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Manual de muestreo fitopatológico Fertilab
www.fertilab.com.mx Poniente 6 #200 Esquina Av. Norte 3, Cd. Industrial, Celaya, Guanajuato. CP 38010
01 (461) 614 5238 ▪ 01 (461) 614 7951 ▪ 01 (461) 615 4157 ▪ 01 (461) 216 1255
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INTRODUCCIÓN
La Fitopatología es la ciencia que estudia las enfermedades de las plantas considerando los
agentes causales, su interacción con los hospederos, así como su sintomatología y medios
de control. El control o tratamiento de las enfermedades en las plantas resulta del
diagnóstico de la muestra de tejido vegetal afectado. Por lo tanto, el diagnóstico
fitopatológico se refiere a la determinación del agente causal de una enfermedad y es una
de las bases indispensables para lograr un control eficaz, ya que, permite consultar
información específica del patógeno en cuestión y planear las medidas de control
adecuadas. Algunas enfermedades pueden ser identificadas fácilmente basándose en la
experiencia del técnico y en las particularidades de los patógenos que los hacen
inconfundibles, pero varias de ellas se confunden con anomalías nutrimentales o con
síntomas de otros fitopatógenos, y entonces el diagnóstico requiere de varios procesos:
colecta o muestreo, aislamiento e identificación del patógeno.
El muestreo fitopatológico inicia con una observación precisa de las alteraciones en la
planta, el cual debe realizarse por el personal que ha observado el desarrollo del cultivo
desde su establecimiento en campo o invernadero. La información requerida del personal
encargado considera la distribución del daño, es decir, si todas o solo algunas de las plantas
presentan la sintomatología de la enfermedad. Por lo tanto, la distribución de una
enfermedad varía de acuerdo con las siguientes circunstancias:
✓ Plantas enfermas en todo el lote.
✓ Plantas enfermas en una zona específica del lote.
✓ Plantas enfermas intercaladas con plantas sanas en todo el lote.
✓ Plantas enfermas intercaladas con plantas sanas en una zona específica del lote
como: hileras, bordes de la plantación, partes más bajas o distribuidas al azar.
En el diagnóstico de las enfermedades fitopatológicas es importante ubicar los puntos de
infección o infestación de la planta, ya que desde estos se extiende la enfermedad a toda la
planta. Estos puntos de infección nos permiten determinar el origen del patógeno, así como
la forma y medio de su dispersión. Por lo tanto, el diagnostico fitopatológico depende
principalmente de un correcto muestreo o colecta del material enfermo, ya que la muestra
determinará las técnicas que se aplicaran para una identificación acertada del patógeno. La
importancia del análisis de muestras vegetales con síntomas de daño por algún patógeno y
su identificación radica en las pérdidas económicas que puedan causar al disminuir el
rendimiento final del cultivo.
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ASPECTOS PRINCIPALES DEL MUESTREO FITOPATOLÓGICO
¿Dónde muestrear?
El muestreo para análisis fitopatológico debe realizarse en una zona dónde los cultivos
presentan un crecimiento y desarrollo anormal, es decir, las plantas presentan daños físicos,
crecimiento lento o dejan de crecer, amarillamiento o ennegrecimiento, u otra
característica que no es propia del cultivo. Los patrones de distribución de las enfermedades
ocasionadas por patógenos en las plantas son:
✓ En huertos o en césped, estas zonas suelen ser circulares.
✓ En algunos cultivos el patrón de distribución es siguiendo las filas.
✓ Raramente se produce un daño generalizado en toda una parcela.
¿Cuándo muestrear?
Las muestras de plantas se deben colectar una vez que haya síntomas característicos de la
enfermedad. El muestreo debe ser dirigido a la zona afectada en la planta, y siempre deberá
muestrearse tejido sano y tejido infectado.
Las muestras de suelo pueden ser colectadas en cualquier época del año, aunque se debe
evitar el muestreo en suelos excesivamente secos o mojados. Cuando se hace rotación de
cultivos, el muestreo debe realizarse cuando aún está el cultivo anterior, para saber si se
debe desinfectar antes de plantar el cultivo del año siguiente.
¿Cómo muestrear?
✓ No se debe tomar muestras en lotes con plantas muy afectadas o muertas.
✓ Las muestras de suelo siempre deben tomarse en la zona alrededor de las raíces de
las plantas afectadas o con poco desarrollo. Asimismo, la profundidad de muestreo
dependerá de la profundidad radical del cultivo, es decir, la profundidad de
muestreo es a la altura de las raíces.
