David Saldarriaga

Experiencias exitosas en el desarrollo de especies acuícolas:

Langostino

David E. Saldarriaga YacilaIngeniero Pesquero, Magíster en Acuicultura

Docente de la Universidad Nacional de Tumbes, Perú

EXPOACUÍCOLA 2009, PERÚ

I FERIA INTERNACIONAL ESPECIALIZADA EN ACUICULTURA

CALLAO, PERÚ2009

Ubicación de langostineras en Tumbes

Situación del cultivo de langostinos en Tumbes (Dirección de la Producción de Tumbes, 2008)

se desarrolla en Tumbes, desde fines de la década del 1970, cuenta actualmente con un área autorizada de 5 658,64 ha, de las cuales 4 993,00 ha están autorizadas para mayor escala y 665,64 ha para menor escala. Distribuidas en 54 empresas. La producción de langostino se sostuvo con poslarva de laboratorio, principalmente importada (Ecuador) abasteciéndose también de larva Nacional; sembrándose en el sistema semi-intensivo con densidades que ha variado entre 8 a 15 PL/m2 y en intensivo de 60 a 200 PL/m2. En los cultivos de langostino realizados bajo los sistemas “extensivo” y semi-intensivo, se han obtenido producciones entre 500 a 2 500 kg/ha. En los cultivos con sistema intensivo las producciones fluctúan entre 5 000 a 12 000 kg/ha.

La infraestructura para el sistema de cultivo intensivo, son en estanques de forma cuadrada o rectangular, cuyas áreas varían entre 0,22 a 1,20 Ha. cuyos fondos están revestidos con geomembrana cubiertos con plásticos tipo invernaderos con la finalidad de mantener la estabilidad de la temperatura del agua (28 ºC a 34ºC) para evitar la incidencia del virus de la “mancha blanca” así como aislar el langostino durante la fase de cultivo de una posible contaminación externa.

Cuentan con sistema de aireación, empleando principalmente aireadores de paletas, utilizándose entre 10 a 25 H.P./ha.

Algunas langostineras cuentan con estanques de sedimentación, a donde son vertidos periódicamente los efluentes generados en los estanques de cultivo.

El agua solo en la fase de cosecha es vertida hacia los canales de marea, llegando finalmente al ecosistema del manglar, al no contar las empresas con sistemas de tratamiento.

En el área continental, las empresas autorizadas, no han desarrollado actividad acuícola en el presente año.

El abastecimiento de poslarvas nacionales se realiza con dos laboratorios de producción comerciales: Larvas Marinas (20 a 40 millones/mes) y Marinaazul (60 millones/mes). El segundo, incluye un Centro de Investigación y Producción de post larvas en ciclo completo, la que cuenta con infraestructura de mejoramiento genético, biología molecular, maduración cultivo de algas y larvicultura. Ambas para su propia demanda. Las empresas langostineras importan post larva de laboratorio, principalmente de Ecuador. Las importaciones al mes de octubre (2008) fue 985 951 millares de poslarva, la que representa el 87,66% del total ingresado y 300 000 millares de nauplios, que significa el 79,77% del total registrado en el mismo período; las que han ingresado con certificación libre del virus de la “mancha blanca” WSSV, YHV, IHHNV y bacterias.

El volumen de exportación según evaluación preliminar al mes de septiembre, alcanzó a 3 586,86 TM, con un valor FOB de US $ 22218732.81.

La población económicamente activa en la actividad de acuicultura durante enero-septiembre del 2008 ocupando a 1 750 trabajadores permanentes y 1 100 trabajadores eventuales empleados en cosecha y descabezado.

Los sistemas semi-intensivos tienen una relación de empleo de 0,2 a 0,4 trabajadores/ha (personal técnico y administrativo), de los cuales, aproximadamente el 30% son permanentes.

En los sistemas intensivos, esta relación es de 1,5 a 2,0 trabajadores/ha.

Los laboratorios de producción de poslarvas, en su conjunto, se aproxima en 120 personas.

La cinco plantas procesadoras, emplean 1 500 personas en los distintos turnos (un alto porcentaje de mujeres).

Problemas identificados por la Dirección de la Producción de Tumbes.

Presencia de enfermedades en la actividad acuícola.

Informalidad en el desarrollo de la actividad.

Ingreso ilegal al país de poslarva de langostino de laboratorio.

Evacuación de efluentes provenientes del cultivo directamente al ecosistema.

Dependencia de países extranjeros para el abastecimiento de semilla de langostino.

Uso de sustancias químicas por acuicultores informales.

Falta de un catastro acuícola.

