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Artículo Revista de Ciencias Naturales y Agropecuarias
Septiembre 2015 Vol.2 No.4 583-594
Caracterización Molecular de la Diversidad Bacteriana Potencialmente
Degradadora de Triclosán presente en Cuenca del Rio Xichú, Guanajuato
GONZÁLEZ- LÓPEZ, Claudia Isela*†`, RIVERA-MOSQUEDA, Ma Cruz``, COLLI-MULL, Juan
Gualberto` y NEGRETE-ALCALDE, Luis Jorge` `Departamento de Biología, ``Departamento de Ing. Bioquímica, Instituto Tecnológico Superior de Irapuato, Carretera
Irapuato-Silao km 12.5 C.P. 36821, Irapuato, Guanajuato, México.
Recibido 3 de Julio, 2015; Aceptado 25 de Septiembre, 2015
Resumen
El triclosán (TCS), es un fenoxifenol triclorado con propiedades
antibacterianas. El objetivo de este estudio fue caracterizar
molecularmente la diversidad bacteriana con potencial para
degradar Triclosán en muestras del Río Xichú en la Reserva de
la Biosfera “Sierra Gorda” de Guanajuato. Para la
caracterización molecular se utilizaron técnicas basadas en la
amplificación de secuencias del gen 16SrRNA. Los productos
de la amplificación fueron purificados y las secuencias
analizadas y comparadas en bases de datos. Estas afiliaciones
permitieron inferir relaciones filogenéticas entre los
organismos. El análisis muestra que la diversidad microbiana
con potencial para degradar triclosán es dominada por el género
Bacillus que pertenecen al taxa fermicute, y en menor
proporción el género Aeromonas perteneciente al taxa gamma-
proteobacteria, ambos grupos considerados como organismos
potenciales la biorremediación de sitios contaminados. Este
trabajo es el primer reporte que documenta la caracterización
molecular de bacterias con capacidad para resistir y degradar
Triclosán en Guanajuato. Los datos son de gran valor a la hora
de implementar futuras tecnologías para la recuperación de
ambientes contaminados en el ámbito de la biorremediación.
Triclosán, Contaminante emergente, Diversidad bacteriana,
biodegradación.
Abstract
Triclosán (TCS), is a trichlorinated phenoxyphenol having
antibacterial properties. The aim of this study was to
molecularly characterize bacterial diversity with potential to
degrade Triclosan in isolated samples Xichú River in the
Biosphere Reserve Sierra Gorda of Guanajuato. For molecular
characterization of bacteria based amplification techniques
16SrRNA gene sequences were used. The amplification
products were purified and analyzed and compared sequences
in databases. These affiliations allowed to infer phylogenetic
relationships among prokaryotes. The analysis shows that the
microbial diversity with potential to degrade triclosan is
dominated by members of the genus Bacillus belonging to
fermicute taxa, and to a lesser extent Aeromonas belonging to
taxa Gama-proteobacteria, both groups considered as potential
organisms for bioremediation sites contaminated. This work is
the first report documenting the molecular characterization of
bacteria with the capacity to resist and degrade Triclosan in
Guanajuato. These data are of great value when implementing
future technologies for the remediation of contaminated in the
field of bioremediation environments.
Triclosan, emerging contaminants, bacterial diversity,
biodegradation.
Citación: GONZÁLEZ- LÓPEZ, Claudia Isela, RIVERA-MOSQUEDA, Ma Cruz, COLLI-MULL, Juan Gualberto y
NEGRETE-ALCALDE, Luis Jorge. Caracterización Molecular de la Diversidad Bacteriana Potencialmente
Degradadora de Triclosán presente en Cuenca del Rio Xichú, Guanajuato. Revista de Ciencias Naturales y
Agropecuarias 2015, 2-4: 583-594
* Correspondencia al Autor (Correo Electrónico: [email protected])
† Investigador contribuyendo como primer autor.