✓ En lotes con cultivo, el muestreo de suelo se hace recorriendo toda la parcela.
✓ Para el análisis de nematodos en el suelo, nunca se debe incluir en la muestra suelo
de la parte superficial, dónde la temperatura y condiciones de humedad limitan las
poblaciones de estos organismos.
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MUESTREO VEGETAL PARA ANÁLISIS FITOPATOLÓGICO
Las enfermedades o anomalías fitopatológicas se presentan en hojas, raíces y tallos,
principalmente. Estas enfermedades se detectan cuando las plantas tienen un desarrollo
anormal (brotes, órganos y crecimiento en general) y ciertos síntomas como: tejido seco
(muerto), lesiones, decoloraciones o mosaicos, pigmentaciones, manchas, pudriciones,
marchitamientos, agallas, grietas, tumores, etc. (Ver Figura 1). Por lo tanto, es conveniente
conocer el mayor número de características de la muestra vegetal colectada para lograr una
correcta identificación del patógeno.
Figura 1. Síntomas y su ubicación en la planta (Traducido y modificado de Agrios, 2005).
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El muestreo de tejido vegetal inicia con la ubicación de la parte dañada de la planta o
detectando los indicios del daño del patógeno que ayude al laboratorio a diagnosticar la
muestra. Se recomienda colectar una cantidad suficiente de muestra, partes vegetales con
el síntoma observado y partes asintomáticas o no enfermas. Por su parte, las infecciones
virales frecuentemente causan alteraciones macroscópicas en las hojas, conocidas como
mosaicos. Asimismo, los síntomas locales en las hojas como lesiones cloróticas o necróticas
de tamaño y tipos diferentes dependen del huésped. Por lo tanto, algunos aspectos que se
deben considerar al momento del muestreo son:
1. Las muestras deben ser representativas del problema fitopatológico que se observa
en campo.
2. Los órganos o partes de la planta colectados deben mostrar los síntomas
característicos de la enfermedad en diferentes estados o grados de desarrollo de la
enfermedad.
3. El muestreo del tejido vegetal debe realizarse cuando las plantas se encuentran
secas, es decir, sin presencia de humedad por lluvia o rocío para evitar el desarrollo
de hongos y bacterias.
4. Cuando la enfermedad de la planta se debe a la presencia de insectos o ácaros, la
muestra vegetal debe colectarse con el insecto/ácaro en sus diferentes grados de
desarrollo (larva, ninfa, adulto u otro). Los insectos/ácaros, vivos o muertos pueden
enviarse en un recipiente de cierre hermético (bolsa o tubo) en cantidades mayores
de 5. Si el insecto/ácaro, se encuentra en estado de larva o ninfa se recomienda
añadir un trozo de planta.
5. Después de realizar el muestreo es importante enviar la muestra inmediatamente
al laboratorio. En caso contrario, la parte vegetal y el patógeno muestreado se
deben guardar por un máximo de 2 días a temperatura de refrigeración. Asimismo,
la muestra no debe exponerse al sol y debe transportarse en una hielera a baja
temperatura o durante la noche.
6. Nunca se debe mezclar diferentes tipos de muestra en la misma bolsa, aunque
provengan de la misma planta o lote. Por ejemplo, se deben separar raíces con suelo
de la parte aérea, hojas separadas de ramas o tallos, frutos separados de hojas, etc.
7. Finalmente, es indispensable identificar correctamente la muestra antes de enviarse
al laboratorio, dentro y fuera del empaque, pero sin que tenga contacto con la
muestra. La etiqueta debe llenarse con lápiz de carbón o cera, evitando el uso de
tinta de lapicero. Se recomienda enviar la muestra en doble bolsa plástica y colocar
la etiqueta en medio de ellas.
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En el Cuadro 1 se menciona el manejo de la muestra con daño de algún patógeno o
enfermedad según el órgano dañado.
Cuadro 1. Manejo de la muestra vegetal para su envío al laboratorio considerando el tipo de
muestra.
Tipo de muestra Manejo para su envío
Plántula
Colectar la planta entera, es decir, parte aérea y raíces (con todo y
cepellón). Tomar de 15 a 20 plántulas completas, asegurando una
muestra vegetal con un peso aproximado de 100 a 150 g. Se
recomienda cavar alrededor de las plantas y retirarlas del suelo con
cuidado para no dañar las raíces.
Hojas, ramas, flores,
yemas, tallos
Colocar la muestra vegetal (en trozos o entera) en papel absorbente o
papel periódico no humedecido, dentro de bolsas dobles de plástico.
