IDENTIFICACIÓN DE PROTOZOARIOS EN AGUAS DEL...

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IDENTIFICACIÓN DE PROTOZOARIOS EN AGUAS DEL CEMENTERIO

CAMPOS DE CRISTO (Soacha - Cundinamarca)

UYABAN SANDOVAL ANDREA DEL PILAR

TRABAJO DE GRADO PARA OPTAR AL TITULO DE

LICENCIADA EN BIOLOGÍA

UNIVERSIDAD DISTRITAL FRANCISCO JOSÉ DE CALDAS

FACULTAD DE CIENCIAS Y EDUCACIÓN

PROYECTO CURRICULAR DE LICENCIATURA EN BIOLOGÍA

2018

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IDENTIFICACIÓN DE PROTOZOARIOS EN AGUAS DEL CEMENTERIO

CAMPOS DE CRISTO (Soacha - Cundinamarca)

UYABAN SANDOVAL ANDREA DEL PILAR

TRABAJO DE GRADO PARA OPTAR AL TITULO DE

LICENCIADA EN BIOLOGÍA

GUSTAVO GIRALDO QUINTERO

DIRECTOR

MODALIDAD INVESTIGACION INNOVACION

UNIVERSIDAD DISTRITAL FRANCISCO JOSÉ DE CALDAS

FACULTAD DE CIENCIAS Y EDUCACIÓN

PROYECTO CURRICULAR DE LICENCIATURA EN BIOLOGÍA

2018

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RESUMEN

Se determinaron 208 individuos, 23 géneros, 18 familias y 17 órdenes asociados a los canales

internos y adyacentes al cementerio Campos de Cristo del municipio de Soacha (Cundinamarca-

Colombia). Adicional a lo anterior el estudio presenta una descripción detallada y se destaca su

relación con otros organismos como algas y macroinvertebrados; el grupo predominante fue el de

los ciliados con 63,15%, seguidos por los flagelados euglenoides con 21,06% y las amoebas con

el 15,78%. Se resaltó la diferencia entre los muestreos realizados en días sin lluvia y días lluviosos

encontrando mayor riqueza y abundancia de especies para los primeros; los índices de Simpson y

Shannon indicaron una diversidad media para el área de estudio.

Palabras clave: Protozoos, Cementerio.

ABSTRACT

It determined 208 individuals, 23 genus, 18 families and 17 orders associated with the internal and

adjacent canals to the Campos de Cristo cemetery in the municipality of Soacha (Cundinamarca -

Colombia). In addition to the above, the study presents a detailed description and their relationship

with other organisms as algae and macroinvertebrates is highlighted; the predominant group was

the ciliates with 63.15%, followed by the euglenoid flagellates with 21.06% and the amoebas with

15.78%. The difference between the sampling carried out on days without rain and rainy days was

highlighted, finding greater richness and abundance of species for the former; The Simpson and

Shannon indices indicated a medium diversity for the study area.

Key words: Protozoans, Cemetery.

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CONTENIDO

1. DESCRIPCIÓN DEL PROBLEMA..............................................................................................7

2. PREGUNTA PROBLEMA ...........................................................................................................8

3. JUSTIFICACIÓN .........................................................................................................................8

4. OBJETIVOS .................................................................................................................................9

4.1 General....................................................................................................................................9

4.2 Específicos ...............................................................................................................................9

5. INTRODUCCIÓN ...................................................................................................................... 10

6. MARCO REFERENCIAL .......................................................................................................... 11

6.1 Antecedentes.......................................................................................................................... 11

6.2 Generalidades de los Protozoos.............................................................................................. 13

6.3 Clasificación Taxonómica ...................................................................................................... 14

6.4 Cementerio ............................................................................................................................ 16

7. MARCO POLÍTICO .................................................................................................................. 17

7.1 Resolución Número 5194 De 2010 .......................................................................................... 17

7.2 Plan de Ordenamiento Territorial municipio de Soacha C/marca De 2000............................ 18

7.3 Proyecto de Ley N ° 126 de 2013 ............................................................................................ 18

8. METODOLOGÍA ...................................................................................................................... 18

8.1 Tipo de investigación ............................................................................................................. 18

8.2Área de estudio ....................................................................................................................... 19

8.2.1 Soacha Cundinamarca. .................................................................................................... 19

8.2.2 Cementerio Campos de Cristo........................................................................................... 20

8.3 Fase de campo ....................................................................................................................... 20

8.3.1 Tipo de Muestreo. ............................................................................................................ 20

8.3.2 Tipo de muestra. .............................................................................................................. 21

8.3.3 Tiempo del muestreo. ....................................................................................................... 21

8.3.4 Diario de campo. ............................................................................................................. 21

8.3.5 Recipientes. ..................................................................................................................... 21

8.3.6 Parámetros in situ. ........................................................................................................... 21

8.4 Fase de laboratorio ................................................................................................................ 22

5

8.4.1 Toma de la muestra. ......................................................................................................... 22

8.4.2 Reconocimiento del individuo. .......................................................................................... 22

8.4.3 Diario de laboratorio. ...................................................................................................... 22

8.5 Análisis .................................................................................................................................. 23

9. RESULTADOS Y DISCUSIÓN .................................................................................................. 26

9.1 Diversidad y abundancia de especies ..................................................................................... 26

9.2 Índice de Shannon, Simpson, Fisher y Prueba U Mann-Whitney .......................................... 30

9.3 Descripción de las especies..................................................................................................... 31

9.3.1 Raphidiophrys pallida ...................................................................................................... 31

9.3.2 Saccamoeba..................................................................................................................... 32

9.3.3 Cucurbitella mespiliformis ............................................................................................... 32

9.3.4 Euglena Viridis ................................................................................................................ 33

9.3.5 Petalomonas .................................................................................................................... 33

9.3.6 Phacus longicauda ........................................................................................................... 34

9.3.7 Trachelomona.................................................................................................................. 34

9.3.8 Hastatella radians............................................................................................................ 35

9.3.9 Spirostomun..................................................................................................................... 35

9.3.10 Litonotus ....................................................................................................................... 36

9.3.11 Metopus......................................................................................................................... 37

9.3.12 Paramecium aurelia ....................................................................................................... 37

9.3.13 Stylonichia ..................................................................................................................... 38

9.3.14 Vorticella....................................................................................................................... 38

9.3.15 Stentor........................................................................................................................... 39

9.3.16 Coleps hirtus.................................................................................................................. 40

9.3.17 Dididium nasutum .......................................................................................................... 40

9.3.18 Colpidium colpoda ......................................................................................................... 41

9.3.19 Tachysoma..................................................................................................................... 42

9.4 Consideraciones adicionales .................................................................................................. 42

10. CONCLUSIONES ..................................................................................................................... 44

11. RECOMENDACIONES............................................................................................................ 45

12. REFERENCIAS ........................................................................................................................ 46

13. ANEXOS ................................................................................................................................... 60

6

13.1 Tabla 3 Descripción de los principales filo .............................................................................. 60

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1. DESCRIPCIÓN DEL PROBLEMA

El municipio de Soacha, ubicado entre el valle del Magdalena y los llanos orientales es drenado

por el rio Bogotá, cuenta con cuerpos de agua que según Rodríguez (2017) son relictos de un gran

lago que anegó hasta inicios del Holoceno; sin embargo, la creciente explosión demográfica ha

llegado casi al punto de eliminarlos y se ha obligado a crear fuentes artificiales para el

abastecimiento de agua potable en el municipio, a esto se suman las prácticas culturales como la

creación de cementerios, como es el caso del cementerio Campos de Cristo, un lugar que alberga

gran diversidad de microorganismos que no se encuentran documentados y cuya cercanía con el

embalse del muña y el rio Bogotá también merecen ser estudiadas con detenimiento.

