A U T O R E F E R A T - sum.edu.pl · Wolne rodniki posiadają niesparowane elektrony, które...

Załącznik nr 2

__________________________________________________________________________________________

__________________________________________________________________________________________

Dr n. med. Paweł Ramos

Katedra i Zakład Biofizyki

Wydział Farmaceutyczny z Oddziałem Medycyny Laboratoryjnej w Sosnowcu

Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach

A U T O R E F E R A T

W JĘZYKU POLSKIM





Załącznik nr 2 – Autoreferat w języku polskim

__________________________________________________________________________________

2

Spis treści

1. Informacje podstawowe…………………………………………………………… 1

1.1. Imię i nazwisko……………………………………………………………… 1

1.2. Posiadane dyplomy i stopnie naukowe……………………………………… 1

1.3. Informacje o dotychczasowym zatrudnieniu w jednostkach naukowych…... 1

2. Osiągnięcie naukowe, wynikające z art.16 ust.2 ustawy z dnia 14 marca 2003

r. o stopniach naukowych i tytule naukowym oraz stopniach i tytule

w zakresie sztuki (dz. U. Nr 65, poz.595 ze zm.) stanowi:……………………….

3

2.1. Tytuł osiągnięcia naukowego …………......................................................... 3

2.2. Wykaz publikacji wchodzących w skład osiągnięcia naukowego.................. 3

2.3. Omówienie celu naukowego wymienionych powyżej prac i osiągniętych

wyników oraz ewentualnego ich wykorzystania…………….........................

6

2.3.1. Cel naukowy……………………………………........................... 6

2.3.2. Materiał i metody……………….................................................... 8

2.3.2.1. Badane próbki………..................................................................... 8

2.3.2.2. Sterylizacja termiczna badanych próbek………………………… 10

2.3.2.3. Poddanie wybranych próbek działaniu promieniowania UV……. 11

2.3.2.4. Badania wolnych rodników metodą EPR……............................... 11

2.3.2.5. Badania UV-Vis………………………………………………….. 12

2.3.3. Wyniki i dyskusja……………....................................................... 13

2.3.4. Wykorzystanie wyników…………................................................ 21

2.3.5. Wnioski…………………………………………………………... 22

3. Omówienie pozostałych osiągnięć naukowo-badawczych z wykazem

opublikowanych prac naukowych lub twórczych prac zawodowych…………...

25

3.1. Wykaz oryginalnych prac badawczych opublikowanych w czasopismach

znajdujących się na liście filadelfijskiej……………………………………..

27


nie znajdujących się na liście filadelfijskiej…………………………………

31

3.3. Wykaz oryginalnych prac badawczych opublikowanych w suplementach

czasopism nie znajdujących się na liście filadelfijskiej……………………..

34

3.4. Wykaz książek, skryptów i rozdziałów……………………………………... 34

3.5. Aktywny udział w międzynarodowych i krajowych konferencjach

naukowych…………………………………………………………………...

35

3.6. Odbyte kursy i szkolenia……………………………………………………. 36

3.7. Współpraca naukowa………………………………………………………... 37

3.8. Nagrody za działalność naukową….………………………………………... 38

3.9. Kierowanie międzynarodowymi lub krajowymi projektami badawczymi

lub udział w takich projektach……………………………………………….

39

3.10. Recenzje publikacji w czasopismach międzynarodowych i krajowych…….. 41

3.11. Przynależność do towarzystw naukowych…………………………………..

41






__________________________________________________________________________________

3

4. Działalność dydaktyczna…………………………………………………………... 42

4.1. Prowadzone zajęcia dydaktyczne…………………………………………… 42

4.2. Udział w kształceniu podyplomowym……………………………………… 42

4.3. Kierownictwo specjalizacji zawodowej dla farmaceutów………………….. 42

4.4. Opiekun naukowy w przewodach doktorskich……………………………… 43

4.5. Promotorstwo oraz opieka nad pracami magisterskimi i licencjackimi…….. 45

4.5.1. Promotorstwo prac magisterskich…………………………………. 45

4.5.2. Promotorstwo prac licencjackich………………………………….. 46

4.5.3. Opiekun prac magisterskich……………………………………….. 46

4.5.4. Recenzent prac magisterskich……………………………………... 47

4.5.5. Recenzent prac licencjackich……………………………………… 47

4.6. Opieka naukowa nad pracami realizowanymi w Kole Naukowym

Studenckiego Towarzystwa Naukowego……………………………………

47

4.7. Popularyzacja nauki…………………………………………………………. 49

5. Działalność organizacyjna………………………………………………………. 50

5.1. Działalność organizacyjna w Śląskim Uniwersytecie Medycznym

w Katowicach………………………………………………………………..

50

5.2. Nagrody za działalność organizacyjną……………………………………… 50

6. Posiadane uprawnienia………………………………………….............................

52






__________________________________________________________________________________

1

1. Informacje podstawowe

1.1. Imię i nazwisko

Paweł Ramos

1.2. Posiadane dyplomy i stopnie naukowe

2006 magister analityki medycznej Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach,


tytuł pracy magisterskiej: „Analiza zachorowań na nowotwory jajnika na podstawie

materiału operacyjnego Oddziału Ginekologicznego Szpitala Powiatowego

w Zawierciu’’

praca wykonana w Katedrze i Zakładzie Patologii

2010 magister farmacji

Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach,


tytuł pracy magisterskiej: „Wpływ temperatury i czasu sterylizacji termicznej na

generowanie wolnych rodników w diazotanie izosorbitolu’’

praca wykonana w Katedrze i Zakładzie Biofizyki

2010 doktor nauk medycznych w zakresie biologii medycznej uzyskany na podstawie rozprawy doktorskiej pt.,, Wolne rodniki w wybranych

antybiotykach aminoglikozydowych i β-laktamowych sterylizowanych termicznie’’,



2016 specjalista w dziedzinie farmacji aptecznej

uprawnienia uzyskane w Śląskim Uniwersytecie Medycznym w Katowicach


1.3. Informacje o dotychczasowym zatrudnieniu w jednostkach naukowych

2006-2010 Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach,

Wydział Farmaceutyczny z Oddziałem Medycyny Laboratoryjnej

w Sosnowcu, Katedra i Zakład Biofizyki

Stanowisko: wykładowca

2010-2013 Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach,



Stanowisko: asystent






__________________________________________________________________________________

2

2013-

nadal




Stanowisko: adiunkt






__________________________________________________________________________________

3

2. Osiągnięcie naukowe, wynikające z art.16 ust.2 ustawy z dnia 14 marca

2003 r. o stopniach naukowych i tytule naukowym oraz stopniach i tytule

w zakresie sztuki (dz. U. Nr 65, poz.595 ze zm.) stanowi:

2.1. Tytuł osiągnięcia naukowego

Właściwości wolnych rodników generowanych w procesie sterylizacji termicznej

wybranych substancji leczniczych i podłoży maściowych stosowanych w recepturze

aptecznej

Osiągniecie naukowe będące podstawą do wnioskowania o stopień naukowy doktora

habilitowanego obejmuje cykl 9 publikacji o sumarycznym wskaźniku IF = 10.162 oraz

o sumarycznej liczbie punktów KBN/MNiSW = 155.000.

2.2. Wykaz publikacji wchodzących w skład osiągnięcia naukowego

A1. Paweł Ramos, Barbara Pilawa

Electron paramagnetic resonance study of thermally treated bismuth subgallate

Bioinorganic Chemistry and Applications 2014; Vol. 2014, ID 547032, p. 1-9

DOI: 10.1155/2014/547032

IF =2.081

pkt. KBN/MNiSW = 20.000

Wkład habilitanta (90%): koncepcja pracy, przygotowanie próbek do badania,

wykonanie doświadczenia, udział w analizie, interpretacja i dyskusja otrzymanych

wyników, redakcja manuskryptu, autor korespondencyjny.

A2. Paweł Ramos, Piotr Pepliński, Barbara Pilawa

Effect of microwave power on EPR spectra of thermally sterilized eucerinum

anhydricum

Nukleonika 2015; Vol. 60, No. 3, p. 439-442

IF =0.546










__________________________________________________________________________________

4


EPR examination of free radicals thermally formed in vaselinum flavum


IF =0.546






Free radicals in thermally sterilized acidum boricum and optimization of the process

Acta Poloniae Pharmaceutica. Drug Research 2015; Vol. 72, No. 4, p. 683-689

IF =0.877





A5. Paweł Ramos, Barbara Pilawa.

EPR studies of thermally sterilized vaselinum album


IF =0.877





A6. Paweł Ramos, Małgorzata Pieprzyca, Barbara Pilawa

Effect of microwave power on shape of EPR spectra – application to examination

of complex free radical system in thermally sterilized acidum boricum


IF =0.877










__________________________________________________________________________________

5


Electron paramagnetic resonance examination of free radical formation in salicylic

acid and urea exposed to UV irradiation

International Journal of Photoenergy 2016; Vol. 2016, ID 7235305, p. 1-7

DOI: 10.1155/2016/7235305

IF =1.226






Application of EPR spectroscopy to examine free radicals evolution during storage

of the thermally sterilized Ungentum ophtalmicum

Pharmaceutical Development and Technology 2016, p. 1-4.

DOI: 10.1080/10837450.2016.1199568

IF =1.566






Free radical formation in chloramphenicol heated at different temperatures and

the best thermal sterilization conditions – application of EPR spectroscopy and UV

spectrophotometry

Pharmaceutical Development and Technology 2016, p. 1-9

DOI: 10.1080/10837450.2016.1265555

IF =1.566





Do wniosku dołączono oświadczenia współautorów prac o indywidualnym wkładzie

w publikacje będące podstawą postępowania habilitacyjnego (załącznik nr 4).






__________________________________________________________________________________

6

2.3. Omówienie celu naukowego wymienionych powyżej prac i osiągniętych wyników

oraz ewentualnego ich wykorzystania

2.3.1. Cel naukowy

Istotnym zagadnieniem z punktu widzenia technologii wytwarzania leków jałowych jest

ich czystość mikrobiologiczna. Do leków należących do pierwszej kategorii czystości

mikrobiologicznej, czyli takich które wykazują bezwzględną jałowość, zaliczamy według

Farmakopei Polskiej (wydanie X) leki stosowane: pozajelitowo, na rany, na rozległe

oparzenia oraz do oczu [1]. Farmakopea Polska (wydanie X) [1] oraz Farmakopea Europejska

(wydanie VIII) [2] dopuszczają szereg metod sterylizacji leków i przyrządów, m.in.

sterylizację z wykorzystaniem metod fizycznych: sterylizację termiczną suchym gorącym

powietrzem, sterylizację parą wodną w podciśnieniu, sterylizację radiacyjną, wyżarzanie oraz

sterylizację z wykorzystaniem metod chemicznych: sterylizację tlenkiem etylenu lub za

pomocą formaldehydu, a także sterylizację plazmową [1-3]. W recepturze aptecznej

najszersze zastosowanie znalazła sterylizacja termiczna suchym gorącym powietrzem [3].

Czynnikiem sterylizującym jest tutaj wysoka temperatura. Proces wyjaławiania odbywa się

w specjalnych sterylizatorach z wymuszonym termoobiegiem powietrza. W procesie

sterylizacji termicznej suchym gorącym powietrzem temperatura i czas ogrzewania zależą od

rodzaju substancji poddawanej procesowi wyjaławiania [1-3].

Generowanie wolnych rodników w substancjach leczniczych i podłożach maściowych

stosowanych w recepturze aptecznej jest niezwykle ważnym zagadnieniem związanym

z procesem sterylizacji termicznej. Podwyższona temperatura niszcząca drobnoustroje może

prowadzić do powstawania wolnych rodników w substancjach leczniczych, o strukturze

chemicznej nie odpornej na czynnik termiczny. Sterylizację termiczną suchym gorącym

powietrzem można stosować jedynie w przypadku leków, dla których ogrzewanie w zalecanej

temperaturze i czasie nie powoduje generowania dużej ilości wolnych rodników.

Wolne rodniki posiadają niesparowane elektrony, które odpowiadają za ich wysoką

reaktywność [4]. Wolne rodniki powstałe w substancjach leczniczych podczas sterylizacji

termicznej mogą oddziaływać z tkankami organizmu, powodując modyfikację ich struktury,

co prowadzi do zaburzenia ich funkcjonowania [4]. Tym samym mogą nasilać się efekty






__________________________________________________________________________________

7

uboczne działania leków, co może wpłynąć negatywnie na skutki terapii stosowanej

u pacjenta.

Bezpieczne substancje lecznicze oraz podłoża sterylizowane termicznie stosowane

w recepturze aseptycznej nie powinny zawierać wolnych rodników lub ich koncentracja

powinna być minimalna z możliwych dla produktu sterylnego. Farmakopea Polska [1] oraz

Europejska [2] wskazują jedynie wymagane parametry, temperaturę i czas ogrzewania,

gwarantujące czystość mikrobiologiczną sterylizowanej substancji leczniczej. W pracach

stanowiących podstawę do ubiegania się o stopień doktora habilitowanego zaproponowano

dodatkowo, jako uzupełniające do analiz mikrobiologicznych, analizy wolnorodnikowe

produktów sterylizacji termicznej wybranych substancji leczniczych i podłoży maściowych

stosowanych w recepturze aptecznej z wykorzystaniem spektroskopii elektronowego

rezonansu paramagnetycznego (EPR). Metodą EPR można sprawdzić, które z warunków

sterylizacji dopuszczalnych pod względem mikrobiologicznym są optymalne pod względem

wolnorodnikowym, a więc dają produkt sterylizacji o minimalnej zawartości wolnych

rodników.

Z praktycznego punktu widzenia ważna jest również znajomość wpływu warunków

fizycznych charakteryzujących otoczenie, takich jak temperatura czy promieniowanie UV, na

przechowywane substancje lecznicze. Pod wpływem podwyższonej temperatury oraz

promieniowania UV może również dochodzić do powstawania wolnych rodników

w próbkach leku, co może przyczynić się do pogorszenia farmakoterapii pacjenta

i powstawania skutków ubocznych leku.

Celem naukowym badań prezentowanych w cyklu prac (A1-A9) jest określenie

właściwości i koncentracji wolnych rodników generowanych w procesie sterylizacji

termicznej wybranych substancji leczniczych i podłoży maściowych stosowanych

w recepturze aptecznej. Określono także wpływ warunków przechowywania substancji

leczniczych i podłoży na powstawanie wolnych rodników.

