sarang serbuk gergaji T3 = Waktu aplikasi tiga bulan Tabel 10. Persentase Larva Menjadi Pupa pada Berbagai Minggu Pengamatan
Pengamatan Minggu ke Perlakuan I II III IV
M1S1T3 0,0 0,0 0,0 23,3 M2S1T3 0,0 0,0 0,0 36,7 M1S2T3 0,0 0,0 0,0 6,7 M2S2T3 0,0 0,0 0,0 10,0
Tabel 11. Persentase Larva Menjadi Pupa pada Berbagai Perlakuan
Perlakuan Rata-rata Persentase Larva Menjadi Pupa
M1 8,39b M2 17,09a
S1 21,73a S2 3,76b
T0 5,69c T1 7,51c T2 13,47b T3 23,39a
Keterangan: M1 = Cendawan M. anisopliae baru M2 = Cendawan M. anisopliae telah tersimpan dua bulan dalam kulkas S1 = Media sarang pupuk kandang S2 = Media sarang serbuk gergaji T0 = Waktu aplikasi nol bulan T1 = Waktu aplikasi satu bulan T2 = Waktu aplikasi dua bulan T3 = Waktu aplikasi tiga bulan
Tabel 12. Persentase Larva Menjadi Pupa pada Berbagai Kombinasi
Perlakuan
T0 T1 T2 T3
M1 S1 0.0 f 0.0 f 15.4 bcd 23.2 abc
S2 0.0 f 0.0 f 0.0 f 4.6 e
M2 S1 13.0 cde 23.2 abc 30.0 ab 36.6 a
S2 00 f 0.0 f 0.0 f 6.8 de
Keterangan: M1 = Cendawan M. anisopliae baru M2 = Cendawan M. anisopliae telah tersimpan dua bulan dalam kulkas S1 = Media sarang pupuk kandang S2 = Media sarang serbuk gergaji T0 = Waktu aplikasi nol bulan T1 = Waktu aplikasi satu bulan T2 = Waktu aplikasi dua bulan T3 = Waktu aplikasi tiga bulan
0.0
5.0
10.0
15.0
20.0
0 1 2 3 4
waktu aplikasi (bulan)
pu
pa
Y = 1.07 - 1.79T + 2.23T2
Gambar 10. Larva menjadi pupa pada berbagai waktu aplikasi
3. Kelembapan media sarang
Gambar 11. Kelembapan media sarang pada berbagai kombinasi perlakuan Keterangan: S1 = Media sarang pupuk kandang S2 = Media sarang serbuk gergaji T0 = Waktu aplikasi nol bulan T1 = Waktu aplikasi satu bulan T2 = Waktu aplikasi dua bulan T3 = Waktu aplikasi tiga bulan
Tabel 13. Kelembapan media sarang pada berbagai kombinasi perlakuan T0 T1 T2 T3
S1 82,2 bc 82,3 bc 83,8b 88,3c
S2 76,5 d 80,5 c 80,5 c 80,7 bc Keterangan: S1 = Media sarang pupuk kandang S2 = Media sarang serbuk gergaji T0 = Waktu aplikasi nol bulan T1 = Waktu aplikasi satu bulan T2 = Waktu aplikasi dua bulan T3 = Waktu aplikasi tiga bulan
4. Suhu media sarang
27.0
27.5
28.0
28.5
29.0
29.5
30.0
T0 T1 T2 T3
waktu aplikasi (bulan)
suh
u S1
S2
Gambar 12. Suhu media sarang pada berbagai kombinasi perlakuan
Keterangan: S1 = Media sarang pupuk kandang S2 = Media sarang serbuk gergaji T0 = Waktu aplikasi nol bulan T1 = Waktu aplikasi satu bulan T2 = Waktu aplikasi dua bulan T3 = Waktu aplikasi tiga bulan
Tabel 14. Suhu media sarang pada berbagai kombinasi perlakuan T0 T1 T2 T3
S1 28.0 c 28.2 c 28.0 c 28.0 c
S2 29.8 a 29.0 b 28.2 c 28.2 c Keterangan: S1 = Media sarang pupuk kandang S2 = Media sarang serbuk gergaji T0 = Waktu aplikasi nol bulan T1 = Waktu aplikasi satu bulan T2 = Waktu aplikasi dua bulan T3 = Waktu aplikasi tiga bulan
5. Kerapatan spora
4.5
4.6
4.7
4.8
4.9
5
5.1
5.2
5.3
I II III IV RERATA
M1
M2
Gambar 13. Penghitungan kerapatan spora cendawan M. anisopliae
Rata-rata penghitungan kerapatan spora pada material cendawan M.
