Confederación Nacional de Organizaciones Ganaderas

Programa Integral de Capacitación 2013

Prestador de Servicios Profesionales

Consorcio Técnico del Noreste de México, A.C.

Plan de Desarrollo Empresarial para Productores y Organizaciones Ganaderas

Plan de formación para productores

Implementar las acciones de salud animal para prevenir mortalidad y mejorar los

parámetros productivos en el hato

Dr. Ramiro Avalos Ramírez

Dr. J. Rubén Cervantes Vega

Directorio

Confederación Nacional de Organizaciones Ganaderas

Consejo Directivo

Oswaldo Chazaro Montalvo

Presidente

MVZ. Freddy Priego Priego

Secretario

MVZ. Salvador Álvarez Moran

Tesorero

Comisión de Innovación y Transferencia de Tecnología

Ing. Antonio Manuel García González

Resultado de aprendizaje

Implementar las acciones de salud animal para prevenir mortalidad y mejorar los

parámetros productivos en el hato.

Contenido

Sanidad y rentabilidad

Bioseguridad pecuaria

Calendario de vacunación

Calendario de desparasitación

Control de Brucelosis

Control de Tuberculosis

Sanidad y Rentabilidad

La rentabilidad de toda explotación pecuaria es afectada por una gran cantidad de

factores, entre los que destacan la nutrición, la genética, el medio ambiente y la

salud de los animales. Dentro de esta última condición, las enfermedades

infecciosas representan una de las principales causas de pérdida económica al

sector ganadero ya sea por provocar infecciones subclinicas (no hay síntomas de

enfermedad), clínicas y muerte del animal. Si bien existen diversas estrategias

para el manejo y control de las enfermedades infecciosas que van desde la

administración racional de sustancias antimicrobianas (antibióticos) ó eliminación

de los animales persistente o severamente afectados la práctica de la vacunación

es una de las alternativas con mayor costo-beneficio, principalmente en aquellos

ranchos o regiones en los cuales los índices de prevalencia son de moderados a

altos ó carentes de medidas de bioseguridad. No obstante, el diseño e

implementación de plan de vacunación es una tarea compleja dado que implica no

solo saber si el agente infeccioso está presente (endémico) en el rancho, sino

también se deben de conocer aspectos fundamentales de la biología misma de la

enfermedad, es decir la naturaleza del agente causal (Virus, Bacteria,

Protozoario), características de la infección-enfermedad (aguda, latente, crónica,

persistente), Hospedadores o animales susceptibles(vacas, aves, perros, etc..),

modos de transmisión (directa, indirecta -insectos, utensilios-) hasta la condición

fisiológica del o los animales que se pretenden vacunar. Por otro lado, es

necesario de considerar si existe vacuna disponible en el mercado, su costo, vía

de administración y cuidados en su manejo. La presencia o ausencia de

enfermedades en el rancho obedece a una intrincada red de eventos sucesivos en

los cuales participan no solo los agentes causales, animales y el medio ambiente

sino también el propio productor ó manejador del rancho mediante sus acciones.

La pérdida de becerros antes del nacimiento o del destete, así como la infertilidad,

diarrea, septicemia, enfermedad respiratoria, falta de productividad y muerte de los

animales en forma general nos indican falta o irregularidades en las prácticas de

manejo. La aplicación de criterios válidos y un esquema integral que contenga los

aspectos básicos de la nutrición (incluida la suplementación con vitaminas y

minerales) y de la sanidad y salud animal nos ayudaran en gran medida a

disminuir las posibilidades de aparición de enfermedades en el rancho. Como ha

sido señalado con anterioridad, la vacunación es una herramienta más que los

ganaderos disponen para evitar la aparición de enfermedades en el rancho y

mantener sanos sus animales. En breve, involucra la aplicación artificial de

microorganismos (virus, bacterias, protozoarios, etc..) o fracciones de estos,

generados en el laboratorio, incapaces de provocar enfermedad (atenuados ó

muertos) pero con la propiedad de inducir un estado de resistencia ó inmunidad

contra aquellos agentes infecciosos virulentos causantes de enfermedad.

Mediante esta práctica, en conjunción con otros componentes de la bioseguridad

pecuaria, se pueden controlar y erradicar aquellos agentes infecciosos que por su

naturaleza provocan fuertes pérdidas a la economía del productor del sistema

vaca-becerro. No obstante, antes de decidir cómo, cuándo, a quien y con qué

vacunar es necesario tener en cuenta algunos aspectos básicos que involucran

esta actividad. Entre otras consideraciones, es importante tener en cuenta que,

por diversos motivos en la región una proporción alta de productores no incluyen

en su manejo la vacunación de sus animales y en aquellos casos en los cuales se

practica la vacunación esta se realiza sin tomar en cuenta algunos parámetros

básicos para realizar esta actividad. La presencia, prevalencia é incidencia de las

enfermedades en el rancho o región es otra de las características que se deben de

tomar en consideración en conjunción con las características agroecológicas de la

zona. El estado fisiológico del animal (embrión, feto, neonatos, becerros, adultos,

preñez, animales viejos, etc..), el tipo de hato (cerrado ó abierto), la época del año

(antes del empadre, antes de las lluvias y/o, invierno, primavera, etc..), el tipo de

vacuna (inactiva, activa modificada, subunidades de antígenos, etc..), el costo,

método y esquema de vacunación conformarían variables adicionales para realizar

esta actividad. Este último, debería de ser analizado, comprendido y debe de

realizarse en función del tipo de vacuna (inactivada, activa) y su potencia, ruta de

administración, inmunidad ó exposición previa, necesidad de revacunación y

equipo e instalaciones apropiadas así como personal capacitado.

Bioseguridad pecuaria

La bioseguridad involucra todas aquellas actividades y acciones que son llevadas

a cabo para evitar la introducción de agentes infecciosos o productos de ellos

hacia un área o grupo de animales. Usualmente si algún agente infeccioso o sus

productos ya se encuentran presentes todas las acciones para evitar su

diseminación entre los animales de una zona o lugar se conoce como bio-

contención. La bioseguridad aplicada a los sistemas pecuarios implica el uso de

herramientas disponibles para evitar la introducción, diseminación, control y

erradicación de agentes infecciosos y sus productos tanto en animales domésticos

como silvestres. Este concepto ha emanado de la modernización de los procesos

tecnológicos para generar animales, productos y subproductos de los mismos

inocuos y seguros tanto para animales como para humanos. La bioseguridad en el

rancho puede establecerse a varios niveles según el riesgo que cada productor o

administrador del rancho desee aceptar para sus animales. Dado que no todos los

agentes infecciosos o factores causantes de enfermedad están presentes en un

área ó región, que su naturaleza es heterogénea y que cada rancho es diferente,

las herramientas o procesos para aplicar la bioseguridad dependerán de la

situación particular de cada uno de estos elementos. Una consideración

importante cuando se define el nivel de bioseguridad que se desea tener es

estimar el impacto potencial de la infección-enfermedad y sus consecuencias

económicas. Es decir, no todos los agentes infecciosos tienen la misma habilidad

para generar enfermedad y por consiguiente variarán los efectos económicos a

corto, mediano y largo plazo. Se ha propuesto hasta seis niveles de bioseguridad

en las unidades de producción con respecto a permitir la introducción de animales

en cada unidad. Esto es, hato estrictamente cerrado (libre de patógenos

específicos), hato en donde la salida y reentrada de los animales del mismo del

mismo u otros ranchos no se permite, hatos que no se permite la entrada de

animales de otra fuente pero se permite la reentrada de animales del mismo

rancho, hatos en donde se aplica cuarentena y permite la entrada de animales de

otras fuentes que cuentan con registros de salud y pruebas de laboratorio, hatos

que permiten la entrada de animales de otro origen con registros de salud y

pruebas de laboratorio pero no se aplica cuarentena ó aislamiento y hato donde se

permite la entrada de animales de otras fuentes sin conocer el estado de salud, sin

análisis de laboratorio y que no se practica la cuarentena. Si bien, la principal

fuente de entrada para patógenos hacia el rancho son los mismos bovinos, ya sea

incubando una enfermedad de reciente adquisición o de forma latente o

persistente, otras formas de dispersión deben de tenerse en cuenta y van desde el

uso de semen y embriones hasta alimentos (forraje, concentrados), agua,

animales silvestres (aves, venados, coyotes, ratas) o “callejeros” (bovinos u otros

rumiantes que deambulan libres entre los ranchos), garrapatas y otros insectos

chupadores, vehículos de transporte, trabajadores, visitantes ó mascotas con

acceso a otros ranchos.

Los ganaderos debe de tener una visión empresarial a mediano y largo plazo para

asegurase que se establezca el nivel adecuado de bioseguridad que su rancho

necesita. En este sentido el establecimiento de medidas de bioseguridad es una

inversión que requiere tiempo dinero y esfuerzo. De acuerdo al nivel de

bioseguridad y salud del hato que el ganadero esté dispuesto a obtener será la

inversión tanto económica, de tiempo y de recursos humanos.

Inmunidad e inmunización

El sistema inmunológico de los animales domésticos está constituido por una serie

de factores y mecanismos que de manera colectiva defienden al organismo del

ataque y colonización de agentes infecciosos. La multiplicación sin control de los

agentes infeccioso ya sea bacterias, virus, parásitos conduce a la enfermedad. Si

bien existen varios tipos de infecciones ( desde las subclínicas hasta las que

causan evidente daño clínico) la aparición de la enfermedad es de origen

multifactorial que acompaña una pobre o exacerbada respuesta del sistema

inmunológico. Los mecanismos defensivos en el animal operan de forma

inespecífica (inmunidad innata) o especifica (inmunidad adquirida). La inmunidad

innata no es especifica hacia un antígeno o agente infeccioso ni requiere estimulo

previo para operar y usualmente es la primera línea de protección e incluye

barreras físicas como la piel, epitelio, moco, diarrea, etc.., enzimas, sistema

complemento, inflamación, fagocitosis y la ausencia de receptores. La inmunidad

adquirida o específica es llevada a cabo mediante la actividad ó estímulos de

linfocitos y otras células accesorias con citocinas en conjunción con anticuerpos.