Este, cuenta con canales que por Resolución 5194 (2010) deben evitar las inundaciones y ayudar

a mitigar el impacto por filtración de lixiviados, y aunque en la actualidad esta agua no es usada

para el consumo humano, sus condiciones permiten el desarrollo de redes tróficas cuya base son

los protozoos, una microfauna bioindicadora de la calidad del agua, consumidora de bacterias y

colonizadora de todos los ambientes.

En este sentido, el presente estudio se enfoca en los protozoarios presentes en dicho cementerio,

de estos se tienen pocos registros actualizados para la sabana de Bogotá y ninguno específico para

el municipio de Soacha, adicionalmente las guías con que se cuenta para realizar la identificaciones

de los morfotipos son producto de estudios realizados en América del Norte y Europa, por lo que

también es necesario empezar a utilizar la taxonomía más reciente y unificar los detalles esenciales

para reconocer cada protozoo.

8

2. PREGUNTA PROBLEMA

¿Qué protozoarios están presentes en el agua de los canales internos y adyacentes al

cementerio Campos de Cristo?

3. JUSTIFICACIÓN

En Colombia el estudio de protozoos es muy reducido y en muchos casos no detalla la

morfología de los organismos encontrados. Investigaciones limnologicas como la de Gonzales,

Aguirre & Estrada, (2010) y Torres, (2013) reflejan las interacciones generalmente de

copépodos y rotíferos excluyendo a los protozoos de vida libre; así mismo en biología medica

se enfocan únicamente en los perjuicios económicos y de salud provocados por protozoos

parásitos. También, en lugares como los cementerios, las investigaciones están basadas en la

necesidad de mitigar los riesgos por contaminación, esto dado por análisis de suelos que detallan

los lixiviados que se van filtrando y cultivos de bacterias que reflejan su proliferación y sin

embargo, frente al marco normativo llama la atención los pocos registros que existen respecto

al cuidado de las aguas subterráneas. Por lo anterior surgió la necesidad de determinar los

protozoos que se encuentran en el Cementerio Campos de Cristo, reconocer su existencia y

abundancia en dichos lugares y a la vez ser base para el desarrollo de futuras investigaciones.

9

4. OBJETIVOS

4.1 General

Identificar protozoarios en muestras de agua de los canales internos y adyacentes al cementerio

Campos de Cristo.

4.2 Específicos

Determinar taxonómicamente hasta el nivel máximo posible los individuos recolectados en los

canales.

Describir morfológicamente las especies de protozoos presentes en los canales del cementerio

Campos de Cristo

10

5. INTRODUCCIÓN

Los ecosistemas acuáticos mantienen una gran diversidad de organismos, pero los impactos

como la contaminación inducen a cambios en la estructura de las comunidades, afectando ciclos

de vida, crecimientos y condiciones reproductivas (Bartram y Ballance, 1996). Adicionalmente el

hecho de que se presente una progresiva explosión demográfica hace de los cuerpos de agua sitios

susceptibles de presentar mayores niveles de contaminación, al respecto la Organización Mundial

de la Salud, (2016) estima que el 24% de las enfermedades que ocurren en el mundo están

asociadas con factores ambientales, entre ellos la calidad del agua y las precarias condiciones

higiénicas.

Es por ello que se hace de vital relevancia monitorear el perfecto estado del recurso hídrico sin

importar si este no es destinado al consumo, para ello existen organismos que reflejan rasgos

fisiológicos y morfológicos que los hacen característicos a ciertas condiciones ambientales, según

Herbas et al (2006) pueden ser los protozoos, los cuales presentan una relevancia significativa en

su relación con el recurso hídrico, ya que sus múltiples formas de vida, reproducción y locomoción

los hacen participes de diferentes ambientes lo que genera gran diversidad taxonómica y ecológica

a la vez de una gran versatilidad adaptativa.

Los protozoos denominados en primer lugar como funcionalmente complejos pero en cuyo interior

realizan todas sus actividades metabólicas como digestión, respiración y reproducción son para

muchos autores quienes se encuentran como antecesores de otros organismos, a la vez son la base

de las redes tróficas, su taxonomía aún en la actualidad no se encuentra muy clara sin embargo

este documento basa su clasificación en Brusca y Brusca, (2005), junto con la confirmación en las

bases de datos como NCBI, UniProt, WORMS, y Enciclopedia de la Vida (consultadas en 2018).

11

El área de estudio se delimitó al cementerio Campos de Cristo del municipio de Soacha

Cundinamarca en los canales que se encuentran dentro y adyacentes a dicho cementerio; la colecta

de las muestras de tipo simple se realizó bajo recolecciones únicas en 5 puntos durante los meses

de Febrero, Marzo y Abril de 2018; y los análisis de abundancia y riqueza de especies fueron

realizados a través del programa PAST detallando específicamente las diferencias encontradas

entre colectas en días lluviosos y días sin lluvia, además el presente documento cuenta con una

descripción morfológica de 23 géneros de protozoos.

6. MARCO REFERENCIAL

6.1 Antecedentes

En cuanto a estudios sobre contaminación se resalta a Espinoza (2007) quien detectó coliformes

termotolerables y sustancias nitrogenadas en las aguas subterráneas provenientes de sepulturas

bajo suelo del camposanto “Parques Del Paraíso” (Lurín, Perú), Moya y Ospina (2006)

identificaron microorganismos patógenos como Salmonella spp, Clostridium spp tanto en

estanques como pozos, cañería y alcantarillado en el cementerio Jardines Del Recuerdo (Bogotá.

Colombia); Minota (2009), recomienda métodos de mitigación y prevención para la recuperación

progresiva de los suelos cercanos a los cementerios Jardines Del Recuerdo e Inmaculada (Bogotá,

Colombia) ya que sus valores de pH, nitrógeno, humedad y materia orgánica se perciben alterados.

Por su parte en transmisión de protozoarios parásitos por fuentes de agua Mora et al, (2010)

evaluaron la presencia de protozoarios en aguas superficiales de afluentes del Río Manzanares

(Montes, Venezuela) así como también muestras fecales de los habitantes de poblados aledaños,

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encontrando en las aguas superficiales: Amoeba, Blastocystis sp., Endolimax sp., Chilomastix sp.

y Giardia sp mientras que Blastocystis hominis, Endolimax nana y Entaomeba coli fueron los de

mayor frecuencia en las muestras fecales; Solarte, Peña y Madera, (2006) presentan la necesidad

de desarrollar nuevos indicadores de calidad microbiológica que permitan ofrecer productos

verdaderamente seguros en el agua para uso humano y la importancia de que las entidades a cargo

conozcan los riesgos que generan microrganismos como Cryptosporidium sp y Giardia sp.( Cali,

Colombia.)

En limnología se destaca el estudio realizado por Torres (2013) sobre la dinámica de los lagos

Yahuarcaca y Zapatero con puntos estratégicos de inundación y su conexión con el rio amazonas,

se estudia la relación directa con la disponibilidad de nutrientes, el zooplancton asociado, las

redes tróficas y el flujo de energía que conecta a este ecosistema adicionalmente se presenta el

vínculo entre los parámetros fisicoquímicos como pH, temperatura y oxígeno disuelto y la

transformación que han tenido dichos ecosistemas como lo es la ausencia de copépodos

calanoidos, el empobrecimiento del zooplancton en comparación con el fitoplancton y se halla

como recurso alimenticio el componente microbiano del perifiton y del detrito.