Evitar el uso de bolsa negra.
El material leñoso, como tallos de árboles frutales, deben ir partidos a
la mitad.
Frutos, tubérculos,
bulbos, etc.
Envolver la muestra sin humedad en la superficie en papel absorbente
seco o algodón que amortigüe los golpes y colocarla dentro de un
envase de cartón o bolsa de papel.
Las piñas de agave deben ir partidas a la mitad o enviar trozos de piña
envueltas en papel absorbente o periódico sin humedecer.
Semillas
Revolver homogéneamente las semillas y colocar una muestra en
bolsas de plástico. Cuando es semilla a granel, utilizar un colector
múltiple.
Raíces
Muestrear raíces con un poco de suelo. Colocar la muestra en bolsas
de papel y luego en una bolsa de plástico dentro de una caja de cartón.
Cuando se pueda, partirlas a la mitad.
Plantas en hidroponía
Las plantas deben ser retiradas del sistema hidropónico, dejando
escurrir y secar el exceso de solución nutritiva de las raíces. Se deberá
colectar 100-150 g de planta completa. Las plantas deben ser
colocadas en bolsa de papel o bolsa plástica perforados, debidamente
identificados
Plantas con cancros y
agallas
Colectar muestra fresca y colocarla sin humedad en bolsas de papel
grueso selladas herméticamente (no usar bolsas de plástico). Colocar
las ramas con cancros jóvenes y las raíces con agallas en papel
periódico no humedecido y en bolsas de plástico (evitar bolsas
negras). Siempre se debe separar las muestras de plantas sanas de las
enfermas.
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La muestra vegetal colectada debe conservarse en las mejores condiciones posibles ya que
el diagnóstico es casi imposible cuando las muestras están marchitas o en avanzado estado
de pudrición. Asimismo, cuando se presenta deformación de hojas, mosaico, aclaración de
venas, manchas anilladas, se deben colectar todos los estados representativos de la
enfermedad, enviando al menos 15 hojas de cada síntoma envuelto en papel toalla y con
bolsa plástica sellada.
Cuando por alguna circunstancia no se
puede colectar las raíces de las plantas
de interés, debemos colectar raíces de
malezas presentes en el lote (mencionar
este procedimiento en la etiqueta de la
muestra). La muestra de raíces debe
enviarse al laboratorio tan pronto como
se colecta en campo o en caso contrario,
mantener las muestras en ambiente
fresco o hielera de unicel (10-15ºC),
evitando la exposición de las muestras
al sol o temperaturas elevadas (Ver
Figura 2).
El mantenimiento de muestras frescas
es esencial para el diagnóstico de
hongos y virus. Además, deben
registrarse las labores culturales
recientes (especialmente aplicaciones
de plaguicidas y fertilizaciones). En el
suelo se pueden presentar raíces con
nodulaciones, decoloraciones, cancros,
etc., por lo que, se recomienda tomar
muestras de suelo y raíces con
diferentes grados de síntomas.
Figura 2. Pasos para el correcto muestreo de raíces
para un análisis fitopatológico: 1) Limpiar la
herramienta con la que se sacará la muestra; 2)
Obtener la muestra representativa del síntoma que
se quiere analizar; 3) Poner la muestra en bolsa
plástica, con papel periódico o papel toalla sin
humedecer y colocar la etiqueta con los datos
correspondientes a su identificación y 4) Poner las
muestras en una hielera para su envío al
laboratorio.
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MUESTREO DE SUELO PARA ANÁLISIS FITOPATOLÓGICO
La muestra de suelo para
análisis fitopatológico debe
tomarse descartando los
primeros 5 cm de suelo
superficial y hasta una
profundidad de 30 cm (Ver
Figura 3). En el caso de
pasto, césped y praderas, la
profundidad de muestreo
recomendada es de 10-15
cm, mientras que para
frutales (raíces profundas)
se recomienda tomar la
muestra de suelo a una
profundidad de 30 - 60 cm (Ver Figura 4).
El muestreo de suelo consiste en
colectar varias submuestras de suelo en
toda la superficie del lote para obtener
una muestra compuesta de 1 kg de
suelo y/o sustrato. Las submuestras
deben obtenerse en varios puntos
alrededor de las plantas enfermas y
mezclarse debidamente en una cubeta
de plástico. La muestra de suelo
homogeneizada debe colocarse en una
bolsa de plástico debidamente cerrada.