Esta respuesta es específica del antígeno (inmunogeno) o agente infecciosos que

le dio origen o estímulo y es el tipo de inmunidad que se intenta establecer en el

animal mediante el uso de vacunas. La respuesta inmune adquirida puede

dividirse en tres fases que son el reconocimiento (la identificación los agentes

infecciosos como ajeno al cuerpo - antígenos ó inmunogenos- su procesamiento y

presentación a linfocitos), la activación (los linfocitos estimulados por el antígeno

proliferan generando poblaciones de linfocitos específicos del antígeno, amplifican

la respuesta y se diferencian el células que eliminaran al antígeno), la efectora (los

linfocitos activados ejecutan funciones que conducen al eliminación del agente

infeccioso, incluye la producción de anticuerpos por parte de linfocitos B y la

actividad de linfocitos T citotoxicos). Dependiendo de la constitución anatómica y

fisiológica del animal y de estímulos previos de su sistema inmune la duración de

las tres fases varía pero en su conjunto la respuesta ocurre entre 2 y 4 semanas

después de la exposición a la sustancia extraña ó agente infeccioso. Cuando a un

animal se le administra una vacuna lo que se pretende es crear un estado inmune-

inmunización- en contra de los componentes (antígenos o agentes infecciosos) de

la vacuna para que de esta manera en una exposición subsecuente en contra del

agente infeccioso virulento el animal resista la infección y no se enferme. Debido

a que el sistema inmune requiere de tiempo para responder a la vacunación es

bien importante vacunar en el tiempo adecuado según la etapa fisiológica del

animal y el nivel de riesgo de presencia de infecciones y enfermedades. Para ello

es menester contar con un calendario de manejo en el cual se incluyan las

vacunas de mayor relevancia en la zona de ubicación del rancho así como las

desparasitaciones internas y externas acorde a la región. La administración de

microminerales y vitaminas en la dieta o inyectadas deberá de tomarse en cuanta

para asegurar una adecuada respuesta inmunológica y así una mejor salud del

animal.

Calendario de vacunación

Se ha reportado en todo el País, la alta prevalencia de enfermedades

reproductivas. En estudios parciales efectuados en establos seleccionados, se han

encontrado anticuerpos en contra de la rinotraqueitis infecciosa bovina, la diarrea

viral bovina, neosporosis y leucosis bovina y en algunos ranchos de ganado

productor de carne con problemas de baja producción ganadera, se ha detectado

que es alta la presencia de piroplasmosis, anaplasmosis, leptospirosis, diarrea

viral bovina, rinotraquitis infecciosa y neosporosis, considerando a estas como las

principales enfermedades que afectan a la reproducción serán revisadas

brevemente.

Rinotraqueitis Infecciosa Bovina, IBR o Herpesvirus Bovino 1.

Es un virus cosmopolita y es uno de los agentes infecciosos considerados como

los de mayor impacto económico para el ganadero debido a sus fuertes

repercusiones negativas sobre la producción. La presencia de este virus limita la

rentabilidad del rancho no solo por sus efectos sobre los animales son también por

restricciones de tipo comercial que se imponen a los ranchos y áreas infectadas.

El virus es altamente contagioso para los bovinos de cualquier edad. Una vez que

ocurre la infección este virus permanece en estado ¨latente¨ en tejido nervioso

(raíces de los nervios trigémino y sacro). Los animales infectados con el BoHV-1

pueden mostrarse clínicamente sanos, o sea no hay síntomas de enfermedad, de

tal forma que se puede adquirir animales infectados que posteriormente al

incorporarlos al rancho pueden diseminar el virus hacia animales susceptibles.

Cuando los animales afectados muestran síntomas el rango puede ser muy

amplio. Las diversas formas clínicas pueden abarcan desde la Rinotraqueitis

Infecciosa Bovina (“IBR”), la Vulvovaginitis Pustular Infecciosa (“IPV”), la

Balanopostitis (“IPB”) ó hasta conjuntivitis, infertilidad /aborto, enteritis y encefalitis.

El BHV-1 ha sido dividido en los subtipos 1 (BHV1.1), 2a (BHV1.2a) y 2b

(BHV1.2b). No obstante, se considera que todos pertenecen a un mismo grupo o

tipo antigénico (serotipo). Es decir es el mismo virus pero diferentes formas de

presentarse. El BHV1.1 comprende a los virus “clásicos” que han sido

relacionados a infecciones respiratorias causando la Rinotraqueitis Infecciosa

Bovina (IBR); no obstante se han reportado aislados de este subtipo como causa

de abortos. Por otra parte, el BHV1.2a se ha encontrado como causante de IBR,

IPV, IPB y abortos; mientras que BHV1.2b se ha detectado en infecciones

respiratorias así como en el síndrome de IPV/IPB, pero no en abortos. En

infecciones respiratorias se considera al BHV1b de menor “agresividad” que el

subtipo BHV1.1. Este virus se trasmite de forma directa con relativa facilidad

gracias a la gran cantidad virus infecciosos que salen de los animales afectados

principalmente de secreciones respiratorias, oculares y del tracto genital (de forma

importante en semen). No obstante, estas secreciones pueden contaminar

diversos utensilios (Guantes de palpación, sujetadores nasales, empleados para el

manejo de los animales por lo que el virus también puede diseminarse de forma

indirecta entre los animales gracias a la intervención humana. El periodo de

incubación de la enfermedad es variable de entre 2 y 7 días, pero depende del

subtipo (cepa), sitio de entrada, inmunidad previa (si el animal fue vacunado o se

infectó y se recuperó) y factores estresantes, entre otros. En hatos susceptibles

no inmunes y expuestos al virus se ha demostrado que entre un 25 y 60% de la

vacas pueden abortar después de exponerse al virus, independientemente del

periodo de preñez. Otra proporción de vacas, y especialmente vaquillas, pueden

resultar con infertilidad o muerte del embrión si adquieren la infección al momento

de la cruza dado que el virus puede provocar inflamación del útero y de ovarios.

Estudios previos y actuales en la región noreste de México han mostrado que la

seroprevalencia de este virus es alta en esta zona. El diagnóstico molecular del

virus basado en la Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR) se aplica con

cierta rutina en el Noreste de México. En el Departamento de Virología de la

Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia de la UANL y en el Laboratorio

Central Regional de Monterrey, A.C., el virus ha sido detectado en semen,

secreciones vaginales, de prepucio y respiratorias de diversos hatos del sistema

vaca cría. Un estudio, realizado en la región Noreste de México entre el año 2005

y 2007 ha detectado que 165 hatos del sistema vaca-becerro no vacunados contra

BHV-1 de Nuevo León (45), Coahuila (25), Tamaulipas (18) y la Huasteca

Potosina (10) resultaron seropositivos al virus. No obstante los rangos de

seroprevalencia variaron de 20 a 76%. Esto significa que prácticamente todos

hatos analizados no vacunados muestran anticuerpos contra el BHV-1 lo cual

implica que el virus está ampliamente difundido en la zona y que eventualmente

puede constituirse en brotes de abortos, infertilidad ó problemas respiratorios de

forma individual o colectiva, dependiendo de la situación particular de cada hato,

de la zona geográfica y de la infección concomitante con otros patógenos, entre

otros.

Virus de la Diarrea Viral Bovina

El agente etiológico de la diarrea viral bovina pertenecen a las especies BVDV-1 y

BVDV-2 agrupados dentro del género Pestivirus en la familia Flaviviridae, estas

dos especies se han establecido de acuerdo a las diferencias genotípicas y

antigénicas de los virus. Así mismo se ha dividido estas dos especies en

subgrupos, así en BVDV-1 se han encontrado hasta 11 subgrupos genéticos y

para BVDV-2 solamente 3 subgrupos. El genoma del virus es de RNA de cadena

sencilla polaridad positiva, mide 12.3 Kb aproximadamente. Los viriones miden de

40 a 60 nm de diámetro y tienen forma esférica. De acuerdo al efecto que puede

causar el virus sobre el cultivo celular se ha clasificado en dos biotipos, virus

citopático (cp) y virus no citopatico (ncp).

La transmisión del virus en un hato está influenciada por la presencia de animales

persistentemente infectados (PI), animales con afección aguda y de las prácticas

sanitarias que se realicen en los hatos. Se han reportado seroprevalencias que

oscilan entre 60 y 85% para ganado de carne y bajo el mismo sistema han

descrito una prevalencia para animales PI entre 0.5% y 2%. En sistemas semi-

intensivo con pastoreo en praderas del trópico en ganado de carne se ha descrito

una prevalencia de 14% en el estado de Yucatán. En el estado de Nuevo León se

ha descrito una prevalencia que oscila entre 28.5 y 67.8% para el sistema vaca-

cría que se desarrolla en explotaciones de tipo semi-intensivo.

La transmisión del virus dentro de un hato se presenta por la introducción de

animales con infección aguda, animales PI, semen y embriones contaminados con

el virus, hembras gestantes con un producto PI y uso de vacunas con virus vivo en

hembras gestantes. El tiempo de seroconversión de los animales susceptibles con

la presencia de un animal PI en el hato lo han estimado en 2 meses, mientras que

la seroconversión tras la introducción de animales con afección aguda se lleva

aproximadamente 5 meses. La transmisión entre hatos se presenta cuando se

comparten pastas o agostaderos con otros hatos, préstamos de sementales y

utensilios, participación en ferias. Los efectos en la reproducción bovina son

variados y dependen muchos factores. Todos son adversos para la producción.

Después de una infección aguda con BVDV existe una disfunción ovárica en las

hembras (reducción de los ciclos del estro), disminución significativa de la calidad

de los folículos, reducción de la actividad del cuerpo lúteo y reducción de las

oleadas foliculares; se ha sugerido que estos cambios obedecen a la elevación de

la concentración del cortisol en la sangre, que se observa en los periodos de

viremia y que están involucrados directamente con la alteración en la

retroalimentación sobre la secreción de las hormonas. Otros efectos observados

en la disfunción folicular están involucrados con la capacidad del virus para

intervenir en el descenso sobre la concentración en sangre de estradiol, además

de intervenir en los procesos antes descritos, también influye en el desarrollo

adecuado de un ciclo estral. En los órganos que comprenden el sistema

reproductivo del macho se han asilado partículas virales, lo que compromete la

función de los mismos; de tal forma que, se presenta anormalidades en los

espermatozoides, disfunciones en la motilidad y baja producción de semen. Otro

efecto importante es la presencia de abortos y la producción de animales PI; en el

primero de los casos muchos autores han reportado el tiempo en que se puede

presentar, sin embargo es de suma importancia ubicar las factores de riesgo para

que este acontecimiento no suceda y de la misma forma con los animales PI .

