BAB III METODOLOGI PENELITIANrepository.sari-mutiara.ac.id/26/5/CHAPTER III-V.pdfSebanyak 5 g kalium...

39

BAB III

METODOLOGI PENELITIAN

Metode penelitian ini meliputi determinasi tumbuhan, pengumpulan sampel,

pengolahan sampel, pembuatan simplisia, pemeriksaan karakterisasi simplisia,

pembuatan ekstrak dengan cara maserasi, setelah itu diukur volume total urin tikus,

pengujian diuretik secara oral pada tikus putih jantan. Data yang diperoleh dianalisis

dengan ANAVA (analisa variansi) satu jalan untuk mengetahui ada atau tidaknya

perbedaan di tiap perlakuan.

3.1 Lokasi dan Waktu Penelitian

Penelitian dilakukan di Laboratorium Farmasi Fakultas Farmasi dan Ilmu

Kesehatan Universitas Sari Mutiara Indonesia Medan pada bulan Juli-Agustus 2017.

3.2 Alat dan Bahan

3.2.1 Alat

Alat-alat yang digunakan dalam penelitian ini adalah kandang hewan, sarung

tangan dan tempat minum hewan uji, alat-alat gelas laboratorium, alat maserasi,

aluminium foil, blender (National), neraca kasar (Ohaus), neraca listrik (Mettler

Tolledo), neraca hewan (GW-1500), freeze dryer, rotary evaporator, mortar dan

stamfer, sudip, spatula, oral sonde tikus, spuit 3 ml dan 10 ml, kertas saring, wadah

penampung volume urin modifikasi.

UNIVERSITAS SARI MUTIARA-INDONESIA

40

3.2.2 Bahan

Bahan-bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah daun salam

(Syzygium polyanthum), aquadest, tablet furosemid, CMC (carboxy metal cellulose)

0,5 %. Bahan-bahan kimia yang berkualitas pro analisis dengan produksi E.Merck,

yaitu etanol 95%, asam nitrat, natrium klorida 0,9%, asam sulfat, asam klorida, eter,

kloroform, natrium sulfat andhidrat, timbale ( II ) asetat, isopropanol, etil asetat,

serbuk seng, serbuk magnesium, besi ( III ) klorida, asam asetat andhidrat, metanol,

perak nitrat, kalium kromat.

3.3 Pembuatan Larutan Pereaksi

3.3.1 Besi ( III) klorida 10% b/v

Sebanyak 10 gr besi (III) klorida dilarutkan dalam air suling sampai 100 ml

(Farmakope Indonesia, 1979).

3.3.2 Asam klorida 2 N b/v

Sebanyak 72,93 gr asam klorida (p) diencerkan dengan air suling sampai 1000

ml (Farmakope Indonesia, 1979).

3.3.3 Natrium hidroksida 2 N b/v

Sebanyak 80,02 gr kristal natrium hidroksida dilarutkan dalam air suling

hingga 1000 ml (Farmakope Indonesia, 1979).

3.3.4 Timbal (II) asetat 0,4 M b/v

Timbal (II) asetat sebanyak 15,7 gr dilarutkan dalam air suling hingga 100 ml



41

3.3.5 Pereaksi Molish

Sebanyak 3 gr ᵅ-naftol dilarutkan dalam asam nitrat 0,5 N secukupnya hingga

100 ml (Materia Medika Indonesia, 1978).

3.3.6 Pereaksi Mayer

Sebanyak 5 g kalium iodida dilarutkan dalam 20 ml air suling kemudian

ditambahkan larutan 1,36 g merkuri (II) klorida dalam 60 ml air. Larutan dikocok dan

ditambahkan air suling hingga 100 ml (Materia Medika Indonesia, 1978).

3.3.7 Pereaksi Bouchardat

Sebanyak 4 g kalium iodide dalam 20 ml air suling kemudian ditambahkan 2

g iodium sambil diaduk sampai larut, lalu ditambah air suling hingga 100 ml (Materia

Medika Indonesia, 1978).

3.3.8. Pereaksi Dragendorff

Sebanyak 8 g bismuth nitrat dilarutkan dalam asam nitrat 20 ml kemudian

dicampur dengan larutan kalium iodide sebanyak 27,2 g dalam 50 ml air suling.

