Comité de Control de Infecciones Guía para … · Arteria pulmonar Vena cava superior Vena cava...

47
Comité de Control de Infecciones Última revisión: Diciembre 2015 1 Guía para Prevención de Infecciones Asociadas a Catéteres Índice Introducción ………………………………………………… 2 Definiciones ………………………………………………… 4 Recomendaciones para la prevención de infecciones asociadas a catéteres ………………………………………………… 5 Periodo de Pre colocación del catéter ………………………………………………… 5 Procedimiento …………………………………………………. 8 Post-colocación del catéter ………………………………………………… 13 Tiempo de permanencia de los catéteres centrales ………………………………………………… 19 Recomendaciones para la remoción de los catéteres ………………………………………………… 20 Educación al paciente con catéteres centrales ………………………………………………… 21 Recomendaciones para catéteres específicos: Catéteres umbilicales, Catéteres intermitentes, Catéteres semipermanentes y catéteres implantables ………………………………………………… 21 Toma de muestras de cultivo a través de los catéteres venosos centrales ………………………………………………… 36 Cuadro comparativo cuidados de cada catéter ………………………………………………… 39 Otras recomendaciones para prevención de Complicaciones no infectológicas asociadas a Catéteres ………………………………………………… 39 Administración de Nutrición Parenteral ………………………………………………… 40 Educación al paciente ………………………………………………… 42 Bibliografía ………………………………………………… 45

Transcript of Comité de Control de Infecciones Guía para … · Arteria pulmonar Vena cava superior Vena cava...

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 1

Guía para Prevención de Infecciones Asociadas a Catéteres

Índice

Introducción ………………………………………………… 2

Definiciones …………………………………………………

4

Recomendaciones para la prevención de infecciones asociadas a catéteres

………………………………………………… 5

Periodo de Pre colocación del catéter …………………………………………………

5

Procedimiento ………………………………………………….

8

Post-colocación del catéter …………………………………………………

13

Tiempo de permanencia de los catéteres centrales …………………………………………………

19

Recomendaciones para la remoción de los catéteres …………………………………………………

20

Educación al paciente con catéteres centrales …………………………………………………

21

Recomendaciones para catéteres específicos: Catéteres umbilicales, Catéteres intermitentes, Catéteres semipermanentes y catéteres implantables

………………………………………………… 21

Toma de muestras de cultivo a través de los catéteres venosos centrales

………………………………………………… 36

Cuadro comparativo cuidados de cada catéter …………………………………………………

39

Otras recomendaciones para prevención de Complicaciones no infectológicas asociadas a Catéteres

………………………………………………… 39

Administración de Nutrición Parenteral …………………………………………………

40

Educación al paciente …………………………………………………

42

Bibliografía ………………………………………………… 45

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 2

Introducción

El objetivo de esta guía es estandarizar el proceso de indicación, colocación, cuidados y

retiro de catéteres centrales a fin de prevenir las infecciones asociadas a dicho dispositivo.

En esta guía se han definido las recomendaciones respecto a la colocación, cuidados y

manejo de catéteres. Estas medidas están basadas en guías internacionales publicadas por el

Healthcare Infección Control Practice Advisory Comité (HICPAC) y el Center of diseases Control

(CDC). La misma ha sido redactada con la colaboración de referentes de todas las áreas del

hospital que actualmente colocan catéteres centrales (CVC), transitorios y permanentes.

Cada recomendación está acompañada por su grado de evidencia.

Categoría IA. Altamente recomendado para la aplicación y fuertemente

apoyada por estudios bien diseñados sean experimentales, clínicos o

epidemiológicos.

Categoría IB. Altamente recomendado para la aplicación y apoyada por

algunos estudios experimentales, clínicos o epidemiológicos y una sólida

justificación teórica, o una práctica aceptada apoyada por evidencia limitada.

Categoría IC. Requerido por las regulaciones estatales o federales, reglas o

normas.

Categoría II. Sugerido para la implementación y apoyado por estudios

sugerentes estudios clínicos o con una justificación teórica.

Problema sin resolver. Representa un problema no resuelto para los que la

evidencia es insuficiente o no existe ningún consenso en cuanto a eficacia.

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 3

Estas guías incluyen:

1. Privilegios en colocación de CVC. Se define cuales son los criterios requeridos

para considerar que el personal de salud está capacitado para la colocación de

un CVC y como es la modalidad de capacitación.

2. Estandarización del proceso de colocación (paso a paso, donde se coloca el

catéter, como se coloca el catéter, set de colocación de CVC, precauciones

estériles de barrera durante la colocación, uso de check list, utilización de

clorhexidina en base alcohólica >0,5% para la antisepsia, uso de ecodoppler

como guía en la colocación de CVC, apósitos de clorhexidina e indicaciones

para catéteres centrales de inserción periférica o PICCs).

3. Recomendaciones para prevención de infecciones para el personal de la salud

que coloca y cuida los catéteres.

4. Medidas para la preparación y administración de medicación con técnica

adecuada para la prevención de infecciones.

5. Consideraciones respecto a la permanencia de los catéteres venosos centrales

(como evaluación diaria del retiro del CVC, reemplazo por PICCs en

tratamientos prolongados).

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 4

Definición de Catéter venoso central (CVC) acorde a criterios del NHSN – CDC

Material para infusión vascular que termina en o cercana al corazón o en uno de los grandes

vasos.

A los fines de la vigilancia los siguientes son considerados vasos grandes

Aorta

Arteria pulmonar

Vena cava superior

Vena cava inferior

Vena braquiocefálica

Vena yugular

Vena subclavia

Vena iliaca externa

Vena femoral común

Nota:

En neonatos la vena umbilical es considerada gran vaso.

Ni la ubicación del sitio de inserción ni el material pueden ser considerados para definir

vía central.

Los marcapasos y/o materiales sin lúmenes insertados en vasos grandes no son

considerados vías centrales dado que por los mismos no se infunde ni se extrae

fluidos.

En el concepto de ¨infusión¨ se incluyen fluidos continuos o intermitentes,

medicaciones, nutrición, transfusiones o diálisis.

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 5

Existen diferentes tipos de catéteres:

Vía central permanente implantable o tunelizado (¨Port-a-Cath®¨ o ¨Hickman¨)

Vía central transitoria (Sin “cuff” ni tunelizada)

Catéter umbilical (catéter a través de arteria o vena umbilical)

Recomendaciones para la prevención de infecciones asociadas a catéteres

1. Periodo de Pre colocación del catéter

Es el período que se extiende desde la indicación del catéter hasta el momento en el que se

selecciona el sitio de colocación / punción.

a) La decisión de colocación del CVC debe ser tomada por el médico de mayor

experiencia a cargo del paciente evaluando los riesgos y beneficios de la colocación.