Leptospirosis

La enfermedad es causada por bacterias gram negativas, pertenecen a la familia

de las Spiroquetas, poseen forma delgada, helicolidal, son organismos móviles,

con una longitud entre 10 y 20 µm; tienen un genoma de aproximadamente 5,000

Kb. La composición de lipopolisacáridos es similar a otras bacterias gram

negativas, pero tienen baja actividad endo-tóxica; son bacterias aerobias

obligadas con un crecimiento óptimo a temperaturas entre 28 a 30° C; el medio

donde crecen debe ser enriquecido con vitaminas B2 y B12, ácidos grasos de

cadena larga y sales de amonio. La clasificación taxonómica de este grupo de

bacterias se basa en diferencias serológicas y genéticas; la primera clasificación

obedece a diferencias antigénicas observadas en ensayos de aglutinación,

teniendo que, el género Leptospira se divide en 2 grandes especies: Leptospira

interrogans y Leptospira biflexa, en la primer especie se agrupan todas aquellas

bacterias patógenas, existiendo a la fecha 200 serovares y en la segunda especie

se agrupan aquellas bacterias saprofitas, existiendo 60 serovares; los serovares

que están antigenicamente relacionados se agrupan en serogrupos; la

clasificación genética se basa en diferencias genéticas entre los aislados, de esta

forma, existen a la fecha 16 “genomoespecies”. Los bovinos son portadores

naturales del serovar Hardjo, y la infección por esta cepa se presenta

eventualmente sin signos clínicos aparentes, de tal manera que, continuamente

liberan por la orina al ambiente bacterias. Sin embargo son susceptibles a otros

serovares que están presentes en el medio por excreción de otros animales que

son portadores. La Leptospira spp., son bacterias ubicuas y están

geográficamente relacionadas con ciertos tipos de suelos, así como, la interacción

que guardan con los hospederos naturales, también denominados portadores

asintomáticos que tienen un rol importante en la transmisión, pues contaminan el

medio con grandes cantidades de bacterias por medio de la orina, debido a una

infección crónica que sufren en el epitelio renal con algún serovar. De esta forma

una vez que las bacterias han salido al medio pueden contaminar el agua, comida,

utensilios, comederos; exponiendo así, a un gran número de animales y humanos

susceptibles. La leptospirosis bovina es una enfermedad ampliamente distribuida

en México que tiene una seroprevalencia elevada (49.7 %) y se encuentra

presente en las distintas regiones ecológicas. El contagio está influenciado por

factores climáticos como la humedad y la temperatura, los cuales permiten que la

bacteria sobreviva externo al animal, favoreciendo la transmisión indirecta.

La leptospirosis considerada la epizoodemia más difundida en el mundo, tiene

tanto importancia económica como sanitaria. La repercusión económica más

importante en la explotación, es el falla reproductiva, secuela crónica de la

enfermedad en las vacas reproductoras, que causan mortinatos, abortos o

nacimientos de animales débiles, disminución de la fertilidad, entre otros. Los

estudios seroepidemiológicos sobre leptospirosis bovina en la región Noreste de

México han detectado a esta enfermedad en donde la frecuencia serológica

promedio es de 37.8 % (rango de 31 a 59 %). Las serovariedades con mayor

prevalencia fueron cepa H-89 (hardjo genotipo hardjoprajitno), hardjo, wolffi y

tarassovi. La infección con Leptospira spp., se ha ligado fuertemente a baja

fertilidad, expresada en bajos niveles de concepción, repetición de calores y

abortos que frecuentemente ocurren en 4 a 12 semanas después de una infección

aguda y se han reportado en el 5 y 6 mes de la gestación. Otros efectos que se

han descrito por efecto de la infección es el nacimiento de crías prematuras,

débiles o mortinatos; con respecto a este efecto diversos estudios han encontrado

la presencia de Leptospira spp en tejidos como placenta, hígado, riñones, cerebro

del producto y se cree que el síndrome de nacimiento de crías débiles se debe a

que la bacteria infecta la placenta y en este tejido se monta una inflamación fuerte,

lo cual limita el transporte de nutrientes de la madre al feto

Neospora caninum

Es un protozoario que pertenece al phylum Apicomplexa, familia Sarcocystidae, a

la que también pertenecen Toxoplasma gondii y Sarcocystis.

El ciclo de vida de este parásito comprende un ciclo indirecto, donde la

reproducción sexual (gametogonia) ocurre en el huésped definitivo (HD), mientras

la reproducción asexual (merogonia) ocurre en el huésped intermediario (HI); se

han descrito como HD los carnívoros domésticos y salvajes, empero los

herbívoros domésticos y salvajes e incluso los propios carnívoros juegan el rol de

HI. Dentro del ciclo de vida se reconocen los quistes tisulares que poseen forma

ovalada y miden hasta 100µm de diámetro y se han reconocido en cerebro,

médula espinal, retina y nervios periféricos de los HI, otros estadios son los

ooquistes que tienen forma esférica y poseen un diámetro de 11µm, cada uno de

ellos contiene en su interior dos esporoquistes, los ooquistes se encuentran en las

heces del HD, las que posteriormente contaminarán el medio para que el HI se

infecte y el ciclo siga su curso. Este parásito está relacionado con una afección

neuromuscular en perros y terneros, abortos y mortinatos en bovinos. El ciclo de

este parásito es indirecto, ya que ocurre entre los HD y los HI. En el ciclo se

reconocen tres fases, la primera de ellas se denomina enteroepitelial o intestinal,

en donde el HD ingiere quistes tisulares mediante el consumo de tejido

placentario, muscular, nervioso o piel, en esta fase se desarrolla la reproducción

asexual y sexual del parásito para posteriormente excretar junto con las heces los

ooquistes sin esporular, lo cual lleva un tiempo entre 5 y 17 días después de haber

consumido el HD el quiste tisular. Los rangos de seroprevalencia del parásito en

bovinos de carne bajo un sistema vaca-cría en Nuevo León se han estimado entre

0 a 35%. Se reconocen dos formas de transmisión por las que el parásito puede

diseminarse en la población bovina, la primera de ellas es la forma vertical

(aparentemente la principal), esta vía se presenta en hembras gestantes cuando

los taquizoitos invaden la placenta y por consiguiente el producto, la situación se

ve favorecida por el descenso en la actividad del sistema inmune en las hebras

gestantes y se acentúa con el progreso de la gravidez, lo repercute directamente

en el aumento de las tasas de infección del feto, de acuerdo a esto, se dice que la

probabilidad de transmisión vertical en hatos con infección latente se incrementa

de un 81 al 100% a partir de la semana 20 de gestación; otros aspectos

importantes sobre la infección de la progenie es el hecho que las madres

infectadas pueden producir a lo largo de su vida descendencia con la misma

condición, hasta hoy este acontecimiento es inconsistente por razones

desconocidas, pero se ha encontrado que un 95% de los becerros afectados

congénitamente nacen sin ninguna afección. La otra forma de transmisión es la

horizontal que puede suceder después del nacimiento o en algún momento de la

vida productiva del animal, en esta alternativa de infección participa activamente el

o los hospederos definitivos, pues al liberar a través del excremento grandes

cantidades de ooquistes infectivos contaminan el medio y aunado a esto que

existan condiciones favorables de manejo para que suceda el ciclo de vida del

parásito; bajo experimentación solo toma 2 a 4 semanas para que un becerro

infectado monte una respuesta inmune frente al parásito y además se observó en

un trabajo la capacidad de los taquizoitos depositados en calostro para infectar a

un becerro, estos hallazgos no se han comprobado abiertamente, pero existe

evidencia de seroconversión a las dos semanas de vida en becerros de madres

seronegativas, sin ningún contacto aparente con las fuentes principales de

contagio y bajo estas condiciones se han encontrado seroconversiones en 1%

anual. Los efectos en la reproducción bovina son variados y pueden ser muy

desastrosos. Algunas investigaciones concluyen que el 42% de las vacas

gestantes en una explotación lechera pueden abortar debido a Neospora

caninum, el riesgo de aborto en vaca seropositivas es de 3 veces más

comparadas con las vacas seronegativas, para las hembras afectadas

congénitamente el riesgo de aborto en su primer parto puede ser de 7 veces más

que en vaquillas sin afección, los mortinatos son otro efecto del parásito, se ha

descrito que las vacas seropositivas están dos veces más en riesgo de producirlos

que las seronegativas, otros efectos observados son el retorno del celo

constantemente, reabsorciones embrionarias, o el nacimiento de animales con

hidrocefalia, y afecciones en la columna vertebral; en los machos se ha

encontrado la presencia del parásito en semen pero no se ha descrito una

anomalía asociada.

Esquema de prevención de enfermedades

Cuando tenemos un hato infectado por las enfermedades que afectan a la

reproducción, la perdida de becerros antes del destete puede ser un grave

problema. En la producción ganadera se está dando a conocer la importancia de

tener en práctica un buen programa de bioseguridad. Aplicar el sentido común y

un esquema integral que incluya la suplementación con minerales y vitaminas, la

aplicación de biológicos veterinarios adecuados y en forma correcta y sencillas

prácticas de limpieza y desinfección, en gran medida eliminaran la mayoría de las

posibilidades de que ocurran enfermedades en el rancho Aunque el concepto de

bioseguridad en los ranchos ganaderos esta en formación, con el propósito de

contribuir a la definición del concepto se revisará un esquema de prevención de

enfermedades en los becerros antes del destete y la definición de algunos de los

términos usados comúnmente.

Se describirá cómo es posible tener éxito en destetar becerros, existen cuatro

periodos que requieren la atención de los productores estos son:

El manejo de la vaca en el último tercio de la preñez,

El-proveer de un cuidado apropiado al becerro durante las primeras 24 horas de

su vida,

Realizar ajustes en las necesidades y vacunaciones (si se requiere)

Preparar al becerro para el destete.

El manejo de la vaca en el último tercio de la preñez

La condición corporal de la vaca es el factor más importante que cuidar al

momento del parto aunque esta condición esta correlacionada con muchos

factores como el intervalo entre partos, producción de leche, peso al destete de la

cría y supervivencia de la cría. Las vacas y vaquillas deben de tener una condición

corporal de entre 5 y 6 al parto y así mantenerse, para asegurar que se preñen ya

que los animales con exceso o déficit de condición corporal tienen problemas

reproductivos. La condición corporal es generalmente el reflejo de la carga animal

o cantidad de animales, adecuada para la superficie del rancho aunque la

presencia de enfermedades o parásitos pueden contribuir a tener una baja

condición corporal, es necesario entonces tener un esquema general de manejo

sanitario de todo el ganado y en el caso específico de las hembras en etapa de

gestación avanzada o último tercio de la preñez, el manejo es delicado y se

deberán de mover lo menos posible para evitar pérdidas por golpes u otras

situaciones similares.

Cuidado apropiado del becerro durante las primeras 24 horas de su vida.

Los becerros deben de nacer en lugares que sean cálidos y secos. Los eventos

que rodean las primeras 24 horas de vida del becerro son muy importantes para la

salud futura del becerro. Como se mencionó anteriormente un manejo apropiado

del becerro comienza con el manejo de las vacas o vaquillas preñadas.

La alimentación con calostro. Los becerros deben de ingerir calostro en las

primeras horas de vida, preferentemente las primeras dos horas.

Inmunización activa. La inmunización activa de la madre es empleada para

aumentar la producción de anticuerpos específicos en calostro y leche, es

importante diseñar un programa de vacunación, con el propósito de controlar las

enfermedades que están causando la mortalidad en las crías.

Figura 1. Becerro débil persistentemente infectado con el virus de la diarrea

Viral Bovina (DVB), note el pelo hirsuto y la postración resultado de la

incapacidad para mantenerse de pie)

Tabla de Esquema de prevención de enfermedades en vacas con

preñez avanzada (7- 9 m).