Badania spektroskopowe EPR zastosowano w poszukiwaniach optymalnych warunków

sterylizacji termicznej i dopuszczalnych warunków przechowywania testowanych substancji

leczniczych i podłoży.






__________________________________________________________________________________

8

2.3.2. Materiał i metody

2.3.2.1. Badane próbki

Do badań wykorzystano wybrane substancje lecznicze stosowane w recepturze aptecznej:

zasadowy galusan bizmutu (A1), kwas borny (A4, A6), kwas salicylowy (A7), mocznik (A7),

chloramfenikol (A9) oraz podłoża stosowane w recepturze, tj. eucerynę bezwodną (A2),

wazelinę białą (A5), wazelinę żółtą (A3) i podłoże maści ocznej (A8).

Zasadowy galusan bizmutu jest zasadową solą bizmutu (III), nierozpuszczalną w wodzie

oraz lipidach [1, 5]. Jest on stosowany miejscowo w postaci proszku, pudru leczniczego oraz

maści recepturowych [6-9]. Zasadowy galusan bizmutu ma właściwości przeciwzapalne,

antyseptyczne, osuszające, hamuje drobne krwawienia oraz działa ściągająco reagując

z białkami, w wyniku czego na powierzchni rany powstają tzw. nierozpuszczalne białczany

chroniące znajdujące się głębiej tkanki [6, 7]. Zasadowy galusan bizmutu znalazł

zastosowanie w leczeniu chorób skórnych, m.in. stanów zapalnych, ran sączących oraz

owrzodzeń [6]. Zasadowy galusan bizmutu wchodzi również w skład farmakopealnej maści

Ungentum Bismuthi subgallici [1, 7, 8].

Kwas borny jest nieorganicznym związkiem chemicznym należącym do słabych

kwasów[5-6]. Kwas borny wykazuje właściwości odkażające, działa bakterio- oraz

grzybostatyczne [1, 5, 6, 10]. Posiada on również, właściwości wysuszające oraz ściągające

[6]. Kwas borny znalazł zastosowanie głównie w stanach zapalnych skóry oraz zewnętrznych

narządów płciowych, oparzeniach, obrzękach, stłuczeniach oraz różnego rodzaju zmianach

skórnych o podłożu bakteryjnym [6]. Kwas borny stosowany jest w postaci jałowych

wodnych roztworów (gł. 3%) oraz w postaci farmakopealnej maści bornej [1, 7-10].

Chloramfenikol jest antybiotykiem o właściwościach bakteriostatycznych pozyskiwanym

z bakterii Streptomyces venezuelae lub syntetycznie [1, 5, 6]. Stanowi on biały, szarawy lub

lekko żółty miałki proszek trudno rozpuszczany w wodzie [1, 5]. Ze względu na wiele działań

niepożądanych tylko w wyjątkowych sytuacjach stosowany jest doustnie [6]. Chloramfenikol

szerokie zastosowanie znalazł w leczeniu miejscowym w zakażeniach skórnych, oczu i uszu

[6]. Szeroko jest stosowany w recepturze aptecznej do sporządzania maści, zawiesin lub

kropli [7, 8].






__________________________________________________________________________________

9

Kwas salicylowy jest organicznym związkiem chemicznym należącym do grupy

aromatycznych hydroksykwasów karboksylowych [1, 5]. Ze względu na bardzo silne

właściwości wrzodotwórcze nie znalazł szerszego zastosowania jako niesteroidowy lek

przeciwzapalny podawany drogą doustną [5, 6]. Szeroko natomiast jest stosowany w

recepturze aptecznej [7, 8]. W stężeniu do 2% ma właściwości keratoplastyczne, czyli

normalizuje proces rogowacenia naskórka, natomiast zastosowany w stężeniu od 5% do 40%

działa keratolitycznie [6-8]. Kwas salicylowy stosowany jest ponadto jako środek do

odkażania ran i przyżegania. Kwas salicylowy w dermatologii stosowany jest do złuszczania

wykwitów łuszczycowych [6].

Mocznik jest organicznym związkiem chemicznym diamidem kwasu węglowego [1, 5].

W recepturze aptecznej stosowany jest głównie do wykonywania maści dermatologicznych

stosowanych w chorobach z nadmiernym rogowaceniem skóry [7-9]. Jego działanie zależy

głównie od zastosowanego stężenia. Mocznik w stężeniu 2% ma właściwości nawilżające

skórę, w stężeniu 3-10% ma właściwości nawilżające i zmiękczające warstwy rogowej skóry

oraz ma właściwości przeciwbakteryjne, w stężeniu 10-30% wykazuje właściwości promotora

wchłaniania leków, gdyż rozrywa wiązania wodorowe keratyny ułatwiając wnikanie

substancji w głąb skóry, w stężeniu 40-50% silnie złuszcza skórę, co znalazło zastosowanie w

leczeniu łuszczycy, rybiej łuski oraz atopowego zapalenia skóry [7-9, 6, 11].

Euceryna bezwodna stanowi podłoże złożone składające się z wazeliny białej i eucerytu

(alkohol cetylowy i cholesterol – maść eucerynowa) [1, 3, 7-9]. Euceryt jest emulgatorem

zwiększającym zdolność wiązania wody przez podłoże [1, 3, 7-9]. Podłoże eucerynowe

zapewnia dobre wchłanianie substancji leczniczych. Podłoże to znalazło szerokie

zastosowanie w recepturze aptecznej do sporządzania maści bezwodnych oraz uwodnionych

[1, 3, 7-9].

Wazelina biała jest to mieszanina półstałych węglowodorów, uzyskiwanych podczas

destylacji ropy naftowej [1, 3, 7-9]. Wazelina biała ma postać odbarwioną lub prawie

odbarwioną, uzyskiwaną przy użyciu adsorbentów. Stanowi ona węglowodorowe podłoże

lipofilowe [1, 3, 7-9]. Wazelina biała ma właściwości hydrofobowe, a więc wykazuje słabą






__________________________________________________________________________________

10

zdolność do wiązania wody (liczba wodna od 7 do 10). Dłuższe stosowanie maści na bazie

wazeliny białej może powodować podrażnienie skóry [3, 7-9].

Wazelina żółta jest mieszaniną oczyszczonych półstałych węglowodorów otrzymywanych

z ropy naftowej [7-9]. Ma ona postać żółtej, tłustej masy [1, 3, 7-9]. Wazelina żółta jest

węglowodorowym podłożem lipofilowym o niewielkich zdolnościach wiązania wody [1, 3, 7-

9]. Wiązanie wody przez podłoże można poprawić dodając do wazeliny żółtej emulgatory, np.

lanolinę [3, 7-9].

Maść oczna zawiera uniwersalne podłoże o złożonym składzie, w który wchodzi: 80

części wazeliny białej, 10 części lanoliny bezwodnej oraz 10 części parafiny ciekłej [1, 3, 7-

9]. Maść oczna stanowi jałowy, jednorodny układ o półpłynnej konsystencji [1, 3, 7-9]. Do

maści ocznej wprowadza się jedną lub maksymalnie dwie substancje lecznicze [7-9].

Jałowość podłoża uzyskuje się przez stopienie i przesączenie go przez bibułę na lejku

z płaszczem grzewczym [1]. Maść oczną następnie sterylizuje się termicznie w temperaturze

160oC przez 60 minut w sterylizatorze z wymuszonym termoobiegiem powietrza [1].

2.3.2.2. Sterylizacja termiczna badanych próbek

Substancje lecznicze oraz podłoża maściowe sterylizowano zgodnie z wymogami

farmakopealnymi [1-2] w profesjonalnym programowalnym sterylizatorze termicznym

z termoobiegiem suchego gorącego powietrza Firmy Memmert (Niemcy).

Zastosowano następujące temperatury (T) i czasy (t) ogrzewania badanych próbek [wg 1-

2]:

a) dla zasadowego gallusanu bizmutu, kwasu bornego, wazeliny białej, wazeliny żółtej,

euceryny bezwodnej:

T = 160 oC i t = 120 minut,

T = 170 oC i t = 60 minut,

T = 180 oC i t = 30 minut.

b) dla podłoża stosowanego w maściach ocznych:

T = 160 oC i t = 60 minut.

c) dla chloramfenikolu:

T = 100 oC i t = 120 minut.






__________________________________________________________________________________

11

Dodatkowo dla chloramfenikolu zaproponowano do sprawdzenia dwa nowe warunki

sterylizacji:

T = 110 oC i t = 60 minut,

T = 120 oC i t = 30 minut.

2.3.2.3. Poddanie wybranych próbek działaniu promieniowania UV

Przykładowe substancje lecznicze (mocznik oraz kwasu salicylowy) poddano działaniu

promieniowania UV w czasie 15, 30, 45 i 60 minut. Stosowano lampę Medisun 250 Firmy

Schulze & Böhm (Niemcy). Lampa wyposażona jest w cztery promienniki każdy o mocy

40 W emitujące światło z zakresu UVA (λ = 315-400 nm).

2.3.2.4. Badania wolnych rodników metodą EPR

Jako główną technikę doświadczalną zastosowano spektroskopię elektronowego

rezonansu paramagnetycznego (EPR), która służy do bezpośredniego badania wolnych

rodników. Widma wolnych rodników rejestrowano w postaci pierwszej pochodnej absorpcji

z wykorzystaniem spektrometru EPR Firmy Radiopan (Poznań) oraz sytemu numerycznej

akwizycji danych Firmy Jagmar (Kraków). Stosowano modulację pola magnetycznego

wynoszącą 100 kHz. Całkowita moc mikrofalowa wytwarzana przez klistron spektrometru

wynosiła 70 mW. Moc mikrofalową regulowano poprzez zmiany tłumienia. W celu

uniknięcia efektu nasycenia mikrofalowego linie EPR rejestrowano przy niskich mocach

mikrofalowych wynoszących 2.2 mW.

Analizowano następujące parametry widm EPR: amplitudę (A), intensywność integralną

(I), szerokość (ΔBpp) linii oraz współczynnik rozszczepienia spektroskopowego g. Amplituda

(A) i intensywność integralna (I) linii EPR rośnie ze wzrostem koncentracji wolnych

rodników w próbce [12-14]. Szerokość (ΔBpp) linii EPR zależy od oddziaływań

magnetycznych w próbce [12-13]. Współczynnik rozszczepienia spektroskopowego g zależy

od lokalizacji niesparowanego elektronu w wolnym rodniku. Współczynnik rozszczepienia

spektroskopowego g wyznaczono wprost z warunku rezonansu według wzoru [12-13]:

g = hν/μBBr,






__________________________________________________________________________________

12

gdzie h – stała Plancka, ν – częstotliwość promieniowania mikrofalowego, μB – magneton

Bohra, Br – rezonansowa indukcja magnetyczna.

Zbadano też wpływ mocy mikrofalowej w zakresie 2.2-70 mW na parametry linii EPR

w celu wyznaczenia rodzaju poszerzenia linii (jednorodne lub niejednorodne) oraz oceny

szybkości procesów relaksacji spin-sieć w testowanych substancjach. Wartość mocy

nasycenia mikrofalowego linii EPR rośnie ze wzrostem szybkości procesów relaksacji spin-

sieć [14].

Wyznaczono koncentrację (N) wolnych rodników w badanych próbkach według wzoru

[wg 12]:

N = Nu[(WuAu)/Iu]●[I/(WAm)],

gdzie: Nu – liczba centrów paramagnetycznych we wzorcu; W, Wu – wzmocnienie

elektroniczne na spektrometrze EPR dla badanej próbki i wzorca,; A, Au – amplitudy linii

EPR rubinu dla badanej próbki i dla wzorca; I, Iu – intensywności integralne linii EPR

badanej próbki i wzorca, m – masa próbki.

Jako wzorzec główny dla koncentracji wolnych rodników zastosowano

paramagnetyczną ultramarynę, otrzymaną dzięki uprzejmości Profesora dr hab. n. fiz.

Andrzeja B. Więckowskiego z Poznania. Zastosowano też wzorzec pomocniczy – kryształ

rubinu (Al2O3:Cr3+

).

Do pomiarów i analizy widm EPR stosowane jest profesjonalne oprogramowanie

spektroskopowe Firmy Jagmar (Kraków), program LabView 8.5 Firmy National Instruments

(Texas, USA) oraz Origin 2016 Firmy OriginLab (Illinois, USA). Stosowano też program

Excel 2016 Firmy Microsoft (Washington, USA).

2.3.2.5. Badania UV-Vis

W badaniach wykorzystano też spektrofotometrię UV-Vis z aparatem Thermo Genesis

10S Firmy Thermo Science (Massachusetts, USA) w pełnym zakresie długości fali, tj. 190-

1100 nm. Otrzymane widma UV-Vis rejestrowano oraz analizowano za pomocą

oprogramowania VISIONlite Scan firmy Thermo Fisher Scientific (Massachusetts, USA).






__________________________________________________________________________________

13

2.3.3. Wyniki i dyskusja

Wykazano z wykorzystaniem spektroskopii elektronowego rezonansu

paramagnetycznego, że wybrane do badań nie poddane sterylizacji substancje lecznicze

i podłoża maściowe stosowane w recepturze aptecznej nie zawierały wolnych rodników

i miały charakter diamagnetyczny (A1-A9). Dla testowanych próbek przed sterylizacją nie

rejestrowano widm EPR nawet przy maksymalnej mocy mikrofalowej wynoszącej 70 mW

i przy dużym wzmocnieniu elektronicznym rzędu 1x105. Wynik ten dowodzi wysokiej

czystości paramagnetycznej badanych substancji.

Badania metodą EPR wybranych recepturowych substancji leczniczych: zasadowego

galusanu bizmutu (A1), kwasu bornego (A4, A6), mocznika (A7), kwasu salicylowego (A7),

chloramfenikolu (A9) oraz wybranych podłoży maściowych: euceryny bezwodnej (A2),

wazeliny żółtej (A3), wazeliny białej (A5), maści ocznej (A8), wykazały powstawanie

wolnych rodników w procesie sterylizacji termicznej (A1-A6, A8, A9) oraz pod wpływem

promieniowania UV (A7). Dowodem na występowanie wolnych rodników w badanych

próbkach jest rejestrowanie dla nich widm EPR. Widma EPR otrzymano dla wszystkich

testowanych substancji leczniczych oraz podłoży maściowych, niezależnie od zastosowanych

warunków sterylizacji zgodnych z obowiązującymi normami farmakopealnymi [1, 2]. Widma

EPR obserwowano dla zasadowego galusanu bizmutu, kwasu bornego, oraz podłoży

maściowych euceryny bezwodnej, wazeliny żółtej i wazeliny białej sterylizowanych

w temperaturze 160 oC przez 120 minut, 170

oC przez 60 minut oraz 180

oC przez 30 minut.