Las indicaciones para colocación de CVC estarán definidas en las normativas de cada

una de las áreas donde se decide la colocación de catéteres (Unidades Criticas de

adultos y pediatría).

b) Preparación del paciente: Una vez decidida la colocación del CVC debe indicarse el

baño del paciente con un antiséptico, clorhexidina solución jabonosa al 2% o con

paños con clorhexidina, dentro de las 2 horas previas al procedimiento. En el caso de

Neonatología se realiza también la higiene local con paños con clorhexidina (en la

colocación de catéteres umbilicales en menores de 24 horas de vida, se realiza como

higiene ampliada, de abdomen, pelvis y extremo proximal de miembros inferiores).

c) Definir operador acorde a privilegios.

Es esencial educar a todo el personal de salud involucrado acerca del

procedimiento adecuado para la colocación y manejo del CVC (IA) (Ver anexo 1

Curso universitario para la educación en colocación de catéteres venosos

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 6

centrales). Todo miembro del equipo de salud que esté involucrado en la

colocación de catéteres endovasculares centrales (en forma real o potencial)

debe ser entrenado en la técnica previo a proceder a la colocación de los

mismos, conocer las recomendaciones en esta política y tener registrado un

número mínimo de cinco colocaciones con el simulador previo al primer

intento de colocación de catéter supervisado. Se recomiendan posteriormente

al menos cinco colocaciones correctas supervisadas para finalizar la etapa de

entrenamiento. El personal de salud que realice la colocación de CVC sin

supervisión deberá contar con el cumplimiento de todos estos requisitos

Solo se designara el personal capacitado e idóneo para la colocación y

mantenimiento del CVC. Todo posible operador debe contar con estos

requisitos para poder colocar un catéter.

Cada servicio definirá quienes son los supervisores que luego asistirán a

los nuevos operadores. Se propone que en cada normativa local tenga

definido los supervisores.

d) Selección del tipo de catéter. Se recomienda al seleccionar el tipo de catéter,

considerar el propósito, tiempo estimado de uso, antecedentes de

complicaciones infecciosas o no y experiencia individual del operador que

realizará el procedimiento. (IB). Por ejemplo, se sugiere la utilización de

catéteres PICCs en todo paciente que se prevee requerimiento de vía central

>6 días (II). En los pacientes que se indican los catéteres PICCS se debe

contemplar el riesgo de trombosis, no se recomienda colocar los catéteres de

PICCs en miembros superiores sin capacidad de movilización. Otras

contraindicaciones para los PICCS a considerar son los pacientes en

hemodiálisis crónica o trasplante renal. Además, se recomienda elegir el CVC

con la menor cantidad de lúmenes necesaria. (IB) Se recomienda un único

lumen para la nutrición parenteral.

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 7

e) Otras consideraciones:

Cuando en un catéter colocado no pueda garantizarse una técnica

aséptica en la colocación (ejemplo colocado durante una emergencia)

debe reemplazarse lo antes posible, y siempre antes de 48 horas. (IB).

Este criterio se utilizará también con los catéteres de los pacientes

derivados de otras instituciones, dada la imposibilidad de asegurarse

condiciones de colocación, manejo y cuidados de CVC previos.

e. Sitio de colocación de catéter. Acorde a las guías de la IDSA (Infectious Diseases

Society of América) se recomienda priorizar en adultos la colocación en el siguiente

orden: subclavia (excepción en pacientes en diálisis crónica), yugular y por ultimo

femoral (IB).

F. Set de colocación de catéteres centrales, se propone contar con un set de

colocación con los siguientes elementos:

Ropa estéril (camisolín y campos amplios), gorro y barbijo.

Protectores oculares

Guantes estériles

Jeringa 5cc/10cc

Aguja hipodérmica 21/8

Aguja hipodérmica 40/8

Xylocaína al 2%

Hoja Bisturí nro. 11

Solución Fisiológica 100cc estéril

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 8

Solución fisiológica de 500 cm estéril

Sutura tipo Vicryl 3/0 ó similar

Heparina sódica (según necesidad)

Catéter de 3 lúmenes

Apósito transparente (Tegaderm IV)

Tela adhesiva

Guías de infusión

Gasas estériles grande y chicas

Previo al procedimiento se debe realizar la identificación del paciente.

2. Procedimiento

2. a. Preparación del operador y ayudantes

Se define como operadores a los profesionales que tendrán a su cargo la colocación del catéter

y son quienes tienen contacto directo con el campo estéril.

El ayudante, por su parte, permanece fuera del campo estéril, dentro de un radio de 2 metros

del procedimiento. En caso de que un ayudante colaboré en el procedimiento y tenga contacto

con el campo, se lo considerará como otro operador.

Recomendaciones

El operador deberá seguir los pasos que se enumeran a continuación

1. Higiene de manos, si están visiblemente limpias puede ser con gel alcohol al

70%.

2. Colocación de gorro y barbijo. El gorro debe cubrir todo el cabello o cuero

cabelludo. El barbijo, debe estar ajustado sobre la nariz y cubriendo la boca. (las

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 9

tiras no deben cruzarse en la parte de atrás del barbijo y los pliegues del mismo

van hacia abajo). (Ver grafico de Uso correcto de barbijo).

3. Higiene de manos para palpación de la zona.

4. Higiene de manos (sin anillos, relojes o pulseras) y antebrazo con lavado

antiséptico con alguna de los siguientes jabones antisépticos (IA):

a. Iodopovidona jabonosa 5%

b. Clorhexidina ≥2%

5. Debe utilizar máximas barreras de protección estériles para la colocación de

CVC, PICC y cambios bajo cuerda, estas incluyen (IB):

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 10

• Gorro y barbijo ya colocados.

• Guantes estériles con técnica adecuada.

• Camisolín estéril, y campo estéril fenestrado que cubra totalmente

paciente.

El ayudante deberá:

1. Colocarse gorro y barbijo y conservarlo bien colocado durante todo el

procedimiento (IA).

2. Higienizarse las manos (IA).

3. Lavar la zona de piel del paciente, donde se colocará el catéter con

jabón antiséptico, preferentemente Clorhexidina jabonosa al ≥2%. En el

caso de los pacientes en neonatología se realizara con paños impregnados

con clorhexidina.

4. Evitar tocar elementos y/o superficies estériles. (IB)

5. Si el ayudante va a contactar con el campo estéril debe usar camisolín

y guantes estériles al igual que el operador.