Actividad Producto Nombre comercial

Control de Garrapata a)Organofosforados Asuntol

b) Piretrinas Butox

c) Amidinas Tak Tik

Bovitraz

Control de Mosca a) Fention Tiguvon

Desparasitación interna a) Ivermectinas Ivomec

b) Febendazol Panacur

Prevención de IBR, DVB,

PI3 Y VRSB.

Vacuna inactivada Horizon 4

Respishield 4

Cattle Master

Triangle 4

Prevención de Leptospirosis Bacterina con cinco

serovariedades *

* Verificar cepas

existentes en el rancho

Horizon 9 Combinada con

Virales

Leptobacterina (sola)

Prevención de Hemophilus

somnus

Bacterina Triangle 9 + HS

Prevención de pierna negra Bacterina siete vías Ultrabac 7

Prevención de otras

E coli, Rotavirus,

Coronavirus

Vacunas en caso de

diarreas

Scour Guard

Rotavec Corona

Prevención de

Tricomoniasis, Vibriosis y

Neosporosis

Vacunas en caso de

infertilidad, piómetras y

abortos tempranos

NOTA. La mención de nombres comerciales es solo a manera de guía no

implica recomendación o patrocinio en modo alguno.

Desinfección. Una desinfección efectiva requiere que las superficies estén bien

mojadas. Todas las áreas a ser desinfectadas deberán ser previamente limpiadas

para eliminar la materia orgánica presente de lo contrario, existirá una reducción

en la efectividad en la práctica, se recomienda un contacto de al menos 30

minutos para lograr una desinfección apropiada. Usar un programa de

desinfección y bioseguridad con la asesoría de profesionales, el uso del

laboratorio y la aplicación del sentido común puede salvar muchas vidas de

becerros que al final del año podrán ser la diferencia entre perder o ganar dinero el

rancho debe de tener una relación costo beneficios favorables.

Esquema de prevención en Becerros de 4 a 8 m de edad

Actividad Producto Nombre comercial

Control de Garrapata a)Organofosforados Asuntol

b) Piretrinas Butox

c) Amidinas Tak Tik

Control de Mosca Organofosforados Tiguvon

Desparasitación interna a) Ivermectinas Ivomec

b) Albendazol Valvazen

Prevención de IBR, DVB,

PI3 Y VRSB.

Vacuna inactivada Horizon 4

Respishield 4

Prevención de Hemophilus

somnus

Bacterina Triangle 9 + HS

Prevención de pierna negra Bacterina siete vías Ultrabac 7

Prevención de pasteurelosis Bacterina One Shot

NOTA. La mención de nombres comerciales es solo a manera de guía no implica recomendación o patrocinio en

modo alguno.

Tabla.- Causas comunes de aborto en bovinos

Nombre y Agente

Fuentes del agente

Historia Clínica

Etapa en que ocurre el aborto

Métodos de diagnostico

Prevención y Control

Muestras

Brucelosis Brucella abortus

Fetos Abortados

Aborto, Becerros Débiles Placenta Retenida Infertilidad

6 A 9 Meses Aislamiento a Partir de Fluidos Uterinos, Leche, Placenta Etc. Aglutinación

Vacunación de Hembras de 6-8 Meses

Feto Placenta Sueros

Vibriosis Campilo-bacter fetus venerealis

Pene y Prepucio Infectado

Infertilidad y Falla en la Concepción

6 A 8 Meses Cultivo a Partir de Fetos, Placenta, Contenido Abomasal. Anticuerpo en Moco Vaginal

Vacunación I.A. con Semen Tratado con Antibióticos

Placenta y Fetos para Cultivo. Moco Vaginal

Leptospirosis Hardjo. Pomona

Vacas Infectadas, Cerdos. Suelo y Alimento

Mastitis Ictericia Anemia Fiebre

Usualmente en el Ultimo Trimestre

Cultivos y Anticuerpos Fluorescentes. Cultivos Urinarios Aglutinación Microscópica En Suero

Bacterinas Aislar Animales Infectados

Placentas y Fetos, Orina y Leche Sueros Pareados.

Listeriosis Listeria monocytogenes

Pájaros Pescados Heces y Leche de Portadores Ensilados Alcalinos

Fiebre, Depresión y Placenta Retenida

La mayoría en el ultimo trimestre

Aislamiento a partir de Feto y Placenta

Aislar Animales Infectados

Placenta y Feto

Hongos Aspergilus sp

paja o heno Estacional con la mayor incidencia en primavera

De cuatro meses a termino

Elementos micoticos a partir de piel o lesiones pulmonares

Mantener al ganado con alimentos sin hongos

Placenta y fetos para estudios histológicos

Tricomonas Trichomona fetus

Toros infectados

Cruza natural e infertilidad piometra y abortos

Generalmente en el primer tercio de la gestación

Encontrar el parásito en la descarga uterina, fluidos o contenido estomacal

I.A. de toros no infectados Usar toros de 1 a 3 años.

Placenta y feto en solución ringer y refrigerado.

DVB Ganado infectado

Enfermedad febril en el hato antes de aborto y becerros nacidos con daño cerebral

Todas las etapas de gestación

Anticuerpos suero neutralizantes en becerros con anormalidades oculares cultivo viral

Vacunación a hembras de 8 meses

Placenta y feto Suero

RIB Ganado infectado

Comúnmente después de un brote de enfermedad respiratoria conjuntival o de introducción de animales infectados

De cuatro meses a termino

Anticuerpos fluorescentes

Vacunar hembras a los 8 meses de edad

Feto y placenta sueros pareados de la vaca.

Calendario de desparasitación para el control de Hemoparásitos y

Enfermedades Hemoparasitarias en Bovinos Carne.

David Domínguez Díaz, Rubén Cervantes Vega, Antonio Cantú Covarrubias,

Ramiro Ávalos Ramírez, Reymundo Villarreal Mata, Alfredo Cisneros Ayala.

Introducción

La garrapata es un parásito que se alimenta de sangre la mayor parte de su vida,

es vehículo de agentes infecciosos que causan diferentes enfermedades y

adicionalmente se encuentra dispersa en amplias zonas ganaderas del país. Son

de principal interés las garrapatas Boophilus microplus, Boophilus annulatus y

Amblyoma spp., por encontrarse con mayor frecuencia en los hatos de bovinos de

carne, además B. microplus es transmisor de Babesia bigemina, Babesia bovis

causantes de los signos clínicos de piroplasmosis y Anplasma marginale que

origina la anaplasmosis, por otra parte el género Amblyoma spp produce una gran

cantidad de larvas en cada ciclo de vida que al alimentarse causan perdidas de

sangre y por consiguiente baja producción de los bovinos afectados, por su

comportamiento de tres hospederos puede propagar algunas enfermedades.

La ocurrencia de infestaciones por garrapata es resultado de la interacción de

factores climáticos, tipo de garrapata, raza de bovinos, densidad de hato, manejo

del rancho, hatos vecinos, animales silvestres, grado de resistencia a los

ixodicidas y de manejo en cada una de las unidades de producción, así bien, el

tratamiento de las infestaciones tendrá que ser particular tomando en cuenta todos

los elementos antes descritos. Actualmente los productores de bovinos carne en el

estado usan abundantemente productos químicos para realizar baños por

aspersión o inmersión en los periodos que cada ganadero considera adecuados

obedeciendo ó no a la presencia de garrapatas sobre los bovinos, esta práctica se

heredó de la implementación en los setentas del siglo pasado, del plan nacional

para la erradicación de la garrapata y con los avances de la ciencia y evolución en

el control de ésta parasitosis, en la actualidad, no resulta adecuada.

El control integrado de las infestaciones involucra todos los factores ya descritos,

aunque también incluye la prevención como una herramienta que apoyado en el

conocimiento del ciclo vital de las garrapatas, el productor podrá hacer un uso

apropiado de los recursos disponibles para reducir los efectos negativos de estos

parásitos en la producción de bovinos carne.

Ciclo de Vida de la garrapata Boophilus microplus

Al igual que otros géneros de garrapata B. microplus tiene cuatro etapas

evolutivas y son: huevo, larva, ninfa y adulto; además este tipo de garrapata es

reconocida como de un solo hospedero, es decir, todos sus estados evolutivos los

realiza sobre una especie animal, en condiciones ambientales óptimas (25-35 °C y

humedad relativa superior al 60%) el ciclo biológico se completa en 19 a 21 días y

puede originar hasta tres generaciones en un año; en la figura uno se

esquematizan los cambios que experimenta la garrapata a través de su ciclo

biológico.

Para que las garrapatas lleguen a desarrollarse y aseguren su permanencia se

reconocen tres periodos en su ciclo de vida: no parasitario, de encuentro y

parasitario, así tenemos que en el estado no parasitario ó de vida libre se

encuentra la mayor parte de la población de garrapatas y los factores adversos

para su desarrollo en este periodo son ambientales principalmente, de tal manera

que la postura de huevos se realiza hasta en 40 días, mientras que en situaciones

singulares solo toma 3 días o la incubación de los huevos se prolonga hasta 5

meses en circunstancias adversas como una sequía prolongada. La forma de

encuentro se refiere al tiempo en que la larva de la garrapata está lista para

aproximarse al hospedero (bovinos, caballos, ovejas, perros, animales silvestres),

las causas desfavorables para la fase de encuentro también son de índole

ambiental logrando sobrevivir la larva en el agostadero hasta 8 meses, sin

embargo el tipo de vegetación presente en el campo influye en el tiempo de

aproximación, ya que algunos arbustos tienen la capacidad de repeler a las larva

cuando suben, sin embargo, existen oportunidades para la larvas como un alto

número de animales en una pasta o agostadero por desconocimiento del índice de

agostadero del rancho, la falta de descanso de potreros, la raza de los bovinos,

específicamente aquellos de tipo europeo, existen tratamientos alternativos al

empleo de productos químicos como el uso de vacunas que tienen efectos sobre

larvas que se alimentan de sangre, en la figura número dos se muestra una

sinopsis de situaciones predisponentes y favorables para la garrapata en este

estadio; el periodo parasitario hace referencia a los cambios que sufre la garrapata

una vez que se encuentra sobre el hospedero al consumir sangre, para este

tiempo se reconocen más acontecimientos a favor a causa de manejo, para lo cual

se mencionaran ampliamente en los siguientes tópicos.

Manejo de las infestaciones por la garrapata B. microplus

El manejo de las infestaciones necesita contar con la prevención, conocimiento del

problema y por consiguiente realizar un tratamiento adecuado a la situación del

rancho en particular, puesto que no existe algún químico o receta eficaz para

todos los ranchos; en el cuadro número uno se enlistan algunos factores

importantes antes de establecer cualquier tratamiento contra las garrapatas.