FODA del cultivo de langostinos (Berger 2006)

Fortalezas y Oportunidades– Cultivo de ciclo corto– Existe tecnología y capacidad empresarial– Nuevas tecnologías permiten cultivos en nuevas áreas– Amplias posibilidades en cultivos “tierra adentro”– Existen facilidades logísticas (plantas de proceso)– Especie local apreciada a nivel mundial: L. vannamei– Se domina la producción de post larvas– Prestigio del producto peruano en mercados internacionales– Gremio

Debilidades y Amenazas– Epidemias– Área tradicional escasa y sobrecargada– Conflictos: debilidad institucional y ausencia de ordenamiento territorial– Fluctuación de precios– Ausencia de programas de selección genética

Producción de langostino en Tumbes, Perú (1990 a 2008)Fuente: Dirección Regional de la Producción, Tumbes (2009).

Fenómeno El Niño

1997-1998

Mancha Blanca 1999

Sistemas Semi-

intensivos e Intensivos

10Fuente: Prompex (2006), en Berger (2006)

Mercados en Mercados en 2005 del 2005 del

langostino langostino cultivado cultivado peruanoperuano

El 75% de la exportación nacional de langostinos se hace en forma de “colas” congeladas

Sistemas de cultivo de langostino (Jory 2001)

TEMPERATURA PROMEDIO MENSUAL DE LA MAÑANA DEL AGUA DE ESTANQUES DE CULTIVO 1999 -2004

DOMINGO RODAS S.A. Tumbes - PERU

22

23

24

25

26

27

28

29

30

ENE FEB MAR ABR MAY JUN JUL AGO SEP OCT NOV DIC

MES

Tº A

M (

º C)

1999

2000

2001

2002

2003

2004

(Altamirano 2006)

Situación problemática del cultivo de langostino (Saldarriaga 2005)

A causa del WSSV el área langostinera operativa de Tumbes se redujo de 2 800 ha en 1998 hasta 400 ha (14,3%) en el 2000.

La producción disminuyó de 6 000 TM en 1998 hasta 500 TM (8,3%) en el 2000.

Las empresas optaron por dos alternativas: Sistemas semi-intensivos o Sistemas intensivos.

Los cultivos intensivos se iniciaron aplicando la tecnología asiática.

Resultados erráticos (500-5 000 kg/ha) y no prosperó el sistema.

Incremento de medidas de bioseguridad (geomembrana, pozos tubulares, etc.).

Resultados iniciales alentadores (8-12 TM) propician rápido incremento de estas instalaciones (70 has).

Actualmente existen 75 ha con invernaderos, con posible desarrollo de 25 ha.

Área de producción de langostino en Perú (año 2008)

Sistema de cultivoEspejo de agua (ha)

En operación promedio (ha)

Semi-intensivo 3 179,81 2 686,86

Intensivo (Tumbes) 75,19 75,19

Intensivo (Piura) 120,00 120,00

Total 3 375,00 2 882,05

Fuente: Dirección Regional de la Producción, Tumbes (2009).

Parámetros de producción en sistema de cultivo semi-intensivo

Densidad de siembra (PL/m2) 20

Peso promedio (g) 18

Rendimiento (kg/ha) 2 000

Factor de conversión 1,7

Supervivencia (%) 55

Tasa de crecimiento (g/semana) 1,12

Clasificación (Entero/Cola) 50/60

Tiempo de cultivo (días) 130

Costo de producción (U.S. $/ha) 5 600

Precio del langostino (U.S. $/kg) 4,6

Fuente: Langostinera Domingo Rodas S.A. Campaña setiembre-diciembre 2008. Cortesía del Ing. Carlos Altamirano (2009).

Parámetros de producción en sistema de cultivo intensivo.

Densidad de siembra (PL/m2) 80

Peso promedio (g) 15

Rendimiento (kg/ha) 9 600

Factor de conversión 1,5

Supervivencia (%) 80

Tasa de crecimiento (g/semana) 1,4

Clasificación (Entero/Cola) 70/80

Tiempo de cultivo (días) 90

Costo de producción (U.S. $/ha) 24 000

Precio del langostino (U.S. $/kg) 3,60

Fuente: Langostinera Domingo Rodas S.A. Campaña setiembre-diciembre 2008. Cortesía del Ing. Carlos Altamirano (2009).