Linie EPR wolnych rodników zarejestrowano dla podłoże maści ocznej sterylizowanego

w temperaturze 160oC przez 60 minut. Sygnał EPR dawało również chloramfenikol

sterylizowany w temperaturze 100 oC przez 120 minut, 110

oC przez 60 minut oraz 120

oC

przez 30 minut.

Widma EPR otrzymano również dla mocznika oraz kwasu salicylowego

przechowywanych przy dostępie promieniowania UV w czasie 15, 30, 45 i 60 minut (A7).

Widma EPR badanych próbek otrzymano w temperaturze pokojowej w pełnym zakresie

stosowanych mocy mikrofalowych 2.2-70 mW.

W trakcie działania wysokiej temperatury (A1-A6, A8, A9), jak i promieniowania UV

(A7), może dochodzić do zerwania wiązań chemicznych w badanych substancjach






__________________________________________________________________________________

14

leczniczych i podłożach maściowych, co prowadzi do wytworzenia wolnych rodników

w procesie termolizy lub fotolizy. W przypadku zasadowego galusanu bizmutu, kwasu

bornego i wszystkich testowanych podłoży temperatura 160 oC (A1-A6, A8) jest już

wystarczająca do generowania wolnych rodników. Natomiast temperatura 100 o

C jest

wystarczająca do generowania wolnych rodników w chloramfenikolu (A9). Czas ekspozycji

mocznika i kwasu salicylowego na promieniowanie UV wynoszący 15 minut (A7) jest

wystarczający do zerwania wiązań chemicznych i pojawienia się wolnych rodników

w próbkach.

Poszczególne zbadane sterylizowane termicznie substancje lecznicze i podłoża

maściowe różnią się koncentracją wolnych rodników (A1-A6, A8, A9). Koncentracja

wolnych rodników w badanych próbkach zależy od rodzaju substancji chemicznej oraz od

warunków sterylizacji termicznej, czyli zastosowanej temperatury i czasu. Koncentracja

wolnych rodników w badanych próbkach, wytworzonych w procesie sterylizacji termicznej,

ulega zmianie wraz z czasem ich przechowywania.

W przypadku poszczególnych testowanych substancji leczniczych najwyższą

koncentrację wolnych rodników stwierdzono dla zasadowego galusanu bizmutu

sterylizowanego w temperaturze 160 oC przez 120 minut (2.7x10

19 spin/g) (A1), kwasu

bornego sterylizowanego w temperaturze 160 oC przez 120 minut (7.5x10

17 spin/g) (A4, A6)

oraz chloramfenikolu sterylizowanego w temperaturze 120 oC przez 30 minut (11.2x10

18

spin/g) (A9). W przypadku poszczególnych podłoży maściowych najwyższą koncentrację

wolnych rodników stwierdzono dla euceryny bezwodnej sterylizowanej w temperaturze

160 oC przez 120 minut (35.5x10

17 spin/g) (A2), wazeliny białej sterylizowanej

w temperaturze 160 oC przez 120 minut (18.8x10

17 spin/g) (A5), wazeliny żółtej

sterylizowanej w temperaturze 160 oC przez 120 minut (19.2x10

17 spin/g) (A3) i podłoże

maści ocznej sterylizowane w 160 oC przez 60 minut (28.9x10

17 spin/g) (A8).

W przypadku leków przechowywanych w obecności promieniowania UV najwyższe

wartości koncentracji wolnych rodników uzyskano dla kwasu salicylowego i mocznika

poddanych 60 minutowej ekspozycji na promieniowanie UV. Wartości te odpowiednio

wynosiły 5.1x1018

spin/g oraz 2.5x1018

spin/g (A7).






__________________________________________________________________________________

15

Najmniejsze koncentracje wolnych rodników stwierdzono dla zasadowego gallusanu

bizmutu sterylizowanego w temperaturze 170 oC przez 60 minut (1.6x10

19 spin/g) (A1), dla

kwasu bornego sterylizowanego także w temperaturze 170 oC przez 60 minut (3.2x10

17

spin/g) (A4, A6) oraz dla chloramfenikolu sterylizowanego w temperaturze 110 oC przez 60

minut (3.3x1018

spin/g) (A9). Najmniejsze koncentracje wolnych rodników stwierdzono

w przypadku podłoży maściowych sterylizowanych w temperaturze 180 oC przez 60 minut

i wynosiły one odpowiednio dla euceryny bezwodnej 14.5x1017

spin/g (A2), dla wazeliny

białej 15.5x1017

spin/g (A5) oraz dla wazeliny żółtej 15.6 x 1017

spin/g (A3).

W przypadku leków przechowywanych w obecności promieniowania UV dla kwasu

salicylowego oraz mocznika poddanych 15 minutowej ekspozycji na to promieniowanie

wartości koncentracji generowanych wolnych rodników wynosiły odpowiednio 1.9x1018

spin/g oraz 0.8x1018

spin/g (A7).

Biorąc pod uwagę fakt, że sterylizacja termiczna badanych próbek w temperaturze

170 oC w czasie 60 minut (zasadowy galusan bizmutu, kwas borny) (A1, A4, A6)

i w temperaturze 110 oC w czasie 60 minut (chloramfenikol) (A9) oraz w przypadku podłoży

maściowych w temperaturze 180 oC w czasie 30 minut (A2, A3, A5) powodują niszczenie

mikroorganizmów [1, 2], a równocześnie w warunkach tych koncentracja generowanych

wolnych rodników jest minimalna, można uznać w/w warunki sterylizacji termicznej są

optymalne. Toksyczne efekty wolnorodnikowe podczas stosowania tych substancji

sterylizowanych w temperaturze 110 oC (A9) i 170

oC (A1, A4, A6) oraz podłoży

sterylizowanych w temperaturze 180 oC (A2, A3, A5) będą minimalne relatywnie do innych

testowanych warunków narzuconych przez obowiązujące normy [1, 2].

Stwierdzono, że koncentracja wolnych rodników w badanych recepturowych

substancjach leczniczych i podłożach maściowych rośnie wraz z obniżeniem temperatury

sterylizacji termicznej oraz wydłużeniem czasu jej trwania. Wzrost koncentracji wolnych

rodników w tym przypadku jest spowodowany zrywaniem coraz większej ilości wiązań

chemicznych w badanych próbkach wskutek dostarczania energii termicznej w dłuższym

okresie czasu. Z kolei koncentracja wolnych rodników w badanych recepturowych

substancjach leczniczych i podłożach maściowych maleje ze wzrostem temperatury

sterylizacji termicznej i skróceniem czasu ogrzewania próbek. W przypadku zasadowego






__________________________________________________________________________________

16

galusanu bizmutowego oraz kwasu bornego sterylizowanych w temperaturze 170 oC

koncentracja wolnych rodników jest mniejsza aniżeli w przypadku tych próbek

sterylizowanych w temperaturze 160 oC (A1, A4). W przypadku chloramfenikolu

sterylizowanego w temperaturze 110 oC koncentracja wolnych rodników jest mniejsza aniżeli

w przypadku sterylizacji w temperaturze 100 oC (A9). Jeżeli chodzi o badane podłoża

maściowe sterylizowane w temperaturze 180 oC koncentracja wolnych rodników jest w nich

mniejsza aniżeli w przypadku ich sterylizacji w temperaturze 160 oC (A2, A3, A5). Spadek

koncentracji wolnych rodników w wyższej temperaturze jest prawdopodobnie spowodowany

rekombinacją wolnych rodników. Inną przyczyną spadku koncentracji wolnych rodników

w wyższych temperaturach mogą być reakcje z molekułami tlenu, gdyż zgodnie z normami

Farmakopei Polskiej i Europejskiej [1, 2] sterylizacja termiczna jest prowadzona

w atmosferze tlenowej. Należałoby raczej zaproponować dla badanych próbek sterylizację

termiczną w atmosferze gazu obojętnego, na przykład azotu lub argonu.

Zjawisko spadku koncentracji wolnych rodników w badanych próbkach

sterylizowanych w wyższych temperaturach jest zdecydowanie korzystne dla produktów

sterylizacji. Badane substancje lecznicze i podłoża maściowe o mniejszej koncentracji

wolnych rodników będą powodowały mniejsze efekty uboczne w organizmie człowieka

podczas farmakoterapii.

Analizując rezultaty badań spektroskopowych recepturowych substancji leczniczych

oraz podłoży maściowych poddanych sterylizacji termicznej w różnych warunkach zgodnie

z obowiązującymi normami [1, 2] można wskazać optymalne warunki sterylizacji tych

związków. Optymalnymi parametrami sterylizacji termicznej dla zasadowego galusanu

bizmutu temperatura 170 oC i czas ogrzewania 60 minut (A1), dla kwasu bornego temperatura

170 oC i czas 60 minut (A4, A6), dla chloramfenikolu temperatura 110

oC i czas 60 minut

(A9), dla euceryny bezwodnej temperatura 180 oC i czas 30 minut (A2), dla wazeliny białej

temperatura 180 oC i czas 30 minut (A5), dla wazeliny żółtej temperatur 180

oC i czas

30 minut (A3). Otrzymane w przeprowadzonych badaniach wyniki wskazują na to, że do

określenia optymalnych warunków sterylizacji recepturowych substancji leczniczych oraz

podłoży maściowych poza standardowo wykonywanymi analizami mikrobiologicznymi






__________________________________________________________________________________

17

należy wykonać także analizy koncentracji wolnych rodników metodą EPR. Zastosowanie

spektroskopii elektronowego rezonansu paramagnetycznego można zaproponować do

optymalizacji procesu sterylizacji jakichkolwiek leków, ponieważ reakcje wolnorodnikowe są

istotnie nie tylko w przypadku zbadanych próbek.

Ze względu na produkcję i dystrybucję produktów leczniczych oraz podłoży

maściowych ważnym aspektem jest również przechowywanie substancji leczniczych.

Przechowywanie leków nie powinno powodować zmian ich struktury. W przeprowadzonych

badaniach stwierdzono, że podczas przechowywania badanych substancji leczniczych oraz

podłoży maściowych sterylizowanych termicznie zachodzą zmiany koncentracji wolnych

rodników oraz zachodzą zmiany parametrów widm EPR (A1-A6, A8, A9). Również

niekorzystny wpływ na przechowywanie badanych substancji recepturowych ma

promieniowanie UV (A7).

Spadek lub wzrost koncentracji wolnych rodników podczas przechowywania próbki

może być spowodowany oddziaływaniami chemicznymi z tlenem atmosferycznym (A1-A6,

A8) lub wpływem promieniowania UV (A7). W przeprowadzonych badaniach analizowano

zmiany koncentracji wolnych rodników w trakcie przechowywania badanych próbek. Dla

kwasu bornego (A4), euceryny bezwodnej (A2), wazeliny białej (A5), wazeliny żółtej (A3)

wykonano analizy koncentracji wolnych rodników w dniu sterylizacji oraz 2, 8, 10, 13, 16,

22, 32 i 40 dni po sterylizacji. Dla podłoża maści ocznej (A8) wykonano analizy koncentracji

wolnych rodników w dniu sterylizacji oraz 1, 2, 3 dni po sterylizacji. Zbadano również wpływ

czasu przechowywania kwasu salicylowego i mocznika (A7) przy dostępie promieniowania

UV na koncentrację wolnych rodników w próbkach. W tym celu leki te poddano ekspozycji

na promieniowanie UV przez okres 15, 30, 45 i 60 minut.

W przypadku kwasu bornego (A4) oraz wszystkich podłoży maściowych (A2, A3, A5,

A8) zaobserwowano spadek koncentracji wolnych rodników wraz ze wzrostem czasu ich

przechowywania. Dla kwasu bornego sterylizowanego w temperaturze 160 oC w czasie 120

minut odnotowano największy spadek koncentracji wolnych rodników do wartości 0.3x1017

[spin/g] w 40 dniu przechowywania (A4). Dla euceryny bezwodnej sterylizowanej

w temperaturze 180 oC w czasie 30 minut odnotowano największy spadek koncentracji

wolnych rodników do wartości 0.5x1017

[spin/g] również w 40 dniu przechowywania podłoża






__________________________________________________________________________________

18

(A2). Dla wazeliny białej (A5) i wazeliny żółtej (A3) sterylizowanych w temperaturze 170 oC

w czasie 60 minut odnotowano największy spadek koncentracji wolnych rodników

odpowiednio do wartości 1.2x1017

[spin/g] i 1.4x1017

[spin/g] także w 40 dniu

przechowywania podłoża. Dla podłoża maści ocznej sterylizowanego w temperaturze 160 oC

w czasie 60 minut stwierdzono największy spadek koncentracji wolnych rodników do

wartości 8.2x1017

[spin/g] w 3 dniu przechowywania podłoża (A8).

W przypadku kwasu salicylowego oraz mocznika przechowywanych przy dostępie

promieniowania UV zaobserwowano wzrost koncentracji wolnych rodników ze wzrostem

czasu ekspozycji próbki na promieniowanie UV. Dla kwasu salicylowego najwyższa wartość

koncentracji wolnych rodników występowała w próbce naświetlanej 60 minut i wynosiła ona

5.1x1018

[spin/g] (A7). W przypadku mocznika była to również próbka naświetlana 60 minut,

dla której wartość koncentracji wolnych rodników wynosiła 2.6x1018

[spin/g] (A7).

Układ wolnych rodników w badanych sterylizowanych termicznie recepturowych

substancjach leczniczych (A1, A4, A6, A9) oraz podłożach maściowych (A2, A3, A5, A8) ma

charakter złożony. O złożonym charakterze układu wolnych rodników w badanych próbkach

świadczą parametry asymetrii widm EPR oraz zależność kształtu widm od mocy

mikrofalowej. W przypadku wszystkich badanych próbek obserwowano zmiany parametrów

kształtu linii EPR: A1-A2, │A1-A2│, A1/A2, B1-B2, │B1-B2│ oraz B1/B2 wraz ze wzrostem

mocy mikrofalowej.