Finalmente en diversidad de protozoos se encuentra para La Habana a Ymas y Prieto (2012)

quienes identificaron 49 especies de protozoos ciliados donde se destaca a Coleps, Colpoda,

Paramecium, Vorticella y Euplotes, en México la publicación realizada por Aladro, Reyes y

Olvera (2009) registró un total de 75 especies de ciliados de entre sésiles y de vida libre

clasificados taxonómicamente en base a Lynn y Small (2000), también, Mayén, Reyes y Aguilar,

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(2014), realizan un estimado de la diversidad de ciliados, su taxonomía y ecología; En Brasil

Quinino (2012) encuentra 65 taxones, con mayor representación los ciliados seguidos por los

sarcodinos y los mastigophora, además realizó distribución geográfica así como un estudio de las

concepciones espontaneas de profesores y alumnos donde se destaca como principal problema el

hecho de que los profesores tienen formaciones académicas distintas, así como la indiferencia al

recurso hídrico y a los bioindicadores. En Perú Guillén (2012) realiza una lista taxonómica de los

protozoos presentes en los Pantanos De Villa; Guevara, Reinoso y Villa (2006) encuentran en

Tolima-Colombia, un registro de individuos dentro de los cuales el 62.33% fueron protozoos, cuya

mayor abundancia estuvo dada por Paramecium sp., Arcella sp. y Dileptus sp. Cabe resaltar

también la importancia de los estudios realizados por Foissner 1979- 2001, sobre nomenclatura y

taxonomía de Protozoos donde se actualizaron nombres que se encontraban como sinónimos y

especies mal caracterizadas.

6.2 Generalidades de los Protozoos

Tradicionalmente se dice que son protistas eucarióticos que se presentan como células aisladas

o en colonias, por su tamaño son predominantemente microscópicos; en 1675 su nombre fue

delimitado como animalucos por Leeuwenhoek, luego Wrisberg en 1764 los define dentro del

grupo de los infusorios, posteriormente Goldfuss en el siglo XVIII introduce el termino protozoo

el cual según Barker, (1948) deriva de las palabras griegas protos y zoon que significa “primero”

y “animal”.

Los protozoos son reconocidos por ser generalmente incoloros y móviles; obtienen su alimento al

ingerir otros organismos o partículas orgánicas, se encuentran en una variedad de habitas de agua

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dulce y salada, gran cantidad de ellos son parásitos de otros animales. (Brock y Madigan, 1993).

En su mayoría son heterótrofos unicelulares y generalmente se reproducen asexualmente por

simple división celular, aunque algunos también tienen fases sexuales (Sánchez, 2000).

6.3 Clasificación Taxonómica

El reino Protista se establece como una unidad en 1993, y se reconoce la existencia de

ancestros, anteriores al desarrollo definitivo de los eucariotas (Cavalier, 1993). Se supone, de

acuerdo a las evidencias paleontológicas, que los protistas, proceden del Precámbrico y

constituyen un conjunto polifilético (Rodríguez et al, 2010).

Desde el punto de vista ecológico Barker, (1948) dividió a los protozoos en los de vida libre y los

que viven sobre o dentro de otros organismos este último ahora conocido como protozoos

parásitos, luego Ville (1980) los expone en la clase Sarcodina representada por los organismos

cuyo movimiento se da por seudópodos, los ciliata que en general presentan una forma definida y

cuya superficie se encuentra cubierta por cilios, los suctoria cuyo estadio juvenil presenta cilios

pero los adultos son sésiles y carecen de cilios, una cuarta clasificación está dada por los Sporozoa

como parásitos y último los flagellata.

Cavalier (1993) presenta la filogenia basada en análisis moleculares que permiten detallar en qué

lugar se encuentran los protozoarios frente a los demás organismos y para el cual distingue a los

protozoarios como un reino del que derivan Euglenozoa y Alveolata de este primero se distinguen

15

Kinetoplasta y Euglenoida del segundo Ciliphora, Dinozoa y Apicomplexa además incluye a

Mycetozoa , Percolozoa , Parabasalia, Entamoebia, Rhizopoda y Choanozoa.

Guillén (2002) recomienda seguir la clasificación dada por Levine et al (1980) donde a través de

microscopía electrónica se aceptan siete filo de Protozoa: Sarcomastigophora, Labrinteromorpha,

Apicomplexa, Microspora, Ascetospora, Myxospora Y Ciliophora.

En orden de antigüedad hasta alcanzar el estadio parasitario como endoparásitos Rodríguez et al

(2010) a partir de su revisión bibliográfica presenta dentro de los protozoos a los flagelados

pertenecientes al phylum Trichononadida que poseen aparato de Golgi asociado a raíces flagelares

en seguida el phylum Schizopyrenida dentro de los que se encuentra las especies de Naegleria,

luego el phylum Entamoebida estos especializados en la supresión de la fase ameboide y flagelada

con la consecuente ruta a Entamoeba histolytica, otros protozoos que posteriormente alcanzaron

la categoría de parásitos fueron los Apicomplexa, por su parte el phylum Ciliophora es considerado

evolutivamente de entre los últimos Sleigh (1989) plantea que proceden de los flagelados y que

posteriormente desarrollaron más organelos locomotores pero este grupo generalmente es

comensal y son muy pocas las especies conocidas como parasitas.

Por otra parte según Fenchel (2013) históricamente los protozoos pueden ser clasificados según

su medio de locomoción en el Phylum Sarcomastigophora representado por el Subphylum

Mastigophora los cuales utilizan flagelos como medio de locomoción y el Subphylum Sarcodina

que posee diferentes tipos de seudópodos, adicionalmente el Phylum Apicomplexa que se

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encuentra incluido en el Reino Chromalveolata, dentro del superphylum Alveolata, y el phylum

Ciliophora el cual posee cilios.

Sin embargo se consideró la clasificación de Brusca y Brusca, (2005) para el desarrollo de este

documento (anexos- tabla 3). Adicionalmente los autores mencionan el filo Microsporida y el filo

Ascetospora como parásitos intracelulares cuya forma de las esporas permite la identificación de

las principales especies y su diferencia radica en que el primero posee filamento polar mientras

que el segundo no, el filo Coanoflagellata (presencia de un collar o corona formado por

microvellosidades recubiertas de moco alrededor de un flagelo), Criptomonádida (con células

biflageladas y superficie celular soportada por placas proteicas su endosimbionte siempre reducido

–nucleomorfo-), Opalina (cilios sin sistema de cinetias) y por último el filo Clorophyta (algas

verdes) cuya taxonomía fue corroborada con la base de datos Algaebase (2018).

6.4 Cementerio

Los cementerios han sido considerados importantes en la historia de la sociedad humana, partiendo

de la relación del hombre con su muerte y sus creencias religiosas se instauran como lugares

necesarios dentro de una cultura y es así como se entiende por cementerio al lugar destinado para

recibir y alojar cadáveres, restos óseos, restos humanos y cenizas; por resolución 5194 de 2010

en Colombia quedan excluidos de la anterior definición los cenizarios y osarios ubicados en

iglesias, capillas y monasterios. Y es en esta misma resolución donde según el artículo 5 el

Cementerio Campos de Cristo es considerado de sepultura bajo el nivel del suelo ya que los

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entierros se realizan en suelo directo y no cuentan con bóvedas ni columnarios. (Imagen 1

panorámica del cementerio Campos de Cristo)

Imagen 1 panorámica del Cementerio Campos de Cristo.