Campuran didiamkan sampai memisah sempurna. Larutan jernih diambil dan

diencerkan dengan air secukupnya hingga 100 ml (Materia Medika Indonesia, 1978).

3.3.9. Natrium klorida 0,9 % b/v

Sebanyak 0,9 g natrium klorida dilarutkan dalam air suling 100 ml


3.3.10. Natrium klorida 0,0113 N

Natrium klorida sebanyak 665,0 mg (setelah dioven pada T 1100C selama 2

jam) dilarutkan dalam air suling 100 ml di dalam air suling 100 ml di dalam labu ukur

1000 ml, lalu ditambahkan air suling sampai pada tanda tara (Basset et al, 1994).


42

3.3.11. Perak nitrat 0,0141 N

Perak nitrat sebanyak 2,395 g dilarutkan dalam air suling 100 ml didalam labu

ukur 1000 ml, lalu ditambahkan air suling sampai pada tanda tara (Basset et al, 1994)

3.3.12. Kalium kromat 5%

Sebanyak 5 g kalium kromat dilarutkan dalam air suling 100 ml ( Basset et al,

1994 ).

3.4 Penyiapan Sampel

Penyiapan sampel meliputi determinasi tumbuhan, pengumpulan sampel, dan

pengolahan sampel.

3.4.1 Determinasi Tumbuhan

Determinasi tumbuhan dilakukan di Herbarium Medanese (MEDA)

Universitas Sumatera Utara, Medan. Hasil determinasi dapat dilihat pada lampiran

1.

3.4.2 Pengumpulan Sampel

Sampel diambil dengan cara purposif artinya tanpa membandingkan dengan

daerah lain. Sampel diambil dari Kelurahan Pujidadi Kecamatan Binjai Selatan.

Gambar dapat dilihat pada lampiran 2.

3.4.3 Pembuatan simplisia

Simplisia yang telah dikumpulkan dicuci dengan air mengalir sampai bersih,

setelah itu ditiriskan dan disebarkan diatas kertas perkamen sehingga airnya terserap.

Kemudian sampel ditimbang sebagai berat basah sebanyak 9 kg lalu dikeringkan pada

suhu kamar atau diangin-anginkan terhindar dari pengaruh sinar matahari secara


43

langsung. Simplisia disebut sudah kering jika simplisia diremas akan hancur,

kemudian ditimbang sebagai berat kering yaitu 2,9 kg, selanjutnya simplisia diserbuk

dengan blender. Disimpan dalam wadah tertutup rapat, terlindung dari panas dan

sinar matahari.

3.5 Pembuatan Ekstrak Etanol

Pembuatan ekstrak etanol daun salam dilakukan dengan metode maserasi

dengan menggunakan pelarut etanol 70%. Caranya, sebanyak 500 g serbuk simplisia

daun salam dimasukkan kedalam bejana kaca kemudian dituangi cairan penyari

sebanyak 375 mL sampai semua simplisia terendam dan di tutup dibiarkan selama 5

hari terlindung dari cahaya sambil sesekali diaduk kemudian disaring, ampas

dimaserasi dengan 125 mL etanol 70% disimpan dalam bejana tertutup di tempat

sejuk, terlindung dari cahaya matahari selama 2 hari, kemudian di enaptuangkan.

Maserat yang diperoleh diuapkan dengan menggunakan rotary evaporator ± 400C

kemudian dipekatkan (Ditjen POM, 1979).

3.6 Karakterisasi Simplisia

Pemeriksaan karakterisasi simplisia meliputi, penetapan kadar abu total,

penetapan kadar abu tidak larut dalam asam, penetapan kadar sari larut dalam air,

penetapan kadar sari larut dalam etanol, pemeriksaan makroskopik, pemeriksaan

mikroskopik dan pemeriksaan organoleptis.

3.6.1. Penetapan Kadar Abu Total

Zat ditimbang ±2 g dengan seksama dan dimasukkan kedalam krus porselin

bertutup yang telah dipijar dan ditara, kemudian ditarakan. Kurs dipijar perlahan-


44

lahan sampai arang habis kemudian didinginkan dan ditimbang sampai diperoleh

bobot yang tetap (Ditjen POM, 2000).