anisopliae asal BPT-Bun (telah tersimpan dalam kulkas selama dua bulan)
jumlah kerapatan spora = 5,05 x 108 dengan keterangan baik dan
memenuhi syarat aplikasi. Demikian juga hasil penghitungan material
cendawan M. anisopliae hasil eksplorasi (baru) = 5,08 x 108 dengan
keterangan baik dan memenuhi syarat aplikasi.
6. Viabilitas (Daya Kecambah)
80828486889092949698
I IV VII X
M1
M2
Gambar 14. Penghitungan viabilitas spora cendawan M. anisopliae
Rata-rata penghitungan viabilitas pada material cendawan M. anisopliae
asal BPT-Bun (telah tersimpan dalam kulkas selama dua bulan) = 90,8%
dengan keterangan baik dan memenuhi syarat aplikasi. Demikian juga hasil
penghitungan material cendawan M. anisopliae hasil eksplorasi (baru) =
91,2% dengan keterangan baik dan memenuhi syarat aplikasi.
7. pH media sarang
pH media sarang pada media sarang pupuk kandang terendah 6,2 dan tertinggi
7,3. pH media sarang serbuk gergaji (grajen) terendah 5,8 dan tertinggi 6,6.
I. Pembahasan
1. Persentase kematian larva
Kematian larva pada kombinasi cendawan M. anisopliae hasil eksplorasi
(baru) dengan media sarang pupuk kandang sebesar 100 % tidak berbeda nyata
dibanding kombinasi cendawan M. anisopliae hasil eksplorasi (baru) dengan
media sarang serbuk gergaji sebesar 100 %, dan tidak berbeda nyata pula
dibanding kombinasi cendawan M. anisopliae yang telah tersimpan selam dua
bulan dalam kulkas pada media sarang serbuk gergaji sebesar 100 %, tetapi
lebih tingi dan berbeda nyata dibanding kombinasi cendawan M. anisopliae
yang telah tersimpan dua bulan dalam kulkas pada media sarang pupuk
kandang waktu aplikasi nol bulan sebesar 87, 0 % dan satu bulan 76, 8 %.
Kematian larva waktu aplikasi dua bulan kombinasi cendawan M. anisopliae
hasil eksplorasi cendawan M. anisopliae yang telah tersimpan dua bulan dalam
kulkas pada media sarang serbuk gergaji sebesar 100 % tidak berbeda nyata,
tetapi berbeda nyata dan lebih tinggi dibanding cendawan M. anisopliae hasil
eksplorasi maupun cendawan M. anisopliae yang telah tersimpan dua bulan
dalam kulkas pada media sarang pupuk kandang sebesar 83,6 % dan 70,0%.
Kematian larva waktu aplikasi tiga bulan kombinasi cendawan M. anisopliae
hasil eksplorasi maupun yang telah tersimpan dua bulan dalam kulkas pada
media sarang serbuk gergaji sebesar 95,4 % dan 93,2 % tidak berbeda nyata,
tetapi lebih tinggi dan berbeda nyata dibanding pada media sarang pupuk
kandang sebesar 76,8 % dan 63,4 % (Tabel 5).