Factores a considerar antes de establecer un tratamiento

La prevención es una herramienta elemental en cualquier establecimiento

ganadero para evitar la entrada de enfermedades y en el caso de las garrapatas

también es empleada en las situaciones que se apuntan a continuación:

Encerrar por lo menos un mes a los animales de nuevo ingreso en corrales

que no estén en contacto con los animales del rancho, en este punto usted

podrá observar la presencia de garrapatas adultas, pues el encierro permite

que los estados larvarios consuman sangre estando el animal en reposo,

signos de alguna enfermedad tal vez sean evidentes, además conseguirá

que el animal tenga influencia del microclima del rancho.

Antes de poner en marcha algún tratamiento es primordial que usted

conozca el tipo de garrapata y si estas son resistentes, para lo cual una

muestra representativa deberá tomarse usando un 20% de los animales

adultos que tengan más de un año en el rancho. Conociendo el estatus de

las garrapatas se comprará solo los químicos adecuados y se evitaran

perdidas de dinero; en las secciones siguientes la toma de muestras será

revisada con detalle.

Con el desecho de animales no productivos (animales viejos, vacas que no

se cargan, animales enfermizos, becerros con pobre desarrollo, toros con

baja fertilidad) usted hará un uso eficiente de los recursos, pues tiene la

oportunidad de emplear tratamientos alternativos como un programa de

vacunación contra la garrapata que tiene un costo elevado pero puede dar

resultados satisfactorios si se usa adecuadamente.

Toma de muestras

El análisis de resistencia y taxonómico (tipo de garrapata) debe efectuarse por lo

menos dos veces al año y el procedimiento para la toma de muestras es de la

siguiente manera:

1. Encerrar por la tarde (5-7 pm) aproximadamente un 20% de los animales

del rancho que tengan más de un año de estar en el predio, en corrales

donde no tengan mucho movimiento.

2. Por la mañana siguiente (7-8 am) pasar a los animales por una manga de

trabajo y revisar a contra pelo en zonas del cuerpo donde generalmente hay

garrapatas.

3. Recoger estadios (garrapatas chicas) y garrapatas repletas de sangre con

cuidado de no dañar ninguna de sus partes, porque las pruebas así lo

requieren.

4. Es relevante recordar que para la prueba de resistencia los animales no se

hayan bañado con productos químicos en 15 a 20 días o haber aplicado

ivermectina por lo menos un mes previo a la toma de muestras.

5. Para determinar el tipo de garrapata se colocan garrapatas chicas y

grandes en tubos de ensaye con alcohol al 70%, no colocar un número

exagerado de garrapatas en un solo tubo puede emplear varios tubos y

colocar garrapatas de diferentes animales en los tubos.

6. Para la prueba de resistencia se usan garrapatas repletas de sangre en

buen estado en recipientes de doble fondo con perforaciones en la tapa que

se proporcionan en el laboratorio. En el fondo colocar un algodón

humedecido para crear un ambiente húmedo, nunca vierta agua en el

recipiente porque puede matar a las garrapatas, enseguida deposite por lo

menos 20 garrapatas en el otro recipiente y tape, entre más garrapatas

repletas en buen estado pueda mandar será mejor.

7. Selle e identifique el envase con el nombre del rancho y la fecha de la toma

de muestras, en una hielera se transportan las garrapatas hacia el

laboratorio en el mismo día de la toma de las muestras de preferencia, si

por algún motivo no logra conseguirlo pueden almacenarlas en la parte

inferior del refrigerador y enviarlas lo más pronto posible con un máximo de

hasta en 6 días posteriores a su colecta.

Comportamiento de las Infestaciones

El conocimiento de los periodos en los cuales hay infestaciones fuertes sobre el

ganado nos ayudará a estar preparados para esa situación, además de contar con

la oportunidad de tener opciones de tratamientos efectivos contra la población de

larvas en el campo que como sabemos representa el mayor problema a combatir,

como ejemplo se esquematiza en la figura 4 un comportamiento relativo de las

infestaciones en el estado. En el ciclo biológico de la garrapata se apuntó que a

través del año tiene relativamente tres generaciones y estas se manifiestan con

picos de mayor infestación, estos picos pueden presentarse de forma homogénea

en algunas regiones que comparten un microclima, pero aún así es prescindible

conocer el comportamiento en el propio rancho y esto se puede lograr de la

siguiente manera:

1. Encerrar por la tarde (5-7 pm) aproximadamente un 20% de los animales

del rancho que tengan más de un año de estar en el predio, en corrales

donde no tengan demasiado movimiento; este encierro tiene que realizarse

cada mes y puede formar parte del calendario de manejo.

2. Por la mañana siguiente (7-8 am) pasar a los animales por una manga de

trabajo y revisar a contra pelo en zonas del cuerpo donde generalmente hay

garrapatas.

3. Poner atención a las garrapatas llenas de sangre para contarlas, si la

mayoría de los animales presentan 20 garrapatas por lado o más esto

indica según expertos que el resto del ganado del hato tendrá que bañarse;

este parámetro de 20 garrapatas por lado se llama estabilidad enzótica, que

no es más que el número de garrapatas con las cuales pueden convivir o

subsistir los bovinos del rancho sin generar alguna enfermedad y se

establece por las características climáticas de la zona y por el

comportamiento que presentan las infestaciones de garrapatas, no obstante

este número puede variar cuando existen condiciones por demás

favorables para las garrapatas.

4. Anotar el número de garrapatas por lado de los animales encerrados y

tomar decisiones según el conteo.

Tratamiento

Existen en el mercado muchas opciones de productos disponibles para el

tratamiento de las infestaciones, sin embargo, es importante emplear solo aquellos

que la SAGARPA tiene a bien recomendar pues han pasado por una serie de

pruebas y/o ensayos para garantizar su eficacia; la lista de productos autorizados

es la siguiente:

Como se observó en la lista, los productos químicos se clasifican en cuatro

familias y cada una de ellas tiene un mecanismo de acción particular sobre las

garrapatas que las diferencia, así mismo, presentan un tiempo de vida o de

utilidad característico, además de exhibir un espectro restringido en algunos tipos

de moscas o garrapatas, para lo cual escoger una familia de químicos representa

una decisión que deberá estar sustentada en una análisis de resistencia y

apoyado por un Médico Veterinario en todo momento.

Puntos clave para hacer un uso eficiente de un producto químico

Realizar una prueba de Resistencia y Taxonómica antes de elegir alguno.

Revisar las recomendaciones de DILUCIÓN DEL PRODUCTO; de forma general se

recomienda usar como mínimo 6 litros de producto preparado para bañar mediante

aspersión a los animales adultos y 4 litros para los animales jóvenes.

Antes de verter el producto químico en el baño de inmersión o en el recipiente para

aspersión DEBE diluir el contenido de un bote (litro o la cantidad que se use) de producto

químico en un bote de 20 litros de agua para asegurar una mezcla homogénea y de esta

forma evitar pérdidas de químico sobre las paredes del baño de inmersión o sobre otros

contenedores.

EVITAR usar agua con ALTO CONTENIDO DE SALES para diluir el producto químico,

así como, AGUAS CON ELEVADO CONTENIDO DE MATERIA ORGÁNICA (tierra,

hojas, materia fecal). Para el baño de aspersión se debe EVITAR diluir el producto

químico en recipientes de METAL o aquellos que anteriormente contenían PINTURA, U

OTROS PRODUCTOS QUÍMICOS, designe un recipiente NUEVO de PLÁSTICO solo

para diluir el producto y contenerlo NO lo empleé para otra actividad.

En las cuatro familias de productos químicos se han reportado resistencia por un uso

indiscriminado.

Recordar que el ciclo de la garrapata B. microplus en condiciones óptimas es de 21 días

y se presentan tres generaciones de garrapatas por año aproximadamente.

Ningún producto químico por si mismo puede eliminar todas las generaciones de

garrapatas.

Las AMIDINAS NO TIENEN efecto sobre moscas del cuerno.

Las AMIDINAS requieren de un pH alcalino por encima de 7,12 en el baño de inmersión

por ello se emplea el estabilizador (cal) y una tira indicadora de pH.

Aquellos químicos para uso POUR-ON, solo deberían usarse en vacas gestantes para

evitar golpes en el baño de inmersión o aspersión, o cuando el baño se encuentre

retirado de donde los animales están agostando. En todo caso se recomienda tener

cuidado con la dosificación, ya que por su presentación es fácil cometer errores y con

esto incurrir en resistencia de las garrapatas.

NO MEZCLAR diferentes presentaciones de productos químicos por separado, o en su

defecto hacer mezclas caseras, ya existen mezclas autorizadas que se manejan con

particular precaución.

Todos los bovinos del rancho tienen que bañarse, revisar los demás animales

domésticos (cabras, ovejas, caballos, perros) para la presencia de garrapatas y realizar

un control apropiado para cada caso.

Antes de bañar (aspersión, inmersión) revisar el pronóstico de lluvia para evitar pérdidas

del garrapaticida una vez aplicado.

Evitar el baño de los animales en las horas más calientes del día, pues se pierde

producto químico por evaporación.

Cuando se apliquen Endectocidas (Ivermectinas, Avemectinas) por vía subcutánea se

prefiere usar una aguja por animal por cuestiones de bioseguridad, estas agujas pueden

ser desechables o de acero inoxidable debidamente desinfectadas con alcohol al 70%

(de venta libre en farmacias).

Baño de Aspersión

Este método de tratamiento es empleado con mayor frecuencia por ser práctico y

poco costoso para el ganadero, existen diferentes formatos de este baño como la

mochila aspersora, motobombas de gasolina y baños de aspersión en túnel que

ofrece una ventaja sobre los otros métodos, ya que ahorra agua y producto

químico, el baño de los animales es adecuado como si se tratase de un baño de

inmersión, puede elaborarse de materiales de bajo costo y no requiere de mucho

entrenamiento para ejecutarlo, sin embargo, presenta algunos inconvenientes en

las boquillas aspersoras, pues se tapan con frecuencia con el pelo de los bovinos,

por cada 30 bovinos el agua debe cambiarse por que contiene excremento, pelo,

tierra que afecta la calidad del producto químico preparado, las partes móviles del

equipo pueden ejercer daños físicos a los bovinos si estas no están perfectamente

instaladas.

En términos generales el baño de aspersión es una buena opción cuando el

número de animales a bañar es reducido, pueden emplearse las corraletas ya

existentes en el rancho para realizar el baño, no obstante, es de importancia

revisar los siguientes puntos:

Seguir un orden al tiempo de bañar a los animales (cabeza-lomo-parte media del

cuerpo-extremidades).

Colocar el aspersor a no más de un metro de los animales.

No bañar en contra del viento.

De forma práctica se pueden bañar adecuadamente con una motomba de gasolina

hasta cuatro animales adultos a la vez en un corral reducido.