7. MARCO POLÍTICO

7.1 Resolución Número 5194 De 2010

Disposición de residuos líquidos: Todo cementerio dispondrá de sistemas sanitarios adecuados

para la recolección, tratamiento y disposición de aguas residuales los cuales deben dar

cumplimiento a la normatividad vigente en el tema de vertimientos (Art 7).

Saneamiento: Todo cementerio debe contar con un plan de saneamiento dentro del cual se

establece los programas de limpieza y desinfección de áreas, desechos sólidos, residuos peligrosos

y control de vectores (Art 12).

Requisitos básicos: Ubicarse en los sitios destinados por el Plan de Ordenamiento Territorial -

POT-, Esquema de Ordenamiento Territorial –EOT- y Plan Básico de Ordenamiento Territorial –

PBOT del municipio o distrito, en todo caso alejados de industrias o actividades comerciales que

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produzcan olores desagradables o cualquier otro tipo de contaminación. (Art 35) adicionalmente

contar con sistemas de desagüe y muros de protección cuando estén construidos en terrenos

potencialmente inundables. (Art 35)

7.2 Plan de Ordenamiento Territorial municipio de Soacha C/marca De 2000

La localización de los cementerios será en el área definida como rural, sobre suelos clasificados

como de uso institucional tipo 3, sin riesgos de carácter sanitario para el bienestar de la comunidad,

adicionalmente se exige una red perimetral de colectores de alcantarillado.

7.3 Proyecto de Ley N ° 126 de 2013

“Mediante el cual se fortalecen las medidas para la protección de las aguas subterráneas” agrega

al Numeral 9°, del Artículo 31 de la Ley 99 de 1993, dentro de las funciones de las Corporaciones

Autónomas Regionales, la exigencia de licencia ambiental para la construcción y operación de

cementerios. Sin embargo hasta la fecha aunque se ha expuesto en constantes plenarias aún no ha

sido reglamentada.

8. METODOLOGÍA

8.1 Tipo de investigación

Esta investigación es enmarcada como comparativa-descriptiva y desarrollada bajo un enfoque

cualitativo y cuantitativo.

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8.2Área de estudio

8.2.1 Soacha Cundinamarca.

El municipio de Soacha se encuentra colindando al norte con Bojacá y Mosquera, al sur con

Sibate y Pasca, al este con las localidades de Bosa y Ciudad Bolivar (Bogotá) y al Oeste con

Granada y San Antonio del Tequendama, sus coordenadas geográficas están dadas a 4°35′N,

74°13′O ubicadas en el área central del país, sobre la Cordillera Oriental.

La temperatura promedio es de 12°C y su altitud media de 2565 msnm. (Sitio oficial municipio de

Soacha, consultado en febrero de 2018). En cuanto a su precipitación media anual se reporta para

2016, 698 mm, con una distribución de lluvias en dos periodos definidos, abril-junio y octubre–

diciembre. Se presenta una época con heladas en la sabana a finales de diciembre y comienzos de

enero. (IDEAM, 2018).

El suelo de este municipio regido en sus orígenes por los chibchas estaba destinado al cultivo

agrario, hoy en día ocupa el segundo lugar como municipio más poblado del departamento; en él

se encuentran ecosistemas estratégicos como lo son: Parque Nacional Natural Sumapaz al sur del

municipio, Salto del Tequendama, entrada a la reserva natural Parque Chicaque, al occidente el

humedal Tibanica, y áreas municipales protegidas declaradas por la CAR como los humedales de

Neuta, Tierrablanca y el cerro Manjui. (CAR, 2018).

Dichos ecosistemas están viéndose afectados por la ampliación de la frontera agrícola que lejos de

conservar los orígenes ancestrales y el cuidado de la tierra ahora son contaminados por

agrotóxicos, adicionalmente la explosión demográfica minimizó el cauce de rio Suacha, los

residuos sólidos del rio Bogotá y los malos olores que genera la represa del Muña también son

parte de las problemáticas ambientales que afronta la población del municipio.

20

8.2.2 Cementerio Campos de Cristo.

El cementerio Campos de Cristo del municipio de Soacha Cundinamarca, se encuentra ubicado

en la Autopista Sur sentido sur- norte Km 14 Soacha. (Imagen 2)

Zonificación del Cementerio.

Canales que se encuentran dentro del cementerio. Presentan pavimentación en concreto y

ladrillo, su caudal es lento, se encuentran atravesando transversalmente el cementerio inician en la

parte norte del cementerio y desembocan en el sur del cementerio dentro de los canales que se

encuentran en la periferia (Imagen 3C-F, 4A-B)

Canales que se encuentran adyacentes al cementerio. Se encuentran en la periferia del

cementerio al costado opuesto a la autopista Sur y al norte del cementerio, se limitan a tierra y no

presentan ningún tipo de arreglo (tubería ó pavimento) están muy cercanas a pastizales, existe

filtración directa a la tierra, su cauce es lento y presentan unión con los canales internos en la parte

norte. (Imagen 3A-B, 4C-D)

8.3 Fase de campo

8.3.1 Tipo de Muestreo.

Se elige un muestreo manual ya que los canales del cementerio tienen fácil acceso además que

se pueden observar los cambios en las características del agua en cuanto a sustancias flotantes,

color, olor, aumento o disminución de caudales, etc. (IDEAM, 2003). En muestras superficia les

la recolección se realizó introduciendo el frasco colector bajo la superficie siempre a la misma

profundidad (INVEMAR, 2003).

21

8.3.2 Tipo de muestra.

La muestra será simple o puntual, tomada en el sitio especifico una sola vez, asumiendo que

guarda la representatividad suficiente, los individuos serán escogidos al azar simple.

8.3.3 Tiempo del muestreo.

Las muestras serán recolectadas durante los meses de marzo, abril y mayo de 2018 bajo

recolecciones únicas en una hora específica para cada punto a partir de las 11:50 am.

8.3.4 Diario de campo.

Los datos obtenidos durante cada muestreo fueron consignados en el diario de campo donde se

indicó: Fecha de colecta, Hora, Punto de muestreo, Número de Frasco, pH, Temperatura, Datos

adicionales.

8.3.5 Recipientes.

Siendo pertinente que las muestras lleguen al laboratorio en excelente estado los frascos de

vidrio de capacidad 50 ml fueron esterilizados como lo indican los parámetros del IDEAM (2003)

y se mantuvieron completamente cerrados hasta el momento de la toma de la muestra, una vez

tomada la muestra se llevaron al laboratorio a una temperatura de 4°C.

8.3.6 Parámetros in situ.

La temperatura fue tomada directamente de la fuente de agua a 25 cm por debajo de la

superficie, con un termómetro digital que permite obtener el resultado en °C, el pH con tirillas y 3

repeticiones en cada sitio.

22

8.4 Fase de laboratorio

8.4.1 Toma de la muestra.

Debido a la escasez de individuos en los registros de premuestreo se utilizó como primera

técnica contar cada muestra del frasco con un barrido de lámina hasta llegar al número 100 del

individuo más común, una vez se llegó a este número se procedió con el siguiente frasco; pero con

la excesiva cantidad de tiempo utilizando esta metodología se propone: Tomar una alícuota de 10

gotas o 20 ml de la muestra de agua de cada frasco y realizar el conteo de cada género o especie

únicamente sobre esta cantidad.