Ciągłe nasycenie mikrofalowe widm EPR wykazało jednorodne poszerzenie linii.

Oznacza to, że wolne rodniki w badanych próbkach są rozmieszczone w sposób jednorodny,

a w próbkach nie występują tzw. wyspy spinowe [12, 13]. Obserwowano charakterystyczne

dla jednorodnego rozmieszczenia wolnych rodników w próbce zależności amplitudy

i szerokości linii EPR od mocy mikrofalowej [13]. Można więc stwierdzić, że proces

sterylizacji termicznej przeprowadzono w sposób prawidłowy, badane próbki były ogrzewane

w całej swojej objętości równomiernie. Nasycenie mikrofalowe widm EPR można

zaproponować jako test do sprawdzenia przebiegu procesu sterylizacji w próbce.






__________________________________________________________________________________

19

Zarówno w badanych lekach recepturowych jak i podłożach maściowych

sterylizowanych zgodnie z obowiązującymi normami [1, 2] wolne rodniki znajdują się

w niewielkich odległościach od siebie. Rejestrowano szerokie linie EPR badanych próbek

charakterystyczne dla niewielkich odległości pomiędzy niesparowanymi elektronami.

Powoduje to silne oddziaływania dipolowe typu spin-spin, które poszerzają linie EPR [12,

13].

Dzięki wykorzystaniu metody ciągłego nasycenia mikrofalowego widm EPR

wykazano zróżnicowanie szybkości procesów relaksacji spin-sieć w badanych próbkach.

Linie EPR poszczególnych sterylizowanych termicznie substancji leczniczych i podłoży

nasycały się przy różnych wartościach mocy mikrofalowej. Wolne procesy relaksacji spin-

sieć zachodzą w wazelinie białej sterylizowanej w temperaturze 170 oC przez 60 minut

i w temperaturze 180 oC przez 30 minut (A5). Linie EPR w/w próbek nasycają się dla

niższych mocy mikrofalowych (A5). Linie EPR próbek z wolnymi procesami relaksacji spin-

sieć nasycają się dla niższych mocy mikrofalowych w wyniku inwersji obsadzeń poziomów

energetycznych niesparowanymi elektronami [13]. Wolna relaksacja spin-sieć powoduje, że

niesparowane elektrony, które są zdolne do pochłaniania mikrofal nie występują na

podstawowych poziomach energetycznych [13].

Szybkie procesy relaksacji spin-sieć zachodzą w zasadowym galusanie bizmutu (A1),

eucerynie bezwodnej (A2), wazelinie żółtej (A3) oraz kwasie bornym (A4) sterylizowanych

we wszystkich stosowanych warunkach (160 oC i 120 minut, 170

oC i 60 minut, 180

oC i 30

minut), w chloramfenikolu sterylizowanym w temperaturze 100 oC przez 120 minut, 110

oC

przez 60 minut oraz 120 oC przez 30 minut (A9), w podłożu maści ocznej sterylizowanej

w temperaturze 160 oC przez 60 minut (A8), a także w wazelinie białej sterylizowanej

w temperaturze 160 oC przez 120 minut (A5). Szybkie procesy relaksacji spin-sieć

stwierdzono również w kwasie salicylowym i moczniku poddanym działaniu promieniowania

UV przez 15, 30, 45, 60 minut (A7).

Linie EPR w/w próbek z szybkimi procesami relaksacji spin-sieć nie nasycają się

w całym stosowanym zakresie mocy mikrofalowych (do 70 mW). Brak nasycenia

mikrofalowego linii EPR jest wynikiem inwersji obsadzeń poziomów energetycznych

niesparowanymi elektronami [13]. Szybka relaksacja spin-sieć powoduje, że niesparowane






__________________________________________________________________________________

20

elektrony, które są zdolne do pochłaniania mikrofal nie występują na podstawowych

poziomach energetycznych [13].

Pomiary nasycenia mikrofalowego widm EPR badanych recepturowych substancji

leczniczych oraz podłoży maściowych sterylizowanych w różnych warunkach oraz podczas

ich przechowywania można polecić jako metodę oceny zmian strukturalnych leku. Nasycenie

mikrofalowe widm EPR zależy od szybkości procesów relaksacji spin-sieć, która z kolei

zależy od struktury chemicznej próbki. Zmiana struktury chemicznej leku spowoduje więc

zmiany zależności amplitudy linii EPR od mocy mikrofalowej. Wyznaczenie korelacji

pomiędzy amplitudą linii EPR, a mocą mikrofalową dostarczy informacji o stabilności

struktury chemicznej sterylizowanej substancji.

Dla przykładowych recepturowych substancji leczniczych, tj. kwasu bornego (A6)

oraz chloramfenikolu (A9), w celu sprawdzenia stabilności termicznej ich struktury

przeprowadzono badania za pomocą spektrofotometru UV-Vis Thermo Genesis 10S firmy

Thermo Science w pełnym zakresie długości fal, tj. 190-1100 nm. Sterylizacja termiczna nie

powinna prowadzić do zmian struktury chemicznej substancji, a tym samym widma UV-Vis

próbki przed i po sterylizacji termicznej powinny być podobne bez znacznych różnic

pasmowych. W przypadku kwasu bornego (A6) porównano widma absorbancji dla próbki

niesterylizowanej oraz sterylizowanej termicznie przy parametrach (temperatura i czas

ogrzewania) zgodnych z obowiązującymi normami farmakopealnymi [1, 2]: 160 oC i 120

minut, 170 oC i 60 minut oraz 180

oC i 30 minut. W przypadku chloramfenikolu (A9)

porównano widma absorbancji dla próbki niesterylizowanej i sterylizowanej zgodnie

z normami [1, 2] w temperaturze 100 oC przez 120 minut.

Dla obydwu badanych substancji leczniczych po sterylizacji termicznej wykonanej

zgodnie z normami [1, 2] nie uzyskano istotnych zmian absorbancji w całym zakresie

długości fali wynoszącej 190-1100 nm (A6, A9). Otrzymane wyniki świadczą o braku

istotnych zmian w strukturze badanych związków, które wpływałyby na absorbancję, co

potwierdza tezę, że próbki te mogą być poddawane procesowi sterylizacji w wyżej podanych

warunkach.






__________________________________________________________________________________

21

Uzyskano niezwykle istotne dla nowych warunków sterylizacji termicznej

chloramfenikolu wyniki badań z wykorzystaniem spektroskopii EPR i UV-Vis dla próbek

ogrzewanych w temperaturze 110 oC przez 60 minut oraz w temperaturze 120

oC przez 30

minut (A9). Sterylizacja chloramfenikolu w temperaturze110 oC przez 60 minut generuje

relatywnie dużo mniejszą ilość wolnych rodników, aniżeli zalecane przez normy

farmakopealne [1, 2] ogrzewanie chloramfenikolu w temperaturze 100 oC przez 120 minut.

Zastosowanie nowych warunków sterylizacji chloramfenikolu może wpływać na obniżenie

ewentualnych efektów toksycznych w trakcie farmakoterapii ze względu na mniejszą

zawartość wolnych rodników w leku. Wykazana została przydatność spektroskopii UV-Vis

(A6, A9) do badania stabilności struktury substancji leczniczych poddanych procesowi

sterylizacji.

Przeprowadzone badania wykazały, że wolne rodniki nie występują w testowanych

niesterylizowanych recepturowych substancjach leczniczych (zasadowym galusanie bismutu,

kwasie bornym, chloramfenikolu) (A1, A4, A6, A9) oraz podłożach maściowych (eucerynie

bezwodnej, wazelinie żółtej, wazelinie białej, podłożu maści ocznej) (A2, A3, A5, A8),

a także w próbkach (kwasie salicylowym, moczniku) nie poddanych działaniu

promieniowania UV (A7). Dla tych próbek nie rejestrowano widm EPR. Natomiast obróbka

termiczna (A1-A6, A8-A9) i promieniowanie UV (A7) generuje wolne rodniki w badanych

próbkach. Optymalne warunki sterylizacji termicznej recepturowych substancji leczniczych

(A1, A4, A6, A9) i podłoży maściowych (A2, A3, A5, A8) wyznaczono z wykorzystaniem

spektroskopii EPR i analizy widm UV-Vis.

2.3.4. Wykorzystanie wyników

Prace (A1-A9) poszerzyły dotychczasową wiedzę o wolnych rodnikach powstających

w procesie sterylizacji termicznej, a także dostarczyły praktycznych informacji o warunkach

i metodach sporządzania i przechowywania leków recepturowych. Wyniki mają duże

znaczenie dla optymalizacji procesu produkcji leków sterylnych.

Otrzymane wyniki nowatorskich badań wybranych recepturowych substancji

leczniczych i podłoży maściowych metodą elektronowego rezonansu paramagnetycznego

dostarczyły informacji o wolnych rodnikach generowanych w procesie sterylizacji termicznej






__________________________________________________________________________________

22

suchym gorącym powietrzem oraz w trakcie przechowywania badanych próbek. Po raz

pierwszy zbadano wolne rodniki powstające w testowanych w pracach (A1-A9) próbkach

poddanych procesowi sterylizacji termicznej suchym gorącym powietrzem. Wskazano

najlepsze warunki dla procesu sterylizacji termicznej oraz przechowywania analizowanych

substancji leczniczych oraz podłoży maściowych.

Zaproponowano spektroskopię EPR jako metodę uzupełniającą do metod

mikrobiologicznych, przydatną do optymalizacji warunków sterylizacji termicznej oraz

warunków przechowywania substancji leczniczych oraz podłoży maściowych

wykorzystywanych w recepturze aptecznej.

2.3.5. Wnioski

Przeprowadzone badania wybranych substancji leczniczych i podłoży maściowych

stosowanych w recepturze aptecznej za pomocą spektroskopii elektronowego rezonansu

paramagnetycznego (EPR) i spektrofotometrii UV-Vis wykazały, że:

1. Badane próbki po sterylizacji termicznej i po ekspozycji na promieniowanie UV uzyskują

właściwości paramagnetyczne. Sterylizacja termiczna chloramfenikolu w temperaturach

(czasach): 100 o

C (120 minut), 110 oC (60 minut), 120

oC (30 minut) (A9) oraz

zasadowego galusanu bismutu (A1), kwasu bornego (A4, A6), euceryny bezwodnej (A2),

wazeliny żółtej (A3) i wazeliny białej (A5) w temperaturach (czasach): 160 oC (120

minut), 170 oC (60 minut), 180

oC (30 minut); podłoża maści ocznej w temperaturze

160 oC (60 minut) (A8) oraz ekspozycja kwasu salicylowego i mocznika na

promieniowanie UV (A7), powodują generowanie wolnych rodników w próbkach, dla

których rejestrowano widma EPR.

2. Stwierdzono następujące właściwości wolnych rodników w badanych próbkach:

• Układ wolnych rodników w sterylizowanych termicznie recepturowych substancjach

leczniczych (A1, A4, A6, A9) i podłożach maściowych (A2, A3, A5, A8) oraz

w substancjach leczniczych poddanych działaniu promieniowania UV (A7) ma charakter

złożony, co potwierdza zależność kształtu ich widm EPR od mocy mikrofalowej.






__________________________________________________________________________________

23

• Ciągłe nasycenie mikrofalowe widm EPR wykazało, że linie EPR wolnych rodników

w badanych próbkach poszerzone są w sposób jednorodny.

• Silne oddziaływania dipolowe charakterystyczne dla wolnych rodników położonych

blisko siebie występują w badanych próbkach i odpowiadają za duże szerokości ich linii

EPR.

• Wolne procesy relaksacji spin-sieć zachodzą w wazelinie białej sterylizowanej termicznie

w temperaturze 170 oC (60 minut) i temperaturze 180

oC (30 minut) (A5). Linie EPR tych

próbek ulegają nasyceniu przy niższych wartościach mocy mikrofalowych. W pozostałych

zbadanych próbkach (A1-A9) zachodzą szybkie procesy relaksacji spin-sieć, a ich linie

EPR nie nasycają się w badanym zakresie mocy mikrofalowej.

• Koncentracja wolnych rodników w substancjach leczniczych i podłożach maściowych

stosowanych w recepturze aptecznej zależy od rodzaju próbki oraz od warunków

sterylizacji termicznej, a jej wartości są odpowiednio z zakresu od 3.2x1017

spin/g (A4,

A6) do 2.73x10

19 spin/g (A1). Najmniejszą z badanych koncentrację wolnych rodników

stwierdzono w kwasie bornym sterylizowanym w temperaturze 170 o

C przez 60 minut

(A4, A6), a największa koncentracja wolnych rodników występuje w zasadowym

galusanie bizmutu sterylizowanym w temperaturze 160 oC przez 120 minut (A1).

3. Spektroskopię EPR i spektrofotometrię UV-Vis można zaproponować, poza testami

mikrobiologicznymi, jako dodatkowe metody przydatne do określenia optymalnych

warunków sterylizacji termicznej substancji leczniczych i podłoży maściowych

stosowanych w recepturze aptecznej, a także do optymalizacji warunków ich

przechowywania.

Wykazano, że optymalne parametry sterylizacji termicznej dla chloramfenikolu to

temperatura 110 oC i czas ogrzewania 60 minut (A9). Zasadowy galusan bizmutu (A1)

i kwas borny (A4, A6) należy sterylizować w temperaturze 170 oC i czasie 60 minut.

Wazelina biała (A5) i żółta (A3) powinny być sterylizowane w temperaturze 180 oC

i w czasie 60 minut. Podłoże maści ocznej może być sterylizowane w temperaturze 160 oC

i w czasie 60 minut (A8). Oddziaływania z tlenem oraz promieniowanie UV jest






__________________________________________________________________________________

24

niekorzystne z punktu widzenia stabilności struktury chemicznej przechowywanych

próbek (A1-A9).

Piśmiennictwo

[1] Farmakopea Polska, wydanie X, PTFarm, Warszawa 2014.

[2] Farmakopea Europejska, wydanie VIII, European Directorate for the Quality of Medicine-

EDQM 2014.

[3] Janicki S., Fiebig A., Farmacja stosowana, Wydawnictwo Lekarskie PZWL, Warszawa

2008.

