CARACTERIZACIÓN AMBIENTAL VIEJO
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CONDOMINIO LAGUNAS DE PUERTO VIEJO Caracterización Ambiental
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2019
CARACTERIZACIÓN AMBIENTAL
DE LAS LAGUNAS DE PUERTO
VIEJO
2019
CONDOMINIO LAGUNAS DE
PUERTO VIEJO
Elaborado por:
EQUILIBRIO AMBIENTAL SAC
Dirección:
Calle Bartolomé Herrera 170, Miraflores Lima - Perú
Teléfonos: (511) 652-7641 / (511) 652-7640
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ÍNDICE 1.0 GENERALIDADES ....................................................................................................................... 3
1.1 INTRODUCCIÓN ........................................................................................................................... 3 1.2 OBJETIVOS ................................................................................................................................... 3
2.0 MARCO LEGAL ........................................................................................................................... 4 3.0 LAGUNAS DE PUERTO VIEJO ...................................................................................................... 7
3.1 UBICACIÓN .................................................................................................................................. 7 3.2 ANTECEDENTES ........................................................................................................................... 8
4.0 CARACTERIZACIÓN AMBIENTAL FÍSICA Y BIOLÓGICA .............................................................. 10 4.1 FÍSICA ........................................................................................................................................ 10
4.1.1 CALIDAD DE AGUA Y SEDIMENTOS .................................................................................. 10 4.2 BIOLÓGICA ................................................................................................................................ 26
4.2.1 FLORA ............................................................................................................................... 26 4.2.2 AVIFAUNA ........................................................................................................................ 35 4.2.3 HIDROBIOLÓGICO............................................................................................................. 47
5.0 CONCLUSIONES ....................................................................................................................... 64 5.1 CALIDAD AMBIENTAL AGUA Y SEDIMENTOS ............................................................................. 64 5.2 BIOLÓGICO (FLORA Y AVIFAUNA) .............................................................................................. 65 5.3 HIDROBIOLÓGICO ..................................................................................................................... 67
6.0 RECOMENDACIONES ............................................................................................................... 68 6.1 CALIDAD AMBIENTAL E HIDROBIOLOGICO ................................................................................ 68 6.2 BIOLÓGICO (FLORA Y AVIFAUNA) .............................................................................................. 69
7. ANEXOS
ANEXO A: GALERIA DE FOTOS DE FLORA
ANEXO B: GALERIA DE FOTOS DE AVIFAUNA
ANEXO C: INFORME DE ENSAYO HIDROBIOLOGICO Y GALERIA DE FOTOS
ANEXO D: INFORMES DE ENSAYO DE CALIDAD DE AGUA – SEDIMENTOS Y GALERIA DE FOTOS
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CARACTERIZACIÓN AMBIENTAL DE LAS LAGUNAS DE PUERTO VIEJO
1.0 GENERALIDADES
1.1 INTRODUCCIÓN
El presente documento “Caracterización Ambiental de las Lagunas de Puerto Viejo” se ha
realizado con el objetivo de determinar el estado ambiental biológico y físico de las lagunas
ubicado dentro de los perímetros del Condominio Lagunas de Puerto Viejo, distrito de San
Antonio; para ello se han realizado los muestreos de calidad ambiental, hidrobiológico, y
evaluaciones biológicas de flora y avifauna.
Para su caracterización se realizaron trabajos de campo, las muestras de aguas superficiales y
sedimentos fueron tomadas por los analistas del laboratorio ALAB acreditados por INACAL, las
muestras hidrobiológicas fueron realizadas por el especialista en hidrobiología su análisis fue
realizada en el laboratorio Analytical Laboratory E.I.R.L, así mismo las evaluaciones biológicas
fueron realizadas por especialistas en flora y ornitología.
El área de estudio se enmarca en un ecosistema de lagunas costeras del Humedal de Puerto
Viejo, estas tienen una conexión permanente o efímera con el mar.
1.2 OBJETIVOS
Objetivo General
Desarrollar la “Caracterización Ambiental de las Lagunas de Puerto Viejo”, desde el
punto de vista físico biológico, los resultados compararlos con la normativa vigente
aplicable.
Objetivo Especifico
Realizar el muestreo en las lagunas Grande y Pequeña para su posterior análisis y
comparación con los ECA para Agua.
Realizar el muestreo de hidrobiología para las lagunas Grande y Pequeña de plancton,
perifiton y bentos
Realizar la evaluación de la flora y avifauna en las lagunas, y compararlos con las
normativas nacionales e internacionales aplicables a cada taxa y plantear medidas de
para mejorar el ecosistema terrestre actual.
Realizar el muestreo hidrobiológico en las lagunas, que tiene como fin mejorar las
condiciones actuales del ecosistema acuático, tanto desde el punto de vista ambiental,
estético y paisajístico.
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2.0 MARCO LEGAL
En el presente ítem se lista las normativas que son aplicables y se encuentran relacionadas a las
lagunas y su entorno.
NORMATIVA RELACIONADA CON LA PRESERVACIÓN DEL AMBIENTE Y EL DESARROLLO
SOSTENIBLE
LEY GENERAL DEL AMBIENTE (LEY N°28611), MODIFICADA POR DECRETO LEGISLATIVO
N°1055: La Ley General del Ambiente, promulgada el 13 de octubre del 2005, es la norma
rectora para la gestión ambiental en el Perú y establece los principios y normas básicas para
asegurar el efectivo ejercicio del derecho a un ambiente saludable, equilibrado y adecuado
para el pleno desarrollo de la vida, así como el deber de contribuir a una efectiva gestión
ambiental y de proteger el ambiente y a sus componentes, con el objetivo de mejorar la
calidad de vida de la población y lograr el desarrollo sostenible del país.
NORMAS RELACIONADAS CON LA BIODIVERSIDAD
Resolución Legislativa N° 25353, aprobación del Convenio relativo a humedales de
importancia internacional especialmente como hábitat de aves acuáticas (Convenio
Ramsar). Este convenio fue suscrito por Perú el 28 de agosto de 1986 y “constituyen el marco
para la acción nacional y la cooperación internacional en pro de la conservación y el uso
racional de los humedales y sus recursos”.
Decreto Supremo N 004-2015-MINAM Aprobación de la Estrategia Nacional de Humedales
Esta estrategia tiene como “objetivo general promover la conservación de los humedales
orientados a obtener beneficios ecológicos, sociales, económicos, culturales y espirituales
como aporte al desarrollo integral de Perú”.
Ley N° 27308 Ley Forestal y de Fauna Silvestre y sus reglamentos, los cuales “norman el
manejo y aprovechamiento en el ámbito nacional de todas las especies y subespecies de
fauna silvestre, nativas y exóticas”.
Decreto Supremo N° 004-2014-AG- Categorización de Especies Amenazadas de Fauna
Silvestre legalmente protegidas. Esta categorización “toma como referencia procedimientos
internacionalmente reconocidos y aceptados a fin de establecer las necesidades de protección
o restauración, así como la factibilidad de su aprovechamiento sostenible”. Este decreto
aprueba la categorización de 535 especies amenazadas de fauna silvestre entre mamíferos,
aves, reptiles y anfibios, distribuidas de la siguiente forma: 64 especies en peligro crítico (CR),
122 especies en peligro (EN), 203 especies en la categoría vulnerable (VU) y 103 especies en
la categoría casi amenazado (NT), 43 especies son consideradas con datos insuficientes (DD).
Estas dos últimas categorías fueron incluidas como medida de precaución con la finalidad de
asegurar su conservación. La caza, captura, tenencia comercio, transporte o exportación con
fines comerciales de todos los productos o subproductos de las especies categorizadas están
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prohibidas, excepto los especímenes procedentes de la caza de subsistencia efectuada por
las comunidades nativas de la Amazonía Peruana, la misma que está regulada por cuotas
máximas de comercialización.
La Convención de Ramsar (Artículo 1.1) entiende por humedales: "las extensiones de
marismas, pantanos y turberas, o superficies cubiertas de aguas, sean éstas de régimen
natural o artificial, permanentes o temporales, estancadas o corrientes, dulces, salobres o
saladas, incluidas las extensiones de agua marina cuya profundidad en marea baja no exceda
de seis metros”.
D.S. Nº 043-2006-AG, Aprueban Categorización de Especies Amenazadas de Flora Silvestre.
13/07/2006 Aprobada mediante Decreto Supremo N°043-2006-AG el 6 de julio del año 2006,
se aprueba la categorización de especies amenazadas de flora silvestre, que consta de 777
especies distribuidas indistintamente en las siguientes categorías; peligro crítico (CR), en
peligro (EN), vulnerable (VU) y Casi Amenazado (NT), prohibiéndose la extracción y
subproductos exceptuándose las procedentes de planes de manejo in situ o ex situ
aprobados por la autoridad competente o los de uso de subsistencia de comunidades nativas
y campesinas.
DR.M. N° 059-2015-MINAM Guía de Inventario de la Flora y Vegetación 19/03/2015, El
MINAM ha elaborado la presente "Guía de Inventario de la Flora y Vegetación", para ser
aplicada en los estudios ambientales que correspondan en el marco del Sistema Nacional de
Evaluación de Impacto Ambiental (SE lA), así como en los estudios del medio biológico de la
Zonificación Ecológica Económica (ZEE) y en inventarios detallados en general. Asimismo, en
esta guía se establecen los criterios básicos y procedimientos que orientan la realización de
los inventarios de la fiara y vegetación en los ecosistemas continentales, incluyendo solo fiara
vascular y excluyendo a la fiara de ambientes acuáticos.
R.M. N° 95-2017-MINAM Declaran la Desafectación de la Zona Reservada Humedales de
Puerto Viejo 10/04/2017, Declarar la Desafectación de la Zona Reservada Humedales de
Puerto Viejo, establecida mediante Resolución Ministerial N° 064-2008-AG, que de acuerdo
a su mapa y memoria descriptiva, abarca una superficie de doscientos setenta y cinco
hectáreas con ocho mil cien metros cuadrados (275.81 ha), ubicada en los distritos de San
Antonio y Chilca, provincia de Cañete, departamento de Lima.
NORMAS RELACIONADAS SOBRE EL RECURSO HÍDRICO
Ley N° 29338 Ley de Recursos Hídricos, la cual establece que “la Autoridad Nacional del Agua
clasifica los cuerpos de agua en función a sus características naturales y a los usos que se
destinan”.
Resolución Jefatural N° 056-2018-ANA, Clasificación de cuerpos de agua continentales
superficiales. Tiene por finalidad “contribuir a la conservación y protección de la calidad
de los cuerpos de agua superficiales continentales considerando sus usos potenciales y
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presentes, en concordancia con los estándares nacionales de calidad ambiental para
agua”.
NORMAS RELACIONADAS A CALIDAD AMBIENTAL
D.S. N° 004-2017 – MINAM; Aprueban Estándares de Calidad Ambiental (ECA) para agua y
establecen disposiciones complementarias, en la presente normativa se establecen las
concentraciones Estándares de Calidad Ambiental para los cuerpos de agua.
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Figura 3. 1Ubicación de las Lagunas de Puerto Viejo
3.0 LAGUNAS DE PUERTO VIEJO
3.1 UBICACIÓN
Las Lagunas de Puerto Viejo se localiza al Sur de Lima, en el distrito de San Antonio, provincia de
Cañete, a la altura del kilómetro 71 de la panamericana Sur (12°34’S y 76°42’W) a 22 metros
sobre el nivel del mar.
Este ecosistema al parecer forma (o formaron) parte del complejo del Humedal de Puerto Viejo
que ha sido formado por las afloraciones hídricas del acuífero de Mala, que se distribuyen
paralelamente al océano. El área evaluada en el presente estudio se encuentra delimitado por
el Este con la carretera Panamericana Sur, por el Sur con una carretera afirmada que conduce a
la zona de playa, hacia el Norte con la zona residencial “Lagunas de Puerto Nuevo”. Las Lagunas
se encuentran dentro de los linderos del Condominio.
En la siguiente figura se aprecia la ubicación de las Lagunas.
Fuente: EQAM, 2019.
Laguna Grande
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3.2 ANTECEDENTES
Los antecedentes que se detallan son por la colindancia y relación indirecta de las lagunas al
Humedales de Puerto Viejo:
En el año 2008, este ecosistema fue protegido por el Estado y declarado Zona Reservada
Humedales de Puerto Viejo (Resolución Ministerial Nº 064-2008-AG), una categoría transitoria
que brinda el SINANPE (Sistema Nacional de Áreas Naturales Protegidas por el Estado).
Luego de una década de protección transitoria y múltiples acciones a favor de su conservación,
en abril del 2017 se emitió una normativa legal que declara la desafectación de los Humedal de
Puerto Viejo (Resolución Ministerial Nº 95-2017-MINAM), perdiendo la categoría de Zona
Reservada (Z.R) y quedando desprotegida legalmente.
El sustento técnico que se presentó (Informe Nº 638-2016 SERNANP-DDE) indica que la Z.R.
Humedales de Puerto Viejo no cumple con las características básicas del componente físico
establecidas por el SINANPE, las cuales son: representatividad, eficiencia, consistencia,
conectividad, equilibrio, complementariedad y coherencia externa, referidas en el Plan Director
de las Áreas Naturales Protegidas (D.S. 016-2009 MINAM).
En mayo del 2018 se elaboró la Ficha Técnica del Estado de Conservación “Humedal Costero
Puerto Viejo” por la Dirección de Inventario y valoración del Ministerio de Agricultura y Riego
conjuntamente con el SERFOR, MINAM, ANA y GORE Lima (1) realizaron la delimitación del
Humedal del Puerto Viejo, siendo sus coordenadas de ubicación/delimitación la que señala en
la siguiente tabla.
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Tabla 3.1.- Ubicación/Delimitación del Humedal de Puerto Viejo
Vértices Este Norte Imagen
01 313791 8611512
02 315508 8609940
03 315678 8608512
04 315272 8607834
05 315000 8607703
06 314929 8608707
07 315255 8609010
08 313619 8610500
Fuente: Ficha Técnica de Conservación – Humedal de Puerto Viejo y Mapa del SERNAMP Nota (1) SERFOR: Servicio Forestal y de Fauna Silvestre // MINAM: Ministerio del Ambiente // ANA: Autoridad Nacional del Agua
GORE Lima: Gobierno Regional Lima
Diversos estudios realizados en este ecosistema han mostrado que el humedal cuenta con una
diversidad representativa de organismos propios de la costa peruana (Iannacone et al. 2003,
Paredes et al 2007, La Torre & Aponte 2009, Tello & Castillo 2010, Aponte & Cano 2013), y que
además presenta una alta complementariedad con otros ecosistemas similares de la costa de
Lima (Aponte & Cano 2013).
Sin perjuicio de lo declarado, el Condominio La Laguna de Puerto Viejo busca conservar la calidad
de las lagunas, razón por ello se ha realizado su Caracterización Ambiental.
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4.0 CARACTERIZACIÓN AMBIENTAL FÍSICA Y BIOLÓGICA
4.1 FÍSICA
4.1.1 CALIDAD DE AGUA Y SEDIMENTOS
A fin de caracterizar la calidad del agua y sedimentos de las lagunas (Grande y Pequeña) se ha
realizado el muestreo en cuatro estaciones localizados tanto en puntos medios como en la orilla.
El muestreo fue realizado el día 12 de noviembre del 2019 a cargo del laboratorio ANALYTICAL
LABORATORY E.I.R.L (ALAB), los resultados se presentan en el Informe de Ensayo N° 138104-
2019.
4.1.1.1 Objetivos
‐ Determinar las concentraciones de los parámetros: Potencial de Hidrógeno (pH)
Temperatura (T°) Aceites y Grasas (A y G) Demanda Bioquímica de Oxígeno (DBO5),
Sólidos Suspendidos Totales (TSS), Oxígeno Disuelto (OD), transparencia, Fitoplancton
Cualitativo, Fitoplancton Cuantitativo, Zooplancton Cualitativo, Zooplancton
Cuantitativo.
‐ Comparar los resultados obtenidos con los valores de referencia establecidos el D.S. N°
004-2017 – MINAM, “Estándares Nacionales de Calidad Ambiental para Agua”.
Categoría 1 - B2 y Categoría 4 - E1.
4.1.1.2 Estaciones de Muestreo
Las 4 estaciones para el muestreo de Calidad de agua y sedimentos de las lagunas se describen
en la Tabla 4.1, se indican las coordenadas en UTM WGS84 y ubicación de referencia.
Tabla 4.1.-Estaciones de Muestreo de Calidad de Agua y Sedimentos
Sector Estaciones
Coordenadas UTM (WGS 84), Z18S Ubicación/Referencia
Este Norte
Laguna Grande CAG – 01 314572 8609545 Cerca a la orilla de la Laguna Grande
Laguna Grande CAG – 02 314689 8609365 Punto Medio de la Laguna Grande
Laguna Pequeña CAG - 03 314863 8609149 Cerca al Puente de la Laguna Grande
Laguna Pequeña CAG - 04 315021 8609028 Laguna Pequeña
Fuente: EQAM, 2019.
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Fuente: EQAM, 2019.
4.1.1.3 Parámetros y Estándar de Calidad Ambiental
CALIDAD DEL AGUA: A fin de conocer las características fisicoquímicas de la calidad del agua
de las lagunas se ha considerado los parámetros y ECA (Estándares de Calidad Ambiental para
Agua) D.S. N° 004-2017 – MINAM. Los criterios que se ha considerado para su análisis por
corresponder a un cuerpo de agua que tiene un uso recreativo de contacto secundario su
comparación se realizó con la Categoría 1 - B2, es necesario indicar que de manera
complementaria o de referencia también se hizo la comparación con la Categoría 4 - E1 de
los parámetros con los que se cuentan, por su cercanía a los Humedales de Puerto Viejo.
Tabla 4.2.-Parámetros evaluados, Estándares de Calidad Ambiental para Agua
Parámetro Unidades
ECA ECA
D.S.004-2017 –
MINAM D.S.004-2017 – MINAM
Categoría 1 - B2 Categoría 4 - E1
Temperatura °C -- ∆3
pH Unidad de pH ** 6.5 – 9.0
Alcalinidad total mg CaCO3/L -- --
Dureza total mg CaCO3/L -- --
Salinidad ppt -- --
Conductividad Us/cm -- 1000
Clorofila mg/L -- 0.008
Color UC Sin cambio normal 20 (a)
Oxígeno Disuelto mg/L ≥ 4 ≥ 5
Solidos suspendidos totales mg/L -- ≤ 25
Aceites y grasas mg/L ** 5.0
Demanda Bioquímica de oxigeno mg/L 10 5.0
Figura 4.1.- Ubicación de las estaciones de muestreo
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Parámetro Unidades
ECA ECA
D.S.004-2017 –
MINAM D.S.004-2017 – MINAM
Categoría 1 - B2 Categoría 4 - E1
Nitrógeno total mg/L -- 0.315
Nitrógeno amoniacal mg N-NH3/L
Nitratos mg N02/L ** 13
Nitritos mg N02/L ** --
Amoniaco mg NH3/L -- (1)
Sulfuro mg/L ** 0.002
Cianuro libre mg/l 0.022 0.0052
Cromo hexavalente mg/l ** 0.011
Fenol mg/L -- 2.56
Fosforo total mg/l P/L -- 0.035
Mercurio mg/l ** 0.0001
Cadmio mg/L ** 0.0088
Coliformes Termotolerantes
/fecales NMP/100ml 1000 2000
(**) No aplica para esta categoría (2) Aplicar la tabla 1 del ECA, que dependerá del pH y Temperatura
Fuente: EQAM, 2019.