Filtros de 0,50 mm (500)

Estación de Bombeo

Canal de abastecimiento

Fuente de agua: Canal de Marea

Estanque Sedimentador 1


Reservorio

Canal de distribución

Estanques de Cultivo

Filtros de 300

Compuerta

Filtros de 200

Compuerta

Tanque de descarga Filtros de 100

Canal de drenaje

Sedimentador o Tratamiento de

agua

Cerco de paño anchovetero (1/2” =

1270)

Filtros de 100

FLUJO DEL DISEÑO DE UN SISTEMA DE CULTIVO INTENSIVO SEMI-CERRADO

Fuente de agua: Canal de Marea

(Saldarriaga 2005)

DOMINGO RODAS S.A.

CUADRO DE COSTO TOTAL DE ESTANQUES INTENSIVOS

CON GEOMEMBRANA E INVERNADERO

COSTO TOTAL /HA COSTO TOTAL /ha (%)

MOVIMIENTO DE TIERRA $ 6,700.00 8.8%

GEOMEMBRANA $ 23,700.00 31.1%

INSTALACION ELECTRICA $ 8,000.00 10.5%

AIREADORES $ 7,600.00 10.0%

OBRAS CIVILES $ 4,000.00 5.3%

VARIOS $ 2,000.00 2.6%

INVERNADERO $ 24,100.00 31.7%

TOTAL/ha = $ 76,100.00 (incluido el IGV)

(Altamirano 2006)

INFRAESTRUCTURA DEL SISTEMA DE CULTIVO INTENSIVO (Saldarriaga 2005)

Diseño de estanques

Tubo (Φ=10”) en el ingreso de agua

Forma cuadrada

Espejo agua: 0,50 ha a 1,00 ha (1,00 ha), Nivel: 1,20 m a 2,00 m (1,40 m en promedio)B.L. de 0,80 m, Pendiente del fondo:

long: 0,3 a 1% (0,80%)

transv: 0,30 a 0,5 %

Arqueta de desagüe (Φ=20”), sifón (Φ=4”)

De tierra Franco arcillosa (40 % a 60 % de arcilla; arcillo-arenosa: 20 % de arcilla)

corona: 4 m

Base promedio de 10 m

Nivel de agua: 1,00 m en la entrada; 1,80 m en la salida, 1,40 m de promedio

Talud interior de 1,50 a 2,00 y talud exterior de 0,5 a 1,00

Revestimiento con geomembrana (HDPE)

Espesor:0,80 a 0,75 mm

Láminas impermeables, resistentes a los rayos ultravioleta del sol, no reacciona con el agua ni despide tóxicos, no son biodegradables

Canales de marea.

Captación de agua:

Bomba axial (Φ=16” a 20”) Motor

eléctricos y mecánicos.

Capacidad de 0,40 a 1,20 m3/s


Rectangular, trapezoidal

Abastecimiento: rectangular cemento, 2,00 m3/s


Filtro plástico de 0,50 mm

Infraestructura hidráulica y filtración de agua

SedimentaciónEstanques: 1 a 2 ha (1ha)Rectangular, 1,20 m nivel agua.Retener partículas sólidas: M.O., tierra, bacterias y partículas viralesCompuerta: Filtro de Nytex de 300

Filtro Nytex 200

Tubos de P.V.C. de 10”


Distribución: Trapezoidal, geomembrana

Capacidad llenado: 6 a 18 h (12 h, 0,33 m3/s)Filtro Nytex 100 Hacia los Estanques de Cultivo.

Estanque reservorio

Cuadrada, 1 ha, geomembrana

Nivel de agua: 1,50 m (1,40 m)Constituye entre el 30 a 60 % del volumen de agua a utilizar (33 %)Capacidad de recambio: 5 % a 15 % (11,11 %)Tubo de P.V.C. o compuerta de concreto (Tubo =12“)

Arqueta de desagüe

De concreto, ducto (tubo de P.V.C. =20“)

Canal de drenaje

En tierra o revestido geomembrana

El agua efluente es vertida al canal de marea, evitando el reciclaje

Canal de marea del Estero Corrales (5 km aguas arriba de la estación de bombeo)

Capacidad de 3 m3/s)

Invernaderos

Aireador de Paletas

Las unidades autónomas son usualmente impulsados por un motor eléctrico de 1 H.P. o 2 H.P

Equipos de aireación

Inyector – Mezclador

Unidades autónomas: motor eléctrico de 2 H.P.