Durante el muestreo se debe caminar en zigzag y colectar la muestra de suelo junto con las
plantas que presenten síntomas de la enfermedad, evitando aquellas que se encuentran
con infecciones extremas (Ver Figura 5).
Figura 3. Profundidad de muestreo de suelo para un análisis
fitopatológico con pala (izquierda) y barrena (derecha).
Figura 4. Ejemplo de muestreo de suelo cuando se
encuentran plantas enfermas en la parcela.
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La muestra de suelo debe incluir toda la información
disponible para facilitar el diagnóstico como:
a. Cultivo anterior, cultivo actual y cultivo a
establecer.
b. Características del daño de la plaga o
enfermedad.
c. Avance de la enfermedad.
d. Temperatura media.
e. Humedad relativa
f. Características de suelo.
g. Prácticas de cultivo.
h. Productos químicos aplicados (herbicidas,
fertilizantes, fungicidas, etc.)
i. Otros (Clima, manejo cultural).
MUESTREO DE LÍQUIDOS PARA ANÁLISIS FITOPATOLÓGICO
En el caso de análisis fitopatológico de líquidos, la muestra debe ser siempre simple, es
decir, no se deben mezclar muestras, de tal modo que la muestra para el laboratorio sea la
colectada en cada punto de muestreo. En el Cuadro 3 se mencionan las cantidades de
muestra y algunas recomendaciones para un correcto muestreo.
Cuadro 3. Cantidades de muestra y recomendaciones de muestreo de líquidos para análisis
fitopatológico.
Muestra Cantidad Observaciones
Agua
Al menos
500 ml La muestra debe ser colocada en un recipiente de plástico (botellas de
agua o nuevas) y se debe evitar el uso de recipientes usados que
contenían bebidas azucaradas (refrescos, jugos, etc.). El recipiente debe
llenarse con el líquido sin dejar espacios con aire y taparlo
inmediatamente después de tomar la muestra.
Abono
líquido
Al menos
500 ml
Si la muestra de agua requerida es de un sistema de distribución, se abre el sistema, se deja
correr al menos 5 minutos (ya que el volumen próximo dentro del sistema de distribución
sufre corrosión) y se toma la muestra. Cuando la muestra procede de algún cuerpo de agua
como: ríos, arroyos, lagos, estanques, etc.; se debe muestrear lejos de las costas y a una
profundidad media, evitando hacerlo en sitios afectados por aportes accidentales de otros
Figura 5. Muestreo en “zig-zag” de
una parcela.
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cursos y descargas de líquidos industriales, pluviales o cloacales. Siempre se destapará el
recipiente y tomándolo del cuello, rápidamente será sumergido a una profundidad de 20
cm. Si hay corriente, la boca del recipiente se orientará en sentido contrario a ella. En caso
contrario, se moverá el recipiente en semicírculo. Una vez lleno, se levantará rápidamente
y se tapará de inmediato. Si el agua que se analizará proviene de un pozo excavado o fuente
similar, el procedimiento es el mismo que en el caso anterior. Se puede atar una pesa en la
parte externa del recipiente para facilitar el procedimiento.
En resumen, los criterios recomendados de la cantidad de muestras para un análisis
fitopatológico se presentan en el Cuadro 4. Estos criterios consideran la cantidad de
muestra por superficie que se desea analizar, no son restrictivos y pueden ser cantidades
aproximadas si no se pueden completar las recomendaciones.
Cuadro 4. Órgano de muestreo y cantidad de muestra para un análisis fitopatológico.
Análisis solicitado Tipo de muestra Cantidad y/o características
BACTERIAS
Suelo 0.5 - 1 kg.
Agua 100 - 500 ml.
Semillas de hortalizas 10 g (aprox. 400 semillas).
Tubérculo, Bulbo o grano 0.5 - 1 kg.
Planta
3 - 5 plantas completas en trozos o en su
caso, la parte de la planta con el síntoma
específico que se quiere analizar.
HONGOS
Agua 100 - 500 ml.
Semillas de hortalizas 10 g (aprox. 400 semillas).
Tubérculo, Bulbo o grano 0.5 - 1 kg.
Suelo 0.5 - 1 kg.
Planta
3 - 5 plantas completas en trozos o en su
caso, la parte de la planta con el síntoma
específico que se quiere analizar.
NEMÁTODOS Suelo 1 - 2 kg.
Agua 2 L
VIRUS Planta
No deshidratada.
Preferiblemente enviar tejido con la
manifestación de los síntomas.
Hojas o planta completa.
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GLOSARIO DE TÉRMINOS
Agalla: Hinchamiento o crecimiento excesivo que aparece en las plantas como resultado de
la infección por ciertos patógenos.