SEDIMENTOS: Los parámetros analizados para sedimentos son los siguientes.
Tipo de Ensayo Norma de Referencia Titulo
Carbono Orgánico 1 NOM-021-RECNAT-2000-AS-007 Materia Orgánica
Conductividad 1 NOM-021-RECNAT-2000/AS-18 Especificaciones de fertilidad, salinidad y
clasificación de suelos
Fósforo Disponible (*) NOM-021-RECNAT-2000 AS-10 NOM-021-RECNAT-2000 AS-12 – Fosforo
Extraíble - Suelo
Granulometría (*) NTP 339.090/339.128 Norma Técnica peruana 339.090/339.128
(1999) Revisada 2014.
Humedad (*) NTP-311-241 Humedad NTP
Materia Orgánica 1 NOM-021-RECNAT-2000 AS-007 Materia Orgánica
Nitratos (*) NOM-021-AS 08/SMWEE Part
4500NO3-E N-Nitrato Suelo
Potasio Cambiable (*) Manual de Análisis de Suelos y Tejidos
Vegetales CIAT, agosto 1997
Métodos Analíticos para Suelos Ácidos y
Plantas, Centro Internacional de
Agricultura Tropical (CIAT)
Potencial de Hidrogeno 1 EPA SW-846, Method 9045D, Revisión
4 Soil and waste pH
Sulfatos (*) NOM-021-RECNAT-2000 AS-
20/SMEWW 23rd Ed. SO42-E
NOM-021-RECNAT-2000 AS-20/SMEWW
23rd Ed. SO42-E, Sulfatos en Suelo
Textura (*) NOM-021-RECNAT-2000-AS-09 NOM-021-RECNAT-2000-AS-09/Textura
EPA: U.S. Environmental Protección Agency. Methods for Chemicals Analysis.
NOM: Norma Oficial Mexicana
SMEWW: Estándar Methods for the Examination of Water and Wastswter
NTO: Norma Técnica Peruana
(1) El ensayo indicado no ha suido acreditado por el INACAL-DA
Fuente: Informe de Ensayo N° IE-19-7397
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4.1.1.4 Metodología de Muestreo
El muestreo realizado por el Laboratorio Analytical Laboratory E.I.R.L. (ALAB) para agua y
sedimentos se presentan en el Anexo D en el Informe de Ensayo N° IE-19-7398. Las muestras de
sedimentos obtenidas fueron simples a nivel superficial, estas se tomaron inmediatamente del
terreno luego de realizar un pequeño dragado para cada punto de muestreo. Los envases usados
para la toma y transporte de muestras fueron determinados de acuerdo con los parámetros a
analizar respectivamente.
Las actividades desarrolladas en cada punto de muestreo se describen a continuación:
Reconocimiento del entorno y ubicación del punto de muestreo.
Acondicionamiento (Preparación de frascos, rotulado y etiquetado).
Medición de parámetros de campo y registro de información.
Toma de muestras de agua, preservación, etiquetado, rotulado.
Preservación de acuerdo a naturaleza de muestra.
Llenado de cadena de custodia.
Conservación y transporte de las muestras.
4.1.1.5 Equipos Utilizados
Cooler con envases y viales para toma de muestras.
Herramientas manuales para excavación de sedimentos. (Draga)
Soga
Bolsas de plástico
Cámara fotográfica
GPS
Mapa
4.1.1.6 Resultados de Muestreo
4.1.1.6.1 Resultados de Calidad para Agua
Los muestras fueron recolectadas el 12 de noviembre del año 2019 los resultados se presentan
en la Tabla 4.12, y en las figuras la representación de cada parámetro y en algunos casos se
presentan figuras de los valores comparativos de años anteriores a fin de ver el comportamiento
a través de los años (2015 - 2019). Los resultados han sido comparados con el D.S. N° 004-2017
– MINAM (Estándar de Calidad Ambiental para Agua), a continuación la descripción de cada
parámetro analizado:
pH: El agua presenta un pH fuertemente alcalino en las 4 estaciones, presentando valores de
9.35 hasta 9.56, estado fuera del rango del Estándar de Calidad Ambiental para Agua (ECA) que
establece la norma ambiental, dado que debería encontrarse en un rango entre 6.5 a 9.0.
Este pH se ha visto que se ha incremento en los últimos años, ya que en años anteriores al
2019 el pH mantenía un valor dentro del ECA, es decir, es decir un valor promedio de 8, y un
año excepcional (2016) donde se registró por encima de 9.
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Este pH elevado, es decir, por encima de 9 favorece el desarrollo de cyanobacterias que no
solo afectan la coloración del agua, sino que también pueden generar toxinas como las
microcistinas (hepatotoxinas), antoxinas (neurotoxinas) y toxinas irritantes de piel y mucosas,
así también este rango elevado de pH no favorece a la vida acuática de las especies, con un pH
por encima de 10 ocasionaría signos de estrés grave de los peces1.
Salinidad: las muestras de agua en tres estaciones presentan valores de 2.92, 2.96 y 2.98
siendo estos valores ligeramente salinos, en la estación CAG-04 (Laguna Pequeña) no presenta
valores.
Clorofila: los resultados muestran concentraciones < 0.005 mg/l las cuales se encuentran
dentro del rango de la norma de comparación ECA Categoría 4 E1. Cabe mencionar que la
clorofila por depender de la concentración de nutrientes (FT y NT), penetración de la luz y
temperatura del agua, es decir, en este caso se presentaría un aumento de la clorofila al
incremento de las concentraciones de estos nutrientes, especialmente del Fosforo Total.
Las lagunas no tienen registros históricos de este parámetro, por lo tanto no se puede
determinar si en el tiempo ha habido variaciones y su influencia en las lagunas.
Oxígeno Disuelto: Los resultados muestran que la calidad del agua tiene buena oxigenación,
presentan concentraciones de 9.2 mg/l hasta 10 mg/l, lo cual permite la oxidación de la
materia orgánica, así como permitir el desarrollo de vida en las lagunas. Cabe mencionar que
valores ≤ 4 se considera no apto para el desarrollo de vida.
Sólidos Suspendidos Totales: Este parámetro se encuentra sobrepasando el valor de ECA para
Agua en dos estaciones (CAG-03 y CAG-04). Estas concentraciones elevadas se ven también
influenciada el tipo del sistema de aereación que se aplica a las lagunas, así como también a la
presencia de corte de vegetación como parte del mantenimiento a las áreas verdes próximas
a estas.
Aceites y Grasas: Los resultados muestran que en las cuatro estaciones presentan bajas
concentraciones de aceites y grasas estando dentro del rango para este parámetro.
Demanda Bioquímica de Oxigeno: La concentración de DBO5 en las cuatro estaciones
presentan valores de 49.3 a 54.7 mg/l muy por encima del valor de referencia de la normativa
ECA para Agua, lo cual indica que el agua se encuentra ligeramente contaminada.
Fósforo Total: Las concentraciones se encuentran dentro del rango en dos estaciones (CAG-02
y CAG-03), sobrepasando la concentración del ECA para Agua en las estaciones CAG-01 y CA-
04. De la comparación con los registros históricos en algunos años muestran que las lagunas
ya presentaban concentraciones elevadas, mientras que otros años muestra una disminución.
1 Nota: https://espanol.mercola.com/boletin-de-salud/agua-alcalina.aspx
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El Fósforo Total es parte de los productos de las excretas de los seres vivos y se encuentran
contenido principalmente en los fertilizantes, detergentes y aguas servidas. El fósforo junto
con el nitrógeno, son dos de los nutrientes fundamentales de todos los seres vivos, de forma
que contenidos anormalmente altos de estos en las aguas pueden producir un crecimiento
incontrolado de la biomasa acuática (eutrofización).
Nitrógeno Total: En las cuatro estaciones han reportado concentraciones entre 0.55 a 0.70
mg/l, estos valores se encuentran por encima del ECA para Agua. De la comparación de los
registros históricos se observa un incremento de más del 50% en sus concentraciones. Del
análisis de los registros históricos se tiene que el nitrógeno total tiene variaciones en las
concentraciones entre 0.0021 hasta 0.191 mg/l, con excepción de un trimestre del 2016 que
se presentó valores altos, relacionándose con el incremento en los últimos años del nitrito y
nitrato
Amoniaco: Los resultados para las cuatro estaciones presenta concentraciones de ≤ 0.12 mg/l,
estando por encima del valor establecido en la Tabla N° 4.3 del ECA para Agua que está en el
rango de 0.043 mg/l. Así mismo al presentar baja concentración de Amonio la concentración
de Nitritos y Nitratos es baja, ya que este se visualiza en los resultados de las concentraciones
de Nitratos, las cuales presentan valores entre 2.351 a 2.978 mg/l.
Cabe mencionar que el Amoniaco es uno de los compuestos intermedios formados durante la
biodegradación de los compuestos orgánicos nitrogenados (aminoácidos, proteínas, ácidos
nucleicos, etc.) que forman parte de los seres vivos, y junto con el nitrógeno orgánico es un
indicador de que un curso de agua ha sufrido una contaminación reciente. La oxidación
aeróbica de los compuestos amoniacales y órgano nitrogenados, conduce a la formación de
nitritos y posteriormente de estos en nitratos, por lo que un elevado contenido en nitratos y
simultáneamente bajo en amonio, indica que se trata de un agua contaminada hace tiempo.
Nitrato: En las cuatro estaciones de muestreadas han reportado concentraciones por debajo
del ECA para Agua con referencia con valores de 2.351 a 2.978 mg/l, sin embargo a pesar de
estar dentro del rango de calidad para agua, estas concentraciones se han incrementado en
los últimos años en más del 100% de su concentración inicial, a consecuencia del incremento
del Amoniaco.
CONDOMINIO LAGUNAS DE PUERTO VIEJO Informe de Caracterización
Diciembre 2019
16
Tabla 4.3.-Resultados de Muestreo - Noviembre 2019
Parámetros Unidades
Estaciones ECA ECA
CAG – 01 CAG – 02 CAG – 03 CAG – 04 D.S.004-2017 – MINAM D.S.004-2017 – MINAM
Laguna Grande (Orilla) Laguna Grande (Medio) Laguna Grande (Puente) Laguna Pequeña Categoría 1 - B2 Categoría 4 - E1
Temperatura °C 24.7 24.2 23.3 24.3 -- ∆3
pH Unidad de pH 9.42 9.35 9.37 9.56 ** 6.5 – 9.0
Alcalinidad Total mg CaCO3/L 238 241 239 206 -- --
Dureza Total mg CaCO3/L 212 209 209 138 -- --
Salinidad ppt 2.96 2.98 2.92 00 -- --
Conductividad Us/cm 5524 5523 5386 3498 -- 1000
Clorofila mg/L <0.005 <0.005 <0.005 <0.005 -- 0.008
Color UC 6 6 7 15 Sin cambio normal 20 (a)
Oxígeno Disuelto mg/L 9.2 9.6 9.2 10.0 ≥ 4 ≥ 5
Solidos Suspendidos Totales mg/L 20 18 28 31 -- ≤ 25
Aceites y Grasas mg/L 2.50 1.70 1.70 2.20 ** 5.0
Demanda Bioquímica de Oxigeno mg/L 52.6 49.3 54.7 52.9 10 5.0
Nitrógeno Total mg/L 0.70 0.68 0.60 0.55 -- 0.315
Nitrógeno Amoniacal mg N-NH3/L <0.10 <0.10 <0.10 <0.10
Nitratos mg N02/L 2.978 2.957 2.602 2.351 ** 200
Nitritos mg N02/L <0.066 <0.066 <0.066 <0.066 ** --
Amoniaco mg NH3/L <0.12 <0.12 <0.12 <0.12 -- (1)
Sulfuro mg/L <0.020 <0.020 <0.020 <0.020 ** 0.002
Cianuro Libre mg/l <0.025 <0.025 <0.025 <0.025 0.022 0.0052
Cromo Hexavalente mg/l <0.010 <0.010 <0.010 <0.010 ** 0.011
Fenol mg/L <0.0010 <0.0010 <0.0010 <0.0010 -- 2.56
Fosforo Total mg/l P/L 0.043 0.025 0.034 0.134 -- 0.035
Mercurio mg/l <0.0001 <0.0001 <0.0001 <0.0001 ** 0.0001
Cadmio mg/L <0.0001 <0.0001 <0.0001 <0.0001 ** 0.0088
Coliformes Termotolerantes /fecales NMP/100ml 79.0 79.0 49.0 110.0 1000 2000
(**) No aplica para esta categoría // (1) Aplicar la tabla 1 del ECA, que dependerá del pH y Temperatura
Fuente: EQAM, 2019.
CONDOMINIO LAGUNAS DE PUERTO VIEJO Informe de Caracterización
Diciembre 2019
17
9.42 9.35 9.37 9.56
5
6
7
8
9
10
11
12
Laguna Grande (Orilla) Laguna Grande (Medio) Laguna Grande (Puente) Laguna Pequeña
CAG – 1 CAG – 2 CAG – 3 CAG – 4
Un
idad
de
pH
pH
E1: 6.5 - 9
8.48 8.48 8.68
8.23 8.268.73 8.5 8.66
8.87
8.338.45
8.3 8.37 8.408.62
9.90
9.34
8.33 8.458.30
8.89 8.88 8.84
7.89 7.76 7.64
8.58 8.64
7.80
8.33 8.358.55
7.80
9.47 9.449.25
4
5
6
7
8
9
10
11
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Ene-15 May-15 Set-15 Ene-16 Mar-16 Ago-16 Oct-16 Ene-17 May-17 Nov-17 Feb-18
Nov-18 Jul-19
pH
ECA máx = 9
ECA min = 6.5
Figura 4. 3.- Resultados de pH (Enero 2015 – Julio 2019)
Fuente: EQAM, 2019. Fuente: EQAM, 2019.
Fuente: EQAM, 2019.
24.724.2
23.3
24.3
9.42 9.35 9.379.56
6
7
8
9
10
11
12
17
18
19
20
21
22
23
24
25
26
27
Laguna Grande (Orilla) Laguna Grande (Medio) Laguna Grande (Puente) Laguna Pequeña
CAG – 1 CAG – 2 CAG – 3 CAG – 4
°C
Temperatura °C
pH Unidad de pH
Figura 4.2.- Resultados de pH y Temperatura (Noviembre 2019)
CONDOMINIO LAGUNAS DE PUERTO VIEJO Informe de Caracterización
Diciembre 2019
18
238 241 239
206212 209 209
138
0
50
100
150
200
250
300
Laguna Grande (Orilla) Laguna Grande (Medio) Laguna Grande (Puente) Laguna Pequeña
CAG – 1 CAG – 2 CAG – 3 CAG – 4
mg/
CaC
O3
/l
Alcalinidad Total y Dureza total Alcalinidad total mg CaCO3/L
Dureza total mg CaCO3/L
Figura 4.4.- Resultados de Alcalinidad Total, Dureza Total y Amoniaco (Noviembre 2019)
Fuente: EQAM, 2019. Fuente: EQAM, 2019.
Fuente: EQAM, 2019.
<0.12 <0.12 <0.12 <0.12
2.96 2.98 2.92
0
24.7 24.223.3 24.3
9.42 9.35 9.37 9.56
0
5
10
15
20
25
30
0
0.5
1
1.5
2
2.5
3
3.5
4
4.5
5
Laguna Grande (Orilla) Laguna Grande (Medio) Laguna Grande (Puente) Laguna Pequeña
CAG – 1 CAG – 2 CAG – 3 CAG – 4
mg
/l
Amoniaco mg NH3/LSalinidad pptTemperatura °CpH Unidad de pH
280.0282.0
190.0
252.0
234.7
174.3
255.0252.5
200.0
268.5263.5
202.0
278.0272.5
202.0
0.0 0.0
267.9268.1
203.0
285.0275.0
208.0
275.0268.0
201.0
272.0
300.0
266.0280.0
250.0
269.5
171.9
271.4261.3266.3
0.0
40.0
80.0
120.0
160.0
200.0
240.0
280.0
320.0
Mue
lle
Puen
te
Chica
Mue
lle
Puen
te
Chica
Mue
lle
Puen
te
Chica
Mue
lle
Puen
te
Chica
Mue
lle
Puen
te
Chica
Mue
lle
Chica
Mue
lle
Puen
te
Chica
Mue
lle
Puen
te
Chica
Mue
lle
Puen
te
Chica
Mue
lle
Puen
te
Chica
Chica
Mue
lle
Puen
te
Chica
Mue
lle
Puen
te
Chica
Ene-15 May-15 Set-15 Ene-16 Mar-16 Ago-16 Oct-16 Ene-17 May-17 Nov-17 Feb-18
Nov-18 Jul-19
mg/
l
Dureza
Figura 4.5.- Resultados de Dureza (Enero 2015 – Julio 2019)
CONDOMINIO LAGUNAS DE PUERTO VIEJO Informe de Caracterización
Diciembre 2019
19
0.084 0.0810.098 0.107 0.107
0.0610.092 0.082 0.086 0.086 0.090 0.088 0.086 0.088 0.082
1.057
0.547
0.1210.141
0.191
0.0360.058 0.043 0.043
0.065 0.052
0.008 0.008 0.008 0.0230.061
0.031 0.021
0.121
0.0610.031
0.000
0.150
0.300
0.450
0.600
0.750
0.900
1.050
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Ene-15 May-15 Set-15 Ene-16 Mar-16 Ago-16 Oct-16 Ene-17 May-17 Nov-17 Feb-18
Nov-18 Jul-19
mg/
l
Nitrógeno total
ECA E1 = 0.315
Figura 4.7.- Resultados de Nitrógeno (Enero 2015 – Julio 2019)
Fuente: EQAM, 2019. Fuente: EQAM, 2019.
Fuente: EQAM, 2019.
0.70.68
0.6
0.55
0
0.1
0.2
0.3
0.4
0.5
0.6
0.7
0.8
0.9
1
Laguna Grande (Orilla) Laguna Grande (Medio) Laguna Grande (Puente) Laguna Pequeña
CAG – 1 CAG – 2 CAG – 3 CAG – 4
mg/
L
Nitrogeno totalNitrógeno total
E1: 0.315
0.7 0.68 0.6 0.55
<0.1 <0.1 <0.1 <0.1<0.12 <0.12 <0.12 <0.12<0.066 <0.066 <0.066 <0.066
2.978 2.957
2.602
2.351
0
0.5
1
1.5
2
2.5
3
3.5
Laguna Grande (Orilla) Laguna Grande (Medio) Laguna Grande (Puente) Laguna Pequeña
CAG – 1 CAG – 2 CAG – 3 CAG – 4
mg/
CaC
O3
/l
Nitrogeno total, amoniacal, amoniaco, nitritos y nitratos Nitrógeno total
Nitrógeno amoniacal
Amoniaco mg NH3/L
Nitritos mg N02/L
Nitratos mg N03/L
Figura 4.6.- Resultados de Nitrógeno Total, y comparativo (Noviembre 2019)
CONDOMINIO LAGUNAS DE PUERTO VIEJO Informe de Caracterización
Diciembre 2019
20
Fuente: EQAM, 2019. Fuente: EQAM, 2019.