Ubicación de los aireadores

20 m muros y 30 m entre ellos

El flujo de aire y agua sentido circunferencial: circulación y sedimentación M.O. centro

TIEMPO DE FUNCIONAMENTO DE LOS AIERADORES

mg/L O2

12

10

8

6

4

2

0

12:00 18:00 00:00 06:00

3 mg/L

Superávit Déficit

?(Vinatea 2006)

Wu et al. (2002). Tolerance to, and avoidance of, hypoxia by the penaeid shrimp

(Metapenaeus ensis), Environmental Pollution, 118: 351–355

50% da saturación

Mortalidad del Camarón

(Vinatea 2006)

Perfil del OD en una piscina con aireación completa

0

2

4

6

8

10

12

12:3

015

:30

18:3

021

:30

00:3

003

:30

06:3

009

:30

12:3

0

Hora

Oxí

gen

o d

isu

elto

(m

g/L

)

50%

100%

Perfil del OD en una piscina con poca aireación

0

2

4

6

8

10

12:3

015

:30

18:3

021

:30

00:3

003

:30

06:3

009

:30

12:3

0

Hora

Oxí

gen

o d

isu

elto

(m

g/L

)

50%

100%

01:30 08:30

(Vinatea 2006)

Preparación de estanques

Retiro total de equipos

Lavado y desinfectado

Instalación de equipos

Sellado y llenado

Nivel de llenado de 1.50 m.

Fertilización inorgánica Urea y Fosfato.

Fertilización orgánica con melaza.

Maduración de 15 días.

Prueba- aplicación de probióticos.

CULTIVO INTENSIVO

(Sócola 2006)

Siembra.

Post-larva de origen ecuatoriano , maduración , PCR , WSSV, IHHNV y NHP, prueba de estrés.

Baculovirus penaei

Siembra.

Aclimatación.

Densidad de siembra : 70 a 100 PL /m2.

Siembra directa.

Alimentación.

Frecuencia: tres a cuatro veces al día.

Distribución al “boleo”.

Horario: 6 a.m., 11 a.m., 2 p.m. y 5 p.m.

Control del consumo por muestreadores (10 a 15 unidades/ha) 3% de la dosis.

LANGOSTINERA DOMINGO RODAS S.A.

TIPO DE ALIMENTO SEGÚN EL PESO DE LANGOSTINO

DIAS PESO TIPO DE TAMAÑO % PROTEINA

APROX. (g) ALIMENTO PELLETS(mm)

0 - 16 PL - 0.5 g PC 0.3 - 0.8 40%

17 - 27 0.5 - 2.0 g KR1 0.4 - 1.8 40%

28 - 42 2.0 - 6.0 g KR2 2.0 40%

43 - 87 6.0 - 15.0g NB35 NORMAL 2.5 35%

LANGOSTINERA DOMINGO RODAS S.A.

REGISTRO DE PARAMETROS

PARAMETRO VECES

Temperatura agua y ambiente interno 3 veces/dia

Oxígeno 3 veces/dia

pH 2 veces/dia

Salinidad 1 veces/dia

Transparencia 1 veces/dia

Nivel de agua 1 veces/dia

Color agua 1 veces/dia

Nutrientes (NH3, NO2, NO3, N, P) 2 veces/semana

Alcalinidad 2 veces/semana

Microbiología agua 2 veces/semana

Productividad (fito y zooplancton) 2 veces/semana

Patología y microbiología langostino 1 veces/semana

Control de calidad de agua.

Recambio de agua.

Se realizan a partir del día 60 cuando la calidad del agua se comienza a deteriorar con la subida del nitrito, el incremento de las algas y la disminución de la transparencia, para seguir manteniendo la calidad de agua se hace un recambio del 20% semanal hasta la cosecha.

Sifoneos

Los sifoneos comienzan cuando se detecta acumulación de materia orgánica en el centro ya sea algas muertas, resto de alimento, mudas o que ocurra una mortalidad

Aireación

Comienza con 20 H.P./ha., incrementándose hasta 35 H.P./ha Aireadores: Inyector-mezclador (20%) y paleta (80%) por estanque

Monitoreo de parámetros de calidad de agua

Parámetros 6 am 12 m 6pm 12 pm

Oxigeno disuelto

3 – 4mg/L

- 4 - 6mg/L

4 – 3mg/L

pH 7,3 –8,0 - 7,6 – 8,5 -

Temperatura 30-32ºC

- 30 – 33,5ºC

-

Salinidad - - 35 – 20mg/L

-

Transparencia - 50 – 30cm

- -

(Sócola 2006)

Parámetros Rangos

NH4 0,001 - 3,5mg/L

NH3 0,00 - 1mg/L

NO2 0,02 - 15mg/L

NO3 0,02 - 20mg/L

PO4 0,10 - 0,8mg/L

H2S 0,00 - 0,02mg/L

Monitoreo de parámetros de calidad de agua

(Sócola 2006)

Biológicos

Semanalmente se realiza los análisis patológico del camarón y microbiología del agua y camarón.

Análisis patológicos del camarón.