El circulante deberá utilizar gorro y barbijo y realizar higiene de manos.

2. c. Preparación del sitio de inserción del catéter

Se denomina sitio de inserción al lugar elegido para introducir el catéter seleccionado. Se

recomienda:

Posteriormente al lavado de la piel con jabón antiséptico por el ayudante, el

operador debe preparar la piel con clorhexidina alcohólica >0,5% antes de la inserción

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 11

del CVC. En el caso de los neonatos, en el peso <1500 grs. se recomienda clorhexidina

acuosa al 2% y en >1500 grs. clorhexidina alcohólica como antiséptico. De haber

contraindicación para el uso de clorhexidina puede utilizarse Iodopovidona jabonosa al

7,5% para el primer lavado e iodopovidona solución 10% para la antisepsia. Siempre

realizando movimientos en espiral desde el centro a la periferia (IA).

Se debe dejar secar el antiséptico antes de insertar el catéter. (IB)

Se debe colocar campo con las dimensiones suficientes para cubrir al paciente, y de

ser posible las superficies adyacentes que pudieran ser tocadas durante el

procedimiento.(IA)

Los campos deben ser confeccionados de material que garantice una barrera de

bioseguridad y mantener la superficie de trabajo estéril.(IA)

La apertura de los envoltorios de los campos se debe realizar con técnica quirúrgica

aséptica al igual que la colocación de los mismos. (IA).

Una vez colocado los campos se realizará una nueva asepsia.

Los CVC tunelizados y los implantables deben ser colocados en el quirófano

siguiendo las medidas de asepsia correspondientes a cualquier cirugía. Si las

condiciones del paciente no permiten su traslado pueden ser colocados en áreas de

cuidados intensivos, manteniendo la asepsia del procedimiento con las mismas

condiciones que en quirófano.

Los CVC no tunelizados pueden ser colocados en quirófano o no, siempre y cuando

realice el procedimiento una persona capacitada. Los catéteres centrales de inserción

periférica (PICC) deben ser colocados con las mismas condiciones, preferentemente en

salas de procedimientos.

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 12

2. d. Colocación del catéter endovascular central.

Este periodo comprende desde la apertura del envase que contiene al catéter hasta que el

catéter queda sujeto.

- La apertura del envase del catéter debe realizarse fuera del campo estéril. Debe ser

tomado por el operador para colocar sobre el campo estéril, no se recomienda

¨arrojar¨ el catéter o las gasas sobre el campo estéril.

- Se recomienda apoyar sobre la superficie estéril solo aquellos elementos que

cumplan con esta condición.

- Se recomienda evitar realizar múltiples punciones. Se define que el máximo

aceptable son 3 punciones, posteriormente debe cambiarse de operador.

- Luego de la colocación debe colocarse un apósito transparente para permitir la

visualización del sitio de inserción o gasa estéril más apósito transparente (IA). De ser

posible se recomiendan los apósitos transparentes con almohadillas con clorhexidina.

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 13

- Si se observa sangrado en el sitio, se recomienda cubrir el sitio de inserción con gasa

estéril hasta que se resuelva la situación (II).

-Se recomienda intentar asegurar el catéter sin puntos de sutura (II).

3. Post-colocación del catéter

Comprende el periodo que se extiende desde la cobertura del sitio de punción.

Cualquier manipulación del catéter como la administración de fluidos, cambios de la

tubuladura, extracción de sangre, administración de medicación parenteral, limpieza del área,

debe ser realizada por un medico/a o enfermero/a capacitado para la realización del

procedimiento, que certifique haber recibido el entrenamiento para la implementación de las

recomendaciones.

3. a. Conexión del sistema de infusión

Es el sistema compuesto por las soluciones a infundir y las tubuladuras utilizadas para tal fin.

Recomendaciones

Las soluciones a infundir deber ser recién preparadas. Se debe evitar el uso de

soluciones que se estaban utilizando en otro acceso.

Las tubuladuras para la infusión deben ser nuevas y estériles. (IA)

Evaluar la posibilidad de realizar todas las conexiones de paralelos, previo a la

conexión con el catéter, a fin de disminuir las aperturas del nuevo sistema. (IC).

Evitar el uso de llaves de tres vías para colocar infusiones en paralelo. Preferir la

utilización de prolongadores multivías (2 a 3 vías).

Recuerde al realizar las conexiones no tocar las puntas de las tubuladuras o conectores.

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 14

3. b. Evaluación del sitio de punción en la post-colocación.

Es la evaluación del sitio de punción a través de la observación (II).

Se recomienda que todos los catéteres centrales sean controlados por enfermería cada vez

que se tomen los signos vitales del paciente, en especial en las primeras 24 hs. post colocación

del catéter, evaluando:

1. Presencia de sangrado sobre sitio de punción (IB)

2. Presencia de edema sobre sitio de punción (IB)

3. Desplazamiento del catéter (IB)

4. Presencia de dolor u otro síntoma referido por el paciente, al sitio de

punción o presencia del catéter. (IB)

Nota: Si está cubierto con gasa no es necesario retirarla si no existen signos de

infección y la curación se encuentra integra (II). En caso contrario, se recomienda retirar la

curación cuando no pueda observarse el sitio de inserción y existan signos o síntomas

sospechosos de infección. (II)

3. c. Cuidados del sitio de inserción

Son los cuidados recomendados para aplicar sobre el sitio de inserción luego de

pasadas las primeras 24 horas de la colocación y mientras permanezca instalado el catéter.

Recomendaciones

- Frecuencia de curación del sitio de inserción:

• Si se utilizó gasa sujeta con cinta adhesiva es cada 48 horas o cada vez que la curación

se observe sucia, húmeda/mojada, o despegada. (IB)

• Si se utilizo un apósito transparente, pudiéndose observar el sitio de ingreso del

catéter o aquellos con pequeño botón de gasa, se curará cada 7 días o cuando se

visualice sucio (IB).

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 15

- Curación:

Se recomienda clorhexidina alcohólica o con base acuosa en caso de irritación.

Se recomienda para el operador realizar la misma con cabello recogido (IC), higiene de

manos (IA), colocarse guantes estériles (IC). En el caso de los CVC en los sectores de

Trasplante de Medula, además deberá utilizarse gorro, barbijo y camisolín

(recomendaciones especificas para la vestimenta requerida para catéteres

semipermanentes o permanentes, ver página 21).

Para la cobertura del sitio de inserción se utilizará alguno de los siguientes:

a. Apósito transparente estéril solo.

b. Gasa estéril seca, sujeta con cinta adhesiva.

c. Botón de gasa estéril seca sobre sitio de punción y apósito

transparente estéril.