Fuente: EQAM, 2019.
2.978 2.9572.602 2.351
0
3
6
9
12
15
Laguna Grande (Orilla) Laguna Grande (Medio) Laguna Grande (Puente) Laguna Pequeña
CAG – 1 CAG – 2 CAG – 3 CAG – 4
mg/
L
Nitratos Nitratos mg N03/L
E1: 13
0.0220.0090.0310.0430.047
0.005
0.0920.0820.0860.0860.0900.0880.0860.0880.082
0.867
0.176
0.0860.0980.083
0.0360.0580.0430.043
0.0650.052
0.0080.0080.0080.000
0.0500.0200.010
0.100
0.0400.010
0.000
0.050
0.100
0.150
0.200
0.250
0.300
0.350
0.400
0.450
0.500
0.550
0.600
0.650
0.700
0.750
0.800
0.850
0.900
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Ene-15 May-15 Set-15 Ene-16 Mar-16 Ago-16 Oct-16 Ene-17 May-17 Nov-17 Feb-18
Nov-18 Jul-19
mg/
l
Nitrato ECA 4 = 13
0.7 0.68 0.6 0.55
<0.1 <0.1 <0.1 <0.1<0.12 <0.12 <0.12 <0.12<0.066 <0.066 <0.066 <0.066
2.978 2.957
2.602
2.351
0
0.5
1
1.5
2
2.5
3
3.5
Laguna Grande (Orilla) Laguna Grande (Medio) Laguna Grande (Puente) Laguna Pequeña
CAG – 1 CAG – 2 CAG – 3 CAG – 4
mg/
CaC
O3
/l
Nitrogeno total, amoniacal, amoniaco, nitritos y nitratos Nitrógeno total
Nitrógeno amoniacal
Amoniaco mg NH3/L
Nitritos mg N02/L
Nitratos mg N03/L
Figura 4.8.- Resultados de Nitratos (Noviembre 2019)
Figura 4.9.- Resultados de Nitratos (Enero 2015 – Julio 2019)
CONDOMINIO LAGUNAS DE PUERTO VIEJO Informe de Caracterización
Diciembre 2019
21
Fuente: EQAM, 2019.
Fuente: EQAM, 2019.
11.05
12.30
17.55
10.80
12.5012.00
8.63 8.39 8.23 8.00 8.269.56
8.33 8.26 8.32
7.00
9.00 8.48 8.39 9.357.69 7.89
8.90
6.697.59
8.20
6.73
7.99
15.10
30.00
11.50
24.1024.40
2.00 2.00 2.00
0.00
2.00
4.00
6.00
8.00
10.00
12.00
14.00
16.00
18.00
20.00
22.00
24.00
26.00
28.00
30.00
32.00
Mue
lle
Puen
te
Chica
Mue
lle
Puen
te
Chica
Mue
lle
Puen
te
Chica
Mue
lle
Puen
te
Chica
Mue
lle
Puen
te
Chica
Mue
lle
Chica
Mue
lle
Puen
te
Chica
Mue
lle
Puen
te
Chica
Mue
lle
Puen
te
Chica
Mue
lle
Puen
te
Chica
Chica
Mue
lle
Puen
te
Chica
Mue
lle
Puen
te
Chica
Ene-15 May-15 Set-15 Ene-16 Mar-16 Ago-16 Oct-16 Ene-17 May-17 Nov-17 Feb-18
Nov-18 Jul-19
mg/
l
DBO5
ECA E1 = 5
ECA B2 = 10
52.6
49.3
54.752.9
0
10
20
30
40
50
60
Laguna Grande (Orilla) Laguna Grande (Medio) Laguna Grande (Puente) Laguna Pequeña
CAG – 1 CAG – 2 CAG – 3 CAG – 4
mg/
L
DBO 5
B2: 10
E1 : 5
Figura 4.10.-Resultados de DBO5 (Noviembre 2019)
Figura 4.11.- Resultados de DBO5 (Enero 2015 – Julio 2019)
CONDOMINIO LAGUNAS DE PUERTO VIEJO Informe de Caracterización
Diciembre 2019
22
0.001
0.011
0.031
0.057
0.036
0.046
0.088
0.098
0.071
0.0160.0230.026
0.021
0.001
0.016
0.101
0.165
0.0050.0050.0050.0050.0050.0050.0050.0050.0050.0050.0050.005
0.055
0.130
0.170
0.180
0.130
0.170
0.180
0.000
0.020
0.040
0.060
0.080
0.100
0.120
0.140
0.160
0.180
0.200
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Ene-15 May-15 Set-15 Ene-16 Mar-16 Ago-16 Oct-16 Ene-17 May-17 Nov-17 Feb-18
Nov-18 Jul-19
Fósforo (P=32.62%xFosfato) (mg/l)
Figura 4.13.- Resultados de Fosforo (Enero 2015 – Julio 2019)
Fuente: EQAM, 2019. Fuente: EQAM, 2019.
Fuente: EQAM, 2019.
0.043
0.025 0.034
0.134
0
0.02
0.04
0.06
0.08
0.1
0.12
0.14
0.16
0.18
0.2
Laguna Grande (Orilla) Laguna Grande (Medio) Laguna Grande (Puente) Laguna Pequeña
CAG – 1 CAG – 2 CAG – 3 CAG – 4
mg/
l
Fósforo total
E1: 0.0350.043
0.0250.034
0.134
<0.005 <0.005 <0.005 <0.005
0
0.02
0.04
0.06
0.08
0.1
0.12
0.14
0.16
0
0.02
0.04
0.06
0.08
0.1
0.12
0.14
0.16
0.18
0.2
Laguna Grande (Orilla) Laguna Grande (Medio) Laguna Grande (Puente) Laguna Pequeña
CAG – 1 CAG – 2 CAG – 3 CAG – 4
mg/
l
Fosforo total mg/l P/L
Clorofila Mg/L
Figura 4.12.- Resultados de Fósforo Total y Clorofila (Noviembre 2019)
CONDOMINIO LAGUNAS DE PUERTO VIEJO Informe de Caracterización
Diciembre 2019
23
Fuente: EQAM, 2019.
<0.02 <0.02 <0.02 <0.02
0
0.01
0.02
0.03
0.04
0.05
0.06
0.07
0.08
0.09
0.1
Laguna Grande (Orilla) Laguna Grande (Medio) Laguna Grande (Puente) Laguna Pequeña
CAG – 1 CAG – 2 CAG – 3 CAG – 4
mg/
l
Sulfuro
E1: 0.002
<0.025 <0.025 <0.025 <0.025
0
0.01
0.02
0.03
0.04
0.05
0.06
0.07
0.08
0.09
0.1
Laguna Grande (Orilla) Laguna Grande (Medio) Laguna Grande (Puente) Laguna Pequeña
CAG – 1 CAG – 2 CAG – 3 CAG – 4
mg/
l
Cianuro libre
E1: 0.0052
B2: 0.022
<0.01 <0.01 <0.01 <0.010
0.01
0.02
0.03
0.04
0.05
0.06
0.07
0.08
0.09
0.1
Laguna Grande (Orilla) Laguna Grande (Medio) Laguna Grande (Puente) Laguna Pequeña
CAG – 1 CAG – 2 CAG – 3 CAG – 4
mg/
l
Cromo hexavalente
E1: 0.011
<0.001 <0.001 <0.001 <0.0010
0.01
0.02
0.03
0.04
0.05
0.06
0.07
0.08
0.09
0.1
Laguna Grande (Orilla) Laguna Grande (Medio) Laguna Grande (Puente) Laguna Pequeña
CAG – 1 CAG – 2 CAG – 3 CAG – 4
mg/
l
FenolE1: 0.56
Figura 4.14.- Resultados de Sulfuro, Cianuro Libre, Cromo Hexavalente y Fenol (Noviembre 2019)
CONDOMINIO LAGUNAS DE PUERTO VIEJO Informe de Caracterización
Diciembre 2019
24
0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 040
0 0 0
94
460
0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
70
27
790
17 33 39
04080
120160200240280320360400440480520560600640680720760800840
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
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Chic
a
Mue
lle
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Chic
a
Mue
lle
Chic
a
Mue
lle
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Chic
a
Mue
lle
Puen
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Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Mue
lle
Puen
te
Chic
a
Ene-15 May-15 Set-15 Ene-16 Mar-16 Ago-16 Oct-16 Ene-17 May-17 Nov-17 Feb-18
Nov-18 Jul-19
Coliformes Termo-Tolerantes (NMP/100ml)ECA E1 = 1000 NMP/100ml
Figura 4. 16.- Resultados de Coliformes Termotolerantes (Enero 2015 – Julio 2019)
Fuente: EQAM, 2019. Fuente: EQAM, 2019.
Fuente: EQAM, 2019.
<0.0001 <0.0001 <0.0001 <0.0001<0.0001 <0.0001 <0.0001 <0.0001
0
0.002
0.004
0.006
0.008
0.01
Laguna Grande (Orilla) Laguna Grande (Medio) Laguna Grande (Puente) Laguna Pequeña
CAG – 1 CAG – 2 CAG – 3 CAG – 4
mg/
l
Mercurio y Cadmio Mercurio mg/l
Cadmio mg/L
E1: 0.0001 (Hg)
E1: 0.0088 (Cd)
79 79 49110
0
200
400
600
800
1000
1200
1400
1600
1800
2000
Laguna Grande (Orilla) Laguna Grande (Medio) Laguna Grande (Puente) Laguna Pequeña
CAG – 1 CAG – 2 CAG – 3 CAG – 4
NM
P/1
00
ml
Coliformes termotolerantes
B2: 1000
E1: 2000
Figura 4.15.- Resultados de Coliformes Termotolerantes, Mercurio y Cadmio (Noviembre 2019)
CONDOMINIO LAGUNAS DE PUERTO VIEJO Caracterización Ambiental
Diciembre 2019
25
4.1.1.6.2 Resultados de Sedimentos
Los resultados del muestreo realizado en el mes de noviembre del año 2019 se presentan en la
siguiente tabla.
Tabla 4.4.-Resultados de Muestreo de Sedimentos
Parámetros Unidades
Estaciones
SE-01 SE-02 SE-03 SE-04 Laguna Grande
(Orilla) Laguna Grande
(Medio) Laguna Grande
(Puente) Laguna Pequeña
Carbono Orgánico % <0.10 <0.10 <0.10 <0.10
Conductividad uS/cm 1 647.00 18.00 1 561.00 850.00
Fosforo Disponible mg/Kg MS 1 558.0 1 603.2 1 801.2 1499.0
Humedad % 55.28747 65.15152 39.63255 24.71720
Materia Orgánica % 0.22 0.22 <0.1724 <0.1724
Nitratos mg/Kg MS 59.5 72.7 49.5 26.9
Potasio Cambiable meq/100g 3.3 6.8 3.9 4.1
Potencial de Hidrogeno Unid. pH 8.30 8.27 8.31 7.99
Sulfatos mg/Kg MS 3.82 772.65 3.16 2.68
Textura
% Arena % 93.072 62.072 74.072 69.072
% Arcilla % 2.108 19.108 10.108 9.108
% Limo % 4.820 18.820 15.820 21.820
Granulometría
% Retención Tamiz #4 % 0.2862 0.1384 0.1384 0.1384
% Retención Tamiz #10 % 0.9292 4.3217 0.6461 2.9381
% Retención Tamiz #40 % 22.4096 12.104 5.9839 2.5228
% Retención Tamiz #100 % 69.5103 50.4614 71.1759 63.3009
% Retención Tamiz #200 % 1.8893 12.6423 16.6595 22.1822
% Retenido ciego % 1.9754 20.3322 5.3963 8.7175
Fuente: Informe de Ensayo N° IE-19-7398 – ALAB.
CONDOMINIO LAGUNAS DE PUERTO VIEJO Caracterización Ambiental
Diciembre 2019
26
4.2 BIOLÓGICA
4.2.1 FLORA
4.2.1.1 Generalidades
La importancia de estas lagunas no solo radica en su utilización como lugar de descanso por
parte de numerosas especies de aves migratorias, sino porque albergan una gran diversidad de
flora y fauna principalmente.
Algunas actividades antrópicas como la extracción del junco (Schoenoplectus americanus) e
inadecuado mantenimiento de las lagunas, han ocasionado que estos ambientes se vean
deteriorados.
4.2.1.2 Objetivos
El objetivo del presente trabajo es evaluar y analizar la estructura de las comunidades vegetales,
las mismas nos permitirá tener una idea del estado actual de la diversidad de estos ambientes y
de las actividades de gestión necesarios para su manejo y conservación a largo plazo. Es
importante entender que la conservación de este hábitat constituye un aspecto importante para
garantizar la supervivencia de la diversidad biológica que allí habita.
Objetivo General
Realizar la caracterización biológica de la flora de las lagunas del Condominio Lagunas de
Puerto Viejo.
Objetivos Específicos
Elaborar una lista de inventario de las especies de los grupos de flora, registradas en el área
de estudio.
Caracterizar el componente florístico (cobertura, riqueza y abundancia) e identificar el tipo
de comunidad vegetal del área estudiada.
Categorizar las especies de flora en algún estado de protección, según la legislación
nacional e internacional.
Determinar los estados de endemicidad (sensibilidad) de las especies de flora vinculadas al
área de estudio.
4.2.1.3 Unidades de Formaciones Vegetales (Comunidades)
En el área de estudio, fue posible identificar 4 tipos de formaciones vegetales: Juncal, Totoral,
Gramadal y Gramadal Mixto; las mismas que han sido afectados por la actividad antrópica en
mayor o menor medida.
CONDOMINIO LAGUNAS DE PUERTO VIEJO Caracterización Ambiental
Diciembre 2019
27
Juncal: Es una comunidad vegetal que tiene como especie dominante a Schoenoplectus
americanus y con especies de borde de laguna como Typha dominguensis y Schoenoplectus
californicus.
Totoral: Se encuentra igualmente en los bordes de las lagunas. Esta formación vegetal es de
tamaño reducido, y está formado por las dos especies de totora reportadas para la zona:
Schoenoplectus californicus y Typha dominguensis.
Gramadal: En dicha comunidad vegetal predomina la gramínea conocida como grama salada
(Distichlis spicata), que crece en suelos con alto contenido de sal y puede cubrir extensas
áreas cerca de orillas marinas.
Gramadal Mixto: Esta comunidad está formada predominantemente por Distichlis spicata
que ocupa más de 60% del área total, acompañados de parches de Schoenoplectus
americanus, esta comunidad ocupa la mayor extensión del área estudiada.
4.2.1.4 Ubicación de los Puntos de Evaluación
Para la caracterización biológica de la flora en el área de estudio (Condominio Laguna de Puerto
Viejo) se han seleccionado 4 puntos de evaluación para la flora, las cuales se presentan en la
siguiente tabla.
Tabla 4.5.-Coordenadas de ubicación de las estaciones de evaluación biológico (FLORA) y Formaciones
Vegetales
Sector Estación de Evaluación
Coordenadas UTM (WGS
84) Zona 18L Altitud
(msnm)
Formación
vegetal Este Norte
Laguna Grande LPV-01 314637 8609498 4 Juncal
Laguna Grande LPV-02 314792 8609327 3 Totoral
Laguna Pequeña LPV-03 315061 8609007 5 Gramadal Mixto
Laguna Pequeña LPV-04 314854 8608906 6 Gramadal
Fuente: EQAM, 2019.
CONDOMINIO LAGUNAS DE PUERTO VIEJO Caracterización Ambiental
Diciembre 2019
28
Figura 4.17.- Ubicación de los puntos de evaluación
Fuente: Google Earth.
4.2.1.5 Metodología de Evaluación
4.2.1.5.1 Etapa de Campo
Con la finalidad de analizar las distintas comunidades vegetales, se realizó una evaluación por
transectos. Se realizaron un total de 4 transectos, los cuales fueron ubicados sobre las diferentes
formaciones vegetales encontradas en la zona evaluada. Cada formación vegetal fue identificada
inicialmente basada en su fisonomía (Cano et al., 1998). En cada transecto se aplicó el método
“línea de intercepción”. Este método permite caracterizar la vegetación mediante la cobertura
y es adecuado para las comunidades vegetales donde no es fácil discriminar los individuos
(gramadales y matorrales). Cada transecto tuvo una longitud de 30 m.
La línea de intercepción se basa en el principio de la reducción de una transecta a una línea. Este
método se aplica para estudiar la vegetación densa dominada por arbustos y para caracterizar
la vegetación graminoide (Canfield, 1941; Cuello, et al., 1991). El método de líneas de
intercepción produce datos para cálculos de cobertura y frecuencia de especies; es rápido,
objetivo y relativamente preciso (Smith, 1980). La cobertura de cada especie es la proyección
horizontal de las partes aéreas de los individuos sobre el suelo y se expresa como porcentaje de
la superficie total. En las líneas de muestreo, se procedió a medir (cm) las proyecciones de las
plantas (ramas, tallos, hojas, flores) sobre la línea y se registra la información de acuerdo a una
planilla.
4.2.1.5.2 Etapa de Gabinete
Identificación de Especímenes botánicos: La identificación botánica es el procedimiento
mediante el cual el taxónomo reconoce un espécimen botánico y se le asigna un nombre
científico. La identificación in situ, es decir en el mismo campo, se realizó basado en la
CONDOMINIO LAGUNAS DE PUERTO VIEJO Caracterización Ambiental
Diciembre 2019
29
experiencia del especialista y el grado de abundancia y distribución que hacen que algunas
especies sean bastante conocidas.
La determinación taxonómica de los taxones (familias, géneros y especies) se realizó
mediante el uso de claves y descripciones disponibles en la literatura botánica, teniendo
como base las publicaciones de Flora of Perú (Macbride et al., 1936, 1971), así como el uso
de bibliografía especializada, como el catálogo de las plantas con flores y Gimnospermas del
Perú (Brako y Zarucchi, 1993). De forma complementaria para llevar a cabo la determinación
de las especies encontradas, se tomaron fotografías.
El listado total de las especies se detalla según el sistema de clasificación de Angiosperm
Phylogeny Group (APG IV, 2016).
Análisis de datos: Las comunidades de flora fueron caracterizadas a partir de la información
recopilada en campo, a continuación, se detallan los parámetros a ser evaluados:
Riqueza, corresponde al número de especies vegetales registradas en el área de estudio y
en relación con la ubicación de las lagunas (Grande, Pequeña), obtenidos a partir de los
registros cuantitativos y cualitativos.