Persentase kematian larva pada cendawan M. anisopliae hasil eksplorasi
sebesar 81,61 % lebih tinggi dan berbeda nyata dibanding cendawan M.
anisopliae yang telah tersimpan selama dua bulan di dalam kulkas sebesar
72,51 %. Persentase kematian larva pada media sarang serbuk gergaji sebesar
86,24 % lebih tinggi dan berbeda nyata dibanding media sarang pupuk kandang
sebesar 68,27 %. Persentase kematian larva aplikasi nol bulan sebesar 84, 49 %
tidak berbeda nyata dibanding aplikasi satu bulan sebesar 82,49 %. Tetapi lebih
tingi dan berbeda nyata dibanding aplikasi dua bulan sebesar 75,53 % dan
aplikasi tiga bulan sebesar 66,61 %. Persentase kepamtian larva pada aplikasi
dua bulan sebesar 75,53 % lebih tinggi dan berbeda nyata dibanding aplikasi
tiga bulan sebesar 66,61 % (Tabel 6).
Rata-rata kematian larva cendawan M. anisopliae hasil eksplorasi
sebesar 81,61 % lebih tinggi dan berbeda nyata dibanding cendawan M.
anisopliae yang telah tersimpan dua bulan dalam kulkas sebesar 72,51 %. Rata-
rata kematian larva pada media sarang serbuk gergaji sebesar 81,61 % lebih
tinggi dan berbeda nyata dibanding meia sarang pupuk kandang sebesar 68,27
%. Rata-rata kematian larva waktu aplikasi nol bulan sebesar 84,40 % tidak
berbeda nyata dibanding waktu aplikasi satu bulan sebesar 82,49 %, tetapi lebih
tinggi dan berbeda nyata dibanding waktu aplikasi dua bulan sebesar 75, 53 %
dan tiga bulan 66,61 %. Waktu aplikasi dua bulan lebih tinggi dan berbeda
nyata dibanding waktu aplikasi tiga bulan.
Patogenisitas cendawan M. anisopliae hasil eksplorasi terhadap larva O.
rhinoceros lebih tinggi dibanding yang telah tersimpan dua bulan dalam kulkas.
Hal ini disebabkan cendawan yang masih baru pertumbuhannya terus tidak
mengalami berhenti, sedangkan cendawan yang disimpan dalam kulkas
pertumbuhannya mengalami berhenti sehingga pada saat diaplikasikan baru
dapat menyesuaikan dengan media tumbuh. Patogenisitas cendawan M.
anisopliae terhadap larva O. rhinoceros pada media sarang serbuk gergaji lebih
tinggi dan berbeda nyata dibanding media sarang pupuk kandang. Hal ini
disebabkan media sarang serbuk gergaji strukturnya tidak padat dan berongga
sehingga lebih banyak oksigennya.
Muller (1967 dalam Mc.Coy 1974 dalam Darwis, 1990) memberikan
kisaran suhu 20º - 30º dan kisaran pH 4,7 – 10 baik bagi pertumbuhan
cendawan M. anisopliae. Kalau dilihat dari kisaran suhu dan pH itu, kisaran itu
cukup luas bagi pertumbuhan cendawan M. anisopliae tidak akan mengurangi
daya patogenisitasnya. Akan tetapi menurut Sitepu (1989) pertumbuhan
cendawan M. anisopliae membutuhkan oksigen, sehingga struktur media sarang
yang remah dan ada rongga udara akan baik bagi pertumbuhan cendawan M.
anisopliae.
Ferron, 1985 dalam Pracaya, 2004 menggolongkan empat tahapan
etiologi penyakit serangga yang disebabkan oleh cendawan. Tahap pertama
adalah inokulasi, yaitu kontak antara propagul cendawan dengan tubuh serangga.