© ECORFAN-Bolivia www.ecorfan.org/bolivia
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Introducción
En las últimas décadas, dentro de los
contaminantes orgánicos en agua, se ha
detectado de manera creciente los llamados
contaminantes emergentes, que corresponden
en la mayoría de los casos a contaminantes no
regulados, que pueden ser candidatos a
regulación futura, dependiendo de
investigaciones sobre sus efectos potenciales en
la salud y los datos de monitoreo con respecto a
su incidencia. Los fármacos usados en seres
humanos y en animales han sido identificados
como contaminantes ambientales emergentes
(Daughton, 2004).
La lista de nuevos contaminantes
incluye analgésicos, antiinflamatorios,
antiepilépticos, bloqueadores y antibióticos, e
incluso productos de cuidado personal como
jabones, dentífricos y desodorantes entre otros,
que son descargados a los sistemas de drenaje.
La presencia de estos contaminantes
emergentes en efluentes municipales se ha
dispersado en al ambiente causando un impacto
negativo tanto para la salud como para los
ecosistemas (Ternes et al., 2004). Algunos de
estos compuestos tienen la capacidad de alterar
el sistema endócrino bloqueando o perturbando
funciones en seres humanos y animales aun
cuando se encuentran a muy bajas
concentraciones (García-Gómez et al. 2011).
Estudios recientes demuestran que es cada vez
más común encontrar en aguas residuales
concentraciones que fluctúan entre nanogramos
a microgramos por litro para muchos de estos
productos, por lo que las técnicas de
tratamiento para este tipo de compuestos son
insuficientes (Vienoa et al 2007). Un ejemplo
claro hablando de contaminantes emergentes es
el Triclosán el cual es usado como bactericida,
dicho contaminante emergente no posee una
regulación industrial y se encuentra disperso en
el medio ambiente afectando las vidas de
distintos organismos.
Los mecanismos sugeridos por los que
el TCS se elimina de las aguas superficiales
son: biodegradación, fotólisis, cloración y
asociación con superficies de sólidos. Debido a
que los métodos convencionales no han
mostrado resultados convincentes para remover
este tipo de contaminantes, la biodegradación
surge como una alternativa atractiva. En ese
sentido, la búsqueda de microorganismos que
degraden triclosán es una herramienta que
puede ser utilizada en la digestión biológica
para complementar y/o aumentar la efectividad
en la remoción del triclosán y otros
contaminantes persistentes.
Revisión de literatura
Triclosán
El triclosán [5‐cloro‐2‐2,4‐diclorofenoxifenol],
TCS, es un fenoxifenol triclorado, con formula
química C12H7Cl3O, posee un peso molecular
de 289.546, su punto de función es de 55-57
˚C, es un potente agente antibacteriano y
fungicida. Se trata de un sólido incoloro con
ligero olor a fenol. Es un compuesto aromático
clorado el cual tiene grupos funcionales
representativos de éteres y fenoles hablando de
su solubilidad es de, 0.01 g/L para el agua; 0.1
N NaOH, 23.5 g/L; etanol, y en acetona es
altamente soluble (FDA, 2008).
El triclosán está presente en múltiples
productos relacionados con la desinfección
como jabones, desodorantes, limpiadores,
champús y cosméticos. Además, es adecuado
para su introducción en polímeros y fibras, en
almohadillas de colchón, tableros de corte,
zapatos y ropa deportiva (Glaser A; 2004).
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Productos de Transformación del Triclosán
y compuestos relacionados
Debido a su reactividad, sus principales
productos de transformación como productos
de hidrólisis del triclosán en medio acuoso son
los clorofenoles: metiltriclosán, el 2,4‐diclorofenol, el 2, 3,4‐triclorofenol y el 2, 4,6‐triclorofenol.
Las dioxinas es uno de los productos
más peligrosos de la fotodegradación del
triclosán, pueden ser altamente cancerígenas y
pueden causar problemas de salud tan graves
como la supresión del sistema inmunológico,
disminución de la fertilidad, alteración de las
hormonas sexuales, defectos en los neonatos,
abortos espontáneos y cáncer. El TCS es listado
como “posible” precursor contaminante de las
dioxinas (Latch, et al, 2005).