8.4.2 Reconocimiento del individuo.

Para la caracterización del morfotipo se contó con un microscopio y la toma de videos que

permitieron detallar los movimientos e interacciones entre organismos, estos datos fueron

apuntados en el diario de laboratorio posteriormente se identificó en base a La Guía Ilustrada De

Protozoos de Streble et al, (1987), Foissner y Berger (1996) primera y segunda edición de la

sociedad de protozoologos (2000) y catálogos virtuales como Biodiversidad virtual (Guillén 2011-

2018); en cuanto a la taxonomía se corroboraron bases de datos como Algaebase, NCBI, UniProt,

WORMS, y Enciclopedia de la Vida.

8.4.3 Diario de laboratorio.

En el diario de laboratorio fueron registrados datos como: Fecha y hora de colecta, fecha y

hora de identificación, número de Frasco, punto de muestreo, número de fotografía, características

relevantes, identificación posible e identificación confirmada.

23

8.5 Análisis

Se realizó una matriz que permitió detallar el nombre de los organismos encontrados, su

ausencia y presencia en cada uno de los puntos, así como su abundancia, posteriormente se plasmó

el análisis de abundancia de Simpson, Shannon y la riqueza de Fisher, adicionalmente se encuentra

la descripción de cada género con aportes de autores y notas de lo observado en el laboratorio.

Imagen 2 Cementerio Campos de Cristo, Ubicación de los puntos de

colecta a nivel global.

1

2

3

4

5

24

A

Imagen 3, A punto de colecta n1 en día sin lluvia, B Punto de colecta n1en día lluvioso, C punto de colecta n2 en día sin lluvia, D punto de colecta n2 día lluvioso, estos son canales adyacentes al Cementerio permiten la entrada de agua a los canales internos, E punto de colecta n3 en día sin lluvia, F Punto de colecta n3 en

día lluvioso este es un canal interno.

B

D C

E F

25

A

C

B

D

Imagen 4, A Punto de colecta n4 día sin lluvia, B punto de colecta n4 día lluvioso, esta es una zona de

intercambio entre canal interno y adyacente al cementerio, C Punto de colecta n5 en día sin lluvia, D

Punto de colecta n5 en día lluvioso.

26

9. RESULTADOS Y DISCUSIÓN

9.1 Diversidad y abundancia de especies

El total de individuos determinados fue 208, se reportan para el área de estudio 23 géneros, 18

familias y 17 órdenes; el grupo predominante fueron los ciliados con los 63,15% seguidos por los

flagelados euglenoides con 21,06% y las amoebas con el 15,78%.

El grafico 1 presenta en detalle la comparación del número de especies encontradas en cada

punto de colecta durante los seis muestreos evidenciando que el muestreo 1, 2 y 3 (12 de Feb, 26

de Feb y 12 de Mar) presentan mayor número de especies, lo cual en primer lugar está relacionado

con que estos días mantienen una variable común: sin lluvia; Cabrera et al (2010) manifiestan que

la lluvia diluye elementos importantes en un ambiente acuático, lo que hace a los organismos más

susceptibles, también para el caso de protozoos parásitos Arcay y Buzual, (1993) resaltan su

disminución en esta época; otros factores significativos que pueden modular el tamaño de las

poblaciones además de la lluvia son la temperatura y la luminosidad (Calderón, 2004)

Por su parte cabe resaltar en los muestreos 4, 5 y 6 (26 de Mar, 2 de Abr y 23 de Abr) al punto

de colecta n1 en el cual se presentó surgimiento de Trachelomonas que pudieron ser arrastradas

por la lluvia o resurgir de procesos tecados y al punto n3 como el menos representativo pues al

encontrarse en la parte central del cementerio no tiene una conexión directa con los puntos de

colecta adyacentes, mantiene mayor intervención antrópica y posiblemente lo encontrado el 1 de

abril se debió al arrastre de las lluvias.

27

La Vorticella encontrada en el muestreo 5 en forma de telotroca (larva nadadora) confirma

también que los días con lluvia son para los protozoos del área de estudio contraproducentes, ya

que cuando las condiciones no son aptas los ciliados sésiles liberan estas larvas con la capacidad

de anclarse en lugares más adecuados (Isac et al, 2000). También, algunas de las Euglenas

encontradas en los muestreos 4, 5 y 6 presentaban deformaciones.

Grafico 1 comparativo de la cantidad de especies encontradas en cada punto de colecta n1-n5 durante los seis muestreos correspondientes a los meses de Febrero, Marzo y Abril.

El grafico 2 detalla el total de individuos de cada especie en cada punto de colecta. Las especies

más abundantes respectivamente son: Paramecium aurelia para el muestreo 1, Litonotus lamella

para el muestreo 2, y Trachelomona volvocina para los demás muestreos; con excepción del

muestreo 6 Paramecium aurelia y Euglena viridis se encuentran presentes en todos los muestreos,

lo que probablemente se deba a su vida libre y a la abundancia de materia orgánica en

descomposición, también algunos Paramecium presentan mejoras en su ciclo de vida al asociarse

0 0 0

2

3

11 1 1

2

1 1

2

1

0 0

1 1

3

4

2 2

1 1

5

4

5

2 2 2

1 2 D E F E B 2 0 1 8 2 6 D E F E B 2 0 1 8 1 2 D E M A R 2 0 1 8 2 6 D E M A R 2 0 1 8 2 D E A B R 2 0 1 8 2 3 D E A B R I L 2 0 1 8

Nú

mero

De S

p.

Muestreos

Co mpa ra c ió n Ge ne ra l D e l N úme ro D e Es pe c ies En Ca da

Punto D e Co le c ta D urante Los S e is M ue streos

Punto de colecta n1 Punto de colecta n2 Punto de colecta n3 Punto de colecta n4 Punto de colecta n5

28

con algunas algas verdes, según Guillén, (2010) estas le proporcionan azucares y proteínas ,

Euglena por su parte posee grandes ventajas al ser fotosintética.

0

1

2

3

4

5

6

7

n1 n2 n3 n4 n5

Núm

ero

de

In

d

Punto de Colecta

Abundancia en el muestreo 1

12 Feb 2018

RaphidiophryspallidaEuglena viridis

Paramecium aurelia

Spirostomun minus

SpirostomunambiguumMetopus

Vorticella campanula

0

2

4

6

n1 n2 n3 n4 n5

Núm

ero

de

Ind

Punto de Colecta


26 de Feb 2018

Saccamoeba

ParameciumaureliaColeps hirtus

StylonichiapustulataDidinium nasutum

Euglena viridis

StylonichiamytilusLitonotus lamella

0

2

4

6

n1 n2 n3 n4 n5

Núm

ero

de

Ind

Punto de Colecta


12 de Mar 2018TrachelomonavolvocinaCucurbitellamespilimorfisSpirostomun minus

Tachysoma

Hastatella radians

Litonotus cygnus

Colpidium colpoda

Euglena viridis

0

10

20

30

n1 n2 n3 n4 n5

Núm

ero

de I

nd

Punto de Colecta


26 de Mar 2018

Trachelomona volvocina

Phacus longicauda

Paramecium aurelia

Cucurbitella mespilimorfis

Euglena viridis

Petalomonas

Stentor coeruleus

Stentor polymorphus

0

50

n1 n2 n3 n4 n5

Núm

ero

de

Ind

Punto de Colecta


2 de Abr 2018

TrachelomonavolvocinaPhacuslongicaudaPetalomonas

ParameciumaureliaEuglena viridis

Coleps hirtus0

10

20

30

n1 n2 n3 n4 n5

Núm

ero

de I

nd

Punto de Colecta


23 de Abr 2018

Trachelomonavolvocina

Cucurbitellamespilimorfis

Stentor coeruleus

Coleps hirtus

Grafico 2 Presenta en detalle la abundancia de las especies encontradas en cada muestreo