Se recomienda en pacientes que tengan tubo orotraqueal, lateralizar la cabeza hacia el

lado contrario al del sitio de inserción. (IC)

Se sugiere educar a las familias para que reporten cualquier cambio del sitio o

disconfort asociado al CVC.

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 16

Se recomienda baño diario con clorhexidina al 2% o iodopovidona jabonosa durante

la internación para reducir el riesgo de colonización y/o infección (II). Reforzar en el

paciente la recomendación de no mojar el sitio de apósito que cubre el catéter (IB).

No se recomienda la utilización de cremas con antibióticos, dado que pueden

promover las infecciones micóticas y la resistencia a antimicrobianos. (IB)

3. d. Cuidados del sistema de administración/infusión

Se denomina sistema de infusión a toda tubuladura o grupo de tubuladuras conectadas entre

sí, que se utilicen para infundir soluciones parenterales, drogas u otro tipo de medicación al

paciente.

Recomendaciones

Las tubuladuras deben ser estériles y de uso único. (IA)

Las entradas a la vía tienen que reducirse al mínimo posible.

La medicación endovenosa que no sea administrada en bolo debe ser

administrada por medio de bombas de infusión. Excepciones: durante las

cirugías, cateterismos y otros procedimientos invasivos o en caso de

emergencia o resucitación de paciente la administración de fluidos podrá ser

administrada sin bomba.

Si se utilizan ¨paralelos¨, se recomienda la utilización de prolongadores

multivías antes que llaves de tres vías.

El cambio de las tubuladuras debe realizarse a las 96 hs., incluyendo paralelos,

prolongadores y otros conectores instalados en el sistema.(IA)

En caso de infundir soluciones con lípidos, sangre u hemoderivados, las

tubuladuras deberán ser cambiadas inmediatamente finalizada la solución o si

es parenteral continua no deben dejarse más de 24 horas. (IB) En el caso de

propofol el recambio es cada 6 hs.

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 17

En la administración intermitente, se recomienda el uso de un nuevo sistema

cada vez que se conecte.

Los puertos deben permanecer conectadas a una tubuladura o cerrados con su

tapa estéril, excepto que sean con válvula antirreflujo. Utilizar

preferentemente puertos de acceso sin aguja. (IC) Si bien no se recomienda su

uso, en caso de usar llaves de tres vías, evitar la apertura frecuente de este

sistema.

Nota: No se recomienda utilizar a los CVC para la extracción sistémica de muestras de sangre.

Sin embargo, en los casos que sea absolutamente necesario realizar la muestra de sangre a

través del CVC por imposibilidad de extracción percutánea, se debe recordar siempre lavar la

vía y retirar los restos de sangre del catéter y los conectores, luego de obtenida la muestra.

3. e. Preparación e instalación de las soluciones parenterales

Comprende la apertura de los saches, la inyección de medicamentos y/o electrolitos y la

conexión al sistema de infusión.

Recomendaciones

Higienizar las manos antes de la preparación de soluciones, medicamentos o manipuleo de

cualquier parte de sistema de infusión.

Limpiar el área de la mesada destinada a la preparación de medicamentos y

desinfectarla con alcohol 70%. (IC)

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 18

Preferir el uso de los sachets de doble puerto. (IC)

Para diluir y/o cargar medicación de frascos ampollas, desinfectar el tapón

antes de punzar con gasa embebida en alcohol al 70 % mediante fricción por

15 segundos. (IA)

Para cargar medicación de ampollas, desinfectar previamente el área de corte

con alcohol 70%. (IA)

La conexión con el sistema de infusión debe realizarse en forma aséptica,

evitando tocar superficies contaminadas. (IA)

En caso de contar con sachets de un solo puerto, lavarlos, secarlos y recordar

desinfectar el puerto con alcohol 70% al igual que las hojas de las tijeras. (IC)

3. f Administración de medicación a través del sistema de infusión

Es la administración de cualquier tipo de medicamento a través de los tapones de látex que

ofrecen las tubuladuras de infusión o mediante la colocación de tapones en las llaves de 3 vías

o cualquier otro puerto.

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 19

Recomendaciones

Desinfectar conector friccionando gasa estéril embebida en alcohol 70%

durante 15 segundos, por donde se inyectará la medicación. (IA)

4. Tiempo de permanencia de los catéteres endovasculares centrales.

Es el tiempo recomendado de permanencia de los catéteres endovasculares centrales. No está

recomendado el recambio rutinario de los CVC en general (IB). Los mismos pueden

permanecer siempre que no se presenten signos ni síntomas de infección asociada al catéter.

Únicamente, se recomienda retirar los catéteres tipo Swan Ganz y catéteres arteriales al

quinto día. En el caso de de los catéteres umbilicales arteriales se recomienda remover el

mismo lo antes posible o cuando exista algún signo de insuficiencia vascular en los miembros

inferiores o infección o trombosis (IB); preferentemente el catéter no debería permanecer más

de 5 días. (II) El catéter umbilical venoso también debe removerse lo antes posible, pero puede

ser utilizado hasta 14 días con medidas asépticas estrictas. (II) Si existe disfunción de un

catéter debe ser retirado independientemente del tiempo de permanecía o de si sea arterial o

venoso.

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 20

Recomendaciones

Al día ≥6 de CVC si el paciente debe continuar con un acceso central se

recomienda la utilización de catéteres PICCs (II).

No está indicada la remoción del catéter solo por fiebre. Se debe usar el

criterio clínico. (II)

No se recomienda el uso rutinario del cambio de catéter bajo cuerda y menos

cuando se sospeche infección. (IB)

El cambio bajo cuerda solo podría recomendarse cuando el catéter disfuncione

sin sospecha de infección (IB).

Para el recambio bajo cuerda, se debe realizar el cambio de guantes estériles

previo a contactar con el nuevo catéter (II)

5. Recomendaciones para la remoción de los catéteres

Los CVC deben ser retirados ante:

Infección del sitio de salida con extensión al túnel o bolsillo.(IB)

Presencia de eritema o secreción purulenta en el sitio de salida del catéter o

sitio de salida del catéter o signos clínicos de sepsis (IB)

Tromboflebitis supurada (IB)

Endocarditis o embolización séptica (IB)

Remover prontamente todo catéter que NO sea necesario. (IA)

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 21

6. Educación al paciente con catéteres centrales.

Se recomienda entregar información escrita a los pacientes sobre cuidados y pautas de alarma

y confirmar la comprensión de esta información (ver en anexos: Recomendaciones para el

paciente con catéter venoso central).