[4] Bartosz G. Druga twarz tlenu. Wolne rodniki w przyrodzie, Państwowe Wydawnictwo

Naukowe PWN, Warszawa 2016.

[5] Zejca A., Gorczyca M., Chemia leków, Wydawnictwo Lekarskie PZWL, Warszawa 2009.

[6] Janiec W., Kompendium farmakologii, Wydawnictwo Lekarskie PZWL, Warszawa 2012.

[7] Jachowicz R. Receptura apteczna, Wydawnictwo Lekarskie PZWL, Warszawa 2015.

[8] Krówczyński L., Jachowicz R., Ćwiczenia z receptury, Wydawnictwo Uniwersytetu

Jagiellońskiego, Kraków 2000.

[9] Marszałł L., Receptura apteczna półstałych postaci leków do stosowania na skórę,

Wydawnictwo Farmapress, Warszawa 2015.

[10] Marszałł L., Receptura apteczna płynnych postaci leków. Wydawnictwo Farmapress,

Warszawa 2014.

[11] Kostowski W., Herman S.Z., Farmakologia, Wydawnictwo Lekarskie PZWL, Warszawa

2007.

[12] Stankowski J., Hilczer W., Wstęp do spektroskopii rezonansów magnetycznych,

Wydawnictwo Naukowe PWN, Warszawa 2005.

[13] Weil J. A., Bolton J.R., Electron Paramagnetic Resonance: Elementary Theory and

Practical Applications, (2nd Edition), John Wiley & Sons, New York 2007.

[14] Eaton G.R., Eaton S.S., Salikhov K.M., (Eds.), Foundations of Modern EPR. World

Scientific, Singapore 1998.






__________________________________________________________________________________

25

3. Omówienie pozostałych osiągnięć naukowo-badawczych z wykazem

opublikowanych prac naukowych lub twórczych prac zawodowych

Mój całkowity dorobek naukowy obejmuje 53 prace naukowe, w tym 30 prac

znajdujących się na liście filadelfijskiej o łącznym wskaźniku IF = 41.275 i sumarycznej

liczbie punktów KBN/MNiSW = 785.000.

Indeks Hirscha dla moich prac wynosi 5. Liczba cytowań prac wg. bazy Web of

Science wynosi 60, a liczba cytowani wg. bazy Scopus wynosi 58.

Cykl publikacji będących podstawą do ubiegania się o stopień doktora habilitowanego

obejmuje 9 prac naukowych w czasopismach z listy filadelfijskiej o łącznym wskaźniku

IF = 10.162 i sumarycznej liczbie punktów KBN/MNiSW = 155.000.

Poza cyklem publikacji będących podstawą do ubiegania się o stopień doktora

habilitowanego, mój dorobek naukowy obejmuje: 44 prace naukowe, w tym 21 znajdujących

się na liście filadelfijskiej o łącznym wskaźniku IF = 31.113 i sumarycznej liczbie punktów

KBN/MNiSW = 475.000 oraz 23 prace w czasopismach nie znajdujących się na liście

filadelfijskiej (w tym 1 praca w suplemencie czasopisma) z łączą punktacją

KBN/MNiSW = 155.000.

Poza cyklem publikacji będących podstawą do ubiegania się o stopień doktora

habilitowanego oceniając mój udział podsumowuję, że w przypadku 27 (61%) prac jestem

pierwszym (13 prac) lub drugim (14 prac) autorem. W pozostałych 17 pracach jestem trzecim

(13 prac) lub kolejnym autorem (4 prace).

Moja działalność naukowo-badawcza od początku pracy naukowej była związana

z Katedrą i Zakładem Biofizyki Wydziału Farmaceutycznego z Oddziałem medycyny

Laboratoryjnej w Sosnowcu i dotyczyła tematyki zastosowania spektroskopii elektronowego

rezonansu paramagnetycznego (EPR) w farmacji oraz medycynie.

Jako student uczestniczyłem w badaniach naukowych Koła Naukowego STN przy

Katedrze i Zakładzie Biofizyki, gdzie pod kierunkiem Prof. zw. dr hab. n. fiz. Barbary Pilawy

prowadziłem badania przy użyciu spektroskopii EPR związane z wykorzystaniem

paramagnetycznych sond tlenometrycznych do oceny generowania tlenu singletowego






__________________________________________________________________________________

26

podczas terapii fotodynamicznej komórek nowotworowych. Praca pt. ,,Zastosowanie sond

tlenometrycznych w hodowlach komórek in vitro poddanych terapii fotodynamicznej’’

prezentowana była przeze mnie podczas I Międzynarodowej i XLV Międzywydziałowej

Konferencji Naukowej Studentów Akademii Medycznych w Zabrzu Rokitnicy w 2006 roku

i zajęła II miejsce w Sesji Farmaceutycznej (C1).

Po ukończeniu studiów podjąłem pracę w Katedrze i Zakładzie Biofizyki, gdzie

kontynuowałem prace z zastosowaniem spektroskopii EPR jako głównej metody badawczej.

W kręgu moich zainteresowań znalazły się badania wykorzystania spektroskopii

elektronowego rezonansu paramagnetycznego na pasmo X (9.3 GHz) do badania wolnych

rodników powstających w lekach w trakcie ich sterylizacji termicznej. Szerokim analizom

poddane zostały wybrane antybiotyki z grupy β-laktamów i aminoglikozydów. Powyższe

antybiotyki zostały poddane procesowi sterylizacji termicznej i przebadane metodą

spektroskopii EPR w celu analizy ilości powstawania wolnych rodników i ich rodzaju w

trakcie procesu sterylizacji termicznej. Dodatkowo wybrane antybiotyki zostały zbadane

metodą FT-IR w celu wykrycia zmian strukturalnych leku. Badania te stały się tematem mojej

pracy doktorskiej pt.,, Wolne rodniki w wybranych antybiotykach aminoglikozydowych

i β-laktamowych sterylizowanych termicznie’’, którą napisałem pod kierunkiem Prof. zw. dr

hab. n .fiz. Barbary Pilawy.

Mój dorobek naukowy przed uzyskaniem stopnia doktora stanowił: 12 prac

naukowych w czasopismach nie znajdujących się na liście filadelfijskiej z łączą punktacją

KBN/MNiSW = 65.000 (C1-C12) oraz 8 streszczeń zjazdowych.

Po uzyskaniu stopnia doktora kontynuowałem badania związane z wykorzystaniem

spektroskopii EPR w medycynie i farmacji. Badałem kolejne grupy leków poddawane

sterylizacji termicznej w celu optymalizacji tego procesu (B1, B9, B12, B18, C13, C14, C16,

C19, C22, D1).

Prowadziłem również badania wpływu różnych czynników fizycznych, takich jak

promieniowanie UV czy temperatura, na generowanie wolnych rodników w lekach

i substancjach pochodzenia naturalnego m.in. neomycynie, kwasie fusydowym, propolisie,

ekstrakcie z jeżówki purpurowej (B11, B12, B17, B20, C18, C20).






__________________________________________________________________________________

27

Kolejną tematykę badawczą, w której byłem współautorem stanowiły eksperymenty

związane z właściwościami antyoksydacyjnymi substancji leczniczych oraz próbek

pochodzenia naturalnego m.in. insuliny, kwasy cholowe, resweratrol, kurkuma, kardamon

oraz ekstrakty z pyłku pszczelego i morwy białej z wykorzystaniem modelowych wolnych

rodników – DPPH (2,2-difenylo-1-pikrylohydrazyl) (B2, B3, B8, B11, B14-B16, B21, C20,

C21).

Kolejne prace, w których byłem współautorem dotyczyły badania wpływu preparatów

syntetycznych i preparatów pochodzenia naturalnego m.in. soli srebrowej sulfatiazolu oraz

propolisu na procesy gojenia się ran oparzeniowych (B5-B7).

Byłem współautorem prac, w których za pomocą techniki elektronowego rezonansu

paramagnetycznego badane były właściwości paramagnetyczne biomateriałów stosowanych

w medycynie (B13, C10).

Pozostałe prace, w których byłem współautorem miały charakter badawczy o szerokim

zastosowaniu poznawczym oraz dydaktycznym w medycynie, farmacji i kosmetologii (B10,

C15, C17).


znajdujących się na liście filadelfijskiej

B1. Aleksandra Skowrońska, Maciej Wojciechowski, Paweł Ramos, Barbara Pilawa, Danuta

Kruk

ESR studies of paramagnetic centers in pharmaceutical materials – cefaclor and

clarithromycin as an example. Acta Physica Polonica A 2012; Vol. 121, No. 2, p. 514-517

IF = 0.531


B2. Anna Rzepecka-Stojko, Barbara Pilawa, Paweł Ramos, Jerzy Stojko

Antioxidative properties of bee pollen extracts examined by EPR spectroscopy

Journal of Apicultural Science 2012; Vol. 56, No. 1, p. 23-31

IF = 0.529







__________________________________________________________________________________

28

B3. Ewa Kurzeja, Małgorzata Stec, Paweł Ramos, Barbara Pilawa, Katarzyna Pawłowska-

Góral

The influence of sterilization on free radical generation, discoloration and the antioxidant

properties of certain spice herbs.

Italian Journal of Food Science 2012; Vol. 24, No. 3, p. 254-261

IF =0.444


B4. Katarzyna Pawłowska-Góral, Paweł Ramos, Barbara Pilawa, Ewa Kurzeja

Application of EPR spectroscopy to examination of the effect of sterilization process on free

radicals in different herbs

Food Biophysics 2013; Vol. 8, No. 1, p. 60-68

DOI: 10.1007/s11483-013-9284-5

IF =1.551


B5. Paweł Olczyk, Paweł Ramos, Katarzyna Komosinska-Vassev, Jerzy Stojko,

Barbara Pilawa

Positive Effect of Propolis on Free Radicals in Burn Wounds

Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine 2013; Vol. 2013, ID 356737,

p. 1-12

DOI: 10.1155/2013/356737

IF = 2.175


B6. Paweł Olczyk, Paweł Ramos, Marcin Bernaś, Katarzyna Komosinska-Vassev,

Jerzy Stojko, Barbara Pilawa

Application of Electron Paramagnetic Resonance Spectroscopy to Comparative Examination

of Different Groups of Free Radicals in Thermal Injuries Treated with Propolis and Silver

Sulphadiazine


p. 1-11.

DOI: 10.1155/2013/851940

IF = 2.175


B7. Paweł Olczyk, Paweł Ramos, Marcin Bernaś, Katarzyna Komosinska-Vassev,

Jerzy Stojko, Barbara Pilawa

Microwave Saturation of Complex EPR Spectra and Free Radicals of Burnt Skin Treated with

Apitherapeutic Agent


p. 1-9

DOI: 10.1155/2013/545201

IF = 2.175


http://213.227.100.63/scripts/expertus3e3.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&B_00=015&C_00=3&D_00=0.000&mask=2&F_00=06&V_00=Food+Biophys+






__________________________________________________________________________________

29

B8. Ewa Kurzeja, Małgorzata Stec, Paweł Ramos, Barbara Pilawa, Katarzyna Pawłowska-

Góral

Antoxidant propearties of water extracts of sterilized and unsterilized Morus alba L. leaves

International Journal of Food Properties 2013; Vol. 16, No. 4, p. 723-737

DOI: 10.1080/10942912.2011.565901

IF =0.906


B9. Paweł Ramos, Barbara Pilawa, Edyta Stroka

EPR studies of free radicals in thermally sterilized famotidine


IF =0.357


B10. Daniel Krakowian, Dominik Skiba, Adam Kudelski, Barbara Pilawa, Paweł Ramos,

Jakub Adamczyk, Katarzyna Pawłowska-Góral

Application of EPR Spectroscopy to the Examination of Pro-oxidant Activity of Coffee

Food Chemistry 2014; Vol. 151, p. 110-119

DOI: 10.1016/j.foodchem.2013.11.035

IF =3.391


B11. Małgorzata Dołowy, Paweł Ramos, Barbara Pilawa

Effect of UV irradiation and Temperature on Free Radical Properites in Dehydrocholix and

Ursodeoxycholic Acid: An EPR Study


DOI: 10.1155/2014/953619

IF=1.563


B12. Paweł Ramos, Barbara Pilawa

Effect of UV irradiation on Echinaceae purpureae interactions with free radicals examined by

an X-band (9.3 GHz) EPR spectroscopy

Medicinal Chemistry Research 2015; Vol. 24, No. 2, p. 645-651

DOI: 10.1007/s00044-014-1170-2

IF= 1.436


B13. Jakub Adamczyk, Paweł Ramos, Barbara Pilawa

Effect of microwave power on EPR spectra of natural and synthetic dental biocompatible

materials


IF =0.546


http://www.hindawi.com/journals/ijp/aip/921538/






__________________________________________________________________________________

30

B14. Paweł Olczyk, Katarzyna Komosińska-Vassev, Paweł Ramos, Łukasz Mencer,

Krystyna Olczyk, Barbara Pilawa

Interactions of short-acting, intermediate-acting and pre-mixed human insulins with free

radicals - Comparative EPR examination

International Journal of Pharmaceutics 2015; Vol. 490, No. 1-2, p. 9-15

DOI: 10.1016/j.ijpharm.2015.05.022.

IF =3.994


B15. Paweł Olczyk, Katarzyna Komosinska-Vassev, Paweł Ramos, Krystyna Olczyk,

Barbara Pilawa

Interactions of Insuman Comb 25 insulin with free radicals - kinetics examination by electron

paramagnetic resonance spectroscopy


IF =0.877


1.