3.6.2. Penetapan Kadar Abu Tidak Larut Dalam Asam

Abu yang diperoleh dari penetapan kadar abu total didihkan dengan 25 ml

asam klorida encer selama 5 menit. Bagian yang tidak larut dalam asam

dikumpulkan, disaring dengan kertas saring, lalu dicuci dengan air panas. Kemudian

residu dan kertas saring dipijarkan sampai diperoleh bobot tetap, didinginkan dan

ditimbang beratnya (Ditjen POM, 2000).

3.6.3 Penetapan Kadar Sari Larut Dalam Air

Sebanyak 5 g simplisia dimaserasi selama 24 jam dalam 100 ml air kloroform

(2,5 ml kloroform dalam akuades sampai 1000ml) dengan menggunakan labu

bersumbat sambil sekali-kali dikocok selama 6 jam pertama dan kemudian dibiarkan

selama 18 jam. Saring, uapkan 20 ml filtrate hingga kering dalam cawan dangkal

berdasar rata yang telah ditara, panaskan sisa pada suhu 1050 hingga bobot tetap.

Hitung kadar dalam persen sari yang larut dalam air, dihitung terhadap bahan yang

telah dikeringkan diudara (Materia Medika Indonesia, 1978).

3.6.4. Penetapan Kadar Sari Larut dalam Etanol

Sebanyak 5 g simplisia dimaserasi selama 24 jam dalam 100 ml etanol 95%

dengan menggunakan botol bersumbat warna coklat sambil sekali-kali dikocok

selama 6 jam pertama, kemudian dibiarkan selama 18 jam. Saring cepat dengan

menghindarkan Sejumlah 20 ml filtrat hingga kering dalam cawan dangkal berdasar

rata yang telah ditara, panaskan sisa pada suhu 1050 hingga bobot tetap. Hitung kadar


45

dalam persen sari yang larut dalam etanol, dihitung terhadap bahan yang telah

dikeringkan diudara (Materia Medika Indonesia, 1978).

3.6.5. Pemeriksaan Makroskopik dan Organoleptik Simplisia

Pemeriksaan makroskopik dilakukan pada daun salam dengan mengamati

morfologi luar. Pemeriksaan organoleptis terhadap tumbuhan meliputi pemeriksaan

bau, warna dan rasa dari daun salam.

3.7. Skrining Fitokimia Serbuk Simplisia

Skrining Fitokimia Serbuk Simplisia diawali dengan pemeriksaan

organoleptis kemudian dilanjutkan dengan pemeriksaan golongan alkaloida,

glikosida, saponin, tanin, dan steroida/triterpenoida.

3.7.1. Pemeriksaan Alkaloida

Serbuk simplisia ditimbang sebanyak 0,5 g kemudian ditambahkan 1 ml asam

klorida 2 N dan 9 ml air suling, dipanaskan diatas penangas air selama 2 menit

kemudian didinginkan dan disaring. Diambil 3 tabung reaksi, kemudian masukkan 3

tetes filtrat kedalam masing-masing tabung.

Tabung I : ditambahkan 1-3 tetes pereaksi Mayer LP menghasilkan endapan

putih/kuning

Tabung II : ditambahkan 1-3 tetes pereaksi Bouchardat menghasilkan endapan

coklat hitam

Tabung III : ditambahkan 1-3 tetes pereaksi Dragendorff menghasilkan endapan

merah bata


46

Jika terdapat endapan putih dengan 2 atau 3 dari pengujian diatas, maka

simplisia tersebut dinyatakan mengandung alkaloid (Marjoni, 2016).

3.7.2. Pemeriksaan Saponin

Sebanyak 0,5 g simplisia dimasukkan kedalam tabung reaksi lalu

ditambahkan 10 ml air suling panas kemudian didinginkan. Setelah itu kocok kuat-

kuat selama 10 detik, terbentuk buih atau busa setinggi 1-10 cm dan tidak hilang

selama tidak kurang dari 10 detik. Pada penambahan 1 tetes larutan asam klorida 2 N

buih atau busa tidak hilang maka simplisia tersebut mengandung saponin (Marjoni,

2016).