Branquias

Intestino

Hepatopáncreas

Análisis microbiológico del agua

Bacterias.

Análisis microbiológico del camarón en hemolinfa y hepatopáncreas

Bacterias.

Análisis del fitoplancton (semanal)

Fitoplancton más frecuente

Diatomeas Cianofitas Clorofitas Dinoflagelados

Amphiprora Croccocus Oocystis Peridinium

Navicula Cyanobacterias Platymonas Oxitoxon

Nitzschia Schyxotris Gymnodinium

Lauderia Anacystis

Comparacion de crecimiento verano invierno (2006)

0

5

10

15

20

25

30

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20Semanas

Pes

o en

gra

mos

verano invierno(Sócola 2006)

Comparaciòn de crecimiento en verano

0

5

10

15

20

25

30

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20

Semanas

Pes

o e

n g

ram

os

Transplante Directo(Sócola 2006)

IMPACTO DE LOS EFLUENTES DE CULTIVOS ACUÁTICOS (Saldarriaga 2007)

La eutrofización de las aguas, sedimentación de los canales de marea o áreas continentales que sirven de sumideros a los efluentes acuícolas.

Presencia de microorganismos patógenos causantes de epidemias y la incorporación de nuevos microorganismos es el impacto negativo más relevante.

Boyd (1982), señala que el efecto de los efluentes sobre el medio ambiente depende de su carga de contaminantes y de la capacidad de los cuerpos de agua para diluir y/o asimilar los desechos, condiciona que sí el volumen de agua que recibe es grande y la descarga es pequeña podrían no observarse efectos adversos, pero, sí hay una alta concentración de desechos, elevado volumen de descarga y el cuerpo receptor es pequeño, podrían ocurrir efectos adversos, todo depende en último caso de la tasa de cambio de agua que posea el cuerpo receptor

Boyd y Tucker (1998), indican que el mayor problema es cuando el cuerpo de agua sirve como fuente y a la vez como receptor de efluentes, en tal caso los estanques abastecidos con esta agua presentarán problemas durante el cultivo y un alto riesgo de auto-contaminación con agentes que promuevan enfermedades.

La Asociación Langostinera Peruana (2005), refiere que es necesario indicar que los problemas de contaminación también son causados por actividades de agricultura, a través del uso intensivo de pesticidas y fertilizantes, y por aquellas propias del desenvolvimiento urbano. Esta contaminación puede ser mucho más grave que la originada por las langostineras, siendo ellas y el ecosistema los más afectados

Concentración máxima de nitrito en el efluente del agua de cultivo y en los esteros.

NITRITO

1,00

6,20

0,25 0,03 0,01 0,13

0,83 mg/L

0,00

1,00

2,00

3,00

4,00

5,00

6,00

7,00

Semi-intensivo

(1)

Intensivo(2)

EsterosZarumilla

(4)

EsterosTumbes

(4)

Agua demar (2)

Agua deestuario

(2)

Nit

rito

(m

g/L

)

1. Ecuador: Saldias (2003)2. Ecuador: Massaut el al. (2005)4. Perú: Dirección General de Salud Ambiental (Nov. 2006)

NITRATO

60,00

18,00

1,24 0,934,43

0,41 0,30 0,50

16,93 mg/L

0,00

10,00

20,00

30,00

40,00

50,00

60,00

70,00

Semi-intensivo

(1)

Intensivo(2)

Dren Lang.Zarumilla

(3)

Dren Lang.Tumbes

(3)

EsterosZarumilla

(4)

EsterosTumbes

(4)

Agua demar (2)

Agua deestuario

(2)

Nitr

ato

(mg/

L)

Concentración máxima de nitrato en el efluente del agua de cultivo y en los esteros.

1. Ecuador: Saldias (2003)2. Ecuador: Massaut el al. (2005)3. Perú: Carril et al. (Junio 2006)4. Perú: Dirección General de Salud Ambiental (Nov. 2006)

FOSFATO

8,59

1,71 2,19

3,68

0,40 0,01 0,150,00

2,00

4,00

6,00

8,00

10,00

Intensivo(2)

DrenLang.

Zarumilla(3)

DrenLang.

Tumbes(3)

EsterosZarumilla

(4)

EsterosTumbes

(4)

Agua demar (2)

Agua deestuario

(2)

Fo

sfat

o (

mg

/L)

Concentración máxima de fosfato en el efluente del agua de cultivo y en los esteros.