Propagul cendawan M. anisopliae berupa konidia karena merupakan cendawan
yang berkembangbiak secara tidak sempurna. Dalam proses ini, senyawa
mukopolisakarida memegang peranan penting. Tahap kedua adalah proses
penempelan perkecambahan propagul cendawan pada integumen serangga.
Kelembaban udara yang tinggi dan bahkan kadang-kadang air diperlukan untuk
perkecambahan propagul cendawan. Pada tahap ini, cendawan dapat
memanfaatkan senyawa-senyawa yang terdapat pada integumen. Tahap ketiga
yaitu penetrasi dan invasi. Dalam melakukan penetrasi menembus integumen,
cendawan membentuk tabung kecambah (appresorium). Dalam hal ini titik
penetrasi sangat dipengaruhi olek konfigurasi morfologi integumen. Penembusan
dilakukan secara mekanis atau kimiawi dengan mengeluarkan enzim dan toksin.
Tahap keempat yaitu destruksi pada titik penetrasi dan terbentuknya blastospora
yang kemudian beredar ke dalam hemolimfa dan membentuk hifa sekunder
untuk menyerang jaringan lainnya. Pada umumnya serangga sudah mati sebelum
proliferasi blastospora. Enam senyawa enzim dikerluarkan oleh M. anisopliae,
yaitu lipase, kithinase, amilase, proteinase, pospatase, dan esterase. Serangga
juga mengembangkan sistem pertahanan diri dengan cara fagositosis atau
enkapsulasi dengan membentuk granuloma.
Kematian larva O. rhinoceros terjadi karena konidia cendawan M
anisopliae mengandung destruxin A (C29H47O7N5), destruxin B (C25H42O6N4),
destruxin C,D,E dan dipertimbangkan sebagai bahan aktif insektisida generasi
baru). Mittler, 1994 dalam Widiyanti et al., 2004 lebih lanjut menyatakan bahwa
efek destruxin berpengaruh pada organella sel target (mitokondria, endoplasmik
retikulum endoplasma dan membran inti), menyebabkan paralisis sel dan
berubahnya fungsi midgut, tebulus maphigi dan jaringan otot. Dijelaskan pula,
destruxin yang dihasilkan oleh M anisopliae toksisitasnya berbeda tergantung
dari jenis larva serangga.
2. Persentase larva menjadi pupa
Hasil pengamatan diperoleh larva tidak mati dan menjadi pupa, pada larva
instar tiga yang dewasa keadaan kulitnya makin keras sehingga dimungkinkan
konidia cendawan M. anisopliae yang sudah kontak tidak bisa mengadakan
tahapan selanjutnya yaitu tahapan penetrasi. Hal ini disebabkan pada umumnya
serangga struktur tubuh bagian luar keras dan serangga mempunyai ketahanan
atau antibodi. Di samping itu, larva instar tiga yang dewasa (pra pupa)
menjelang stadia pupa mulai membuat kokon yang terbuat dari bahan media
sarang, sehingga dapat terhindar dari kontak cendawan M. anisopliae.
3. Kelembapan Media Sarang
Kelembapan media sarang menunjukkan kisaran 72, 0 % sampai 90,0 %,
kelembapan ini masih sesuai untuk perkecambahan cendawan M. anisopliae.
Millstein et al., 1983 dalam Prayogo et al., 2004 menyatakan konidia akan
membentuk kecambah pada kelembapan di atas 90 %. Lebih lanjut Milner et
al., 1997 dalam Prayogo et al., 2004 menyatakan bahwa konidia akan
berkecambah dengan baik dan patogenisitasnya meningkat bila kelembapan
hingga 100 %. Patogenisitas cendawan M. anisopliae akan menurun apabila
kelembapannya di bawah 86 %.
4. Suhu Media Sarang
Suhu media sarang menunjukkan kisaran 28 – 30°C, suhu ini relatif lebih tinggi
untuk pertumbuhan cendawan M. anisopliae. Muller (1967 dalam Mc.Coy
1974 dalam Darwis, 1990) memberikan kisaran suhu 20º - 30º.