Propiedades Antibacteriales
El Triclosán es un derivado fenólico que a
concentraciones bajas inhibe enzimas
esenciales del metabolismo o se une a
metabolitos esenciales de la pared celular,
provocando la degradación de la pared en
algunos grupos de bacterias. Exhibe
propiedades bactericidas en bacterias Gram+ y
Gram- además de hongos y levaduras. (Canosa-
Rodríguez, 2009)
A concentraciones elevadas provoca una
lisis celular e inhibe la enzima enoil-ACP
(proteína acarreadora de acilos) reductasa que
está implicada en la síntesis de ácidos grasos
(Trilla, 2005).
Problema Ambiental de Triclosán: Fuentes
de contaminación
Su producción comenzó en la década de los
70´s para el cuidado personal, como control de
bacterias que pudieran afectar la salud humana.
Entre 1976 y 2010, la Oficina de Marcas
y Patentes de Estados Unidos emitió más de
2.900 patentes que contenían la palabra
"Triclosán"
Al estar presente en múltiples productos
relacionados con la desinfección como en
productos de veterinaria, medicamentos,
cosméticos, fragancias etc. Las principales
fuentes de contaminación ambiental por
triclosán consideradas según Dann y Hontela
(2011) son las descargas de agua residual
doméstica así como la remoción incompleta de
triclosán en las plantas de tratamiento de agua
residual, permitiendo su distribución en suelo y
superficies de agua.
En diferentes países de todo el mundo,
incluido México, el triclosán ha sido detectado
en agua tratada y sin tratar, así como en
afluentes y efluentes tanto de lagos, ríos y agua
de mar entre otros (Canosa-Rodríguez, 2009).
Efectos del Triclosán
Uno de los mayores problemas derivados de la
introducción del Triclosán al medio ambiente,
son los efectos adversos que puede producir.
Los principales afectados por este problema son
la flora y fauna acuática, tales como las algas
unicelulares y cianobacterias, según un estudio
de Orvos en 2002 estos organismos unicelulares
sufrieron una inhibición en su crecimiento
utilizando concentraciones de Triclosán entre
1.3 y 13 ng/mL. Con respecto a los anfibios en
la especie Rana pipiens (rana leopardo) se
observó que el organismo perdía peso, así como
un índice de mortandad elevado en
concentraciones de Triclosán de 230 ng/L
(Fraker, 2004).
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Para la especie Rana catesbiana (rana
toro) se han observado cambios en su
metamorfosis prematura mediada por la
hormona tiroidea, afectando así su fenotipo
como un aumento de tamaño en la cola de los
renacuajos y disminución de peso utilizando
una concentración de 150 ng/mL (Veldhoen,
2006).
Los reportes para mamíferos afirman
que en las ratas el Triclosán disminuye los
niveles las cantidades de la hormona tiroidea
pero las concentraciones necesarias para
observar estos cambios son más altas con
respecto a los organismos acuáticos ya que es
necesario utilizar 30 mg/kg por día (Crofton,
2007).
Procesos de Degradación de Triclosán
Debido a que el Triclosán se encuentra disperso
en el medio ambiente y a la dificultad para ser
removido por métodos convencionales, se han
estudiado varios mecanismos de degradación de
Triclosán. Una alternativa son los procesos de
oxidación avanzada (POA), en donde se han
investigado el uso de diferentes
fotocatalizadores como peróxido de hidrógeno,
ozono, y óxidos metálicos de zinc y de titanio,
los resultados han sido relativamente buenos a
bajas concentraciones, algunos métodos utilizan
nano partículas de Pd/Fe, fotodegradación,
incluso radiación ultravioleta y cloro libre
(Molina, 2014). En el caso del cloro libre varia
la degradación según el pH de la muestra, entre
más neutro sea el pH más efectiva será la
degradación (Canosa et al; 2005).