Puede utilizar las mangas de manejo para el baño, siempre y cuando estas no

sean de materiales que cubran gran parte del cuerpo de los animales.

Tome su tiempo para bañar, bañar con prisa no es bañar.

Recordar que el éxito del producto químico reside la aplicación de este en una

superficie extensa de la piel para poder absorberse y llegar a la sangre que

consumen las garrapatas.

No dejar áreas sin bañar como orejas, ubre, escroto, parte ventral, inserción de la

cola, área de cuernos y cabeza en general.

A continuación se muestran fotografías de baño de aspersión incorrectas.

Baño de Inmersión

Este tipo de baño es adecuado para bañar un gran número de animales aunque

requiere una inversión para realizar la instalación y las observaciones son las

siguientes:

Revisar que la cantidad de sólidos disueltos no rebase el 25% del contenido

del baño, para lo cual puede tomar una muestra de agua que debe revolver

antes para que la muestra sea homogénea, de preferencia en un recipiente

de un litro dejarla reposar por una hora aproximadamente y revisar los

sólidos, si estos rebasan el parámetro anotado anteriormente es indicativo

que el baño debe limpiarse y reponerse con agua nueva y limpia.

Conocer la capacidad del baño de inmersión, esto lo puede lograr siguiendo

la fórmula que se anota en la figura 6, una vez que conozca este parámetro

es recomendable anotar con pintura indeleble sobre las paredes del baño la

cantidad de litros de agua que corresponde, esto ayudará al correcto

depósito de agua y producto químico.

Revisar con atención las indicaciones del fabricante de los productos

químicos para hacer un buen uso de ello en la primer recarga como en la

siguiente, es de especial precaución el uso de amidinas, pues requieren un

estabilizador (cal) y un pH adecuado para funcionar.

Recordar que es de suma importancia diluir previamente el contenido del

producto químico en un recipiente con agua para asegurar una mezcla

homogénea y posteriormente verte la mezcla sobre el agua del baño de

inmersión.

Control de Brucelosis

Desde el año 1971 existe una Campaña oficial que fue reactivada en 1993.

Existen las instancias oficiales que han caracterizado la enfermedad mediante

estudios para la determinación de la prevalencia estableciéndose las zonas de

riesgo. Se cuenta con biológicos tanto para el diagnóstico como para la profilaxis

de la enfermedad:

Figura: Fórmula y diagrama para calcular la capacidad del baño de inmersión.

Se estableció la dosis reducida de la cepa 19 de B. abortus, para su aplicación en

vacas, se inició el uso de esta modalidad de la vacuna en varios lugares del país;

México es el único país del mundo que produce y expende comercialmente,

además de la dosis para becerras, la dosis para vacas de la vacuna RB51 de B.

abortus.

Igualmente el país está organizado con instancias para operar, ejecutar y evaluar

las actividades tendientes a la constatación de hatos y rebaños, así como la

aplicación sistemática de vacunas. La Dirección General de Salud Animal tiene el

registro de casi 2,000 Médicos Veterinarios Responsables Autorizados en el área

de rumiantes para aplicar los esquemas de erradicación de la enfermedad.

En el año 1994 el Estado de Sonora obtuvo el Reconocimiento de fase de

Erradicación de Brucelosis bovina, en 2002 el Estado de Yucatán ingresó a la fase

de erradicación, la Región Norte del Estado de Sonora fue reconocida como libre

de Brucelosis bovina el 26 de noviembre de 2003.

Durante 2010 se logró el cambio a fase de Erradicación del Estado de Baja

California Sur, la Región “A” del Estado de Campeche, conformada por 10

municipios y la Región denominada “Costas” del Estado de Guerreo, conformada

por 25 municipios.

Las pruebas diagnósticas autorizadas por la SAGARPA son:

- Prueba en tarjeta.

- Prueba de rivanol.

- Prueba de fijación del complemento.

La prueba de tarjeta se efectúa con muestras de suero sanguíneo no bemolizado.

Los resultados de la prueba de tarjeta arrojarán sólo dos clasificaciones:

Positivos

negativos,

Dependiendo de la presencia o ausencia de aglutinación, según sea el caso.

La prueba de rivanol

Se debe realizar sólo en suero de bovino: Con sueros no bemolizados, positivos a

la prueba de tarjeta, los resultados de la prueba de rivanol se clasifican

En sueros positivos y negativos.

Fijación del complemento

Se debe realizar con sueros no bemolizados que hayan resultado positivos a las

pruebas de tarjeta y/o rivanol.

Los resultados clasificarán a los sueros como positivos los títulos mayores a 1/16

en frío o mayores a 1/8 en caliente y negativos.

Procedimiento para la obtención de la constancia de hato libre

Ganado productor de leche y de doble propósito.- En bovinos y caprinos se deben

realizar tres pruebas diagnósticas con resultados negativos, realizadas con

intervalos entre 60 y 90 días entre una y otra prueba.

Ganado productor de carne.- En el bovino, caprino y ovino se deben realizar dos

pruebas diagnósticas con resultados negativos, entre los siguientes 3 a 10 meses

posteriores a la realización de la primera prueba.

La aplicación de las pruebas diagnósticas oficiales en bovinos se realiza en

hembras mayores de 22 meses de edad que recibieron la dosis clásica de vacuna

cepa 19 entre los 3 y 6 meses de edad; en hembras vacunadas con dosis

reducida, únicamente se podrán realizar las pruebas diagnósticas 10 meses

después de la fecha de vacunación; en las hembras nunca antes vacunadas y en

los machos enteros, el muestreo se debe realizar a partir de los 6 meses de edad.

Al finalizar el número de pruebas que correspondan a un determinado hato, si los

resultados fueron negativos, se expedirá la constancia de hato libre de brucelosis,

la cual tendrá una vigencia de 14 meses.

Bibliografía

Norma Oficial Mexicana 041ZOO 1996 Campaña nacional contra la brucelosis en

los animales.

Control de Tuberculosis Bovina

Introducción

La tuberculosis es una enfermedad de transmisión directa e indirecta, febril, de

curso típicamente crónico, que afecta a todos los animales, incluido el hombre. Es

producida por bacterias del género Mycobacterium, el M. Bovis, el complejo M.

avium (constituido por las especies M. avium, M. intracelulare y M. scrofulaceum) y

el M. Tuberculosis. Se caracteriza patológicamente por un granuloma específico

con tendencia a la caseificación.

Costos de la Tuberculosis (Tb).

En México no se tienen estadísticas confiables para estimar la perdida en la

producción ganadera por concepto del virtual cierre de fronteras a la exportación,

del ganado, sin embargo de los datos que se pueden extrapolar de nuestros

vecinos del estado de Texas podemos tomar en cuenta la información que ellos

liberan.

En octubre del 2000, el USDA estimó que los productores de ganado de Texas

(14,000,000 cabezas de Inventario) perderían de 260 a 788 millones de Dólares

en 5 a 10 años, por los costos extra y disminución del valor de sus hatos al no

poder sacar de Texas su ganado. En junio de 2002, Texas, perdió el estatus de

libre de tuberculosis bovina. En 2001 se encontraron 2 de 153,000 hatos

infectados. Estos dos hatos uno lechero y el otro productor de ganado de registro

fueron despoblados y otros 150 hatos cercanos o ligados han sido probados

siendo negativos. Para movilizar ganado fuera de Texas, deben de aretar y probar

más de 1.5 millones de cabezas cada año. En el periodo de 1997 a 2001, se

diagnosticaron en Texas 109 casos de Tb en ganado Mexicano. A partir de

octubre 2002, se endurece la regulación que permite la exportación de ganado a

Texas, especialmente el ganado de cría y de rodeo por el riesgo para el ganado

en Texas, 6 de los toros de rodeo sacrificados en 2001 fueron positivos a Tb.

Patogenia

Se trata de una enfermedad cíclica, que cumple su proceso evolutivo en distintos

períodos, caracterizados por síntomas y lesiones propios para cada uno de ellos.

La evolución de los mismo, está condicionada a diversos factores ligados a:

Huésped (estado inmunitario, edad, nutrición, genética, etc.), al bacilo (número,

virulencia, etc.) y al medio ambiente. La infección ocurre en el 50% de los

expuestos. De los infectados el 10 al 15% desarrollan la enfermedad en forma

activa. Por la ruta aerogena, se necesitan 1 a 2 bacilos para infectar.

Tuberculosis primaria

El primer contacto del bacilo tuberculoso con un organismo sano, origina una

lesión inflamatoria inespecífica. Su localización dependerá de la puerta de entrada

(generalmente respiratoria o digestiva). La asociación entre la lesión inicial en la

puerta de entrada y el nódulo regional constituyen lo que se denomina "complejo

primario". Este tiene una evolución hacia diversas formas:

Hacia la cura: pudiendo dejar o no cicatriz. Hay cura bacteriológica.

Hacia la estabilización (foco latente): en esta forma el proceso evolutivo puede

detenerse No hay cura bacteriológica, ya que hay bacilos virulentos enquistados

en las lesiones.

Hacia la generalización precoz inmediata: esta es la forma resultante de la

diseminación bacilar por vía linfática o hemática a todo el organismo, produciendo

lesiones tuberculosas en diversos órganos, siendo la lesión en los nódulos

linfáticos una constante.

Formación de complejo primario

El bacilo llega a los alvéolos en donde se rodea de macrófagos. Tras la infección

en los alvéolos se recubren de macrófagos, para formar el complejo primario

La generalización precoz aguda: se presenta cuando la resistencia es baja, Son

típicas las lesiones de tuberculosis miliar aguda (pequeños tubérculos, grises o

amarillos). Se presentan en forma más común en pulmón. También puede haber

lesiones exudativas (neumonía, meningitis), con desenlace fatal.

La generalización precoz moderada o lenta: se manifiesta cuando hay resistencia

parcial, Son típicas la tuberculosis nodular y la tuberculosis perlada (lesiones

nodulares).

Tuberculosis secundaria

Son características las lesiones caseosas con formación de úlceras y nódulos.

La diseminación del bacilo no es por vía linfohemática, sino por vía canalicular.

Puede estabilizarse, sin compromiso inmediato de la vida. Pero puede evolucionar

hacia una generalización aguda tardía. Es característica la tuberculosis miliar,

lleva a la muerte.

Inmunopatogenia

Los macrófagos alveolares fagocitan y destruyen a la mayor parte de los bacilos,

transportándolos eventualmente a los nódulos regionales. Se multiplican a nivel

intracelular en forma logarítmica, en macrófagos reclutados del torrente

sanguíneo, destruyéndolos. Liberados nuevamente, atraen por mecanismos

quimiotácticos a monocitos y macrófagos, formándose un tubérculo primario

inicial.

Normatividad aplicable

La NOM 031 ZOO 1995, Campaña Nacional contra la Tuberculosis Bovina, es de

observancia obligatoria en todo el territorio nacional y tiene por objeto, regular y

establecer los procedimientos, actividades, criterios y estrategias, técnicas y

características para el control y erradicación de la tuberculosis bovina.