3.7.3. Pemeriksaan Flavonoida

Sebanyak 10 g serbuk simplisia dipanaskan dengan 10 ml air panas,

dididihkan selama lebih kurang 5 menit dan disaring dalam keadaan panas. Diambil 5

ml filtrat ditambahkan 0,1 g serbuk magnesium, 1 ml asam klorida pekat dan 2 ml

amil alkohol, dikocok dan dibiarkan memisah. Adanya flavonoid ditunjukkan dengan

terbentuknya warna merah, kuning atau jingga pada lapisan amil alcohol (Marjoni,

2016).

3.7.4. Pemeriksaan Tanin

Sebanyak 0,5 g simplisia diekstrak menggunakan 10 ml aquadest, kemudian

hasil ekstraksi disaring dan filtrat yang diperoleh diencerkan dengan aquadest sampai

tidak berwarna. Hasil pengenceran diambil sebanyak 2 ml, kemudian ditambahkan

dengan 1-2 tetes besi (III) klorida. Jika terjadi warna biru atau hijau kehitaman, maka

simplisia tersebut dinyatakan mengandung tanin (Marjoni, 2016).


47

3.7.5 Pemeriksaan Steroida/Triterpenoida

Sebanyak 1 g sampel dimaserasi dengan 20 ml N-Heksana selama 2 jam.

Kemudian disaring dan diuapkan dalam cawan penguap, sisanya ditambahkan 2 tetes

asam asetat anhidrat dan 1 tetes pekat. Jika terdapat warna ungu atau merah

kemudian berubah menjadi warna hijau biru maka simplisia tersebut dinyatakan

mengandung steroida triterpenoida (Marjoni, 2016).

3.8 Penyiapan Bahan Uji, Kontrol dan Obat Pembanding

Ekstrak etanol daun salam dibuat dalam bentuk suspensi CMC 0,5 %, dosis

EEDS 100 mg/kg bb, 200 mg/kg bb dan 300 mg/kg bb. Obat pembanding furosemid

dosis 3,6 mg/kg bb dibuat dalam bentuk suspensi. Kontrol yang digunakan adalah

suspensi CMC 0,5 %.

3.9 Pembuatan Suspensi CMC-Na 0,5%

Sebanyak 0,5 % CMC ditaburkan kedalam lumpang yang berisi aquadest yang

panas sebanyak 10 ml gerus cepat hingga diperoleh masa yang transparan, kemudian

setelah kembang digerus lalu diencerkan dengan sedikit air, kemudian dimasukkan

kedalam labu tentukur 100 ml, kemudian volumenya dicukupkan hingga 100 ml.

3.10 Pembuatan Suspensi Furosemid

Furosemid sebanyak 40 mg yang telah digerus halus dimasukkan ke dalam

lumpang kemudian ditambahkan suspensi CMC-Na 0,5% sedikit demi sedikit sambil

terus digerus, kemudian dimasukkan ke dalam labu tentukur 10 ml, volumenya

dicukupkan 10 ml. hingga didapatkan konsentrasi 0,4% suspensi furosemid.


48

3.11. Pembuatan Suspensi Ekstrak

Ekstrak etanol daun salam 1 g ditambahkan suspensi CMC-Na 0,5% sedikit

demi sedikit sambil terus digerus lalu masukkan kedalam labu tentukur 50 ml,

kemudian dicukupkan volumenya hingga 50 ml.

3.12 Hewan Percobaan

Hewan pecobaan yang digunakan didalam percobaan ini adalah tikus putih

jantan yang sehat dengan berat badan antara 200-250 g sebanyak 25 ekor, dibagi

dalam 5 kelompok dimana setiap kelompok terdiri dari 5 ekor tikus.

3.13 Persiapan Hewan Percobaan

Hewan pecobaan yang digunakan di dalam percobaan ini adalah tikus putih

jantan yang sehat dan di aklimatisasi selama 2 minggu.

Tikus diletakkan di dalam kandang yang terbuat dari silinder plastik yang

dihubungkan dengan corong besar dan botol penampung dibawahnya untuk

menampung urin yang dikeluarkan. Volume urin yang dieksresikan dicatat selama 6

jam.