Abundancia, se calculó en base al número de registros de las plantas en cada transecto, en
relación con las lagunas y la formación vegetal predominante.
Cobertura, según Matteucci & Colma A. (1982), la cobertura de una especie es la
proporción de terreno ocupado por la proyección perpendicular de las partes aéreas de los
individuos de la especie considerada. Se expresa como porcentaje de la superficie total.
Determinación de especies con categoría de conservación y endemismo, El registro de
especies de flora con alguna categoría de conservación tiene como referencia la lista de
especies amenazadas en el Perú (Decreto Supremo Nº 043-2006-AG), los apéndices del
tratado CITES (Convention on International Trade of Endangered Species, 2017) y la lista
roja de la IUCN (Unión Internacional para la Conservación de la Naturaleza, 2019-2).
‐ Lista Roja de la IUCN (The IUCN Red List of Threatened Species): La más difundida de las
clasificaciones para los estados de conservación es la elaborada por la Unión
Internacional para la Conservación de la Naturaleza (UICN), que compila la llamada Lista
Roja de la UICN de especies amenazadas. Este sistema divide a las especies en las
siguientes categorías:
· Preocupación menor / Least Concern (LC)
· Casi amenazado/ Near Threatened (NT)
· Vulnerable / Vulnerable (VU)
· En peligro / Endangered (EN)
· En peligro crítico / Critcally endangered (CR)
· Extinta en estado silvestre/ Extinct in the wild (EW)
· Extinta/ Extict (EX)
‐ CITES (Convention on International Trade In Endangeres Species of Wild Fauna and
Flora): La convención sobre el Comercio Internacional de especies amenazadas de Fauna
y Flora silvestres (CITES) tiene por objetivo garantizar que el comercio internacional de
CONDOMINIO LAGUNAS DE PUERTO VIEJO Caracterización Ambiental
Diciembre 2019
30
especímenes de animales y plantas silvestres no amenace su supervivencia, mediante el
acuerdo común de los países que lo integran. El CITES clasifica a determinadas especies
en tres “apéndices” (CITES, 2017):
· Apéndice I: Incluye todas las especies en peligro de extinción. Su comercio está restringido
solo a casos excepcionales.
· Apéndice II: Incluye especies que no están necesariamente bajo peligro de extinción,
aunque están amenazadas. Su comercio debe controlarse para mantener su supervivencia.
· Apéndice III: Incluye a especies protegidas en al menos un País., el que ha solicitado a otros
países suscriptores para controlar su comercio.
· Además, se identificarán a las plantas endémicas según el Libro Rojo de las Plantas
Endémicas del Perú (B. León, 2006).
‐ Especies introducidas, a partir de la evaluación de la vegetación se ha identificado las
plantas que no son propias del lugar.
4.2.1.6 Evaluación y Análisis
4.2.1.6.1 Relación de Especies de Flora Registradas en el Área de Estudio
Se registraron un total de 24 especies, agrupadas en 23 géneros y 16 familias. La clase
Magnoliópsida (Dicotiledóneas) mantuvo una riqueza de 15 especies (62.50%) distribuidas en
15 géneros y 12 familias; la clase Liliópsida (Monocotiledóneas) con 9 especies (37.50%)
distribuidas en 8 géneros y 4 familias. En las Figuras 3 y 4 su representación, respectivamente.
Tabla 4.6.-Lista de especies identificadas en los puntos evaluados para el estudio de flora, bajo el
Sistema de Clasificación de Angiosperm Phylogeny Group (APG IV) – Noviembre 2019.
Clase Familia Género Especie Nombre vulgar Hábito IN
Magnoliópsida Aizoaceae Sesuvium Sesuvium portulacastrum (L.) L. "Capín" H
Magnoliópsida Amaranthaceae Chenopodium Chenopodium murale L. "Quinua silvestre" H x
Magnoliópsida Amaranthaceae Alternanthera Alternanthera pubiflora (Benth.) Kuntze "Hierba blanca" H x
Liliópsida Arecaceae Phoenix Phoenix roebelenii O'Brien "Palmera enana" P x
Magnoliópsida Asteraceae Acmella Acmella oleracea (L.) R.K. Jansen "Hierba de los dientes" H x
Magnoliópsida Asteraceae Bidens Bidens pilosa L. "Cadillo",” amor seco” H x
Magnoliópsida Asteraceae Spilanthes Spilanthes leiocarpa DC. ”Turre macho” H x
Magnoliópsida Boraginaceae Heliotropium Heliotropium curassavicum L. "Hierba del alacrán" H
Liliópsida Cyperaceae Schoenoplectus Schoenoplectus americanus (Pers.)
Volkart ex Schinz & R. Keller "Junco" H
Liliópsida Cyperaceae Schoenoplectus Schoenoplectus californicus (C.A. Mey.) Soják "Junco" H
Liliópsida Cyperaceae Bolboschoenus Bolboschoenus maritimus (L.) Palla "Totorita" H
Magnoliópsida Euphorbiaceae Ricinus Ricinus communis L. "Higuerilla" AR x
Magnoliópsida Fabaceae Prosopis Prosopis pallida (Humb. & Bonpl. ex Willd.) Kunth "Algarrobo" A x
Magnoliópsida Myrtaceae Eucalyptus Eucalyptus globulus Labill. "Eucalipto" A x
Magnoliópsida Plantaginaceae Plantago Plantago major L. “Llantén” H x
Liliópsida Poaceae Cynodon Cynodon dactylon (L.) Pers. "Grama dulce" H x
Liliópsida Poaceae Distichlis Distichlis spicata (L)Greene "Grama salada" H
Liliópsida Poaceae Paspalidium Paspalidium geminatum (Forssk.) Stapf "Grama" H
CONDOMINIO LAGUNAS DE PUERTO VIEJO Caracterización Ambiental
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Dónde: "H" es hierba, "A" es árbol, "AR" es arbusto y “P” es palmera (Whittaker 1975); IN: especie introducida
Fuente: EQAM, 2019.
Tabla 4.7.-Referencia de Ubicación de las Especies Encontradas
Dónde: "X" es presencia de especie y "-" es ausencia de especie. Fuente: EQM, 2019.
Liliópsida Poaceae Sporobolus Sporobolus virginicus (L) Kunt. "Grama" H
Magnoliópsida Salicaceae Salix Salix chilensis Molina "Sauce" AR x
Magnoliópsida Solanaceae Solanum Solanum pimpinellifolium L. - H x
Magnoliópsida Tropaeolaceae Tropaeolum Tropaeolum majus L. "Mastuerzo" H x
Liliópsida Typhaceae Typha Typha dominguensis Persson "Totora" H
Magnoliópsida Verbenaceae Lippia Lippia nodiflora (L.) Michx - H
Especie/Punto evaluado Nombre vulgar Estaciones
LPV-01 LPV-02 LPV-03 LPV-04
Acmella oleracea (L.) R.K. Jansen "Hierba de los dientes" - - - X
Alternanthera pubiflora (Benth.) Kuntze "Hierba blanca" X X - -
Bidens pilosa L. "Cadillo",” amor seco” - - - X
Bolboschoenus maritimus (L.) Palla "Totorita" X X X X
Chenopodium murale L. "Quinua silvestre" - - X -
Cynodon dactylon (L.) Pers. "Grama dulce" - - X X
Distichlis spicata (L)Greene "Grama salada" X X X X
Eucalyptus globulus Labill. "Eucalipto" - - X -
Heliotropium curassavicum L. "Hierba del alacrán" - - X -
Lippia nodiflora (L.) Michx - X X - -
Paspalidium geminatum (Forssk.) Stapf "Grama" X - - -
Phoenix roebelenii O'Brien "Palmera enana" - - X -
Plantago major L. “Llantén” - - X -
Prosopis pallida (Humb. & Bonpl. ex Willd.) Kunth
"Algarrobo" - - - X
Ricinus communis L. "Higuerilla" - - - X
Salix chilensis Molina "Sauce" - - - X
Schoenoplectus americanus (Pers.) Volkart ex Schinz & R. Keller
"Junco" X X X -
Schoenoplectus californicus (C.A. Mey.) Soják
"Junco" X X - -
Sesuvium portulacastrum (L.) L. "Capín” X X - -
Solanum pimpinellifolium L. - - - X -
Spilanthes leiocarpa DC. ”Turre macho” - - - X
Sporobolus virginicus (L) Kunt. "Grama" X X - -
Tropaeolum majus L. "Mastuerzo" - - X
Typha dominguensis Persson "Totora" - X X -
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32
0
2
4
6
8
10
12
14
16
LILIÓPSIDA MAGNOLIÓPSIDA
4
12
8
15
9
15
Familias Géneros Especies
LILIÓPSIDA; 37.50%
MAGNOLIÓPSIDA; 62.50%
Figura 4.18.- Distribución de las clases de flora por familias, géneros y especies
Figura 4.19.- Porcentaje del número de especies presentes por clase
Fuente: EQM, 2019
Fuente: EQM, 2019
Dentro de las familias con mayor riqueza de especies, se encuentran la familia Poaceae con 4
especies distribuidas en 4 géneros, la familia Asteraceae con 3 especies distribuidas en 3 géneros
y Cyperaceae con 3 especies distribuidas en 2 géneros. A su vez se encontraron varias familias
representadas por un solo género y una sola especie; tal es el caso de las familias Aizoaceae,
CONDOMINIO LAGUNAS DE PUERTO VIEJO Caracterización Ambiental
Diciembre 2019
33
Arecaceae, Boraginaceae, Euphorbiaceae, Fabaceae, Myrtaceae, Plantaginaceae, Salicaceae,
Solanaceae, Tropaeolaceae, Verbenaceae y Typhaceae.
Tabla 4.8.-Distribución de géneros y especies para las familias de flora reportadas
Familia Genero Especie
Arecaceae 1 1
Aizoaceae 1 1
Amaranthaceae 2 2
Asteraceae 3 3
Boraginaceae 1 1
Cyperaceae 2 3
Euphorbiaceae 1 1
Fabaceae 1 1
Myrtaceae 1 1
Plantaginaceae 1 1
Poaceae 4 4
Salicaceae 1 1
Solanaceae 1 1
Tropaeolaceae 1 1
Typhaceae 1 1
Verbenaceae 1 1
Fuente: EQAM, 2019.
La flora vascular de la zona evaluada reportó un 38.00% de individuos para la familia Cyperaceae
(Figura 4.20) y un 26.81% de individuos para la familia Poaceae como valores más altos.
Mientras que las familias: Arecaceae, Euphorbiaceae, Fabaceae y Salicaceae, presentaron un
porcentaje menor al 1.00% de individuos cada una, siendo estos, los valores más bajos.
Fuente: EQAM, 2019.
AIZOACEAE; 5.13%AMARANTHACEAE; 2.33%
ARECACEAE; 0.70%
ASTERACEAE; 4.43%
BORAGINACEAE; 1.17%
CYPERACEAE; 38.00%
EUPHORBIACEAE; 0.47%
FABACEAE; 0.23%
PLANTAGINACEAE; 1.40%
MYRTACEAE; 1.40%
POACEAE; 26.81%
SALICACEAE; 0.23%
SOLANACEAE; 1.17%
TROPAEOLACEAE; 1.17%TYPHACEAE; 11.42%
VERBENACEAE; 3.96%
Figura 4.20.- Repartición del total de individuos por familias reportadas en el estudio de flora
CONDOMINIO LAGUNAS DE PUERTO VIEJO Caracterización Ambiental
Diciembre 2019
34
En relación con las formas de crecimiento, se aprecia claramente que las especies herbáceas
dominan el total del área evaluada representando el 79.17% del total de especies encontradas.
Complementando con las especies arbóreas con un 8.33%; las arbustivas con 8.33% y el hábito
palmera con una representación del 4.17% del total de especies encontradas.
Fuente: EQAM, 2019.
Fuente: EQAM, 2019.
Se encontró una cobertura vegetal de 91.0% en toda la zona evaluada. El 9.0% restante
representa al acumulado de pequeños parches que no presentaron vegetación. Cabe mencionar
que las presiones antropogénicas, así como la vulnerabilidad debida al cambio climático
(Markham et al. 1993; Bensiton 1994) también influyen en la ausencia de la cobertura vegetal.
ARBUSTO; 8.33%ARBOL; 8.33%
HIERBA; 79.17%
PALMERA; 4.17%
COBERTURA VEGETAL; 91.0%
SIN COBERTURA VEGETAL; 9.0%
Figura 4.21.- Porcentaje de las especies por forma de crecimiento
Figura 4.22.- Cobertura vegetal en todos los puntos evaluados
CONDOMINIO LAGUNAS DE PUERTO VIEJO Caracterización Ambiental
Diciembre 2019
35
Fuente: EQAM, 2019.
En general, la mayoría de los puntos de evaluación presentaron un alto porcentaje de cobertura
vegetal, con valores mayores al 85.0%. Se observó que el punto de evaluación con mayor
cobertura vegetal fue LPV-03 (Laguna Pequeña) con 93.3%; esto se debe principalmente al tipo
de comunidad vegetal que alberga la zona.
4.2.2 AVIFAUNA
4.2.2.1 Generalidades
Los humedales se encuentran entre los ecosistemas más productivos del mundo (Kusler et al.,
1994; Pulido, 1998 en Torres et al., 2006) proporcionando servicios ecosistémicos que producen
innumerables beneficios (EM, 2005; Russie et al., 2003 en Ramsar, 2018) como ser fuente y
purificador de agua, nos protegen de las inundaciones, sequías y otros desastres naturales,
sostienen una rica biodiversidad y almacenan más carbono que ningún otro ecosistema.
Incluyen hábitats de agua dulce, inundados de forma permanente o estacional, desde lagos y
ríos hasta pantanos, así como áreas costeras y marinas tales como estuarios lagunas costeras
manglares y arrecifes (Ramsar, 2018).
Sin embargo, estos beneficios suelen ser subestimados y no reconocidos por quienes formulan
las políticas y adoptan las decisiones sobre su conservación. A la fecha se han perdido el 35% de
los humedales desde 1970 con una tasa tres veces mayor a la de la pérdida de bosques y si bien
los humedales artificiales y embalses se duplicaron durante este periodo constituyendo el 12%
de los humedales, esto no compensa la pérdida de los humedales naturales. (Ramsar, 2018).
En nuestras costas, los humedales, adquieren una gran importancia porque son verdaderos oasis
para el paso de las aves migratorias, resultando ser un lugar de invernada, o como estación de
descanso en su ruta al sur durante el otoño ártico, o hacia el norte al principio de la primavera
ártica (Pulido, 2003 en Torres et al., 2006; Senner y Angulo-Pratolongo, 2014). Esta avifauna se
alterna con la que realiza una migración altitudinal desde los Andes hasta la Costa escapando
también del invierno y en búsqueda de alimento (Tello & Castillo Eds., 2010) además de ser
sinónimo de supervivencia para las especies residentes (Pulido, 2003 en Torres et al., 2006) Es
por eso que el uso de las aves como bioindicadoras de cambios ambientales se fundamenta en
86.7%
91.5%93.3% 92.6%
13.3%
8.5%6.7% 7.4%
80%
82%
84%
86%
88%
90%
92%
94%
96%
98%
100%
LPV-01 LPV-02 LPV-03 LPV-04
COBERTURA VEGETAL SIN COBERTURA VEGETAL
Figura 4.23.- Porcentaje (%) de Cobertura vegetal en cada punto evaluado
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que debido a su posición en la escala trófica se verán afectados por una gran variedad de
factores, como lo es en el caso de las aves acuáticas que se verían afectadas por la pérdida de
hábitat debido a la desecación y degradación de humedales, así como a las diferentes
condiciones físicas que afecten directamente su abundancia y diversidad (Green & Figuerola,
2003).
Además, al ser uno de los grupos de animales mejor conocidos, poseen una serie de
características que las hacen ideales para inventariar comunidades, caracterizar ecosistemas y
los hábitats donde residen. Estas características son: comportamiento llamativo, facilidad de
detección y el ser sensibles a perturbaciones en su hábitat por lo cual los muestreos de las
comunidades de aves son útiles para diseñar e implementar políticas de conservación y manejo
de ecosistemas y hábitats. Su estudio además proporciona un medio rápido, confiable y
replicable de evaluación del estado de conservación de la mayoría de hábitats terrestres y
acuáticos (Villareal et al., 2006).
4.2.2.2 Estaciones de Evaluación
Se realizó un total de ocho puntos de conteo, seis en la Laguna Grande y dos en la Laguna
Pequeña. Estos puntos de conteo se muestran en la siguiente tabla.
Tabla 4.9.-Ubicación de puntos de evaluación - conteo
Sector Punto de conteo
Coordenadas UTM (WGS 84) Zona 18L Altitud (msnm) Este Norte
Laguna Grande Av01 314548 8609566 19
Laguna Grande Av02 314545 8609439 20
Laguna Grande Av03 314661 8609330 20
Laguna Grande Av04 314841 8609132 21
Laguna Grande Av05 314853 8609028 19
Laguna Pequeña Av06 314994 8608981 19
Laguna Pequeña Av07 314939 8609085 20
Laguna Grande Av08 314700 8604429 15
Fuente: EQAM, 2019.
4.2.2.3 Metodología de Evaluación
4.2.2.3.1 Etapa de Campo
La metodología empleada en campo fue el método de puntos de conteo con radio limitado de
50 metros. Con este método el observador cuenta todas las aves que ve y escucha alrededor de
una estación y estima la distancia horizontal desde la estación hasta cada individuo (Reynolds et
al, 1980).
Los puntos de conteo fueron distribuidos en la orilla de las lagunas y evaluados por un tiempo
de 10 minutos (tiempo considerado adecuado por Bibby et al, 1992); al arribar a cada punto se
tomó un tiempo de 1 a 3 minutos para permitir que las aves se calmen en caso el observador
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haya causado algún disturbio. Los puntos de conteo fueron evaluados cada 150 metros. En la
Tabla 4.9 se muestran las coordenadas de los puntos evaluados.
El registro de las especies fue visual y auditivo, además en el desplazamiento entre puntos de
conteo se verificó la existencia de nidos y otras evidencias como huellas y plumas. Se realizó
observaciones oportunistas al momento de los desplazamientos entre puntos. Se realizó un
registro fotográfico de todo el trabajo de campo. El esfuerzo de muestreo fue de ocho puntos
de conteo (seis en la Laguna Grande y dos en la Laguna Pequeña).
La identificación taxonómica de las especies de aves silvestres se realizó in situ y las listas de
especies ordenadas de acuerdo con la Lista de aves de Perú (Plenge, 2019), en su última versión,
la cual sigue la clasificación vigente de la South American Checklist Committee (SACC).
4.2.2.3.2 Etapa de Gabinete - Análisis e Interpretación de Resultados
Se procesó la información con el programa Primer versión 5.0 analizándose los siguientes
parámetros.
Índice de Shannon-Wiener: Este índice se usa en ecología u otras ciencias similares para
medir la biodiversidad. Se representa normalmente como H’ y se expresa con un número
positivo, que en la mayoría de los ecosistemas naturales varía entre 0 y no tiene límite
superior o en todo caso lo da la base del logaritmo que se utilice, en este caso la base es 2.