2. Ecuador: Massaut el al. (2005)3. Perú: Carril et al. (Junio 2006)4. Perú: Dirección General de Salud Ambiental (Nov. 2006)

DEMANDA BIOQUÍMICA DE OXÍGENO: DBO5

25,1050,00

6,50 10,60 15,00 25,00

300,00

30 mg/L

0

50

100

150

200

250

300

Semi-intensivo (1)

Intensivo (2) Dren Lang.Zarumilla (3)

Dren Lang.Tumbes (3)

Agua de mar(2)

Agua deestuario (2)

Efluentesdomésticos

(2)

DB

O5

(mg/

L)

Concentración máxima de D.B.O.5 en el efluente del agua de cultivo y en los esteros.

1. Ecuador: Saldias (2003)2. Ecuador: Massaut el al. (2005)3. Perú: Carril et al. (Junio 2006)

TOTAL DE SÓLIDOS SUSPENDIDOS: TSS

150,90

1147,00

162,70 153,8090,00 120,00

500,00

100 mg/L

0

150

300

450

600

750

900

1050

1200

Semi-intensivo (1)



Agua de mar(2)

Agua deestuario (2)

Efluentesdomésticos

(2)

TSS

(mg/

L)

Concentración máxima de T.S.S. en el efluente del agua de cultivo y en los esteros.

1. Ecuador: Saldias (2003)2. Ecuador: Massaut el al. (2005)3. Perú: Carril et al. (Junio 2006)

OXÍGENO DISUELTO: O.D.

8,00 8,007,28

5,937,01 6,95

12,00 12,00

> 4 mg/L

0

2

4

6

8

10

12

Semi-intensivo

(1)

Intensivo(2)

Dren Lang.Zarumilla

(3)


EsterosZarumilla

(4)

EsterosTumbes (4)

Agua demar (2)

Agua deestuario (2)

O.D

. (m

g/L

)

Concentración máxima de O.D. en el efluente del agua de cultivo y en los esteros.


pH

9,00 9,007,90 7,96 8,01

7,36

6,50

8,50

0

2

4

6

8

10

12

14

Semi-intensivo(1)



EsterosZarumilla (4)

EsterosTumbes (4)

pH

pH máximo en el efluente del agua de cultivo y en los esteros.


PLOMO

0,02 0,02

< 0,01 < 0,01

0,03 mg/L

0,00

0,01

0,02

0,03

0,04

Dren Lang.Zarumilla (3)



EsterosTumbes (4)

Plo

mo

(m

g/L

)

Concentración máxima de plomo en los esteros.

3. Perú: Carril et al. (Junio 2006)4. Perú: Dirección General de Salud Ambiental (Nov. 2006)

Concentración máxima de mercurio en los esteros.

3. Perú: Carril et al. (Junio 2006)4. Perú: Dirección General de Salud Ambiental (Nov. 2006)

MERCURIO

< 0,0010 < 0,0010

< 0,0001< 0,0002

0,0002 mg/L

0,00

0,00

0,00

0,00




EsterosTumbes (4)

Mer

curi

o (

mg

/L)

Concentración máxima de cadmio en los esteros.

4. Perú: Dirección General de Salud Ambiental (Nov. 2006)

CADMIO

< 0,010 < 0,010

0,004 mg/L

0,000

0,005

0,010

0,015

Esteros Zarumilla (4) Esteros Tumbes (4)

Cad

mio

(m

g/L

)

Concentración máxima de arsénico en los esteros.


ARSÉNICO

0,00270 0,0024

0,05 mg/L

0,000

0,010

0,020

0,030

0,040

0,050

0,060


Ars

énic

o (

mg

/L)

MATERIA ORGÁNICA: M.O.

3,293

1,892

0,00

0,50

1,00

1,50

2,00

2,50

3,00

3,50

4,00

4,50

5,00

Dren Lang. Zarumilla (3) Dren Lang. Tumbes (3)

M.O

. (%

)

Concentración máxima de M.O. en el dren de las langostineras.

3. Perú: Carril et al. (Junio 2006)

Concentración máxima de N.T. en el dren de las langostineras.


NITRÓGENO TOTAL: N.T.

< 0,1 < 0,1

0,00

0,05

0,10

0,15

0,20


N.T

. (%

)

Concentración máxima de fósforo en el dren de las langostineras.


FÓSFORO: P

5,512

22,396

0,00

5,00

10,00

15,00

20,00

25,00


P (

mg

/kg

)

Concentración máxima de plomo en los esteros.

3. Perú: Carril et al. (Junio 2006) 4. Perú: Dirección General de Salud Ambiental (Nov. 2006)

PLOMO

143,07

67,29

35,93

69,19

0,00

50,00

100,00

150,00




EsterosTumbes (4)

Plo

mo

(m

g/k

g)

Concentración máxima de mercurio en los esteros.