7. Recomendaciones para catéteres específicos:

Catéteres umbilicales, Catéteres intermitentes, Catéteres semipermanentes y catéteres

implantables.

7.a Catéteres umbilicales

Si el paciente es < 24 hs de vida o se encuentra inestable, se recomienda: higiene

ampliada de la zona, que incluye abdomen, pelvis y área superior de piernas con paños

impregnados con clorhexidina, retirando el excedente con gasa seca y estéril; si el

paciente es > a 24 hs y se encuentra estable, baño completo.

Inmediatamente antes de colocar el catéter nueva higiene peri umbilical con paño de

clorhexidina, luego desinfección de la piel, en menores de 1500 gr. con clorhexidina

acuosa y > 1500 grs clorhexidina alcohólica con colorante (Soluprep®)

El resto de las recomendaciones con similares a la colocación de CVC.

No usar cremas ni ungüentos, en la zona de inserción. (IA)

Remover el catéter arterial lo antes posible o cuando exista algún signo de

insuficiencia vascular en los miembros inferiores o infección o trombosis (IB).

Preferentemente el catéter no debería permanecer más de 5 días. (II)

El catéter umbilical venoso debe removerse lo antes posible, pero puede ser utilizado

hasta 14 días con medidas asépticas estrictas. (II)

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 22

Si existe disfunción debe ser retirado independientemente del tiempo de permanecía

o de si sea arterial o venoso.

7.b Catéteres intermitentes

Desinfecte el conector friccionando gasa estéril embebida en alcohol 70% previo a

cada inyección por dicho puerto.

Utilizar la vía distal para la administración de medicación y mantener la vía proximal

heparinizada y cerrada con tapones con válvula antirreflujo

Luego de administrar la medicación, lavar la vía con 2-3 cc. de solución fisiológica,

inyectar en forma enérgica y sin burbujas de aire.

Utilice conectores con válvula antirreflujo.

Utilizar una nueva tubuladura cada vez que se habilite el catéter.

7.c. Catéteres semipermanentes

El catéter semipermanente o tipo Hickman®, es un catéter venoso central externo de

larga duración que consiste en un tubo largo flexible de silicona radiopaca que puede tener

uno o dos lúmenes.

Para su colocación se requiere llevar al paciente a un área quirúrgica (quirófanos,

intervencionismo, sala de angiografía, etc.). El catéter es insertado mediante técnica

tunelizada subcutánea, es decir, parte del catéter se sitúa entre la vena canalizada y la salida

subcutánea; y el resto de éste será visible sobre el punto de inserción.

La punta del catéter deberá quedar en posición central (vena cava superior) y el acceso será

por vena subclavia, vena yugular interna, vena yugular externa o vena cefálica (en ese orden

preferencial).

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 23

Antes de cualquier tipo de manipulación del catéter, el personal de salud deberá realizar

higiene de manos. La misma debe realizarse con las mangas remangadas, uñas cortas sin

esmalte y sin anillos, pulseras y/o reloj.

Habilitación

Materiales:

Jeringas 10cc x 4

Guantes estériles x 1

Gasa estéril no tejida

Ampollas solución fisiológica 10cc x 2

Heparina 1 frasco sin uso previo

Alcohol 70% sin uso previo

Conector clave x 2

Campo estéril

Vestimenta: cofia, barbijo quirúrgico, camisolín estéril (en pacientes de trasplante de

medula)

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 24

Procedimiento:

1. Preparación de materiales

2. Realizar higiene de manos

3. Colocarse barbijo y cofia.

4. Higiene de manos

5. Desclampear el catéter.

6. Realizar lavado de manos con solución jabonosa antiséptica (iodopovidona o gluconato

de clorhexidina)

7. Colocarse camisolín (en pacientes de trasplante de medula)

8. Colocarse guantes estériles

9. Tomar el conector del catéter con una gasa y con otra gasa embebida en alcohol al

70%, desinfecta friccionado durante 15 segundos. En el caso de tener un tapon ciego,

cambiar por un conector clave.

10. Coloque una jeringa estéril, sin contenido, en el catéter, aspirar 2 (pediatría) a 5

(adultos) ml de sangre y descartar.

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 25

11. Coloque una jeringa estéril, con 2 a 5 ml de solución fisiológica estéril, en el catéter

para verificar permeabilidad y luego administrar medicación.

12. Volver a clampear el catéter y retirar la jeringa.

13. O conectar el set de infusión si estuviera indicado con nueva guía.

Mantenimiento de la permeabilidad del catéter:

Objetivo: conservar la permeabilidad del catéter.

Este procedimiento se realizará cada 7 días cuando el paciente concurra de manera

ambulatoria a realizarse la curación del catéter.

El procedimiento es igual al de la habilitación.

Curación del sitio de inserción:

La curación en pacientes internados se realizará cada 7 días, si se evaluara visiblemente

mojada, sucia, con sangre o adhesivos despegados, se curará sin esperar el tiempo establecido.

Materiales

Gasas

Clorhexidina al 2% en alcohol / iodopovidona solución al 10%

Cinta hipoalergénica de uso exclusivo del paciente

Apósito transparente.

Guantes estériles

Cofia y Barbijo

Camisolín estéril

Campo estéril

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 26

Procedimiento:

1. Higienizarse las manos

2. Colocarse cofia y barbijo

3. Higienizarse las manos

4. Abrir los guantes estériles, abrir gasas y colocar solución antiséptica.

5. Retirar el parche autoadhesivo.

6. Realizar lavado de manos antiséptico (con jabón antiséptico o jabón común más

alcohol)

7. Colocarse camisolín y los guantes estériles

8. Limpiar el área en forma centrífuga, de adentro hacia fuera, sin pasar dos veces

por el mismo lugar, luego se deja secar un minuto.

9. Colocar el parche transparente.

10. Descartar los materiales

11. Higienizarse las manos

12. Registrar procedimiento.

13. La curación del catéter se realizará cada 7 días a menos que se considere necesario

realizarlo en un período menor ya sea por sudoración, sangrado o falta de

adherencia del apósito. Se utilizarán preferentemente apósito transparente con

almohadilla de clorhexidina, de lo contrario se podrá emplear apósito transparente

sin antisépticos.

14. Siempre que se realice curación del catéter se deberá cambiar todo el circuito de

tubuladuras.