Su campo de aplicación serán todas las explotaciones pecuarias que manejen

bovinos, inclusive para aquellas personas que posean únicamente un animal. Para

efectos de esta Norma, se entiende por:

Animal enfermo: Es aquel animal de las especies bovinas del cual se aisló el

Mycobacterium bovis.

Animal expuesto: Es aquel de las especies bovinas que ha tenido contacto con un

animal o animales enfermos de los cuales se aisló el Mycobacterium bovis.

Animal negativo: Es aquel animal que ha sido sujeto a una o varias pruebas

diagnósticas oficiales de tuberculosis y cuyos resultados han sido negativos.

Animal reactor: Es el que ha sido sujeto a una o más pruebas diagnósticas

oficiales de tuberculosis y cuyos resultados han sido positivos.

Constancia de hato libre: Documento oficial otorgado por la Secretaría de

Agricultura, Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación (Secretaría), al

propietario del hato que ha demostrado mediante pruebas de tuberculina, que los

animales se encuentran libres de tuberculosis bovina.

Constancia de hato negativo: Documento oficial otorgado por la Secretaría, al

propietario del hato que ha resultado negativo a una prueba de tuberculina.

Prevalencia: Número de casos de tuberculosis que se presentan en una población

animal, en un área geográfica definida durante un período de tiempo determinado.

Pruebas diagnósticas: Aquellas autorizadas por la Secretaría para la Campaña y

que son:

Prueba de tuberculina:

- en el pliegue caudal

- cervical comparativa

- cervical simple

- Histopatología.

-Aislamiento bacteriológico.

Las tuberculinas autorizadas para efectos de Campaña son:

PPD bovino: elaborado con Mycobacterium bovis cepa AN5, que se utilizará en la

prueba caudal, cervical comparativa y cervical simple.

PPD aviar: elaborado con Mycobacterium avium cepa D4, que será utilizada en la

prueba cervical comparativa.

La tuberculina de PPD aviar debe contener como colorante el rojo de Ponceau,

para distinguirla de la de PPD bovino que no lleva colorante.

Las tuberculinas deben ser transportadas y conservadas en frío a una temperatura

de 4 a 8°C y protegidas de la luz solar directa durante el trabajo de campo, debe

verificarse el lote y fecha de caducidad del producto. Una vez utilizado el antígeno,

deberá desecharse el resto del contenido del envase si no se va a utilizar el mismo

día.

Las técnicas de manejo para la aplicación de tuberculina en el pliegue caudal

consistirán en:

Inmovilización del animal.

Limpieza de la zona donde se aplicará el biológico. Además deberá efectuarse un

minucioso examen de ambos pliegues, anotando cualquier irregularidad que

pueda confundirse con la prueba.

Insertar la aguja en toda su longitud intradérmicamente, haciendo un ángulo de

45°, aplicando 0.1 ml del biológico. En el sitio de la aplicación aparecerá un

pequeño abultamiento.

La interpretación de la prueba caudal se ajustará a lo siguiente:

La lectura se hará por el mismo Médico Veterinario que efectuó la prueba,

mediante la observación y palpación del sitio donde se practicó la inoculación,

realizándose a las 72 horas (± 6 horas) posteriores a la aplicación del biológico, el

médico verificará que se trata de los mismos animales inoculados.

Las reacciones se clasifican como:

Negativa: Cuando no se observe ni se palpe ningún cambio en la piel del sitio de

aplicación.

Reactor: Cuando sea visible y/o palpable cualquier engrosamiento, rubor, calor,

dolor o necrosis en el sitio de aplicación.

La Prueba Cervical Comparativa.

Es la única prueba autorizada para confirmar o descartar animales reactores a la

prueba de pliegue caudal. Se podrá efectuar por única vez dentro de los 10 días

naturales siguientes a la lectura de la prueba caudal; o bien después de

transcurridos 60 días naturales, debiéndose aplicar por un Médico Veterinario

oficial o aprobado, se aplica en hatos o regiones con presencia de Mycobacterium

paratuberculosis y/o Mycobacterium avium. Esta prueba no debe ser utilizada en

hatos cuando el diagnóstico se haya obtenido por el aislamiento de M. bovis de las

muestras de los animales sacrificados.

Para la aplicación de la Tuberculina en la prueba cervical comparativa, se tomarán

en cuenta las siguientes prácticas:

Previo a la realización de la prueba, el Médico Veterinario deberá contar con la

documentación de las pruebas anteriores para verificar la entrada o salida de

animales del hato.

Rasurar el área donde se inoculará la tuberculina en el tercio medio superior del

cuello. El sitio de aplicación superior será cerca de 10 cm debajo de la cresta, el

sitio inferior será aproximadamente de 13 cm debajo de la anterior, esta prueba se

aplica mediante la inoculación intradérmica de 0.1 ml de PPD aviar y 0.1 ml de

PPD bovino. Previo a la inoculación, se levanta un pliegue de piel en el centro de

las áreas rasuradas y se procederá a medir el grosor de éstos, utilizando el

cutímetro. El registro final de las medidas deberá redondearse según el siguiente

criterio: de 6.2 baja a 6.0, 6.3 sube a 6.5; de 6.7 baja a 6.5; de 6.8 sube a 7;

debiendo registrarse los valores en los formatos para prueba cervical comparativa.

El PPD aviar se inocula intradérmicamente en el área rasurada superior y el PPD

bovino en la inferior. La lectura de esta prueba se realizará 72 horas ( 6 horas),

midiendo con el cutímetro el grosor de las reacciones, estas serán anotadas en el

formato oficial de la prueba cervical comparativa, sustrayendo el valor de la

primera lectura al de la segunda; una vez realizada esta operación se procede a

graficar los valores obtenidos tanto de PPD aviar como del bovino y el punto de

intersección dará el resultado de la prueba. De acuerdo a la gráfica oficial se

interpretarán los resultados.

Prueba cervical simple.

Esta prueba se empleará para probar hatos en los que se conoce la existencia de

M. bovis; o bien, para probar ganado que estuvo expuesto directa o indirectamente

con hatos infectados con M. bovis.

Se debe rasurar el área donde se inoculará la tuberculina en el tercio medio

superior del cuello. El sitio de aplicación será aproximadamente 10 cm debajo de

la cresta. Esta prueba se aplica mediante la inoculación intradérmica de 0.1 ml de

PPD bovino en la región media cervical, haciendo la lectura el mismo Médico

Veterinario que aplicó la prueba mediante la observación y palpación del sitio en

donde se practicó, realizándose a las 72 ± 6 horas posteriores a su inoculación.

Las reacciones se clasifican como:

Negativa: Cuando no se observe ni se palpe ningún cambio en la piel del sitio de

aplicación.

Reactor: Cuando sea visible y/o palpable cualquier engrosamiento, rubor, calor,

dolor o necrosis en el sitio de aplicación.

Toma de muestras.

La toma de muestras para estudios histopatológico y bacteriológico se realizará de

la siguiente forma:

Se seleccionarán y tomarán muestras de los siguientes órganos que presenten

lesiones compatibles con tuberculosis o secreciones sugestivas:

Nódulos Linfáticos. Tomando muestras preferentemente de los nódulos de la

cabeza, preescapulares, mediastínicos anteriores y posteriores y bronquiales

derecho e izquierdo. En el caso de tuberculosis miliar tomar muestras de nódulos

mesentéricos.

Pulmones. La lesión tuberculosa puede ser caseosa o calcificada o una cavidad

franca. De este órgano se tomarán muestras de 2 cm por lado de las lesiones

presentes.

Útero en caso de metritis tuberculosa. Se caracteriza por secreción continua de

grandes cantidades de pus amarilla teniendo el aspecto de leche cuajada. Se

tomarán las muestras del órgano y de este exudado.

Otros órganos. También se tomarán muestras de los siguientes órganos cuando

presenten lesiones sugestivas de tuberculosis: bazo, hígado, riñón, médula ósea,

ovarios, testículos y glándula mamaria.

Si el animal es positivo a la prueba de tuberculina y en la necropsia no presenta

cambios que sugieran la infección del animal, entonces se deberán enviar al

laboratorio nódulos de la cabeza como los retrofaríngeos, mandibulares,

parotídeos y las tonsilas faríngeas, así como los mediastínicos y mesentéricos.

Todas las muestras deberán estar perfectamente identificadas, anotando:

Nombre del propietario.

Ubicación de la explotación de origen.

Donde se obtuvo la muestra.

Organo.

Descripción del animal: especie, raza, sexo y edad.

Identificación precisa del animal como arete, marca, u otro.

Nombre, registro y domicilio del Médico Veterinario oficial o aprobado que remite

la muestra.

Destino del canal y vísceras, ya sea decomiso parcial o total.

En el laboratorio las muestras serán sometidas a las pruebas de diagnóstico

bacteriológico o histopatológico.

Diagnóstico bacteriológico.

Examen directo: Mediante la tinción de Ziehl Neelsen o de nueva fucsina para

microorganismos ácido alcohol resistentes en frotis realizados con el material

sospechoso. En caso de ser una muestra positiva, con esta tinción se observarán

bacilos teñidos de color rojo.

Puede utilizarse la microscopía de fluorescencia mediante la tinción con

auraminarodamina, auramina acridina o auramina fenol, que tiñe a la bacteria de

color verde brillante.

Examen indirecto: Cultivo, aislamiento e identificación del Mycobacterium, a través

de la siembra de material sospechoso en medios especiales como Herrolds con y

sin huevo, Middle Brook y Stonebrink, Petragnani, ATS y Lowenstein Jensen.

Diagnóstico histopatológico

Se deberá utilizar la tinción de hematoxilina-eosina. Esta técnica permite identificar

cualquier cambio morfológico de los tejidos, así como la presencia de los

granulomas. Además pueden utilizarse las tinciones de Ziehl Neelsen y nueva

fucsina en cortes o improntas realizados con el material sospechoso.

Forma de envío de muestras para el aislamiento bacteriológico.

Es necesario sumergir los tejidos en solución saturada de borato de sodio, si se

trata de nódulos aparentemente afectados se deberán enviar completos sin grasa;

si se trata de otro tejido, se deberá seleccionar la posible lesión y enviar muestras

no mayores de 2 cm por lado.

Hato libre

Para la obtención de constancia de hato libre, será necesario llevar a cabo los

siguientes pasos:

Ganado Productor de leche y de doble propósito (mixto).- Se deberán realizar tres

pruebas diagnósticas en forma homogénea a la totalidad con resultados negativos,

con intervalos no menores de 60 días naturales ni mayores de 90 entre una y otra

prueba a todos los animales mayores de 15 meses. En hatos lecheros con menos

del 10% de prevalencia, se procederá al sacrificio de los animales reactores, en

aquellos con más del 10%, tendrán la opción de ser enviados a Unidades de

Producción Controlada, en un plazo no mayor de 10 días naturales o instrumentar

esta unidad como tal.