Tikus yang memenuhi kriteria seleksi ialah tikus dengan

×100%

Lamanya percobaan adalah 6 jam (Ditjen POM Depkes RI,1993)


49

3.14 Prosedur Kerja Untuk Pengujian Farmakologi

Tikus dipuasakan tidak diberi makan selama ±18 jam dengan tetap diberi

minum,kemudian bobot tikus ditimbang. Masing-masing tikus diberi perlakuan yang

di bagi menjadi 5 kelompok yaitu :

Kelompok I : diberi suspensi CMC-Na 0,5% (kontrol negatif),

Kelompok II : diberi suspensi furosemid 3,6 mg/kg bb (kontrol positif)

Kelompok III : diberi suspensi bahan uji coba EEDS dosis 100 mg/kg bb

Kelompok IV : diberi suspensi bahan uji coba EEDS dosis 200 mg/kg bb

Kelompok V : diberi suspensi bahan uji coba EEDS dosis 300 mg/kg bb

Tikus diletakkan di dalam kandang metabolik yang dimodifikasi terbuat dari

silinder plastik yang dihubungkan dengan corong besar dan botol penampung

dibawahnya untuk menampung urin. Volume urin yang dieksresikan dicatat selama 6

jam sebagai urin total (Ditjen POM, 1993).

3.15 Analisis Data

Data-data hasil pengamatan efek ekstrak etanol daun alpukat sebagai diuretik

pada tikus putih dianalisis dengan metode ANAVA (analisis variansi) satu jalan

dengan tingkat kepercayaan 95% untuk mengetahui ada atau tidaknya perbedaan di

tiap perlakuan.


50

BAB IV

HASIL PENELITIAN DAN PEMBAHASAN

4.1 Hasil Identifikasi Tanaman

Identifikasi tanaman dilakukan di Herbarium Medanese (MEDA) Universitas

Sumatera Utara. Hasil identifikasi menunjukkan bahwa tanaman yang diteliti adalah

daun salam (Syzygium polyanthum). Hasil identifikasi tanaman

4.2 Hasil Pemeriksaan Karakterisasi

4.2.1 Hasil Pemeriksaan Organoleptik dan Makroskopik

Hasil pemeriksaan organoleptis simplisia daun salam menggunakan panca

indra dengan mendeskripsikan bentuk, warna, bau dan rasa. Daun salam berbentuk

lonjong sampai bulat telur pada helaian daun, pagkal dang ujung daun meruncing,

tepi daun rata, pertulangan menyirip dan permukaan atas daun licin. Warna daun

hijau tua segar pada permukaan atas dan berwarna hijau muda pada permukaan

bawah serta berwarna kecoklatan pada daun yang sudah kering. Bau aromatik lemah

serta rasa nya khelat.

4.2.2 Hasil pemeriksaan Mikroskopik

Hasil pemeriksaan mikroskopik serbuk simplisia daun salam berupafragmen

epidermis bawah, hablur kalsium oksalat, fragmen epidermis atas, rambut penutup,

pembuluh kayu dengan penebalan bentuk spiral dan tangga dan mesofil. Pemeriksaan

mikroskopik dilakukan untuk mengetahui jaringan penyusun dari simplisia tanaman

dengan mengamati ciri-ciri mikroskopik di bawah mikroskop, sehingga dapat


51

digunakan untuk memastikan kebenaran dari simplisia yang digunakan dalam

penelitian.

Gambar 4.1 Hasil pemeriksaan mikroskopik serbuk simplisia daun salam

4.2.3 Hasil Pemeriksaan Karakteristik Simplisia

Hasil karakterisasi serbuk simplisia Daun salam (Syzygium polyanthum) dapat

dilihat pada tabel 4.2 dibawah ini :


52

Tabel 4.1 Hasil karakterisasi simplisia daun salam

NO Parameter Hasil % Panduan(FHI)

1 Kadar sari larut air 25,3% >24,6%

2 Kadar sari larut dalam etanol 26,3% >24,3%

3 Kadar abu total 1,6% 24,3% yang berarti memenuhi

syarat. Kadar abu total simplisia adalah 1,6% yang berarti memenuhi persyaratan

umum yaitu

53

tanin, uji flavonoid, uji saponin hasil pengamatan positif dengan warna biru untuk uji

tanin, jingga untuk uji flavonoid dan busa stabil pada uji saponin. Untuk uji steroid

hasil negatif berupa filtrat berwarna kuning.