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 27

15. Se recomienda no colocar gasa en tapones clave.

Toma de muestra de sangre Laboratorio o retrocultivo

Procedimiento:

Ayudante

14. Preparación de materiales

15. Realizar higiene de manos

16. Colocarse manoplas

17. Clampear el catéter, desconectar la infusión y desechar.

18. Luego desclampear el catéter.

Operador

1. Higiene de manos

2. Colocarse barbijo y cofia.

3. Realizar lavado de manos con solución jabonosa antiséptica (iodopovidona o

gluconato de clorhexidina)

4. Colocarse camisolín

5. Colocarse guantes estériles

6. Tomar el conector del catéter con una gasa y con otra gasa embebida en alcohol al

70%, desinfecta friccionado durante 15 segundos.

7. Coloque una jeringa estéril, sin contenido, en el catéter, aspirar 2 (pediatría) a 5

(adultos) ml de sangre y descartar (en el caso de toma de muestra de retrocultivo).

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 28

8. Con nueva jeringa aspirar 8 a 10 ml. de sangre (2 a 4 ml en pediatría/1 ml en

neonatología).

9. Entregar muestra al ayudante.

10. Coloque una jeringa estéril, con 2 a 5 ml de solución fisiológica estéril, en el

catéter.

11. Volver a clampear el catéter y retirar la jeringa de lavado.

12. O conectar el set de infusión si estuviera indicado con nueva guía.

Ayudante

1. Alcanzar materiales al operador

2. Desinfectar siempre la tapa de goma del frasco de hemocultivo con gasa estéril

embebida en alcohol al 70%.

3. Al recibir la muestra de retro cultivo debe colocar una aguja a la jeringa para

inyectar en el frasco.

4. Colocar Ia muestra de sangre en el frasco sin ejercer presión.

7.d. Catéteres Implantables (catéteres tipo Port-a-cath®)

Los catéteres totalmente implantables, son colocados en el ámbito de un quirófano,

Servicio de Angiografía. Son catéteres colocados debajo de la piel con acceso a una vena

central que permiten un mejor acceso para tratamientos quimioterápicos, administración de

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 29

infusiones, transfusiones (plasma, plaquetas y hemoderivados), nutrición parenteral total y

eventualmente toma de muestras para cultivo, retrocultivo.

Poseen una cámara de metal y silicona o totalmente siliconado que se ubica por lo

general en el tórax.

Antes de cualquier tipo de manipulación del catéter el personal de salud deberá realizar

higiene de manos. La misma debe realizarse con las mangas remangadas, uñas cortas sin

esmalte y sin anillos, pulseras y/o reloj.

Cuidados post colocación inmediata del catéter.

El tiempo de habilitación del catéter será determinado por el médico que lo coloca en

angiografía.

En adultos se utilizarán agujas calibre Nº 21 para hidratación y tratamiento, y

Nº 19 para transfundir.

En el caso que el paciente tenga colocada aguja n°21 y se debe transfundir y no existe

un buen flujo, se le retirara dicha aguja y se le colocará una n°19.

Se recomienda el uso de conectores sin aguja y evitar el uso de llaves de 3 vías. En el caso de

solo contar con llaves de 3 vías, se deberá mantener realizar con técnica aséptica,

manteniendo el circuito cerrado. En caso de desconexión cambiar toda la llave. No guardar

tapas en gasas.

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 30

Habilitación del catéter:

Materiales:

Guantes estériles

Gasas

Aguja Huber

Jeringas de 10cc x 2

Solución fisiológica ampolla de 10cc x 2

Llave de tres vías

Heparina (frasco estéril)

Apósito transparente

Iodopovidona solución al 10% frasco cerrado/ Clorhexidina al 2% en alcohol

Gorro y barbijo

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 31

Procedimiento:

1. Higienizarse las manos con solución alcohólica

2. Abrir el envoltorio de los guantes estériles, y depositar los materiales a utilizar.

3. Realizar lavado de manos con jabón antiséptico.

4. Colocarse Gorro y barbijo.

5. Colocarse los guantes estériles.

6. Desinfectar la zona de punción con Iodopovidona solución al 10% o Clorhexidina al

2% en alcohol, en forma circular, desde el centro hacia la periferia, dejando actuar

al menos 1 minuto hasta secar. Repetir el procedimiento con una nueva gasa (gasa

no tejida).

7. Abarcar con los dedos índice y pulgar el reservorio o cámara del catéter, e insertar

la aguja Huber en forma firme y segura, en dirección perpendicular atravesando la

cámara autosellante de silicona, hasta notar impacto de la aguja con el fondo del

reservorio.

8. Conectar la jeringa que contiene la solución al cono universal que tiene la aguja.

9. Abrir el clamp, comprobar retorno sanguíneo e infundir con 10 ml de solución

fisiológica.

10. Cerrar el clamp y colocar tapón clave.

11. Fijar la aguja en forma segura, colocar gasa estéril alrededor de la aguja y cubrir

con apósito transparente. Fijar la tubuladura hacia arriba con cinta hipoalergénica

para evitar la desconexión por tracción.

12. Descartar materiales

13. Higienizarse las manos

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 32

14. Colocar la fecha y hora de habilitación en el parche transparente (sobre la tira

adhesiva diseñada para tal fin).

15. En adultos previo al retiro de la aguja, lavar con solución heparinizada 1/9 (1 ml de

heparina y 9 ml de solución fisiológica). En pediatría solo con solución fisiológica.

16. Retirar aguja.

17. Registrar el procedimiento.

En el caso de los pacientes ambulatorios que ingresan a la institución con aguja colocada, se

deberá comprobar la permeabilidad del catéter para comenzar el tratamiento. (Realizar bajo

técnica aséptica).

Procedimiento:

1. Higiene de manos

2. Desinfección de puerto de inyección con gasa con alcohol al 70%.

3. Retirar el tapón unidireccional (azul)

4. Colocar un nuevo tapón

5. Lavado de manos antiséptico

6. Colocación de guantes estériles

7. Verificación de retorno venoso con jeringa estéril (infundir 10cc de solución

fisiológica)

8. Conexión de infusión medicamentosa

9. Descarte de materiales

10. Higiene de manos

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 33

Cambios de aguja o tubuladuras

Se deberá realizar cambio de aguja cada 72 hs o 7 días de acuerdo al servicio donde

interne el paciente.

Las tubuladura deberán cambiarse cada 72 a 96hs o cuando finalice tratamiento. En

caso de nutrición parenteral cambiarlas cada 24hs.

Mantenimiento de la permeabilidad del catéter:

Objetivo: conservar la permeabilidad del catéter.

Este procedimiento se realizará cada 45 días finalizado el tratamiento.

