ANALISIS DE RESULTADO

La resistencia de las bacterias es el principal obstáculo para la eficacia terapéutica

de los antibióticos, pues no sólo puede anular la acción curativa si se manifiesta

en el curso del tratamiento, sino que tiene a la larga consecuencias todavía más

graves para el conjunto de la población, ya que provoca la desaparición de las

cepas susceptibles y la propagación de las resistentes. Ese es el motivo por el

cual la determinación de la sensibilidad de las bacterias a los antibióticos haya

adquirido tanta importancia y sea indispensable para hacer de los antibióticos un

uso racional y para preservar la eficacia de este grupo tan valioso de agentes

terapéuticos. .El conocimiento de la sensibilidad a los antibióticos, del

microorganismo causante de una enfermedad, no es sólo importante para hacer la

selección inicial del agente terapéutico correspondiente, sino que además en

aquellos casos en los cuales el paciente presente intolerancia a determinado

fármaco, permite seleccionar el más adecuado para ese paciente en particular.

Uno de los mecanismos para determinar la resistencia de unos microorganismos

frente a determinados antibióticos es el antibiograma. (2)

Antibiograma

Los antibiogramas son métodos in vitro que determinan la susceptibilidad de los

microorganismos a una variedad de agentes antimicrobianos, bajo condiciones de

laboratorio específica y estandarizada. La meta principal del estudio de

susceptibilidad es proveer al clínico algunas recomendaciones sobre la terapia que

puede ser más apropiada en pacientes con una infección específica. No obstante,

la correlación exacta entre los resultados in vitro y la respuesta clínica es muchas

veces difícil de predecir, ya que existen numerosos factores que influencian la

interacción de los agentes antimicrobianos y los microorganismos en un

determinado paciente. (3)

El antibiograma es la prueba microbiológica que se realiza para determinar la

susceptibilidad (sensibilidad o resistencia) de una bacteria a un grupo de

antibióticos. Las técnicas de antibiograma son las utilizadas en el laboratorio de

microbiología para estudiar la actividad de los antimicrobianos frente a los

microorganismos responsables de las infecciones. (3)

Por qué realizar un antibiograma

El primer objetivo del antibiograma es el de medir la sensibilidad de una cepa

bacteriana que se sospecha es la responsable de una infección a uno o varios

antibióticos. En efecto, la sensibilidad in vitro es uno de los requisitos previos para

la eficacia in vivo de un tratamiento antibiótico. El antibiograma sirve, en primer

lugar, para orientar las decisiones terapéuticas individuales.

El segundo objetivo del antibiograma es el de seguir la evolución de las

resistencias bacterianas. Gracias a este seguimiento epidemiológico, a escala de

un servicio, un centro de atención médica, una región o un país, es como puede

adaptarse la antibioterapia empírica, revisarse regularmente los espectros clínicos

de los antibióticos y adoptarse ciertas decisiones sanitarias, como el

establecimiento de programas de prevención en los hospitales. Hay pues un doble

interés: Terapéutico y epidemiológico. (3)

Cuándo realizar un antibiograma

Siempre que una toma bacteriológica de finalidad diagnóstica haya permitido el

aislamiento de una bacteria considerada responsable de la infección.

Establecer esta responsabilidad exige una colaboración entre el bacteriólogo y el

clínico. En efecto, en ciertas circunstancias, el microbiólogo no podrá determinar

con certeza que el aislamiento de una bacteria exige un antibiograma, sin los

datos clínicos que le aporta el médico. Por ejemplo, una bacteria no patógena

puede ser responsable de la infección de un enfermo inmunodeprimido o en un

lugar determinado del organismo. La presencia de signos clínicos puede ser

también determinante para la realización de un antibiograma (por ejemplo: la

infección urinaria con un número reducido de gérmenes). Cuando son sensibles a

dicho antibiótico, los microorganismos presentan una serie de características. (3)

En esta prueba fue utilizado el agar Muller-Hinton para favorecer el crecimiento de

los microorganismos.

AGAR MULLER-HILTON

Medio de cultivo nutritivo no selectivo que promueve el desarrollo microbiano. Por

su composición, ha sido recomendado por el Clinical and Laboratory Standards

Institute (CLSI) antiguamente llamado National Committee for Clinical Laboratory

Standards (NCCLS), para ser utilizado en forma rutinaria en la realización del

antibiograma en medio sólido, debido a que presenta buena reproducibilidad lote a

lote en las pruebas de sensibilidad, su contenido en inhibidores de sulfonamidas,

trimetoprima y tetraciclina es bajo, la mayoría de los patógenos microbianos crece

satisfactoriamente y una gran cantidad de datos adicionales que han sido

evaluados y avalados usando este medio de cultivo.

Es un medio microbiológico del crecimiento que es de uso general para la prueba

antibiótico de la susceptibilidad. También se utiliza para aislar y para mantener

especie de la Neisseria y de Moraxella. (4)

Composición:

-Infusión de la carne de vaca 30,0%

-Hidrolizado de la caseína 1,75%

-0,15% almidones

-Agar 1,7%

-PH ajustado al neutral en 25 °C.

El cinco por ciento de sangre de ovejas y dinucleótido de adenina de niconamida

puede también ser añadido cuando la prueba de la susceptibilidad se hace en el

estreptococo especie. Este tipo es también de uso general para la prueba de la

susceptibilidad del Campylobacter.