Otros métodos poco estudiados son la
biodegradación de Triclosán con bacterias.
Recientemente se han encontrado que algunas
bacterias llegan a resistir a este compuesto e
incluso degradarlo algunos de los géneros de
estas bacterias son Pseudomonas (Molina,
2014) y Achromobacter xylosoxidasas (Canosa,
2008).
Estás capacidades de resistencia se
tienen documentadas por dos tipos: Intrínseca y
Adquirida las cuales surgen por mutación o por
la adquisición de material genético en forma de
plásmidos o transposones; estas
configuraciones permiten grandes arreglos de
genes de resistencia (Cabrea et al; 2007).
Otros microorganismos de aguas
residuales que se ha documentado que tienen
capacidad para degradar triclosán incluye a
Sphingomonas sp. Rd1, Nitrosomonas
europaea, Sphingomonas sp. PH-07 y
Sphingophyxis Strain KCY1 (Hay et al. 2001,
Roh et al. 2009, Lee et al. 2012 en Lee, et al.,
2013).
En la mayoría de los casos, el
tratamiento para eliminar un compuesto no
implica necesariamente la mineralización, por
lo que la probabilidad de el compuesto original
se haya transformando cambiando su
funcionalidad y toxicidad.
En el caso de tratamientos con
microrganismos, la problemática recae en la
patogenicidad de la mayoría de los
microrganismos estudiados, por otro lado los
estudios llevados a cabo para determinar la
presencia de microrganismos degradadores de
triclosán en México son bastante escasos, sin
especificar las cuencas concretas investigadas.
Es necesario emplear nuevas tecnologías
encaminadas a la resolución de este problema y
garantizar la completa eliminación de estos
contaminantes que pueden tener graves
consecuencias en la salud de los seres humanos,
flora y fauna acuática de los efluentes donde
son vertidos.
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Análisis de la Diversidad Bacteriana
El Uso de técnicas moleculares utilizando
marcadores filogenéticos como el gen
ribosomal 16S, se han constituido librerías
genómicas cuyos miembros de diferentes
grupos y sub-grupos incluyen en su orden:
Proteobacteria, Acidobacteria, Actinobacteria,
Verrucomicrobia, Bacteroidetes, Chloroflexi,
Planctomycetes, Gemmatimonadetes y
Firmicutes (como los más abundantes),
(Forney, 2004).
Nuestro grupo de trabajo recientemente
ha reportado parámetros físico-químicos y
microbiológicos de la calidad del agua, así
como el aislamiento de microrganismos
resistentes y degradadores de triclosán en la
microcuenca del río Xichú y su intersección con
el río Laja en subcuenca hidrológica del río
Santa María de la Reserva de la Biósfera Sierra
Gorda de Guanajuato (González C. et al, 2014).
En este contexto, y dada la importancia
del uso de microrganismos en los procesos de
biodegradación, en este trabajo se propone
contribuir con la identificación y
caracterización molecular de la diversidad
bacteriana involucrada en la degradación de
este tipo de contaminantes.
Metodología
Recursos microbianos
Las cepas bacterianas fueron colectadas
previamente en cuerpos de agua del estado de
Guanajuato, obteniendo así cinco cepas del
municipio de Xichú, Gto. Con la clave M1SA,
M310-3, M4AA, M1Sp y M110-3ª (González
C., et al., 2014) y se incluye una cepa del
municipio de Yuriria, Gto. Con la clave E4.
(Rodríguez-Rodríguez, et al., 2013) para un
total de 6 cepas seleccionadas por su capacidad
de utilizar Triclosán como fuente de carbono.