Ganado productor de carne.- Todo el hato mayor de 15 meses será sujeto a dos

pruebas diagnósticas, realizándose con intervalos no menor de 10 meses y no

mayor de 14. Los resultados en ambas pruebas deberán ser negativos.

Para el reporte de los resultados de las pruebas diagnósticas, se deberá utilizar el

dictamen oficial de la prueba de tuberculina.

Personal oficial de la Secretaría, deberá revisar los dictámenes de prueba y enviar

la documentación a la Comisión. que expedirá, cuando así proceda una

constancia de hato negativo, en ganado de carne, cuando se obtengan resultados

negativos en una primera prueba y a solicitud del interesado.

Al finalizar el número de pruebas que correspondan a un determinado hato y si los

resultados fueron negativos, la Comisión expedirá en un plazo no mayor de veinte

días a partir de la recepción de la documentación comprobatoria, la constancia de

hato libre de tuberculosis, la cual tendrá vigencia de 14 meses

La Comisión enviará las constancias a la Delegación que corresponda y ésta, con

el apoyo del Coordinador estatal de la Comisión, se hará cargo de remitirlas a los

interesados. Los propietarios de hatos libres de tuberculosis deberán conservar los

documentos señalados, a fin de que estén disponibles cuando se requiera su

comprobación. Asimismo, será su responsabilidad gestionar oportunamente la

revalidación.

Revalidación de la constancia de hato libre:

Se deberá demostrar con documentos, que todos los animales que ingresaron al

predio en los últimos 16 meses, fueron negativos a la prueba diagnóstica oficial o

que proceden de un hato libre.

Realizar una prueba diagnóstica al 100% del pie de cría de los animales mayores

de 24 meses, con resultados negativos, en un periodo no mayor de 30 días

naturales antes de la fecha de vencimiento de la constancia. En el caso de que se

detecten animales positivos, se cancelará la constancia de hato libre y se

cuarentenará la unidad de producción.

Los animales reactores de un hato serán sacrificados en un rastro autorizado por

la Secretaría, en un periodo no mayor de 10 días naturales posteriores a la

notificación del resultado, de acuerdo a la fase de Campaña, excepto el ganado

lechero especializado en programa de monitoreo de la fase de control.

En el incumplimiento a lo antes mencionado dará lugar a la cuarentena de la

explotación, la que no podrá levantarse, hasta que en un siguiente muestreo

del100% de los animales sujetos a la prueba diagnóstica del hato, realizado en un

periodo no menor de 60 días ni mayor de 90 días naturales y no se identifiquen

animales positivos.

Todos los hatos o lotes en donde se encuentren animales reactores, deberán ser

cuarentenados precautoriamente al momento de la notificación a la Secretaría y se

deberá de programar dentro de los siguientes 30 días naturales una prueba de

todo el hato.

Los animales expuestos deben permanecer en el rancho en donde fueron

encontrados para que les sea practicada la prueba correspondiente. Los reactores

serán enviados a rastro y los negativos podrán permanecer en el rancho para que

les sea practicada otra prueba, a menos que se obtenga el Certificado

Zoosanitario para su movilización, en cuyo caso, debe realizarse directamente a

un rastro autorizado por la Secretaría en donde se practicará el sacrificio

inmediato y la inspección post-mortem.

Los bovinos de 6 a 12 meses expuestos a M. bovis se les practicará la prueba

caudal, los negativos podrán enviarse a corrales o praderas cuarentenarias dentro

del estado. Los reactores deberán identificarse y enviarse rastro autorizado.

Los hatos en donde la infección por M. bovis ha sido confirmada por resultado de

laboratorio, deben permanecer bajo cuarentena hasta que pasen dos pruebas de

tuberculinización con resultados negativos, realizadas a intervalos de 60 a 90 días

naturales y una tercera prueba después de 180 días naturales de efectuada la

primera prueba. Durante estos lapsos, la movilización de estos animales sólo se

podrá realizar directamente al rastro y con el Certificado Zoosanitario

correspondiente.

Los hatos en donde los reactores no presenten lesiones macroscópicas ni

microscópicas y que no haya sido posible encontrar o detectar la evidencia de M.

bovis, podrán liberarse de la cuarentena, una vez que todo el hato haya sido

probado después de 60 días de la última prueba y se obtengan resultados

negativos y la constancia que así lo acredite.

Los animales sospechosos que resulten de la prueba cervical comparativa, deben

ser cuarentenados hasta que se les practique nuevamente la prueba cervical

comparativa y se clasifiquen como negativos; o bien, si se desea movilizar a los

animales directamente para el abasto, serán considerados como positivos por lo

que deberán llevar la identificación correspondiente acompañados del Certificado

Zoosanitario.

Si los animales sospechosos al ser sacrificados no muestran lesiones

macroscópicas ni microscópicas, deberá ser muestreado todo el hato entre los 60

y 90 días naturales siguientes.

Los hatos que por rastreo sean el origen de los animales sospechosos y/o

positivos, deberán ser cuarentenados en forma precautoria y se deberá programar

dentro de los siguientes 30 días naturales una prueba de todo el hato.

El futuro de la Tb

Técnica diagnóstica alternativa

La reacción en cadena de la polimerasa, amplifica el DNA de la bacteria M. Bovis,

lo que permite distinguir la Tb de cualquier otro microorganismo 93% de eficiencia

en 3 días después de recibir las muestras.

Cultivos. Se redujo a una semana el tiempo requerido para el aislamiento.

Vacunas. Se trabaja en varias líneas buscando con DNA que proteja al ganado y

líneas resistentes a la Tb.

Capacitación y actualización. Son las dos vías más efectivas para ayudar a los

productores y veterinarios a que adopten medidas de prevención que minimicen el

riesgo de introducción de enfermedades infecciosas.

Bibliografía

Álvarez-Ojeda, G. y col (2009). Protocolo de bioseguridad y biocontención en un

rancho de China N.L. INIFAP. Desplegable para productores #10.

INIFAP/CIRNE/P-123.

Álvarez-Ojeda, G. y col (2010). Protocolo para implementar medidas de

bioseguridad y biocontención en un rancho de Montemorelos, N.L.; INIFAP.

Desplegable para productores #11. INIFAP/CIRNE/P-130. MX-0-310402-43-03-13-

12-11.

Avalos-Ramírez, R. y col. (2004). Prevalencia y factores de riesgo asociadas a la

presencia de IBR, DVB, Leptospirosis y Neosporosis en hatos de Nuevo León.

Proyecto Fondos Mixtos CONACYT-NUEVO LEÓN. Clave NL-2004-C05-107.

Avalos-Ramírez, R. Manejo para reducir la incidencia de enfermedades

reproductivas en el sistema vaca-becerro. Cuarto Simposio sistema Vaca-Becerro.

UGRNL. FMVZ-UANL. Cd. Guadalupe N.L. 15-16 mayo 2007.

Cantú, C.A. (2002). Factores asociados a la epidemiología de los principales

problemas reproductivos en bovinos productores de carne en el estado de Nuevo

León (IBR, BVD, Leptospirosis). http://www.unionganaderanl.org.mx

Cervantes Vega, R. y cols. (2011). Sistema de Producción Vaca-Becerro. En

Consorcio Técnico del Noreste de México. Bioseguridad e inocuidad en la cadena

bovinos carne en México. Monterrey, N.L. México. 2011. ISBN: 978-607-9154-00-

4.

Domínguez, D.D. (2006). Detección y diferenciación molecular del virus de la

Diarrea Viral Bovina (BVDV) en el sistema vaca-cría de Nuevo León. Tesis de

Licenciatura. FMVZ-UANL.

Dominguez, D.D. (2008). Seropositividad y factores de riesgo para BVDV, IBR,

Neosporosis y Leptospirosis en hatos del sistema vaca-cría de Nuevo León. Tesis

de Maestría. FMVZ-UANL.

Dubey, J. P., and Lindsay, D. S. (1996). A review of Neospora caninum and

neosporosis. Vet Parasitol 67(1-2), 1-59.

Fray, M. D., Mann, G. E., Clarke, M. C., and Charleston, B. (1999). Bovine viral

diarrhea virus: its effects on estradiol, progesterone and prostaglandin secretion in

the cow. Theriogenology 51(8), 1533-46.

Howard., J. L. Current Veterinary Therapy. Food Animal Practice. Ed. W.B.

Saunders. Philadelphia 1986.

Levett, P. N. (2001). Leptospirosis. Clin Microbiol Rev 14(2), 296-326.

Miller, D. A., Wilson, M. A., and Beran, G. W. (1991). Relationships between

prevalence of Leptospira interrogans in cattle, and regional, climatic, and seasonal

factors. Am J Vet Res 52(11), 1766-8.

Muraira Valdez, J. y Morales Loredo, A. (2012). Comité de Fomento y Protección

Pecuaria del Estado de Nuevo León. Comunicación Personal.

OIE (2004). Infectious bovine rhinotracheitis / infectious pustular vulvovaginitis. In:

Manual of Standards Diagnostic Tests and Vaccines 2004, Edition 5. Office

International des Epizooties. http://www.oie.int

OIE (2004). Bovine Viral Diarrhoea In: Manual of Standards Diagnostic Tests and

Vaccines 2004, Edition 5. Office International des Epizooties. http://www.oie.int

Rocha, T. (1998). A review of leptospirosis in farm animals in Portugal. Rev Sci

Tech 17(3), 699-712.

SAGARPA. www.sagarpa.gob.mx

Salinas, M. J. A., Mora, G.J.J., Zárate, R., J.J., Riojas, V.V.M., Hernández, V.G.,

Dávalos, A.G., Ramírez, R.R., Galán, A.L.C., Ávalos, R.R. (2005). Frecuencia de

anticuerpos contra Neospora caninum en ganado bovino del noreste de México.

Vet. Méx 36(3), 303-311.

Sanderson, M.W. and Gnad, D.P. (2002). Biosecurity for reproductive diseases.

Vet. Clin. Food Anim. 18:79-98.

Smith, D.R. (2006). Veterinary Clinical Epidemiology. Third edition.CRC Press.

Solis-Calderon, J. J., Segura-Correa, V. M., and Segura-Correa, J. C. (2005).

Bovine viral diarrhoea virus in beef cattle herds of Yucatan, Mexico:

seroprevalence and risk factors. Prev Vet Med 72(3-4), 253-62.

Texas Animal Health Comission en www.tahc.state.tx.us/

USAHA WEB www.usaha.org

Valdez Santos, E. (2008). Implementación y evaluación de protocolos de

bioseguridad en dos hatos bovinos del sistema vaca-cría de Nuevo León. Tesis de

Licenciatura. FMVZ-UANL.