4.4 Hasil Pengujian Efek Diuretik

Pengujian efek diuretik ekstrak etanol daun salam (Syzygium polyanthum) dan

parameter volume urin terhadap tikus putih jantan.Jumlah urin yang diukur

bermanfaat menentukan adanya gangguan kelainan dalam keseimbangan cairan

tubuh. Volume urin berkaitan pada penggunaan diuretik karna dapat menyebabkan

terjadinya diuresis. Diuretik adalah obat yang dapat menambah volume urin

(Soekardjo, 1995).

Tabel 4.3 Data rata-rata volume urin kumulatif tiap jam pengamatan.

Kelompok Pengujian Volume urin tiap jam (ml)

1 2 3 4 5 6

CMC-Na 0,5% 0,14 0,15 0,25 0,32 0,33 0,32

S Furosemide 3,6 mg/kg bb 2,30 1,89 1,24 3,20 2,75 3,89

EEDS 100 mg/kg bb 0,88 1,20 1,35 0,79 1,32 1,27

EEDS 200 mg/kg bb 1,20 1,38 1,42 1,02 1,53 1,32

EEDS 300 mg/kg bb 2,28 1,70 1,19 2,90 2,41 3,28

Data volume urin kumulatif pada tabel 3.3 dapat dilihat pada volume urin secara

keseluruhan selama waktu pengamatan 6 jam. Berdasarkan data kumulatif diatas,

kelompok perlakuan

sebagai kontrol negatif sebanyak 0,32 ml, kelompok

perlakuan S.Furosemid sebagai kontrol positif diperoleh sebanyak 3,89 ml, sedangkan

kelompok EEDS 100 mg/kg bb sebanyak 1,27 ml, kelompok EEDS 200mg/kg bb

sebanyak 1,32 ml dan kelompok EEDS 300 mg/kg bb sebanyak 3,28 ml.


54

Data hasil volume urin kumulatif pada tabel 3.3 menunjukkan kelompok

perlakuan CMC-Na 0,5% menunjukkan data paling rendah yaitu 0,32 ml. Hal ini

terjadi karna CMC-Na 0,5% tidak dapat meningkatkan jumlah ekskresi urin.

Kelompok perlakuan S.Furosemid 3,6 mg/kg bb menunjukkan rata-rata volume urin

kumulatif yang lebih tinggi yaitu 3,89 ml dibandingkan dengan kelompok EEDS 100

mg/kg bb dengan rata-rata volume urin yaitu 1,27 ml, EEDS 200 mg/kg bb dengan

rata-rata volume urin yaitu 1,32 ml dan EEDS 300 mg/kg bb dengan rata-rata volume

urin yaitu 3,28 ml. Hal ini menunjukkan bahwa kelompok perlakuan EEDS 300

mg/kg bb memiliki efek diuretik yang hampir sama dengan S.Furosemid dosis 3,6

mg/kg bb yang diamati dari jam ke 1-6 terdapat penambahan volume urin ± 1,5 ml

tiap jam.

Volume urin rata-rata setiap jam selama waktu 6 jam, dapat dilihat pada

gambar 3.2.

Gambar 3.2 Volume urin rata-rata

0

0.5

1

1.5

2

2.5

3

3.5

4

4.5

1 2 3 4 5 6

Volume urin tiap jam (ml)

CMC-Na 0,5%

S Furosemid 3,6 mg/kgbb

EEDS 100 mg/kg bb

EEDS 200 mg/kg bb

EEDS 300 mg/kg bb


55

Gambar 3.2 menunjukkan bahwa pada jam ke-6, semua sediaan uji dan

kelompok S.Furosemid dosis 3,6 mg/kg bb sudah menunjukkan efek diuretik. EEDS

dosis 300 mg/kg bb sangat bagus dibandingkan dengan EEDS 200 mg/kg bb dan

EEDS dosis 100 mg/kg bb. Hal tersebut sudah terlihat pada jam ke-1 volume urin

EEDS dosis 300 mg/kg bb 2,28 ml mempunyai aktivitas diuretik yang hampir sama

dengan S.Furosemid dosis 3,6 mg/kg bb 2,30 ml. Hal tersebut menunjukkan onset of

action dari EEDS dosis 300 mg/kg bb dan S.Furosemid dosis 3,6 mg/kg bb memiliki

efek yang sama. S.Furosemid mempunyai onset 2,0 sampai 1 jam setelah pemberian

secara oral dengan durasi 2-6 jam.