Extracción de DNA
Se Inocularon los aislados bacterianos en medio
LB líquido (5 ml) por 48 hrs. Se obtiene un
pellet tras centrifugaciones de 110 rpm. La lisis
se lleva a cabo en 300 µl de buffer (TRIS-
EDTA) se agitó en vortex por 1 min. Seguido
de lisis mecánica con perlas de vidrio (Atashpaz
et al; 2010). Posteriormente se agregó SDS
10% y se somete a agitación. Se agregaron 50
µl de NaCI (5 M) y 50 µl de LiCL (5 M) se
dejó reposar por 5 min a temperatura ambiente.
Se agregaron 5ul RNA a cada tubo.
Posteriormente se incubaron a una temperatura
de 37° C durante 10 min. (Eguiarte et al; 2007).
Se tomaron 500 µl del sobrenadante y se agregó
un volumen de fenol-cloroformo a las muestras.
Se tomaron 400 µl de la fase acuosa para
agregar 2 volúmenes de etanol absoluto
agitando vigorosamente. Finalmente se dejó
secar la pastilla de material genético. Por último
se suspendió en 50 µl de agua estéril, se agitó
ligeramente para su disolución y se dejaron en
congelación a -20° C (Zavala, 2005).
Electroforesis Horizontal en Gel de Agarosa
La visualización del ADN se realizó en una
cámara de electroforesis horizontal en geles de
agarosa al 1% en buffer TAE 1X para lo cual se
cargaron 2µl de muestra de extracción de DNA
y 1µl de buffer de carga GelGreen, se
mezclaron y se colocaron en los pozos.
Finalmente la cámara se ajustó a 100 volts
durante 30 min. El marcador molecular se
colocó en el último pozo. Se observó el
desplazamiento de las muestras a través de un
transiluminador. La imagen se transfirió a una
PC.
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Amplificación del Gen 16S RNAr bacteriano
mediante la reacción en cadena de
polimerasa (PCR).
Para la amplificación de los genes de RNAr
16S por la técnica de PCR, se utilizaron los
iniciadores universales F27 y R1492 (Wang,
1996) especificados en la Tabla 1 las muestras
se colocaron en tubo ependorff 25 µl de Mix 2x
Dream Taq, 1µl de los primers universales F27,
1µl de muestra de DNA y 22µl de agua estéril,
obteniendo así un volumen de 50 µl.
Tabla 1 Iniciadores Utilizados para la amplificación y la
Secuenciación
Posteriormente se colocaron en el
termociclador Multigene con las siguientes
condiciones de amplificación: Primera etapa a
95°C, 5 min., que a 35 ciclos como se muestra
en la Tabla 2.
Tabla 2 Temperaturas y tiempos utilizados en el proceso
de la Reacción en Cadena de la Polimerasa a un volumen
de 50µl.
Este proceso de amplificación se llevó a
cabo dos veces para asegurar una muestra
significativa en el proceso de purificación
obteniendo así un volumen total de 100 µl por
muestra. Posteriormente los productos de PCR,
se sometieron a electroforesis en un gel
Agarosa al 1% durante 30 minutos a 80 volts.
Purificación de los Productos de
Amplificación
La purificación del material genético se llevó a
cabo con el Kit de purificación Zymo DNA
Clean & Concentrador™-25 (Zymo Research)
obteniendo un volumen total de 40 µl por
muestra. Por último se realizó una electroforesis
colocando 2 µl de la muestra purificada y 1µl
de GelGreen observando así la muestra
purificada.
Secuenciación del Gen Ribosomal 16S
Después de obtener la purificación teniendo
aproximadamente 38 µl de cada muestra, estas
fueron secuenciadas en el Departamento de
Servicios Genómicos Cinvestav-Langebio,
mediante un proceso de secuenciación Sanger.