29

Con referencia a los puntos de colecta se resalta al punto 4 y 5 como los puntos con mayor

representación; estos, aunque son diferentes estructuralmente se encuentran estrechamente unidos,

en ellos se identificaron algas como: Chlorella sp (Beyerinck,1890), Closterium sp (Nitzsch ex

Ralfs, 1848), Navícula sp (Bory, 1822), Nitzschia sp (Hassall, 1845), Scenedesmus sp (Meyen,

1829), Spirogyra sp (Link, 1820) y Synedra sp (Ehrenberg, 1830). También se hallaron algunos

macroinvertebrados acuáticos como: Alona sp (Baird, 1843), Brachionus angularis (Gosse, 1851),

Lepadella sp (Vincent, 1826), Notommata sp (Ehrenberg, 1830), Physa sp (Draparnaud, 1801)

Tubifex sp (Lamarck, 1816), en gran proporción copépodos, anélido cf. Stylaria, larvas de

quironómidos y ácaros. Lo que denota una gran interacción de redes tróficas en estos 2 puntos de

colecta; donde los organismos zooplactonicos aumentan o disminuyen la biomasa y por

consiguiente hay alteraciones de Oxígeno, pH y nutrientes, también modifican el ensamblaje

fitoplanctónico al preferir especies fáciles de consumir como Nitzschia (Roldán y Ramírez, 2008);

así mismo rotíferos, cladóceros y copepodos se encuentran en constante fluctuación.

Para el caso específico de copépodos Suárez et al, (2005) proponen a Macrocyclops albidus

como un controlador eficaz de larvas de dípteros, Daphnia por su parte suele consumir en gran

proporción a Trachelomona (Eskinazi et al, 2002). Además Se observó abundante consumo de

Paramecium por parte de los rotíferos; Barrios et al (2013) exponen en su estudio a Paramecium

y rotíferos como controladores de parásitos en caracoles, los cuales en un futuro pueden ser

utilizados como controladores biológicos para la remoción de parásitos en el agua.

Otra razón que pudo tener influencia es la proliferación de Lemna minor que solo se observó en

abundancia durante los días sin lluvia; esta puede proporcionar nutrientes y refugio, además es

eficaz en la remoción de contaminantes tóxicos, retención de cromo, nitrógeno y fosfatos

30

(Malaver, 2013), también, según, Fernández et al (2016) su sistema radicular crea bio-peliculas

cuya área superficial permite el desarrollo de algas, bacterias, protozoos y aunque se requiere de

mayores estudios se cree que no limitaron la difusión de oxígeno ni el paso de la luz.

9.2 Índice de Shannon, Simpson, Fisher y Prueba U Mann-Whitney

El índice de Shannon (Tabla 1) indica alta equidad para los muestreos en días sin lluvia y por el

contrario para los lluviosos; la misma tendencia es observada en el índice de Simpson y la riqueza

de especies reflejada en el índice de Fisher. Se detalla en general que el área de estudio presenta

una diversidad media.

Índice

Muestreos

1,2,3 días

sin lluvia

Muestreos

4,5,6 días

lluviosos

Taxa_S 21 11

Individuals 76 132

Dominance_D 0,07825 0,6035

Simpson_1-D 0,9217 0,3965

Shannon_H 2,781 1,028

Fisher_alpha 9,597 2,853

Tabla 1 compilación de los diferentes índices de diversidad y abundancia calculados mediante el

programa PAST.

Así mismo el análisis estadístico (tabla 2) realizado mediante la prueba U Mann-Whitney

reflejó una varianza distinta entre los muestreos realizados en días lluviosos y días sin lluvia

Variable Valor

“U” calculado 359

Significancia 0.05

Valor de p 0.01

Tabla 2 resultados obtenidos test de Mann- Whitney

31

9.3 Descripción de las especies

Las siguientes especies habitan aguas estancadas con pH entre 6 y 7 y temperaturas entre 8°C y

12°C, asociadas en su gran mayoría con materia orgánica en descomposición, algas y plantas

acuáticas.

9.3.1 Raphidiophrys pallida

Filo: Heliozoa

Clase: Centroheliozoa

Orden: Centrohelida

Familia: Raphidiophryidae

Género: Raphidiophrys

Especie: Raphidiophys pallida (Cash, 1867)

El género Raphidiophys está representado por las comúnmente llamadas amebas sol contiene una

envoltura mucilaginosa con espículas que recubren los axopodios; autores como Khan et al, (2006)

lo proponen como un bioindicador eficaz para el estudio de intoxicación celular por metales.

Roksabro, (1931) menciona que las espículas de Raphidiophrys pallida son lenticulares y curvas;

para Guillén, (2011) se distingue al presentar un núcleo excéntrico y unos axopodios muy largos ;

en concordancia con Streble et al, (1987) se encontró en aguas tranquilas y solitaria y, contrario a

lo reportado para Perú como especie ubicua (Guillén, 2002), esta fue observada en tan solo un

punto de colecta y de muestreo, en día sin lluvia, con cercanía a Spirogyra y materia orgánica en

descomposición.

32

9.3.2 Saccamoeba

Filo: Amoebozoa

Clase: Tubulinea

Orden: Euamoebida

Familia: Hartmannellidae

Género: Saccamoeba (Frenzel, 1897)

Saccamoeba presenta un único núcleo central, su movimiento es lento y por expansión de su

citoplasma, Page, (1976) menciona que Saccamoeba es a veces policordal cuando cambia de

dirección, para Maciver, (2002) a nivel morfológico es muy parecida a Trichamoeba

especialmente por su segmento terminal (Uroid).

9.3.3 Cucurbitella mespiliformis

Filo: Sarcodina

Clase: Lobosa

Orden: Arcellinida

Familia: Difflugiidae

Género: Cucurbitella

Especie: Cucurbitella mespiliformis (Penard, 1902)

Es una ameba testada que presenta una forma regular-ovoide, núcleo grande vesicular, collar con

3-5 lóbulos y un único diafragma circular (Siemensma, 2016). Se encontró sobre Lemna minor

en aparente simbiosis con algas verdes Gavel et al (2018) consideran el género como indicador

de eutrofización.

33

9.3.4 Euglena Viridis

Filo: Euglenozoa

Clase: Euglenophyceae

Orden: Euglenida

Familia: Euglenaceae

Género: Euglena

Especie: Euglena Viridis (Ehrenberg, 1830)

Mancha ocular visible, extremo rombo donde se inserta el flagelo y el otro puntiagudo, lo que crea

una forma celular fusiforme; posee cloroplastos encintados (Cruz, 2012), organismo cubierto por

una película fina y presenta estriaciones oblicuas (Guillén, 2002) su nutrición se da tanto por

asimilación heterótrofa como por fotosíntesis o por los dos (Colman y Balkos, 2005) el

movimiento es lento y se generaliza como movimiento Euglenoide (Sánchez et al., 2004).