La fórmula del índice de Shannon es la siguiente:
Donde: S = número de especies (la riqueza de especies) Pi = proporción de individuos de la especie i respecto al total de individuos (es decir la abundancia relativa de la especie i): ni\N. ni = número de individuos de la especie i. N = número de todos los individuos de todas las especies. De esta forma, el índice contempla la cantidad de especies presentes en el área de estudio (riqueza de especies), y la cantidad relativa de individuos de cada una de esas especies (abundancia)
Índice de diversidad de Simpson: Es conocido también como el índice de la diversidad de las
especies o índice de dominancia. Es uno de los parámetros que nos permiten medir la riqueza
de organismos. En ecología, es también usado para cuantificar la biodiversidad de un hábitat.
Toma un determinado número de especies presentes en el hábitat y su abundancia relativa.
El índice de Simpson representa la probabilidad de que dos individuos, dentro de un hábitat,
seleccionados al azar pertenezcan a la misma especie. La fórmula para el índice de Simpson
es:
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Donde: S = es el número de especies N = es el total de organismos presentes (o unidades cuadradas) n = es el número de ejemplares por especie
Curva de acumulación de especies – área (esfuerzo de muestreo): Estas curvas de
acumulación de especies tienen como finalidad establecer la representatividad del muestreo
y la riqueza de especies por localidad o sitio de muestreo evaluado. Esta curva representa de
forma gráfica como es que las especies van apareciendo en los puntos de conteo o con el
incremento en el número de individuos. El eje Y corresponde al número de especies
acumuladas y el X el número de puntos de conteo. Cuando esta curva alcanza la asíntota
significa que, aunque se aumente el número de puntos de conteo, el número de especies no
tendrá mayores variaciones lo que significa que se tiene un buen muestreo (Villarreal at al.,
2006).
La curva de acumulación se elaboró considerando lo propuesto por Jiménez-Valverde &
Hortal (2003), usando de forma aleatoria los datos de riqueza observados en el programa
Primer y luego estimando la riqueza de especies total según el modelo de Clench en el
programa Statistica.
De acuerdo con el modelo de Clench, el número estimado de especies registradas es de 35,
según estos resultados se registró el 65% del total de especies registradas (23 especies). En
la Figura 9 se observa como la curva es directamente proporcional al esfuerzo de evaluación
y continua en crecimiento lo que significa que cabe la posibilidad de seguir registrando más
especies, ver Figura 4.24.
Al momento de la evaluación en el área se encontraban trabajadores realizando labores de
mantenimiento previas al inicio de la temporada de verano 2020, es posible que la presencia
de muchas personas y el ruido aleja a muchas de las especies o provoque que se mantengan
ocultas entre la vegetación.
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Fuente: EQAM, 2019.
4.2.2.4 Resultados de la Evaluación Descripción del Área de Estudio
COMPOSICIÓN: En la evaluación de noviembre de 2019 se registró un total de 24 especies
de aves incluidas en dieciséis (16) familias y nueve (9) órdenes. De estas 24 especies
registradas, el Pato azulón Anas platyrhynchos (familia Anatidae) es introducida y no será
considerada para los cálculos cuantitativos de riqueza, abundancia y diversidad de especies.,
tal como se observa en la siguiente tabla.
Figura 4. 24.- Curva de Acumulación de especies
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Tabla 4.10.-Riqueza, Abundancia y Diversidad de aves en la Laguna de Puerto Viejo
Orden Familia Nombre científico Nombre común Puntos de Evaluación
Total Av-01 Av-02 Av-03 Av-04 Av-05 Av-06 Av-07 Av-08
Anseriformes Anatidae Anas bahamensis Pato gargantillo 7 0 0 55 1 0 0 0 63
Podicipediformes Podicipedidae Podiceps major Zambullidor grande 0 0 0 0 0 2 0 0 2
Columbiformes Columbidae Columba livia Paloma doméstica 0 0 0 0 0 0 1 0 1
Columbiformes Columbidae Zenaida meloda Tórtola melódica 0 1 0 0 0 0 0 0 1
Apodiformes Trochilidae Amazilia amazilia Colibrí de vientre rufo 0 0 0 0 1 0 0 0 1
Gruiformes Rallidae Gallinula galatea Polla de agua común 2 0 1 0 3 2 3 0 11
Gruiformes Rallidae Fulica ardesiaca Gallareta andina 2 0 1 0 0 0 5 0 8
Charadriiformes Charadriidae Charadrius vociferus Chorlo gritón 0 0 1 0 0 0 2 0 3
Charadriiformes Scolopacidae Actitis macularius Playero coleador 1 0 4 0 1 1 0 0 7
Charadriiformes Laridae Chroicocephalus cirrocephalus Gaviota de capucha gris 30 21 10 0 0 0 0 0 61
Charadriiformes Laridae Leucophaeus pipixcan Gaviota de Franklin 0 30 0 0 0 0 0 500 530
Suliformes Phalacrocoracidae Phalacrocorax brasilianus Cormorán neotropical 0 0 0 0 0 6 1 0 7
Pelecaniformes Ardeidae Ixobrychus exilis Mirasola leonado 0 0 0 0 0 1 0 0 1
Pelecaniformes Ardeidae Nycticorax nycticorax Huaco común 0 0 0 0 0 3 0 0 3
Pelecaniformes Ardeidae Ardea alba Garza grande 1 0 0 0 3 0 0 0 4
Pelecaniformes Ardeidae Egretta thula Garcita blanca 0 0 2 0 10 0 0 0 12
Pelecaniformes Ardeidae Egretta caerulea Garcita azul 0 0 2 0 0 2 0 0 4
Passeriformes Furnariidae Phleocryptes melanops Junquero 0 0 1 0 0 1 0 0 2
Passeriformes Tyrannidae Pyrocephalus rubinus Mosquero bermellón 0 2 0 2 3 4 0 0 11
Passeriformes Hirundinidae Pygochelydon cyanoleuca Golondrina azul y blanca 1 0 0 0 2 2 0 0 5
Passeriformes Troglodytidae Troglodytes aedon Cucarachero común 0 1 1 0 0 3 0 0 5
Passeriformes Icteridae Molothrus bonariensis Tordo brilloso 0 1 0 0 0 0 0 0 1
Passeriformes Passeridae Passer domesticus Gorrión casero 10 0 4 0 3 3 1 0 21
Número de Especies (S) 8 6 10 2 9 12 6 1 23
Número de Individuos (N) 54 56 27 57 27 30 13 500 764
Diversidad de Shannon-Wiener (H'log2) 1.98 1.50 2.78 0.22 2.75 3.38 2.29 0.00 1.90
Diversidad de Simpson (1-D) 0.64 0.57 0.80 0.07 0.80 0.89 0.76 0.00 0.50
Clasificación taxonómica y nombre comunes: Plenge, 2019. Fuente: EQAM, 2019.
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En la Tabla 4.11 se muestra la lista de especies registradas y en la Figura 4.25 se muestra la
composición por orden taxonómico de las especies registradas, en las cuales se puede
observar que el orden más representativo registrado es el de los Passeriformes que agrupa a
los totoreros, mosqueros, golondrinas, cucaracheros, tordos y gorriones con seis especies,
los cuales representan el 26% de las especies registradas. Le sigue con 22% el orden de los
Pelecaniformes, el cual agrupa a las garzas, con cinco especies. Las familias restantes
registran entre una y cuatro especies por orden.
Los porcentajes de abundancia del orden Passeriformes se deben a que son el grupo más
grande y diverso de aves. Este orden es conocido como el de las aves que perchan o
passerinos y contiene además a las aves conocidas como aves cantoras. Así, de las más de
10 000 especies de aves existentes en el mundo la mitad está incluida en este orden. Su
distribución es mundial, con representantes en casi todos los continentes excepto en la
Antártida y algunas islas oceánicas, llegando a ocupar los más diversos hábitats de los
trópicos (Edwards, 1996; Higgins et al. 2001).
Este orden es extremadamente diverso en cuanto a la forma del cuerpo y plumaje, como se
puede constatar en la diversidad de especies registradas en el área de evaluación; presentan
variaciones amplias en los grados de maduración de los individuos, también en lo referido al
dimorfismo sexual, algunos son monomórficos, otros muestran diferencias en el tamaño, el
plumaje o en ambos. Hay pocas características comunes en lo que se refiere a las técnicas de
alimentación, el comportamiento alimenticio, su organización social y comportamiento, los
tipos de cantos y reproducción debido justamente a la diversidad de especies que la
conforman (Higgins et al. 2001).
A excepción del junquero o totorero Phleocryptes melanops, que fue registrado por
vocalizaciones en los sectores de la laguna con presencia de totora; las especies restantes
fueron registradas en los jardines y plantas ubicadas en las casas que rodean la laguna.
Tabla 4.11.-Lista de Especies registradas
N° Orden Familia Nombre científico Nombre común
1 Anseriformes Anatidae Anas platyrhynchos Pato azulón
2 Anseriformes Anatidae Anas bahamensis Pato gargantillo
3 Podicipediformes Podicipedidae Podiceps major Zambullidor grande
4 Columbiformes Columbidae Columba livia Paloma doméstica
5 Columbiformes Columbidae Zenaida meloda Tórtola melódica
6 Apodiformes Trochilidae Amazilia amazilia Colibrí de vientre rufo
7 Gruiformes Rallidae Gallinula galatea Polla de agua común
8 Gruiformes Rallidae Fulica ardesiaca Gallareta andina
9 Charadriiformes Charadriidae Charadrius vociferus Chorlo gritón
10 Charadriiformes Scolopacidae Actitis macularius Playero coleador
11 Charadriiformes Laridae Chroicocephalus cirrocephalus Gaviota de capucha gris
12 Charadriiformes Laridae Leucophaeus pipixcan Gaviota de Franklin
13 Suliformes Phalacrocoracidae Phalacrocorax brasilianus Cormorán neotropical
14 Pelecaniformes Ardeidae Ixobrychus exilis Mirasola leonado
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N° Orden Familia Nombre científico Nombre común
15 Pelecaniformes Ardeidae Nycticorax nycticorax Huaco común
16 Pelecaniformes Ardeidae Ardea alba Garza grande
17 Pelecaniformes Ardeidae Egretta thula Garcita blanca
18 Pelecaniformes Ardeidae Egretta caerulea Garcita azul
19 Passeriformes Furnariidae Phleocryptes melanops Junquero
20 Passeriformes Tyrannidae Pyrocephalus rubinus Mosquero bermellón
21 Passeriformes Hirundinidae Pygochelydon cyanoleuca Golondrina azul y blanca
22 Passeriformes Troglodytidae Troglodytes aedon Cucarachero común
23 Passeriformes Icteridae Molothrus bonariensis Tordo brilloso
24 Passeriformes Passeridae Passer domesticus Gorrión casero
Fuente: EQAM, 2019.
Figura 4.25.- Composición por orden taxonómico en el área de estudio
Fuente: EQAM, 2019.
En cuanto al número de familias se registró un total de 16 siendo la más representativa la
familia Ardeidae con cinco especies lo que representa el 22% del total de especies
registradas. Las quince familias restantes registran entre una y dos especies por familia, tal
como se visualiza en la Figura 4.26 (composición de especies registradas por familia).
Las especies de la familia Ardeidae (a la que pertenecen las garzas) son aves acuáticas
medianas a grandes, pico largo poco diferenciado de la cabeza, colas cortas y redondeadas y
alas largas y anchas. La coloración de su plumaje varía desde el blanco, negro, tonos de gris
o marrón. Algunas son muy llamativas por su tamaño y su silueta. Vuelan con el cuello
encogido. Habitan generalmente en humedales y pantanos. Anidan en humedales, cerca de
donde se alimentan.
26%
22%
18%
9%
9%
4%4%
4% 4%
Passeriformes Pelecaniformes Charadriiformes
Columbiformes Gruiformes Anseriformes
Podicipediformes Apodiformes Suliformes
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Son estrictamente carnívoros y tienen múltiples adaptaciones que les facilitan la tarea de
capturar peces y otros animales acuáticos como crustáceos y anfibios (Aves de Lima2).
Las garzas fueron registradas en la orilla de la laguna, así como en los pequeños islotes que
existen en la Laguna Grande. Dos especies fueron registradas en la Laguna Pequeña entre las
copas de los árboles y la totora.
Figura 4.26.- Composición por familia en el área de estudio
Fuente: EQAM, 2019.
ABUNDANCIA: Se registró un total de 786 individuos entre las 24 especies. De este número,
22 individuos corresponden al Pato azulón Anas platyrhynchos. Esta especie está
ampliamente distribuida en el hemisferio norte, es migratoria pero solo hasta México,
mientras que en el hemisferio sur son especies introducidas. Tiene una gran capacidad de
adaptación lo cual se evidencia en la presencia de polluelos.
La especie más abundante es la gaviota de Franklin Leucophaeus pipixcan con 530 individuos,
seguido del pato gargantillo Anas bahamensis con 63 individuos y la gaviota de capucha gris
Chroicocephalus cirrocephalus con 61 individuos. En la Figura 4.27 se muestra la abundancia
en el área de evaluación.
2 http://jp1008.tripod.com/garza_grande.htm
22%
9%
9%
9%4%4%4%4%
4%
4%
4%
4%
4%4%
4% 4%
Ardeidae Columbidae Rallidae LaridaeAnatidae Podicipedidae Trochilidae CharadriidaeScolopacidae Phalacrocoracidae Furnariidae TyrannidaeHirundinidae Troglodytidae Icteridae Passeridae
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Figura 4.27.- Abundancia en el área de evaluación
Fuente: EQAM, 2019.
La gaviota de Franklin Leucophaeus pipixcan, es un emigrante del hemisferio norte
abundante en pantanos costeros, cuerpos de agua cerca de la costa y tierras de cultivo
irrigadas a lo largo de la costa en los meses de verano (Tello y Castillo, 2010); es un visitante
raro en los lagos del altiplano y la Amazonía (Schulenberg et al., 2007). Vive en grandes
colonias en lagos y humedales desde el sur de Canadá hasta Dakota del Sur y Minnesota.
Migran en bandadas de miles de individuos y comienzan a llegar a Perú desde agosto llegando
a ocupar toda la costa de Perú y Chile. Se alimentan de insectos, animales marinos y
lombrices (Aves de Lima3). En el área de evaluación fue registrada ocupando la parte media
de la laguna grande mientras se acicalaban.
El pato gargantillo Anas bahamensis, es una especie que tiene preferencia por humedales
salobres y como la mayoría de patos son omnívoros. Se alimenta de plantas, crustáceos y
peces que captura sumergiendo la cabeza dentro del agua desde la superficie (Aves de Lima4).
En Perú es bastante común y de amplia distribución en la Costa, en lagunas, pantanos y
bahías. En los Andes se halla presente muy localmente. En el área de evaluación fue
registrada en la orilla de las lagunas o nadando y alimentándose en la Laguna Grande. Un
número grande de individuos fue registrado donde se encuentra el puente que une los dos
sectores del condominio.
3 http://jp1008.tripod.com/gaviota_defranklin.htm 4 http://jp1008.tripod.com/pato_gargantillo.htm
1
1
1
1
1
2
2
3
3
4
4
5
5
7
7
8
11
11
12
21
61
63
530
0 100 200 300 400 500 600
Columba livia
Zenaida meloda
Amazilia amazilia
Ixobrychus exilis
Molothrus bonariensis
Podiceps major
Phleocryptes melanops
Charadrius vociferus
Nycticorax nycticorax
Ardea alba
Egretta caerulea
Pygochelydon cyanoleuca
Troglodytes aedon
Actitis macularius
Phalacrocorax brasilianus
Fulica ardesiaca
Gallinula galatea
Pyrocephalus rubinus
Egretta thula
Passer domesticus
Chroicocephalus cirrocephalus
Anas bahamensis
Leucophaeus pipixcan
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La gaviota de capucha gris Chroicocepahalus cirrocephalus es una especie bastante común a
lo largo de la costa en pantanos y aguas cercanas a la costa. Es la gaviota más común de la
costa (Schulenberg et al., 2007), de costumbres sociables y forma grandes bandadas en la
orilla de las playas o nadando en el mar. Se alimenta de peces y pequeños invertebrados
(Tabini y Paz Soldán, 2007). Se caracteriza por ser territorial y emitir gritos estridentes y
fuertes. Anida entre los islotes de vegetación acuática de los humedales (Tello y Castillo,
2010). En el área de evaluación fue registrada en las orillas de la Laguna Grande, así como
también alimentándose y acicalándose en medio de la laguna.
Se registró también dos individuos del zambullidor grande Podiceps major, uno de ellos era
un polluelo, por lo que se podría pensar que se reproducen en la laguna, entre los totorales.
Como todos los zambullidores son aves acuáticas muy especializadas que pasan la mayor
parte de su vida en lagos y humedales de agua dulce y cuando no se está reproduciendo
puede observársele en las costas marinas (Aves de Lima, 20195).
Otras especies registradas que forman parte del ecosistema de un humedal son el junquero
o totorero Phleocryptes melanops, el cual fue registrado por vocalizaciones entre los
totorales y el mirasol aleonado Ixobrychus exilis, que es la más pequeña de todas las garzas
que habitan los humedales costeros, de costumbres solitarias y muy difícil de observar (Tello
y Castillo, 2010) la cual fue registrada en la Laguna Pequeña entre la vegetación.
DIVERSIDAD: Para estimar los valores de diversidad se emplearon solo los datos cuantitativos
de los ocho puntos de conteo evaluados.
Mediante el índice de Shannon – Wiener se obtuvo un valor de diversidad de 1.90 lo que
refleja una diversidad baja. Mientras que para el índice de Simpson se obtuvo un valor de
0.53.
La diversidad de las lagunas del condominio es baja en comparación al número de especies
registradas para los humedales de Puerto Viejo. Según el portal eBird6 el número de especies
registradas es de 157 con datos que van desde el año 1989 hasta el presente. Sin embargo,
debe considerarse que los humedales de Puerto Viejo abarcan una mayor cantidad de
formaciones vegetales.
Tabla 4.12.-Riqueza, abundancia y diversidad
Puntos de evaluación
Número de especies
Abundancia de especies
Diversidad de Shannon-Wiener
(H'log2)
Diversidad de Simpson (1-D)
8 23 764 1.90 0.50
Fuente: EQAM, 2019.
5 http://jp1008.tripod.com/zambullidor_pimpollo.htm 6 https://ebird.org/hotspot/L846858?yr=all&m=&rank=hc
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ESPECIES INCLUIDAS EN CATEGORÍAS DE CONSERVACIÓN
Legislación nacional
No se registró especies protegidas por la Categorización de especies amenazadas de fauna
silvestre (DS N°004-2014-MINAGRI).
Lista Roja IUCN
Veintidós especies registradas se encuentran listadas dentro de la categoría de preocupación
menor (LC). Esta no es considerada una categoría de amenaza, puesto que las poblaciones
de estas especies tienen una amplia distribución y hasta el momento sus poblaciones son
consideradas abundantes.