Senyawa metabolit sekunder yang berperan pada aktivitas diuretik EEDS ini

adalah flavonoid, tanin dan saponin. Mekanisme kerja flavonoid sebagai diuretik

yaitu mengeluarkan simpanan natrium dari dalam tubuh dan mengubah keseimbangan

Na, dengan demikian terjadilah peningkatan volume urin. Tanin merupakan sebagai

diuretik yaitu dengan menghambat rearbsorpsi Na⁺ dan K⁺ sehingga terjadi

peningkatan elektrolit ditubulus sehingga terjadi diuresis, saponin merupakan

senyawa untuk merangsang ginjal untuk meningkatkan absorbsi diuretik. Dengan

demikian kandungan flavonoid, tanin dan saponin yang terkandung dalam EEDS

dapaat menimbulkan efek diuretik.


56

Pengukuran volume urin pada jam ke-1 sampai pada jam ke-6 pada setiap

kelompok uji dapat dilihat pada tabel dibawah ini :

Tabel 4.4 Hasil pengukuran volume urin jam ke-1 pada tikus kelompok uji.

NO Kelompok Pengujian Volume urin tiap jam (ml)

T.I T.II T.III T.IV T.V

1 CMC-Na 0,5% 0,25 0,28 0,31 0,27 0,41

2 S.Furosemid 3,6 mg/kg bb 1,25 1,72 2,75 3,43 2,81

3 EEDS 100 mg/kg bb 1,12 1,22 1,13 2,19 1,31

4 EEDS 200 mg/kg bb 1,21 1,37 1,16 2,21 2,13

5 EEDS 300 mg/kg bb 1,24 1,56 2,24 2,31 2,28

Keterangan T.I-T.III = Tikus 1-Tikus 3

Gambar 4.3 Volume urin jam ke-1 pada tikus putih jantan.

0

0.5

1

1.5

2

2.5

3

3.5



1 CMC-Na 0,5%

2 S.Furosemid 3,6 mg/kgbb

3 EEDS 100 mg/kg bb

4 EEDS 200 mg/kg bb

5 EEDS 300 mg/kg bb


57




1 CMC-Na 0,5 % 0,23 0,31 0,42 0,27 0,30


3 EEDS 100 mg/kg bb 0,90 1,14 1,25 2,41 2,32

4 EEDS 200 mg/kg bb 1,12 1,22 1,30 2,62 2,21

5 EEDS 300 mg/kg bb 1,15 2,20 2,36 3,19 2,98

Keterangan T.I-T.III = Tikus 1-Tikus 3





1 CMC-Na 0,5 % 0 0 0,3 0 0


3 EEDS 100 mg/kg bb 1,08 1,60 1,78 2,04 1,68

4 EEDS 200 mg/kg bb 1,64 1,68 1,20 2,52 2,18

5 EEDS 300 mg/kg bb 2,04 1,88 2,86 3,08 2,80

0

0.5

1

1.5

2

2.5

3

3.5

4

T.I T.II T.III T.IV T.V T.VI


1 CMC-Na 0,5 %


3 EEDS 100 mg/kg bb

4 EEDS 200 mg/kg bb

5 EEDS 300 mg/kg bb


58

Gambar 4.5Volume urin jam ke-3 pada tikus putih jantan.




1 CMC N-a 0,5 % 0,3 0,2 0,5 0,7 0


3 EEDS 100 mg/kg bb 2,04 1,42 1,60 1,96 1,68

4 EEDS 200 mg/kg bb 2,16 1,92 1,82 2,24 2,02

5 EEDS 300 mg/kg bb 2,26 1,98 2,14 2,32 2,48


00.5

11.5

22.5

33.5



1 CMC-Na 0,5 %


3 EEDS 100 mg/kg bb

4 EEDS 200 mg/kg bb

0

0.5

1

1.5

2

2.5

3



1 CMC N-a 0,5 %


3 EEDS 100 mg/kg bb

4 EEDS 200 mg/kg bb

5 EEDS 300 mg/kg bb


59




1 CMC-Na 0,5 % 0 0 0 0,2 0


3 EEDS 100 mg/kg bb 1,64 1,72 1,80 1,74 1,68

4 EEDS 200 mg/kg bb 2,10 2,00 2,15 2,05 2,00

5 EEDS 300 mg/kg bb 2,30 2,40 2,78 2,14 2,10

Gambar 3.7Volume urin jam ke-5 pada tikus putih jantan.