Procedimiento:

1. Higienizarse las manos con solución alcohólica

2. Abrir el envoltorio de los guantes estériles, y depositar los materiales a utilizar.

3. Realizar lavado de manos con jabón antiséptico. (De no ser posible, realizar lavado

de manos social y luego colocar solución alcohólica para manos)

4. Colocarse los guantes estériles.

5. Desinfectar la zona de punción con Iodopovidona solución al 10% o Clorhexidina al

2% en alcohol, en forma circular, desde el centro hacia la periferia, dejando actuar

al menos 1 minuto hasta secar. Repetir el procedimiento con una nueva gasa.

6. Abarcar con los dedos índice y pulgar el reservorio o cámara del catéter, e insertar

la aguja Huber en forma firme y segura, en dirección perpendicular atravesando la

cámara autosellante de silicona, hasta notar impacto de la aguja con el fondo del

reservorio.

7. Conectar la jeringa que contiene la solución al cono universal que tiene la aguja.

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 34

18. Abrir el clamp, comprobar retorno sanguíneo e infundir en adultos 10 ml (1ml de

heparina sódica en 9 ml de solución fisiológica). En pediatría solo con solución

fisiológica.

8. Cerrar el clamp

9. Retirar la aguja

10. Colocar gasa estéril doblada en cuatro ejerciendo presión moderada sobre el sitio

de inserción y pegar con cinta adhesiva hipoalergénica (de uso exclusivo del

paciente)

11. Descartar los elementos.

12. Higienizarse las manos

Curación del sitio de inserción de la aguja:

Si se cumplen los 7 días de colocación de la aguja Huber y es necesario continuar utilizando

el catéter, se deberá retirar la aguja y colocar una nueva, realizando el mismo proceso que

para la apertura o habilitación del catéter. La curación en pacientes internados se realizará

cada 7 días o según necesidad de cada paciente. (En caso de presentar sangrado peri catéter,

sudoración, o apósito transparente despegado, etc.).

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 35

Toma de muestra de sangre o retrocultivo

Siempre que sea posible, evitar el uso del catéter para toma de muestra de sangre.

Materiales

Guantes estériles

Gorro

Barbijo

Gasas estériles

Aguja Huber

Jeringas de 10cc x 2

Solución fisiológica ampolla de 10cc x 1

Heparina (frasco nuevo)

Iodopovidona solución al 10% frasco cerrado/ Clorhexidina al 2% en alcohol

Procedimiento:

Ayudante

1. Preparación de materiales

2. Realizar higiene de manos

3. Colocarse manoplas

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 36

Operador:

1. Realizar lavado de manos con jabón antiséptico.

2. Colocarse gorro y barbijo

3. Colocarse los guantes estériles.

4. Desinfectar la zona de punción con Iodopovidona solución al 10% o Clorhexidina al 2%

en alcohol, en forma circular, desde el centro hacia la periferia, dejando actuar al

menos 1 minuto hasta secar. Repetir el procedimiento con una nueva gasa.

5. Ubicar con los dedos índice y pulgar el límite del reservorio o cámara del catéter, e

insertar la aguja Huber en forma firme y segura en el espacio medio generado por la

posición de los dedos, en dirección perpendicular atravesando la cámara autosellante

de silicona, hasta notar impacto de la aguja con el fondo del reservorio.

6. Conectar la jeringa que contiene la solución al cono universal que tiene la aguja.

7. Solicitar al ayudante que se abra el clamp, comprobar retorno sanguíneo.

8. Aspirar 2 ml (pediatría) y 5 ml (adultos) y descartar.

9. Cambiar la jeringa y extraer muestra de sangre (8 a 10 ml en adultos, 2 a 4 ml en

pediatría y 1 ml en neonatología).

19. Lavar con solución heparinizada 1/9 (1 ml de heparina y 9 ml de solución

fisiológica). En pediatría solo con solución fisiológica.

10. Retirar aguja.

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 37

8. Toma de muestras de cultivo a través de los catéteres venosos centrales:

Materiales necesarios para toma de muestra de retrocultivos:

Jeringa x 2 por lumen

Solución fisiológica 10cc

Gasa estéril

Alcohol al 70%

Frasco de hemocultivo (verde en adultos y pediatría amarillo): 1 frasco por lumen

Barbijo

Guantes estériles

Procedimiento:

Ayudante

19. Preparación de materiales

20. Realizar higiene de manos

21. Colocarse manoplas

22. Clampear el catéter, desconectar la infusión y desechar.

23. Luego desclampear el catéter.

Operador

13. Higiene de manos

14. Colocarse barbijo

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 38

15. Realizar lavado de manos con solución jabonosa antiséptica (iodopovidona o

gluconato de clorhexidina)

16. Colocarse guantes estériles

17. Tomar el conector del catéter con una gasa y con otra gasa embebida en alcohol al

70%, desinfecta friccionado durante 15 segundos.

18. Coloque una jeringa estéril, sin contenido, en el catéter.

19. Coloque una jeringa estéril, sin contenido, en el catéter, aspirar 2 (pediatría) a 5

(adultos) ml de sangre y descartar.

20. Con una nueva jeringa aspirar 8 a 10 ml. de sangre (2 a 4 ml en pediatría/1 ml en

neonatología).

21. Entregar muestra al ayudante.

22. Coloque una jeringa estéril, con 2 a 5 ml de solución fisiológica estéril, en el

catéter.

23. Volver a clampear el catéter y retirar la jeringa de lavado.

24. O conectar el set de infusión si estuviera indicado con nueva guía.

Ayudante

5. Alcanzar materiales al operador

6. Desinfectar siempre la tapa de goma del frasco de hemocultivo con gasa estéril

embebida en alcohol al 70%.

7. Al recibir la muestra de retrocultivo debe colocar una aguja a la jeringa para

inyectar en el frasco.

8. Colocar Ia muestra de sangre en el frasco sin ejercer presión.

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 39

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 40

9. Cuadro comparativo cuidados de cada catéter

10. Otras recomendaciones para prevención de Complicaciones no infectológicas

asociadas a Catéteres

Sujetar al brazo del paciente, las tubuladuras conectadas al catéter a fin de

evitar el desplazamiento.

Puntos de sutura: Observar estado e informar inmediatamente al

profesional correspondiente, si alguno se salió, o se encuentra abierto.

Retirar el catéter si éste se desplazó, se observa perdida de la infusión

pericatéter o presenta edema en la zona alrededor del catéter

Si el catéter se desplazó 2 o 3 cm., no lo reintroduzca. Comunique este

evento al médico.

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 41

11. Administración de Nutrición Parenteral (NP)

La NP es un procedimiento terapéutico mediante el cual se administran por vía EV nutrientes

esenciales para mantener un adecuado estado nutricional.

Para conectar una bolsa de nutrición parenteral (BNP) son necesarios los siguientes

elementos:

Guantes estériles, en el caso de los catéteres Hickman se recomienda además

gorro y barbijo.