MERCURIO

0,202

0,457

0,00

0,10

0,20

0,30

0,40

0,50


Mer

curi

o (

mg

/kg

)

Concentración máxima de cadmio en los esteros.

CADMIO

0,5 0,5

0,40

0,50

0,60


Plo

mo

(m

g/k

g)


PLANTEAMIENTO DE SOLUCIONES

Investigación científica.

Disminuir la cantidad de nitrógeno en el alimento;Suplementar la dieta con adición de carbohidratos;

Policultivo;

Manejo de la calidad de suelo;Manejo de la calidad de agua (Sistemas de cero recambio de agua, uso de probióticos y substratos artificiales)Uso de una laguna de sedimentación.

Manejo del suelo

1,50 m

0,0

10 cm

20 cm

30 cm

Profund.

Superficie de agua

Columna de agua aeróbica

Superficie de sedimento

Capa aeróbica de sedimento

MO + O2 CO2

Descomposición aeróbica

MO + O2 CO2

Descomposición aeróbica

MO CO2 + MO reducida FermentaciónMO + NO3

-1 CO2 + N2

Desnitrificación

Capa anaeróbica de sedimento

MO + Fe(OH) 3 Fe+2 + CO2

Reducción del hierroMO + MnO2 Mn+2 + CO2

Reducción del manganeso

MO + SO4-2 H2S + CO2

Reducción del sulfatoMO + CO2 CH4

Producción de Metano-300 0,0 +300 +600

Potencial REDOX (mV)Estratificación de procesos microbianos en elAgua y sedimento del estanque (adaptado de Boyd, 2005)

Manejo del suelo

Manejo del suelo

Secado Secado

Arado Encalado

Aplicación de abonos: estiércol de vacuno o humus de lombriz

Mejoran ladigestión dealimentos

APLICACIÓN DE PROBIÓTICOS

Mejoran lacalidad del

agua

Sirven decomplemento

alimenticio

Inhiben losmicrobios

patogénicos

Probióticos: Bacilos, Lactobacilos, etc.

ESTANQUES DE SEDIMENTACIÓN (Saldarriaga 2007)

Generalmente, ese tratamiento no ayuda en la reducción de la biomasa de fitoplancton, sin embargo, reduce de manera drástica la carga inorgánica en el agua y permite la sedimentación de la materia orgánica insoluble que después de llegar a su capacidad máxima de retención (2 años) debe ser tratada por métodos biológicos y removida para darle otro uso que no afecte al medio ambiente.

Massaut et al., (2005), refiere que varios estudios demostraron que la permanencia durante 8 horas a 10 horas de efluentes acuícolas en las lagunas de sedimentación, permite una remoción del 75 % de los sólidos totales suspendidos.

MODELO IDEAL: DISEÑO DE UN SISTEMA DE CULTIVO INTENSIVO SEMI-CERRADO (Saldarriaga 2005)

UTILIZACIÓN DE SUBSTRATOS VERTICALES (Saldarriaga y Alvarado 2008)

Los substratos artificiales constituyen una superficie adicional para la fijación de perifiton o biofilm e incrementan la producción natural del agua de los estanques.

INTRODUCCIÓN

Ramesh et al. (1999) definen al perifiton o biofilme fijado en superficies sumergidas como “comunidad compleja compuesta por organismos heterotróficos y autotróficos tales como bacterias, protozoarios, hongos y algas marinas envuelta en una matriz extracelular de polisacáridos secretada por bacterias”

Instalación de substratos verticales

La instalación: tres semanas antes de la siembra para que el perifiton o biofilm se fije y desarrolle en cada substrato y los juveniles de P. vannamei dispongan de alimento natural desde el inicio del cultivo.

Se incluyó un control (sin substratos artificiales)

20% (3,00 m2)

30% (4,50 m2) 40% (6,00 m2)

0,75 m

0,10 m

1,00 m

Análisis de perifiton:

Extraídos con una lámina porta objeto, recogidos en placas Petri y refrigerados a 5 ºC.

Observación a 100X.

Identificación de géneros más importantes. Clave de Botes (2001) y Santander (1981).

Esta actividad se realizó cada 15 días de cultivo.

67,33% b76,53% b

63,20% b55,00% a

0

20

40

60

80

100

SinSubstratos

20% 30% 40%

Área ocupada por substratos artificiales verticales

Superv. (%)

Supervivencia promedio de P. vannamei cultivado con perifiton fijado a substratos artificiales verticales.

Crecimiento promedio de P. vannamei cultivado con perifiton fijado a substratos artificiales verticales.