Apéndices CITES
El colibrí de vientre rufo Amazilia amazilia fue la única especie registrada que es considerada
especie protegida por el Apéndice II de la Convención. Esta categoría no indica amenaza de
extinción si no que podría llegar a serlo si no se controla estrictamente su comercio. Fue
observado cerca a las inmediaciones del punto de conteo Av-05 por vocalizaciones y por
registro directo alimentándose en los jardines de las casas.
Áreas de endemismo de aves (Endemic Birds Areas - EBA)
El área de estudio se encuentra ubicada dentro de la EBA 052 denominada Vertiente Pacífica
de Perú y Chile la cual abarca toda la vertiente del Pacífico desde el norte de la región Lima
hasta el departamento de Tarapacá en Chile. Incluye todas las zonas áridas de la vertiente
del Pacífico, tanto tropicales como templadas, y algunos valles interandinos que van desde
el nivel del mar hasta los 4000 m (BirdLife, 20197).
No se registró especies indicadoras de esta EBA.
Especies migratorias
La migración es uno de los tipos de movimientos que realizan las aves en la cual los individuos
hacen movimientos de retorno regulares casi siempre en la misma época del año y a los
mismos destinos. Este proceso está asociado a cambios estacionales en la disponibilidad de
alimentos, a la alternancia de estaciones frías y calientes en las latitudes altas o a las
estaciones húmedas y secas en los trópicos (Newton, 2008). Es por eso por lo que las aves
migran, para encontrar mejores condiciones ecológicas y hábitats para alimentarse,
reproducirse y criar a sus polluelos8. En Perú, la llegada de las aves desde el hemisferio norte
empieza desde el mes de setiembre y dura hasta aproximadamente fines del mes de abril en
la mayoría de las especies.
Las aves migratorias dependen de muchos sitios ubicados a lo largo de sus áreas de distribución, es por eso que la pérdida de sus hábitats podría tener un gran impacto en sus posibilidades de sobrevivir. Además, el hecho de cruzar diferentes países las expone a políticas ambientales y de conservación diferente, por eso es que existen instrumentos marcos de coordinación como la Convención sobre la Conservación de las Especies Migratorias de Animales Silvestres (CMS)9 de la cual Perú es signatario.
7 http://www.birdlife.org 8 http://www.worldmigratorybirdday.org/migratory 9 http://www.worldmigratorybirdday.org/migratory
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En el área de evaluación se registró dos especies migratorias que vienen desde el hemisferio
norte, la gaviota de Franklin Leucophaeus pipixcan y el playero coleador Actitis macularius.
Este último se encuentra considerado en el Apéndice II de la Convención sobre la
conservación de las especies migratorias de animales silvestres (CMS), en el cual se enumera
las especies migratorias cuyo estado de conservación sea desfavorable y que necesiten que
se concluyan acuerdos internacionales para su conservación, cuidado y aprovechamiento, así
como aquellas cuyo estado de conservación se beneficiaría considerablemente de la
cooperación internacional resultante de un acuerdo internacional (Artículo IV inciso 1)10.
Especies endémicas
La definición tradicional de endemismo incluye a aquellas especies con rangos restringidos a
una región particular y por lo tanto es útil para referirse a esa región. Este concepto es útil
para cuantificar la singularidad biológica de un área (Peterson & Watson, 1998).
No se registró especies endémicas en el área de evaluación.
4.2.3 HIDROBIOLÓGICO
4.2.3.1 Generalidades
El presente estudio se lleva a cabo en las Lagunas de Puerto Viejo; el espejo de agua conservado
es alimentado básicamente de las aguas del río Mala, de la irrigación de San Andrés y del río
Chilca. A diferencia de otros humedales, gran porcentaje del agua es dulce que se saliniza recién
en contacto con el suelo arenoso y marino. La Laguna de Puerto Viejo se encuentra conformadas
por un total de dos lagunas que en la actualidad se pueden ver rodeadas de construcciones que
impiden que aquellas se vean con el mar.
4.2.3.2 Objetivos
Objetivo General
Desarrollar la Evaluación Hidrobiológica de las Lagunas Puerto Viejo, con el fin de
caracterizar las condiciones actuales de las comunidades biológicas (plancton, perifiton y
macroinvertebrados bentónicos) en cuerpos de agua del área de estudio.
Objetivos Específicos
▪ Evaluar el componente hidrobiológico (plancton, perifiton y macroinvertebrados
bentónicos) presentes en el área de estudio, mediante parámetros de composición,
abundancia y diversidad.
▪ Caracterización biótica y abiótica de los ecosistemas acuáticos presentes en el área de
estudio.
10 http://www.cms.int/es/page/texto-de-la-convenci%C3%B3n
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48
4.2.3.3 Metodología
4.2.3.3.1 Colecta de Comunidades Acuáticas
Durante la evaluación de comunidades acuáticas, se procedió a la colecta de plancton
(fitoplancton y zooplancton), perifiton y macroinvertebrados bentónicos.
Plancton: Las muestras de Plancton (Fitoplancton y Zooplancton) fueron colectadas filtrando
40 litros de agua superficial (tomados en diferentes puntos del cauce evaluado) a través de
una red de plancton estándar de 30 micras de diámetro de poro. Luego se preservaron con
solución de formol al 5% en frascos de 100 ml previamente rotulados para su posterior
análisis. Ver imagen en la Tabla 4.13.
Perifiton: el muestreo se realizó mediante el raspado con una espátula de una superficie 5 x
5 cm sobre rocas, piedras, maderos o superficies de tamaños adecuados (sustrato que se
encuentra en la estación a evaluar y que son seleccionados al azar). Se realizaron tres réplicas
por cada estación de evaluación, las cuales conformaron una sola muestra por estación, que
se trasvasó en un frasco de plástico de 200 ml, previamente rotulado con los datos de campo
y fueron fijadas con formol al 5%. Ver imagen en la Tabla 4.13.
Macroinvertebrados bentónicos: Los macroinvertebrados bentónicos fueron muestreados
mediante el uso de una red Surber de marco metálico de 30 x 30 cm y malla de 500 μ que es
sostenida en la parte central de la corriente, con la abertura hacia la corriente. En un
movimiento vertical, desde la superficie del agua hacia el fondo, la red se colocó sobre el
sustrato del fondo de las lagunas. Una vez ubicado el muestreador se extiende el marco
frontal para delimitar un área de monitoreo, junto con la red para facilitar el flujo de agua y
arrastre de las muestras.
Las piedras encontradas en el área demarcada por el marco frontal fueron removidas,
lavándolas en el flujo de agua y asegurándose de no dejar organismos adheridos. El proceso
prosiguió hasta terminar de examinar todas las piedras y hasta que no se observaron restos
de vegetación o detritus en el área de monitoreo. Terminado el proceso se levantó la red
cónica, se agregó agua de la corriente para arrastrar cualquier organismo que haya quedado
atrapado en la red, se removió y tapó el frasco colector.
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Tabla 4.13.- Imágenes de colecta
Colecta de Plancton Colecta de Perifiton
Colecta de Macroinvertebrados
Fuente: EQAM, Evaluación de campo, 2019.
4.2.3.3.2 Análisis de las Muestras
La determinación taxonómica de las muestras de perifiton, plancton, y Macroinvertebrados se
realizó en el Laboratorio acreditado Analytical Laboratory E.I.R.L.
4.2.3.3.3 Análisis de los Datos
ÍNDICES COMUNITARIOS: Los registros obtenidos en campo (datos cuantitativos) fueron
utilizados para la elaboración del listado general de especies. Con los resultados obtenidos
se procedió a determinar la composición de especies, Riqueza (S, número de especies) y
Abundancia (N, número de individuos), asimismo se calculó la diversidad para cada
comunidad acuática por cuerpo de agua evaluado, en base al índice de Shannon Wiener (H’,
log2), utilizando el programa PRIMER ver 6 (Clarke & Gorley). A continuación, se detallan los
análisis realizados.
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50
Composición: La composición o frecuencia de los géneros en cada muestra es la contribución
(en porcentaje) de los individuos de cada género o grupo taxonómico con respecto al número
total de individuos en la muestra.
Riqueza de especies (S): La riqueza específica es la forma más sencilla de medir la diversidad
biológica, ya que se basa únicamente en el número de especies presentes, sin tomar en
cuenta el valor de importancia de estas.
Abundancia de individuos (N) y/o Densidad: La densidad está expresada como el número
total de individuos colectados en las estaciones de muestreo. Los valores de densidad por
cada estación se calcularon en base a la sumatoria del número de individuos identificados en
cada una de las muestras.
Riqueza de Margalef (d): Éste es el número total de géneros encontrados en la muestra en
relación al número total de individuos y se expresa como:
𝑑 = (𝑆 – 1) / 𝑙𝑛 𝑁 Donde: d= índice de riqueza; S = número de géneros en la muestra; N = número total de individuos en la muestra.
Valores altos de este índice están mayormente asociados a condiciones de aguas de buena
calidad. Los rangos de valores de diversidad para la riqueza de Margalef se muestran en la
Tabla 4.14.
Tabla 4.14.-Rangos de valores para la diversidad de Margalef
Rango Diversidad
0.0 – 0.8 Bajo
0.9 – 2 Intermedio
> 2 Alto
Magurran A. E. 2004. Measuring biological diversity. Second edition. Oxford. Blackwell Science, Ltd.
Índice de diversidad de Shannon Wiener: El índice de diversidad de Shannon-Wiener (H’) es
un método ampliamente usado para calcular la diversidad biótica en los ecosistemas
acuáticos y terrestres y se expresa como:
Dónde: H = índice de diversidad de especies; S = número de especies; pi = proporción del total de la muestra perteneciente a su especie i.
Un valor alto indica una diversidad alta influenciada por una gran cantidad de taxones o una
distribución más equitativa de estas. El valor del índice es cero en los casos en que todos los
individuos recogidos pertenecen a un sólo grupo taxonómico. Las unidades son expresadas
H p pi
i
s
i log2
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en bits/individuo. Los rangos de valores de diversidad para el índice de Shannon-Wiener se
muestran en la Tabla 4.15.
Tabla 4.15.-Rangos de valores para la diversidad de Shannon-Wiener
Rango Diversidad
0 - 1 Bajo
1 – 3 Intermedio
>3 Alto
Magurran A. E. 2004. Measuring biological diversity. Second edition. Oxford. Blackwell Science, Ltd.
Índice de Uniformidad de Pielou: El índice de uniformidad de Pielou (J’) se usó para la
interpretación del índice de diversidad de Shannon-Wiener. Mide la proporción de la
diversidad observada con relación a la máxima diversidad esperada. Su valor va de 0 a 1,
correspondiendo el máximo valor a situaciones donde todas las especies son igualmente
abundantes (Magurran, 1988, citado por Moreno, 2001). La fórmula es la siguiente:
𝐽′ =𝐻′
𝑙𝑛(𝑘)
Dónde: J’ = índice de uniformidad de Pielou; H’ = índice de diversidad de Shannon-Wiener; k = número total de especies en la muestra.
Índice de diversidad o Dominancia de Simpson (1-ʎ’): El índice de diversidad de Simpson (1-
D) es la distribución proporcional de organismos en una comunidad, tomando en cuenta el
número de grupos taxonómicos en el sitio, así como la abundancia de cada uno de ellos. El
índice es expresado como 1-D, donde D = Σ(Pi)² y Pi = proporción de individuos de una especie
en la comunidad.
Los valores oscilan entre cero a uno. Un valor cercano a cero indica que la comunidad tiene
muy pocos grupos taxonómicos o un gran número de grupos taxonómicos, pero la mayoría
de ellos son raros. Valores cercanos a uno tiene un gran número de grupos taxonómicos,
pocos de los cuales son raros. Los rangos de valores de diversidad para el índice de Simpson
se muestran en la Tabla 4.16.
Tabla 4.16.-Rangos de valores para la diversidad de Simpson
Rango Diversidad
0.0 – 0.4 Bajo
0.41 – 0.7 Intermedio
0.71 – 1.0 Alto
Magurran A. E. 2004. Measuring biological diversity. Second edition. Oxford. Blackwell Science, Ltd.
ÍNDICES DE CALIDAD AMBIENTAL: Los índices ecológicos tales como BMWP o %EPT y otros
índices en su mayoría incluyen a los insectos de los órdenes Ephemeroptera, Plecoptera y
Trichoptera como bioindicadores de buena calidad de agua. Adicionalmente a estos órdenes
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se encuentran también aquellos que se consideran como indicadores de aguas perturbadas
como Diptera (Chironomidae) u Oligochaeta.
Porcentaje ETP: El Índice %EPT está basado en la presencia de tres grupos indicadores
(Ephemeroptera, Plecoptera, Trichoptera) considerados como sensibles a aguas perturbadas
o contaminadas por materia orgánica, entonces su presencia en los cuerpos de agua es un
indicador de aguas limpias y de buena calidad. El índice %EPT está basado en la abundancia
relativa (%) de estos grupos en una muestra determinada, la escala de comparación para el
presente estudio se tomó del índice %EPT desarrollado por EcoCiencia para Ecuador (Carrera
y Fierro 2001).
La tabla a continuación describe y proporciona rangos establecidos para la evaluación de los
resultados obtenidos (%EPT), calificando los resultados en categorías Malo, Regular, Buena,
y Muy Buena para calidad de agua (Tabla 4.17).
Tabla 4.17.-Rangos de valores para el índice %EPT
Porcentaje EPT Calidad de agua
75 - 100% Muy Buena
50 - 74% Buena
25 - 49% Regular
0 - 24% Mala
Fuente: Carrera y Fierro, 2001
Índice BMWP/Col: El índice BMWP (Biological Monitoring Working Party) es un método
cualitativo (presencia / ausencia), simple y rápido, que requiere nivel taxonómico de familia.
A cada una de las familias de individuos se le otorga un puntaje que va de 1 a 10, basado en
la tolerancia de los diferentes grupos a la descomposición orgánica (Hauer & Lamberti, 1996).
La suma de los puntajes de todas las familias da el puntaje total BMWP. Mientras más alto
sea el puntaje, menor es el grado de perturbación ambiental. La Tabla 4.18, nos muestra la
clasificación de las aguas expresadas en la clase (I, II, III, IV, V) el valor del BMWP su significado
ecológico de acuerdo al BMWP / Col y los colores en caso se requieran hacer una
representación cartográfica (Roldán 2003).
Tabla 4.18.-Clasificación de las aguas y significado ecológico de acuerdo al índice BMWP/Col
Clase Calidad de
Agua Valor
BMWP/Col Significado
I Azul claro Muy Buena ≥121 Aguas muy limpias, no contaminadas
II Azul oscuro Buena >150, <101-120> Aguas limpias, no contaminadas
III Verde Aceptable 61-100 Se evidencia efectos de la contaminación
IV Amarillo Dudosa 36- 60 Aguas moderadamente contaminadas
V Naranja Crítica 16-35 Aguas muy contaminadas
VI Rojo Muy crítica < 15 Aguas fuertemente contaminadas situación crítica
Roldán, G. y J. Ramírez.
2008. Fundamentos de Limnología Neotropical. Segunda edición. Medellín. Editorial Universidad de Antioquía.
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La ventaja de este índice se basa en la fiabilidad de los resultados, la rapidez y sencillez de su
utilización, con ahorro de costos y tiempo. Ver Tabla 4.19.
Tabla 4.19.-Puntaje de las familias de macroinvertebrados de acuerdo al índice BMWP/Col
Familias Puntajes
Blephariceridae, Ptilodactylidae, Hydridae, Perlidae, Psephenidae, Grypopterygidae. 10
Gytiscidae, Gyrinidae, Hydrobiosidae, Leptophlebiidae, Philopotamidae. 9
Helicopsychidae, Hydrobidae, Leptoceridae, Simuliidae, Veliidae. 8
Baetidae, Dixidae, Glossossomatidae, Hyalellidae, Hydroptilidae, Hydropsychidae, Leptohyphidae 7
Aeshnidae, Corydalidae, Elmidae, Staphylinidae, 6
Pyralidae, Tabanidae, Dugesiidae, Planariidae 5
Dolichopodidae, Empididae, Hidrachniidae 4
Ceratopogonidae, Hydrophilidae, Phisidae, Tipulidae, Ascellidae, Ostracoda, Planorbiidae 3
Culicidae, Chironomidae, Muscidae, Syrphidae 2
Tubificidae, Oligochaeta (todas las clases) 1
Roldán, G. y J. Ramírez. 2008. Fundamentos de Limnología Neotropical. Segunda edición. Medellín. Editorial Universidad de Antioquía.
Índice HBI o IBF (Hilsenhoff Biotic Index o Índice Biótica de Familias): A diferencia del
BMWP, el Índice Biótico de Familias considera una medida de ponderación, representada por
la sumatoria de los productos de los valores correspondientes al nivel de tolerancia de una
familia de macroinvertebrados bentónicos en particular por la abundancia de la misma; este
valor es posteriormente dividido entre la abundancia total de organismos, tal como se
presenta en la fórmula a continuación:
𝐼𝐵𝐹 (ó 𝐻𝐵𝐼) =∑(𝑉𝑇𝑖 𝑥 𝑛𝑖)
𝑁
Dónde: VTi: Valor de tolerancia de la i-ésima familia presente en la muestra. ni: Abundancia de la i-ésima familia presente en la muestra. N: Abundancia total de macroinvertebrados bentónicos en la muestra.
Los valores de Tolerancia por familia para el IBF, utilizados en el presente análisis provienen
del trabajo de Figueroa et al. (2003), para ríos del sur de Chile y de valores desarrollados para
Norteamérica (Hilsenhoff, 1988; Barbour et al., 1999; Carter et al., 2007). Es importante
señalar que, a pesar de que este índice sería -aparentemente- más apropiado para medir la
condición de un cuerpo acuático (al no depender de la riqueza del medio exclusivamente),
no estaría sesgado por patrones de deriva o por el esfuerzo muestral. Asimismo, aún no se
han desarrollado grandes avances para su adaptación al medio Sudamericano, tal como
sucede en el caso del índice BMWP (ver Tabla 4.20).