Análisis Molecular del gen ribosomal 16S de
la diversidad Bacteriana con potencial para
degradación de Triclosán
La última etapa fue la comparación de las
secuencias obtenidas con las depositadas en las
bases de datos. El primer paso fue utilizar el
software Blast de la página NCBI (National
Center for Biotechnology Information) para
comparar las secuencias con la de está base de
datos. En el siguiente paso se utilizó la base de
datos de GreenGen que contiene únicamente
secuencias bacterianas del gen 16s, con el
objetivo de descargar secuencias tipo para
observar las similitudes entre grupos, en este
punto se descargaron las secuencias tipo de las
especies con afinidad. Por último las 6
muestras secuenciadas y las secuencias tipo
fueron sometidas a un análisis de máxima
verosimilitud en el software MEGA para la
elaboración de un árbol filogenético observando
así las relaciones filogenéticas entre cada grupo.
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Resultados y Discusiones
Extracción y Visualización del DNA
El proceso de extracción fue esencial para la
purificación de DNA lográndose bandas bien
definidas como se observa en la Figura 1. La
cantidad de DNA fue suficiente y confiable
para el proceso de amplificación que se muestra
más adelante. Del análisis de integridad del
ADN se concluye que las muestran presentan
una concentración y pureza aceptable para la
amplificación subsecuente.
Figura 1 Integridad del DNA de Muestras de DNA
Cromosomico de cepas bacterianas con capacidad de
utilizar Triclosán como única fuente de carbono, A.- E4,
B.- M1SA, C.- M310-3, D.- M4AA, E.- M1Sp, F.-
M110-3.
Productos de amplificación PCR
Una vez amplificado el gen 16s RNAr a un
volumen de 50µl se llevó a cabo una
electroforesis para determinar si las bandas
observadas eran fiables para la purificación, se
observó la banda correspondiente al producto
de amplificación de aproximadamente 1500 pb
en las muestras.
Este proceso tuvo que repetirse varias
veces debido a que no todas las amplificaciones
eran exitosas, aun cuando el material genético
tenía un aspecto fiable, esto se debe a sustancias
que interfieren con la polimerasa mediante al
bloque parcial o total de su actividad catalítica
como algunas sales (Newlester- Microbial
2009), un factor para reproducir la
amplificación fue el volumen requerido de
100µl de cada muestra. En la Figura 2 se
observan los productos de PCR para la
amplificación del gen 16S RNAr de las
muestras bacterianas M310-3, M4AA y M1Sp
en las otras tres muestras no se observa el gen
16s. Finalmente y realizando los ajustes
correspondientes se logró obtener los productos
amplificados para las muestra M1SA y M110-3
y E4 (No se muestra figura).
Figura 2 Producto de amplificación de aproximadamente
1500 pb C.- M310-3, D.- M4AA, E.- M1Sp.
Purificación de los productos de
Amplificación
Las muestras fueron purificadas por el Kit de
purificación Zymo DNA Clean &
Concentrador™-25. Como producto de la
purificación se obtienen dos fragmentos para la
mayoría de las muestras como se puede ver en
la figura 3, ambos fragmentos difieren del
tamaño esperado de 1500 pb.
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Los resultados se reproducen al repetir
el experimento, sin embargo, el método de
purificación resultó ser efectivo para la
secuenciación del fragmento amplificado. Una
posible explicación podría ser por interferencia
en la corrida del gel por una sobrecarga de
material genético
Análisis de las Secuencias e identificación de
la diversidad bacteriana con capacidad para
degradar Triclosán
Las secuencias editadas fueron corridas en el
algoritmo BLAST del NCBI, para determinar el
grado de homología que guardan las secuencias
de las cepas aisladas con respecto a las
secuencias tipo depositadas en la base de datos
GreenGen la cual contiene únicamente
secuencias bacterianas del gen 16s, se
descargaron doce secuencias tipo de varias
especies del género Bacillus y el género
Aeromonas. Las 6 muestras secuenciadas y las
doce secuencias tipo fueron sometidas a un
análisis de máxima verosimilitud en el software
MEGA para la elaboración de un árbol
filogenético (Figura 4) observando así las
relaciones filogenéticas entre cada grupo.