15,44 g a 15,80 g a

13,38 g b 13,91 g b

0

2

4

6

8

10

12

14

16

18

20

Sin Substratos 20% 30% 40%

Área ocupada por substratos artificiales verticales

Crecim. (g)

Biomasa promedio de P. vannamei cultivado con perifiton fijado a substratos artificiales verticales.

F.C.R. promedio de P. vannamei cultivado con perifiton fijado a substratos artificiales verticales.

Los géneros del perifiton encontrados fueron:

85

55%

75%66% 71%

40%

14%

12%15%

22%

12%

0%

20%

40%

60%

80%

100%

PresenteInvestigación

(promedio)

Díaz yMaldonado (2008)

(30%)

Martínez et al.(2004)

Domingos (2003)(15%)

Cortéz (2001) (60 -40 Ind./m2)

Sin Subst. Artif. Increm. Con Subst. Artif.

La supervivencia de juveniles P. vannamei mejoró significativamente en 14% con la presencia de los substratos artificiales con respecto al control.

86

15,44 g

10,75 g

12,5 g

10,93 g

15,80 g

12,28 g

16,00 g

10,21 g

0

2

4

6

8

10

12

14

16

18

PresenteInvestigación (20%)

Díaz y Maldonado(2008) (30%)

Martínez et al. (2004) Domingos (2003)(15%)

Crecimiento (g)

Sin Subst. Artif. Con Subst. Artif.

Díaz y Maldonado (2008)Domingos (2003)

16%

25%

58%

23%

0%

10%

20%

30%

40%

50%

60%

70%

PresenteInvestigación

(promedio)

Díaz yMaldonado (2008)

(30%)

Martínez et al.(2004)

Domingos (2003)(15%)

Ganancia en Biomasa (kg)

Acciones necesarias para la competitividad de la

industria (Berger 2006)Apoyo decidido a la acuicultura:

Normatividad, ordenamiento, priorización de actividades, investigación, asistencia técnica, integración de la cadena productiva, BPM, sanidad.

Preservaciòn del ambiente y de los recursos: Planificación y ordenamiento territorial, prevención/aminoramiento impactos

Investigación y desarrollo:

Eficiencia productiva en los sistemas tradicionales e intensivos:

Investigación Producción de semilla mejorada (genética, sanidad) Conocimiento / manejo del medio de cultivo (monitoreo, bio-

remediadores) Alimentos / Alimentación Convivencia / prevención de enfermedades (inmuno estimulantes,

probióticos, bioseguridad).

Mercados y comercialización:

Mejorar el acceso a los mercados externosCumplimiento de exigencias de los importadores: sanidad y salubridad para el consumidorValor agregado, nuevos nichos, sellos de calidadNuevos productos

Otras acciones:Imagen de la industriaFortalecimiento institucionalFinanciamiento

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS.

Altamirano, C. 2004. Cultivo intensivo con invernaderos. Langostinera Domingo Rodas S.A. Tumbes, Perú.

Berger, C. 2006. Acuicultura peruana y el comercio mundial. Presentación. Tumbes, Perú.

Jory, D. 2001. Manejo integral del alimento de camarón, de estanques de producción camaroneros y principios de bioseguridad. Curso lance en acuicultura. Monterrey, México.

Saldarriaga, D. 2005. Diseño de un sistema de cultivo intensivo semi-cerrado para langostino. Langostinera Domingo Rodas S.A. Trabajo de Habilitación Docente. Universidad Nacional de Tumbes. Perú.

Saldarriaga, D. 2007. Impacto de los efluentes del cultivo de langostino Penaeus vannamei en el ecosistema de manglares. Universidad Nacional de Tumbes. Presentación. Tumbes, Perú.

Saldarriaga, D. y Alvarado, A. 2008. Efecto del perifiton adherido a substratos artificiales sobre el cultivo semi-intensivo de Penaeus vannamei. Investigación Docente. Universidad Nacional de Tumbes. Perú.

Sócola, M. 2006. Cultivo intensivo en invernaderos de Litopenaeus vannamei. Corporación Refrigerados INYSA. Presentación. Tumbes, Perú.

Vinatea, A. 2006. Eficiencia económica del cultivo intensivo. IX Congreso Nacional de Ingeniería Pesquera, II Congreso Internacional de Pesquería. Presentación. Tumbes, Perú.

David E. Saldarriaga YacilaIngeniero Pesquero, Magíster en AcuiculturaCandidato a Magíster en Ingeniería Ambiental

Docente de la Universidad Nacional de Tumbes, Perú[email protected]

[email protected]

David Saldarriaga

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