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Tabla 4.20.-Escala de calidad de agua, Índice HBI
Clase de calidad Rango del índice biótico de familias Calidad del agua
I ≤ 3.75 Excelente
II 3.76 – 4.25 Muy buena
III 4.26 – 5.00 Buena
IV 5.01 – 5.75 regular
V 5.76 – 6.50 relativamente mala
VI 6,51 – 7.25 Mala
VII ≥7.26 Muy mala
Fuente: Hilsenhoff, 1988; Roldán, 1999
Índice ABI (Andean Biotic Index; Acosta et al, 2009): Forma parte del protocolo de
evaluación de la calidad ecológica de los ríos andinos (CERA). Este índice se desarrolló en la
cuenca alta y media del río Cañete (Lima, Perú) el cual cuenta también con ecosistemas de
puna. Toma en cuenta la presencia de macroinvertebrados bentónicos a nivel de familia. Ver
Tabla 4.21 y Tabla 4.22. La clasificación adaptada para el Perú de acuerdo a la puntuación
obtenida de la sumatoria de los valores de cada familia es:
Tabla 4.21.-Estado ecológico de las aguas de acuerdo a la puntuación del índice ABI
ABI Estado ecológico
>74 Muy bueno
45 – 74 Bueno
27 – 44 Moderado
11 – 26 Malo
<11 Pésimo
Fuente: Acosta et al., 2009
Tabla 4.22.- Puntaje de las familias de macroinvertebrados de acuerdo al índice ABI
Taxa Puntaje Taxa Puntaje Taxa Puntaje
Helicopsychidae 10 Libellulidae 6 Baetidae 4
Calamoceratidae 10 Coenagrionidae 6 Belostomatidae 4
Odontoceridae 10 Hyalellidae 6 Dixidae 4
Anomalopsychidae 10 Turbellaria 5 Dolichopodidae 4
Leptophlebiidae 10 Ptilodactylidae 5 Stratiomyidae 4
Oligoneuridae 10 Lampyridae 5 Empididae 4
Polythoridae 10 Psephenidae 5 Hirudinea 3
Perlidae 10 Scirtidae 5 Physidae 3
Gripopterygidae 10 Elmidae 5 Hydrobiidae 3
Blepharoceridae 10 Dryopidae 5 Limnaeidae 3
Athericidae 10 Hydraenidae 5 Planorbidae 3
Leptoceridae 8 Simuliidae 5 Sphaeriidae 3
Polycentropodidae 8 Tipulidae 5 Ostracoda 3
Hydroptilidae 6 Veliidae 5 Staphylinidae 3
Xiphocentronidae 8 Gerridae 5 Gyrinidae 3
Hydrobiosidae 8 Corixidae 5 Dytiscidae 3
Gomphidae 8 Notonectidae 5 Hydrophilidae 3
Calopterygidae 8 Hydropsychidae 5 Psychodidae 3
Philopotamidae 8 Naucoridae 5 Chironomidae 2
Glossosomatidae 7 Pyralidae 4 Culicidae 2
Leptohyphidae 7 Tabanidae 4 Muscidae 2
Limnephilidae 7 Limoniidae 4 Ephydridae 2
Ancylidae 6 Ceratopogonidae 4 Oligochaeta 1
Aeshnidae 6 Hydracarina 4 Syrphidae 1
Acosta, R., B. Ríos, M. Rieradevall & N. Prat 2009. Propuesta de un protocolo de evaluación de la calidad ecológica de ríos andinos (CERA) y su aplicación a dos cuencas en ecuador y Perú. Limnetica 28:35-64
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Índice de Integridad Biológica (IBI): El estado de conservación fue determinado mediante el
Índice de Integridad Biológica (IBI); este sistema de calificación de hábitat fue diseñado por
Karr (1991) para evaluar la condición de los cursos de agua en el hemisferio norte, el cual fue
adaptado a la composición y estructura de las poblaciones de peces amazónicos, para el
presente estudio, como fue aplicado en el informe anual anterior (Ortega et al., 2003).
Un IBI mide hasta qué grado el hábitat mantiene “una comunidad equilibrada, integrada y
adaptada de organismos que tienen una composición, diversidad y organización funcional de
especies comparables a los del hábitat natural de la región” (Karr y Dudley 1981). La versión
original empleo 12 medidas biológicas (métricas) que reflejaban la riqueza y composición de
las especies de peces, la estructura trófica y la abundancia y condición de los peces.
Para calcular el IBI para un sitio, se le otorga un puntaje a cada medida o rubro y la suma de
los puntajes para las 12 medidas es el IBI. Una medida obtiene 1, 3 ó 5 unidades. El mínimo
es 12 (severamente impactado) y el máximo es 60 (ambiente prístino).
Para nuestro estudio se emplearon consideraciones propias basadas en el conocimiento de
los peces amazónicos como la Riqueza (criterio 1) que está indicada por el número de
especies registradas en cada localidad y en la composición (criterios 2, 3 y 4) involucra a los
órdenes más representativos (Characiformes, Siluriformes y Gymnotiformes). En los
siguientes criterios (5 y 6), la presencia de peces periféricos y secundarios en “otros” y
“tolerantes” de acuerdo con la clasificación ecológica de Myers (1959). En la categoría de
estructura trófica se anota la presencia de los peces omnívoros, detritívoros y carnívoros
(criterios 7, 8 y 9) que reconocemos como tales. Finalmente, en la categoría de abundancia
(10) se tiene en cuenta el número de ejemplares colectado y en estado de salud (11 y 12) la
buena condición de los peces. Ver tabla siguiente.
Tabla 4.23.-Categorías y criterios de puntuación de acuerdo al índice IBI
Categorías Medidas Criterios ausencia media alta
Riqueza o diversidad de
especies
1 Cantidad de spp. 1 3 5
2 Characiformes 1 3 5
3 Siluriformes 1 3 5
4 Gymnotiformes 1 3 5
5 Otros 1 3 5
6 Tolerantes 1 3 5
Composición trófica de las
especies
7 Omnívoros 1 3 5
8 Detritívoros 1 3 5
9 Carnívoros 1 3 5
Abundancia y condición de los
peces
10 No. Individuos 1 3 5
11 Saludables 1 3 5
12 Lesionados 1 3 5
Entonces, los resultados obtenidos con el IBI pueden calificarse como sigue:
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Figura 4.28.- Laguna Puerto Viejo
Tabla 4.24.-Calificación del índice IBI
Rango de Valores Calificación
12 - 20 Condición deteriorada
21 - 30 Condición afectada
31- 40 Condición aceptable
41 – 50 Condición buena
51 - 60 Condición excelente
4.2.3.4 Resultados Cuerpo de Agua Loticos
4.2.3.4.1 Descripción de las Estaciones de Muestreo
El cuerpo de agua corresponde a un cuerpo de agua lentico de laguna, tipificada como humedal,
dividida con un dique con un sistema de tuberías tipo monje. Durante la evaluación presentó un
color verde intenso, con una profundidad que varió entre 0.9 y 1.20 m, con una trasparencia que
osciló entre 7 y 10 cm. Las orillas son desnudas, sin cobertura vegetal y con vegetación
introducida (césped); el sustrato es de fondo blando predominantemente de limo.
Se observó la ausencia de corriente, sin embargo, se observó desplazamiento del agua
producido por el sistema de aireación presente.
Fuente: EQAM, Evaluación de campo, 2019.
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A. COMUNIDADES ACUÁTICAS:
A continuación, se analizan los resultados obtenidos de las colectas de las comunidades
acuáticas en las lagunas (Anexo C).
PLANCTON: Son organismos microscópicos que viven suspendidos en las aguas y que, por
carecer de medios de locomoción o ser estos muy débiles, se mueven o trasladan a merced
del movimiento de las masas de agua o corrientes, tendiendo a proliferar en ambientes
lénticos (cochas o lagunas). El plancton se divide en fitoplancton (microalgas) y zooplancton
(animales microscópicos).
En aguas continentales, los grupos fitoplanctónicos más representativos corresponden a las
algas pertenecientes a las divisiones Ochrophyta (diatomeas), Cyanobacteria, y Chlorophyta.
El Plancton estuvo compuesto por 30 especies, distribuidas en 17 especies del fitoplancton y
13 especies del zooplancton. En las cuatro estaciones se registraron el mismo número de
especies. Tabla 4.25.
Tabla 4.25.-Distribución de especies del Plancton
Plancton Estaciones de Muestreo
Total CAG-01 CAG-02 CAG-03 CAG-04
Fitoplancton 17 17 17 17 17
Zooplancton 13 13 13 13 13
Total 30 30 30 30 30
Fuente: EQAM, 2019.
FITOPLANCTON
Composición: La composición de las 17 especies del fitoplancton estuvo distribuida en 4
divisiones, siendo las Cyanobacteria las más ricas en especies 35% (6 especies), seguidas de
las Ochrophyta 29% (5 especies), Chlorophyta 30% (cinco especies) y Euglenophyta 6% (una
especie). Figura 4.29 y Tabla 4.26.
Tabla 4.26.-Composición de especies del Fitoplancton
División Estaciones de Muestreo
Total CAG-01 CAG-02 CAG-03 CAG-04
Cyanobacteria 6 6 6 6 6
Chlorophyta 5 5 5 5 5
Euglenophyta 1 1 1 1 1
Ochrophyta 5 5 5 5 5
Total general 17 17 17 17 17
Fuente: EQAM, 2019.
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Fuente: EQAM, 2019.
Abundancia y diversidad: Para el análisis de la abundancia se tomaron las densidades del
fitoplancton (células/ml) en las estaciones de muestreo ubicadas en el área de estudio
registrándose 13,157 células/ml. Tabla 4.28. Como se observa en la Figura 4.30, la división
más abundante fue Cyanobacteria (99%, 12,984 células/ml), seguido de las Ochrophyta,
Euglenophyta y Chlorophyta que en conjunto representan el 1% de la abundancia total.
Fuente: EQAM, 2019.
Con respecto a los índices de diversidad a nivel de las Lagunas, estos registraron valores
bajos debido a la dominancia de los Ochrophyta. Como se aprecia en la Tabla 4.28, el valor
de diversidad de Shannon – Wiener es de 1.30 bits/individuo con un índice de dominancia
de Simpson de 0.40 unidades.
Cyanobacteria; 6; 35%
Chlorophyta; 5; 30%
Euglenophyta; 1; 6%
Ochrophyta; 5; 29%
Ochrophyta ; 12,984; 99%
Cyanobacteria; 78; 1%
Euglenophyta;
52; 0%Chlorophyta; 43;
0%
Otros ; 173; 1%
Figura 4.29.- Composición porcentual por división del Fitoplancton
Figura 4.30.- Distribución porcentual del fitoplancton por división (célula/ml)
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Arthropoda; 5; 38%
Ciliophora; 1; 8%
Nematoda; 1; 8%
Protozoa; 3; 23%
Rotifera; 3; 23%
Figura 4.31.- Composición porcentual por phyllum del Zooplancton
Tabla 4.27.-Densidad del Fitoplancton (células/ml)
División Estaciones de Muestreo
Total CAG-01 CAG-02 CAG-03 CAG-04
Cyanobacteria 12 575 34 339 36 12 984
Chlorophyta 41 6 9 22 78
Euglenophyta 32 5 10 5 52
Ochrophyta 21 10 11 1 43
Riqueza de Especies (S) 17 17 17 17 17
Abundancia de individuos (N) 12 669 55 369 64 13 157
Riqueza de Margalef (d) 1.69 3.99 2.71 3.85 1.69
Equidad de Pielou (J) 0.28 0.77 0.53 0.59 0.32
Diversidad de Shannon -Wiener (H') 1.16 3.16 2.17 2.43 1.30
Dominancia de Simpson(1-D) 0.37 0.85 0.64 0.69 0.40
Fuente: EQAM 2019.
ZOOPLANCTON
Composición: La composición de especies del zooplancton estuvo distribuida en 5 phyla,
siendo los Arthropoda los más ricos en especies (38%, 5 especies), seguido de los Rotifera
(23%, 3 especies), Protozoa (23%, 3 especies), Ciliophora (8%, una especie) y Nematoda
(8%, 1 especie). Como se aprecia en la Tabla 4.28, se registraron las mismas especies y en
el mismo número en las 4 estaciones evaluadas. Tabla 4.29 y Figura 4.31.
Fuente: EQAM 2019.
Tabla 4.28.-Composición de especies del Zooplancton
Phyllum Estaciones de Muestreo
Total CAG-01 CAG-02 CAG-03 CAG-04
Arthropoda 5 5 5 5 5
Ciliophora 1 1 1 1 1
Nematoda 1 1 1 1 1
Protozoa 3 3 3 3 3
Rotifera 3 3 3 3 3
Total general 13 13 13 13 13
Fuente: EQAM 2019.
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Abundancia y diversidad. Para el análisis de la abundancia se tomaron las densidades del
zooplancton (organismo/L) en las estaciones de muestreo ubicadas en el área de estudio
registrándose 163 organismo/L. Tabla 4.30.
Como se observa en la Figura 18, la división más abundante fue Rotifera con 44% (72
organismo/L), Arthropoda con 41% (67 organismo/L), Ciliophora 5% (8 organismo/L),
Nematoda 3% (4 especies organismo/L), Protozoa 7% (12 especies organismo/L).
Con respecto a los índices de diversidad a nivel de las Lagunas, estos registraron valores
bajos debido a la dominancia de los Arthropoda y Rotifera. Como se aprecia en la Tabla
4.30, el valor de diversidad de Shannon – Wiener es de 2.67 bits/individuo con un índice de
dominancia de Simpson de 0.76 unidades.
Fuente: EQAM, 2019.
Tabla 4.29.-Densidad del Zooplancton (organismo/L)
Phyllum Estaciones de Muestreo
Total CAG-01 CAG-02 CAG-03 CAG-04
Arthropoda 22 6 9 30 67
Ciliophora 1 1 2 4 8
Nematoda 1 1 1 1 4
Protozoa 3 3 3 3 12
Rotifera 18 11 18 25 72
Riqueza de Especies (S) 13 13 13 13 13
Abundancia de individuos (N) 45 22 33 63 163
Riqueza de Margalef (d) 3.15 3.88 3.43 2.90 2.36
Equidad de Pielou (J) 0.68 0.83 0.74 0.63 0.72
Diversidad de Shannon -Wiener (H') 2.53 3.07 2.74 2.32 2.67
Dominancia de Simpson(1-D) 0.75 0.84 0.76 0.71 0.76
Fuente: EQAM, 2019.
Arthropoda; 67; 41%
Ciliophora; 8; 5%
Nematoda; 4; 3%
Protozoa; 12; 7%
Rotifera; 72; 44%
Figura 4.32.- Distribución porcentual del zooplancton por phyllum (organismo/L)
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Charophyta; 1; 4%
Chlorophyta; 1; 4%
Ciliophora; 1; 4%
Cyanobacteria; 16; 61%
Ochrophyta; 7; 27%
Figura 4. 33.- Composición porcentual por taxa del Perifiton
PERIFITON: El perifiton, es definido como una comunidad compleja de microbiota (algas,
bacterias, hongos, animales y detritus orgánico e inorgánico) que se encuentra asociada a un
sustrato, cobra gran importancia tanto en ambientes lóticos como lénticos.
El perifiton, está definido como una comunidad compleja de microbiota (algas, bacterias,
hongos, animales y detritus orgánico e inorgánico) que se encuentra asociada a un sustrato,
cobra gran importancia tanto en ambientes lóticos como lénticos por el rol que desempeña
en los procesos de fijación de carbono y ciclos de nutrientes, es además considerado un buen
indicador de los cambios que ocurren en los ambientes acuáticos por impactos de origen
natural o antropogénico, por lo que se les emplea para evaluar la calidad del agua en ríos y
quebradas (Azim et al., 2005).
Composición: La composición de las 26 especies del perifiton estuvo distribuida en 5 taxa,
correspondientes a 4 divisiones de microalgas y una de microinvertebrados. Las divisiones
de microalgas registradas fueron Cyanobacteria 61% (16 especies), Ochrophyta 27% (7
especies), Charophyta 4% (una especie), Chlorophyta 4% (una especie) y el phyllum de
microinvertebrado Ciliophora 4% (una especie). Como se aprecia en la Tabla 4.31, se
registraron las mismas especies y en el mismo número en las 4 estaciones evaluadas.
Tabla 4.30.-Composición de especies del Perifiton
Taxa Estaciones de Muestreo
Total CAG-01 CAG-02 CAG-03 CAG-04
Charophyta 1 1 1 1 1
Chlorophyta 1 1 1 1 1
Ciliophora 1 1 1 1 1
Cyanobacteria 16 16 16 16 16
Ochrophyta 7 7 7 7 7
Total general 26 26 26 26 26
Fuente: EQAM, 2019.
Fuente: EQAM, 2019.
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Cyanobacteria; 2,894; 50%
Ochrophyta; 2,785; 48%
Charophyta; 125; 2%
Chlorophyta; 16; 0%
Ciliophora; 4; 0%
Otros; 145; 2%
Figura 4.34.- Distribución porcentual del Perifiton por taxa (individuos/mm2)
Abundancia y diversidad: Para el análisis de la abundancia se tomaron las densidades de
Perifiton (individuos/mm2) en las estaciones de muestreo ubicadas en el área de estudio
registrándose 5,824 individuos/mm2. Tabla 4.32.
Como se observa en la Figura 20, la división Cyanobacteria registro el 50% (2,894
individuos/ mm2), Ochrophyta 48% (2,785 individuos/ mm2), Charophyta, Chlorophyta y
Ciliophora representaron 2% del total de organismos colectados.
Con respecto a los valores de diversidad, estos fueron bajos debido a la dominancia de las
Cyanobacteria y Ochrophyta. El índice de Shannon -Wiener fue de 2.23 bits/individuo y el
de Dominancia de Simpson de 0.67 unidades.
Tabla 4.31.-Densidad del Perifiton (individuos/mm2), Temporada Húmeda 2017
Taxa Estaciones de Muestreo
Total CAG-01 CAG-02 CAG-03 CAG-04
Cyanobacteria 234 285 249 2,126 2,894
Ochrophyta 224 282 2,183 96 2,785
Charophyta 21 101 1 2 125
Chlorophyta 13 1 1 1 16
Ciliophora 1 1 1 1 4
Riqueza de Especies (S) 26 26 26 26 26
Abundancia de individuos (N) 493 670 2,435 2,226 5,824
Riqueza de Margalef (d) 4.03 3.84 3.21 3.24 2.88
Equidad de Pielou (J) 0.74 0.57 0.17 0.11 0.47
Diversidad de Shannon -Wiener (H') 3.48 2.69 0.78 0.49 2.23
Dominancia de Simpson(1-D) 0.88 0.79 0.22 0.11 0.67
Fuente: EQAM, 2019.
Fuente: EQAM, 2019.
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MACROINVERTEBRADOS: Esta comunidad biológica acuática está constituida
principalmente por organismos invertebrados (insectos acuáticos, larvas, crustáceos y
gusanos) que viven asociados al fondo de los diferentes ambientes acuáticos. Representan el
segundo eslabón en la cadena de recursos alimenticios en el ambiente acuático y en
consecuencia su disponibilidad en el ambiente modula la densidad de, por ejemplo,
poblaciones de peces u otros predadores superiores en la red trófica.
Por otro lado, cumplen un rol importante para el reciclamiento de materia orgánica, lo cual
es de importancia fundamental en la estructura de los ecosistemas fluviales y lacustres
(Margalef, 1983). En aguas continentales esta comunidad está dominada por formas larvarias
de insectos acuáticos de diversos órdenes, entre los más comunes están Diptera, Coleoptera,
Trichoptera, Ephemeroptera y Odonata, algunos de ellos presentes en los diferentes puntos
de muestreo evaluados.
En la presente evaluación no se registraron macroinvertebrados de bentos.
PECES: En la presente evaluación no se registraron peces, sin embargo, se tiene conocimiento
que se ha producido la siembra de la especie introducida Oreochromis sp. “tilapia”.