9.3.5 Petalomonas

Filo: Euglenozoa


Orden: Petalomonadida

Familia: Scytomonadidae

Género: Petalomonas (Stein, 1859)

Es un flagelado euglénido carente de plastios (Kim et al, 2010), presenta forma fusiforme, con

quillas pronunciadas (Guiry, 2018) y un flagelo largo (sobrepasa la longitud del cuerpo), recto e

34

incoloro; para Guillén (2011) es rígido, presenta reservas de paramilo y una cubierta transparente,

su movimiento se da a través del extremo terminal del flagelo. Se encontró en presencia de

abundante materia orgánica en descomposición.

9.3.6 Phacus longicauda

Filo: Euglenozoa


Orden: Euglenida

Familia: Phacaceae

Género: Phacus

Especie: Phacus longicauda (Dujardin, 1841)

Considerado como Euglenoide fotosintético (kim y Shin, 2014) es aplanado, estriaciones poco

visibles y una mancha ocular grande. Streble et al (1987) lo describen como ligeramente retorcido,

con una espina terminal de longitud igual a la del cuerpo, numerosos cloroplastos y flagelo con

banda espiralada de pelos; su movimiento se da por rotación.

9.3.7 Trachelomona

Filo: Euglenozoa


Orden: Euglenida

Familia: Euglenaceae

Género: Trachelomona

35

Especie: Trachelomona volvocina (Ehrenberg, 1834)

Trachelomona es una euglenofícea loricada (De La Rosa y Sánchez, 1991) T. volvocina muestra

una forma esférica, lorica delgada y cristalina, Según Streble et al, (1987) está impregnada de

magnesio y con el tiempo adquiere un color pardo oscuro, se evidencia una mancha ocular central

con númerosos plastos internos; otros ejemplares observados presentan espinas diferenciadas y

cortas probablemente correspondan a T. Hispida. Registrada como indicador de agua moderada a

potentemente contaminada (Guiry, 2018)

9.3.8 Hastatella radians

Filo: Ciliophora

Clase Oligohymenophora

Orden Peritrichida

Familia: Hastatellidae

Género: Hastatella

Especie: Hastatella radians (Erlanger, 1890)

Forma invertida como una campana, con dos coronas de espinas (Strable et al, 1987), 2 a 4 anillos

largos, cilios en el peristoma en sentido antihorario alrededor de la región apical, (Colin et al,

1983) nada en círculos y lentamente (Kofold, 1673)

9.3.9 Spirostomun

Filo: Ciliophora

Clase: Heterotrichea

36

Familia: Spirostomidae

Género: Spirostomum

Especie: Spirostomum ambiguum (Ehrenberg, 1833)

Spirostomum minus (Roux, 1901)

El género Spirostomum es alargado y contráctil, cilios cortos y dispuestos longitudinalmente y un

macronúcleo en forma de collar, S. ambiguum presenta un surco peristomatico que suele llegar

más allá de la mitad del cuerpo, por el contrario para el surco de S. minus (Streble et al, 1987). Se

encontraron en aguas con sedimentos en descomposición y olores putrefactos y en concordancia

con Fernándes y da Silva (2013) presenta un movimiento lento.

9.3.10 Litonotus

Filo: Ciliophora

Clase: Litostomatea

Orden: pleurostomatida

Familia: Litonotidae

Género: Litonotus

Especie: Litonotus cygnus (Borror, 1972)

Litonotus lamella (Müller, 1773)

El género presenta una forma aplananda lateralmente, dos macronúcleos esféricos y cilios muy

vistosos solo sobre lado ventral (Guillén 2011), L. cygnus es lanceolado, tronco y cuello

37

extensibles y de mayor tamaño que el cuerpo, (Foissner et al., 1995) campo oral rodeada de cilios

largos, por el contrario L. lamella es ligeramente alargado con su cuello levemente curvado y

campo oral rodeada de cilios gruesos. Se les observa con desplazamiento lento y alimentándose de

pequeñas algas.

9.3.11 Metopus

Filo: Ciliophora

Orden: Armophorida

Familia: Metopidae

Género: Metopus (Claparède & Lachmann, 1858)

Tiene una leve curvatura, cilios cortos y densos, según Fenchel et al, (1995) presenta cilios de

mayor longitud en el campo oral y en el extremo posterior. Su movimiento es lento y en espiral,

se encontró en abundancia de plantas en descomposición.

9.3.12 Paramecium aurelia

Filo: Ciliophora

Clase: Oligohymenophorea

Orden: Peniculida

Familia: Parameciidae

Género: Paramecium

Especie: Paramecium. aurelia (Ehrenberg, 1833)

38

Forma elíptica, cilios abundantes en todo el organismo, con una visible depresión comúnmente

llamada surco oral, el ectoplasma se encuentra cubierto de triococistos (Wegener, 1963) que le

sirven como defensa, sus movimientos son rápidos.

9.3.13 Stylonichia

Filo: Ciliophora

Clase: Spirotrichea

Orden: Sporadotrichida

Familia: Oxytrichidae

Género: Stylonychia

Especie: Stylonychia mytilus (Ehrenberg, 1838)

Stylonychia pustulata (Müller, 1786)

Presenta una forma oval, cirros en el extremo posterior y dos membranas ondulantes en el lado

oral, S. mytilus tiene un contorno más ancho en uno de los extremos y sobresalen tres cirros grandes

en la parte posterior y S. pustulata presenta una forma más ancha y las hileras de los cirros nunca

se juntan, según Berger (2012) presenta resistencia a salinidad alta. Se encontró en detrito.

9.3.14 Vorticella

Filo: Ciliophora


Orden: Sessilida

39

Familia: Vorticellidae

Género: Vorticella

Especie: Vorticella campánula (Ehrenberg, 1838)

Vorticella convallaria (Levine, 1959)

Forma de campana invertida, extremo posterior angosto y con un tallo largo (pedúnculo) contráctil

con el que se aferra al sustrato (observada mayormente sobre Spirogyra), citostoma con abundantes

cilios, no colonial, V. campánula presenta un pedúnculo fino y un reborde peristomatico robusto

al contrario de V. convallaria que es grueso y que según Streble et al, (1987) es ligeramente

estrecha en la región del citostoma. . En la telotroca se puede observar una forma de capsula

cilíndrica con cilios en la parte aboral y una pequeña pero sobresaliente protuberancia.

9.3.15 Stentor

Filo: Ciliophora

Clase: Heterotrichea

Orden: Heterotrichida

Familia: Stentoridae

Género: Stentor

Especie: Stentor coeruleus (Ehrenberg, 1830)

Stentor polymorphus (Ehrenberg, 1830)

40

El género se distingue porque el campo peristomatico posee unas membranelas que forman un

círculo (Streble et al, 1987) los dos ejemplares observados no construyen una lorica y son

contráctiles. S. coeruleus presenta un núcleo celular en forma de collar; por su parte S.

polymorphus tiene gránulos corticales incoloros, un macronúcleo moniliforme con 6-12 nódulos,

y una bolsa oral conspicua (Fernándes et al, 2014).

9.3.16 Coleps hirtus

Filo: Ciliophora

Clase: Prostomatea

Orden: Prorodontida

Familia: Colepidae

Género: Coleps

Especie: Coleps hirtus (Nitzsch, 1827)

Cuerpo en forma de barril, con abundancia de cilios, y placas del ectoplasma ornamentadas,

macronúcleo globular y central (Warren, 2015), extremo posterior con un cilio alargado y la

abertura oral con cilios finos y largos, su movimiento es ondulatorio y rápido.