5. Kerapatan spora
Kerapatan spora pada cendawan M. anisopliae hasil eksplorasi 5,08 x 108 dan
yang telah tersimpan dalam kulkas dua bulan 5,05 x 108 masing-masing dengan
kategori baik dan memenuhi syarat untuk diaplikasikan yaitu minimal 5,0 x 108
sehingga sehingga cendawan M. anisopliae tidak mengalami pengurangan
jumlah spora.
6. Viabilitas (Daya Kecambah)
Viabilitas pada cendawan M. anisopliae hasil eksplorasi 91,2% dan yang telah
tersimpan dalam kulkas dua bulan 90,8% masing-masing dengan kategori baik
dan memenuhi syarat untuk diaplikasikan yaitu minimal 90.0 %.
7. pH Media Sarang
pH media sarang menunjukkan kisaran 5,7 sampai 7,4, pH ini masih baik untuk
pertumbuhan cendawan M. anisopliae. Muller (1967 dalam Mc.Coy 1974
dalam Darwis, 1990) memberikan kisaran pH 4,7 – 10 baik bagi pertumbuhan
cendawan M. anisopliae.
XI. KESIMPULAN DAN SARAN
A. Kesimpulan
J. Patogenisitas cendawan M. anisopliae hasil eksplorasi (baru) terhadap larva O.
rhinoceros sebesar 81,61 % lebih tinggi dibanding cendawan M. anisopliae
yang telah tersimpan selama dua bulan dalam kulkas sebesar 72,51 %.
K. Patogenisitas cendawan M. anisopliae terhadap larva O. rhinoceros pada media
sarang serbuk gergaji sebesar 86, 24 % lebih tinggi dibanding media sarang
pupuk kandang sebesar 68, 27 %.
L. Terjadi peneurunan patogenisitas cendawan M. anisopliae terhadap larva O.
rhinoceros pada aplikasi tiga bulan.
B. Saran
Sebaiknya dilakukan penelitian lanjutan terhadap waktu aplikasi cendawan M.
anisopliae sampai enam bulan dan 12 bulan.
PUSTAKA
Anonim, 1983, Petunjuk Penggunaan Cendawan Metarhizium anisopliae dan Baculovirus oryctes untuk Pengendalian Oryctes rhinoceros. Kerja sama antara Direktorat Jenderal Perkebunan Departemen Pertanian dengan Balai Penelitian Tanaman Industri. Bogor. hal 9 – 22.
_______, 1985, Pedoman Pengembangbiakan Musuh Alami Hama Tanaman Kelapa.
Direktorat Jenderal Perkebunan Departemen Pertanian. Jakarta. hal 1 – 6. _______, 1986, Pengendalian Hama Kumbang Nyiur (Oryctes rhinoceros)
Menggunakan Cendawan Metarhizium anisopliae dan virus Baculovirus oryctes. Direktorat Perlindungan Tanaman Perkebunan. Direktorat Jenderal Perkebunan Departemen Pertanian. Jakarta.
_______, 1989, Pengendalian Kumbang Kelapa Secara Terpadu. Balai Penelitian dan
Pengembangan Tanaman Industri. Bogor. hal 114 – 115. _______, 1990, Pengendalian Hama Kumbang Nyiur (Oryctes rhinoceros L.
Menggunakan Metarhizium anisopliae dan virus Baculovirus oryctes. Direktorat Perlindungan Tanaman Perkebunan Direktorat Jenderal Perkebunan Departemen Pertanian. Buletin Media Perkebunan.
_______, 1995, Media Komunikasi Penelitian dan Pengembangan Tanaman Industri.
Pusat Penelitian dan Pengembangan Tanaman Industri. Badan Penelitian dan Pengembangan Pertanian. Departemen Pertanian.