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5.0 CONCLUSIONES
5.1 CALIDAD AMBIENTAL AGUA Y SEDIMENTOS
El cuerpo de agua corresponde a un cuerpo de agua lentico de laguna, tipificada como
humedal, con un color verde intenso, con una profundidad que varió entre 0.9 y 1.20 m, con
una trasparencia que osciló entre 7 y 10 cm y un fondo blando predominantemente de limo.
De acuerdo al muestreo de la calidad del agua de las lagunas se ha visto que la laguna
presenta característica oligotrópica, es decir, con baja presencia de materia orgánica, lo cual
también se evidencia con la ausencia de macroinvertebrados bentonicos, se puede
considerar positivo el no haber encontrado larvas de Díptera del orden Chironomidae, que
son indicadores de aguas con alta concentración orgánica, que dependiendo de su densidad,
pueden indicar eutrofización.
El agua presenta un pH fuertemente alcalino en las 4 estaciones, presentando valores de 9.35
hasta 9.56, estado fuera del rango del Estándar de Calidad Ambiental (ECA) para Agua que
establece la norma ambiental, dado que debería encontrarse en un rango entre 6.5 a 9, es
decir un pH neutro.
Este pH se ha visto que se ha incremento en los últimos años, ya que en años anteriores el
pH mantenía un valor dentro del ECA, es decir, es decir un valor promedio de 8.
Este pH elevado, es decir, por encima de 9 favorece el desarrollo de cyanobacterias, lo cual
se evidencia en los resultados del muestreo hidrobiológico, en la cual muestra que en el agua
se han encontrado estas cyanobacterias, que no solo afectan la coloración del agua, sino que
también pueden generar toxinas como las microcistinas (hepatotoxinas), antoxinas
(neurotoxinas) y toxinas irritantes de piel y mucosas, así también este rango de elevado de
pH no favorece a la vida acuática de las especies, con un pH por encima de 10 ocasionaría
signos de estrés grave de los peces 11
Sólidos Suspendidos totales: Este parámetro se encuentra sobrepasando el valor de ECA
para Agua en dos estaciones (CAG-03 y CAG-04). Estas concentraciones elevadas se ven
también influenciada el tipo del sistema de aereación que se aplica a la laguna, así como
también a la presencia de corte de vegetación que cae a las lagunas.
La concentración de DBO5 en las cuatro estaciones presentan valores de 49.3 a 54.7 mg/l
muy por encima del valor de referencia de la normativa (ECA), lo cual indica que el agua se
encuentra ligeramente contaminada.
Con respecto al nitrógeno se observa que su concentración se ha incrementado
considerablemente en los últimos años, actualmente presenta una concentración de 0.55
mg/l a 0.70 mg/l, estando por encima del rango de calidad ambiental de acuerdo al ECA. Este
11 Nota: https://espanol.mercola.com/boletin-de-salud/agua-alcalina.aspx
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incremento del nitrógeno se ve relacionado también al incremento de nitritos y nitratos que
si bien no sobrepasa el estándar de calidad ambiental se ha visto incrementado sus
concentraciones en los últimos años en más del 100% su valor.
Este nitrógeno también se ve incrementado por la fijación del nitrógeno por la presencia de
cyanobacterias, las cuales se encuentran presentes en la laguna, esto debido a que el pH
alcalino favorece el desarrollo de estos organismos microscópicos (Plancton), por tanto,
afectan la coloración del lago.
Si existe un exceso en la población de algas se producirían malos olores, color desagradable,
etc. y por el contrario si existe poca cantidad de éstas en dicho cuerpo de agua, no se
produciría el oxígeno necesario para la oxidación de la materia orgánica.
5.2 BIOLÓGICO (FLORA Y AVIFAUNA)
Se registraron un total de 24 especies, agrupadas en 23 géneros y 16 familias.
La clase Magnoliópsida (Dicotiledóneas) mantuvo una riqueza de 15 especies (62.50%)
distribuidas en 15 géneros y 12 familias; la clase Liliópsida (Monocotiledóneas) con 9 especies
(37.50%) distribuidas en 8 géneros y 4 familias.
Dentro de la familia con mayor riqueza de especies, se encuentra la familia Poaceae con 4
especies distribuidas en 4 géneros, la familia Asteraceae con 3 especies distribuidas en 3
géneros y Cyperaceae con 3 especies distribuidas en 2 géneros.
La flora vascular de la zona evaluada reportó un 38 % de individuos para la familia Cyperaceae
y un 26.81% de individuos para la familia Poaceae como valores más altos.
Las herbáceas son la forma de crecimiento (hábito) predominante, representando el 79.17%
de especies encontradas; a diferencia de las especies arbustivas y arbórea que representaron
el 8.33% cada una, y finalmente las palmeras que solo representaron el 4.17%.
Se encontró una cobertura vegetal de 91.0% en toda la zona evaluada. El 9.0% restante
representa al acumulado de pequeños parches que no presentaron vegetación.
En general, la mayoría de los puntos de evaluación presentaron un alto porcentaje de
cobertura vegetal, con valores mayores al 85.0%.
Se observó que el punto de evaluación con mayor cobertura vegetal fue LPV-03 con 93.3%;
esto se debe principalmente al tipo de comunidad vegetal que alberga la zona.
No se reportaron especies incluidas en el D.S. N° 043-2006-AG Aprueban Categorización de
Especies Amenazadas de Flora Silvestre.
No se reportaron especies incluidas en los apéndices del tratado CITES (Convention on
International Trade of Endangered Species, 2017).
No se reportaron especies incluidas la Lista Roja de Especies Amenazadas de la UICN.
No se reportan especies endémicas en el presente estudio.
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En cuanto a Flora, los puntos evaluados, a pesar de presentar una buena cobertura vegetal,
mayor al 85%, presentan una baja diversidad florística, esto quiere decir que a pesar de que
se tiene el suelo cubierto, existe poca diversidad de especies de flora.
Respecto a la avifauna se registró dos especies migratorias procedentes del norte de
América. La gaviota de Franklin Leucophaeus pipixcan y el playero coleador Actitis
macularius.
Las lagunas del condominio, a pesar de su baja diversidad, demuestra ser un lugar de
importancia para las aves residentes y migratorias. Provee, de alguna manera, las cuatro
condiciones básicas para el sostenimiento de una especie, las cuales son garantizar
reproducción (observado con el zambullidor grande Podiceps major), cobertura vegetal (la
cual podría mejorarse en algunos sectores), da espacio para que las especies puedan
descansar y provee alimento a las especies residentes y migratorias.
En este tipo de hábitats, la diversidad y abundancia de las aves que usan un humedal
aumentan con la proximidad de otros de acuerdo a lo manifestado por Green & Figuerola
(2003) por lo que se puede inferir que el mantener e incrementar ambos parámetros
dependerá también del estado en que se encuentren los humedales de Puerto Viejo.
Como ocurre en muchos de estos ecosistemas, las especies presentes podría usar esta laguna
como sitio de descanso e ir a alimentarse en sectores aledaños, dado su proximidad y
colindancia al Humedal de Puerto Viejo, ya que para las especies de avifauna todo forma
parte de su lugar de hábitat o descanso para las aves de la zona como aves migratorias como
es el caso de la gaviota de Franklin Leucophaeus pipixcan y el playero coleador Actitis
macularius.
Se registró un total de 24 especies, incluido el pato azulón Anas platyrhynchos, una especie
de pato introducida, típica del norte de América.
Se registró un total de 23 especies de aves silvestres, incluidas en 16 familias y nueve
órdenes.
La especie más abundante fue la gaviota de Franklin Leucophaeus pipixcan con 530
individuos.
No se registró especies protegidas por la Categorización de especies amenazadas de fauna
silvestre ni en las categorías principales de amenaza de la Lista Roja de la Unión para la
conservación de la naturaleza.
Se registró dos especies migratorias procedentes del norte de América. La gaviota de Franklin
Leucophaeus pipixcan y el playero coleador Actitis macularius.
La laguna del condominio, a pesar de su baja diversidad, demuestra ser un lugar de
importancia para las aves residentes y migratorias. Provee, de alguna manera, las cuatro
condiciones básicas para el sostenimiento de una especie, las cuales son garantizar
reproducción (observado con el zambullidor grande Podiceps major), cobertura vegetal (la
cual podría mejorarse en algunos sectores), da espacio para que las especies puedan
descansar y provee alimento a las especies residentes y migratorias.
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En este tipo de hábitats, la diversidad y abundancia de las aves que usan un humedal
aumentan con la proximidad de otros de acuerdo a lo manifestado por Green & Figuerola
(2003) por lo que se puede inferir que el mantener e incrementar ambos parámetros
dependerá también del estado en que se encuentren los humedales de Puerto Viejo.
Como ocurre en muchos de estos ecosistemas, las especies presentes podría usar esta laguna
como sitio de descanso e ir a alimentarse en sectores aledaños.
5.3 HIDROBIOLÓGICO
El cuerpo de agua corresponde a un cuerpo de agua lentico de laguna, tipificada como
humedal, con orillas son desnudas, sin cobertura vegetal y con vegetación introducida
(césped); y donde el sustrato es predominantemente de limo.
Los tubos de este sistema llevan a las lagunas una alta presión de aire, que remueve
constantemente el sustrato del fondo, provocando la remisión del sedimento e
incrementado la turbidez, lo que se refleja en los valores de solidos disueltos y baja
transparencia registrada (7 – 10 cm).
El no registro de peces, puede estar asociado, también a esta constante remoción del
sustrato y a la poca profundidad registrada en esta evaluación que varió entre 0.9 a 1.2 m,
ya que la especie introducida prefiere aguas quietas para poder reproducirse.
De acuerdo a los resultados de fitoplancton y perfition las microalgas con mayor abundancia
fueron las Cyanobacteria, algas azul verdes, y las Ochrophyta, algas doradas. La presencia de
altas concentraciones de nitrógeno en los cuerpos de agua, esta relacionadas a la abundancia
de las Cyanobacteria.
Debido a la ausencia de macroinvertebrados de bentos (larvas de Díptera del orden
Chironomidae) en las lagunas, se puede inferir que las lagunas tiene bajas concentración
orgánica, dado que estas especies son indicadores de aguas con alta concentración orgánica,
que dependiendo de su densidad, pueden indicar eutrofización.
Se debe mencionar que, con una sola evaluación no es posible caracterizar el estado de salud
de un cuerpo de agua; se requiere un monitoreo planificado y muestreo de la comunidad de
microalgas a diferentes horas el día para evaluar su relación directa con la concentración de
nitratos y clorofila.
Sin embargo, se puede relacionar la alta abundancia de Cyanobacteria con los resultados
encontrados de los análisis fisicoquímicos. Se observó un alto contenido orgánico,
representado en la concentración de los Nitritos y alta conductividad, que favorece ha
favorecido el crecimiento de las Cyanobacteria, lo que produce que el oxígeno este siendo
utilizado para la oxidación de la materia orgánica, representado en los altos valores de la
demanda biológica de oxígeno, y por tanto se está consumiendo el oxígeno que debería ser
utilizado para el desarrollo de la fauna y flora acuática. Entre los efectos al ecosistema, se
encuentra el cambio en la calidad del agua, y la posible elevación del pH, lo que podría
provocar la desaparición de peces, por toxicidad, y de las plantas por la falta de oxígeno.
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6.0 RECOMENDACIONES
Se recomienda realizar monitoreos de calidad de agua, sedimentos, biológico e hidrobiológico;
el primer año trimestral teniendo como inicio el mes de enero (temporada de verano) mes que
se incrementa la temperatura y se presentan cambios en los ciclos biológico. De seguir
persistiendo los niveles altos de contaminación se sugerirá aumentar la frecuencia de
monitoreos.
6.1 CALIDAD AMBIENTAL E HIDROBIOLOGICO
De análisis de los resultados indican que las lagunas actualmente se encuentran
contaminadas, así lo demuestran los niveles altos de los parámetros fisicoquímicos de calidad
del agua (DBO5) e hidrobiológica presencia de cyanophytas. Ello debido al mal manejo que
se viene dando a las lagunas.
Colocar avisos donde se prohíba el uso deportivo, ya que las condiciones de las aguas son
dañinas para la salud humana, pueden ocasionar malestar estomacal irritación a los ojos
infecciones a la piel.
Durante el mantenimiento (corte del porte del gras) se debe de proteger a las lagunas, ya
que al caer por acción del viento los excedentes de la poda. Estas se descomponen y
producen cambios de color y mal olor en las lagunas.
La Junta de Propietarios del Condominio Lagunas de Puerto Viejo de requerir la modificación,
inclusión de especies o manejo de la laguna, debe realizar previa consulta y autorización del
Autoridad Nacional del Agua (ANA) y del Servicio Nacional de Áreas Naturales Protegidas
(SERNANP) y (Ministerio de la Producción) PRODUCE.
Se recomienda realizar el estudio de soporte de carga del ecosistema para determinar la
densidad de siembra y evitar procesos de mortalidad y de alteración del ecosistema.
Se recomienda no aplicar urea, abono orgánico, azúcar, dado que estos productos permite
que haya mayor proliferación de cyanophytas, las cuales fijan el nitrógeno y por ende hay
mayor demanda de DBO5, incremento del pH.
Al haber mayor abundancia de Cyanophitas, también hay mayor degradación de estas
especies lo que le dan el olor a la laguna, además las cyanophitas son las que le dan la
coloración al agua.
De los resultados se recomienda monitorear el parámetro de clorofila en 2 horarios (diurno
y nocturno).
Se recomienda suspender la aplicación de enzimas, ya que estas solo se aplican para sistemas
artificiales (Plantas de tratamiento de aguas residuales, lagunas de oxidación y manejo de
aguas servidas).
Para una mejor oxigenación se recomienda implementar un sistema de aireación superficial
y de media agua, utilizando piletas y mangueras difusoras, respectivamente. Este sistema
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69
ayudará a disminuir la temperatura de la superficie y mantendrá la oxigenación de media
agua.
6.2 BIOLÓGICO (FLORA Y AVIFAUNA)
Implementar un sistema de monitoreo anual, durante las 2 estaciones diferenciadas, época
seca y húmeda.
Durante el mantenimiento (extracción o retiro del junco) de las lagunas por motivos de
estética se realice de manera controlada, ya que esta forma parte del hábitat de las especies
de avifauna tanto las aves residentes como migratorias. Se realice bajo la supervisión de un
especialista (biólogo).
El mantenimiento de los árboles y palmeras del condominio se debe de realizar en periodos
de baja población de aves migratorias, ya que las copas de estos son lugares de albergue y
anidamiento de especies como cormoranes y garzas.
En el ecosistema de las lagunas alberga aves insectívoras como los mosqueros, cucaracheros
y golondrinas las cuales cumplen un rol importante como controladores biológicos. Por lo
tanto, es importante su protección.
Se debe de colocar avisos donde se indique la no perturbación de las aves, ya que la
temporada de migración coincide con la temporada de verano, se recomienda encontrar un
balance entre las actividades que se realizan en la laguna, este ecosistema es una ruta
migratoria de muchas de las especies evaluadas.
Para el tema de vectores (insectos) se recomienda colocar trampas en los contornos de las
lagunas.
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7.0 ANEXOS
ANEXOS
ANEXO A: GALERIA DE FOTOS DE FLORA
ANEXO B: GALERIA DE FOTOS DE AVES
ANEXO C: INFORME DE ENSAYO MUESTREO HIDROBIOLÓGICO
ANEXO D: INFORMES DE ENSAYO CALIDAD DEL AGUA – SEDIMENTOS Y GALERIA DE FOTOS
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ANEXO A: GALERÍA DE
FOTOS DE FLORA
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Registro fotográfico de zonas de muestreo
Punto: LPV-01 Punto: LPV-02
Punto: LPV-03 Punto: LPV-04
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Registro Fotográfico de Flora
Punto: LPV-03 Punto: LPV-01 y LPV-02
Heliotropium curassavicum L. Alternanthera pubiflora (Benth.) Kuntze
"Hierba del alacrán"
Punto: LPV-01 y LPV-02
Lippia nodiflora (L.) Michx Sesuvium portulacastrum (L.) L. "Capín" Punto: LPV-01 y LPV-02
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Punto: LPV-01 y LPV-02 Sporobolus virginicus (L) Kunt.
"Grama"
Punto: LPV-01 y LPV-02
Schoenoplectus californicus (C.A. Mey.) Soják "Junco”
Punto: LPV-02 y LPV-03
Typha dominguensis Persson "Totora"
Punto: LPV-01, LPV-02 y LPV-03
Schoenoplectus americanus (Pers.) Volkart ex Schinz & R. Keller"Junco"
Punto: LPV-01, LPV-02, LPV-
03 y LPV-04
Distichlis spicata (L)Greene "Grama salada"
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ANEXO B: GALERÍA DE
FOTOS DE AVIFAUNA
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Foto 1. Vista panorámica de la laguna grande
Foto 2. Segunda sección de la laguna grande
Foto 3. Vista de la laguna grande desde el cerco perimétrico
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Foto 4. Vista panorámica de la laguna pequeña
Foto 5. Lado derecho de la laguna pequeña
Foto 6. Vista de la laguna pequeña desde el cerco perimétrico
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Foto 7. Pato azulón Anas platyrhynchos. Macho y hembra.
Foto 8. Pato azulón Anas platyrhynchos. Polluelos.
Foto 9. Pato gargantillo Anas bahamensis
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Foto 10. Zambullidor grande Podiceps major. Individuo adulto.
Foto 11. Zambullidor grande Podiceps major. Polluelo.
Foto 12. Tórtola melódica Zenaida meloda.
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Foto 13. Amazilia costeña Amazilia amazilia
Foto 14. Polla de agua común Gallinula galatea
Foto 15. Gallareta andina Fulica ardesiaca
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Foto 16. Gallareta andina Fulica ardesiaca
Foto 17. Gallareta andina Fulica ardesiaca
Foto 18. Chorlo gritón Charadrius vociferus
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Foto 19. Playero coleador Actitis macularius
Foto 20. Gaviota de capucha gris Chroicocephalus cirrocephalus
Foto 21. Gaviota de capucha gris Chroicocephalus cirrocephalus
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Foto 22. Gaviota de Franklin Leucophaeus pipixcan
Foto 23. Huaco común Nycticorax nycticorax. Individuo juvenil
Foto 24. Garza grande Ardea alba
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Foto 25. Garcita blanca Egretta thula
Foto 26. Garcita azul Egretta caerulea. Individuo adulto.
Foto 27. Nido de junquero Phleocryptes melanops
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Foto 28. Mosquero bermellón Pyrocephalus rubinus. Macho.
Foto 29. Mosquero bermellón Pyrocephalus rubinus. Hembra.
Foto 30. Cucarachero común Troglodytes aedon
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Foto 31. Gorrión casero Passer domesticus. Hembra.
Foto 31. Gorrión casero Passer domesticus. Macho.
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ANEXO C: INFORME DE
ENSAYO
HIDROBIOLÓGICO
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ANEXO D:
INFORMES DE ENSAYO
DE CALIDAD DE AGUA Y SEDIMENTOS
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