Donde la muestra E4, M1AA y M110-3 tienen
una afinidad con B. safensis y pumilus,
mientras que la muestra M1Sp tiene una
relación filogenética con B. subtilis, la muestra
M310-3 tiene mucho parecido con B. cereus y
thuringiensis, y por último la muestra M1SA
tiene una relación filogenética muy grande con
Aeromonas hydrophila.
Figura 3 Fragmentos de amplificación purificados en
Gel de Agarosa al 1%, carril 1 marcador molecular 1kb
(izquierda) carriles 2 -6 Muestras E4, M1SA, M310-3,
M4AA, M1Sp.
Figura 4 Árbol filogenético realizado en MEGA, se
muestran las relaciones filogenéticas entre las muestras
secuenciadas y las secuencias tipo.
Los microorganismos del género
Bacillus son bacilos de gran tamaño (4-10 μm),
Gram positivos, aerobios estrictos o anaerobios
facultativos encapsulados.
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Una característica importante es que
forman esporas extraordinariamente resistentes
a condiciones desfavorables (Bartram et al;
2003), lo cual puede ser una característica
primordial para poder desarrollarse en cuerpos
de agua contaminada y/o presencia de
Triclosán. Las bacterias B. safensis y pumilus
están estrechamente relacionadas en base a las
características fenotípicas y en las secuencias
16s (Branquinho et al; 2007), en ambas
especies se tiene reportado que se han
encontrado en entornos de desechos industriales
en agua (Satomi, 2006), lo cual podría ser otro
indicador acerca de la resistencia a Triclosán.
Sin embargo la especie B. pumilus se ha
encontrado en infecciones por alimentos e
incluso en infecciones cutáneas en humanos
(Bentur, 2007) esto representa una
manipulación más delicada para esta especie.
La especie B. subtilis generalmente se
encuentra en sedimentos y en la rizósfera y
produce endosporas termoresistentes y tienen
una resistencia a los desinfectantes químicos
(Cuervo, 2010) y posiblemente obteniendo así
una resistencia y degradación hacía el
Triclosán. B. cereus es un patógeno de los
alimentos y está estrechamente relacionado
filogenéticamente con B. thuringiensis y esta
especie puede ser diferenciada de B. cereus por
que produce cristales dentro de su célula
durante la esporulación sin embargo no se tiene
reporte que B. thuringiensis tenga un ciclo de
vida parasito, ambas se han podido aislar de
cuerpos de agua ya que se encuentran en casi
cualquier ambiente (Pérez, 2005) pudiendo
deducir que se encontrarían en sitios
contaminados.
Para Aeromonas hydrophila las
características del género refieren que son
bacilos cortos de entre 0.3-1.0 µm, Gram-
negativos (Altweeg, 1999), son organismos
patógenos de reptiles pero se tiene reportes de
infecciones cutáneas y provocación de diarrea
en humanos.
Se ciclo vida es acuático y se tiene
reporte de aislamientos previos en aguas
residuales y aguas cloradas (Kühn et al; 1997)
obteniendo así posiblemente la capacidad de
degradación a Triclosán.
Todas la cepas bacterianas encontradas
podrían haber desarrollado resistencia al
Triclosán gracias a capacidades intrínsecas o
adquiridas y las cuales podrían ser indicadoras
de aguas contaminadas ya que son resistentes a
varios contaminantes gracias a sus aislamientos
previos en aguas contaminadas lo cual les ha
brindado esta resistencia al compuesto
Triclosán, sin embargo hace falta más estudios
acerca de las vías de degradación que estas
cepas poseen.
Conclusiones
Se encontraron seis cepas bacterianas
potencialmente degradadoras de Triclosán de
las cuales cinco pertenecen al género Bacillus y
una al género Aeromonas. Las bacterias
caracterizadas podrían ser utilizadas para
degradar Triclosán en estudios posteriores
gracias a su potencial biodegradador. No
obstante es necesario tener en cuenta que
algunas especies son pertenecen a la
clasificación de patógenas y se debería tener
cuidado con el manejo de las mismas tales
como B. cereus y Aeromonas
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