Ahogamiento: Destrucción de las plántulas cerca de la parte superficial del suelo, que se
caracteriza por la caída de ellas sobre el terreno.
Aislamiento: Separación de un patógeno a partir de su hospedante y su cultivo en un medio
nutritivo.
Amarillamiento: Enfermedad de las plantas que se caracteriza por atrofia y amarillamiento
de la planta hospedante.
Antracnosis: Enfermedad que se manifiesta como lesiones negras profundas de la hoja,
tallo o fruto, y que es causada por hongos que producen sus esporas asexuales en un
acervulo.
Cancro: Lesión necrótica y con frecuencia profunda que se produce en el tallo, ramas o
ramitas de una planta.
Clorosis: Amarillamiento de los tejidos normalmente verdes, debido a la destrucción de
clorofila o a la imposibilidad de sintetizarla.
Deficiencia nutricional: Situación de las plantas cuando sufren una disponibilidad
insuficiente de nutrimentos y expresan características anormales visibles específicas para
dicho elemento.
Diagnóstico: Acción de determinar la presencia o ausencia de plagas y enfermedades.
Enfermedad: Cualquier mal funcionamiento de las células y tejidos del hospedante, que
resulta de la irritación continúa por un agente patogénico o factor ambiental y que lleva al
desarrollo de síntomas.
Escoba de bruja: Crecimiento en forma de escoba o proliferación en masa causado por la
densa agrupación de ramas de las plantas leñosas.
Hiperplasia: Crecimiento excesivo de una planta debido a un aumento en su división celular.
Hipertrofia: Crecimiento excesivo de una planta debido a un alargamiento celular anormal.
Identificación: Acción y efecto de identificar, es decir, reconocer la identidad de algo o
alguien, marcando de este modo diferencias con otros.
Lesión: Daño sufrido por una planta debido al ataque de un animal o de un agente físico o
químico.
Lesión local: Mancha foliar localizada que produce un virus mediante inoculación mecánica.
Mancha foliar: Lesión limitada por sí misma sobre la hoja.
Manchado: Enfermedad que se caracteriza por la presencia de grandes manchas o pústulas
de forma irregular en hojas, retoños y tallos.
Marchitez: Pérdida de rigidez y caída de los órganos de la planta que por lo general se debe
a la falta de agua en su estructura.
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Mosaico: Síntoma de ciertas enfermedades virales de las plantas que se caracteriza por
zonas entremezcladas de coloración normal y de color amarillento o verde claro.
Muestreo: El muestreo es el proceso de seleccionar un conjunto de plantas de una
población con el fin de estudiarlos.
Necrosis: Muerto y decolorado.
Nematodos: Animales en forma de gusano, generalmente microscópicos y que viven como
saprofitos en el agua o suelo, o bien como parásitos de plantas y animales.
Patogenicidad: Capacidad que tiene un patógeno para producir enfermedad.
Patógeno: Entidad que causa enfermedad.
Parásito: Organismo que vive sobre o en otro organismo vivo (hospedante) y del cual
obtiene sus nutrientes.
Pudrición: Reblandecimiento, decoloración y con frecuencia desintegración de los tejidos
de una planta suculenta como resultado de infección bacteriana o fungosa.
Saprofito: Organismo que obtiene sus nutrientes a partir de la materia orgánica muerta.
Signo: Derivados del patógeno (partes o productos) que se observan sobre una planta
hospedante.
Síntoma: Reacciones o alteraciones internas y externas que sufre una planta como
resultado de su enfermedad.
Virus: Parásito obligado y submicroscópico compuesto por ácido nucleico y proteínas.
REFERENCIAS
Agrios, G. N., 2005. Plant Pathology. 5th ed. Elsevier Academic Press. Florida, USA. 290 p. Abilio O., J. A. 2005. Muestreo y análisis de suelos. Boletín técnico 17. Centro Nacional de Tecnología
Agropecuaria y Forestal. Ministerio de Agricultura y Ganadería. Cd. Arce, El Salvador. 31 p. Noling, J. W. 2001. Nematodes and their Management. En: Vegetable Production Handbook.
Chapter 4. University of Florida Ed. IFAS Extension 2009-2010. 25-34 pp. Piedra N., R. 2015. Guía de muestreo de nematodos fitoparásitos en cultivos agrícolas. Sector Agro-
alimentario del Instituto Nacional de Innovación y Transferencia en Tecnología Agropecuaria (INTA). San José, Costa Rica. 21 p.