_______, 2005, Kebijakan Perlindungan Perkebunan. Direktorat Perlindungan
Perkebunan Direktorat Jenderal Perkebunan. Jakarta. 20 hal. _______, 2005, Statistik Perkebunan Jawa Tengah. 178 hal. Baehaki, S. E, dan Noviyanti, 1993, Pengaruh umur biakan Metarhizium anisopliae
strain lokal Sukamandi terhadap perkembangan wereng coklat, hal 113 – 124. dalam E. Martono, E. Mahrub, N. S. Putra, dan Y. Trisetyawati (Ed). Simposium Patologi Serangga I. Universitas Gadjah Mada. Yogyakarta. 12 – 13 Oktober 1993.
Barnet, H.L dan B.N. Hunter, 1972, Illustrated Genera of Fungi Imperpecti. Thried
Edition. Burges Publishing Compan. Minnosota. hal 90 – 96.
Darwis, M, 1989, Pengaruh Jenis Media Organik dan Kedalaman Inokulum Metarhizium anisopliae terhadap Mortalitas Larva Oryctes rhinoceros. Balai Penelitian Kelapa. Manado.
Herdrajat, 2006, Kebijakan Perlindungan Tanaman Perkebunan Dalam Menyonsong
Era Globalisasi. Masyarakat Perlindungan Tumbuhan dan Hewan Indonesia. Direktorat Perlindungan Perkebunan Direktorat Jenderal Perkebunan.
Hosang, M. L., A. A. Lolong, D. Michellia dan D. Sitepu, 1989, Pengendalian Hayati
Oryctes rhinoceros L. Dengan Baculovirus oryctes dan Metarhizium anisopliae. Balai Penelitian Kelapa. Manado. Balai Penelitian Tanaman Rempah dan Obat. Bogor.
Gabriel, B. P. dan Riyatno, 1989, Metarhizium anisopliae (Metsch.) Sor. Taksonomi,
Patologi, Produksi, dan Aplikasinya. Proyek Pengembangan Perlindungan Tanaman Perkebunan. Departemen Pertanian. Jakarta. 25 hal.
Genthner, F. J, S. S. Foss dan P. S. Glas, 2004, Virulence of Metarhizium anisopliae to
Embryos of the Grass Shrimp Palaemonetes Pugio. U.S. Environmental Ptrotection Agency and National Research Council, Environmental Research Laboratory, 1 Sabine Island Drive, Gulf Breeze, Florida 32561. 18 Desember 2007.
Gomez, 1983, An Statistical Prosedures for Agricultural Research. International Rice
Research Institute Book. Second Edition. Kalshoven, L.G.E, 1981, The Pest of Crop in Indoneia. PT. Ichtiar Baru-Van Hoeve.
Jakarta. 701 hal. Madry, B, 1993, Masalah Perlindungan Tanaman Kelapa di Indonesia. Prosiding
Konperensi Nasional Kelapa III. Buku II. Puslitbangtri. hal 89 – 108. Mangoendiharjo, S. dan E. Mahrub, 1983, Pengendalian Hayati. Jurusan Ilmu Hama
Tumbuhan. Fakultas Pertanian UGM. Yogyakarta. hal 125 – 144. Michellia, D. dan D. Sitepu, 1989a, Jenis Media dan Metode Perbanyakan
Metarhizium anisopliae Guna Penanggulangan Oryctes rhinoceros. Balai Penelitian Kelapa. Manado. Balai Penelitian Tanaman Rempah dan Obat. Bogor.
_______,1989b, Kelapa. Pusat Penelitian dan Pengembangan Tanaman Industri. Bogor.
hal 127 – 129. Nazir, M, 1998, Metode Penelitian. Galia Indonesia.
Nirula, K. K, 1957, Observations on the green muscardine fungus in the population of
Oryctes rhinoceros L. J. Econ. Entomol. 50 (6): 767 – 770 dalam Munaan, A., W. Rumini, I. Sriwulan, dan Suharyon. Evaluasi Usaha Pengendalian hayati Oryctes rhinoceros di Jawa Tengah. 1995. 99 hal.