B16. Paweł Olczyk, Katarzyna Komosinska-Vassev, Paweł Ramos, Łukasz Mencner,


Application of electron paramagnetic resonance spectroscopy for examination of free radical

scavenging properties of insulin analogs


IF =0.877


B17. Paweł Olczyk, Paweł Ramos, Katarzyna Komosińska-Vassev, Łukasz Mencner,


Influence of temperature on free radical generation in propolis-containing ointments


p. 1-8

DOI: 10.1155/2016/7292379

IF =1.931


B18. Paweł Ramos, Sylwia Jarco, Piotr Pepliński, Barbara Pilawa

Free radical formation in rosuvastatin during thermal sterilization at different temperatures


IF =0.877


http://213.227.100.63/scripts/expertus3e3.exe






__________________________________________________________________________________

31

B19. Paweł Olczyk, Katarzyna Komosińska-Vassev, Paweł Ramos, Łukasz Mencner,


Free radical scavenging activity of drops and spray containing propolis – an EPR examination

Molecules 2017; Vol. 22, No. 1, 128, p. 1-10

DOI: 10.3390/molecules22010128

IF =2.465


B20. Ewa Pierzchała, Paweł Ramos, Barbara Pilawa

Application of EPR spectroscopy in comparative analysis of free radicals thermally formed

during storage in the antibacterial oitments contain fusidic acid and neomycin

Acta Poloniae Pharmaceutica. Drug Research 2017; Vol. 74, No. 4, praca przyjęta do druku –

potwierdzenie w załączniku nr 6

IF =0.877


B21. Magdalena Jurzak, Paweł Ramos, Barbara Pilawa

The influence of genistein on free radicals in normal dermal fibroblasts and keloid fibroblasts

examined by EPR spectroscopy

Medicinal Chemistry Research 2017; Vol. 2017, praca przyjęta do druku – potwierdzenie

w załączniku nr 6

DOI: 10.1007/s00044-017-1848-3

IF= 1.436


3.2. Wykaz oryginalnych prac badawczych opublikowanych w czasopismach nie

znajdujących się na liście filadelfijskiej

C1. Barbara Pilawa, Małgorzata Latocha, Paweł Ramos, Magdalena Kościelniak, Robert

Pietrzak, Helena Wachowska

New paramagnetic probes and singlet oxygen formation in cells

Current Topics of Biophysics 2008; Vol. 31, p. 10-15


C2. Paweł Ramos, Ewa Szaflarska-Stojko, Irena Wróblewska-Adamek

The analysis of ovarian cancer morbidity upon operable materials from a Gynaecologican

Ward, District Hospital of Zawiercie, Poland

Farmaceutyczny Przegląd Naukowy 2008; R. 5, nr 1, p. 18-22


http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=02&V_00=Pilawa+Barbara+

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=02&V_00=Latocha+Ma%B3gorzata+

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=02&V_00=Ramos+Pawe%B3+

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=02&V_00=Ko%B6cielniak+Magdalena+

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=02&V_00=Pietrzak+Robert+

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=02&V_00=Wachowska+Helena+

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=06&V_00=Curr+Top+Biophys+


http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=02&V_00=Szaflarska-Stojko+Ewa+

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=02&V_00=Wr%F3blewska-Adamek+Irena+

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=06&V_00=Farm+Przegl+Nauk+






__________________________________________________________________________________

32

C3. Barbara Pilawa, Paweł Ramos, Sławomir Wilczyński, Katarzyna Czyż

Free radicals system analysis in thermally sterilized diclofenac

Inżynieria Biomateriałów/Engineering of Biomaterials 2008; R. 11, nr 81-84, p. 57-58


C4. Barbara Pilawa, Sławomir Wilczyński, Paweł Ramos, Anna Tomasik

Evaluation of concentration, stability and types of free radicals generated in tramadole

exposed to high temperature



C5. Paweł Ramos, Barbara Pilawa, Sławomir Wilczyński, Katarzyna Czyż, Jakub Adamczyk

Effect of heating at 180°C on paramagnetic properties of diclofenac - EPR study

Inżynieria Biomateriałów/Engineering of Biomaterials 2009; R. 12, nr 87, p. 7-12


C6. Andrzej Krztoń, Barbara Liszka, Paweł Ramos, Barbara Pilawa

FT-IR and EPR studies of changes of chemical structure of ampicyline during thermal

sterilization



C7. Katarzyna Pawłowska-Góral, Ewa Kurzeja, Barbara Pilawa, Paweł Ramos

EPR studies Rhizoma calami



C8. Sławomir Wilczyński, Paweł Ramos, Barbara Pilawa, Marta Ptaszkiewicz, Jan Swakoń,

Paweł Olko

Comparison of free radicals properties in radiosterilised and thermal sterilized streptomycin



C9. Paweł Ramos, Barbara Pilawa, Małgorzata Kawka

Formation of free radicals during thermal decomposition of isosorbide mononitrate



C10. Barbara Pilawa, Jakub Adamczyk, Magdalena Zdybel, Sławomir Wilczyński,

Paweł Ramos, Daria Czyżyk, Magdalena Kościelniak

Paramagnetic properties of biomaterials





http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=02&V_00=Wilczy%F1ski+S%B3awomir+

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=02&V_00=Czy%BF+Katarzyna+




http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=02&V_00=Tomasik+Anna+




http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=02&V_00=Czy%BF+Katarzyna+

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=02&V_00=Adamczyk+Jakub+

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=02&V_00=Krzto%F1+Andrzej+

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=02&V_00=Liszka+Barbara+



http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=02&V_00=Paw%B3owska-G%F3ral+Katarzyna+

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=02&V_00=Kurzeja+Ewa+






http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=02&V_00=Ptaszkiewicz+Marta+

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=02&V_00=Swako%F1+Jan+

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=02&V_00=Olko+Pawe%B3+



http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=02&V_00=Kawka+Ma%B3gorzata+


http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=02&V_00=Adamczyk+Jakub+

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=02&V_00=Zdybel+Magdalena+



http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=02&V_00=Czy%BFyk+Daria+

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=02&V_00=Ko%B6cielniak+Magdalena+






__________________________________________________________________________________

33

C11. Paweł Ramos, Piotr Pepliński, Barbara Pilawa

Free radicals in thermally sterilized verapamil



C12. Magdalena Zdybel, Sławomir Wilczyński, Anna Deda, Paweł Ramos

Influence hand hygiene agents on skin pH

Polish Journal of Cosmetology 2009; Vol. 12, No. 3, p. 212-216


C13. Paweł Ramos, Barbara Pilawa

Effect of temperature and time of thermal sterilization on formation of free radicals in

isosorbide dinitrate

Farmaceutyczny Przegląd Naukowy 2010; R. 7, nr 5, p. 28-33


C14. Paweł Ramos, Barbara Pilawa, Marcin Bernaś

Effect of storage time on microwave saturation of EPR spectra of thermally sterilized

streptomycin and its practical applications

Journal of Medical Informatics and Technologies 2010; Vol. 15, p. 185-191


C15. Marcin Bernaś, Paweł Ramos

Network for EPR spectroscopic analysis as a tool in didactic process



C16. Paweł Ramos, Barbara Pilawa, Andrzej Krztoń, Barbara Liszka

Free radicals in the thermally sterilized aminoglycoside antibiotics

Pharmaceutical Analytical Acta 2012; Vol. 3, No. 9, p. 1-13, [1000193]

C17. Marcin Bernaś, Paweł Ramos

Separation of groups of free radicals from noised EPR spectrum using genetic algorithm and

gradient method



C18. Paweł Ramos, Piotr Pepliński, Barbara Pilawa

Effect of UV irradiation on interactions of α-lipoic acid with free radicals


DOI: 10.1155/2013/921538



http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=02&V_00=Pepli%F1ski+Piotr+


http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=02&V_00=Zdybel+Magdalena+


http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=02&V_00=Deda+Anna+


http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=06&V_00=Pol+J+Cosmetol+



http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=06&V_00=Farm+Przegl+Nauk+

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e3.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&mask=2&F_00=02&V_00=Ramos+Pawe%B3+

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e3.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&mask=2&F_00=02&V_00=Pilawa+Barbara+

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e3.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&mask=2&F_00=02&V_00=Krzto%F1+Andrzej+

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e3.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&mask=2&F_00=02&V_00=Liszka+Barbara+

http://www.hindawi.com/journals/ijp/aip/921538/

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e3.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=06&V_00=Int+J+Photoenergy+

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e3.exe






__________________________________________________________________________________

34

C19. Paweł Ramos, Barbara Pilawa, Maciej Adamski

Application of EPR spectroscopy for examination of thermally formed free radicals in

drotaverine

Annales Academiae Medicae Silesiensis 2014; Vol. 68, No. 1, p. 28-37


C20. Monika Michalak, Ryszard Glinka, Paweł Ramos, Barbara Pilawa

Evaluation of antioxidant properties of Sea buckthorn (Hippophaë rhamnoides L.) and

European cranberry (Vaccinium oxycoccos L.) extracts

Polish Journal of Cosmetology 2014; Vol. 17, No. 2, p. 143-147


C21. Mateusz Grabowski, Paweł Ramos, Barbara Pilawa

Analysis of interactions of resveratrol, fatty acid, and vitamins soluble in fatty acid with

paramagnetic DPPH by the EPR spectroscopy

Research Papers of Wrocław University of Economics 2015; No. 411/2015, p. 30-37


C22. Sylwia Jarco, Barbara Pilawa, Paweł Ramos

Interactions of rosuvastatin effected by thermal factor with free radicals-applications of EPR

spectroscopy

Research Papers of Wrocław University of Economics 2015; No. 411/2015, p. 48-57


3.3. Wykaz oryginalnych prac badawczych opublikowanych w suplementach czasopism

nie znajdujących się na liście filadelfijskiej

D1. Paweł Ramos, Barbara Pilawa

The EPR examination of free radicals formation in thermally sterilized β-lactam antibiotics

Current Topics in Biophysics 2010; Vol. 33, suppl. A, p. 183-187


3.4. Wykaz książek, skryptów i rozdziałów

E1. Barbara Pilawa, Paweł Ramos

Spektroskopia EPR. Ćwiczenia dla studentów analityki medycznej i medycyny

Wydawnictwo Śląskiego Uniwersytetu Medycznego w Katowicach, 2016, 125 stron (praca

w druku)

ISBN 978-83-7509-337-7

E2. Barbara Pilawa, Paweł Ramos, Jakub Adamczyk

Biofizyka – ćwiczenia. Skrypt dla studentów farmacji. Wydawnictwo Śląskiego Uniwersytetu

Medycznego w Katowicach, 2016, 116 stron, (praca w druku)

ISBN 978-83-7509-338-4

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e3.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&mask=2&F_00=02&V_00=Ramos+Pawe%B3+

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e3.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&mask=2&F_00=02&V_00=Pilawa+Barbara+

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e3.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&mask=2&F_00=02&V_00=Adamski+Maciej+

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e3.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&mask=2&F_00=06&V_00=Ann+Acad+Med+Siles+








__________________________________________________________________________________

35

E3. Paweł Ramos, Barbara Pilawa

Zastosowanie spektroskopii EPR do optymalizacji procesów sterylizacji termicznej

w farmacji i medycynie

Wydawnictwo Śląskiego Uniwersytetu Medycznego w Katowicach, 2016, (praca w trakcie

odpowiedzi na pozytywną recenzję)

3.5. Aktywny udział w międzynarodowych i krajowych konferencjach naukowych

Jestem autorem i współautorem 49 doniesień prezentowanych na krajowych oraz 7

prezentowanych na międzynarodowych konferencjach naukowych w tym 5 prac było

prezentowanych przeze mnie w formie ustnej. Uzyskałem 2 nagrody za prezentacje ustne

podczas konferencji krajowych.

Konferencje, na których prezentowałem wyniki badań naukowych, to:

41th Meeting of the Polish Biochemical Society, Białystok 2006.

XIII Zjazd Polskiego Towarzystwa Biofizycznego, Łódź 2007.

XLI Seminarium Magnetycznego Rezonansu Jądrowego, Kraków 2008.

XVIII Conference Biomaterials in Medicine and Veterinary Medicine, Rytro 2008.

XLII Seminarium Magnetycznego Rezonansu Jądrowego, Kraków 2009.

6th Symposium on Medical Physics, 4th International Symposium on Medical

Physics, Szczyrk 2009.

5 Konferencja Naukowo-Szkoleniowa Sekcji Dermatologii Estetycznej Polskiego

Towarzystwa Dermatologicznego, Bydgoszcz 2009.

XIX Conference Biomaterials in Medicine and Veterinary Medicine, Rytro 2009.

XLIII Seminarium Magnetycznego Rezonansu Jądrowego, Kraków 2010.

XIV Zjazd Polskiego Towarzystwa Biofizycznego, Łódź 2010.

Międzynarodowa Konferencja Naukowa "Oczekiwania i potrzeby człowieka

w kontekście zdrowia i urody", Kielce, 2010.

I Forum EMR-PL, Rzeszów 2010.

XV International Conference of Medical Informatics & Technologies, Zakopane 2010.

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=06&V_00=Mi%EAdzynarodowa+Konferencja+Naukowa+Oczekiwania+i+potrzeby+cz%B3owieka+w+kontek%B6c

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e2.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&sort=od+najnowszego&mask=2&F_00=06&V_00=Mi%EAdzynarodowa+Konferencja+Naukowa+Oczekiwania+i+potrzeby+cz%B3owieka+w+kontek%B6c






__________________________________________________________________________________

36

International Conference Physics and Engineering for Health and Wellness of Society,

Poznań 2011.

XLIX Naukowa Konferencja Pszczelarska, Puławy 2012.

II Forum EMR-PL, Częstochowa-Hucisko 2012.

IX Multidyscyplinarna Konferencja Nauki o Leku, Szydłów 2014.

III Forum EMR-PL, Kraków 2014.

Konferencja "BioMedTech Silesia 2015", 2015.

Farmacja 21 Farmaceuci w Ochronie Zdrowia, Wrocław 2015.

II Seminarium Naukowe Zielone Idee 21 wieku, Poznań 2015.

II Ogólnopolskie Sympozjum Biomedyczne ESKULAP, Lublin 2015.

III Pszczelarska Konferencja Młodych Naukowców, Zgorzelec 2016.

Konferencja "BioMedTech Silesia 2016", Zabrze 2016.

Farmacja 21 Farmaceuci w Ochronie Zdrowia, Wrocław 2016.

76th FIP World Congress of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences 2016, Buenos

Aires 2016.

Szczegółowy wykaz prac prezentowanych podczas konferencji naukowych zamieściłem

w załączniku nr 5.

3.6. Odbyte kursy i szkolenia

Odbycie kształcenia e-HEMATimage 2007 – organizator e-HEMATimage projekt

Leonardo da Vinci Francja 2007.

Ukończenie kursu ,,Nowoczesna medycyna laboratoryjna 2008’’ – organizator Polskie

Towarzystwo Diagnostyki Laboratoryjnej – Oddział w Katowicach.

Ukończenie kursu ,,Nowoczesna medycyna laboratoryjna 2009’’ – organizator Polskie

Towarzystwo Diagnostyki Laboratoryjnej – Oddział w Katowicach.