1 CMC-Na 0,5 % 0 0 0 0 0


3 EEDS 100 mg/kg bb 1,52 1,28 1,48 1,30 1,55

4 EEDS 200 mg/kg bb 1,74 1,64 1,88 1,64 1,80

5 EEDS 300 mg/kg bb 1,80 1,96 1,98 1,86 2,05

0

0.5

1

1.5

2

2.5

3

3.5



1 CMC-Na 0,5 %


3 EEDS 100 mg/kg bb

4 EEDS 200 mg/kg bb

5 EEDS 300 mg/kg bb


60

Kelompok

perlakuan

tikus Volume urin tiap jam (ml)

1 2 3 4 5 6

CMC Na 0,5 % 1 0,25 0,23 0 0,3 0 0

2 0,28 0,31 0 0,2 0 0

3 0,31 0,42 0,3 0,5 0 0

4 0,27 0,27 0 0,7 0,2 0

5 0,41 0,30 0 0 0,1 0

S.Furosemid 3,6

mg/kg BB

1 1,25 1,20 2,45 2,86 2,50 2,12

2 1,72 2,40 1,92 2,48 2,80 2,24

3 2,75 2,90 2,10 2,52 3,10 2,16

4 3,43 3,24 3,42 2,76 2,20 2,32

5 2,81 3,60 3,00 2,82 2,42 2,48

EEDS 100 mg/kg

BB

1 1,12 0,90 1,08 2,04 1,64 1,52

2 1,22 2,14 1,60 1,42 1,72 2,28

3 1,13 1,25 1,78 1,60 1,80 1,48

4 2,19 2,41 2,04 1,96 1,74 1,30

5 1,31 2,32 1,68 1,68 1,68 1,55

EEDS 200mg/kg

BB

1 1,21 1,12 1,64 2,16 2,10 1,74

2 1,37 1,22 1,68 1,92 2,05 1,64

3 1,16 1,30 1,20 1,82 2,15 1,88

4 2,2,1 2,62 2,52 2,24 1,05 1,64

5 2,13 2,21 2,18 2,02 2,00 1,80

1 1,24 2,15 2,04 2,26 2,30 1,80

EEDS 300 mg/kg

bb

2 1,5 2,50 1,88 1,98 2,40 1,96

3 2,24 2,36 2,86 2,94 2,78 1,98

4 2,31 3,19 3,08 2,32 2,14 1,86

5 2,28 2,98 2,80 2,48 2,00 2,05

Hasil yang diperoleh dari pengamatan diuji secara statistik EEDS dengan

dosis 300 mg/kg BB mempunyai efek diuretik yang paling baik terhadap volume urin

yang signifikansi 0,00 (p

61

BAB V

KESIMPULAN DAN SARAN

5.1 Kesimpulan

1. Esktrak etanol daun salam berkhasiat sebagai diuretik pada tikus putih jantan.

2. Berdasarkan dosis Esktrak etanol daun salam yang dapat menimbulkan

efektivitas diuretik pada tikus putih jantan wistar berturut-turut adalah dosis

100mg/kg BB, 200 mg/kg BB, 300 mg/kg BB dan dosis paling efektif

menunjukkan aktifitas diuretik adalah dosis paling besar yaitu 300 mg/kh BB.

5.2 Saran

1. Untuk mendapat hasil yang lebih baik, sebaiknya dalam uji diuretik volume

air minum yang dikomsumsi hewan uji dikontrol selama 24 jam.

2. Perlu dilakukan uji kandungan senyawa yang bertanggung jawab terhadap

efek diuretik pada daun salam (Syzygium polyanthum).


BAB III METODOLOGI PENELITIANrepository.sari-mutiara.ac.id/26/5/CHAPTER III-V.pdfSebanyak 5 g kalium...

Documents

Transcript of BAB III METODOLOGI PENELITIANrepository.sari-mutiara.ac.id/26/5/CHAPTER III-V.pdfSebanyak 5 g kalium...