Pardede, DJ, R.Y. Purba, dan C.U. Ginting, 1997, Pengertian Pengendalian Hama
Terpadu Pada Tanaman Kelapa Sawit. Pertemuan Teknis Kelapa Sawit. 24 Juni 1887 di Medan. hal 1 - 8.
Prayogo, Y, W. Tengkano, dan Marwoto, 2004, Prospek Cendawan Entomopatogen
Metarhizium anisopliae untuk Mengendalikan Ulat Grayak Spodoptera litura pada Kedelai. Balai Penelitian Tanaman Kacang-kacangan dan Umbi-umbian. Malang.
Purba, R.Y, 2006, Sistem dan Aplikasi Pengendalian Hama Terpadu (PHT) pada
Tanaman Kelapa Sawit. Pusat Penelitian Kelapa Sawit. Medan. 17 hal. Sastrosupadi, A, 2000, Rancangan Percobaan Praktis Bidang Pertanian. Edisi Revisi.
Kanisius. Yogyakarta. 27 hal. Sitepu, D., 1988, Pengendalian Hama Oryctes dengan Jamur Metarhizium.
Efektivitas, Pembiakan dan Penyebaran M. Anisopliae di Laboratorium Lapangan Dinas Perkebunan Provinsi Jawa Timur. 12 hal.
Sitepu, D. dan S, Kharie, J. S., Warokka, dan M. F. J. Motulo, 1988a, Methods for the
production and use of Metarhizium anisopliae againt Oryctes rhinoceros. In Annual Report. Integrated Coconut Pest Control Project. UNDP / FAO - CRI. Manado.
_______, 1988b, Methods for the production and use of Metarhizium anisopliae
againt Oryctes rhinoceros. In Annual Report of Integrated Coconut Pest Control Project. FAO / UNDP. Balai Litbang Pertanian. - CRI. Manado. Hal 104 – 111.
Strack, B. H., 2004, Biological Control of Termites by the Fungul Entomopathogen
Metarhizium anisopliae. en.wikipedia.org. 18 Desember 2007. Susilo, A., S. Santoso, dan H. A. Tutung, 1993, Sporulasi, viabilitas cendawan
Metarhizium anisopliae (Metsenikoff) Sorokin pada media jagung dan patonesitasnya terhadap larva Oryctes rhinoceros, hal 104 – 111. dalam E. Martono, E. Mahrub, N. S. Putra, dan Y. Trisetyawati (Ed). Simposium
Patologi Serangga I. Universitas Gadjah Mada. Yogyakarta. 12 – 13 Oktober 1993.
Untung, K, 1993, Pengantar Pengelolaan Hama Terpadu. Fakultas Pertanian.
Universitas Gadjah Mada. Gadjah Mada University Press. 271 hal. _______, K, 1996, Pengembangan Sistem Pertanian Berkelanjutan dan Berwawasan
Lingkungan.. Seminar Nasional Pertanian Berwawasan Lingkungan. Kampus USI. P. Siantar. 29 Juli 1996. hal 1 – 13.
Wagiman, F.X, 2006, Sistem Pengamatan dan Pengendalian Eksplosi Hama Oryctes
rhinoceros. Laboratorium Pengendalian Hayati. Jurusan Perlindungan Tanaman. Fakultas Pertanian. Universitas Gadjah Mada. Yogyakarta. 21 hal.
Wahyono, T.E. dan Tarigan, N., 2007, Uji Patogenisitas Agen Hayati Beauveria
bassiana dan Metarhizium anisopliae Terhadap Ulat Serendang (Xystrocera festiva). Buletin Teknik Pertanian Vol. 12 No. 1 2007. htpp://www.pustaka-deptan.go.id/media/data/uji-toksis. 19 Desember 2007.