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e3.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&mask=2&F_00=06&V_00=Farmacja+21+Kongres+Polskiego+Towarzystwa+Farmaceutycznego+-+Farmaceuci+w+Ochr







__________________________________________________________________________________

37

Szkolenie w zakresie ,,Wpływu leków na wyniki badań laboratoryjnych’’ organizator

Polskie Towarzystwo Diagnostyki Laboratoryjnej – Oddział w Katowicach, firma

Winer lab Group Polska 2010.

Ukończenie kursu ,,Farmakokinetyka stosowana’’ – organizator Kolegium Kształcenia

Podyplomowego, Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach, Wydział

Farmaceutyczny z Oddziałem Medycyny Laboratoryjnej w Sosnowcu 2012.

Ukończenie kursu ,,Biofarmaceutyczna ocena jakości postaci leku’’ – organizator

Kolegium Kształcenia Podyplomowego, Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach,

Wydział Farmaceutyczny z Oddziałem Medycyny Laboratoryjnej w Sosnowcu 2014.

Ukończenie kursu ,,Opieka farmaceutyczna’’ – organizator Kolegium Kształcenia

Podyplomowego, Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach, Wydział


Ukończenie kursu ,,Komunikacja interpersonalna’’ – organizator Kolegium

Kształcenia Podyplomowego, Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach, Wydział


Ukończenie kursu ,,Postępy nauk farmaceutycznych’’ – organizator Kolegium



Ukończenie kursu ,,Prawne i etyczne aspekty pracy farmaceuty’’ – organizator

Kolegium Kształcenia Podyplomowego, Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach,

Wydział Farmaceutyczny z Oddziałem Medycyny Laboratoryjnej w Sosnowcu 2015.

Ukończenie kursu ,,Problemy współczesnej receptury’’ – organizator Kolegium



Ukończenie kursu ,,Postępy w farmacji aptecznej’’ – organizator Kolegium



3.7. Współpraca naukowa

Badania wolnych rodników w substancjach leczniczych wzbudziło zainteresowanie

innych ośrodków naukowych, z którymi obecnie prowadzona jest współpraca naukowa w tym

zakresie.

Współpracuję z Centrum Materiałów Polimerowych i Węglowych Polskiej Akademii

Nauk w Zabrzu, Instytutem Fizyki Uniwersytetu Jagiellońskiego w Krakowie, Katedrą






__________________________________________________________________________________

38

i Zakładem Chemii Farmaceutycznej Uniwersytetu Medycznego im. Karola

Marcinkowskiego w Poznaniu.

Współpracuję z jednostkami wewnętrznymi Wydziału Farmaceutycznego z Oddziałem

Medycyny Laboratoryjnej w Sosnowcu, tj. Katedrą i Zakładem Chemii Klinicznej

i Diagnostyki Laboratoryjnej, Zakładem Farmacji Aptecznej, Katedrą i Zakładem Chemii

Ogólnej i Analitycznej, Katedrą Biofarmacji, Zakładem Kosmetologii oraz z Katedrą

i Zakładem Toksykologii i Bioanalizy.

3.8. Nagrody za działalność naukową

2013 - Zespołowa nagroda II stopnia Rektora Śląskiego Uniwersytetu

Medycznego w Katowicach w zakresie działalności naukowej za ,,Zastosowanie

spektroskopii EPR w medycynie i farmacji’’.

2014 - Zespołowa nagroda I stopnia Rektora Śląskiego Uniwersytetu Medycznego

w Katowicach w zakresie działalności naukowej za ,,Osiągnięcia naukowe

w zakresie oceny oddziaływania propolisu na przebudowę tkanki łącznej w trakcie

regeneracji termicznych uszkodzeń skóry’’.

2015 - Zespołowa nagroda I stopnia Rektora Śląskiego Uniwersytetu Medycznego

w Katowicach w zakresie działalności naukowej za ,,Zastosowanie spektroskopii

elektronowego rezonansu paramagnetycznego wraz z ciągłym nasyceniem

mikrofalowym widm EPR do badania rodzajów i właściwości wolnych rodników

generowanych termicznie, wolnych rodników w substancjach leczniczych,

melaninach oraz komórkach nowotworowych’’.

2015 - Nagroda II stopnia za pracę pt.: ,,Badanie wpływu temperatury i czasu

sterylizacji na generowanie wolnych rodników w podłożu unguentum ophtalmicum

z wykorzystaniem spektroskopii EPR – optymalizacja procesu’’.

Prezentacja ustna podczas Kongresu Polskiego Towarzystwa Farmaceutycznego

FARMACJA 21 Farmaceuci w ochronie zdrowia. Nagroda przyznana przez

Zarząd Główny Polskiego Towarzystwa Farmaceutycznego we współpracy

z Firmą Servier, Przewodnicząca Jury: Prof. dr hab. Anna Wiela-Hojeńska.

2016 - Zespołowa nagroda II stopnia Rektora Śląskiego Uniwersytetu

Medycznego w Katowicach w zakresie działalności naukowej za ,,Zastosowanie

spektroskopii EPR do badania wpływu temperatury, promieniowania UV,

paramagnetycznych i diamagnetycznych jonów na procesy relaksacji spin-sieć

w polimerach melaninowych oraz substancjach leczniczych’’.






__________________________________________________________________________________

39

2016 - Nagroda III stopnia za pracę pt.: ,,Badania EPR wpływu promieniowania

UV na generowanie wolnych rodników w wybranych lekach

przeciwzakrzepowych’’.

Prezentacja ustna podczas II Kongresu Polskiego Towarzystwa Farmaceutycznego

FARMACJA 21 Farmaceuci w ochronie zdrowia. Nagroda przyznana przez

Zarząd Główny Polskiego Towarzystwa Farmaceutycznego, Przewodnicząca Jury:

Prof. dr hab. Anna Wiela-Hojeńska.

3.9. Kierowanie międzynarodowymi lub krajowymi projektami badawczymi lub udział

w takich projektach

Prowadzona przeze mnie działalność naukowo-badawcza jest związana z tematyką

badań własnych, w których pełniłem funkcję kierownika (5 projektów).

Byłem także współwykonawcą w badaniach statutowych (6 projektów).

W latach 2006-2016 uczestniczyłem w 11 projektach badawczych:

2009 - ,,Właściwości wolnorodnikowe wybranych substancji leczniczych

sterylizowanych termicznie’’. Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach, Wydział

Farmaceutyczny z Oddziałem Medycyny Laboratoryjnej w Sosnowcu, Katedra

i Zakład Biofizyki – badania własne – kierownik projektu KNW-2-168/09.

2013 - ,,Wpływ temperatury i czasu sterylizacji na właściwości wolnorodnikowe

wybranych substancji leczniczych sterylizowanych termicznie’’. Śląski Uniwersytet

Medyczny w Katowicach, Wydział Farmaceutyczny z Oddziałem Medycyny

Laboratoryjnej w Sosnowcu, Katedra i Zakład Biofizyki – badania własne –

kierownik projektu KNW-2-016/N/3/N.

2014 - ,,Generowanie wolnych rodników w lekach recepturowych i podłożach

maściowych stosowanych w recepturze aseptycznej w wyniku ich sterylizacji

termicznej’’. Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach, Wydział Farmaceutyczny

z Oddziałem Medycyny Laboratoryjnej w Sosnowcu, Katedra i Zakład Biofizyki –

badania własne – kierownik projektu KNW-2-002/N/4/N.





badania własne – kierownik projektu KNW-2-007/N/5/K.








__________________________________________________________________________________

40



badania własne – kierownik projektu KNW-2-003/N/6/K.

2009 - ,,Właściwości centrów paramagnetycznych w biopolimerach melaninowych

oraz ich rola w procesach biochemicznych’’. Śląski Uniwersytet Medyczny

w Katowicach, Wydział Farmaceutyczny z Oddziałem Medycyny Laboratoryjnej

w Sosnowcu, Katedra i Zakład Biofizyki – badania statutowe – współwykonawca

projektu KNW-1-142/09.





projektu KNW-1-002/P/2/0.





projektu KNW-1-137/K/3/0.





















__________________________________________________________________________________

41

3.10. Recenzje publikacji w czasopismach międzynarodowych i krajowych

Recenzowałem 5 prac w czasopismach naukowych, w tym 4 prace w czasopismach

zagranicznych i 1 pracę w czasopiśmie polskim o zasięgu międzynarodowym znajdującym

się na liście filadelfijskiej.

Recenzje dotyczyły prac w następujących czasopismach:

Medicinal Chemistry Research (lista filadelfijska, IF = 1.436),

BioMedical Engineering OnLine (lista filadelfijska, IF = 1.382),

Journal of Infection and Public Health (lista filadelfijska, IF = 1.194),

Engineering Journal,

Nukleonika (lista filadelfijska, IF = 0.546).

3.11. Przynależność do towarzystw naukowych

Jestem członkiem następujących towarzystw naukowych:

Polskie Towarzystwo Farmaceutyczne,

Polskie Towarzystwo Diagnostów Laboratoryjnych,

Polskie Towarzystwo Biofizyczne,

Polskie Towarzystwo EPR.






__________________________________________________________________________________

42

4. Działalność dydaktyczna

4.1. Prowadzone zajęcia dydaktyczne

Od początku swojego zatrudnienia (2006) jestem związany z Katedrą i Zakładem

Biofizyki Wydziału Farmaceutycznego z Oddziałem Medycyny Laboratoryjnej w Sosnowcu,

gdzie prowadzę zajęcia dydaktyczne w formie ćwiczeń laboratoryjnych i seminariów

z następujących przedmiotów:

Biofizyka, dla studentów kierunku farmacja i kosmetologia (2006-nadal),

Biofizyka medyczna, dla studentów kierunku analityka medyczna (2006-nadal),

Fizyka i biofizyka, dla studentów kierunku biotechnologia medyczna (2006-nadal),

Podstawowa aparatura w kosmetologii, dla studentów kierunku kosmetologia (od

2016-nadal),

Aparatura w kosmetologii, dla studentów kierunku kosmetologia (2015),

Aparatura medyczna, dla studentów kierunku biotechnologia medyczna (2015).

Brałem udział w kształceniu studentów Uniwersytetu Śląskiego w Katowicach w ramach

współpracy Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach - Uniwersytet Śląski

w Katowicach. Prowadziłem ćwiczenia z przedmiotów:

Fizyka dla studentów Uniwersytetu Śląskiego w Katowicach, kierunek

bioinformatyka studiów I stopnia (2002-2003),

Biofizyka dla studentów Uniwersytetu Śląskiego w Katowicach, kierunek

bioinformatyka studiów I stopnia (2006).

4.2. Udział w kształceniu podyplomowym

Prowadziłem w roku akademickim 2016/2017 wykłady i ćwiczenia z przedmiotu

„Aparatura i urządzenia stosowane w kosmetologii” dla studentów studiów podyplomowych

z zakresu kosmetologii z elementami medycyny estetycznej.

4.3. Kierownictwo specjalizacji zawodowej dla farmaceutów

Jestem obecnie kierownikiem 2 specjalizacji z dziedziny farmacji aptecznej:

Mgr farmacji Ewelina Magiera, Apteka Dr. Max ul. 3 Maja 185, 41-500 Chorzów,






__________________________________________________________________________________

43

Mgr farmacji Justyna Kulińska-Malik, Apteka Bliska ul. Zawiszy Czarnego 16A, 40-

872 Katowice.

4.4. Opiekun naukowy w przewodach doktorskich

Sprawowałem/sprawuję opiekę naukową podczas realizacji 4 prac doktorskich

w Katedrze i Zakładzie Biofizyki Wydziału Farmaceutycznego z Oddziałem Medycyny

Laboratoryjnej w Sosnowcu Śląskiego Uniwersytetu Medycznego w Katowicach:

Dr Daria Czyżyk

Wpływ sterylizacji termicznej na właściwości wolnorodnikowe substancji czynnych

kosmetyków i leków

Praca na stopień doktora nauk medycznych

(praca zrealizowana w ramach studiów doktoranckich, praca obroniona w 2013 roku,

promotor: prof. zw. dr hab. n. fiz. Barbara Pilawa)

Mgr Anna Krzeszewska-Zaręba

Właściwości wolnorodnikowe sterylizowanych termicznie wybranych antybiotyków

stosowanych w dermatologii


(2012 - wszczęcie przewodu doktorskiego, grudzień 2016 - praca uzyskała dwie

pozytywne recenzje, w tym jedną recenzję z wnioskiem o wyróżnienie, praca

realizowana w ramach studiów doktoranckich, promotor pracy: prof. zw. dr hab. n.

fiz. Barbara Pilawa)

Mgr Monika Michalak

Badanie oddziaływań ekstraktów z Hippophaë rhamnoides L. i Vaccinium oxycoccos

L. z wolnymi rodnikami z zastosowaniem spektroskopii EPR i spektrofotometrii

UV-Vis


(praca realizowana pod kierunkiem dwóch promotorów: Prof. dr hab. n. farm.