Tiene algunas propiedades que son excelentes para el uso antibiótico. En primer

lugar, es un medio no selectivo, no diferencial. Esto significa que casi todos los

organismos plateados encendidos aquí crecerán. Además, contiene el almidón. El

almidón se utiliza para absorber las toxinas lanzadas de bacterias, de modo que

no puedan interferir con los antibióticos. En segundo lugar, es un agar flojo. Esto

permite una mejor difusión de los antibióticos que la mayoría de las otras placas.

Una mejor difusión lleva a una zona más verdadera de la inhibición. (4)

Sensibilidad bacteriana a los antibióticos.

La determinación de la Concentración Inhibidora Mínima (CIM) es la base de la

medida de la sensibilidad de una bacteria a un determinado antibiótico. La CIM se

define como la menor concentración de una gama de diluciones de antibiótico que

provoca una inhibición de cualquier crecimiento bacteriano visible. Es el valor

fundamental de referencia que permite establecer una escala de actividad del

antibiótico frente a diferentes especies bacterianas. (5)

Hay diferentes técnicas de laboratorio que permiten medir o calcular de rutina, y

de manera semicuantitativa, las CIM (métodos manuales y métodos

automatizados o semiautomatizados). Estos diferentes métodos de rutina permiten

categorizar una cierta cepa bacteriana en función de su sensibilidad frente al

antibiótico probado. Esta cepa se denomina Sensible (S), Intermedia (I) o

Resistente (R) al antibiótìco. Para un determinado antibiótico, una cepa bacteriana

es, según la NCCLS:

Sensible, si existe una buena probabilidad de éxito terapéutico en el caso de un

tratamiento a la dosis habitual.

Resistente, si la probabilidad de éxito terapéutico es nula o muy reducida. No es

de esperar ningún efecto terapéutico sea cual fuere el tipo de tratamiento.

Intermedia, cuando el éxito terapéutico es imprevisible. Se puede conseguir

efecto terapéutico en ciertas condiciones (fuertes concentraciones locales o

aumento de la posología). (5)

Resistencia bacteriana.

Cada antibiótico se caracteriza por un espectro natural de actividad antibacteriana.

Este espectro comprende las especies bacterianas que, en su estado natural,

sufren una inhibición de su crecimiento por concentraciones de su antibiótico

susceptibles de ser alcanzadas in vivo. A estas especies bacterianas se les dice

naturalmente sensibles a dicho antibiótico. Las especies bacterianas que no se

encuentran incluidas dentro de dicho espectro se denominan naturalmente

resistentes. El antibiótico no crea resistencia, pero selecciona las bacterias

resistentes eliminando las sensibles. Es lo que se conoce con el nombre de

presión de selección. El aumento de la frecuencia de las cepas resistentes va

unido casi siempre al uso intensivo del antibiótico en cuestión. (5)

La resistencia natural es un carácter constante de todas las cepas de una misma

especie bacteriana. Permite prever la inactividad de la molécula frente a bacterias

identificadas (después del crecimiento) o sospechosas (en caso de antibioterapia

empírica).

La resistencia adquirida es una característica propia de ciertas cepas, dentro de

una especie bacteriana naturalmente sensible, cuyo patrimonio genético ha sido

modificado por mutación o adquisición de genes. (5)

Una resistencia cruzada es cuando se debe a un mismo mecanismo de

resistencia. En general, afecta a varios antibióticos dentro de una misma familia

(Ejemplo: La resistencia a la oxacilina en los estafilococos se cruza con todas los

ß-lactámicos). En ciertos casos, puede afectar a antibióticos de familias diferentes

(Ejemplo: La resistencia por impermeabilidad a las ciclinas se cruza con la

resistencia al cloranfenicol y al trimetoprima). (5)

La resistencia antibiótica es la capacidad de un microorganismo para resistir los

efectos de un antibiótico. La resistencia se produce naturalmente por selección

natural a través de mutaciones producidas por azar. El antibiótico, al entrar en

contacto con una población bacteriana, permite solo la proliferación de aquellas

bacterias que presentan aquella mutación natural que anula la acción del

antibiótico. (5)

Control de calidad: Debe ser llevado a cabo con al menos un microorganismo

que demuestre la actuación esperada. La lista de abajo ilustra una variación de

actuación de las cepas que el usuario puede obtener fácilmente. (5)

Microorganismos

Enteroccocus faecalis Crecimiento y patrón de

susceptibilidad correcto

Escherichia coli Crecimiento y patrón de

susceptibilidad correcto

Pseudomonas aeurigonosa Crecimiento y patrón de

susceptibilidad correcto

Staphyloccocus aureus Crecimiento y patrón de

susceptibilidad correcto

Halos de inhibición: Alrededor de cada disco de antibiótico, las bacterias

sensibles a ese antibiótico no habrán podido reproducirse y, por lo tanto, no

forman colonias, dejando un hueco alrededor del disco. (5)

Medición de los halos: No basta con ver si las bacterias han crecido o no

alrededor del antibiótico para saber si son o no sensibles. Hay que saber “cuánto”

no han crecido. Solo si el halo de inhibición es suficientemente grande, usando el

antibiótico a la concentración terapéutica –la que el antibiótico puede alcanzar en

el lugar de la infección sin que se produzcan efectos tóxicos o secundarios- se

dice que la bacteria es sensible al antibiótico. Por eso se mide el efecto y se

consultan las tablas. (5)

El tamaño del halo nos va a permitir conocer el grado de sensibilidad al antibiótico

o si es resistente. Puede aparecer un pequeño halo aun siendo resistente, esto se

debe a la alta concentración de antibiótico en el medio inmediato al disco.

Mediante un Antibiograma podemos establecer qué tratamiento será el más

adecuado para el paciente afectado por una infección por la bacteria que estemos

estudiando. (5)