Warauw, J, 1985, Pengendalian Hayati pada Tanaman Kelapa di Indonesia. Widiyanti, N. dan S. Muyadihardja, 2004, Uji Toksisitas Jamur Metarhizium
anisopliae Terhadap Nyamuk Aedes aegypty. www.litbang.depkes.go.id. hal 25 – 30. 19 Desember 2007.
Wikardi, E.A, 1980, Penggunaan Baculovirus oryctes dan Metarhizium anisopliae dalam Pengendalian Biologi Oryctes rhinoceros L. (Coleoptera; Scarabaeidae). Laporan Intern. Balittri. 16 hal.
Wikipedia, 2004, Metarhizium anisopliae. htpp://www.en.wikipedia.org. 29 Nopember
2007. Wikipedia, 2004, Metarhizium anisopliae. htpp://www.answers.com/topic/ metarhi-
zium anisopliae. 29 Nopember 2007. _______, 1983, Pengujian Penggunaan Virus dan Cendawan untuk Pengendalian O.
rhinoceros. Laporan Balittri. Bogor. 16 hal. Wirjosoehardjo, S, 1985, Pedoman Pengembangbiakan Musuh Alami Hama Tanaman
Kelapa. Departemen Pertanian. Jakarta. 70 hal.
Lampiran 1. Siklus hidup O. rhinoceros
a b
d c
Gambar 15. a. Telur (Foto: Mul, 2007), b. Larva (Foto: Mul, 2007), c. Pupa (Foto: Anonim, 1989), dan d. Imago (Foto: Anonim, 1989)
Lampiran 2. Eksplorasi cendawan M. anisopliae
a
b
Gambar 16. a. Sarang O. rhinoceros berupa kotoran ternak (pupuk kandang), b. Membongkar sarang O. rhinoceros (Foto: Mul, 2007)
Lampiran 3. Hasil pemurnian cendawan M. anisopliae
A
Gambar 17. A. Biakan cendawan M. anisopliae pada media PDA dalam petridish (Foto: Mul, 2007), B dan C. Konidiofor, D. Konidia (ilustrasi) (Foto: Barnet, H.L dan B.N. Hunter, 1972)
Lampiran 4. Perbanyakan cendawan M. anisopliae pada media jagung
a
b
Gambar 18. a. Inokulasi cendawan M. anisopliae pada media jagung, b. inkubasi media jagung yang telah dinokulasi cendawan M. anisopliae (Foto: Pri, 2007)
Lampiran 5. Hasil inokulasi biakan cendawan M. anisopliae pada media jagung
a
b
Gambar 19. a. Media jagung yang mulai ditumbuhi miselia cendawan M. anisopliae berwarna putih, b. pertumbuhan selanjutnya berwarna hijau dan siap diaplikasikan (Foto: Mul, 2007)
Lampiran 6. Tempat penelitian
Gambar 20. Green house BPT-Bun (Foto: Mul, 2007)
Lampiran 7. Persiapan media sarang penelitian
a
b
Gambar 21. a. Media sarang serbuk gergaji, b. Persiapan sterilisai media (Foto: Mul, 2007)
Lampiran 8. Sterilisasi media sarang
a
b
Gambar 22. a. Sterilisasi media (Foto: Mul, 2007), b. Media yang sudah disteril ditempatkan pada pot penelitian (Foto: Pri, 2007)
Lampiran 9. Lay-out penelitian dan serangga uji (larva O rhinoceros)
a
b
Gambar 23. a. Tata letak penelitian (Lay-out) dengan RAL, b. Larva O. rhinoceros sebagai serangga uji (Foto: Mul, 2007)
Lampiran 10. Aplikasi O. rhinoceros pada media sarang
a
b
Gambar 24. a. Aplikasi larva O. rhinoceros media sarang serbuk gergaji, b. Aplikasi larva O. rhinoceros media sarang pupuk kandang (Foto: Mul, 2007)