Gasas estériles

Bomba de infusión con su correspondiente set de infusión (en Neonatología el set

ser fotoprotector)

Tapón de catéter (Clave, Split Septum, etc).

Filtro de 1.2 micras (BNP con lípidos) o de 0.22 (BNP sin lípidos)

Aalcohol al 70%

Procedimiento para la conexión

1. Retirar de la heladera la bolsa de NP

2. Verificar que la bolsa pertenezca al paciente (leer rótulo). Controlar fecha de

elaboración y vencimiento

3. Desinfectar el área de trabajo con alcohol al 70%.

4. Colocar todos los elementos a utilizar en dicha área limpia.

5. Realizar HIGIENE DE MANOS

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 42

6. Abrir los envases de todos los elementos a utilizar (tapón de catéter, set de bomba,

filtro, gasas con alcohol y gasas secas) y depositarlos (manteniendo la asepsia) sobre el

campo que se arma al abrir el set.

7. Colgar la Bolsa de NP en el pie de suero. La bolsa debe estar cubierta a su vez con un

cobertor fotoprotector

8. Realizar nueva higiene de manos antes de colocarse los guantes estériles

9. Tomar el catéter con gasa impregnada con alcohol al 70 % y clampearlo.

10. Conectar el filtro en el extremo distal del set de infusión

11. Con una gasa estéril embebida en alcohol al 70% tomar el conector de la bolsa y unirlo

al set de infusión. Purgar la guía, el filtro y el tapón de catéter (Clave, Split Septum,

etc).

12. Tomar el lumen del catéter por donde se va a infundir la NP y desinfectarlo con gasa

embebida en alcohol. Retirar el tapón.

13. Conectar y desclampear el catéter

14. Colocar la guía en la bomba y programar el goteo según indicación médica.

15. Colocar fecha en la tubuladura.

16. Higienizarse las manos posterior al contacto con el paciente

NOTA: Para el recambio de la NP, se realizara el mismo procedimiento sumando el cambio del

tapón clave.

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 43

Procedimiento para la desconexión cuando el paciente discontinúa la administración de NP

1. Higiene de manos

2. Apagar la bomba de infusión y clampear el catéter.

3. Abrir la cobertura del campo estéril. Tomarlo por un extremo y desplegarlo sobre el

área de trabajo, previa desinfección de la misma y evitando contaminarlo durante el

procedimiento.

4. Abrir los envases de todos los elementos a utilizar: gasas con alcohol y gasas secas,

jeringa con Solución fisiológica o solución heparinizada y disponerlos sobre el campo

estéril.

5. Higienizarse las manos

6. Colocarse los guantes estériles

7. Tomar una gasa embebida con alcohol al 70%, clampear el catéter, desconectar el

sistema de infusión preservando el tapón, conectar la jeringa con Solución Fisiológica.

8. Desclampear el catéter, administrar Solución Fisiológica o solución heparinizada

9. Clampear el catéter antes de retirar la jeringa

10. Descartar los elementos utilizados

11. Higienizarse las manos al finalizar el procedimiento antes de retirarse de la habitación.

12. Educación al paciente

Se considera primordial para la prevención de infecciones la educación al paciente. Se

recomienda entregar a los paciente con CVC o en plan de colocación de uno de estos

dispositivos, un instructivo con las recomendaciones sobre cuidados del CVC (ver

Recomendaciones para los pacientes con CVC)

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 44

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 45

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 46

13. Bibliografía

1. O'Grady NP, Alexander M, Burns LA, Dellinger EP, Garland J, Heard SO, Lipsett PA,

Masur H, Mermel LA, Pearson ML, Raad II, Randolph AG, Rupp ME, Saint S; Healthcare

Infection Control Practices Advisory Committee. Guidelines for the prevention of

intravascular catheter-related infections. Am J Infect Control. 2011 May;39(4 Suppl

1):S1-34. PubMed PMID: 21511081.

2. O'Grady NP, Alexander M, Burns LA, Dellinger EP, Garland J, Heard SO, Lipsett PA,

Masur H, Mermel LA, Pearson ML, Raad II, Randolph AG, Rupp ME, Saint S; Healthcare

Infection Control Practices Advisory Committee (HICPAC) (Appendix 1). Summary of

recommendations: Guidelines for the Prevention of Intravascular Catheter-related

Infections. Clin Infect Dis. 2011 May;52(9):1087-99. PubMed PMID: 21467014;

PubMed Central PMCID: PMC3106267.

3. Hospital Italiano de Buenos Aires, Comité de Control de Infecciones, Normas para

colocación y mantenimiento de los catéteres endovenosos centrales, orientadas a la

prevención de infecciones asociadas a estos dispositivos. Diciembre 2008.

4. O'Grady NP, Alexander M, Burns LA, Dellinger EP, Garland J, Heard SO, Lipsett PA,

Masur H, Mermel LA, Pearson ML, Raad II, Randolph AG, Rupp ME, Saint S; Healthcare

Infection Control Practices Advisory Committee (HICPAC). Guidelines for the

prevention of intravascular catheter-related infections. Clin Infect Dis. 2011

May;52(9):e162-93. Epub 2011 Apr 1. PubMed PMID: 21460264; PubMed Central

PMCID: PMC3106269.

5. Kallen AJ, Patel PR, O'Grady NP. Preventing catheter-related bloodstream infections

outside the intensive care unit: expanding prevention to new settings. Clin Infect Dis.

2010 Aug 1;51(3):335-41. Review. PubMed PMID: 20572762.

Comité de Control de Infecciones

Última revisión: Diciembre 2015 47

6. Munoz-Price LS, Dezfulian C, Wyckoff M, et al, Effectiveness of stepwise interventions

targeted to decrease central catheter-associated bloodstream infections. Crit Care

Med. 2012 May;40(5):1464-9.

7. http://www.proce.com/Prevention_of_CLABIs_Hand_Hygiene.html Acceso Noviembre

2012

8. Naomi P. O’Grady,a Mary Alexander,b Lillian A. Burns,c E. Patchen Dellinger,d Jeffrey

Garland,e Stephen O. Heard,f Pamela A. Lipsett,g Henry Masur,a Leonard A. Mermel,h

Michele L. Pearson,i Issam I. Raad,j Adrienne G. Randolph, Mark E. Rupp,l Sanjay

Saint,m and the Healthcare Infection Control Practices Advisory Committee (HICPAC).

Guidelines for the prevention of intravascular catheter-related infections. American

Journal of Infection Control. www.ajicjournal.org. Vol. 39 No. 4 Supplement 1:S1-34