9.3.17 Dididium nasutum

Filo: Ciliophora

Clase: Litostomatea

Orden: Haptorida

41

Familia: Didiniidae

Género: Didinium

Especie: Didinium nasutum (Müller, 1773)

Forma de barril, el extremo posterior curvo y una trompa en forma de cono, posee dos coronas de

cilios, su macronúcleo es alargado y curvo (Leonova et al, 2006). Se le asocia generalmente como

predador exclusivo de Paramecium sin embargo Berger, (1979) y Quaíni, (2011) mencionan a

otros ciliados.

9.3.18 Colpidium colpoda

Filo: Ciliophora


Orden: Himenostomatida

Familia: Tetrahymenidae

Género: Colpidium

Especie: Colpidium colpoda (Losana, 1829)

Contorno alargado, cilios abundantes en el extremo posterior, el citostoma se sitúa a un costado,

se encontró en aguas con abundante materia orgánica en descomposición y bacterias de las que se

alimenta, generalmente se asocian como bioindicador de hábitats muy contaminados (Shahwani y

Horan, 1991).

42

9.3.19 Tachysoma

Filo: Ciliophora

Clase: Spirotrichea

Familia: Oxytrichidae

Género: Tachysoma (Stokes, 1887)

Cuerpo cilíndrico, con numerosos cirros largos en el extremo redondeado anterior y posterior, su

contorno según Guillén (2011) se encuentra rodeado de cerdas rígidas que posiblemente le sirven

para estabilizarse, su cara ventral es plana y la dorsal convexa (Aladro y Martínez, 1990)

9.4 Consideraciones adicionales

Se destacaron los siguientes estudios taxonómicos que identifican familias y géneros re-

descritos:

Burki et al (2009) menciona a Centrohelida relacionado con el clado SAR que comprende

stramenopilos, alveolatas y Rhizaria. Por su parte Zlatogursky, (2016) menciona a la familia

Raphidiophryidae como polifilética y se insiste en el estudio de la evolución de las cubiertas

celulares como ancestralmente orgánicas y como motivo de la ramificación de Acanthocystis y

Polyplacocystis. Según Amaral et al, (2000) se debería disolver la familia Hartmannellidae ya que

por algunos de sus SSUrDNA el género Hartmannella parece estar más relacionado con

Acanthamoeba. También aunque no se reportó para este estudio es importante mencionar a

Dileptus anser nombrado en Streble et al (1987 pg. 238) frecuentemente confundido con litonotus

y al que se le debe brindar especial cuidado ya que este presenta grandes cambios y confusiones

43

taxonómicas, Vďačný et al (2011) proponen su trasladado a otros géneros, como

Pseudomonilicaryon y Rimaleptus; luego Berger y Foissner (2014), presentan a Dileptus

margaritifer (Ehrenberg, 1833) (Dujardin, 1841), re-descrita por Foissner et al. (1995), como la

especie tipo de Dileptus que originalmente fue mal identificado.

44

10. CONCLUSIONES

Los canales externos del cementerio Campos de Cristo presentaron mayor riqueza de especies en

comparación con los internos, sin embargo se percibe que la variable de precipitación es la que

influye directamente en la presencia de los protozoos por lo que estos son más abundantes durante

los muestreos en días sin lluvia.

En los puntos de colecta número 4 y 5 se encontraron organismos que mostraron las redes tróficas

existentes en los canales, así mismo su riqueza fue más alta lo que probablemente se deba a la

conexión directa con los lugares externos al cementerio.

Frente a los estudios de riqueza de protozoos la metodología presente en este documento es

apropiada ya que teniendo en cuenta su fragilidad permite observar mayor número de individuos

en menor tiempo.

45

11. RECOMENDACIONES

Se sugiere incrementar los esfuerzos de colecta así como realizar el análisis de parámetros

fisicoquímicos, en cuanto a los canales es importante determinar si estos tienen conexión directa

con el rio Bogotá.

Es importante aumentar los estudios sobre protozoos de vida libre así como unificar la taxonomía

de tal manera que se evite su re-identificación.

46

12. REFERENCIAS

Aladro y Martínez, 1990, Manual de ciliados psamofilos marinos y salobres de México, UNAM,

Disponible en

https://books.google.com.co/books?id=AlrLZx6UHvUC&pg=PA139&dq=tachysoma&hl=es&sa

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Departamento de Biología Comparada, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Autónoma de

México, Rev Diversidad biológica e inventarios, pag 61, disponible en

http://www.repsa.unam.mx/documentos/Aladro-Lubel_et_al_2009_protozoos.pdf

Amaral, Nerad, TA, O'Kelly, CJ, Peglar, MT, Gillevet, PM, Silberman, JD y Sogin, ML, 2000,

Una reevaluación molecular de las amebas Leptomyxid. Protista 151, 275-282.

Arcay y Bruzual, 1993, Cryptosporidium en Ríos de Venezuela, encuesta epidemiológica de una

población Humana y fauna en convivencia. Parasitol, disponible en

http://pesquisa.bvsalud.org/portal/resource/pt/lil-130710?lang=fr

Barker, R. J. (1948) The status of the Protozoa. Nature 161:548-551.

Barrios M, Barrios E, Marquez M, Hernández R, Quintana J, Ojeda O, (2013), Efecto de los

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47

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Chapman & Hall, London. 383 pp. http://www.sciepub.com/reference/47931

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13. ANEXOS

13.1 Tabla 3 Descripción de los principales filo

Tabla 3 detalla las principales características de los filos adaptados de Brusca y Brusca (2005), resalta locomoción, reproducción,

organelos especializados y sustancias de reserva

Filo

Flagelos

diferentes

(número)

Extensión

del

citoplasma

Cilios Axopodios Reticulopodios Deslizamiento AusentesCrestas

discoidales

Crestas

tubulares

Crestas

vesicularesVesicular Múltiples Hiperpoliploide Diploide

Permanentemente

condensado

Pleuromitosis

intranuclear

cerrada sin

centriolos

Pleuromitosis

extranuclear

cerrada sin

centriolos

Pleuromitosis

semiabierta

Ortomitosis

intranuclear

cerrada

Ortomitosis

abierta sin

centriolos

Si presenta(sin

detalle)No presenta

Fisíon

longitudinal

binaria

(simetrogénica)

Conjugación Gametica Mitosis MeiosisAutogami

a

Si

presenta

(sin

detalle)

Fisíon

longitudinal

binaria

(simetrogénica)

Fisión

binaria

transversal

Fisión

binaria

Fisión binaria

simetrogénica

Fisión

múltiple

Fisión

endopoligeniaGemación

Clorofila

a

Clorofila

b

clorofila

c1

Clorofila

c2

Ausente Almidón Aceite Laminaria Glucógeno AmilopectinaAusen

tes

Presen

tes

Euglenida x (2) x x x x x x x x x

Kinetoplastida x (2) x x (1) x x x x

Ciliophora x x x (macronucleo)

x

(micronú

cleo)

x

(micronúcleo) x x x x

Apicomplexa x x x (1) x x x x x x x

Dinoflagelata x (2) x x x x x x x x x x

Stramenopila x (2) x (cortas) x (1) x x x x x x x x x

Rizopoda x x x (1) x x x x x

Actinopoda x x x

x (exc

heliozoos)

x

(heliozoos

) x x x x

Granuloreticulosa x x x (1) x x x x x x

Diplomonadida x (8) x x (2)

x (sin

centriolos) x x x

Parabasilida x (4- miles) x x x x x x x

Mitocondría Locomoción Reservaplastos ó

plastidos División nuclearNúcleo Formas fotosintéticas Reproducción AsexualReproducción Sexual

IDENTIFICACIÓN DE PROTOZOARIOS EN AGUAS DEL...

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