Ryszard Glinka, Prof. dr hab. n. fiz. Barbara Pilawa, (2015 - wszczęcie przewodu

doktorskiego)

Mgr Sylwia Jarco

Właściwości wolnorodnikowe leków przeciwgorączkowych stosowanych

w położnictwie (tematyka badań)


(praca realizowana w ramach studiów doktoranckich, bez otwartego przewodu,

planowany promotor: prof. zw. dr hab. n. fiz. Barbara Pilawa, planowany promotor

pomocniczy: dr n. med. Paweł Ramos)






__________________________________________________________________________________

44

Opiekun 10 prac badawczych prezentowanych przez doktorantów podczas konferencji

naukowych, w tym 2 prac nagrodzonych i 1 wyróżnionej (podkreślono imię i nazwisko

doktorantów, dla których jestem opiekunem naukowym w przewodach doktorskich):

Sylwia Jarco, Paweł Ramos, Barbara Pilawa

Określenie wpływu warunków przechowywania leków przeciwgorączkowych

stosowanych w położnictwie na ich oddziaływania z wolnymi rodnikami - badania

z zastosowaniem spektroskopii EPR

Konferencja "BioMedTech Silesia 2015", Zabrze 2015

1 miejsce – nagroda publiczności za prezentację pracy

Sylwia Jarco, Mateusz Grabowski, Monika Michalak, Piotr Pepliński

Wpływ temperatury otrzymywania ekstraktów z zielonej herbaty na kinetykę ich

oddziaływania z wolnymi rodnikami – badania z zastosowaniem spektroskopii EPR

VII Konferencja Studenckich Kół Naukowych „Wiosna promocji zdrowia.”-

Krakowska Wyższa Szkoła Promocji Zdrowia, Kraków 2016

Wyróżnienie pracy za prezentację

Sylwia Jarco, Barbara Pilawa, Paweł Ramos

Badania metodą Elektronowego Rezonansu Paramagnetycznego (EPR) oddziaływań

ekstraktów z Matricaria chamomilla z wolnymi rodnikami

II Seminarium Naukowe Zielone Idee 21 wieku, Poznań 2015


Wpływ promieniowania UV na właściowści antyoksydacyjne ektraktu z Matricaria

Chamomilla

II Ogólnopolskie Sympozjum Biomedyczne ESKULAP, Lublin 2015


Badania EPR wolnych rodników w klomifenie sterylizowanym termicznie

II Ogólnopolskie Sympozjum Biomedyczne ESKULAP, Lublin 2015

Sylwia Jarco Oddziaływanie rosuwastatyny poddanej działaniu czynnika termicznego z DPPH –

zastosowanie spektroskopii EPR

II Ogólnopolska Konferencja Młodych naukowców Nauk Przyrodniczych,

Wkraczając w Świat Nauki 2015, Wrocław 2015

Sylwia Jarco, Emil Szymański, Barbara Pilawa, Paweł Ramos

Badanie ziołomiodów z regionu górnołużyckiego z zastosowaniem spektroskopii

elektronowego rezonansu paramagnetycznego

III Pszczelarska Konferencja Młodych Naukowców, Zgorzelec 2016

http://213.227.100.63/scripts/expertus3e3.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&mask=2&F_00=06&V_00=Konferencja+BioMedTech+Silesia+2015+Zabrze+24+04+2015+streszczenia+











__________________________________________________________________________________

45

Sylwia Jarco, Emil Szymański, Barbara Pilawa, Paweł Ramos

Wpływ promieniowania UV na właściwości wolnorodnikowe ziołomiodów z regionu

górnołużyckiego


Sylwia Jarco, Barbara Pilawa, Paweł Ramos

Spektroskopia EPR modelowych wolnych rodników w badaniach wpływu

promieniowania UV na oddziaływania substancji leczniczych z wolnymi rodnikami


Sylwia Jarco

Spektroskopia EPR w badaniach stabilności termicznej substancji leczniczych



4.5. Promotorstwo oraz opieka nad pracami magisterskimi i licencjackimi

4.5.1. Promotorstwo prac magisterskich

Byłem/jestem promotorem 11 prac magisterskich na Wydziale Farmaceutycznym

z Oddziałem Medycyny Laboratoryjnej w Sosnowcu Śląskiego Uniwersytetu Medycznego

w Katowicach:

Anna Kaczmarek

,,Badanie właściwości wolnych rodników generowanych w metronidazolu

sterylizowanym termicznie w temperaturze 170C przez 60 minut’’, (2014).

Magdalena Grela



Katarzyna Figura

,,Badanie właściwości wolnych rodników generowanych w atorwastatynie

sterylizowanej termicznie w temperaturze 170C przez 60 minut’’, (2014).

Katarzyna Kruczek



Wojciech Balas

,,Badanie właściwości wolnych rodników generowanych w rosuwastatynie



../../../../../PRACA%20UCZELNIA/PUBLIKACJE/Konferencja%20%22BioMedTech%20Silesia%202016%22,%20Zabrze%2008.04.2016,

../../../../../PRACA%20UCZELNIA/PUBLIKACJE/Konferencja%20%22BioMedTech%20Silesia%202016%22,%20Zabrze%2008.04.2016,






__________________________________________________________________________________

46

Anna Ślusarczyk



Monika Zofia Szubert



Paulina Nowak

,,Badanie właściwości wolnych rodników generowanych w kwasie walproinowym

sterylizowanej termicznie w temperaturze 180C’’, (2017, w trakcie realizacji).

Natalia Pikor

,,Badanie właściwości wolnych rodników generowanych w piracetamie sterylizowanej

termicznie w temperaturze 160C’’, (2017, w trakcie realizacji).

Agnieszka Janowicz

,,Badanie właściwości wolnych rodników generowanych w piracetamie sterylizowanej

termicznie w temperaturze 180C’’, (2017, w trakcie realizacji).

Joanna Kołodziej

,,Badanie właściwości wolnych rodników generowanych w trimetazydynie

sterylizowanej termicznie w temperaturze 160C’’, (2017, w trakcie realizacji).

4.5.2. Promotorstwo prac licencjackich

Jestem promotorem 2 obronionych prac licencjackich na Wydziale Farmaceutycznym


w Katowicach:

Klaudia Hom ,,Zastosowanie lasera argonowego w kosmetologii’’, (2015).

Joanna Kołodziej ,,Zastosowanie laserów półprzewodnikowych w kosmetologii’’,

(2015).

4.5.3. Opiekun prac magisterskich

Pełniłem funkcję opiekuna 20 prac magisterskich zrealizowanych na Wydziale

Farmaceutycznym z Oddziałem Medycyny Laboratoryjnej w Sosnowcu Śląskiego

Uniwersytetu Medycznego w Katowicach.






__________________________________________________________________________________

47

4.5.4. Recenzent prac magisterskich

Pełniłem funkcję recenzenta 15 prac magisterskich na Wydziale Farmaceutycznym


w Katowicach.

4.5.5. Recenzent prac licencjackich

Recenzowałem 6 prac licencjackich na Wydziale Farmaceutycznym z Oddziałem

Medycyny Laboratoryjnej w Sosnowcu Śląskiego Uniwersytetu Medycznego w Katowicach.

4.6. Opieka naukowa nad pracami realizowanymi w Kole Naukowym Studenckiego

Towarzystwa Naukowego

Sprawuję opiekę naukową nad badaniami właściwości wolnych rodników

w substancjach leczniczych i kosmetycznych z wykorzystaniem spektroskopii elektronowego

rezonansu paramagnetycznego (EPR), realizowanymi przez studentów należących do Koła

Naukowego Studenckiego Towarzystwa Naukowego działającego przy Katedrze i Zakładzie

Biofizyki.

Jestem opiekunem naukowym 10 prac zrealizowanych przez studentów w Kole

Naukowym STN, w tym 3 prac nagrodzonych i 1 wyróżnionej (podkreślono imię i nazwisko

studentów, dla których jestem opiekunem naukowym w badaniach):

Barbara Sierakowska

Wpływ temperatury i czasu sterylizacji termicznej na generowanie wolnych rodników

w pantoprazolu

V Międzynarodowa i XLIX Międzywydziałowa Konferencja Naukowa Studentów

Uczelni Medycznych, Katowice 2010

Mateusz Grabowski, Paweł Ramos, Barbara Pilawa

Analiza spektroskopowa widm EPR paramagnetycznego DPPH w badaniu

oddziaływań z wolnymi rodnikami resweratrolu oraz kwasów tłuszczowych omega-3

stosowanych w chorobach serca i miażdżycy



http://213.227.100.63/scripts/expertus3e3.exe?KAT=c%3A%5Cexpertus.cd%5Cbib%5Cpar%5C&FST=data.fst&FDT=data.fdt&ekran=ISO&lnkmsk=2&cond=AND&mask=2&F_00=06&V_00=Konferencja+BioMedTech+Silesia+2015+Zabrze+24+04+2015+streszczenia+






__________________________________________________________________________________

48

Mateusz Grabowski

Analiza oddziaływań resweratrolu, kwasów tłuszczowych oraz witamin

rozpuszczalnych w tłuszczach z paramagnetycznem DPPH z wykorzystaniem

spektroskopii EPR

II Ogólnopolska Konferencja Młodych Naukowców Nauk Przyrodniczych,

Wkraczając w Świat Nauki, Wrocław 2015

Mateusz Grabowski

Koncentracja oraz rodzaj wolnych rodników w próbkach Spirogyra sp. ze zbiorników

wodnych terenów uprzemysłowionych – zastosowanie spektroskopii EPR

II Ogólnopolska Konferencja Młodych Naukowców Nauk Przyrodniczych,

Wkraczając w Świat Nauki, Wrocław 2015


Badania metodą Elektronowego Rezonansu Paramagnetycznego (EPR) oddziaływań

ekstraktów z Mentha piperita z wolnymi rodnikami

II Seminarium Naukowe „Zielone Idee 21. Wieku” Politechnika Wrocławska

Poznań 2015


Wpływ promieniowania UV na właściwości antyoksydacyjne ekstraktu z Mentha

piperita

II Ogólnopolskie Sympozjum Biomedyczne ESKULAP 2015, Fundacja na rzecz

promocji nauki i rozwoju TYGIEL, Lublin 2015

Mateusz Grabowski, Emil Szymański, Paweł Ramos, Barbara Pilawa Badania miodów z regionu górnołużyckiego z zastosowaniem spektroskopii

elektronowego rezonansu paramagnetycznego



Spektroskopia EPR w badaniach stabilności termicznej substancji leczniczych. Konferencja "BioMedTech Silesia 2016", Zabrze 2016


Sylwia Jarco, Mateusz Grabowski, Monika Michalak, Piotr Pepliński

Wpływ temperatury otrzymywania ekstraktów z zielonej herbaty na kinetykę ich

oddziaływania z wolnymi rodnikami – badania z zastosowaniem spektroskopii EPR

VII Konferencja Studenckich Kół Naukowych „Wiosna promocji zdrowia.”-

Krakowska Wyższa Szkoła Promocji Zdrowia, Kraków 2016

Wyróżnienie pracy za prezentację






__________________________________________________________________________________

49

Mateusz Grabowski, Emil Szymański, Paweł Ramos, Barbara Pilawa

Wpływ promieniowania UV na właściwości wolnorodnikowe miodów z regionu

górnołużyckiego


3 miejsce – nagroda za prezentację pracy

4.7. Popularyzacja nauki

Wygłosiłem 3 wykłady dla Słuchaczy Uniwersytetu III wieku na Wydziale

Farmaceutycznym z Oddziałem Medycyny Laboratoryjnej w Sosnowcu Śląskiego

Uniwersytetu Medycznego w Katowicach:

,,Zagrożenia rakowe żeńskiego układu płciowego w wieku dojrzałym’’ – 09.05.2008.

,,Podstawowe badania laboratoryjne u osób w podeszłym wieku, przygotowanie

pacjenta i interpretacja wyników badań’’ – 20.04.2009.

,,Diagnostyka i leczenie chorób tarczycy’’ – 12.04.2010.






__________________________________________________________________________________

50

5. Działalność organizacyjna

5.1. Działalność organizacyjna w Śląskim Uniwersytecie Medycznym w Katowicach

Członek Rady Wydziału Farmaceutycznego z Oddziałem Medycyny Laboratoryjnej

w Sosnowcu na kadencję 2012-2016.

Członek Uczelnianego Kolegium Elektorów Śląskiego Uniwersytetu Medycznego

w Katowicach na kadencję 2012-2016.

Koordynator współpracy pomiędzy Śląskim Uniwersytetem Medycznym

w Katowicach a Zespołem Szkół Katolickich im. św. Jana Bosko w Sosnowcu.

Współorganizator dni otwartych Wydziału Farmaceutycznego z Oddziałem Medycyny

Laboratoryjnej w Sosnowcu w Katedrze i Zakładzie Biofizyki.

Reprezentowanie Katedry i Zakładu Biofizyki podczas pierwszego i drugiego Pikniku

Wiedzy organizowanego w Sosnowieckim Centrum Nauki (2013).

Sprawowanie opieki nad sześciomiesięcznymi stażami w aptekach ogólnodostępnych

studentów VI roku kierunku farmacja (2011-nadal).

Kontrola praktyk studentów farmacji po III i IV roku w aptekach ogólnodostępnych

i szpitalnych (2010-nadal).

Członek komisji egzaminacyjnej do przeprowadzania egzaminu wstępnego dla

kandydatów na I rok studiów uzupełniających II-go stopnia na kierunku kosmetologia

(17.09.2007).

Współudział w organizacji pracowni dydaktycznej z biofizyki w Katedrze i Zakładzie

Biofizyki Wydziału Farmaceutycznego z Oddziałem Medycyny Laboratoryjnej

w Sosnowcu.

Organizacja profesjonalnej pracowni programowanej sterylizacji termicznej substancji

leczniczych w Katedrze i Zakładzie Biofizyki Wydziału Farmaceutycznego

z Oddziałem Medycyny Laboratoryjnej w Sosnowcu.

5.2. Nagrody za działalność organizacyjną

2012 - Zespołowa nagroda II stopnia Rektora Śląskiego Uniwersytetu Medycznego

w Katowicach w zakresie działalności organizacyjnej w roku akademickim

2011/2012.






__________________________________________________________________________________

51

2013 - Zespołowa nagroda II stopnia Rektora Śląskiego Uniwersytetu Medycznego

w Katowicach w zakresie działalności organizacyjnej w roku akademickim

2012/2013.






__________________________________________________________________________________

52

6. Posiadane uprawnienia

Prawo wykonywania zawodu diagnosty laboratoryjnego na podstawie uchwały

Krajowej Rady Diagnostów Laboratoryjnych nr 5/II/2007 z dnia 19.01.2007.

Prawo wykonywania zawodu farmaceuty na podstawie uchwały Okręgowej Rady

Aptekarskiej w Katowicach nr VI/001/10 z dnia 12.01.2010.

Tytuł specjalisty w specjalności farmacji aptecznej po odbyciu specjalizacji pod

kierunkiem dr hab. n. farm. Ewy Chodurek oraz zdaniu egzaminu przed Państwową

Komisją Egzaminacyjną, Centrum Egzaminów Medycznych w Łodzi, 2016. Dyplom

wydany przez Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach, Wydział Farmaceutyczny

z Oddziałem Medycyny Laboratoryjnej w Sosnowcu, 2016.

A U T O R E F E R A T - sum.edu.pl · Wolne rodniki posiadają niesparowane elektrony, które...

Documents

Transcript of A U T O R E F E R A T - sum.edu.pl · Wolne rodniki posiadają niesparowane elektrony, które...